JP2017529355A - 競合的hiv侵入阻害を媒介するcd4に対するモノクローナル抗体によるhiv感染の処置および機能的治癒 - Google Patents

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Abstract

本開示は、HIV感染の予防、処置および/または機能的治癒のための組成物および方法に関する。本開示の一面として、HIV感染の予防、処置および機能的治癒のためのCD4に対するモノクローナル抗体、その組成物およびそのような組成物の使用方法に関する。

Description

本願は、2014年9月16日に出願された米国仮出願第62/051,200号の利益を主張するPCT国際出願であり、その開示内容全体が参照により本明細書に組み込まれる。
本発明は、HIV感染の処置及び機能的治癒のための、競合的HIV侵入阻害を媒介するCD4に対するモノクローナル抗体、その組成物及びそのような組成物の使用方法に関する。
後天性免疫不全症候群(AIDS)は、ヒト免疫不全ウイルス(HIV)によって引き起こされるヒト免疫系の疾患である(http://en.wikipedia.org/wiki/HIV/AIDS)。遺伝子研究によると、HIVは、19世紀後期または20世紀初期にアフリカ中西部で始まったことがわかる。AIDSは1981年に米国疾病管理予防センター(U.S. Centres for Disease Control andPrevention)によって最初に認められ、その原因であるHIVは1980年代初期に特定された。この流行病の開始から7000万人を超える人々がHIVに感染し、3500万人の人々がAIDSで死亡している。世界的には、2011年の終わりに3400万人の人々がHIVを抱えて生きていた(http://www.who.int/gho/hiv/en/)。
HIV感染は免疫系の有効性を次第に減少させ、個体を日和見感染症や腫瘍に罹患しやすい状態にする。HIVは、粘膜又は血流が血液、精液、膣液、前精液(pre seminal fluid)および母乳などのHIVを含む体液と直接接触することにより感染する。この感染は、肛門、膣内もしくは口腔性交、輸血、汚染された皮下注射針、妊娠、出産、授乳時の母親と乳児とのやり取り(exchange)または上記体液のうちの1つへの他の曝露により生じ得る。
30年間、科学者らは休止T細胞ではなく「ウイルス産生」CD4 T細胞によってAIDSが引き起こされると考えていた。しかし、AIDSを発症している患者の体内で幅広い範囲のT細胞が壊滅されていることを説明するのに、これらの「ウイルス産生」感染細胞は十分でなかった。Greeneおよび彼の同僚は、静止(休止)リンパCD4 T細胞の95%が不稔ウイルス感染によって引き起こされるピロトーシスにより死滅すると報告した(Doitsh, G.ら、2014)。これらの細胞は細胞質内ウイルスDNAを有するがウイルス複製単位になるT細胞とは異なり、これらの「HIVに感染した」休止T細胞は、炎症誘発性サイトカインの放出を伴う高炎症型のプログラム細胞死(ピロトーシス)により自滅する。細胞タンパク質であるインターフェロンγ誘導性タンパク質16(IFI16)はウイルスDNAを認識し、ピロトーシスを媒介するカスパーゼ−1酵素の活性化を含むT細胞における一連の応答を引き起こし、細胞膨張、細胞膜の透過および細胞質内容物の漏出を生じさせる。休止T細胞はウイルスの死滅を無駄に試みて自滅する。このプロセスは最終的に、AIDSへの疾患の進行を早めるHIVの病理発生に繋がる。
AIDSの発症を遅らせるHIV感染症の現在の処置は、ウイルス複製を防止するための高活性抗レトロウイルス療法、即ちHAARTからなる。現在の最適なHAARTの選択肢は、少なくとも2つのクラスの抗レトロウイルス剤に属する少なくとも3種類の薬剤からなる組み合わせ(即ち「カクテル」)(cART)で構成されている。典型的なレジメンは、2種類のヌクレオシド系逆転写酵素阻害剤(NARTIまたはNRTI)+プロテアーゼ阻害剤または非ヌクレオシド系逆転写酵素阻害剤(NNRTI)のどちらか一方からなる。
先進国において、医師は、HAART処置の開始をいつ勧めるかを決定する際に、ウイルス量、CD4 T細胞数、CD4陽性細胞の減少速度および患者の迅速性(readiness)を評価する。慣例上、処置は、CD4 T細胞数が1マイクロリットルの血液当たり200〜250細胞に減少した際に無症状の患者に勧められてきた。しかし、より早期に(350細胞/マイクロリットルのCD4レベルの時点で)処置を開始することで、AIDSおよび死亡のリスクを著しく減少させることができる。
処置を行わない場合、HIV感染後の正味の生存期間中央値は、HIVサブタイプに応じて9〜11年と推定されており、AIDSと診断された後の生存期間中央値は6〜19ヶ月の範囲である。HAART処置が広く利用可能な地域では、この疾患の死亡率は80%低下し、次いで、これにより新たに診断されたHIV感染者の平均余命は約20年まで上昇する。
HAARTの標準的な目標としては、患者の生活の質の向上、合併症の減少、及び検出限界未満へのHIVウイルス血症の減少が挙げられる。
しかし、HAART処置にはいくつかの問題がある。第一に、この処置は、HIV感染患者を治癒することはなく、処置が一旦停止されると大部分が「HAART耐性」のHIV血中濃度が再び高くなるのを防止することもない。第二に、HAARTは倦怠感、疲労、下痢、頭痛、悪心および嘔吐などの不快な副作用を有し得る。HIV感染患者は長期間にわたって、神経認知障害、骨粗鬆症、神経障害、癌、腎症および心血管疾患を経験することがある。より新しい抗レトロウイルス剤は昔のものよりも副作用が少ないが、生涯使用すればなお被害をもたらす可能性はある。非遵守により、HIVのリバウンド、薬剤耐性および疾患の進行が生じ得る。第三に、最大50%超の患者では、薬剤不耐性、以前の効果のない抗レトロウイルス療法およびHIVの薬剤耐性株による感染により、HAARTは最適にはほど遠い結果をもたらす。
研究者らは、HIV感染を治癒する方法、又は抗レトロウイルス剤なしに長期間または永久的な寛解を少なくとも達成する方法の研究をさらに行っている。
表1に示すように、HIV感染のための2つの治癒的戦略、即ち完全(sterilizing)(即ち根絶)治癒および機能的治癒について現在研究されている。完全治癒法は、HIV感染細胞を全て排除し、HIVを体から完全に一掃することを目標とし、ウイルス量を血液1ミリリットル当たり1コピー未満まで減少させる方法として定められている。機能的治癒は、抗レトロウイルス療法の非存在下での低いウイルス量などの寛解状態およびHIVの長期間の制御を目標とし、永久的または長期間にわたってウイルス量を血液1ミリリットル当たり50コピー未満まで減少させる方法として定められている。
「完全治癒」の現在の唯一の例は、急性骨髄性白血病に罹患して突然変異型または他の型のCCR5遺伝子を有するドナーから骨髄移植を受けた、HIV感染を有する「ベルリン患者(The Berlin Patient)」というニックネームの男性の症例研究から得られたものである。処置なしで45ヶ月後に、医師は彼の系中にHIVを検出することができなかった。それにも関わらず、CCR5突然変異体のドナーによる骨髄移植を用いる戦略は、その毒性および処置の複雑さを考慮するとHIVの現実的な治癒ではない。「機能的治癒」の自然な例の1つは、長期非進行者(エリートコントローラー)(elite controller)において認めることができる。長期非進行者はその免疫系が抗レトロウイルス剤なしにウイルスを自然に制御することができるHIVに感染した個体である。これらの個体は、安定なCD4細胞(白血球)数、低いか又は検出不能なウイルス量、およびそれらの細胞中の著しく少量の「潜伏HIV」の維持に成功している。
治癒を妨げる主な障害の1つは、抗レトロウイルス剤での処置中に長い寿命を有する記憶細胞などの免疫系細胞中に潜伏している「潜伏HIVリザーバー(reservoir)」が存在するということである。なぜなら、そのような処置は複製を阻止することにより活性なウイルス感染に対して作用することはできるが潜伏HIVに対しては作用しないからである。但し、そのような抗レトロウイルス剤処置を停止すれば、潜伏HIVを活性化させ、HIV感染プロセスを再開させることができる。
これらの「問題となる」潜伏HIVリザーバーを標的にする現在の戦略としては、HAART処置の存在下でウイルス発現の活性化により潜伏リザーバーを枯渇させ、それにより感染細胞を全滅させ、非感染細胞のみを残すことが挙げられる。活性化剤のグループの1つは、表2に示すヒストン脱アセチル化酵素(HDAC)阻害剤である。現在、HDAC阻害剤は、気分安定薬、抗てんかん薬および抗癌処置薬として使用されている。癌遺伝子の悪性度および/または再活性化のリスクを高めるHDAC阻害剤の長期間の影響は依然として主な懸念事項である。この戦略は、併用抗レトロウイルス療法(cART)により活性なウイルス複製が完全に阻害される場合には実行可能である。これまでのところ、これらの努力により長期間のウイルス抑制または機能的治癒は得られていない。
HIV感染を有する人々における潜伏HIVリザーバーのサイズの制限または減少のための2つの計画は、(1)新しいART剤を患者のレジメンに追加することによる強化処置、および(2)感染後すぐにARTを開始することによる早期処置を含む。いくつかの研究の結果から、HIV感染の後期の慢性段階ではなく初期の急性段階の間にcARTを開始したとき、HIV感染細胞数が著しく減少することが分かった。
要約すると、強力かつ安全な薬剤は、(1)無細胞および細胞間伝播モードの両方においてHIV侵入を阻止し、それらの寿命の長い記憶T細胞を含む活性化もしくは休止CD4 T細胞におけるHIV感染を著しく減少させることができ、(2)特に、HIV感染した休止CD4 T細胞を再活性化させてHIVを放出させ、それにより潜在的に感染した細胞においてアポトーシスを引き起こすことができ、かつ/または(3)そのような活性化によりAIDSに繋がる正常なCD4陽性T細胞のピロトーシスおよび大量の枯渇を引き起こし得る場合には、抗原/サイトカイン刺激時のHIV感染した休止CD4 T細胞の活性化/炎症を阻害することができる限り、単独またはcARTへの補助剤としてHIV処置で使用するのに非常に望ましいものとなる。その後のcARTの非存在下での長期間または永久的な寛解に繋がるHIV感染の機能的または完全治癒に向けた協力は、世界的な公衆衛生課題の上位にあり、世界中で積極的に探究されており、これが入手可能になれば、HIV感染処置に革新を引き起こすものとなる。
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本開示は、HIV感染の予防、処置および/または機能的治癒のための組成物および方法に関する。本開示の一面として、HIV感染の予防、処置および機能的治癒のためのCD4に対するモノクローナル抗体、その組成物およびそのような組成物の使用方法に関する。
本開示の一面として、HIV感染の予防、処置および/または機能的治癒のためのCD4に対する抗体、その組成物およびそのような組成物の使用方法に関する。特定の態様において、本抗体は、CD4のドメイン1のCDR2領域に特異的に結合する。本開示の抗体は、無細胞系および細胞間系の両方においてそのCD4のドメイン1への結合によって強力な競合的HIV侵入阻害を発揮する。本開示の抗体は、ピロトーシスの病理発生サイクル(pathogenic cycle)に関与する抗原誘導性T細胞増殖およびCD4陽性T細胞のサイトカイン産生(IL2およびIFN−γ)も阻害する。本開示の抗体は、休止CD4陽性T細胞を再活性化する能力も有する。この性質は、休止T細胞におけるHIVの潜伏リザーバーを再活性化させて、これらの細胞を抗レトロウイルス剤によって処置しやすくするのに特に有用である。そのようなCD4に対する高親和性抗体は、HIVの放出のために休止HIV感染細胞を活性化することができる。HIV感染した休止CD4+T細胞の再活性化により、HIV感染した患者において本発明の抗体をHAARTと共に組み込んだ併用処置が可能になり、機能的治癒が生じる。
本開示は、HIV感染の処置、予防および機能的治癒のための方法に関する。特定の態様において、本製剤はCD4に対する抗体を含む。本開示は、HIV感染の処置、予防および機能的治癒のための方法に用いることができる抗ウイルス剤も含む。
特定の態様において、本発明は、単剤療法として1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約10mg/kg以上の用量で投与したとき、血清抗体レベルが10μg/mLよりも高い限り、そのような処置によりウイルス量のリバウンドなしに処置される対象においてウイルス量を検出不能なレベルまで減少させることができる、上記結合特性を有するモノクローナルヒト、ヒト化またはキメラ抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、処置未経験HIV患者に1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約10mg/kg以上で投与したとき、患者の機能的治癒を生じさせる、HAARTへの補助療法における重要な成分として上記結合特性を有するモノクローナルヒト化抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
競合的対非競合的HIV侵入阻害機序。図1aは、HIVエンベロープタンパク質gp120及び阻害剤(例えば、抗体薬剤)が共通の標的表面分子の同じ部分(即ち、CD4ドメイン1のCDR2)に結合するために競合する競合的HIV侵入阻害モデルにおいて得られる理論上の結果を示すグラフである。このモデルでは、阻害剤の濃度が特定の閾値に達したとき、HIV結合/侵入の100%阻害を達成することができる。それと比較して、図1bは、HIV及び阻害剤が同じ標的分子上の異なる部位(例えば、TMB−355ではCD4のドメイン2)に結合する非競合的HIV侵入阻害モデルにおいて得られる理論上の結果を示すグラフである。この非競合的阻害モデルでは、HIV結合/侵入を阻害剤により減少させることができるが、阻害剤の濃度に関わらず完全な阻害は達成されていない。本抗体薬剤に対するHIVの耐性は、薬剤濃度に関わらず%阻害において「平坦域」として反映されている。 TMB−355を用いた、11種類の分岐群を網羅する118種類の多様なHIV−1 Env偽ウイルス株のパネルのHIV−1侵入阻害結果(Pace, G.ら、2011)。各ウイルスについて、黒色の線は最大10μg/mLのTMB−355濃度で処置した場合の最大阻害率(MPI)(左のY軸)を示し、灰色の線は対応するIC50(右のY軸)を示す。TMB−355は50%以上の阻害でウイルス株の92%を中和し、95%以上の阻害でウイルス株の31%のみを中和した。 mAb B4を用いて10年間にわたって収集した850種を超えるEnv偽型HIVウイルスのパネルのHIV−1侵入阻害。mAb B4は、850種類全てのEnv偽型ウイルスにおいてほぼ100%の最大阻害率(MPI)と共に、一方が0.01〜1μg/mLで他方が約10μg/mLの2種類の濃度の周りに集中しているIC50により、HIV侵入阻害において広域性(breadth)および効力の両方を与える。 UB−421に用いられる、mAb dB4C7抗体のFv領域の重鎖の全アミノ酸配列(配列番号7)。その親マウスB4抗体に由来する、対応するCDR1、2および3領域を表す配列には下線が引かれている(表4、配列番号1〜3)。可変および定常領域はそれぞれ薄い灰色および濃い灰色で網かけされている(それぞれ配列番号11および12)。そのFv領域位置には珍しいN−グリコシル化部位として機能する重鎖のaa101にあるアミノ酸残基Asn(N)は、B4抗体結合に不可欠である。置換されたヒトIgG Fc領域配列では、そのアミノ酸をHis(H)で置換すること、即ちN298Hにより、aa298にあるアミノ酸残基Asn(N)のN−グリコシル化部位が除去されている。この突然変異により、抗体B4の存在下でのIgG媒介性補体依存性細胞傷害(CdC)およびCD4陽性T細胞枯渇がなくなることが分かっている。 UB−421に用いられる、dB4C7抗体のFv領域の軽鎖の全アミノ酸配列(配列番号8)。その親マウスB4抗体に由来する、対応するCDR1、2および3領域を表す配列には下線が引かれている(表4、配列番号4〜6)。可変および定常領域はそれぞれ薄い灰色および濃い灰色で網かけされている(それぞれ配列番号13および14)。 重鎖のFc領域位置aa253、aa255およびaa257における、それぞれMet(M)からTyr(Y)、即ちM253Y、Ser(S)からThr(T)、即ちS255T、およびThr(T)からGlu(E)、即ちT257Eへのアミノ酸置換により、より長い半減期を有する、さらに改良されたヒト化抗体の重鎖の全アミノ酸配列(配列番号9)。 図4および図6に記載されている可変アミノ酸を包含するヒト化抗体mAb dB4の重鎖の全アミノ酸配列(配列番号10)。 本抗体を細胞の上に3回通した後のHPB−ALL細胞の表面CD4に対するmAb B4の結合親和性(抗体濃度)および結合能(遊離抗体および結合抗体)を示すグラフ。 ELISAプレートに被覆された可溶性CD4(sCD4)およびp2704aペプチドの捕捉混合物に対するmAb B4(−−−)およびmAb dB4(―――)の結合親和性を比較するグラフ。B4−ビオチンおよびdB4C7−Alexaそれぞれの上記捕捉混合物への結合を競合的に阻害するためにmAb B4およびmAb dB4を用いて結合親和性を決定した。 HPB−ALL細胞のCD4に対するmAb B4(−−−)およびmAb dB4(―――)の結合親和性を比較するグラフ。B4−ビオチンおよびdB4C7−AlexaそれぞれのHPB−ALL細胞の表面CD4への結合を競合的に阻害するためにmAb B4およびmAb dB4を用いるFACSにより結合親和性を決定した。 HPB−ALL細胞のCD4に対するmAb dB4(−−−)およびgp120MN(―――)の結合親和性を比較するグラフ。dB4C7−AlexaのHPB−ALL細胞の表面CD4への結合を競合的に阻害するためにmAb dB4およびgp120MNを用いるFACSにより結合親和性を決定した。 mAb dB4C7のPBMC CD4+T細胞への結合の温度依存性(MFI)を示すグラフ。 mAb dB4濃度の関数として6人の感染していない個体の血液試料からの占有されていないCD4受容体(―――)およびmAb dB4で占有/結合されたCD4受容体(−−−)の平均割合(±SD)を示すグラフ。占有されていない受容体をdB4C7−Alexaの血液CD4+T細胞の表面の遊離結合部位への結合により検出し、mAb dB4で占有された受容体をヤギ抗huIgG−FITCにより検出した。 現在の抗レトロウイルス療法(cART)剤テノホビル(Tenofovir)のHIVの無細胞および細胞間伝播に対する効果を示す棒グラフ(Sigal, A.ら、2011)。Y軸は、テノホビルの存在または非存在下で異なる感染源から単離された末梢血単核細胞(PBMC)からの伝播指数を表す(Sigal, A.ら、2011)。 図の説明文に示されている以下の刺激:無刺激(レーン1)、PHA(レーン2)、非活性化HIV(iHIV)溶解物(レーン3)、CD4ドメイン1のCDR2領域に対するモノクローナル抗体(レーン4)、CD4ドメインのCDR3領域に対するモノクローナル抗体(レーン5)、CD4ドメイン1/2に対するモノクローナル抗体(レーン6)、可溶性CD4の存在下におけるiHIV(レーン7)、可溶性CD4の存在下におけるCD4ドメイン1のCDR2領域に対するモノクローナル抗体(レーン8)、可溶性CD4の存在下におけるCD4ドメイン1のCDR3領域に対するモノクローナル抗体(レーン9)、および可溶性CD4の存在下におけるCD4ドメイン1/2に対するモノクローナル抗体(レーン10)によって誘導された休止PBMCにおけるウイルスの再活性化を示す棒グラフ(HIV−1 p24 gag産生によって測定)(出典:Briant, L.ら、1999)。 ELISAで測定した、抗HIV RCポリクローナル抗体によるビオチン化B4のrsCD4への結合の競合的阻害を示すグラフ。 mAb dB4および抗HIV RCポリクローナル抗体のPBMCの表面CD4への抗体滴定を示すグラフ。この抗体滴定は、抗体濃度(単位:μg/mL)に対するCD4結合率(%)として測定した。 図18a〜図18c。処置未経験HIV陽性およびHIV陰性対象におけるCD4+およびCD8+T細胞を増殖させることによるサイトカインIL2およびIFN−γのスーパー抗原SEB誘導性産生に対するmAb dB4および抗HIV RCポリクローナル抗体阻害の分析。HIV陰性(図18a)およびHIV陽性(図18b)対象について、CD4+T細胞のスーパー抗原誘導性増殖によるIL2産生に対するmAb dB4および抗HIV RCポリクローナル抗体阻害が示されている。HIV陰性対象および年齢適合HIV陽性対象(図18c)について、CD8+T細胞のスーパー抗原誘導性増殖によるIL2産生に対するmAb dB4および抗HIV RCポリクローナル抗体阻害も示されている。 図18d〜図18g。HIV陰性(図18d)およびHIV陽性(図18e)対象について、CD4+T細胞のスーパー抗原誘導性増殖によるIFN−γ産生に対するmAb dB4および抗HIV RCポリクローナル抗体阻害が示されている。HIV陰性(図19f)およびHIV陽性(図19g)対象について、CD8+T細胞のスーパー抗原誘導性増殖によるIFN−γ産生に対するmAb dB4および抗HIV RCポリクローナル抗体阻害も示されている。 図19a〜図19c。感染後の時間の経過に伴ってPBMC中のHIV−1 RNAコピー/mLによって測定した場合の、HIV−1初代分離株DH12(HIV−1DH12)への曝露前(図19a)および曝露後(図19b)のmAb B4投与によるチンパンジーのHIV感染からの保護を示すグラフ。抗体投与なしでHIV−1DH12に曝露した対照動物の結果を示すグラフ(図19c)も示されている。下向きの矢印はHIV−1DH12抗原投与の投与前または投与から1時間後のいずれかにmAb B4を投与した研究の開始を示す。 図20aおよび図20b。時間の経過に伴ってHIV−1 RNAコピー/mLにより測定した場合の、未処置およびmAb B4で処置したHIV−1感染チンパンジーのHIVウイルス量を示すグラフ。図20aは、mAb B4の3回の注入を受けたチンパンジーX356(黒丸)における血漿ウイルス血症の持続期間を、前の研究でmAb B4の単回投与を以前に受けた未処置の対照チンパンジーX084(白丸)と比較している。図20bは、mAb B4の3回の注入を受けたチンパンジーX356(黒丸)における血漿ウイルス血症の持続期間を、以前にmAb B4の投与を受けなかった未処置の対照チンパンジーX259(白丸)と比較している。 図21。mAb dB4のヒト(−−−)およびヒヒ(―――)CD4陽性T細胞に対する結合親和性を比較するグラフ。 図22aおよび図22b。用量増加(1、5、10および25mg/kg)第I相臨床研究における抗体薬剤UB−421(mAb dB4C7)の単回投与を受けた患者に関する、研究日数に対するHIV−1 RNAにおける平均Log10の変化を示すグラフ。図22aは研究の過程にわたって各用量によって示されるウイルス減少を示すグラフである。図22bは各用量の平均および最大の個々の最下点を示すグラフである。 図23a。 UB−421(mAb dB4C7)の有効性の理論上の比較およびTMB−355(TNX−355として以前から知られている、Kuritzkes, D. R.ら、2004、図1)について以前に報告された有効性データを示すグラフ。図23aは5mg/kgのUB−421および3mg/kgのTMB−355の単回投与後に観察されたウイルス量の減少を比較するグラフである。 図23b。 UB−421(mAb dB4C7)の有効性の理論上の比較およびTMB−355(TNX−355として以前から知られている、Kuritzkes, D. R.ら、2004、図1)について以前に報告された有効性データを示すグラフ。図23bは、10mg/kgのUB−421またはTMB−355の単回投与後に観察されたウイルス量の減少を比較するグラフである。 図23c。 UB−421(mAb dB4C7)の有効性の理論上の比較およびTMB−355(TNX−355として以前から知られている、Kuritzkes, D. R.ら、2004、図1)について以前に報告された有効性データを示すグラフ。図23cは、25mg/kgのUB−421またはTMB−355の単回投与後に観察されたウイルス量の減少を比較するグラフである。 図24a。 8週間の処置期間にわたってUB−421(mAb dB4C7)の投与を10mg/kgで1週間に1回(図24a)または25mg/kgで2週間に1回(図24b)受けた対象における平均PBMC CD4 T細胞数/mmを示すグラフ。CD4のドメイン2に対するビオチン化抗体によってUB−421処置患者において安定なCD4 T細胞数が検出された。 図24b。 8週間の処置期間にわたってUB−421(mAb dB4C7)の投与を10mg/kgで1週間に1回(図24a)または25mg/kgで2週間に1回(図24b)受けた対象における平均PBMC CD4 T細胞数/mmを示すグラフ。CD4のドメイン2に対するビオチン化抗体によってUB−421処置患者において安定なCD4 T細胞数が検出された。 図25a。第IIa相臨床試験の過程で、ウイルス量の減少によって測定したUB−421処置の臨床的有効性(上側のパネル)および血清中濃度(μg/mL)によって測定したUB−421の薬物動態(下側のパネル)を示すグラフ。以下の代表的な患者:UB−421の投与を10mg/kgで1週間に1回受けた患者1−1−01(図25a)、UB−421の投与を10mg/kgで1週間に1回受けた患者1−1−02(図25b)、UB−421の投与を25mg/kgで2週間に1回受けた患者1−2−03(図25c)およびUB−421の投与を25mg/kgで2週間に1回受けた患者1−2−06(図25d)の関連データが提供されている。細胞の完全被覆を示すPBMC CD4+細胞上へのUB−421結合の持続期間は灰色で網かけされている。 図25b。第IIa相臨床試験の過程で、ウイルス量の減少によって測定したUB−421処置の臨床的有効性(上側のパネル)および血清中濃度(μg/mL)によって測定したUB−421の薬物動態(下側のパネル)を示すグラフ。以下の代表的な患者:UB−421の投与を10mg/kgで1週間に1回受けた患者1−1−01(図25a)、UB−421の投与を10mg/kgで1週間に1回受けた患者1−1−02(図25b)、UB−421の投与を25mg/kgで2週間に1回受けた患者1−2−03(図25c)およびUB−421の投与を25mg/kgで2週間に1回受けた患者1−2−06(図25d)の関連データが提供されている。細胞の完全被覆を示すPBMC CD4+細胞上へのUB−421結合の持続期間は灰色で網かけされている。 図25c。第IIa相臨床試験の過程で、ウイルス量の減少によって測定したUB−421処置の臨床的有効性(上側のパネル)および血清中濃度(μg/mL)によって測定したUB−421の薬物動態(下側のパネル)を示すグラフ。以下の代表的な患者:UB−421の投与を10mg/kgで1週間に1回受けた患者1−1−01(図25a)、UB−421の投与を10mg/kgで1週間に1回受けた患者1−1−02(図25b)、UB−421の投与を25mg/kgで2週間に1回受けた患者1−2−03(図25c)およびUB−421の投与を25mg/kgで2週間に1回受けた患者1−2−06(図25d)の関連データが提供されている。細胞の完全被覆を示すPBMC CD4+細胞上へのUB−421結合の持続期間は灰色で網かけされている。 図25d。第IIa相臨床試験の過程で、ウイルス量の減少によって測定したUB−421処置の臨床的有効性(上側のパネル)および血清中濃度(μg/mL)によって測定したUB−421の薬物動態(下側のパネル)を示すグラフ。以下の代表的な患者:UB−421の投与を10mg/kgで1週間に1回受けた患者1−1−01(図25a)、UB−421の投与を10mg/kgで1週間に1回受けた患者1−1−02(図25b)、UB−421の投与を25mg/kgで2週間に1回受けた患者1−2−03(図25c)およびUB−421の投与を25mg/kgで2週間に1回受けた患者1−2−06(図25d)の関連データが提供されている。細胞の完全被覆を示すPBMC CD4+細胞上へのUB−421結合の持続期間は灰色で網かけされている。 図26a。他の研究者ら(Jacobson, J. L.ら、2009;Toma, J.ら、2011およびPace, C. S.ら、2013)によって行われたTMB−355(イバリズマブ、かつてのTNX−355)に関する同様の研究で観察されたウイルス量の減少に対して、UB−421を用いた第IIa相臨床試験で観察されたウイルス量の減少の理論上の比較を示すグラフ。図26aは10mg/kgおよび25mg/kgのUB−421で処置した対象において観察されたウイルス量の変化を要約したものであり、図26bは同じ投与量レベルのTMB−355で処置した対象において観察されたウイルス量の変化を要約したものである。 図26b。他の研究者ら(Jacobson, J. L.ら、2009;Toma, J.ら、2011およびPace, C. S.ら、2013)によって行われたTMB−355(イバリズマブ、かつてのTNX−355)に関する同様の研究で観察されたウイルス量の減少に対して、UB−421を用いた第IIa相臨床試験で観察されたウイルス量の減少の理論上の比較を示すグラフ。図26aは10mg/kgおよび25mg/kgのUB−421で処置した対象において観察されたウイルス量の変化を要約したものであり、図26bは同じ投与量レベルのTMB−355で処置した対象において観察されたウイルス量の変化を要約したものである。 図27。処置未経験HIV患者およびHAART処置で安定したHIV患者において、HAART療法の代わりとしてUB−421単剤療法を用いたHIV患者集団における処置法を示す概略図。 図28。処置未経験HIV患者、HAART処置で安定したHIV患者およびHAART処置に失敗したHIV患者において、HIV感染の機能的治癒のためにUB−421をHAART療法と併用したHIV患者集団における処置法を示す概略図。
本開示は、HIV感染の予防、処置および/または機能的治癒のための組成物および方法に関する。本開示の一面として、CD4に対する抗体、その製剤、ならびにHIV感染の予防、処置および/または機能的治癒のためにそのような製剤を用いる方法に関する。
本明細書で使用されている節の見出しは単に構成のためのものであり、記載されている主題を限定するものとして解釈されるべきではない。本願に引用されている全ての参考文献または参考文献の一部は、あらゆる目的のためにその内容全体が参照により本明細書に明示的に組み込まれる。
CD4
CD4(分化抗原群4)は、Tヘルパー細胞、単球、マクロファージおよび樹状細胞などの免疫細胞の表面に存在する糖タンパク質(UniProtKB/Swiss−Prot:P01730.1)である(http://en.wikipedia.org/wiki/CD4)。CD4は、免疫グロブリンスーパーファミリーのメンバーであり、細胞の細胞外表面に露出される4種類の免疫グロブリンドメイン(D1〜D4)を有する。CD4ドメインのD1およびD3は免疫グロブリン可変(IgV)ドメインに似ており、D2およびD4は免疫グロブリン定常(IgC)ドメインに似ている。CD4は、そのD1ドメインを使用してMHCクラスII分子のβ2ドメインと相互作用する。したがって、それらの表面でCD4分子を発現しているT細胞は、MHCIIによって提示される抗原に特異的である。CD4の短い細胞質尾部/細胞内末端(intracellular tail)は、それをlck分子と相互作用させることができる特殊なアミノ酸配列を含む。
CD4の第一の細胞外ドメインは、免疫グロブリン鎖と類似する3つの相補性決定領域(CDR)において免疫グロブリンと相同性を共有している。CD4分子の細胞外領域のドメイン1およびドメイン2はどちらもMHCクラスII分子の結合部位に寄与することが分かったが、ドメイン1のみがHIV結合および合胞体形成に関与することが分かった。特に、HIVエンベロープ糖タンパク質gp120との結合部位はドメイン1のCDR2様ループに局在化されていることが分かった。
HIV−1は、CD4を使用して宿主T細胞に入り込み、gp120として知られているそのウイルスエンベロープタンパク質を介してこれを達成する。CD4への結合によりgp120の立体構造における変化が生じ、HIV−1は、宿主細胞上に発現されているケモカイン受容体CCR5またはCXCR4に結合することができる。別のウイルスタンパク質(gp41)における構造的変化後に、HIVは、ウイルスの外膜を細胞膜と融合させることができる融合ペプチドを宿主細胞の中に挿入する。HIV感染によりCD4を発現しているT細胞の数の漸減が生じる。
抗体
本開示の一面として、HIV感染の予防、処置および/または機能的治癒のためのCD4に対する抗体、その組成物およびそのような組成物の使用方法に関する。
本開示の抗体は、インタクトな(intact)ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、単一特異性抗体、多特異性抗体、キメラ抗体、脱免疫化(deimmunized)抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、霊長類化抗体、単鎖抗体、単一ドメイン抗体、合成抗体および組換え抗体ならびに所望の活性または機能を有する抗体断片を含むインタクトな抗体分子を広く包含する。
本開示の抗体は、CD4のドメイン1を認識する。ある態様において、該抗体は、CD4のドメイン1のCDR2領域に特異的に結合する。
本開示の抗体は、あらゆる標準的な方法によって産生させことができる。いくつかの態様において、本開示の抗体は、動物(例えば、マウス、イヌ、モルモット、ブタ、ヤギ、ウマなど)を組換えCD4タンパク質、組換えCD4タンパク質の断片またはその表面においてCD4を発現している細胞で免疫化することにより産生される。または、該抗体は、化学合成することができる。
ある態様において、抗体は、動物をCD4のドメイン1のアミノ酸配列を含むペプチドで免疫化することにより産生される。例えば、動物をCD4ドメイン1のCDR2領域のアミノ酸配列を含むペプチドまたはペプチドの組み合わせで免疫化することによりポリクローナル抗体を産生させることができる。いくつかの態様において、該ペプチドは、HIVがCD4のこの部分に結合するという理由から、HIV受容体複合体(「HIV RC」)としても知られているCD4のaa39−66を含む。具体的な態様において、HIV RCペプチドは、ジスルフィド結合により環状になる。
いくつかの態様において、ポリクローナル抗体は、動物を環状HIV RCペプチドで免疫化することにより産生される。本明細書で用いられる「抗HIV RCポリクローナル抗体」という用語は、CD4ドメイン1のCDR2領域のaa39−66を含む環状ペプチドに対する免疫血清を指す。
他の態様において、抗体は、動物をCD4陽性細胞で免疫化することにより産生される。例えば、ある態様において、BALB/cマウスをインタクトな感染していないCD4+ヒトHPB−ALL細胞、即ちT細胞性急性リンパ芽球性白血病細胞株で免疫化することにより該抗体を産生させた。この抗体は、Wangによる米国特許第5,912,176号並びに第6,090,388号及び1999年のWangらによる雑誌論文にさらに詳細に記載されており、それらの内容全体が参照により組み込まれる。
他の態様において、抗体は、配列表に含まれる配列の重鎖および軽鎖アミノ酸配列を含む。本開示は、配列表に含まれるアミノ酸配列を含む抗体の相同体および機能的類似体を包含する。
本開示の抗体の機能的類似体は、元の抗体と実質的に同じ機能特性(結合認識、結合親和性など)を保持する配列変異体および相同体を含む。例えば、機能的類似体または相同体である抗体変異体は、アミノ酸位置における保存的置換、全電荷(overall charge)における変化、別の部分への共有結合または小さい付加、挿入、欠失または保存的置換および/またはそれらのあらゆる組み合わせを有していてもよい。したがって、抗体の変異抗体の機能的類似体および相同体は、CD4を認識して結合し、対象におけるHIVを処置するのに用いることができる。
一態様において、抗体の機能的類似体または相同体は一般に、配列表に開示されているアミノ酸配列を含む抗体と少なくとも約50%の配列同一性を有する。この態様の変形において、抗体の機能的類似体または相同体は、配列表に開示されているアミノ酸配列を含む抗体と少なくとも約50%、約75%、約80%、約85%、約90%、約95%または約99%の同一性を有する。
保存的置換は、1つのアミノ酸残基が同様の化学的特性を有する別のアミノ酸残基で置換された場合の置換である。例えば、非極性(疎水性)アミノ酸として、アラニン、ロイシン、イソロイシン、バリン、プロリン、フェニルアラニン、トリプトファンおよびメチオニンが挙げられ;極性中性アミノ酸として、グリシン、セリン、トレオニン、システイン、チロシン、アスパラギン、およびグルタミンが挙げられ;正電荷を有する(塩基性)アミノ酸として、アルギニン、リジンおよびヒスチジンが挙げられ;負電荷を有する(酸性)アミノ酸として、アスパラギン酸およびグルタミン酸が挙げられる。
別の態様において、抗体の機能的類似体を、N末端、C末端へのアミノ酸付加または欠失、および/または配列の中央への挿入によって修飾することができる。本発明の各種態様において、付加または欠失はペプチドのN末端またはC末端への付加または欠失である。付加または欠失は、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19または20個のアミノ酸残基の付加または欠失である。そのような付加または欠失は、抗体の一般的な機能特性を変化させない配列表に含まれている配列中に存在しないアミノ酸配列を構成してもよい。
ある態様において、本開示の抗体は、化学物質でタグ付けまたは標識化されている。例えば、抗体を、ビオチン、スペーサーアーム、プローブ(例えば、FITC、PE、TRITC、DyLight Fluors、Alexa、GFP、R−フィコエリトリン、量子ドットなど)、酵素複合体およびそれらの組み合わせで標識化することができる。具体的な態様において、本抗体はビオチンまたは蛍光プローブで標識化されている。
具体的な態様において、脱免疫化として知られているプロセスにより抗体を修飾することができる。本明細書で使用される「脱免疫化」という用語は一般に、動物の体内で免疫応答を引き起こすことなく動物に投与することができるように抗体の一部を修飾するためのプロセスを指す。具体的には、脱免疫化は、抗体が投与される特定の動物において免疫原性になる抗体のアミノ酸配列の一部(例えば、T細胞エピトープ)の位置を突き止めて除去するためのプロセスを含む。このプロセスは免疫学的および分子生物学的技術の併用により達成することができる。このプロセスについては以前に記載されている(例えば、Jones, T. D.ら、2009)。抗体の脱免疫化の場合、一般に、抗体の結合親和性を著しく減少させることなくT細胞エピトープを除去するための突然変異を導入することができる。
本明細書で使用される「ヒト化」という用語は、ヒトに投与されるとき、抗体の免疫原性を除去するようにそのタンパク質配列が修飾(脱免疫化)された非ヒト生物種によって最初に産生された抗体を指す。ある態様において、本開示の抗体は、その定常領域をヒト定常領域で置換すること、および/または哺乳類細胞においてこれらの抗体をコードする遺伝子を発現させることにより、ヒトへの使用のために脱免疫化されている。
ある態様において、本開示の抗体は、表4に示す、抗体の重鎖および軽鎖アミノ酸配列を有する。
本明細書で用いられる「mAb B4」または「B4」または「マウスB4」という用語は、配列番号1〜6の重鎖および軽鎖のCDR1、2、3領域のアミノ酸配列をそれぞれ有するマウスモノクローナル抗体を指す(表4)。このマウスモノクローナル抗体は、CD4を認識することが分かっており、HIV侵入を阻害することができる。この抗体の構造および機能特性については以下の実施例でさらに詳細に考察する。
本明細書で用いられる「mAb dB4」または「dB4」という用語は、mAb B4に由来するヒト脱免疫化抗体を指す。ヒト脱免疫化mAb dB4は、配列番号1〜6の重鎖および軽鎖のCDR1、2、3領域のアミノ酸配列をそれぞれ有する(表4)。いくつかの態様において、mAb dB4の軽鎖は、図5に示す配列番号8のアミノ酸配列を有する。いくつかの態様において、mAb dB4の重鎖は、図4に示す配列番号7のアミノ酸配列を有する。変形態様において、mAb dB4の重鎖は、図6に示す配列番号9のアミノ酸配列を有する。当該分野で知られている任意の適当な方法により、mAb B4を脱免疫化することができる。一態様において、米国特許第7,501,494号および第7,872,110号(これらの開示内容全体が参照により組み込まれる)に記載されている方法に従って、ヒトへの使用のためにmAb B4を脱免疫化する。特定の態様において、mAb B4のマウス抗体の定常領域(CおよびCκ)を除去してヒトIgGの定常領域で置換することにより、ヒト脱免疫化mAb dB4が産生される。mAb dB4はあらゆる好適な細胞性クローンによって産生されるdB4を包含する。具体的な態様において、クローン7によってmAb dB4を産生させる。
本明細書で用いられる「mAb dB4C7」または「dB4C7」という用語は、米国特許第7,501,494号および第7,872,110号(これらの開示内容全体が参照により組み込まれる)以前に記載された組換え遺伝子B4DIVHv1/VK1CHO#7を含むクローン7によって発現されたmAb dB4を指す。C7クローンは、多量のmAb dB4抗体を産生することが分かっている。特に、mAb B4C7は、配列番号8のアミノ酸配列を有する軽鎖(図5)および配列番号7のアミノ酸配列を有する重鎖(図4)を含むヒト脱免疫化抗体である。さらに、mAb dB4C7中の298位のAsn(N)残基は、His(H)で置換され、N−グリコシル化部位が除去され、このようにして抗体B4の存在下でのIgG媒介性補体依存性細胞傷害(CdC)をなくしてCD4陽性T細胞の枯渇を防止する。
本明細書で用いられる「UB−421」という用語は、ヒト対象に投与するのに適した形態で使用されるmAb dB4C7を指す。
本開示の抗体を、その興味深くかつ独特な機能特性によって説明することもできる。
例えば、本開示の抗体は、そのCD4のドメイン1への結合により、強力な競合的HIV侵入阻害を発揮する。特に、本開示の抗体は、試験した全てのEnv偽型ウイルスにおいてほぼ100%の最大阻害率(MPI)を有すると共に、一方が0.01〜1μg/mLで他方が約10μg/mLの2種類の濃度の周りに集中しているIC50を有する。本開示の抗体の結合活性は、HIV gp120エンベロープタンパク質によって示されるCD4結合親和性よりも約2log高い(即ち、100倍より密な結合)。さらに、本開示の抗体の平均Kdは、5.6×10−11M(範囲:3.1〜8.1×10−11M)と推定され、Bmaxは、1細胞当たり1.2×10Ab(範囲:0.93〜1.4×10)と推定された。
本開示の抗体の競合的阻害特性は、無細胞系および細胞間系の両方において示された。本開示の抗体は、HIV−1エンベロープタンパク質gp120MNよりも少なくとも50倍高い親和性でCD4受容体に結合する。また、本開示の抗体は、Leu3aなどの他の市販されている抗体と比較してより大きな親和性および特異性によりCD4に結合する。
本開示の抗体は、ピロトーシスの病理発生サイクルに関与する、抗原誘導性T細胞増殖およびCD4陽性T細胞のサイトカイン産生(IL2およびIFN−γ)を阻害することもできる。そのようなCD4に対する高親和性モノクローナル抗体は、スーパー抗原SEB(ブドウ球菌性エンテロトキシンB、SEB)などの抗原誘導性CD4陽性T細胞活性化およびサイトカイン(例えば、IL2およびIFN−γ)産生を阻害する。不稔HIV感染を有する静止CD4+T細胞においてサイトカイン産生を生じさせるそのような抗原誘導性活性化は、これらの静止CD4+T細胞および近くの正常な休止CD4陽性細胞のピロトーシスを引き起こし、その結果、CD4+T細胞の大量の枯渇が生じ、このようにしてAIDSが生じる。
本開示の抗体は、休止CD4陽性T細胞を再活性化する能力も有する。この特性は、休止T細胞におけるHIVの潜伏リザーバーを再活性化させて、これらの細胞を抗レトロウイルス剤によって処置しやすくするのに特に有用である。そのようなCD4に対する高親和性抗体は、HIVの放出のために休止HIV感染細胞を活性化することができる。HIV感染した休止CD4+T細胞の再活性化により、HIV感染した患者において本発明の抗体をHAARTと共に組み込んだ併用処置が可能になり、機能的治癒が生じる。
本開示の抗体のさらなる構造および機能特性は、以下の実施例に提供されている。
製剤
本開示は、HIV感染の予防、処置および/または機能的治癒のために使用することができる医薬製剤にも関する。ある態様において、本製剤はCD4に対する抗体を含む。具体的な態様において、本開示は、CD4ドメイン1のCDR2領域内またはその近傍の部位に向けられるCD4に対する高親和性モノクローナル抗体を有する医薬組成物に関する。そのような抗体の結合活性(EC50)は、HIV gp120エンベロープタンパク質によって示されるCD4結合親和性(gp120のEC50=97nM)よりも約2log高い(即ち100倍より密な結合)。
本開示の抗体タンパク質の医薬製剤は、抗体タンパク質を薬学上許容可能な担体と任意に混合することにより、調製することができる。薬学上許容可能な担体として、溶媒、分散媒、等張剤などが挙げられる。該担体は、液体、半固体、例えばペースト、または固体の担体であってもよい。担体の例として、水、生理食塩水または他の緩衝液(リン酸、クエン酸緩衝液など)、油、アルコール、タンパク質(血清アルブミン、ゼラチンなど)、炭水化物(グルコース、スクロース、トレハロース、マンノース、マンニトール、ソルビトールまたはデキストリンなどの単糖類、二糖類および他の炭水化物など)、ゲル、脂質、リポソーム、樹脂、多孔性マトリックス、結合剤、充填剤、被覆剤、安定化剤、防腐剤、アスコルビン酸およびメチオニンなどの抗酸化剤、EDTAなどのキレート剤;ナトリウムなどの塩を形成する対イオン;TWEEN(商標)、PLURONICS(商標)またはポリエチレングリコール(PEG)などの非イオン性界面活性剤、またはそれらの組み合わせが挙げられる。
製剤は、2種類以上の活性化合物を含むことができる。例えば、製剤は、HIV感染を予防または処置するための1種以上の抗体および/または1種以上のさらなる有利な化合物を含むことができる。該有効成分を任意の好都合かつ実用的な方法、例えば、混合、溶解、懸濁、乳化、カプセル化、吸収などにより担体と組み合わせることができ、注射、経口摂取、注入などに適した錠剤、カプセル、粉末(凍結乾燥した粉末を含む)、シロップ、懸濁液などの製剤に調製することができる。徐放性調製物も調製することができる。
ある態様において、医薬製剤は、ヒトへの使用のためにmAb dB4C7を含む。mAb dB4C7を含む医薬製剤は、限定されるものではないが、pH6.0〜7.0のクエン酸、リン酸、Tris、BIS−Trisなどの適当な緩衝液で調製することができ、糖類(50mM〜500mMスクロース、トレハロース、マンニトールまたはそれらの混合物)、界面活性剤(例えば、0.025%〜0.5% Tween20またはTween80)および/または他の試薬などの賦形剤も含むことができる。具体的な態様において、製剤は、20mMグリシン中にmAb dB4C7と、pH6.5のリン酸緩衝生理食塩水(PBS)中に0.05%(v/v)Tween(ポリソルベート20)とを含む。別の具体的な態様において、皮下注射などの特定の用途で使用するために、10mMヒスチジンを含むmAb dB4の高濃度製剤も調製した。
製剤は、各種量の抗体を含むように調製することができる。一般に、対象への投与のための製剤は、約0.1mg/mL〜約200mg/mLの抗体を含む。ある態様において、製剤は、約0.5mg/mL〜約50mg/mL;約1.0mg/mL〜約50mg/mL;約1mg/mL〜約25mg/mL;または約10mg/mL〜約25mg/mLの抗体を含むことができる。具体的な態様において、製剤は、約1.0mg/mL、約5.0mg/mL、約10.0mg/mL、または約25.0mg/mLの抗体を含む。
具体的な態様において、本発明は、HIV感染を有する患者における免疫療法として、競合的HIV侵入阻害及びCD4+T細胞の活性化を示す、上記結合特性を有するCD4のドメイン1のCDR2領域を標的とするモノクローナルヒト、ヒト化またはキメラ抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、処置される対象において、10μg/mLよりも高い血清抗体レベルでウイルス量を検出不能なレベルまで減少させることができる単剤療法剤として機能する、上記結合特性を有するモノクローナルヒト、ヒト化またはキメラ抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、処置される対象において10μg/mLよりも高い血清抗体レベルでウイルス量を検出不能なレベルまで減少させ、かつ12週間の処置期間中に安定なCD4 T細胞数を維持することができる単剤療法剤として機能する、上記結合特性を有するモノクローナルヒト、ヒト化またはキメラ抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
ある態様において、本発明は、単剤療法として1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約10mg/kg以上の用量で投与したとき、そのような処置により12週間の処置期間中に処置される対象において、ウイルス量を検出不能なレベルまで減少させることができる、上記結合特性を有するモノクローナルヒト、ヒト化またはキメラ抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
さらに別の好ましい態様において、本発明は、処置未経験HIV患者に1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約10mg/kg以上で投与したとき、患者の機能的治癒を生じさせる、HAARTへの補助療法における重要な成分として上記結合特性を有するモノクローナルヒト化抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
さらに別の好ましい態様において、本発明は、HAART下で安定したウイルス量を有する患者に1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約10mg/kg以上で投与したとき、患者の機能的治癒を生じさせる、HAARTへの補助療法における重要な成分として上記結合特性を有するモノクローナルヒト化抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
抗ウイルス剤
本開示は、HIV感染の処置、予防および機能的治癒のための方法で用いることができる抗ウイルス剤も含む。
抗ウイルス剤として、哺乳類におけるHIVの形成および/または複製を阻害するのに有効なあらゆる薬剤(化合物または生物製剤)が挙げられる。抗ウイルス剤の例として、侵入/融合阻害剤(例えば、マラビロク(maraviroc)、エンフビルチド(enfuvirtide));ヌクレオシド系逆転写酵素阻害剤(NRTI)およびヌクレオチド逆転写酵素阻害剤(NtRTI)(例えば、ジドブジン(zidovudine)、アバカビル(abacavir)、ラミブジン(lamivudine)、エムトリシタビン(emtricitabine)およびテノホビル(tenofovir));非ヌクレオシド系逆転写酵素阻害剤(NNRTI)(例えば、ネビラピン(nevirapine)、エファビレンツ(efavirenz)、エトラビリン(etravirine)、およびリルピビリン(rilpivirine));インテグラーゼ核鎖転移阻害剤(nuclear strand transfer inhibitor)またはINSTIとしても知られているインテグラーゼ阻害剤(例えば、ラルテグラビル(raltegravir)、ドルテグラビル(dolutegravir));プロテアーゼ阻害剤(例えば、サキナビル(saquinavir)、メシル酸サキナビル(saquinavir mesylate)、ホスアンプレナビル(fosamprenavir)、チプラナビル(tipranavir)、ロピナビル(lopinavir)、インジナビル(indinavir)、ネルフィナビル(nelfinavir)、アンプレナビル(amprenavir)、リトナビル(ritonavir)、ダルナビル(darunavir)、アタザナビル(atazanavir)、ベビリマット(bevirimat)、ビベコン(vivecon));ウイルス成熟阻害剤;HIV遺伝子の発現を標的とする薬剤;HIV複製に関与する重要な宿主細胞遺伝子および遺伝子産物を標的とする薬剤;及び他の抗HIV剤;iRNA剤;アンチセンスRNA、iRNA発現ベクター剤(vectors expressing iRNA agent)またはアンチセンスRNA;PNAおよび抗ウイルス抗体;及びそれらの組み合わせが挙げられるが、これらに限定されない。
抗ウイルス剤は、個々に使用することも併用することもできる。抗ウイルス剤の併用は、抗レトロウイルス療法(ART)、併用抗レトロウイルス療法(cART)または高活性抗レトロウイルス療法(HAART)として知られている。抗レトロウイルス(ARV)剤は、その薬剤が阻害するレトロウイルス生活環の段階によって大きく分類される。典型的な組み合わせは、「ベース」としての1種類のNNRTI、PIまたはINSTIと共に「バックボーン」として2種類のNRTIを含む。ある態様において、コンビビル(Combivir)、トリジビル(Trizivir)、カレトラ(Kaletra)、エプジコム(Epzicom)、ツルバダ(Truvada)、アロリプラ(Atripla)、コムプレラ(Complera)、スタリビルド(Stribild)、トリーメク(Triumeq)などの抗ウイルス剤の組み合わせが用いられる。
処置、予防および機能的治癒方法
本開示は、HIV感染の処置、予防および機能的治癒のための方法にも関する。ある態様において、製剤はCD4に対する抗体を含む。
さらなる面において、対象におけるHIV感染の処置、予防、および/または機能的治癒ならびにHIV感染の予防のために、薬学上許容可能な担体と混合して任意に提供される本明細書に開示されている抗体を用いることができる。
HIV感染の「処置」という用語は、その発症を遅らせるか、その進行を減速させるか、ウイルス量を減少させるか、および/またはHIV感染によって引き起こされる症状を改善させるためのHIV感染の有効な阻害を指す。処置は、HIVへの曝露前および曝露後の両方を含む。
HIV感染の「予防」という用語は、HIV感染の発症を遅らせること、および/またはHIV感染の発生率または可能性を減少または皆無にすることを意味する。HIV伝播の「予防」という用語は、HIVがある個体から別の個体に(例えば、妊娠、陣痛または出産または授乳中にHIV陽性の女性からその子供に)伝播する発生率または可能性を減少または皆無にすることを意味する。
「対象」という用語は、ヒト、アカゲザル、ヒヒおよびチンパンジー対象などのあらゆる霊長類対象を指す。
HIV感染を処置および/または予防するために、治療量の本明細書に開示されている抗体をそれを必要としている対象に投与する。
「治療上有効量」という用語は、HIV感染を処置および/または予防するためにHIV感染の阻害をもたらすのに必要な投与量を意味する。抗体の投与量は、疾患状態、対象の体重および状態などの他の臨床的因子、対象の療法への応答、製剤の種類および投与経路によって決まる。治療上有効かつ有害でない正確な投与量は、当業者によって決定することができる。
一般に、成人のヒトへの投与のための抗体の好適な用量は、対象の体重の約3〜50mg/kgの範囲であり、使用される典型的な初回範囲は、対象の体重の約5〜25mg/kgの範囲である。好適な投与量として、患者の体重の約5.0mg/kg、約10.0mg/kg、または約25.0mg/kgも挙げられる。
本発明のヒトモノクローナル抗体を含む治療用組成物は、例えば単位用量の注射により、従来通りに静脈内投与される。本発明の治療用組成物の単位用量とは一般に、各単位が所要の希釈液、即ち担体または溶媒と共に所望の処置効果を生じさせるように計算された所定量の活性物質を含有する対象に適した単位投与量として物理的に分離した単位をさらに指す。
組成物は、該投与剤形(dosage formulation)に適合可能な方法、および治療上有効量で投与される。投与される量は、処置される対象、有効成分を利用する対象の系の容量、および所望の治療効果の程度によって決まる。投与するのに必要な有効成分の正確な量は、実務者の判断によって決まり、各個体に特有である。但し、全身投与に適した投与量範囲は、本明細書に開示されており、投与経路によって決まる。投与に適したレジメンも可変的であるが、初回投与、次いでその後の注射または他の投与による1時間以上の間隔での反復投与が典型的である。または、血中濃度をインビボ療法のために指定された範囲に維持するのに十分な連続的な静脈内注入が想定される。
対象におけるHIV感染の処置、予防、および/または機能的治癒のための方法は、抗体を含む製剤を有効量で対象に投与する工程を含む。ある態様において、製剤は、単回投与で対象に与えられる。他の態様において、製剤は、複数回投与で対象に与えられる。製剤が複数回投与で対象に与えられる場合、本製剤を1日1回、1週間に1回、2週間に1回(隔週)または1ヶ月に1回投与することができる。具体的な態様において、処置スケジュールが1週間に1回である場合、製剤は、対象の体重の約5.0mg/kgの投与量で対象に投与される。別の態様において、処置スケジュールが2週間に1回である場合、製剤は、対象の体重の約25.0mg/kgの投与量で対象に投与される。
ある態様において、モノクローナル抗体を含む製剤は、高い安全性因子を示し、計8週間にわたって5mg/kgまたは25mg/kgを1週間に1回の頻度で対象に繰り返し投与したとき、十分に忍容性があった。具体的な態様において、HIV感染後数時間以内にモノクローナル抗体を5mg/kgで対象に投与してHIV感染の完全治癒を得ることができる。他の態様において、HIV感染後数日以内にモノクローナル抗体を5mg/kgで対象に投与してHIV感染の機能的治癒を得ることができる。
ある態様において、本発明は、ウイルス量を減少させるための免疫療法としてIVまたはSC経路によりHIV患者に投与することができる、上記結合特性を有するモノクローナルヒト、ヒト化またはキメラ抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。具体的な態様において、本発明は、HIV感染を有する患者における免疫療法として競合的HIV侵入阻害ならびにCD4+T細胞の活性化を示す、上記結合特性を有するCD4のドメイン1のCDR2領域を標的とするモノクローナルヒト、ヒト化またはキメラ抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
他のある態様において、本発明は、1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約10mg/kg以上の用量でウイルス量を減少させるための免疫療法としてIVまたはSC経路によりHIV患者に投与することができる、上記結合特性を有するモノクローナルヒト、ヒト化またはキメラ抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、処置される対象において10μg/mLよりも高い血清抗体レベルでウイルス量を検出不能なレベルまで減少させることができる単剤療法剤として機能する、上記結合特性を有するモノクローナルヒト、ヒト化またはキメラ抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、処置される対象において10μg/mLよりも高い血清抗体レベルでウイルス量を検出不能なレベルまで減少させ、かつ12週間の処置期間中に安定なCD4 T細胞数を維持することができる単剤療法剤として機能する、上記結合特性を有するモノクローナルヒト、ヒト化またはキメラ抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、単剤療法として1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約10mg/kg以上の用量で投与したとき、そのような処置により12週間の処置期間中に処置される対象においてウイルス量を検出不能なレベルまで減少させることができる、上記結合特性を有するモノクローナルヒト、ヒト化またはキメラ抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、単剤療法として1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約10mg/kg以上の用量で投与したとき、血清抗体レベルが10μg/mLよりも高い限りそのような処置によりウイルス量のリバウンドなしに処置される対象においてウイルス量を検出不能なレベルまで減少させることができる、上記結合特性を有するモノクローナルヒト、ヒト化またはキメラ抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、処置未経験HIV患者に1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約10mg/kg以上で投与したとき、患者の機能的治癒を生じさせる、HAARTへの補助療法における重要な成分として上記結合特性を有するモノクローナルヒト化抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、HAART下で安定したウイルス量を有する患者に1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約10mg/kg以上で投与したとき、患者の機能的治癒を生じさせる、HAARTへの補助療法における重要な成分として上記結合特性を有するモノクローナルヒト化抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、HAART処置に失敗した患者にHAARTへの補助療法において1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約10mg/kg以上の用量でIVまたはSC経路のいずれかにより投与することができ、それによりさらなるウイルスの減少を生じさせる、上記結合特性を有するモノクローナルヒト化抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、HAART下で安定した検出不能なウイルス量を経験している患者のために1〜4またはそれ以上のサイクルにわたって各処置サイクルを2〜4ヶ月間の抗CD4抗体処置で開始し、休薬期間(treatment holiday)を設け、次いでHAART処置を行い、それにより機能的治癒を生じさせる、HAART代替療法における重要な成分としてIVまたはSC経路のいずれかにより投与することができる上記結合特性を有するモノクローナルヒト化抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、処置未経験HIV患者のために1〜4またはそれ以上のサイクルにわたって各処置サイクルを2〜4ヶ月間の抗CD4抗体処置で開始し、次いで2〜4ヶ月間のHAART処置を行い、それにより機能的治癒を生じさせる、HAART代替療法における重要な成分としてIVまたはSC経路のいずれかにより投与することができる上記結合特性を有するモノクローナルヒト化抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、HAART下で安定した検出不能なウイルス量を経験している患者のために1〜4またはそれ以上のサイクルにわたって各処置サイクルを1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約5mg/kg以上の用量の2〜4ヶ月間の抗CD4抗体処置で開始し、休薬期間を設け、次いでHAART処置を行い、それにより機能的治癒を生じさせる、HAART代替療法における重要な成分としてIVまたはSC経路のいずれかにより投与することができる上記結合特性を有するモノクローナルヒト化抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、処置未経験HIV患者のために1〜4またはそれ以上のサイクルにわたって各処置サイクルを1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約5mg/kg以上の用量の2〜4ヶ月間の抗CD4抗体処置で開始し、次いで2〜4ヶ月間のHAART処置を行い、それにより機能的治癒を生じさせる、HAART代替療法における重要な成分としてIVまたはSC経路のいずれかにより投与することができる上記結合特性を有するモノクローナルヒト化抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、処置未経験HIV患者に1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約10mg/kg以上で投与したとき、患者の機能的治癒を生じさせる、HAARTへの補助療法における重要な成分として上記結合特性を有するモノクローナルヒト化抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、HAART下で安定したウイルス量を有する患者に1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約10mg/kg以上で投与したとき、患者の機能的治癒を生じさせる、HAARTへの補助療法における重要な成分として上記結合特性を有するモノクローナルヒト化抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、HAART処置に失敗した患者にHAARTへの補助療法において1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約10mg/kg以上の用量でIVまたはSC経路のいずれかにより投与することができ、それによりさらなるウイルスの減少を生じさせる、上記結合特性を有するモノクローナルヒト化抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、処置未経験HIV患者に集中的HAART処置モードにおける補助療法として、1〜4またはそれ以上のサイクルにわたってサイクルごとに2〜4ヶ月間の処置期間で開始し、かつ1〜2ヶ月間の休薬期間を設ける断続モードで、HAARTへの補助療法における重要な成分としてIVまたはSC経路のいずれかにより投与することができ、それにより患者の機能的治癒を生じさせる、上記結合特性を有するモノクローナルヒト化抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、処置未経験HIV患者に集中的HAART処置モードにおける補助療法として、1〜4またはそれ以上のサイクルにわたってサイクルごとに1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約5mg/kg以上の用量の2〜4ヶ月間の処置期間で開始し、かつ1〜2ヶ月間の休薬期間を設ける断続モードで、HAARTへの補助療法における重要な成分としてIVまたはSC経路のいずれかにより投与することができ、それにより患者の機能的治癒を生じさせる、上記結合特性を有するモノクローナルヒト化抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、HAART下で安定した検出不能なウイルス量を経験している患者に集中的HAART処置モードにおける補助療法として、1〜4またはそれ以上のサイクルにわたってサイクルごとに1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約5mg/kg以上の用量の2〜4ヶ月間の処置期間で開始し、かつ1〜2ヶ月間の休薬期間を設ける断続モードで、HAARTへの補助療法における重要な成分としてIVまたはSC経路のいずれかにより投与することができ、それにより患者の機能的治癒を生じさせる、上記結合特性を有するモノクローナルヒト化抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、ウイルス量を減少させるための免疫療法としてIVまたはSC経路によりHIV患者に投与することができる、上記結合特性を有するモノクローナルヒト、ヒト化またはキメラ抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
別の態様において、本発明は、ウイルス量を減少させるための免疫療法として1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約5mg/kg以上の用量でIVまたはSC経路によりHIV患者に投与することができる、上記結合特性を有するモノクローナルヒト、ヒト化またはキメラ抗CD4抗体を有する医薬組成物に関する。
具体的な態様
本開示は以下の具体的な態様を包含する。
(1)HIV感染に曝露された対象の処置方法であって、a)配列番号1のマウス抗体B4の重鎖のCDR1、配列番号2のマウス抗体B4の重鎖のCDR2、配列番号3のマウス抗体B4の重鎖のCDR3、配列番号4のマウス抗体B4の軽鎖のCDR1、配列番号5のマウス抗体B4の軽鎖のCDR2、および配列番号6のマウス抗体B4の軽鎖のCDR3を有する、CD4に対するモノクローナル抗体を薬理学上有効量で投与する工程;b)工程(a)後に、対象の血液1ミリリットル当たりのHIV RNAレベルを評価する工程;を有する、上記方法。
(2)前記抗体の重鎖配列が配列番号7を有する、(1)の方法。
(3)前記抗体の重鎖配列が配列番号9を有する、(1)の方法。
(4)前記抗体の軽鎖配列が配列番号8を有する、(1)の方法。
(5)前記抗体の重鎖配列が配列番号7を有し、かつ前記抗体の軽鎖配列が配列番号8を有する、(1)の方法。
(6)前記抗体の重鎖配列が配列番号9を有し、かつ前記抗体の軽鎖配列が配列番号8を有する、(1)の方法。
(7)HIV感染への曝露後24時間以内に投与工程(a)を行う、(1)の方法。
(8)HIV感染への曝露後48日以内に投与工程(a)を行う、(1)の方法。
(9)12週間の期間中に1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約10μg/ml以上の血清レベルで前記モノクローナル抗体を薬理学上有効量で投与する、(1)の方法。
(10)1ミリリットル当たりのHIV RNAレベル値が1コピー/ml未満をウイルスの根絶とみなす、(1)の方法。
(11)1ミリリットル当たりのHIV RNAレベル値が1〜50コピー/ml未満をウイルスの機能的治癒とみなす、(1)の方法。
(12)HIVを有する患者の処置方法であって、a)配列番号1のマウス抗体B4の重鎖のCDR1、配列番号2のマウス抗体B4の重鎖のCDR2、配列番号3のマウス抗体B4の重鎖のCDR3、配列番号4のマウス抗体B4の軽鎖のCDR1、配列番号5のマウス抗体B4の軽鎖のCDR2、および配列番号6のマウス抗体B4の軽鎖のCDR3:を有する、CD4に対するモノクローナル抗体を有する組成物を薬理学上有効量;及び高活性抗レトロウイルス療法(HAART)剤を投与する工程;及びb) 工程(a)後に、対象の血液1ミリリットル当たりのHIV RNAレベルを評価する工程;を有する上記方法。
(13)前記抗体の重鎖配列が配列番号7を有する、(12)の方法。
(14)前記抗体の重鎖配列が配列番号9を有する、(12)の方法。
(15)前記抗体の軽鎖配列が配列番号8を有する、(12)の方法。
(16)前記抗体の重鎖配列が配列番号7を有し、かつ前記抗体の軽鎖配列が配列番号8を有する、(12)の方法。
(17)前記抗体の重鎖配列が配列番号9を有し、かつ前記抗体の軽鎖配列が配列番号8を有する、(12)の方法。
(18)1週間に1回または2週間に1回の頻度により10mg/kg以上の用量で薬理学上有効量の前記抗体を投与する、(12)の方法。
(19)HAART処置モードにおける補助療法として断続モードで前記抗体を投与する、(12)の方法。
(20)1サイクル当たりHAART処置モードにおける補助療法としての約2〜4ヶ月の期間、次いでHAART処置モードにおける1〜2ヶ月間の休抗体薬期間で前記抗体を投与する、(19)の方法。
(21)1〜4サイクルにわたって中間モードを継続する、(20)の方法。
(22)HIVを有する患者の処置方法であって、a)患者におけるHIVウイルス発現および潜在的に感染した細胞のアポトーシスを活性化させることによりHIV感染患者における潜伏HIVリザーバーを減少させる工程;及びb)薬理学上有効量のHAART剤を患者に投与する工程;を有する、上記方法。
(23)患者におけるHIVウイルス発現および潜在的に感染した細胞のアポトーシスの前記活性化を、配列番号1のマウス抗体B4の重鎖のCDR1、配列番号2のマウス抗体B4の重鎖のCDR2、配列番号3のマウス抗体B4の重鎖のCDR3、配列番号4のマウス抗体B4の軽鎖のCDR1、配列番号5のマウス抗体B4の軽鎖のCDR2、および配列番号6のマウス抗体B4の軽鎖のCDR3:を有する、CD4に対するモノクローナル抗体を薬理学上有効量で患者に投与することにより行う、(22)の方法。
(24)患者におけるHIVウイルス発現および潜在的に感染した細胞のアポトーシスの前記活性化を、ヒストン脱アセチル化酵素(HDAC)阻害剤を患者に投与することにより行う、(22)の方法。
(25)HIV感染に曝露された対象の処置方法であって、a)CD4のCDR2様ドメイン領域に対して高い親和性を有するモノクローナル抗体を薬理学上有効量で投与する工程;及びb) 工程(a)後に、対象の血液1ミリリットル当たりのHIV RNAレベルを評価する工程;を有する、上記方法。
(26)前記抗体の重鎖配列が配列番号7を有する、(25)の方法。
(27)前記抗体の重鎖配列が配列番号9を有する、(25)の方法。
(28)前記抗体の軽鎖配列が配列番号8を有する、(25)の方法。
(29)前記抗体の重鎖配列が配列番号7を有し、かつ前記抗体の軽鎖配列が配列番号8を有する、(25)の方法。
(30)前記抗体の重鎖配列が配列番号9を有し、かつ前記抗体の軽鎖配列が配列番号8を有する、(25)の方法。
(31)HIV感染への曝露後24時間以内に投与工程(a)を行う、(25)の方法。
(32)HIV感染への曝露後48日以内に投与工程(a)を行う、(25)の方法。
(33)12週間の期間中に1週間に1回または2週間に1回のスケジュールにおいて約10μg/ml以上の血清レベルで前記モノクローナル抗体を薬理学上有効量で投与する、(25)に記載の方法。
(34)1ミリリットル当たりのHIV RNAレベル値が1コピー/ml未満をウイルスの根絶とみなす、(25)の方法。
(35)1ミリリットル当たりのHIV RNAレベル値が1〜50コピー/ml未満をウイルスの機能的治癒とみなす、(25)の方法。
追加の具体的な態様
(1)CD4のドメイン1に対する抗体を薬理学上有効量で対象に投与する工程;を有する、HIVに曝露された対象の処置方法。
(2)前記抗体がCD4のドメイン1のCDR2領域に特異的に結合する、(1)記載の方法。
(3)前記抗体がモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、またはそれらの組み合わせである、(2)に記載の方法。
(4)前記抗体がヒト化モノクローナル抗体である、(2)に記載の方法。
(5)前記ヒト化モノクローナル抗体が、配列番号1のCDR1、配列番号2のCDR2、および配列番号3のCDR3を有する重鎖アミノ酸配列;及び配列番号4のCDR1、配列番号5のCDR2、および配列番号6のCDR3を有する軽鎖アミノ酸配列;を有する、(4)に記載の方法。
(6)前記ヒト化モノクローナル抗体が、配列番号11のアミノ酸配列を有する重鎖;及び配列番号13のアミノ酸配列を有する軽鎖;を有する、(4)に記載の方法。
(7)前記ヒト化モノクローナル抗体が、配列番号10のアミノ酸配列を有する重鎖;及び配列番号8のアミノ酸配列を有する軽鎖;を有する、(4)に記載の方法。
(8)前記重鎖が配列番号7のアミノ酸配列を有する、(7)に記載の方法。
(9)前記ヒト化抗体を、HIVへの曝露前に対象に投与する、(8)に記載の方法。
(10)前記ヒト化抗体を、HIVへの曝露後に対象に投与する、(8)に記載の方法。
(11)前記ヒト化抗体を、HIVへの曝露後48時間以内に投与する、(10)に記載の方法。
(12)前記ヒト化抗体を少なくとも約5mg/kg体重の投与量で対象に投与する、(8)に記載の方法。
(13)前記ヒト化抗体を対象に複数回投与する、(12)に記載の方法。
(14)前記ヒト化抗体を1週間に1回または2週間に1回の間隔で対象に投与する、(13)に記載の方法。
(15)抗ウイルス剤を対象に投与する工程をさらに含む、(13)に記載の方法。
(16)前記抗ウイルス剤が高活性抗レトロウイルス療法(HAART)剤である、(15)に記載の方法。
(17)前記HAART剤が、プロテアーゼ阻害剤または非ヌクレオシド系逆転写酵素阻害剤と組み合わせたヌクレオシド系逆転写酵素阻害剤を有する、(16)に記載の方法。
(18)前記ヒト化抗体をHAART剤と同時に投与する、(16)に記載の方法。
(19)前記ヒト化抗体およびHAART剤をあるサイクルに亘って対象に投与する、(16)に記載の方法であって、前記サイクルが(i)前記ヒト化抗体を4ヶ月の期間にわたって1週間に1回または2週間に1回の間隔で対象に投与し、その後の2ヶ月間を休薬期間とする工程;及び(ii)(i)における6ヶ月の期間にHAART剤を対象に連続的に投与する工程;を有する、上記方法。
(20)対象を2サイクルに亘って処置する、(18)に記載の方法。
(21)処置レジメンを対象に投与する工程を有する、HIV感染を有する対象の処置方法であって、該処置レジメンが、(a)CD4のドメイン1に対する抗体を薬理学上有効量;及び(b)高活性抗レトロウイルス療法(HAART)剤を有する、上記方法。
(22)前記抗体がCD4のドメイン1のCDR2領域に特異的に結合する、(21)に記載の方法。
(23)前記抗体がモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、またはそれらの組み合わせである、(22)に記載の方法。
(24)前記抗体がヒト化モノクローナル抗体である、(22)に記載の方法。
(25)前記ヒト化モノクローナル抗体が、配列番号1のCDR1、配列番号2のCDR2、および配列番号3のCDR3:を有する重鎖アミノ酸配列;及び配列番号4のCDR1、配列番号5のCDR2、および配列番号6のCDR3:を有する軽鎖アミノ酸配列;を有する、(24)に記載の方法。
(26)前記ヒト化モノクローナル抗体が、配列番号11のアミノ酸配列を有する重鎖;及び配列番号13のアミノ酸配列を有する軽鎖;を有する、(24)に記載の方法。
(27)前記ヒト化モノクローナル抗体が、配列番号10のアミノ酸配列を有する重鎖;及び配列番号8のアミノ酸配列を有する軽鎖;を有する、(24)に記載の方法。
(28)前記ヒト化抗体を少なくとも約5mg/kg体重の投与量で対象に投与する、(27)に記載の方法。
(29)前記処置レジメンをあるサイクルに亘って対象に投与する、(21)に記載の方法であって、前記サイクルが、(i)前記ヒト化抗体を4ヶ月の期間にわたって1週間に1回または2週間に1回の間隔で対象に投与し、その後の2ヶ月間を休薬期間とする工程;及び(ii)(i)における6ヶ月の期間にHAART剤を対象に連続的に投与する工程;を有する、上記方法。
(30)対象を2サイクルで処置する、(18)に記載の方法。
さらなる具体的な態様
(1)CD4のドメイン1に対する抗体を薬理学上有効量で有する、HIVに曝露された対象を処置するための組成物。
(2)前記抗体がCD4のドメイン1のCDR2領域に特異的に結合する、(1)に記載の組成物。
(3)前記抗体がモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、又はそれらの組み合わせである、(2)に記載の組成物。
(4)前記抗体がヒト化モノクローナル抗体である、(2)に記載の組成物。
(5)前記ヒト化モノクローナル抗体が、配列番号1のCDR1、配列番号2のCDR2、および配列番号3のCDR3:を有する重鎖アミノ酸配列;及び配列番号4のCDR1、配列番号5のCDR2、および配列番号6のCDR3:を有する軽鎖アミノ酸配列;を有する、(4)に記載の組成物。
(6)前記ヒト化モノクローナル抗体が、配列番号11のアミノ酸配列を有する重鎖;及び配列番号13のアミノ酸配列を有する軽鎖;を有する、(4)に記載の組成物。
(7)前記ヒト化モノクローナル抗体が、配列番号10のアミノ酸配列を有する重鎖;及び配列番号8のアミノ酸配列を有する軽鎖;を有する、(4)に記載の組成物。
(8)前記重鎖が配列番号7のアミノ酸配列を有する、(7)に記載の組成物。
(9)前記ヒト化抗体を、HIVへの曝露前に対象に投与する、(8)に記載の組成物。
(10)前記ヒト化抗体を、HIVへの曝露後に対象に投与する、(8)に記載の組成物。
(11)前記ヒト化抗体を、HIVへの曝露後48時間以内に投与する、(10)に記載の組成物。
(12)前記ヒト化抗体を少なくとも約5mg/kg体重の投与量で対象に投与する、(8)に記載の組成物。
(13)前記ヒト化抗体を対象に複数回投与する、(12)に記載の組成物。
(14)前記ヒト化抗体を1週間に1回または2週間に1回の間隔で対象に投与する、(13)に記載の組成物。
(15)抗ウイルス剤で対象を処置する(か又は抗ウイルス剤を対象に投与する)、(13)に記載の組成物。
(16)前記抗ウイルス剤が高活性抗レトロウイルス療法(HAART)剤である、(15)に記載の組成物。
(17)HAART剤が、プロテアーゼ阻害剤または非ヌクレオシド系逆転写酵素阻害剤と組み合わせたヌクレオシド系逆転写酵素阻害剤を有する、(16)に記載の組成物。
(18)前記ヒト化抗体をHAART剤と同時に投与する、(16)に記載の組成物。
(19)前記ヒト化抗体およびHAART剤をあるサイクルに亘って対象に投与する、(16)に記載の組成物であって、前記サイクルが、(i)前記ヒト化抗体を4ヶ月の期間にわたって1週間に1回または2週間に1回の間隔で対象に投与し、その後の2ヶ月間を休薬期間とする工程;及び(ii)(i)における6ヶ月の期間にHAART剤を対象に連続的に投与する工程;を有する、上記組成物。
(20)対象を2サイクルに亘って処置する、(18)に記載の組成物。
(21)(a)CD4のドメイン1に対する抗体を薬理学上有効量;及び(b)高活性抗レトロウイルス療法(HAART)剤;を有する、HIV感染を有する対象を処置するための組成物。
(22)前記抗体がCD4のドメイン1のCDR2領域に特異的に結合する、(21)に記載の組成物。
(23)前記抗体がモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、またはそれらの組み合わせである、(22)に記載の組成物。
(24)前記抗体がヒト化モノクローナル抗体である、(22)に記載の組成物。
(25)前記ヒト化モノクローナル抗体が、配列番号1のCDR1、配列番号2のCDR2、および配列番号3のCDR3:を有する重鎖アミノ酸配列;及び配列番号4のCDR1、配列番号5のCDR2、および配列番号6のCDR3:を有する軽鎖アミノ酸配列;を有する、(24)に記載の組成物。
(26)前記ヒト化モノクローナル抗体が、配列番号11のアミノ酸配列を有する重鎖;及び配列番号13のアミノ酸配列を有する軽鎖;を有する、(24)に記載の組成物。
(27)前記ヒト化モノクローナル抗体が、配列番号10のアミノ酸配列を有する重鎖;及び配列番号8のアミノ酸配列を有する軽鎖;を有する、(24)に記載の組成物。
(28)前記ヒト化抗体を少なくとも約5mg/kg体重の投与量で対象に投与する、(27)に記載の組成物。
(29)前記処置レジメンをあるサイクルに亘って対象に投与する、(21)に記載の組成物であって、前記サイクルが、(i)前記ヒト化抗体を4ヶ月の期間にわたって1週間に1回または2週間に1回の間隔で対象に投与し、その後の2ヶ月間を休薬期間とする工程;及び(ii)(i)における6ヶ月の期間にHAART剤を対象に連続的に投与する工程;を有する、上記組成物。
(30)対象を2サイクルで処置する、(18)に記載の組成物。
特記しない限り、本明細書で使用される全ての技術および科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者によって一般に理解される意味と同じ意味を有する。「1つ(種)の(a)」「1つ(種)の(an)」および「その(前記)(the)」という単数の用語は、その文脈が明らかに別の意を示していない限り複数の指示対象を含む。同様に、「または」という用語は、その文脈が明らかに別の意を示していない限り「および」を含むものとする。故に、「AまたはBを有する」は、「AまたはB」あるいは「AおよびB」を含むことを意味する。さらに、ポリペプチドについて与えられる全てのアミノ酸のサイズおよび全ての分子量(molecular weight)または分子量の値(molecular mass value)はおおよそであり、説明のために提供されているものと理解すべきである。本明細書に記載されているものと同様または等価の方法および材料を本開示の方法の実施または試験で使用することができるが、好適な方法および材料について以下に説明する。本明細書で言及されている全ての刊行物、特許出願、特許および他の参考文献の内容全体が参照により組み込まれる。矛盾する場合、用語の説明を含む本明細書を優先する。さらに、材料、方法および実施例は単に例示であり、限定的なものではない。
図および関連する実施例の以下の例示的な説明は、本明細書、特に実施例に頻繁に使用されている特定の用語の理解を容易にするために提供されている。これらの説明は便宜上提供されており、本発明を限定するものではない。
実施例1
mAb B4の免疫学的および機能的特性
モノクローナル抗体B4(mAb B4)は、T細胞の表面(CD4)にあるHIV受容体複合体部位を認識するモノクローナル抗体である。mAb B4は、CD4のHIV共受容体との相互作用に影響を与えて妨害することができる。mAb B4は、初代HIV−1分離株を優先的に中和した。
以下の情報は、2つの米国特許(Wangによる米国特許第5,912,176号および第6,090,388号)ならびにWangらによる1999年の雑誌論文(その開示内容全体が参照により組み込まれる)から引用されたデータを含むマウスmAb B4の発見および予備特性評価研究を要約したものである。
1.HPB−ALL免疫により得られるマウスモノクローナル抗体
BALB/cマウスをインタクトな未感染CD4+ヒトHPB−ALL細胞(T細胞性急性リンパ芽球性白血病細胞株)で免疫化して、mAb B4を得た。
細胞表面にあるCD4に対する特異性を有し、かつHIV−1の初代分離株に対する広域な中和活性を有する、mAb B4によって代表される新規なクラスの抗CD4抗体を得た。
2.mAb B4認識部位の特性評価
mAb B4は、組換え可溶性CD4(rsCD4)と比較して、細胞の表面にある膜結合型CD4を優先的に認識することが分かっている。
HIVの曝露前に膜結合型CD4に結合しているmAb B4は、その後のgp120およびウイルス全体のCD4への結合を阻止することが分かっている。但し、該抗体への曝露前にgp120に結合した膜結合型CD4は、なおmAb B4に結合することができる。したがって、mAb B4はgp120の膜結合型CD4への結合に影響を与えることができるが、gp120はmAb B4のCD4への結合に影響を与えない。
mAb B4の認識部位は、CD4ドメイン1を認識するmAb Leu3aおよびOKT4Aモノクローナル抗体などの他のよく研究されている抗CD4モノクローナル抗体(Chiba,Y. 1992;Jameson, B.D.ら、1988)およびCD4ドメイン2を認識するmAb 5A8モノクローナル抗体(Burklyら、1992)のものとは異なる。
3.mAb B4のインビトロ中和活性
マウスmAb B4は、一般的な定義では中和抗体ではない。その代わり、mAb B4は、ウイルスに結合するのではなく、むしろ宿主細胞受容体を被覆することによりウイルス侵入を阻害する。mAb B4のHIV感染に対する効果は、当該分野で知られているウイルス中和アッセイ(例えば、MT−2マイクロプラーク中和アッセイ(MT−2 Microplaque Neutralization Assay)(Sawyerら、1994))により容易に観察することができる。マウスmAb B4の中和活性は、本発明者らの共同研究者であるCarl Hanson博士(カリフォルニア保健サービス省(California Department of Health Services))によって評価され、John Mascola博士(ヘンリー・ジャクソン財団(Henry Jackson Foundation)、WRAIR)、David Montefiori博士(デューク大学)およびMalcolm Martin博士(アメリカ国立アレルギー・感染症研究所(NIAID))の研究所でも独立して評価された。1995年から2010年に広範囲に特性評価された以下のHIV中和特徴はmAb B4に関連している。
1.PBMCで増殖させた初代分離株は、T細胞株適応(T cell line-adapted)分離株HIV−1IIIBおよびHIV−1MNよりもmAb B4による中和に対して感度が高かった。
2.mAb B4は、CCR5/CXCR4(二重指向性)およびCCR5共受容体利用の初代分離株による感染を中和する。
3.mAb B4は、CXCR4共受容体利用のT細胞株適応HIV−1分離株に対して低い活性を有する。
4.mAb B4は、HIV−1サブタイプA〜Gを表す様々な合胞体誘導性(SI:Syncytial Inducing)および非合胞体誘導性(NSI:Non-Syncytial Inducing)初代分離株を90%終点および3logの感染力まで中和する。
5.mAb B4は、二重指向性(dual co-receptor)HIV−1エンベロープを有するHIV−2、SIVおよびSHIVを中和する。
6.扁桃組織培養(histoculture)システムでは、mAb B4は、HIV−1初代分離株VL135(HIV−1VL135)の感染力を2log減少させる。12.5μg/mL程の少ないmAb B4が、活性なヒト補体の存在下で(これは多くの抗ウイルス抗体が抗体依存性感染増強(antibody-dependent enhancement)を示す条件である)、100TID50(50%扁桃組織感染用量(tonsil infectious dose))超の単細胞向性(monocytotropic)分離株JR−CSFを完全に中和する。
7.mAb B4は、感染後48時間までn添加した場合、HIV−1VL135に対し中和活性を発揮し、その後、72時間までに添加した場合、著しい抗ウイルス効果を示した。
a.これは、細胞またはウイルスと共にプレインキュベートしたか否かに関わらず等しく有効である。
b.これは、侵入後機序(post-entry mechanism)ではなく感染病巣が新しい細胞に広がるのを阻止することにより作用する。
c.これらのアッセイでは、mAb B4は細胞傷害に寄与しなかった。
実施例2
HIV−1中和および耐性アッセイ
1998年から2011年の間、Carl Hanson博士の研究所及びMonogram Biosciences社において、各種分岐群の複数のHIV分離株について以下のウイルス中和および耐性アッセイを行った。これらのアッセイの詳細な説明について以下に記載する。
1.HIV−1中和アッセイ
当該研究のそれぞれに示されているように血液または抗体試料を採取した。MT−2マイクロプラークアッセイまたはマイトジェン(PHA)刺激PBMCアッセイのいずれかを用いて、血清または抗体試料をHIV−1分離株の複数分岐群(multi-clade)パネル上で評価した。
1.1.MT−2マイクロプラークアッセイ
MT−2マイクロプラークアッセイはHIVの合胞体誘導性(syncytium-inducing)分離株に限定した。このアッセイを96ウェルプレート内で行い、ここではマイクロプラーク上の合胞体の蛍光染色により、1ウェル当たり最大25個の小さいプラークを数えることができた。このアッセイでは、感染したMT−2細胞は、遠心分離中にゲル化する溶解したアガロースを介した遠心分離により単層を形成した。このアッセイは高感度であり、広いダイナミックレンジを有することが分かった。このアッセイは多数の標本を処理する際に比類なく効率的であることも分かった。多数の反復ウェル(replicate well)によって可能となるコンピュータ化統計分析を用いることにより、他の形式を用いたとき、達成が難しかった程度の品質管理および標準化が提供されることが分かった。
1.2.PBMCアッセイ
PBMCアッセイは、96ウェルマイクロタイタープレートにおける感染細胞の増殖後の抗原捕捉ELISAによりPBMCにおけるp24抗原の発現を定量化する、標準的な抗原減少(antigen-reduction)アッセイである。このアッセイの利点は、全てのHIV株および分離株へのその適用性にある。
1.3.ウイルス株
エクスビボおよびインビボ中和研究のためのHIV−1株は、表3、表5および表6ならびに図1a、図1b、図3、図22および図23に列挙されている。サブタイプA〜GおよびHの初代HIV−1ウイルスは、(a)カリフォルニア保健サービス省のサンフランシスコ男性健康研究(San Francisco Men’s Health Study)のウイルスおよびリケッチア症研究室(VRDL:Viral and Rickettsial Disease Laboratory)に参加した同性愛者の男性から単離されたもの、(b)HIVの分離および特性評価のための世界保健機関ネットワーク(World Health Organization Network for HIV Isolation and Characterization)から取得したもの、(c)米軍HIV研究プログラム(U.S. Military HIV Research Program)によって提供されたもの、および(d)アメリカ国立アレルギー・感染症研究所のAIDS研究および標準試薬プログラム(AIDS Research and Reference Reagent Program)から贈呈されたものである。DH−12(チンパンジー末梢血単核細胞(PBMC)において継代された患者分離株)も、アメリカ国立アレルギー・感染症研究所のAIDS研究および標準試薬プログラムによって提供された。
1.4.B4またはdB4中和活性
B4またはdB4中和活性は、抗体を含有しない対照と比較したとき、ウイルスにおける指示された減少率(50〜95%)が得られる抗体濃度として定めた。50%および90%終点の抗体濃度を抗体希釈間の補間により導出した。
2.PhenoSense HIV侵入アッセイ
薬剤耐性の測定のためのPhenoSense HIV侵入アッセイを、Monogram Biosciences社(カリフォルニア州サウスサンフランシスコ)で行った。
ベクタープールから産生された組換えウイルスを使用して、各種濃度の薬剤または抗体(例えば、B4またはdB4)の存在下で細胞を感染させた。試験ベクターのウイルス複製を50%(IC50)又は90%(IC90)阻害するのに必要な薬剤の量を測定した。
2.1.PhenoSense HIVアッセイで使用される組換えウイルスの産生
PhenoSense HIVアッセイで使用される組換えウイルスを、HIV感染の横断的研究でスクリーニングしてHIV血清陽性と判定された患者から採取した試料から産生した。偶発的なHIV感染を有する個体では、HIVウイルス量およびCD4細胞数を含む臨床検査評価のために臨床および血漿試料を採取した。最初に血清陰性であったが約1年の経過観察後に血清陽性となった個体では、ウェスタンブロット確認を含む2種類の酵素免疫測定法によりHIV感染を確認した。
表3に示すように、抗体陽転時にサブタイプA、BF、C、D、E、EA、F、GまたはJ(複数のハイブリダイゼーションアッセイを用いる以前のHIVサブタイプ化に基づく)を有していた参加者の試料を組換えウイルスの構築のために採取した。HIVのenvおよびpol領域を試験試料から増幅し、増幅したDNAを試験ベクターにクローン化した。GeneSeq HIVでは、ベクタープールを配列決定してHIV遺伝子型を決定した。PhenoSense HIVアッセイでは、ベクタープールから産生した組換えウイルスを使用して各種濃度の薬剤の存在下で細胞を感染させた。
実施例3
Monogram Biosciences社のPhenoSenseアッセイによる全ての分岐群のHIV分離株に対するmAb B4の中和活性
mAb B4がB分岐群の全てのHIVウイルスを中和することが十分に立証されている。1つの研究において、分岐群A(n=8)、BF(n=1)、C(n=18)、D(n+18)、E(n=4)、EA(n=10)、F(n=8)、G(n+4)、J(N=2)由来の計73種類の代表的なB分岐群以外のHIV分離株+3種類の対照ウイルス92HT594、JRCSF、JRFLを組換えウイルスに調製し、mAb B4に対するそれらの感度についてPhenoSense HIVアッセイで試験した(表3)。全ての組換えウイルスはmAb B4に対して非常に感度が高く、平均IC50=0.018μg/mLおよびIC90=0.062μg/mLという前例がない程に低いIC50およびIC90濃度を有することが分かった。これらのHIV分離株の多くが多剤耐性患者に由来しており、mAb B4またはそのヒト対応物が既にHIV薬剤耐性である患者を処置するのに非常に効率的であるという明らかな兆候を発見したことは注目すべきことであった。
実施例4
モノクローナル抗体B4は競合的HIV侵入阻害を媒介する:処置時のHIV耐性突然変異の防止を予測する予期せぬ特徴
競合的阻害研究により、CD4上の同じ受容体結合部位に対してHIVエンベロープタンパク質と競合し、それによりHIVの細胞への侵入を阻害する阻害剤(例えば、侵入阻害抗体)の能力および有効性を評価することができる。理論上の研究では、mAb B4は、CD4への結合のためにHIVエンベロープタンパク質(gp120)と競合する。図1aはこの研究の予測される結果を示しており、この図の各線は異なるウイルス分離株を表している。具体的には、この理論上の研究から期待される結果は、異なるウイルス分離株がmAb B4に対して異なる感度(IC50)を有するが、mAb B4が十分な濃度で存在する限り全てのウイルス分離株の侵入が100%阻害されることを実証している。
比較として、非競合的阻害研究により、HIVエンベロープタンパク質のCD4に結合する能力を阻害または減少させ、それによりHIVの細胞への侵入を阻害する阻害剤(例えば、CD4の異なる部分に結合する共受容体拮抗薬または抗体)の能力および有効性を評価することができる。理論上の研究では、HIVエンベロープタンパク質(gp120)がCD4に結合するのを阻害する非競合的阻害剤(例えば、TMB−355)の能力を分析する。図1bは、この研究の予測される結果を示し、この図の各線は異なるウイルス分離株を表している。具体的には、この理論上の研究から期待される結果は、異なるウイルス分離株はTMB−355に対して異なる感度(IC50)を有し、TMB−355の存在量に関わらず、ウイルス分離株の少なくとも一部が細胞に侵入することを実証している。この理論上の研究によれば、IC50に関わらずHIV耐性は最大阻害率における「平坦域」として観察されることが期待される。
TMB−355(かつてのTNX−355、イバリズマブともいう)は、アカゲザルおよびヒトCD4の細胞外ドメイン2に結合してHIVのCD4+細胞への結合後侵入(post-binding entry)を防止するように設計されたヒト化IgG4モノクローナル抗体である(例えば、Burkly, LCら、1992およびKurizkes, DRら、2004)。CD4上のTMB−355抗体結合部位はHIV−1エンベロープgp120の結合に必要な部位とは異なり、主要組織適合遺伝子複合体タンパク質との相互作用に必要な部位とは異なる。したがって、TMB−355は非競合的HIV侵入阻害を媒介する。
TMB−355は、幾種かのHIV−1ウイルスに対して強力な中和活性を有することが分かっているが、その阻害活性はHIV株の広いパネルを評価した際に一貫していない。図2は、各棒線が1種類のウイルス分離株を表す118種類のEnv偽型HIVウイルスのパネルに対するTMB−355のMPIが100%〜15%(左のY軸)の範囲であり、それに伴いIC50が0.01μg/mLから10μg/mL(右のY軸)に増加することを示している(Song, R.ら、2013)。分析した全ての分岐群のうち、分岐群AおよびEのウイルスは、AおよびE分岐群以外のウイルスよりもTMB−355に対して著しく感度が高かった。さらに、ウイルス量の減少のためにTMB−355処置を受けている患者からのgp120のV5領域において同定された突然変異によりウイルス耐性突然変異株が発見された(Toma, J.ら、2011;Pace, C. S.ら、2013)。TMB−355(イバリズマブ)によって実証された非競合的阻害作用は、100%未満の阻害を有する分離株ではウイルス複製が生じるため、この抗体処置期間中に耐性HIV突然変異株が発生する可能性が高くなることを示唆している。
対照的に、850種超のEnv偽型HIVウイルスのパネルから10年間にわたって収集されたデータは、mAb B4がHIV侵入阻害において予期せぬ広域性および効力を与えることを示している(図3)。このデータ収集から、mAb B4がほぼ100%のMPIを有すると共に、一方が0.01〜1μg/mLで他方が約10μg/mLの2種類の濃度の周りにIC50が集中していることが分かる。mAb B4のHIV侵入阻害プロファイルは、IC50に関わらずHIVウイルスのそれぞれのMPIが約100%であるという競合的阻害機序の典型的な特性を有する。mAb B4の著しく強力な競合的HIV侵入阻害特性を考慮すると、mAb B4による処置期間中にウイルス耐性突然変異株が発生する可能性は低い。mAb B4によって発揮されるそのような強い(tight)競合的阻害は、これまで試験した他のどのHIV阻害剤でも観察されたことはなかった。
この実施例から得られたMPIおよびIC50データは、実施例3で考察した多剤耐性患者に由来するHIV分離株の多くがmAb B4に対して非常に感度が高かったということを示すデータと合わせて、mAb B4またはそのヒト対応物がHAART処置で失敗している薬剤耐性HIV患者を処置するのに非常に効率的であることを示唆していた。mAb B4によって媒介される中和モードは、mAb B4または同様のFv領域を有するそのヒト対応類似体による処置を受けているHIV患者において薬剤耐性ウイルス突然変異株の発生を防止するという独特なHIV剤を提供する。
実施例5
モノクローナル抗体B4のヒト化
マウス抗体として、mAb B4は、ヒトにおいて免疫原性である。マウス抗体のヒト化は、脱免疫化法として現在知られているプロセスにより達成することができる(Jones, T. D.ら、2009)。mAb B4の脱免疫化については、以下に要約されているとおり、Lynn., S.およびWang, C. Y.による米国特許第7,501,494号に詳細に説明されている(その両開示内容全体が参照により組み込まれる)。
最初に、Fv部分を保持したまま、マウス抗体B4の定常領域(CおよびCκ)を完全に除去してヒトIgGの定常領域(それぞれ配列番号12および14)で置換し、それによりキメラB4抗体を産生させる。次に、ヒトへの使用のために、潜在的に免疫原性のマウスのTおよびB細胞エピトープの位置を突き止めて除去することにより、マウスmAb B4のFv断片の脱免疫化を達成した。mAb B4の可変領域からそのようなエピトープの位置を突き止めた後に、T細胞エピトープの除去を達成した。3次元「ペプチドスレッディング(peptide threading)」法により、可変領域のアミノ酸配列をMHCクラスII結合モチーフの存在について分析した。抗体認識を妨げない表面残基の「ベニヤリング(veneering)」により、B細胞エピトープの可変領域からの除去を達成した。脱免疫化ヒト化型のmAb B4をmAb dB4と表す。
Lynn., S.およびWang, C. Y.による米国特許第7,501,494号は、IgGが、標的抗原の除去を生じさせる補体結合および抗体依存性細胞傷害(ADCC)などのエフェクター機能にとって重要な二分岐の複合型のN−結合型糖鎖をCH2内に含むと述べている。mAb B4はCD4受容体複合体に標的化されるため、補体結合に寄与するIgGのエフェクター機能によりCD4+細胞の破壊およびCD4+細胞機能の免疫抑制を引き起こすことができる。したがって、IgGのFc領域におけるN−グリコシル化部位の除去により、IgGがヒトFcR1に結合する能力、補体を活性化させる能力またはC1qに結合する能力を消失させて、それによりIgG媒介性補体依存性細胞傷害(CdC)をなくす。1つのアミノ酸残基Asn(N)をHis(H)で置換する(即ちN298H)ことにより、IgGのFc領域内のN−グリコシル化部位の除去を達成した。
本明細書で述べるアミノ酸の番号付け/位置は、本明細書の一部である配列表に含まれている配列に基づいている。なお、上記のaa298におけるグリコシル化部位は、IgGのEU番号付けシステム(European numbering system)に従って番号付けされた天然のIgG分子のaa297に存在するグリコシル化部位に対応している。したがって、本出願におけるaa298は、米国特許第7,501,494号に記載されているaa297におけるグリコシル化部位に対応する。
Fvドメインの脱免疫化mAb dB4の重鎖(図4)および軽鎖(図5)のCDR1、2および3領域はそれぞれ、配列番号1〜6のアミノ酸配列を含む(表4)。mAb dB4の重鎖および軽鎖の全長配列は、図4および図5にそれぞれ配列番号7および8として示されている。
本抗体の重鎖内の特定のアミノ酸が突然変異したとき、mAb dB4の半減期が改善(延長)されることが分かった。具体的には、aa253(Met)、aa255(Ser)およびaa257(Thr)位の重鎖Fcアミノ酸をそれぞれTyr、ThrおよびGluで置換したとき、ヒト化抗体の半減期が改善された。ヒト化mAb dB4抗体の改良された重鎖の全長配列が配列番号9として図6に示されている。したがって、改良されたヒト化抗体mAb dB4は、配列番号8の配列を有する軽鎖および配列番号9の配列を有する重鎖を含む。
マウスmAb B4およびヒト化mAb dB4の配列および構造の独特な特徴は、Fvの重鎖内のアミノ酸位置101における糖結合残基Asn(Asn101)の存在である。この糖結合部位はそのFv領域位置には珍しく、予期せずにFvドメイン内に隠れており、完全抗体分子の変性による糖の酵素的切断のためにのみ露出させることができる。Fv領域におけるこの糖の存在は最初、本抗体の特性評価を複雑にした。しかし、糖鎖または結合部位に対する修飾により本抗体のCD4に対する結合親和性が破壊された。したがって、Fv領域におけるこの珍しいN−グリコシル化部位は本抗体のCD4への結合には不可欠である。
図7は、図4および図6について上記で考察したグリコシル化、置換および突然変異部位を強調するmAb dB4の全長重鎖アミノ酸配列を示す。
実施例6
MT−2マイクロプラーク、PBMC中和アッセイおよびPhenoSense侵入アッセイによるmAb dB4とその親mAb B4との生物学的同等性の実証
脱免疫化/ヒト化Fc非グリコシル化(Fc-aglycosylated)mAb dB4とその親マウスmAb B4との生物学的同等性を評価して、霊長類動物およびヒトにおけるさらなる毒性/安全性および有効性の研究のためにそのヒト化型を利用できることを保証するために、広範囲な比較研究を行った。これらの比較研究の結果を以下に要約する。
1.分岐群A、B、C、DおよびEならびに分岐群CおよびE由来の代表的なHIV分離株をそれぞれ用いて、MT−2マイクロプラークおよびマイトジェン刺激PBMCアッセイの両方において非常に高感度のHIV−1中和アッセイを行った。脱免疫化法によってマウスmAb B4をmAb dB4抗体にヒト化した後にHIV中和活性の喪失は認められなかった。同等の結果がMT−2マイクロプラーク(表5)およびPBMC系アッセイ(表6)において示されている。
2.したがって、測定した全ての分岐群の全てのHIV分離株のIC50およびIC90は互いに2倍以内であるため、マウスmAb B4とmAb dB4との間に生物学的同等性が実証された。
3.JRCSF(R5)、HXB2(X4)、92TH594(R5/X4)、初代分離株#5(R5)、初代分離株#6(R5)および初代分離株#7(R5)を含む様々な指向性の選択されたHIV分離株と共に、二重指向性受容体(CXCR4およびCCR5またはX4/R5)を発現する細胞株U87に対して、mAb B4、mAb dB4ならびに2種類の他の周知のHIV−env標的モノクローナル中和抗体2F5および2G12によるHIV侵入阻害を評価した。この研究では、HIV侵入阻害を、何百種類ものHIV株のうちのいずれか1つ由来のエンベロープ糖タンパク質を有する偽型ウイルスおよびルシフェラーゼを用いて、Monogram Biosciences社が評価した。HIVのtatの制御下でルシフェラーゼを発現するように操作されたU87−CD4+/CCR5+/CXCR4+細胞において発生する生物発光を定量化することにより、抗体による中和を測定する。この研究の結果が表7に示されており、以下を実証している:
a.マウスmAb B4(MuB4、行4)は、2種類の最も強力な抗HIV Env抗体2F5(行1)および2G12(行2)と比較したとき、HIV侵入阻害において非常により強力である。異なるHIV分離株の対応するIC50はそれぞれ、0.04:4および0.8、0.4:0.07および0.5、0.05:3および1.3、0.05:50および20、0.05:2および3、0.03:>100および2である。
b.マウスmAb B4(MuB4、行4)およびmAb dB4(行3)は、様々な種類の指向性の同じ代表的なHIV分離株で試験したとき、驚くべきことにそれらのIC50において等しい。
したがって、重鎖及び軽鎖の両方で同じCDRを共有しているマウスmAb B4及び脱免疫化mAb dB4は、生物学的に同等であり、この2種の抗体の機能特性は、各種インビトロ及びインビボ研究において互いを代表していることが十分に立証されている。
実施例7
(A)dB4およびmAb B4のHPB−ALL細胞への結合活性;(B)dB4のPBMC CD4陽性細胞への結合活性;(C)dB4の組換えCD4への結合活性、ならびに(D)dB4およびgp120のHPB−ALL細胞への結合活性についての特性評価
1.背景
先の実施例に示されているmAb dB4およびその親マウスmAb B4の中和アッセイによって実証されているように、抗原結合の定性的側面および機能特性は知られているが、CD4+Tリンパ球におけるmAb B4およびmAb dB4の定量的細胞結合プロファイルは過去に調査されたことはない。
マウスmAb B4およびそのヒト化Fc非グリコシル化IgGモノクローナル抗体mAb dB4の両方を、正常なヒト血液CD4+Tリンパ球およびCD4+T細胞性白血病HPB−ALL細胞に対する細胞結合プロファイルについて試験した。実施例1で考察したようにマウスをHPB−ALL細胞で免疫化することによりmAb B4を選択したため、HPB−ALL細胞を使用した。FACS分析により一般的な細胞結合を評価し、その結果を平均蛍光強度(MFI)に基づくEC50またはIC50値として報告した。本抗体の一般的な細胞結合の評価に加えて、天然のdB4 IgG分子のHPB−ALL細胞に対する絶対結合親和性(Kd)および最大結合能(Bmax)も調査した。
2.材料
2.1.培養培地および試薬
HPB−ALL細胞を培養するためのRPMI−1640培地およびウシ胎児血清は、Gibco社製であった(それぞれのカタログ番号:11875−093および10091−148)。ウシ血清アルブミンはApplicChem社製であった(カタログ番号:A−0850)。細胞と試験抗体とのインキュベーションはNunc社製V底96ウェルプレート(カタログ番号:249662)上で行った。試料の調製のための微量希釈管(1.2mL)はBertec社製であった(カタログ番号:1710−00)。細胞固定は2%ホルムアルデヒドで行い、試料を0.05%BSAおよび0.05%アジ化ナトリウムを含むPBS(pH7.4)で希釈し、洗浄緩衝液は0.05%アジ化ナトリウムを含むPBS(pH7.4)であった。
マウスmAb B4およびヒト化mAb dB4の結合をそれぞれ、ヤギ抗マウスIgG−FITC(Sigma社、カタログ番号:F8264)およびヤギF(ab’)抗ヒトIgG Fcγ−FITC(Jackson ImmunoResearch社、カタログ番号:109−096−098)により追跡した。dB4−Alexa488複合体(本明細書全体を通して省略して「dB4−Alexa」と示す)は、United Biomedical社(「UBI」)の社内で調製した(UBIロット番号:0102143)。B4−ビオチン複合体はUBI製であった(ロット番号:051807)。ヒツジ抗hIgG−HRPはThe Binding Site社製であり(カタログ番号:AP004)、Extravidin−HRPはSigma Aldrich社製であり(カタログ番号:E2886)、可溶性rCD4はR&D system社製であった(カタログ番号:514−CD−050)。ペプチドp2704a HIVエンベロープはUBI社製であり、組換えgp120MNはImmunoDiagnostics社製であった(カタログ番号:1021−2)。結合の追跡のための血液CD4T細胞のゲーティングは、抗CD4(D2)−FITC抗体(Ancell社、カタログ番号:148−020)を用いて行った。参照標準としてLinearFlow(商標)緑色フローサイトメトリー強度較正キット(Green Flow Cytometry Intensity Calibration Kits)(Molecular Probe社)に含まれている蛍光ビーズを使用して、標識された細胞の相対蛍光を定量化した。使用した他の蛍光検出材料は、FITC−ChromPureヤギIgGのF(ab’)断片(Jackson ImmunoResearch社、カタログ番号:005−090−006)、CD3 PE(ASR)BD(Biosciences社、カタログ番号:340662)、CD45 PerCP(ASR)BD(Biosciences社、カタログ番号:340665)であった。
2.2.HPB−ALL細胞および末梢血CD4 T細胞
HPB−ALL細胞株(ヒト胸腺の急性リンパ性白血病細胞株)をDSMZ ACC社から得た。PBMC CD4T細胞(健康なドナーからEDTAヴァキュテーナーに新たに採取した血液)は、NHClを含む低張溶液(8.3g/L塩化アンモニウム、0.84g/L重炭酸ナトリウムおよび29.4mg/L EDTAの混合物、pH7.4)で赤血球を溶解した後の末梢血白血球(PBL)に由来していた。
2.3.マウスmAb B4およびヒト化mAb dB4
免疫原としてHPB−ALL細胞を用いるハイブリドーマ操作により、マウスのモノクローナルB4 IgG(UBIロット番号:120197)を得た。B4由来ヒト化dB4 IgG(UBI Asia社基準ロット)は、N298HでFcを非グリコシル化したものである(実施例5)。
2.4.ELISAおよびFACSでの検出
96ウェルマイクロプレートはNalge Nunc International社製であり、光学読み取りのために平底のもの(カタログ番号:442404)を使用し、細胞のインキュベーションのためにV底のもの(カタログ番号:249570)を使用した。光学濃度をVersaMaxマイクロプレートリーダー(Molecular Devices社)で読み取った。BD FACSCaliburスキャナー(DB Biosciences社)で蛍光染色を検出し、得られたデータを関連するCell Questソフトウェアにより取得した。ELISAおよびFACSからの結合データを、定量的分析のためにSigmaPlot11ソフトウェアにインポートした。
3.方法
3.1.dB4のHPB−ALL細胞への結合
3.1.1.平衡時間研究。 V底マイクロプレート上で、1ウェル当たり0.1mL中に一定分量の2×10細胞を添加し、遠心分離し、液体を捨てた。最長180分の様々な持続時間で、細胞を最大100ng/mLの各種濃度で一定分量の100μLのdB7と共に氷上でインキュベートした。指示された時間で、遊離した未結合の抗体薬剤の決定のために上澄みを回収した。添加した薬剤濃度の合計から遊離画分を減算して結合画分を計算した。
結合溶液中の遊離dB4濃度をELISAで定量化した。簡単に言うと、このアッセイでは、Nunc社製Maxisorpマイクロプレート上に被覆したヒツジ抗hIgL(0.5μg/mL)と検出タンパク質(detector protein)としてのヒツジ抗huIgG−HRP(1/1000希釈)との混合物を使用した。0.14〜18.5ng/mLの範囲の較正標準に基づき未知の試料中の濃度を測定した。
3.1.2.dB4との直接結合研究。 V底マイクロプレート上で、1ウェル当たり0.1mL中に一定分量の2×10細胞を添加し、遠心分離し、液体を捨てた。細胞を2000ng/mLまでの各種濃度の少量のdB4 100μLと共に氷上で1時間インキュベートした。インキュベーション後にdB4を除去し、新しい一定分量のdB4を最初のインキュベーションのために使用した同じ濃度で細胞に添加し、細胞を氷上でもう1時間インキュベートした。この工程をもう1回繰り返した。3回のインキュベーション(継代)を経た細胞を調べた。3回目のインキュベーション後に、細胞を1回洗浄し、300gで5分間遠心分離し、ヤギF(ab)抗huIgG Fc−FITC(250ng/mL)100μLにより氷上で30分間染色した。細胞を1回洗浄し、遠心分離後に液体を捨てた。各ウェルに一定分量の結合緩衝液200μLを添加し、フローサイトメトリー分析のために微量希釈管に移した。1試料当たり5,000細胞の投入に基づく結合強度(平均蛍光強度、MFI)をFACSで読み取った。
3.1.3.dB4の結合親和性(Kd)研究。 エッペンドルフ管において、3.1〜2000ng/mL(0.5mL)のdB4抗体を4×10細胞のHPB−ALL細胞(0.5mL)に添加し、穏やかに振盪しながら氷上で1時間インキュベートした。飽和結合の時点で絶対結合親和性を決定し、ここでは、溶液中の遊離dB4濃度([F])をELISAで定量化し、上記平衡研究の箇所で説明したように結合画分([B])を計算した。得られた飽和遊離濃度:結合濃度プロファイルを、方程式:[B]=Bmax・{[F]/([F]+Kd)}(式中、[B]および[F]はそれぞれ結合濃度および遊離濃度を表す)に基づくカーブフィッティングによりSigmaPlotで分析した。
3.1.4.dB4およびB4のB4−ビオチンとの競合。 sCD4(0.5μg/mL)およびp2704aペプチド(2.0μg/mL)の混合物で被覆した平底マイクロプレート上で、一定分量の0.1mLのdB4またはB4を0.78〜100μg/mLでB4−ビオチン(10μg/mL)の存在下で添加し、室温で1時間インキュベートした。捕捉混合物への競合結合後に、結合したB4−ビオチンをExtravidin−HRPで検出し、ELISAリーダーで測定した。
3.1.5.dB4およびB4のdB4−Alexaとの競合。 V底マイクロプレート上で、1ウェル当たり0.1mL中に一定分量の2×10細胞を添加し、遠心分離し、液体を捨てた。細胞をdB4−Alexa(250ng/mL)の存在下で一定分量の100μLのdB4またはB4(最大2000ng/mL)と共に氷上で1時間インキュベートした。細胞を1回洗浄し、遠心分離後に液体を捨てた。各ウェルに、一定分量の200μLの結合緩衝液を添加し、フローサイトメトリー分析のために微量希釈管に移した。1試料当たり5,000細胞の投入に基づく結合強度(平均蛍光強度、MFI)をFACSで読み取った。
3.1.6.dB4C7およびgp120MNのdB4C7−Alexaとの競合。 V底マイクロプレート上で、1ウェル当たり0.1mL中に一定分量の2×10細胞を添加し、遠心分離し、液体を捨てた。細胞をdB4−Alexa(250ng/mL)の存在下で一定分量の100μLのdB4C7またはgp120MN(最大200nM、約30μg/mL)と共に氷上で1時間インキュベートした。細胞を1回洗浄し、遠心分離後に液体を捨てた。各ウェルに、一定分量の200μLの結合緩衝液を添加し、フローサイトメトリー分析のために微量希釈管に移した。1試料当たり5,000細胞の投入に基づく結合強度(平均蛍光強度、MFI)をFACSで読み取った。
3.2.dB4の血液CD4+Tリンパ球への結合
3.2.1.dB4の温度依存性結合の研究。 IV投与後にdB4(UB−421)がCD4T細胞上のCD4受容体に結合する(CD4受容体を被覆または占有する)生理学的環境を模倣するために、研究室職員から新たに採取した一定分量のEDTA−血液を、希釈緩衝液中に最大100μg/mLの濃度の等体積のdB4と共に37℃でインキュベートした。比較のために、別の試料セットを氷上で同時にインキュベートした。1時間のインキュベーション後に、試料を20倍の体積のRBC溶解緩衝液により室温で10分間溶解して末梢血白血球(PBL)画分を得た。
PBL画分を遠心分離し、洗浄し、次いで1.0%BSAおよびアジ化ナトリウムを含む等体積のPBS緩衝液(例えば、希釈緩衝液0.1mLを含む血液0.1mL)で再構成した。PBL試料を氷上で、ヤギF(ab)抗hIgG Fc−FITC、抗CD3−PEおよび抗CD45 perCPの混合物0.1mLにより30分間染色した。洗浄後、試料を2%ホルムアルデヒドで固定し、10,000細胞の投入に基づくFACS分析に供した。Tリンパ球集団を抗CD3−PEを用いてゲーティングした。
3.2.2.直接結合。 3人の男性および3人の女性の対象においてdB4の血液CD4+T細胞への直接結合を定め、ここでは、対象らの新たに採取したEDTA−血液をdB4と共に37℃で1時間インキュベートした。mAb dB4はCD4+T細胞に結合し、0.2〜200ng/mLの濃度範囲で見かけ上の飽和に達したのが分かった。Tリンパ球集団を抗CD3−PEを用いてゲーティングした。この実験手順は温度依存性結合研究の箇所において上述の手順と同じであり、ここでは細胞をヤギF(ab)抗hIgG Fcγ−FITCにより染色してdB4結合を追跡した。
3.2.3.遊離結合部位。 上記確定的な直接結合研究と同時に、dB4結合よりも後で遊離結合部位のレベル(完全な受容体占有前)を個々の3人の男性および3人の女性対象のそれぞれについて同時期に調査した。この実験手順は、250ng/mLの固定量のdB4−Alexaを使用して占有されていない遊離結合部位のレベルを明らかにしたこと以外は、直接結合について上で説明した手順と同じであった。
3.2.4.較正ビーズ。 直接結合および遊離結合部位を同時に調査するために、2種類のMolecular Probe社製LinearFlow(商標)キット(カタログ番号:L14821およびL14823)の組み合わせを用いて、6種類の異なる時期のそれぞれについて対数(MFI):対数(ビーズ%)の標準曲線を作成した。このキットの組み合わせにより、フローサイトメトリー実験で使用するための広範な較正範囲の高い/低い強度標準が得られる。参照標準としてこれらの蛍光ビーズを使用して、ヤギF(ab)抗hIgG FcR−FITCまたはdB4−Alexaで標識した細胞について相対蛍光を定量化した。
4.結果および考察
4.1.CD4陽性HPB−ALL細胞におけるdB4の結合プロファイルおよびその絶対結合親和性(Kd)の決定
4.1.1.HPB−ALL細胞に対する結合活性の平衡。 リガンド−受容体結合反応に関する完全な特性評価の前に、各種濃度のリガンドについて平衡に達する時間の長さ、即ち結合速度(on-rate)が解離速度(off-rate)と等しくなる平坦域状態を定めた。濃度が低くなるにつれて平衡に達するのに要する時間が長くなることは一般的に知られている。
氷上でインキュベートしたCD4陽性HPB−ALL細胞におけるdB4−CD4相互作用の場合、結合率(%)値において平坦域に達するのに、2.0ng/mLの濃度で約60分、50ng/mLの濃度で約15分を要した。100ng/mL(0.1μg/mL)以上のレベルにおけるdB4濃度では、ほぼ即時の平坦域が観察された。
これらの結果は、広範囲の濃度(例えば、2.0ng/mL以上の濃度)ではdB4結合反応を1時間行うことができることを示している。リガンド−受容体複合体の潜在的なエンドサイトーシスを回避するために、低温および/または0.05%アジド下でこの結合研究を行った。室温または37℃でのインキュベーションにより、より早く反応平坦域に到達させることができる。この上記計画した条件下で、3種類の異なる細胞継代を有するHPB−ALL細胞をdB4と共に氷上で1時間インキュベートした。ELISAによる遊離薬剤濃度の決定のために上澄みを回収し、全体からの減算により結合画分を得た。図8に示す結合曲線を用いて、絶対結合親和性および最大結合能を計算した。
4.1.2.HPB−ALL細胞への直接結合。 3種類の異なる時期(細胞継代)において、2×10個のHPB−ALL細胞を最大約2000ng/mLのdB4と共に氷上で1時間インキュベートすると、本抗体は4つのパラメータのロジット関数により特徴づけられる飽和結合プロファイルを示した(ここでは、結合の程度をヤギF(ab)抗huIgG Fc−FITCにより検出して平均蛍光強度(MFI)として表した)。結合は、200ng/mL(0.2μg/mL)以上で飽和に近づいた。継代間にほとんどばらつきはなく(n=3)、平均結合EC50を42.2ng/mLと推定した(表8)。また、継代間の比較のために絶対MFI値をMFI率(%)に正規化した。このようにして標準偏差を最小にし、EC50値を本質的に同じままにし、両方の平均曲線の全体的な平均結合EC50値を42.9ng/mLと推定した(表8)。
4.1.3.HPB−ALL細胞における結合親和性(Kd)および最大結合能(Bmax)。 インキュベーション(氷上で1時間)後の上澄みの回収により、遊離(未結合)dB4濃度[F]のELISAによる決定および、ひいては添加した(総)濃度からの減算による結合濃度[B]が可能となった。表9に示す遊離薬剤:結合薬剤のプロファイルを用いて、dB4の絶対結合親和性の推定を行った。平均Kdを5.6×10−11M(範囲:3.1〜8.1×10−11M)と推定し、Bmaxを1細胞当たり1.2×10Ab(範囲:0.93〜1.4×10)と推定した。これらの結果は、dB4が例外的に高い親和性でHPB−ALL細胞上のCD4受容体に結合し、かつHPB−ALL細胞が、最大で1細胞当たりのdB4に対する百万超の結合部位により高い密度を有することを示した(表9)。HPB−ALL細胞上のCD4受容体密度は、1細胞当たり約3.2〜6.1×10個の結合部位であった血液CD4+Tリンパ球の密度よりも少なくとも20倍高かった。
4.2.HPB−ALL細胞への結合におけるdB4およびB4の比較
マウスB4抗体をdB4に脱免疫化する方法によるヒト化が結合親和性を変化させるか否かという問題を、競合設計を用いる2種類の技術的評価方法(technical account)で徹底的に調査した。
第一に、mAb B4およびmAb dB4の結合親和性を、可溶性CD4(sCD4)およびp2704aペプチドの捕捉混合物で被覆したELISAプレートで調べた。p2704aペプチドは、HIV−1がCD4細胞に侵入するために結合するCCR5上のエピトープ配列を含むため、CD4−CCR5受容体複合体を模倣する。ELISAにより分析したとき、各種濃度のmAb B4またはmAb dB4の存在下で、B4−ビオチンの被覆されたsCD4/p2704a混合物への結合は阻害された。mAb B4またはmAb dB4抗体が同時に存在し、かつ捕捉タンパク質混合物への結合のためにB4−ビオチンと競合しているとき、B4−ビオチンの結合は、B4およびdB4によってそれぞれ5539ng/mLおよび8191ng/mLのIC50値で阻害された(図9)。B4:dB4のIC50比は0.68であり、これは、ヒト化dB4がマウスB4抗体と比較的同程度の結合親和性を有することを示している。
第二に、B4またはdB4抗体が同時に存在し、かつ細胞のCD4受容体への結合のためにdB4−Alexaと競合している場合の相対的結合親和性もCD4陽性HPB−ALL細胞を用いて調べた。FACSで分析すると、dB4−Alexaの結合は、B4およびdB4によりそれぞれ135および197ng/mLのIC50値で阻害された(図10)。B4:dB4のIC50比は0.69であり、これはELISA模範(paradigm)によって実証されたものと実質的に同じあり、これも、ヒト化dB4がマウスB4抗体と比較的同程度の親和性でCD4受容体に結合することを示している。
親抗体B4およびそのヒト化抗体dB4C7(UB−421)を用いたこの比較的競合結合阻害研究により、一連の濃度(100〜104ng/mL)にわたる抗体濃度に対する平均蛍光強度(MFI)で測定したCD4陽性T細胞(HPB−ALL)に対する抗体結合プロファイルが得られた。この研究により、MT2およびPBMCアッセイシステムの両方における両抗体のそれぞれの中和活性が同等の中和抗体活性を有するという表5および表6に示されているデータがさらに立証された。
これらの比較研究で得られた結果から、脱免疫化技術によるヒト化が、その親マウス抗体B4と比較したとき、dB4C7(UB−421)のCD4受容体に対する結合親和性を著しく減少させなかったことが示唆される。
4.3.mAb dB4のCD4に対する結合特性
mAb dB4のCD4に対する結合特性を評価した。
4.3.1.mAb dB4の可溶性CD4対細胞結合CD4への結合。 上記で考察したように、dB4は、ELISAで評価したとき、8191ng/mLのIC50でB4−ビオチンのsCD4/p2704aへの結合を阻害し(図9)、FACSで調べたとき、dB4は、197ng/mLのIC50でdB4−AlexaのHPB−ALL細胞への結合を阻害した(図10)。これらのデータから、興味深いことに、dB4が可溶性CD4(sCD4)と比較してCD4陽性T細胞に対して非常に高い結合親和性を有することが実証されている。具体的には、2つの研究のIC50値を比較することにより、dB4の結合親和性がsCD4と比較してCD4陽性T細胞に対して40倍高いことが分かった。
4.3.2.HPB−ALL細胞への結合におけるdB4およびgp120MNの比較。 dB4およびHIV gp120MNのCD4陽性T細胞に結合したCD4に対する結合親和性を比較するために競合研究を行った。具体的には、dB4−AlexaがHPB−ALL細胞上のCD4に結合するのを阻害するdB4およびgp120MNの能力を比較した(図11)。最初の研究では、dB4は1.8nMのIC50で、dB4−AlexaがHPB−ALL細胞上のCD4に結合するのを阻害した。比較研究では、gp120MNは97.2nMのIC50で、dB4−AlexaがHPB−ALL細胞上のCD4に結合するのを阻害した。これらの結果により、dB4がgp120MNと比較してHPB−ALL T細胞上のCD4に対する実質的により高い結合親和性を有することが分かった。具体的には、2つの研究のIC50値を比較することにより、dB4のCD4に対する結合親和性がgp120MNの結合親和性よりも少なくとも50倍高いことが分かった。
4.3.3.dB4およびgp120MNのCD4に対する結合親和性の比較。 上記で考察したように、mAb dB4は、約5.6×10−11Mの結合親和性(Kd)でCD4に結合する(表9)。以前に他の研究者によって、HIV−1 gp120が約5×10−9Mの高い結合親和性(Kd)でCD4分子のドメイン1の周りに結合することが結晶学的研究により発見されている(Myszka, D. G.ら、“Energetics of the HIV gp120-CD4 binding reaction”Proc Natl Acad Sci USA.Aug 1, 2000; 97(16): 9026-9031)。したがって、dB4およびgp120のKd値を比較することにより、dB4のCD4に対する結合親和性がgp120の結合親和性よりも約100倍高いことが分かる。この結果は、dB4がIC50値の比較に基づきgp120MNよりも少なくとも50倍強くHPB−ALL細胞に結合するという上記発見に一致している。
全体的なインビトロ結果は、dB4が、HIVウイルス侵入を防止または遮断することによりHIV−1感染を阻止または減少させる能力を有することを示唆している。
4.4.dB4(UB−421)の血液CD4+T細胞への温度依存性結合
正常な体温(37℃)におけるヒトの血液中でのCD4+T細胞へのdB4の結合を調べて、dB4をヒト対象への処置薬として有効に投与することができるか否かを決定した。ヒトの体の生理学的環境を模倣するために、dB4C7(UB−421)を新たに採取した血液と共に37℃で1時間インキュベートし、RBC溶解手順によって末梢血白血球(PBL)試料を得た。氷上(4℃)でのインキュベーションも同時に行った。次いで、PBL画分をヤギF(ab)抗huIgG−FITCで染色して、dB4のCD4ゲーティングされるT細胞上のCD4受容体への直接結合を可視化した。
4℃でインキュベートした場合と比較して、マウス抗CD4(D2)−FITCのMFIにおいて変化が観察されなかったため(データは示さない)、細胞のdB4との37℃で1時間のインキュベーションによりリガンド−受容体のエンドサイトーシスは引き起こされないように見えた。50〜1000ng/mLのCD4+T細胞のゲーティングのためのマウス抗CD4(D2)−FITCおよび最大200ng/mLの濃度のdB4(CD4受容体のD1ドメインを標的にする)は、結合のために競合しなかった。
1人の女性の個体の血液試料において示されているように(図12)、末梢血単核細胞(PBMC)をdB4と共に2種類の異なる温度37℃または4℃で1時間インキュベートした。FACSでのdB4結合の観察のために、ゲーティングされるCD4+T細胞を染色した。図12は、それぞれ4.8ng/mLおよび23.0ng/mLのIC50値に基づき、dB4が4℃よりも37℃において5倍高い親和性でCD4受容体に結合したことを示している。期待されたとおり、dB4は両温度条件下で同じ最大結合MFIに達した。MFI値は、特にこれらの値を正規化してMFI率(%)として表した場合の受容体の占有の程度を反映している。
4.4.1.dB4の血液CD4+T細胞への直接結合。 正常な体温(37℃)におけるヒトの血液中でのdB4のCD4+T細胞への結合プロファイルも調べた。6人のヒトの成人(3人の男性と3人の女性)から新たに採取した血液を用いて、dB4の血液CD4+細胞への直接結合活性を6種類の異なる時期に評価した(表10)。1時間のインキュベーション後に、末梢血白血球を単離し、ヤギF(ab)抗huIgG Fc−FITCで染色し、CD4ゲーティングされるT細胞に結合したdB4をFACSで分析した。蛍光読取りのために試料を基準ビーズで較正した。結合(EC50)値は2.6ng/mL〜5.7ng/mLであり、平均EC50は4.1ng/mLであることが分かった。また、最大MFI(%)値は68%〜93%の範囲であり、その平均は77.8%であった(表10)。これらの結果は、結合親和性および受容体密度のそれぞれにおける重要性の低い対象間のばらつきを反映している。
4.4.2.mAb dB4による受容体占有後の遊離CD4結合部位。 4℃でのdB4の血液CD4+細胞への直接結合(ヤギ抗hIgGにより検出)と共に、CD4+細胞上の占有されていない遊離CD4結合部位をdB4−Alexaにより評価した。
dB4の非存在下では、dB4−Alexa複合体は単独で、約250ng/mLにおいて約100%のその最大結合に近づくことができた(図13)。500ng/mLよりも高い濃度では、dB4−Alexa複合体は、結合されたdB4の約10%以上を追い払うことができた(データは示さない)。具体的には、飽和に近づくレベルの250ng/mLにおいて受容体がdB4によって占有された場合、dB4−Alexa(250ng/mL)のCD4受容体への結合は完全に阻止された。
dB4の存在の減少に伴う受容体占有における低下は、dB4−Alexaの結合の増加と同時であることが観察された。受容体占有の程度は、遊離結合部位のレベルと対称的に同時に変化し、約4.0ng/mL(図13)で交差する両曲線は、それらの結合EC50値と一致している(表10)。
したがって、全体的な結果は、250ng/mLでのdB4−Alexaのインビトロでの使用は、MFIおよびMFI率(%)と共に、dB4C7(UB−421)をヒト対象に投与した後にインビボで受容体占有を調べるための適当な模範になり得ることを示唆している。
5.結論
1.mAb dB4は異常に高い活性によりHPB−ALL細胞上のCD4受容体と反応し、50ng/mLよりも高い濃度では氷上で即座に平衡に達した。その絶対結合親和性(Kd)を5.6×10−11Mと推定し、最大で1.2×10個のdB4分子(Bmax)が、正常な血液CD4+T細胞の密度よりも少なくとも20倍高い受容体密度を有する単一のHPB−ALL細胞に結合することができた。
2.マウスB4のmAb dB4へのヒト化は、dB4のCD4受容体に対する結合親和性を著しく変化させない。分子に基づくELISA(sCD4およびCCR5エピトープ含有ペプチドp2704aで被覆)ならびにHPB−ALL細胞を用いる細胞に基づくFACSを使用する結合阻害設計により、B4:dB4のIC50比が両研究において約0.7であることが観察されたため、両抗体はトレーサーであるB4−ビオチンまたはdB4−Alexaの結合を同等に阻止する。
3.dB4抗体は、HIV−1エンベロープタンパク質gp120MNの親和性よりも少なくとも50倍高い親和性でCD4受容体に結合する。具体的には、HPB−ALL細胞を用いる結合阻害研究により、dB4およびgp120MNがそれぞれ1.8および97.2nMのIC50値でトレーサーであるdB4−Alexaの結合を阻害することが実証された。この結果は以前に報告された組換えgp120よりも約100倍高いdB4の高い結合親和性(Kd)とも一致する。
4.mAb dB4はHPB−ALL細胞に対する同様の結合親和性で血液CD4+T細胞に結合する。低温条件(4℃)下では、dB4は約23.0ng/mLのEC50を有し、正常な体温(37℃)下では、結合EC50値が4.8ng/mLと推定されるため、dB4は約5倍より高い親和性で血液CD4+T細胞に結合する。
5.6人のヒト対象から採取した血液試料の研究により、dB4濃度とCD4受容体占有との間に直接的(反比例の)相関があることが確認された。図13に示す対向する曲線は約4.0ng/mLで交差し、これはCD4に対するdB4の平均EC50結合値と一致する。これらの全体的な結果は、dB4−Alexa(250ng/mL)のインビトロでの使用は、蛍光ビーズで較正されたMFI率(%)の測定値と共に、dB4C7(UB−421)をヒト対象に投与した後のインビボでの受容体占有の調査にとって適当な模範になり得ることを示唆している。
実施例8
抗体B4はHIVの無細胞および細胞間伝播の両方を有効に阻害する
HIV粒子は古典的に、無細胞伝播により体内中に広がり、そこでHIVウイルスは血流および局所環境の中に拡散して細胞を感染させる。このウイルスは、密接な細胞間接触を必要とする機序により、感染細胞から非感染細胞に直接移動する能力も有する。感染細胞が非感染細胞との安定な接触点を形成したとき、そのような伝播が生じ、HIV粒子を非感染細胞に直接伝播させる。細胞間伝播は、無細胞伝播と比較して、より効率的かつより速く、血流の中への拡散を必要としない。
無細胞ウイルスから生じる感染は、抗レトロウイルス剤テノホビルの存在下で大きく減少するが、細胞間伝播を伴う感染は共培養アッセイにおいてこの薬剤に対して非常に感度が低いことを、Sigal, A.ら、2011は報告した(図14)。この感度の低さは、薬剤の存在下で複数回の感染が終結するのを防止するのに十分であった。この著者らは、確率的感染モデルを用いて臨床的薬剤濃度の存在下で細胞間伝播による複製を調査し、突然変異株の大きな蓄積がなく複製が断続的であることを見出した。細胞間伝播がインビボで同じ特性を有する場合、これは免疫系に対して悪影響を有し、危険因子を有する個体における療法の失敗に繋がり、かつ潜在的にウイルスの存続に寄与する可能性があり、故に、HIV感染の治癒に対する障壁となり得る。
したがって、処置におけるその潜在的な効果の評価のために、mAb B4およびmAb dB4関連抗体がHIVの細胞間伝播を阻害する能力および効力を評価することが重要である。
1.HIVの細胞間伝播の抗体媒介性阻害を測定するためのアッセイ
1.1.材料および方法
1.1.1.細胞およびウイルス。 表面CD4の発現が低いという理由から、レポーター遺伝子ルシフェラーゼがHIV−1ゲノム内に組み込まれたJurkat−inGLucクローン(NIH AIDS研究および試薬プログラム(NIH AIDS Research and Reagents Program))をドナー細胞として選択して、標的初代CD4+T細胞との共培養実験においてドナー間感染を最小限に抑えた。感染細胞においてレポーター遺伝子ルシフェラーゼを発現させてウイルス感染のマーカーとして使用することができる。感染細胞においてウイルスによって発現されたこれらのレポーターを測定して、HIV−1感染を定量化することができる。初代CD4T細胞を標的細胞として使用した。分岐群DのウイルスUG266およびUG046をこの研究で使用した。
1.1.2.ウイルス細胞間伝播アッセイ。 このアッセイでは、指示されたHIV−1株と混合する前にドナーを連続希釈した抗体B4と共にプレインキュベートし、細胞の約10〜75%がGagになった数日後に使用した。次いで、ドナーおよびCD4陽性PBMC標的細胞を1:2の比で、96ウェルプレート内で200μL中に1.5×10細胞/mlの最終濃度で混合した。48時間後、細胞内Gagについて細胞を染色し、フローサイトメトリーで分析した。培養物の上澄み中に蓄積したGLucを、BioLuxガウシアルシフェラーゼアッセイキット(New England Biolabs社)およびBerthold Technologies社製ルミノメーターを用いて検出した。
1.1.3.IC50およびIC90の計算。 データをS字状の用量反応曲線(可変勾配)に当てはめて用量反応阻害曲線を描いた。阻害率を(未処置標的細胞におけるシグナルの割合−抗体処置細胞におけるシグナルの割合)/(未処置標的細胞におけるシグナルの割合)×100として定めた。それに応じて、IC50およびIC90を計算した。
2.結果および考察
表11は、抗体B4が厳しい90%侵入阻害基準によって測定したとき、HIV(分岐群Cのウイルス株UG266およびUG046)の細胞間および無細胞伝播を等しく阻害できたことを示している。具体的には、UG266およびUG046ウイルス株の融合阻害力価が細胞間伝播アッセイにおいて1:140および1:245であることが分かり、これは、無細胞伝播中和アッセイにおける1:136および1:234のそれぞれの中和力価に匹敵していた。50%侵入阻害基準によって測定したとき、対応する無細胞伝播と比較した細胞間伝播について、この2種類の株のより高い融合阻害力価が観察された。
これらの結果から、抗体B4が、HIV Envタンパク質を標的にする全ての他の中和モノクローナル抗体およびこれまで測定された他のART剤と比較したとき、HIVの細胞間および無細胞伝播の両方を阻害するその能力において珍しい性質を有することが実証される。これらの結果から、mAb B4およびmAb dB4関連抗体は、個体におけるHIVウイルスの無細胞および細胞間伝播を防止するための他にはない能力を有することが示唆される。
実施例9
抗体UB−421(dB4C7またはdB4)はHIV感染した個体におけるウイルス複製を増強させるための休止PBMCの再活性化を媒介する
1.背景
HIV−1は、休止末梢血単核細胞(PBMC)を感染させるが、その後の細胞活性化まで不活性なままである。静止PBMC内に隠れた潜伏HIV−1を模倣する、休止T細胞の非増殖性(nonproductive)感染を可能にする細胞培養条件およびプロトコルを用いるインビトロモデルを使用して、これらの休止PBMCに対する熱不活性化(heat-inactivated)HIV−1(iHIV−1)またはgpl20−抗gpl20免疫複合体の刺激効果を調査した(Briant, L.ら、1996)。
CD4と熱不活性化HIV−1(iHIV−1)またはgpl20−抗gpl20免疫複合体のエンベロープ糖タンパク質とが結合することにより、架橋によりNF−kB(即ち核転座)およびAP−1の活性化を制御するシグナル伝達経路が刺激され、次いでCD4の細胞外ドメイン1(D1)および細胞質内ドメインならびに幾種かのキナーゼ(Lck、Raf−1、MEKおよびERK)に関与して細胞周期進行が誘導され、活性化マーカーCD25の細胞表面発現が促進され、かつプロウイルスの組込みが刺激され、かつ細胞にウイルスの産生を委ねるのに十分であることが実証された。
Thanらの別個の科学的発見(Thanら、1997)により、抗CD4モノクローナル抗体によるgp120結合部位におけるCD4分子の架橋が、HIV感染した患者から潜在的に感染したPBMCを誘導してウイルス複製を促進させることがさらに確認された。この研究で使用した抗CD4 mAbは、CD4のD1のCDR2ループに結合するLeu3aであった。具体的には、Leu3aは、CD4のドメイン1にaa47−64を有するペプチドによって代表される直線状エピトープに対する抗体である(Chiba,Y. 1992)。
さらに、休止PBMCにおけるウイルスの再活性化は、CD4のドメイン1(Dl)のCDR2ループに対するモノクローナル抗体によって特異的に誘導され、D1のCDR3またはその近傍のD1/D2接合領域などの他のエピトープに対する抗体によって誘導されないことが分かった(Briant, L.ら、1999)(図15、レーン4をレーン5および6と比較)。そのようなウイルスの再活性化は、CDR2ループリガンドを可溶性CD4(sCD4)で予め吸収することにより防止することができる(図15、レーン4をレーン8と比較)。
したがって、ドメイン1領域の周りにCD4との高い結合親和性を有する抗体dB4C7(UB−421)が、HIV感染した個体におけるウイルス複製の増強のための休止PBMCの再活性化を媒介することができるか否かを評価することが重要であった。
2.CD4のD1の周りのB4/dB4立体構造結合部位の改善
2.1.逆順では生じないmAb B4によるLeu3aのチンパンジーCD4陽性PBMCへの結合の競合的連続結合阻害
2匹の対象(X282およびX301)から単離したチンパンジーPBMC細胞ならびにmAb B4(FITCで標識)およびLeu3a(PEで標識)をこの研究で使用した。PBMCを連続的にそれぞれの抗体で染色し、細胞蛍光(cytofluorography)で分析した。この実験から得られたデータは表12に報告されており、以下に説明する。
単標識の対照試料において、Leu3aで染色された細胞のみがLeu3a−PE結合について試験で陽性反応を示し、mAb B4で染色された細胞のみがB4−FITC結合について試験で陽性反応を示した。具体的には、感染されていないチンパンジー試料(X282およびX301)中のCD4+細胞(Leu3aで検出)はそれぞれ25.5%および44.0%であり、mAb B4で検出した割合と同様であった(26.1%および45.5%)。
Leu3aを先に結合させ、その後にmAb B4に曝露すると、Leu3aまたはB4のみで染色された単標識の対照細胞と同様の二重染色された(Leu3a+/B4+)PBMC細胞数(即ち、X282およびX301についてそれぞれ24.5%および46.7%)が得られた。
対照的に、mAb B4を先に結合させ、その後にLeu3aに曝露すると、mAb B4のみで染色されたPBMCが得られ、単一または二重染色手順のいずれにおいてもLeu3a陽性染色は認められなかった。
まとめると、これらの結果からLeu3a−PEに対する抗体B4−FITCによる一方向の阻害が実証される。つまり、Leu3aを先に結合させてもB4結合は阻止されないが、B4結合を先に結合させることによりLeu3a結合は阻止される。これらのデータは、mAb B4は抗体Leu3aによって認識されるCD4ドメイン1のCDR2領域を覆う立体構造エピトープを認識し、かつmAb B4は抗体Leu3aと比較してより高い親和性でCD4のこの領域に結合するという結論を支持している。
2.2.HIV RCペプチド(aa39−66)に対する免疫血清によるB4のrsCD4への結合のELISAによる競合的阻害
CD4ドメイン1のCDR2領域に対する免疫血清を用いる競合的阻害研究により、mAb B4の全長組換え可溶性CD4(rsCD4)に対する結合親和性を評価した。
2.2.1.抗HIV RCポリクローナル抗体。 モルモットをCD4のaa39−66を含む環状ペプチドで免疫化して、CD4ドメイン1のCDR2領域に対するポリクローナル抗体を調製した。この環状ペプチドをこの研究ではHIV受容体複合体ペプチド(HIV RCペプチド)と呼ぶが、「Wangら、2002」において以前はペプチドp2240cと記載されていた。
具体的には、4〜6週齢のDuncan Hartleyモルモットを、0週目に完全フロイントアジュバント、3週および6週目に不完全フロイントアジュバントと混合した1回の用量当たり0.5ml中に100μgのHIV RCペプチドで筋肉内免疫化し、次いでその後に不完全フロイントで毎月追加免疫化した後の指定された時点で、HIV RCペプチドに対するモルモット血清を得た。
得られたポリクローナル抗体を「抗HIV RCポリクローナル抗体」と称す。
2.2.2.抗HIV RCポリクローナル抗体によるB4のrsCD4への結合の競合的阻害。 1ウェル当たり0.1mLで0.08μg/mLの全長rsCD4で被覆した96ウェルマイクロタイタープレートを用いて、競合的阻害実験を行った。これらのウェルを、ビオチン化B4抗体による結合およびその後のトレーサーとしてのアビジン−HRP複合体による結合前に、1:30で希釈したHIV RCペプチド(CD4のaa39−66)に対する免疫原で免疫化した後0、3、6、9、12、14、16および19週目に回収したモルモット血清と共にインキュベートした。同じ期間を通して回収した未免疫モルモットからの陰性対照血清(RCアイソタイプ)も試験した。
図16は、ビオチン化B4のrsCD4への結合が、初回免疫後6週目に得られた抗HIV RCポリクローナル抗体により著しく阻害され、初回免疫後9週目までにほぼ完全な阻害に達していることを示している。
この競合結合阻害研究により、mAb B4の結合部位がCD4のドメイン1のCDR2ループの周りにあるが、mAb B4によるこのペプチドへの直接結合は、mAb B4が膜結合型CD4の立体構造の輪郭に優先的に結合するため、重要ではないことがさらに実証された。
2.3.mAb dB4の架橋によるHIV感染した個体におけるウイルス産生の増強のための休止CD4陽性T細胞の再活性化
細胞をmAb dB4で処置し、かつTNF−α産生、ウイルス量および細胞増殖を監視することにより、mAb dB4が休止CD4+細胞を活性化する能力を評価した。
この研究では、プレートをヤギ抗ヒトIgG(Jackson ImmunoResearch社)200μLと共に37℃で1時間インキュベートすることにより、8ウェル培養プレートをヒトIgGで被覆した。被覆プレートは、この研究でさらに使用するまで4℃の冷蔵庫に保存した。
HIV患者のPBMCを、標準的な作業方法に従って1.5時間解凍した。後述するように、PBMCをmAb dB4(実験用)、PMA+PHA(陽性対照)又は培地のみ(陰性対照)のいずれかで処置することにより、休止CD4+細胞の活性化を評価した。
2.3.1.mAb dB4処置。 細胞を濃度3μg/10細胞/mLのmAb dB4を用いて4℃で1時間処置して、細胞上でCD4の架橋を開始させた。次いで、mAb dB4で処置した細胞を洗浄し、RPMI培地及び10%FBSを含む被覆した48ウェル培養プレート上で7日間培養した。未被覆ウェルも陰性対照として使用した。一定分量の培養物の上澄みを後日の評価のために、0日目、2日目及び7日目に凍結させた。4℃で30分間処置した後に細胞から上澄みを除去して、0日目の時点のmAb dB4試料を得た。
2.3.2.PMA+PHA処置。 休止CD4+細胞を再活性化させるための陽性対照としての0.1μMフィトヘマグルチニン(PHA)+15μg/mL酢酸ミリスチン酸ホルボール(PMA)(Sigma社)(PMA+PHA)を用いて、RPMI培地および10%FBSを含む被覆した48ウェル培養プレート上で細胞を7日間処置した。未被覆ウェルも陰性対照として使用した。一定分量の培養物の上澄みを後日の評価のために、0日目、2日目および7日目に凍結させた。4℃で30分間処置した後に細胞から上澄みを除去して0日目時点のPMA+PHA試料を得た。
2.3.3.培地のみ。 陰性対照として、細胞をRPMI培地および10%FBS(培地のみ)を含む被覆した48ウェル培養プレート上で7日間インキュベートした。未被覆ウェルもさらなる陰性対照として使用した。一定分量の培養物の上澄みを後日の評価のために、0日目、2日目および7日目に凍結させた。培地における4℃で30分間のインキュベーション後に細胞から上澄みを除去して、0日目時点の培地のみの試料を得た。
2.3.4.CD4+再活性化の分析。 TNF−α産生、ウイルス量および細胞増殖を評価することにより、CD4+細胞の再活性化を測定した。この研究の結果は表13に要約されている。
全ての試料の一定分量を標準的な方法を用いて、(1)定量的ELISAによるTNF−αの濃度、(2)RT PCRによるHIVウイルス量、(3)細胞数、および(4)トリパンブルーによる生存度についてアッセイした。
具体的には、当該データは、HIV患者から得たmAb dB4で被覆されたPBMC細胞の架橋により、培地のみの陰性対照(検出不能)およびPMA+PHAで刺激された細胞と比較したとき、TNF−αの適度な産生が引き起こされた(mAb dB4で被覆された細胞よりも約3〜5倍高い)ことを示している。
また、mAb dB4試料は培地のみの陰性対照と同様の速度で増殖した一方;PMA+PHA刺激細胞は、mAb dB4で架橋された細胞と比較して一段と増殖した(細胞数は7日目にmAb dB4培養物よりもPMA+PHA培養物において5倍高かった)。
しかし、HIVウイルス量は、培地対照およびPMA+PHA刺激細胞と比較して、mAb dB4で架橋された細胞において著しく増加した。具体的には、mAb dB4で架橋された細胞は、培地のみの陰性対照と比較したとき、2日目および7日目にそれぞれ151%および220%のウイルス量の増加を示した一方;PMA+PHA培養物は、細胞増殖における5倍の増加にも関わらず、最適以下のウイルス量産生を示した(2日目および7日目にそれぞれ55%および78%)。
3.結論
1.マウスmAb B4は、抗体Leu3aによって認識される部位に近いCD4上の立体構造部位(CDR2領域内のaa47−64)を認識することが分かった。mAb dB4は、実施例7で報告されている比較研究によれば、mAb B4について本明細書に記載されている同じ認識特性を有することが期待される。
2.マウスmAb B4の全長rsCD4への結合は、CD4ドメイン1のCDR2領域のaa39−66を含む環状ペプチド(HIV RCペプチド)に対するポリクローナル抗体により阻害された。これらの結果から、mAb B4はCD4のD1のCDR2ループに対応するCD4のaa39−66を認識することが示唆される。mAb dB4は、実施例7で報告されている比較研究によれば、mAb B4について本明細書に記載されている同じ認識特性を有することが期待される。
3.mAb dB4によるCD4の架橋は、HIV感染したPBMC CD4+T細胞においてウイルス産生を活性化することが分かった。具体的には、表13に示すようにmAb dB4は、TNF−α産生の誘導を引き起こし、細胞増殖を誘導することなくHIV産生を増強させた。
4.この実施例で得られた結果によれば、mAb dB4(UB−421を含む)は、HIV感染した個体におけるウイルス産生の増強のための休止PBMCの再活性化を媒介することができる。
実施例10
mAb dB4C7および抗HIV RCポリクローナル抗体はCD4陽性T細胞による抗原誘導性T細胞増殖およびサイトカイン(IL2およびIFN−γ)産生を阻害し、このようにしてピロトーシスのHIV病理発生サイクルを破壊する
1.背景
最近の報告により、HIVが活性化された許容状態のCD4+T細胞を感染させた場合、カスパーゼ−3依存性アポトーシスを介して細胞死が静かに生じることが分かっている(Doitsh, G.ら、2014)。逆に、R5またはX4指向性HIVのいずれかがリンパ系組織からの非許容状態の静止CD4+T細胞を不稔感染させたとき、これらの細胞は、カスパーゼ−1依存性ピロトーシス(高炎症型のプログラム細胞死)により死滅する。インターフェロン誘導因子16(IFI16)は、不完全なHIV逆転写物を認識し、次いでカスパーゼ−1の活性化を開始する宿主DNAセンサーとして同定されている(Monroe, K. M.ら、2013)。扁桃腺、リンパ節および脾臓を含む大部分のヒトリンパ系組織では、活性化された許容状態の細胞のサブセットは、総CD4 T細胞の5%以下を表し、非許容状態の静止細胞は、HIVが遭遇する標的の95%以上を表す。したがって、カスパーゼ−3媒介性アポトーシスでなくカスパーゼ−1媒介性ピロトーシスが、これらのリンパ系組織のHIV感染後のCD4 T細胞死の促進に主に関与していると思われる。これらの発見は、R5指向性HIVに感染した対象の新しいリンパ節の分析によってさらに支持されており、この分析では、カスパーゼ−1およびIL−1βは、休止CD4 T細胞が多く存在する傍皮質領域において検出され、カスパーゼ−3活性は、生産的に感染された細胞が存在する解剖学的に異なる胚中心において検出される。
ピロトーシスは大抵の場合、細胞内複製適所(niche)を除去し、かつ炎症誘発性サイトカインおよび内因性危険シグナルの放出によって宿主の防御反応を高めることにより、各種細菌感染の急速な排除を促進する。しかし、HIV感染などの病原性の慢性炎症では、ピロトーシスは防御反応にはならず、一次感染の排除には至らない。実際に、ピロトーシスは、悪性の病理発生サイクルを生じさせると思われ、ここでは、瀕死のCD4 T細胞が炎症性シグナルを放出し、これにより、より多くの細胞を、感染したリンパ系組織内に引き寄せて死滅させ、より多くの炎症を生じさせる。これらの事象は、疾患の進行および組織傷害に拍車をかける慢性の炎症状態を確立する。慢性炎症は、メモリCD4 T細胞の恒常的増殖を刺激する潜伏HIVリザーバーの維持も促進することがある。
CD4 T細胞の枯渇および慢性炎症の発生は、疾患の進行を早めるHIVの病理発生における特徴的なプロセスであり、ピロトーシスはこれらの2つの疾患促進プロセス間に予期せぬ繋がりを与える。
上記情報から、HIV感染中にリンパ系組織において生じるピロトーシスが、CD4+細胞の抗原刺激によって引き起こされるCD4+細胞増殖および/または炎症性サイトカイン産生を抑制する機序によって軽減または減少し得ることが示唆される。
2.実験
mAb dB4がHIV感染した個体における慢性炎症の発生を阻害することにより、ピロトーシスによって引き起こされる病理発生サイクルを破壊することができるか否かを測定するための研究を行った。抗原刺激によって引き起こされるサイトカイン産生の阻害は、不稔HIV感染を既に有する休止T細胞の多くによるピロトーシスを軽減するのを助け、このようにして、サイトカイン産生によるCD4陽性T細胞枯渇におけるHIVの病理発生を破壊する。
ブドウ球菌エンテロトキシンB(SEB)を用いるインビトロモデルを使用して、正常な個体およびHIV感染した個体においてmAb dB4C7(UB−421)がPBMC T細胞増殖を阻害する能力を評価した。SEBは、特定のT細胞抗原受容体(TCR)を有する全てのT細胞を刺激する能力を有し、かつ大量のサイトカイン産生を誘導するスーパー抗原である。
Huyen Cao博士およびMohamed Elrefaei博士と協力して、正常なヒトのドナー(n=3)およびHIVに感染したドナー(n=6、ART未経験、CD4+の数が200超、ウイルス量が10,000超)の機能分析を行って、CD4のD1のCDR2領域に対するmAb dB4C7(UB−421)または抗HIV RCポリクローナル抗体(実施例9で説明)が細胞増殖およびサイトカイン(IL2およびIFN−γ)産生を阻害することができるか否かを評価した。
2.1.研究対象および試料
HIV陽性のART処置未経験志願者(n=6)を、REACHコホート(cohort)(サンフランシスコ)から採用した。3人の年齢適合HIV血清陰性対照志願者もこの研究に含めた。PBMCを分離し、アッセイの時間まで液体窒素中に凍結保存した。
2.2.飽和濃度のmAb dB4C7または精製した抗HIV RCポリクローナル抗体を使用した
最初にCD4+Tリンパ球を、間接的免疫蛍光研究においてmAb dB4C7 IgGまたは抗HIV RCポリクローナル抗体IgG、次いでAlexa−ヤギ抗HuIgGまたはAlexa−ヤギ抗モルモットIgGでそれぞれ染色した。得られた染色細胞を検出される陽性細胞の割合についてフローサイトメトリーで分析した。mAb dB4C7および抗HIV RCポリクローナル抗体はどちらも、2倍希釈した50μg/mL〜0.0025μg/mLで滴定した。mAb dB4および抗HIV RC抗体の抗体滴定は、抗体濃度(μg/mL)に対するCD4結合率(%)として決定した。HIV感染した個体および正常な個体に対して行われるT細胞機能アッセイでの使用前に、これらの滴定を評価した。
図17から、機能的研究で使用されるそれぞれの試薬の飽和濃度がmAb dB4(dB4C7)では1μg/mL、抗HIV RCポリクローナル抗体では25μg/mLであることが判明したことがわかる。
2.3.CD4+またはCD8+T細胞の増殖
細胞分裂時のCFDA−SE(カルボキシフルオレセインジアセテートスクシンイミジルエステル)染色の喪失を追跡するCFSE(カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル)蛍光アッセイにより、細胞増殖を分析した。H−チミジン(増殖)アッセイの代わりとしてCFSEを使用した。
PBMCを飽和濃度のmAb dB4C7または精製した抗HIV RCポリクローナル抗体と共にインキュベートして、細胞の表面上のCD4受容体を被覆した。また、細胞をそれぞれ陰性および陽性対照として25μg/mLの抗HIV RCアイソタイプおよびPHA(10μg/ml、Sigma Aldrich社)と共にインキュベートした。
PBMCをPBS中でCFDA−SE(Molecular Probes社、オレゴン州ユージーン)で標識し、次いで、100%FCS(Sigma Aldrich社、ミズーリ州セントルイス)で失活させた。次いで、細胞をPBSで洗浄した後、10%FCSを含むRPMI1640(Sigma Aldrich社)に再懸濁した。
次いで、細胞を5%CO中37℃で5日間SEB Ag(1μg/mL)の存在下で培養し、表面マーカーの発現について分析した。
CD3+(Amcyan)でゲーティングされるCD4+(PE、D2)、CD8+(Percp−CY5.5)細胞集団の分析のためにフローサイトメトリーを行い、これらをそれぞれ、増殖細胞の割合としてのCFSE陽性細胞率(%)についてさらに測定した。LSR II(BD Biosciences社、カリフォルニア州マウンテンビュー)を用いて、1試料当たり四万(40,000)のリンパ球を取得し、FLOWJOソフトウェア(TreeStar社、カリフォルニア州サンカルロス)により分析を行った。結果を分裂CD4(またはCD8)T細胞の割合として測定した。全ての研究参加者はPHA刺激後に著しい増殖を示した。SEB Ag刺激のないCD4 T細胞の増殖(陰性対照)は<0.5%であった。
2.4.サイトカインの測定のための細胞内染色アッセイ(IL2およびIFN−γ産生)
PBMC(0.5×10細胞)を5%CO中37℃でSEB Ag(1μg/mL)と共に2時間インキュベートした。細胞を、0.1%FCSを含むPBS(洗浄緩衝液)で洗浄し、細胞を溶解溶液(lysing solution)(BD Biosciences社)に室温で10分間再懸濁することにより固定した。細胞を洗浄緩衝液で1回洗浄し、次いで、透過用溶液2(permeabilizing solution 2)(BD Biosciences社)0.5mLに再懸濁させて透過処理し、室温で10分間インキュベートした。その後、細胞を洗浄緩衝液で洗浄し、抗IL−2 APC、抗IFN−γ(PE CY7)および抗CD3(Amcyan)、抗CD4(PE、D2)または抗CD8(Percp−CY5.5)(BD Pharmingen社)で染色した。LSR II(BD Biosciences社)を用いて、1試料当たり4万(40,000)のリンパ球を取得し、FLOWJOソフトウェア(TreeStar社)で分析を行った。Ag刺激なしのサイトカイン産生CD4またはCD8 T細胞の割合は0.05%未満であった(陰性対照)。結果をIFN−γまたはIL2を発現するCD4+(またはCD8+)T細胞の割合として表した。
2.5.統計分析
対応のあるt検定を用いて統計分析および比較を行った。
3.結果
このSEB Ag誘導性T細胞増殖研究から得られた結果から、mAb dB4C7(1μg/mL)および抗HIV RCポリクローナル抗体(25μg/mL)はどちらも、飽和条件下でHIV ART処置未経験患者および年齢適合正常個体の両方においてCD4+T細胞増殖を減少させるがCD8+T細胞増殖は減少させないことが明らかとなった(データは示さない)。
mAb dB4(1μg/mL)および精製した抗HIV RCポリクローナル抗体(25μg/mL)はどちらも、それらのそれぞれの飽和PBMC表面CD4結合濃度で、HIV陰性(図18a)およびHIV陽性(図18b)の個体において、スーパー抗原SEB誘導性増殖CD4+T細胞によるIL2産生を抑制した。そのような抑制は同じHIV陽性および陰性の個体のCD8+T細胞(図18c)では認められなかった。
mAb dB4(1μg/mL)および精製した抗HIV RC抗体(25μg/mL)はどちらも、それらのそれぞれの飽和濃度で、HIV陰性(図18d)およびHIV陽性(図18e)の個体においてスーパー抗原SEB誘導性増殖CD4+T細胞によるIFN−γ産生も抑制した。そのような抑制は同じHIV陰性(図18f)および陽性(図18g)の個体のCD8+T細胞では認められなかった。
4.結論
どちらもCD4ドメイン1のCDR2領域を標的とするmAb dB4C7(UB−421)抗体および抗HIV RCポリクローナル抗体は、CD4陽性T細胞によるスーパー抗原SEB誘導性T細胞増殖およびサイトカイン(IL2およびIFN−γ)産生を抑制するが、CD8陽性T細胞によるT細胞増殖およびサイトカイン(IL2およびIFN−γ)産生を抑制しないことが分かった。dB4C7および抗HIV RCポリクローナル抗体がCD4+T細胞増殖および関連するサイトカイン(IL2およびIFN−γ)産生を抑制することができたという発見は、本抗体が、ピロトーシスのHIV病理発生サイクルを破壊する可能性を有する他のCD4陽性細胞に関連するサイトカイン産生に対して同様の抑制効果を発揮し得ることを示唆している。
この実施例および上記実施例において観察されたCD4陽性T細胞増殖および付随するサイトカイン(IL2およびIFN−γ)産生に対する抑制効果は、CDR2領域を標的とする本明細書に記載されている抗体がCD4細胞に対して、(1)それらの潜伏状態からHIVの放出を引き起こすためのHIV感染した休止CD4陽性T細胞の再活性化(実施例9で考察)、(2)休止CD4+T細胞の再活性化により放出された新しいウイルスから感染していないCD4陽性T細胞へのHIV侵入の競合的阻害および防止(実施例4および6)、ならびに(3)(スーパー)抗原刺激時のCD4陽性T細胞によるT細胞増殖およびサイトカイン産生の阻害(本実施例)を含む同時的拮抗作用を与え得るという点で、非常に重要である。
HIV結合および免疫応答を開始する正にその部位(即ち、CD4ドメイン1のCDR2領域)を標的とするmAb dB4および抗HIV RCポリクローナル抗体の独特な生物学的特徴により、HIV感染の機能的治癒のために必要な特性、即ち(1)侵入阻害によるHIV感染を妨げ、(2)休止T細胞におけるウイルス産生を再活性化し、かつ(3)サイトカイン産生を直接変化させるための能力が得られる。
実施例11
分岐群BのHIV初代分離株HIV−1DH12を抗原投与したチンパンジーにおけるmAb B4によるHIV感染の曝露前および曝露後の予防および処置
CD4ドメイン1のCDR2領域を標的とするB4に関連する高親和性抗体について独特なインビトロ特性の多くを実証してきたが、最もヒトに似ている動物モデルにおいてHIV感染の予防および/または処置におけるB4抗体の有効性を試験することが重要であった。ヒトのウイルス、細菌および寄生虫感染をモデル化するために100年以上もの間チンパンジーが使用されてきた。分岐群BのHIV初代分離株HIV−1DH12を用いてチンパンジーにおいて慎重に計画された抗原投与モデルを用いて、抗原投与研究を開始してmAb B4が曝露前および曝露後モードの両方においてHIV−1感染に対して受動免疫を与える可能性を評価した。具体的には、mAb B4を、(1)曝露された対象を感染から保護するための殺菌免疫および(2)感染の確立から数日後に抗体が投与されたとき、曝露された対象に対して処置を与えるその能力について評価した。
1.チンパンジーにおけるmAb B4によるHIV感染の曝露前および曝露後の予防。
抗原投与(HIV−1への曝露)前および後モードの両方においてmAb B4がHIV−1感染に対して受動免疫を与える可能性を評価した。
1.1.方法
1.1.1.研究で用いた動物。 この研究では計4匹のチンパンジーを用いた。曝露前処置動物(X084)として1匹のチンパンジーを用い、曝露後処置動物(X356およびX357)として2匹のチンパンジーを用い、対照(X259)として1匹のチンパンジーを用いた。
1.1.2.HIV−1DH12株による感染に対する動物の感受性。 HIV−1DH12株による感染に対する動物の感受性を、処置および感染前のそれらのPBMCのインビトロ感染により決定した。全ての培養物がウイルスへの曝露から3日以内に感染した。
1.1.3.mAb B4抗体。 注入用のmAb B4を高純度抗体薬剤として5mg/mLで調製した。
1.1.4.抗原投与前の予防/処置。 HIV−1DH12抗原投与の1時間前に、チンパンジーX084に5mg/kgのmAb B4を静脈内注入した。
1.1.5.抗原投与後の予防/処置。 HIV−1DH12抗原投与から1時間後に、チンパンジーX356およびX357に5mg/kgのmAb B4を静脈内注入した。
1.1.6.対照動物。 チンパンジーX259にmAb B4抗体を注入せずにHIV−1DH12を抗原投与した。
1.1.7.HIV−1DH12による抗原投与。 4匹のチンパンジーに、サウスウェスト生物医学研究財団(Southwest Foundation for Biomedical Research)において、チンパンジーのPBMCで以前に調製および滴定したウイルス株から採取した100TCID50のHIV−1DH12を静脈内に抗原投与した。
1.1.8.HIV−1DH12ウイルスの検出。 gag配列のDNA PCR増幅、共培養、p24捕捉ELISAおよび免疫ブロットを用いて、血漿ウイルス血症の検出、細胞関連ウイルス量およびHIVに対する免疫応答によりチンパンジーにおける感染の確立を監視した。全てのチンパンジーから50週間の研究中に採取した全ての血液試料においてHIV感染を示す血清ウイルス血症をHIV−1 RNAコピー/mLとして測定した。ウイルスの単離およびDNA PCRアッセイによりチンパンジーのPBMCにおいてHIV−1DH12ウイルスを検出して、gagに対応するプロウイルスDNAを検出した。p24抗原捕捉ELISA(Coulter社)によりウイルス産生を評価した。IL−2培地において3日齢のPHA刺激した芽細胞からの2×10細胞との共培養のために、チンパンジーのPBMCおよびリンパ節細胞の1×10〜1×10細胞の連続希釈物を調製した。p24の産生を生じた最も高い希釈を有するウェルを終点とみなした。
1.1.9.動物収容。 米国学術研究会議(National Research Council)のガイドラインに準拠し、かつ動物実験委員会(IACUC)の認可の下で、チンパンジーをサウスウェスト生物医学研究財団で管理した。
1.2.結果
HIV−1DH12の抗原投与を受けているチンパンジーにmAb B4による殺菌免疫を与えた。抗原投与後32週間の経過観察の間に、HIV−1抗原投与前にmAb B4抗体を注入した動物(X084)(図19a)またはHIV−1処置から1時間後にmAb B4抗体を注入した2匹の動物(X356およびX357)(図19b)において、感染のマーカーを検出することはできなかった。
対照的に、抗原投与後1週目に開始する対照動物(X259)(図19c)のPBMCおよび抗原投与後2週目までの血漿から、ウイルスが容易に単離された。4週目および20週目に生検したX259のリンパ節細胞からもウイルスが単離された。1×10〜1×10の範囲の細胞数を含む希釈溶液内のPBMCおよびリンパ節区画中で感染細胞が検出された。動物X259において4週目までに抗体陽転が生じた。
循環中に認められた遊離した未結合のmAb B4の存在は、抗体で処置したチンパンジーX084、X356およびX357において急速に減少した。処置したチンパンジーのCD4+およびCD8+サブセットを抗原投与後20週間にわたって監視したが、CD4+枯渇の証拠は認められなかった。32週を通して、マイトジェン(PHA、ヤマゴボウマイトジェンおよびコンカナバリンA)に対するチンパンジーのPBMCの増殖応答の抑制は認められなかった。
この研究の結果は、mAb B4がHIV感染に対して予防または完全治癒を与えることができることを示しており、これは抗原投与日から1年後でさえも血清ウイルス血症および他のパラメータの広範囲な経過観察によって実証されている。
1.3.結論
チンパンジーの治験では、悪性の初代分離株によるHIV感染は、曝露前または曝露後すぐの期間のいずれかにおいて、mAb B4の投与により阻止された。移入された免疫は殺菌的であり、一過性のウイルス血症、ウイルス血症の減少または遅発性ウイルス血症の証拠は全く認められなかった。末梢血およびリンパ系組織中のCD4+細胞上で隔離することによるmAb B4抗体の血漿からの急速なクリアランスにも関わらず、完全な保護は明白であった。
この慎重に行われた実験は、mAb B4または関連抗体を5mg/kg用いる処置プロトコルにより、(i)HIVに遭遇して数時間以内の患者または(ii)血清陽性の母親の下に生まれた出産後すぐの乳児が完全治癒に至ることをさらに示唆した。
1.4.mAb B4による曝露後予防のための適用
米国公衆衛生局ガイドラインは、HIVへの不慮の曝露後に医療従事者に対して抗レトロウイルス剤を用いる曝露後予防を推奨している。しかし、米国公衆衛生局ガイドラインは、曝露後予防のために現在入手可能な薬剤の毒性に関して危惧を表明している。
この研究で得られた結果は、mAb B4を現在の曝露後処置の代わりとして使用するかそれと併用することができる曝露後予防処置として使用する可能性を実証している。mAb B4の低い毒性および有効性は、本抗体が抗レトロウイルス剤よりも広く活性である可能性を実証している。
これらの結果は、mAb B4をHIVの母親から子供への垂直感染の予防のために使用できることをさらに示唆している。周産期感染または垂直感染とも呼ばれるHIVの母子感染(MTCT)は、HIVが妊娠、陣痛および/または出産または授乳中にHIV+女性からその乳児に広がった際に生じる。ウイルスの処置を受けていないHIV+女性の妊娠、陣痛および出産中のMTCTの確率は約25%である。子供を母乳で育てている未処置のHIV+女性におけるMTCTの確率はさらに12%上がる。世界的に2001年には、180万人の女性がHIVに感染し、約800,000人の子供たちもHIVに感染し、彼らの大部分はMTCTを介して感染した。世界的にHIVと新たに診断された人々の大部分は15〜24歳の間である。MTCT予防で非常に重要なことは、性的に活発になる前の若い人々、特に少女および若い女性のHIV予防および既に感染した人々の処置であることは間違いない。MTCTに関するさらなる情報は、http://caps.ucsf.edu/archives/factsheets/mother-to-child-transmission-mtct#sthash.DTRyms46.dpufで見つけることができる。mAb B4により得られた結果は、HIV+女性の生まれたばかりの子供に5mg/kg以上のmAb dB4の単回投与を与えることで、MTCTを陣痛および出産段階で予防できることを示唆している。
2.チンパンジーにおけるmAb B4によるHIV感染の処置
2.1.方法
2.1.1.研究で使用した動物。 前の予防研究で使用し、かつ5mg/kgのmAb B4の単回投与を受けてHIV−1DH12感染から保護されているチンパンジーX084、X356およびX357を、この抗原投与研究において処置モードで再利用した。
2.1.2.HIV−1DH12株による感染に対する動物の感受性。 抗体処置およびHIV抗原投与前に、HIV−1DH12による感染に対する感受性を決定するために、動物からPBMCを調製した。全てのインビトロ培養物はウイルスの接種から3日以内で感染した。
2.1.3.mAb B4抗体。 注入用のmAb B4を5mg/mLの高純度抗体薬剤として調製した。
2.1.4.HIV−1DH12による抗原投与。 全ての動物(X084、X356およびX357)に、サウスウェスト生物医学研究財団においてチンパンジーのPBMCで以前に調製および滴定したウイルス株から採取した100TCID50のHIV−1DH12を静脈内に抗原投与した。
2.1.5.抗原投与後の処置。 チンパンジーX084は抗原投与後の処置を全く受けなかった。HIV感染の処置のために抗原投与した動物においてHIVウイルス血症が最も高かった抗原投与後14日目に、チンパンジーX357にmAb B4を5mg/kg注入した。抗原投与後14日、18日および22日目に、チンパンジーX356にmAb B4を5mg/kg注入した。
2.2.結果の要約
この受動免疫療法研究をマウスmAb B4の5mg/kgの注入により行い、急性期HIV感染を有するチンパンジーにおけるmAb B4の処置効果を決定した。3匹のチンパンジー(X084、X356およびX357)にHIV−1DH12を静脈内(i.v.)接種し、ウイルス検出(図示せず)および定量的RT−PCRに基づき感染の確立を確認した。
全てのチンパンジー(X084、X356およびX357)において曝露後7日目までに、HIV−1DH12から(ベースラインを超える)RNAがRT−PCRにより検出された。ウイルスの単離およびHIV−1DH12組込みの検出のためのDNA−PCRにより、3匹全ての動物のPBMCおよびリンパ節細胞中に14日で細胞結合ウイルスが検出された。
感染後14日目に、感染したチンパンジーのうちの2匹(X356およびX357)にmAb B4(5mg/kg、i.v.)を注入した。感染後18日および22日目に、1匹の動物(X356)に2回のさらなる用量の本抗体(5mg/kg、i.v.)を投与した。最初の12週間は1週間に1回、次いで感染後40週目まで1ヶ月に1回の間隔で、RT−PCRアッセイによりウイルス量を監視した。チンパンジーX356およびX357にmAb B4を注入した日である感染後14日目までに、ウイルスRNAは既に急上昇期にあった。次いで、抗体を投与したこの2匹のチンパンジー(図20a、黒丸)は、未処置のチンパンジー(X084)(図20a、白丸)と比較して、20日目までの1〜2logのそれらのウイルス量の急速かつ著しい減少および4週間から1週間への一次ウイルス血症期間の持続期間の著しい減少を経験した。
図20aおよび図20bは、未処置の対照チンパンジーX084(この研究から未処置であり、以前にmAb B4の単回曝露前投与を受けた)および未処置の対照X259(前の研究から未処置であり、mAb B4の投与を受けなかった)における血漿ウイルス血症の持続期間を、mAb B4の3回の注入を受けたチンパンジーX356と比較している。チンパンジーX084(図20a、白丸)およびX259(図20b、白丸)をどんな介入もなしにHIV−1DH12で抗原投与し、ウイルス抗原投与から早くも3日目に血清HIV−1 RNAコピーとして検出されるウイルス血症が現れ始めた。血清HIV−1ウイルス血症の持続期間は約42日間続き、これはHIV−1DH12感染に特徴的である。チンパンジーX356(図20aおよび図20b、黒丸)はmAb B4の3回の投与を受け、そのHIV−1ウイルス血症は急勾配で減少し、その後21日目またはその前後に検出不能なレベルに達した。X356とX084およびX259とのウイルス量データの比較は、HIV−1DH12感染の特徴的なウイルス血症持続期間からの21日の減少を示している。
上述のように、この研究から未処置の対照チンパンジーX084は前の研究でmAb B4の単回曝露前投与を受け、前の研究から未処置の対照チンパンジーX259はmAb B4の投与を全く受けなかった。興味深いことに、X084について得られたデータ(図20a、白丸)とX259(図20b、白丸)との比較は、X084がX259と比較して研究期間にわたって全体的により低いウイルス量を有していたことを示している。したがって、この研究における未処置の動物(X084)のウイルス量はmAb B4で処置した動物(X256)よりも著しく高かったが、X084におけるmAb B4への前の曝露は、特にHIV感染の急性期の間に全体的なウイルス量を著しく減少させるように見える(X084をX259と比較)。まとめると、これらの結果から、HIV曝露前のmAb B4のあらゆる投与が感染の急性期の間にウイルス量の強度を減少させることができ、これにより、感染後の個体から個体へのウイルスの伝播をさらに減少させることができることが示唆される。
細胞表面染色も行い、mAb B4が、14日目にmAb B4の単回投与を与えた動物(X357)において少なくとも7日間CD4+細胞に結合したままであり、本抗体の複数回投与を与えた動物(X356)において少なくとも14日間持続することを見出した。対照的に、HIV−1DH12分離株に対する中和活性により測定したとき、注入後3日間のみ両動物において循環中に遊離したmAb B4が検出された。チンパンジー予防研究と同様に、これはCD4+細胞への結合により循環から除去されたmAb B4と一致している。
FACS分析では、CD4/B4エピトープのインビトロ免疫染色により40週間を通して全ての試料中に著しい枯渇なしにCD4+細胞が検出された。注入したmAb B4の免疫染色を最初の21日間PBMC上で行った。抗体処置の前後でのPBMC試料のマイトジェン誘導性増殖応答(Con A、PWMまたはPHAを用いる)は可変的であり、mAb B4の注入によって影響されているようには見えなかった。これらの観察から、mAb B4はウイルス感染を弱めることができ、かつ過度の免疫毒性の証拠もなくウイルス量およびウイルス血症期間の両方を減少させることができることが示唆される。
実施例12
ヒヒにおけるUB−421製剤、前臨床的薬理学/毒性研究およびヒト組織における交差反応性
導入
先の実施例で考察した細胞培養およびチンパンジー研究から得られたデータにより、ヒトへの使用のためにmAb dB4を含有する医薬製剤のさらなる開発を正当化するのに十分な科学的利点が実証された。mAb dB4C7を含有する医薬製剤(UB−421)を調製し、臨床用途のために製造したロットに対して一般的な安全性試験を行った。
薬剤候補UB−421に関する薬力学、薬物動態、毒性および安全性情報を得るために、パネルの前臨床的安全性研究も行った。
無症状のHIV−1感染したヒト対象におけるUB−421の用量依存的安全性、忍容性および免疫毒性を評価するための第I相臨床試験の設計を容易にするために、ヒヒ(ヒヒ属種)において単回および複数回投与ならびに用量依存性(低用量および高用量)研究を行った。図21に示すように、ヒヒにおけるCD4+T細胞はヒトと同様のmAb dB4C7に対する結合親和性を有するため(即ち、ヒトおよびヒヒにおいてそれぞれEC50=0.33μg/mLおよび0.29μg/mL)、前臨床的薬理学的/毒性研究における動物モデルとしてヒヒを使用した。ヒテキサス州サンアントニオにあるサウスウェスト生物医学研究財団のウイルス学および免疫学部門においてKrishna Murthy博士と共同して、ヒヒにおける非ヒト霊長類の薬理学的/毒性研究を開始および実施した。
さらに、UB−421があらゆる予期せぬ反応性および意図した標的とは異なるヒト組織に向かう細胞傷害の可能な位置を有するか否かを評価するために、交差反応性研究を行った。
以下でさらに詳細に考察するように、これらの前臨床的研究から得られたデータにより、ヒト臨床試験における新治験薬としてのUB−421のさらなる開発を正当化するのに十分な科学的利点が実証されている。
1.医薬製剤
ヒトへの使用のためにmAb dB4C7を含有する医薬製剤を調製した。一般に、mAb dB4C7を含有する医薬製剤は、限定されるものではないが、pH6.0〜7.0のクエン酸、リン酸、Tris、BIS−Trisなどの適当な緩衝液で調製することができ、糖類(50mM〜500mMのスクロース、トレハロース、マンニトールまたはそれらの混合物)、界面活性剤(例えば、0.025%〜0.5%のTween20またはTween80)および/または他の試薬などの賦形剤も含有することができる。
UB−421は、pH6.5のリン酸緩衝生理食塩水(PBS)中に10mg/mLのmAb dB4C7、20mMグリシンおよび0.05%(v/v)Tween(ポリソルベート20)を含有する医薬組成物の呼称である。
皮下注射などの特定の用途で使用するために、ヒスチジン10mMを含むmAb dB4の高濃度製剤も調製した。
製造後に、製造した製剤がヒトおよび動物対象に投与するのに安全であることを保証するために、一般的な安全性および毒性研究を行った。
2.一般的な安全性研究
2.1.UB−421の製造ロットおよび安全基準
UB−421製剤の2回の大規模生産(P/N Z807、ロット番号:225711および225758)を臨床試験で使用するために準備し、一般的な安全性について評価した。
7日間の試験期間中に、(1)試験期間を通して全ての動物が生存し、(2)見かけ上の毒性の兆候が観察されず、かつ(3)医薬組成物を投与した時から試験期間の終了までの間に動物に大きな体重減少が認められなかったという基準を満たしたとき、UB−421の大規模バッチ(ロット)を臨床用途のために安全かつ許容可能なものとみなした。
2.2.試験動物
マウス:(アルビノ、BALB/cByJNarl系(学名:Mus musculus)、特定病原体不在、雄(国立動物研究所(NLAC:National Animal Research Laboratory)、台湾))(研究番号:BIO−003.90)。モルモット:(アルビノ、Hartley系(学名:Cavia porcellus)、特定病原体不在、雄(国立台湾大学病院(NTUH)、動物センター、台湾))(研究番号:BIO−003.91)。
2.3.方法
2匹のマウスおよび2匹のモルモットにUB−421の各ロットを腹膜内経路で注射した。対照マウスおよびモルモットに生理食塩液(「S.T.」、ロット番号:1OC0206)を腹膜内経路で注射した。各マウスに0.5mLの全量を投与し、各モルモットに5.0mLの全量を投与した。投与前(0日目)および終了前(7日目)に動物の体重を記録した。各動物を健康状態および毒性の臨床的兆候について毎日観察した。
2.4.分析および結論
一般的な安全性研究の結果から、分析した基準について以下の満足な結果が得られた。
(1)試験期間中に一般的な安全性試験のために使用した全ての動物が生存していた。
(2)UB−421で処置した動物において見かけ上の毒性の兆候は観察されなかった。
(3)試験期間中にどの動物にも体重の減少は認められなかった。
上記から判断して、これらのロットを予期せぬ許容し難い外部混入物について陰性であるとみなした。
これらの発見により、UB−421の大規模製造ロット(ロット番号:225711および225758)は予期せぬ許容し難い外部混入物について陰性であることを確認した。したがって、これらの2種類のロットをヒトの臨床試験において使用するのに安全かつ許容可能なものとみなした。
3.研究A:ヒヒにおけるUB−421の単回投与毒性研究
3.1.方法
研究Aは、表14aに示すように、42日間にわたる低用量(5mg/kg体重)または高用量(25mg/kg体重)のいずれかのUB−421の単回投与の薬力学、薬物動態および安全性を評価した。この研究では、UB−421を5mg/kgまたは25mg/kg体重で30分かけて静脈内注入により投与した。0、0.5、1、2、4、8、12、24時間後および2、3、5、7、10、14、21、28、35、42日目に薬物動態(PK)分析のために血液試料を採取した。
以下のマーカー:CD4ドメイン1(抗CD4+D1)およびCD4ドメイン2(抗CD4+D2)を用いてCD4Tリンパ球の存在を監視するために、フローサイトメトリー分析により血液試料を分析した。モノクローナル抗体UB421およびCD4ドメイン1および2に対する抗体による競合的CD4結合のためのマーカーおよびトレーサーの両方としてAlexa−dB4を使用した。CD4ドメイン1および2に対するモノクローナル抗体のためのトレーサーとしてAlexa−ヤギ抗huIgGを使用した。さらに、PBMC調製物中の総T細胞数(CD3)および単球(CD14)を監視するために、CD3およびCD14に対する抗体を使用した。
3.2.結果の要約
薬力学、薬物動態および安全性研究において、UB−421をヒトにおける第I相臨床試験に進めるべきではないということを示唆する一貫した否定的な観察は認められなかった。評価した全てのパラメータについて、対照および実験動物の両方において平均を著しく超えるか満たない値(「正常範囲外」)が認められるあらゆるデータ点が観察された。
低用量(5mg/kg)および高用量(25mg/kg)のUB−421の単回投与で処置したヒヒから得られた血液試料を評価することにより、UB−421の初期薬物動態(PK)特性を評価した。
この研究の結果から、UB−421を用いた処置により、末梢血単核細胞(PBMC)またはリンパ節生検試料の細胞懸濁液のいずれかから単離されたCD3+CD4+Tリンパ球およびCD14+CD4+単球の検出において劇的な減少が生じることが分かった。これらの細胞における減少は、動物におけるCD4+細胞の枯渇によるものではなく、UB−421によるCD4+細胞の「被覆」によるものではないかと疑った。抗CD4+D2マーカーに対する抗体によって検出されるCD4+Tリンパ球の割合において変化がなかったことを見出した際に、この疑いが確信へと変わった。注入後のそのようなUB−421によるCD4+細胞上の「被覆」の持続期間は、低用量を投与した動物では少なくとも3日間、高用量を投与した動物では少なくとも7日間であった。UB−421が動物の血漿中でもはや検出されなくなったとき、CD4+細胞上の「被覆」は減少し、CD4+細胞(抗CD4+D1によって検出)は、抗CD4+D2によって検出される割合と同じ割合に戻った。
要約すると、この研究から、UB−421は安全であり、低用量のUB−421を投与したとき、少なくとも3日間、高用量のUB−421を投与したとき、少なくとも7日間CD4陽性細胞を完全に被覆できることが分かった。先の実施例で考察した結果によれば、CD4+細胞が完全に被覆された場合、HIVは細胞への侵入から完全に排除され、これによりウイルス量の減少が生じることが期待される。
4.研究B:ヒヒにおける複数回投与毒性研究
4.1.方法
研究Bは、表14bに示すように、56日間(8週間)にわたる低用量(5mg/kg体重)または高用量(25mg/kg体重)のいずれかのUB−421の反復投与の薬力学、薬物動態および毒性を評価した。この研究では、処置期は、1週間に1回の間隔で与えられる計8回のUB−421の投与(1週間に1回の投与)で構成されていた。8週間の処置期の終了時に、処置した動物の半分を剖検して評価した(表14b、第一部)。残りの動物を12週間の回復期を通して追跡調査し、回復期は観察ならびに血液およびリンパ節試料の採取のために動物を維持した(表14b、第二部)。処置期中の0、1、3、7、14、21、28、35、42、49、56日目および回復期中の63、70、77、91、105、133日目に、分析のために動物から血液試料(およびリンパ節生検)を採取した。試験系として成体の雄(M)および雌(M)のヒヒ(n=20、年齢:7〜18年齢)を使用した。
4.2.結果の要約
前臨床的研究の広範なパネルから、低用量(5mg/kg)および高用量(25mg/kg)のUB−421の複数回投与について薬物動態、薬力学、毒性および安全性情報を得た。
まとめると、研究Bの第一部および第二部から得られたデータは、UB−421薬剤候補が新治験薬としてのさらなる開発のために科学的利点を有することを示した。薬力学、薬物動態および安全性研究において、UB−421をヒトにおける第I相臨床試験に進めるべきではないということを示唆する一貫した否定的な観察は認められなかった。対照および実験動物の両方において、評価した全てのパラメータについて平均を著しく超えるか満たない値(「正常範囲外」)が認められるあらゆるデータ点が観察された。
4.2.1.血液および生検分析。 低用量および高用量のUB−421の複数回投与で処置した動物から得られた試料に対して広範なパネルの試験を行った。これらの試験の結果は表15および表17に要約されており、以下でさらに考察する。
UB−421は、UBI ELISA試験(実施例7で考察)およびMT−2アッセイ(実施例2で考察)の両方を用いて、低用量(5mg/kg)のUB−421を投与した動物では少なくとも3日間、高用量(25mg/kg)のUB−421を投与した動物では少なくとも7日間、血漿中で検出可能であった。最後の注入後少なくとも14日間は、何匹かの高用量動物の血漿中で過剰なUB−421が検出された。
UB−421を投与した16匹の動物のいずれにおいてもUB−421に対するヒヒ抗体は認められず、この薬剤候補は処置した動物において免疫原性ではないことが分かった。
0日および28日目に、全てのヒヒをB型肝炎ウイルス(HBV)ワクチン(Merck社)で免疫化した。4匹の対照(1B)動物のうちの4匹、低用量(2B)のUB−421を投与した8匹のヒヒのうちの6匹、および高用量(3B)のUB−421を投与した8匹のヒヒのうちの3匹において、56日目に検出可能なレベルのヒヒ抗HBsAg抗体が観察された。これらの結果から、CD4細胞のUB−421「被覆」により、抗原に対して免疫予防している何匹かの動物において低応答性が引き起こし得ることが示唆される。但し、これらの動物はUB−421処置の休止およびHBVワクチンによるさらなる免疫後に抗HBsAg抗体を産生することができたため、そのような低応答効果は可逆的であることが分かった。
4.2.2.観察および剖検の結果。 この研究で処置したヒヒの肉眼的および顕微鏡分析を、表16及び表17に要約する。
概して、この研究(第一部および第二部)で評価したヒヒの全てから採取した組織は、低用量または高用量レベルのいずれかのUB−421の投与に起因し得る、いかなる独特または一貫した病理学的変化も示さなかった。
注入前の登録時および最後の注入から1週間後の処置期の終了時に再度、全ての3B群(高用量)動物(n=8)に対して検眼鏡(眼)検査を行った。これらの動物からの眼に関する報告書は、処置期の終了時に行った全ての試験について両眼が正常範囲内のままであることを示した。
各用量の投与の前、間および後に、全ての動物(n=20)から心電図(ECG)記録を得た。調査した全ての動物の心電図報告書により、認められたECG変化は正常な日差変動範囲内であると結論づけた。
4.2.3.IND認可毒性試験の結果
HBVワクチン接種に対する免疫応答の低下以外、免疫毒性試験の結果においてUB−421処置群(2Bおよび3B)と対照群(1B)との間に著しい差は認められなかった。臨床検査の結果、即ち検眼鏡検査(眼)に関する報告書、ECG記録及び組織病理学検査の結果は、UB−421が、最大25mg/kgの用量レベルで1週間に1回の8回の注入を受けた後の成体のヒヒにおいて安全であり、かつ十分に忍容性がある、即ち、標的細胞を枯渇させることなく有効に被覆した処置であるという結論を支持するものであった。
5.ヒト組織における交差反応性研究
先の実施例で考察したとおり、mAb dB4C7(UB−421薬剤候補における主成分)などのmAb dB4抗体は、T細胞上のCD4、特に膜結合型CD4に対して高い結合親和性を示した。その後の前臨床研究では、30種類のヒト臓器の多くの組織を用いてmAb dB4C7が他の細胞型に結合するか否かを評価した。この研究の目的は、mAb dB4C7があらゆる予期せぬ反応性および意図した標的とは異なるヒト組織に向かう細胞傷害の可能な位置を有するか否かを評価することであった。
5.1.方法
30種類の臓器(各臓器は3人の正常なヒト個体ドナーから採取したもの(US BioMax社製の組織マイクロアレイ(TMA)スライド、メリーランド州ロックヴィル)である)の全部で90種類の組織コアを含むFDA規格凍結組織アレイを用いて、免疫組織化学研究を行った。表18に記載するように、個々のヒト標本のさらなるクリオスタット切片もヒト組織パネルに含めた。特異性および望ましくない自己反応性の評価のために、ビオチン化mAb dB4C7および対照試薬(ビオチン化ヤギ抗ウサギIgG)を用いて、ヒト組織パネルを免疫反応性についてスクリーニングした。
5.2.結果
成体の正常組織切片について観察された染色パターンを、PhenoPath Laboratories(ワシントン州シアトル)において有資格の臨床病理医によって反応性について見直されてスコア化した。胸腺および扁桃腺(およびリンパ節)内のT細胞依存性領域において強い陽性の表面膜染色が観察され、脾臓において弱い陽性の反応性が認められた。ときにはリンパ球またはマクロファージに一致する単核細胞を、複数の組織において期待されるパターンで陽性に染色した。肝臓における局所的な弱いクッパー細胞染色も認められた。いくつかの組織における内因性ビオチンの弱い染色以外、試験した全ての他の成人のヒト組織は陰性であった。扁桃腺切片の標識されていないmAb dB4C7抗体とのプレインキュベーションにより特異的な染色パターンが阻止された。予期せぬ交差反応性は観察されなかった。
これらの結果から、mAb dB4C7(UB−421中の主成分)は、意図した標的とは異なるヒト組織に向かう細胞傷害を潜在的に生じさせ得る予期せぬ交差反応性を有しないことが確認された。
実施例13
無症状のHIV−1感染した成人におけるUB−421の安全性および薬物動態を評価するための第I相非盲検単回投与用量依存性研究
1.目的
第一の目的は、無症状のヒト免疫不全ウイルス−1(HIV−1)に感染した対象における漸増用量のUB−421の単回静脈内注入の安全性および忍容性を評価することにあり、第二の目的は、無症状のHIV−1感染した対象における漸増用量のUB−421の単回静脈内注入の薬物動態を測定することにあった(臨床試験識別番号:NCT01140126)。
2.方法論
非盲検、単回投与、用量依存性(漸増)、2施設、非比較。
3.対象の数
計20人の対象(各コホートに5人の対象)が登録された。
4.組み入れのための診断および主要な基準
この研究に参加するために、対象は以下の基準を全て満たさなければならなかった。
1.HIV−1血清陽性;
2.年齢20歳以上;
3.プロトコル2010年3月9日(Mar−09−2010)版では、スクリーニング来院(来院1、V1)時に、病歴、身体検査、心電図(ECG)および凝固試験の結果に基づき研究者によって無症状と判定され、かつ臨床化学および血液検査が正常範囲±10%内でなければならない;
4.プロトコル2010年7月1日(Jul−01−2010)版では、病歴、身体検査、ECGおよび研究室評価に基づき研究者によって無症状と判定され、スクリーニング来院(来院1、V1)前の24週間以内に急性または症候性のウイルス肝炎に罹患しておらず、かつAIDS指標疾患歴を有していない;
5.プロトコル2010年3月9日(Mar−09−2010)版では、スクリーニング来院(来院1、V1)時に得られたCD4+T細胞数が350細胞/mm超であり、かつHIV−1ウイルス量が5,000コピー/mL超である;
6.プロトコル2010年7月1日(Jul−01−2010)版では、スクリーニング来院前の4週間以内またはスクリーニング来院(来院1、V1)時に得られたCD4+T細胞数が350細胞/mm超であり、かつHIV−1ウイルス量が5,000コピー/mL超である;
7.処置未経験、即ち過去または現在も抗レトロウイルス療法を受けていない対象;
8.女性については授乳中でない;
9.出産の可能性のある女性についてはスクリーニング来院時の妊娠検査結果が陰性でなければならない;
10.研究期間中に避妊具(女性または男性用コンドーム)の使用に同意しなければならない;かつ
11.全ての研究手順を受ける前にインフォームドコンセントにサインしなければならない。
5.治験薬および介入方法
UB−421(dB4C7 mAb)は、10mg/mL(10mLのバイアル中に100mg)の濃度で提供された。
与えられるUB−421の投与量に基づいて、対象をそれぞれ5人の対象を含む4つのコホートに分けた。登録された対象は、それぞれ0日目(来院2、V2)に、以下の用量レベル:1mg/kg体重(コホート1)、5mg/kg体重(コホート2)、10mg/kg体重(コホート3)または25mg/kg体重(コホート4)のうちの1つのUB−421の単回静脈内注入を受けた。指定された用量および対象の体重に基づき、UB−421の適切な体積を計算した。コホート内の各個々の対象に同等の注入体積の薬剤が注入されるように各個々の用量の体積を無菌の生理食塩水を用いて調節した。次いでその用量のUB−421を注入ポンプで送達した。
6.処置の持続期間
スクリーニング、処置および経過観察の時間枠:62〜90日間。注入から研究の終了までの時間枠:60日間。
7.評価基準
7.1.主要安全性評価項目
1.身体検査(PE)
2.バイタルサイン
3.臨床化学および血液検査
4.有害事象(AE)/深刻な有害事象(SAE)の発生率
5.心電図(ECG)。
7.2.副次的安全性評価項目
1. 0日目(注入前)、投与後14日目、28日目および60日目に行った、抗UB−421抗体の血清中濃度(UB−421の免疫原性)。
2. スクリーニング来院(V1)時に評価したかスクリーニング来院前の4週間以内に得られたスクリーニング前データに基づく初回CD4+T細胞数。
3. 投与後60日目に評価した経過観察CD4+T細胞数。
8.有効性評価項目
有効性評価項目をベースラインからのHIV−1ウイルス量の変化として評価した。ベースラインHIV−1ウイルス量は、スクリーニング来院V1時に評価したウイルス量として定めた。
9.薬物動態(PK)
UB−421について以下の薬物動態(PK)パラメータを評価した。
1.Cmax:投与後に観察された最高血清中薬物濃度。
2.Tmax:Cmax到達時間。
3.λ:消失(最終)速度定数。
4.t1/2:消失(最終)半減期。
5.AUC(0→last):0時間から最後に試料をアッセイした時間までの血清中薬物濃度時間曲線下面積。
6.AUC(0→∞):0時間から無限時間までの血清中薬物濃度時間曲線下面積。
7.CL:薬物の体外への血清クリアランス。
8.Vβ:クリアランス期の分布容積。
9.Vss:定常状態時の分布容積。
10.MRT(0→∞):無限時間まで外挿した平均滞留時間(MRT(0→t))。
10.統計学的方法
10.1.主要安全性評価項目
1.身体検査:施設、日数、コホートおよび全体ごとの記述統計を用いて身体的異常を要約した。ベースラインから最終来院までの遷移表も作成した。
2.バイタルサイン:バイタルサインを各来院ごとの記述統計を用いて要約した。ベースライン値からの変化も施設、日数、コホートおよび全体ごとに示した。
3.臨床化学および血液検査:臨床化学および血液検査の結果を適用可能な来院時に記述統計を用いて要約した。研究者の専門家判断および各研究場所における正常範囲基準に基づき、試験結果を4つのカテゴリー、即ち、正常、臨床的意義のない(NCS)異常、臨床的意義のある(CS)異常、および典型的な臨床的意義のある(CST)異常のうちの1つに分類した。ベースラインから最終来院までの臨床検査結果の異常における変化も遷移表に示した。
4.有害事象(AE)の発生率:処置前AE、処置により発現したAE(TEAE)および薬剤関連AEを頻度分布として要約した。各報告されたAEを1つの国際医薬用語集(MedDRA)コードおよび1つの体組織クラスに関連づけた。重症度評価のために国立アレルギー・感染症研究所のAIDS処置研究部(DAIDS:Division of AIDS Treatment Research Program)AE評価表v1.0を利用した。
5.ECG:適用可能な来院時に得られたECG記録データを記述統計により要約した。
10.2.副次的安全性評価項目
1.抗UB−421抗体の血清中濃度:抗体濃度を適用可能な来院ごとに要約した。
2.CD4+T細胞数:細胞数および細胞率を適用可能な来院ごとに分布統計学を用いて要約した。CD4+T細胞数および細胞率の両方におけるベースラインから最終来院までの変化も要約した。
10.3.有効性評価項目
1.HIV−1ウイルス量:HIV−1ウイルス量を各来院時に記述統計を用いて要約した。ベースライン値からの変化=(処置後来院時の値−ベースライン来院時の値)も、施設、日数、処置コホートおよび全体ごとに示す。
10.4.薬物動態評価
薬物動態パラメータを各来院時に記述統計を用いて要約した。
プロトコルおよび統計解析計画書(SAP)に従って、安全性評価項目を包括解析(ITT:intent-to-treat)集団について分析し、有効性の分析はITTおよび有効集団(efficacy population)の両方に対して行う。PK評価に関しては、TVGHの対象のみがPKデータ分析のために採取された利用可能な試料を有していたため、これらの対象をPK集団と定めた。PKの評価はTVGHの対象に対してのみ行った。
11.結論の要約
11.1.有効性、薬物動態および安全性の結果
11.1.1.有効性の結果。 図22aに示すように、この研究全体の各種時点におけるHIV−1ウイルス量における変化を測定することにより、UB−421の有効性を評価した。有効性の分析は、平均HIV−1ウイルス量における顕著な正味変化がUB−421注入後にコホート2(5mg/kg)、コホート3(10mg/kg)およびコホート4(25mg/kg)の対象で認められ、コホート1(1mg/kg)の対象では認められなかったことを示している。
抗体薬剤UB−421(mAb dB4C7)の有効性は、単回投与後の最大2.25log10のウイルス量の減少(10mg/kg群)により実証されている(図22b)。各コホートのHIV−1ウイルス量における最大の平均減少は以下に要約され、かつ図22bに示されている。
コホート1(1mg/kg):6日目に0.29log10コピー/mL(V5)
コホート2(5mg/kg):6日目に0.97log10コピー/mL(V5)
コホート3(10mg/kg):10日目に1.58log10コピー/mL(V6)
コホート4(25mg/kg):14日目に1.63log10コピー/mL(V7)
HIV−1抑制の持続期間は用量レベルと相関しており、より高用量のコホートにおける対象は、より低用量のコホートにおける対象と比較してHIV−1ウイルス量の減少のより長い持続期間を示した(図22a)。最高用量のUB−421を注入した対象(コホート4、25mg/kg)のHIV−1ウイルス量抑制の持続期間は、最長の時間である約28日間維持された。
要約すると、UB−421抗体は、5、10および25mg/kg用量レベルにおいて用量依存的関係で強力な抗ウイルス効果を有することが分かった。即ち、より高い割合の患者が、同程度の投与量のTMB−355と比較して、UB−421処置により血清HIV−1 RNAレベルにおいて1log10超の減少を達成した。
図23a〜図23cに示すように、UB−421を用いる本研究からの有効性データの理論上の比較を、TMB−355(TNX−355として以前から知られている;Kuritzkes, D. R.ら、2004、図1)について以前に報告された有効性データに対して行った。この比較によれば、UB−421は、評価した対象の100%において10mg/kgまたは25mg/kgの単回投与を与えるとウイルス量において10倍の減少を達成したが、TMB−355は、同じ投与量を用いた対象の83%のみでウイルス量において10倍の減少しか達成することができなかった。
11.1.2.薬物動態の結果。 上記列挙した薬物動態(PK)パラメータを、本研究で使用したUB−421の各用量(1、5、10および25mg/kg)について評価した。表19は、各コホート中の3人の対象からの評価したいくつかのPKパラメータ(Cmax、AUC(0→∞)1/2およびMRT)の結果を要約したものである。この結果は、各PKパラメータのデータ値と投与されたUB−421の投与量との間に相関を示した。つまり、1mg/kgから25mg/kgへのUB−421の用量の増加は、評価したPKパラメータにおける増加に一致している。具体的には、Cmaxは28.6μg/mLから462.5μg/mLに増加し、AUC(0→∞)は201μg−hr/mLから51367μg−hr/mLに増加し、T1/2は14.4時間から85.4時間に増加し、MRT(0→∞)は21.6時間から97.4時間に増加した。
11.1.3.安全性の結果。 UB−421の安全性特徴を、身体検査、バイタルサイン、臨床化学および血液検査、AE/SAEの発生率ならびにECGによって評価した。さらなる安全性評価を与えるために、CD4+T細胞数および抗UB−421抗体濃度も測定した。
重症度評価によるTEAEの全体的な発生率は、計30回の事象について65.0%(20人の対象中13人)であった。3人の対象が、重症度評価を有する6種類の処置関連AE、即ち対象B−001−001(1mg/kgのUB−421を投与)における段階1(軽度)の「掻痒」および「せつ」、対象A−015−009(10mg/kgのUB−421を投与)において段階1(軽度)の「リンパ球数の増加」、「好中球数の減少」および「血小板数の減少」、ならびに対象B−015−008(25mg/kgのUB−421を投与)における段階2(中程度)の「麻疹様発疹(rash morbilliform)」を有していると報告された。対象B−015−008における麻疹様発疹の出来事は、疑わしい予期せぬ重篤な有害事象(SUSAR:Suspected Unexpected Serious Adverse Reaction)であり、この対象は5日間の処置後に病院から退院させられた。1人の対象はUB−421に関連しない別のSAE、即ち対象A−012−005(5mg/kgのUB−421を投与)における痔瘻および痔核を有していると報告されたが、バイタルサインまたはECG結果において処置関連異常は認められなかった。この処置では投与は1回のみであったため、処置の中断や用量の変更は行われなかった。
抗UB−421抗体は、14日目(V7)に3人の対象(各コホート2、3および4から1人)において0.4μg/mLのアッセイ検出限界をちょうど僅かに超えたレベルで検出された。60日目(研究の終了)までのその後のどの来院時にも抗UB−421抗体は検出されなかった。関連するAEまたは他の身体的異常は、抗UB−421抗体の出現に付随していなかった。
また、CD4+T細胞数および細胞率は、60日間の処置期間中および処置のない経過観察期間中にも比較的安定であった。
要約すると、UB−421は、静脈内(IV)注入により1〜25mg/kgの用量範囲で単回用量を投与した場合、HIV−1感染した成人に対して安全であり、かつ十分忍容性があった。
12.結論
1〜25mg/kgの範囲の投与量でUB−421の単回静脈内注入を行うこの第I相研究では、UB−421がHIV−1感染した成人に対して安全であり、かつ十分に忍容性があることが実証された。AEの大部分は軽度であり、研究薬剤とは無関係であった。コホート4(25mg/kgの用量)において麻疹様発疹のSUSARの発生が1度だけ起こったが、この発生が本研究薬剤と関係があるか否かは明らかでなかった。14日目(V7)のみに0.4μg/mLのアッセイ検出限界を僅かにのみ超える抗体レベルを有する3人の対象においてUB−421に対する一過性の免疫反応が検出されたが、この抗体の出現は臨床的重要性が低いことを示唆している。本研究薬剤の薬物動態プロファイルに関して、主要なパラメータの傾向は用量レベルと相関していた。さらに、HIV−1ウイルス量抑制の程度および持続期間は、著しくかつ明白に5、10および25mg/kgのUB−421用量レベルと関連していたが、1mg/kg用量のコホートでは同じように明らかではなかった。
この治験から得られた安全性および有効性の結果の両方を考慮すると、無症状のHIV−1感染した成人の処置におけるさらなる開発のために少なくとも5mg/kgの用量レベルのUB−421が当然必要となる。
実施例14
無症状のHIV−1感染した成人におけるUB−421の安全性および有効性を調査するための第IIa相非盲検複数回投与用量依存性試験
1.研究目的
1.無症状のHIV−1感染した対象においてUB−421の2種類の用量レジメンの複数回投与の安全性および忍容性を評価すること。
2.これらの対象においてUB−421の2種類の用量レジメンの複数回投与の抗ウイルス活性の証拠を得ること。
3.最適なUB−421の用法および用量レジメンを決定するために抗ウイルス活性および安全性プロファイルを評価すること。
(臨床試験識別番号:NCT01668043)
2.研究設計
これはUB−421の反復静脈内投与による非盲検研究であった。HIV−1に対して血清陽性であり、かつ無症状の対象を適格性についてスクリーニングした。29人の登録された対象は、8週間の処置期間中に2種類の用量レベルの一方、即ち10mg/kgを1週間に1回(コホート1)または25mg/kgを2週間に1回(コホート2)の本研究薬剤(UB−421)の複数回の静脈内注入を受けた。対象を登録順に基づき研究場所および順番ごとに、この2つの研究コホートのうちの一方に割り当てた。対象を8週間の処置期間後にさらに8週間追跡調査した。この研究は16週目に終了した。
3.組み入れ基準
対象は第IIa相試験に適格となるために、以下の基準を満たさなければならなかった。
1.無症状、抗レトロウイルス療法(ART)未経験、HIV−1血清陽性
2.CD4+T細胞数が350細胞/mmを超えている
3.HIV−1ウイルス量が5,000コピー/mLを超えている
4.即時の処置を必要とする活動性感染がない(HIV−1を除く)
5.免疫調節剤または全身化学療法を使用していない
6.高活性抗レトロウイルス処置(HAART)を必要としていない
この研究の完了後に、対象らは外来診察室において定期的監視スケジュール(抗レトロウイルス剤なし)に従ったか、HIV/AIDSの診断および処置のための現在のガイドラインに従って、研究責任者によって必要とみなされたとき、標準処置の抗レトロウイルス療法(例えばHAART)を受けた。UB−421による第I相試験に登録され、かつ第IIa相試験の組み入れ基準を満たした個体は、この研究に参加することを認められた。
4.治験薬
UB−421(dB4C7 mAb)は10mg/mLの濃度(10mLのバイアル中100mg)で提供された。
各登録された対象は、8週間にわたって以下の投与量レベル:10mg/kgを1週間に1回(コホート1)または25mg/kgを2週間に1回(コホート2)のうちの一方でUB−421の複数回の静脈内注入を受けた。UB−421の適切な体積は、指定された用量および対象の体重に基づいていた。コホート内の各個々の対象に同等の注入体積の薬剤が注入されるように、各個々の用量の体積を無菌の生理食塩水を用いて調節した。注入の全量は、10mg/kg用量のコホートでは約100mL、25mg/kg用量のコホートでは約200mLであった。各投与の注入時間は約1〜2時間であった。
5.評価基準
5.1.主要安全性および有効性評価項目
UB−421の以下の安全性および忍容性パラメータを16週目(研究の終了)まで評価した。
1.身体検査(PE)
2.バイタルサイン
3.臨床化学および血液検査
4.有害事象(AE)/深刻な有害事象(SAE)の発生率
研究期間中(V2からV12まで)、UB−421の以下の有効性パラメータを各研究コホートについて評価した。
1.個々の最大ウイルス量減少
2.平均的な最大ウイルス量減少
5.2.副次的ウイルス学的評価項目
この研究期間(V2からV12まで)中に、以下のウイルス学的反応を評価した。
1.各研究コホート内およびその間のサブグループごとに個々の最大ウイルス量減少および平均的な最大ウイルス量減少
2.50コピー/mL未満のウイルス量を有する対象の割合
3.200コピー/mL未満のウイルス量を有する対象の割合
4.0.5log10コピー/mL超のウイルス量減少を有する対象の割合
5.1log10コピー/mL超のウイルス量減少を有する対象の割合
6.コホート1およびコホート2のそれぞれについて、最後に完了した研究薬剤投与後7日目および14日目までにウイルスリバウンドを有する対象の割合(ウイルス量における最下点からの0.5log10超の増加)
7.抗UB−421抗体の血清中濃度(UB−421の免疫原性)
8.CD4+およびCD8+T細胞数における変化
9.UB−421の薬物動態パラメータ(Cmax、AUC(0→∞)およびAUC(0→last)
6.解析集団
包括解析(ITT)集団:本研究薬剤の少なくとも1回の投与を受けた29人の対象。コホート1およびコホート2のITT集団はそれぞれ14人の対象および15人の対象であった。
パープロトコル(PP)集団:有効なベースラインおよび少なくとも1回の有効な処置後有効性測定値(HIV−1ウイルス量の試験)を有し、かつ主要なプロトコル違反のない本研究薬剤の全ての投与を受けた18人の対象。コホート1およびコホート2のPP集団はそれぞれ7人の対象および11人の対象であった。
安全性および免疫原性集団:包括解析集団に含まれる29人の対象。
薬物動態集団:安全性および免疫原性集団内のサブセット集団に基づいていた。
安全性および免疫原性集団に対してベースラインデータおよび安全性評価項目を分析し、ITTおよびPP集団の両方に対して有効性の分析を行った。薬物動態集団に対して薬物動態分析を行った。
7.研究期間の持続期間
スクリーニング期間:<4週間
処置期間:8週間
経過観察期間:処置期間の終了後8週間
来院0は、最初のスクリーニングを表し、研究中の各来院は1週間の期間を表す。追跡調査期間は一般に1週間に1回の間隔で行った。
8.結果の要約
8.1.調査対象母集団
台湾の2箇所の研究場所において計33人の無症状のHIV感染した成人をスクリーニングした。これらの対象のうち、29人の対象がスクリーニング基準に合格し、この治験のために選択された。29人全ての適格な対象は男性であった。
8.2.安全性および忍容性の結果
29人全ての対象がこの研究中に少なくとも1回のAEを経験し、全部で128回のAEが生じた。そのうち、114回(29人全ての対象において89.06%)は処置により発現した有害事象(TEAE)であり、14回は(5人の対象において10.94%)処置前AEであった。29人の対象において深刻な有害事象(SAE)は観察されなかった。全ての処置前AEはUB−421とは無関係であり、これらの事象はいずれもSAEとはみなされなかった。報告されたTEAEの大部分(78.95%)は軽度であり、17.54%は中程度であり、3.51%(1人の対象)は深刻であった。
最も頻繁に観察された(10%超)TEAEは発疹および蕁麻疹であった。有害事象以外には、血液(22人の対象において154回の事象)および生化学(6人の対象において32回の事象)臨床検査結果における異常が22人の対象において観察された。但し、それらの変化の大部分は微小であり、臨床的な意義はなかった。この研究期間中の身体検査結果およびバイタルサインは大部分が正常であったか臨床的な意義を有しなかった。
この研究期間中にUB−421は十分に忍容性があり、臨床試験プロトコルによって指定される8週間の処置期間の全体的な処置忍容性は73.84%であった。
8.3.薬力学
8.3.1.CD4TおよびCD8T細胞の数。 8週間の処置期間および8週間の経過観察期間後に、平均CD4T細胞数はベースラインから55.10±117.97細胞/mmで僅かに減少し、平均CD8T細胞数はベースラインから193.31±459.34細胞/mmで増加した。コホート1の対象の代表的なCD4T細胞数および平均CD4 T細胞数を表22aおよび図24aに示す。コホート2の対象の代表的なCD4T細胞数および平均CD4 T細胞数を表22bおよび図24bに示す。
8.3.2.UB−421によるCD4受容体の被覆。 蛍光結合のUB−421を用いるフローサイトメトリーでCD4受容体被覆の程度を検出した。4人の代表的な対象(コホート1から2人およびコホート2から2人)から得られた結果を、図25a〜図25b及び図25c〜図25dにそれぞれ示す。このアッセイの感度は0.15μg/mLである。10mg/kgを1週間に1回または25mg/kgを2週間に1回で反復投与した際のUB−421の臨床的有効性は、10μg/mL超(単剤療法として使用した場合のUB−421の血清レベル)の存在下で検出不能なレベルへのウイルスの減少を示した。PBMC CD4+細胞が完全に被覆されている(即ち、dB4C7−Alexa結合率が0に近づく)限り、ウイルスリバウンドは存在しない。
両投与量レベルのUB−421を2〜3回投与した後に、PBMC上のCD4受容体のUB−421による完全被覆が達成された。さらに、処置期間全体を通してUB−421によるCD4+T細胞の完全被覆は維持された(図25a〜図25d、上側のパネル)。対象の大部分において、蛍光性dB4C7 mAb(dB4C7−Alexa)の結合により測定されるように、UB−421のCD4受容体への結合は減少し、最後のUB−421注入後3週間以内にベースライン値に戻った。
この研究中に、対象の血清中に存在するUB−421の濃度を評価して、完全なCD4被覆およびHIV−1ウイルス抑制を達成するのに十分なUB−421の血清中濃度を測定した。得られたデータによれば、UB−421の血清中濃度が10μg/mL超で維持される限り、UB−421によるCD4+T細胞の一定の完全被覆およびHIV−1ウイルス抑制が達成された(図25a〜図25d、下側のパネル)。
8.4.薬物動態
コホート1で観察された平均AUCは、17300±10000μg×hr/mL(来院1〜2)から23900±10700μg×hr/mL(来院8〜9)に増加し、次いで来院11〜12の際にベースラインに戻った。コホート1で観察された平均AUC(0→last)は171000±70300μg×hr/mLであった。
コホート2で観察された平均AUCは56500±19500μg×hr/mL(来院1〜3)から61100±20700μg×hr/mL(来院7〜9)に増加し、次いで来院11〜12の際にベースラインに戻った。コホート2で観察された平均AUC(0→last)は、239000±73900μg×hr/mLであった。
これらのデータは、AUC(0→last)によって評価した場合の平均血清中薬物濃度が、10mg/kgで1週間に1回UB−421注入を受けた対象(コホート1、171000±70300μg×hr/mL)よりも25mg/kgで2週間に1回UB−421注入を受けた対象(コホート2、239000±73900μg×hr/mL)において高いことを実証している。
8.5.有効性の結果
29人のHIV−1感染した対象をこの研究に採用し、少なくとも1回の投与のUB−421を与えた(ITT集団)。採用された29人の対象のうち、計18人の対象が8週間の処置期間を完了し、本研究薬剤の全ての投与を受けた(PP集団)。この研究中に、登録された無症状のHIV−1感染した対象の個々および平均的な最大ウイルス量減少を評価することにより、UB−421の複数回投与の有効性を評価し、コホート1および2のITTおよびPP集団の結果を表20に要約する。
ITTまたはPP集団のいずれかにおいて平均的な最大ウイルス量減少は2種類の投与量レベル間で著しく異ならないことが分かった。具体的には、ITT集団におけるウイルス量は、コホート1では2.27±0.60log10コピー/mL、コホート2では2.45±0.46log10コピー/mL減少した。PP集団におけるウイルス量は、コホート1では2.73±0.34log10コピー/mL、コホート2では2.47±0.45log10コピー/mL減少した。
この処置期間中、全て(n=29、100.00%)の研究対象において、0.5log10コピー/mL以上のウイルス量の減少が観察され、全て(n=29、100.00%)の研究対象において、1log10コピー/mL以上のウイルス量の減少も観察された。
この処置期間中に得られたデータのさらなる評価から以下のことが明らかとなった。
コホート1において、ITTの8/14人(57.14%)の対象およびPPの5/7人(71.43%)の対象が200コピー/mL以下のウイルス量を有し、さらに、ITTの3/14人(21.43%)の対象およびPPの3/7人(42.86%)の対象が、50コピー/mL未満のウイルス量を有していた。
コホート2において、ITTの10/15人(66.67%)の対象およびPPの7/11人(63.64%)の対象が200コピー/mL以下のウイルス量を有し、ITTの3/15人(20.00%)の対象およびPPの2/11人(18.18%)の対象が50コピー/mL未満のウイルス量を有していた。
コホート1および2の対象に関する代表的なウイルス量減少データを、表21a〜表21c及び図25a〜図25d(上側のパネル)に示す。各コホート内、コホート間または各コホート内の亜集団の間で、ウイルス量減少を有する対象の割合において統計的に著しい差はなかった。さらに8週間の処置期間中、ウイルス量は、コホート1および2のそれぞれの対象の43%および18%において、現在のアッセイ検出限界(20コピー/mL)未満のレベルまで減少した。全ての対象において、ウイルス量の減少は持続し、CD4+T細胞はUB−421により完全に被覆された。ウイルス量は経過観察期間の終了までに両コホートにおいてベースラインレベルまで戻った。さらに、この処置期間中に研究対象のいずれにおいてもウイルスリバウンドは観察されなかった。この処置期間を通して、両コホートの患者から定量化可能な抗UB421抗体は検出されなかった(表21a〜表21c)。
8.6.UB−421とTMB−355との比較
UB−421についてこの研究で得られた結果を、他の研究者によって行われたTMB−355(イバリズマブ、かつてのTNX−355)に関する同様の研究(Jacobson, J. L.ら、2009;Toma, J.ら、2011およびPace, C. S.ら、2013)で得られた結果に対して評価した。図26aは、CD4+細胞の完全被覆を有するUB−421の存在下で、ウイルス量のリバウンドなしに最大3Log10超の優れたウイルス量の減少を示す。対照的に、TMB−355で処置を受けている患者は、CD4+細胞の完全被覆の存在下であっても、処置からたった1週間後に耐性ウイルス突然変異株の発生を示すウイルスリバウンドに直面した(図26b)。
これらの2種類の処置レジメンの比較により、図に示すように、HIV感染対象のUB−421による処置はTMB−355処置よりも確かな利点を有することが実証されている。具体的には、UB−421は、処置期間全体を通し、かつさらには経過観察期間に入って1週間または2週間の間に、3log10超の最大ウイルス量減少でHIVウイルス量の連続的な減少を与える。対照的に、TMB−355は初回投与により一時的なウイルス量の減少および約1log10の最大ウイルス量減少のみを与える。
また、TMB−355を用いた先行研究により、血清TMB−355の存在およびCD4陽性T細胞の完全被覆にも関わらず、処置に入って1週間後にHIVウイルスリバウンドが生じることが分かった(Jacobson, J. L.ら、2009)。この結果は、TMB−355(イバリズマブ)によって媒介される非競合的侵入阻害機序により、本抗体処置期間中に耐性HIV突然変異株が発生する可能性が高まるという上記実施例4における先の予測と一致している。実際に、ウイルス耐性突然変異株は、ウイルス量の減少のためにTMB−355処置を受けている患者のgp120のV5領域において同定された突然変異により発見された(Toma, J.ら、2011;Pace, C. S.ら、2013)。
9.結論
無症状のHIV−1感染した対象におけるUB−421による8週間の処置は、十分に忍容性があることが分かった。さらに、両コホート1および2の個々の対象の代表的なCD4+T細胞数(表22aおよび表22b)ならびに平均CD4 T細胞数(図24aおよび図24b)はそれぞれ、監視した2ヶ月の期間を通して安定なままであった。
さらに重要なことに、UB−421による処置では、全ての対象において著しいウイルス量の減少が生じた(処置した対象の100%が1log10コピー/mL以上の最大減少で応答した。両レジメン、即ち10mg/kgを1週間に1回(コホート1)および25mg/kgを2週間に1回(コホート2)の注入はウイルス量の減少における同様の有効性を示した。ITT集団における平均最大ウイルス減少は、コホート1では2.27±0.60log10コピー/mL、コホート2では2.45±0.46log10コピー/mLに達した)。UB−421により観察されたウイルス減少の有効性は、これまで試験したどの他の小分子抗HIV剤よりも優れている。
UB−421のこの慎重に実施された複数回投与第IIa相試験の臨床試験結果により、この処置期間中にウイルスリバウンドなしに、高い忍容性、安全性および単剤療法としてのウイルス量の減少における前例がない程の有効性が実証された。この研究で得られた結果は予期しないものであり、CD4のドメイン1に結合する抗CD4モノクローナル抗体が主要組織適合遺伝子複合体クラスII媒介性免疫機能による干渉により免疫抑制性であり、かつそのような療法はHIV疾患の処置には適していないという当該分野で長年抱かれていた疑いに矛盾するものである(Jacobson, J. L.ら、2009)。これらの結果は、UB−421を直交するHAARTおよび/またはHDACiなどの他のHIVリザーバー活性化剤と併用するさらなるHIV療法によりHIV感染の機能的治癒を達成することができることもさらに示唆している。
実施例15
HIV−1感染した成人における抗レトロウイルス療法の代替法としてのUB−421単剤療法を用いる処置法
図27は、抗レトロウイルス療法の代替法としてのUB−421単剤療法を用いる各種HIV患者集団のための処置法を示す。詳細な目的およびプロトコルについて以下に説明する。
1.適用される患者集団
安定な高活性抗レトロウイルス療法(HAART)によりウイルス抑制を有するHIV−1血清陽性対象は、そのような処置に適格である。
適格患者は、最初の4ヶ月間はIVまたはSC経路のいずれかにより投与されるUB−421を受け、次いでHAART処置の別のサイクルを受ける。UB−421およびHAART処置の両方を中止した際にウイルスリバウンドがもはや観察されず、それによりHIV感染の機能的治癒が生じるまで、「HAART−UB−421」交互処置サイクルを何回か繰り返すことができる。
より具体的には、これらの対象は、本研究薬剤(UB−421)の複数回の静脈内注入を2種類の用量レベル、即ち10mg/kgを1週間に1回または25mg/kgを2週間に1回のうちの一方をそれぞれ8週間および16週間の処置期間にわたって受ける。HAARTレジメンは最初のUB−421注入の前日に中止される。UB−421の投与前に、注入反応を予防するために研究責任者によって判断されるステロイドおよび抗ヒスタミン剤などの予防薬(前投薬)を対象に与える。最後の予定されたUB−421投与を完了した後、全ての対象は同日に、元の処置または他の適当なウイルス感受性抗レトロウイルス療法を再開する。HAARTレジメンの使用は研究責任者によって判断される。全ての患者のウイルス量およびCD4細胞数は、この処置期間中および処置期間の終了後6ヶ月間監視される。
2.組み入れ基準
以下の基準を全て満たしたとき、対象をこの処置法に組み入れることができる。
1.HIV−1血清陽性;
2.年齢20歳以上;
3.少なくとも2種類のヌクレオシド/ヌクレオチド逆転写酵素阻害剤(NRTI)+非ヌクレオシド系逆転写酵素阻害剤(NNRTI)、インテグラーゼ阻害剤またはプロテアーゼ阻害剤として定められたHAART処置を少なくとも2年間受けたことがあり、この処置が進行中であり、かつ本研究への参加前の1年以内に薬剤を変更していない;
4.スクリーニング来院前の1年以内に、CD4+T細胞数が500細胞/mm以上またはCD4割合が28%以上という2種類の測定値を有する;
5.スクリーニング来院前の4週間以内またはスクリーニング来院時に得られたCD4+T細胞数が500細胞/mm以上である;
6.HIV−1血漿RNAがスクリーニング来院前の少なくとも1年間は検出不能なままであり、1年につき少なくとも2回のウイルス量測定を行い、このウイルス量もスクリーニング来院前の4週間以内またはスクリーニング来院時に検出不能なままである(但し、スクリーニング来院の4週間より前の検出可能なHIV血漿RNAの1回の発現は参加を除外するものではない)。
3.除外基準
対象は以下の理由のいずれかによりこの処置法から除外される。
1.即時の処置を必要とするあらゆる活動性感染(HIVを除く);
2.HIV感染の米国疾病管理予防センター(CDC)の分類体系によるカテゴリーBおよびカテゴリーCの条件に該当するあらゆる以前に診断されたか活動性のAIDS指標疾患;
3.体重が80kg超;
4.スクリーニング前の12週間以内のあらゆる立証されたCD4+T細胞数が250細胞/mm未満またはCD4+T細胞率が14%以下;
5.UB−421の第I相または第IIa相試験のいずれかに以前に登録されたか抗UB−421抗体の存在のあらゆる履歴;
6.研究薬剤UB−421の初回投与前12週間以内のモノクローナル抗体に対するあらゆる以前の曝露;
7.研究者の見解においてスクリーニング、病歴および/または身体検査から対象を本研究への参加から除外すべきと判断される精神医学上および行動上の問題を含む、あらゆる重大な疾患(HIV−1感染以外)または臨床的に有意な所見;
8.本研究薬剤の初回投与前8週間以内のあらゆるワクチン接種;
9.本研究薬剤の初回投与前12週間以内のあらゆる免疫調節療法(インターフェロンを含む)、全身化学療法;
10.余命12ヶ月未満;
11.本研究薬剤の初回投与前12週間以内のあらゆる違法な静脈内薬物;
12.ウイルス学的処置不成功によるHAARTレジメンの2回以上の変更およびホジキンリンパ腫またはカポジ肉腫の既往歴;
13.研究者の見解において投薬および来院スケジュールならびにプロトコル評価に従う対象の能力を妨げるあらゆる現在のアルコールまたは違法薬物の使用。
4.製剤
UB−421(dB4C7 mAb)製剤は10mg/mLの濃度(10mLのバイアル中100mg)で提供される。対象は、静脈内注入による10mg/kgのUB−421を1週間に1回の8週間の投与または25mg/kgのUB−421を2週間に1回の8週間の投与のいずれかを受ける。
UB−421の適切な体積は、指定された用量および対象の体重に基づく。コホート内の各個々の対象に同等の注入体積の薬剤が注入されるように、各個々の用量の体積を無菌の生理食塩水を用いて調節した。注入の全量は10mg/kg用量のコホートでは約100mL、25mg/kg用量のコホートでは200mLであった。各投与の注入時間は約1〜2時間であった。
実施例16
HIV感染の機能的治癒のためにUB−421をHAARTと併用する処置法
図28は、HIV感染の機能的治癒のために抗体UB−421をHAARTと併用する各種HIV患者集団のための処置法を示す。適用される患者集団:(1)処置未経験HIV患者、(2)HAART処置で安定したHIV患者、および(3)HAART処置に失敗したHIV患者。
より具体的には、感染した対象におけるHIVの機能的治癒のための臨床的プロトコルは、2回の完全なサイクル(1年)の間に1回の処置サイクル(6ヶ月)として最初の4ヶ月間のIVまたはSC経路のいずれかによるUB−421の投与およびその後の2ヶ月の休薬期間により達成することができる。これらの同じ対象は、UB−421処置の2回の完全なサイクルの間にHAART処置も開始および継続する。2回の完全なサイクルの終了時に、HAARTおよびUB−421の両方を中止し、もし存在すればウイルスリバウンドが生じる時間を評価する(アームA)。同じ12ヶ月の期間を通してHAARTのみで処置した対象を含む対照群もHAART処置を中止する前に評価し、もし存在すればウイルスリバウンドが生じる時間を評価する(アームB)。
2サイクルのUB−421およびHAARTの同時処置および処置期間後の6ヶ月の計18ヶ月間に、全ての患者のウイルス量およびCD4細胞数を監視する。
アームA:10mg/kgを1週間に1回または25mg/kgを2週間に1回のUB−421投与を併用するHAART処置。アームB:HAART処置のみ。
2.機能的治癒におけるUB−421処置の設計(表23)
HAART剤を超えるUB−421の潜在的な利点
1.UB−421はHIV−1ウイルスの細胞間伝播を阻止する
2.UB−421はCD4のCDR2様ループを架橋して細胞を活性化させ、このようにしてHIV−1を潜伏状態から誘導および放出する
3.目標
1.HIVの無細胞および細胞間伝播の両方を阻止することにより、UB−421をHAARTと併用してHIV感染した対象に有効な処置および保護を与えること
2.HIVに感染した対象におけるHIVの機能的治癒を与えること
4.適用される患者集団
(1)HAART処置で安定したHIV患者、(2)HAART処置未経験HIV患者、および(3)HAART処置に失敗したHIV患者。
5.UB−421製剤
UB−421(dB4C7 mAb)製剤は、濃度10mg/mL(10mLのバイアル中に100mg)で提供される。対象は、静脈内注入により10mg/kgのUB−421を1週間に1回の8週間の投与または25mg/kgのUB−421を2週間に1回の8週間の投与のいずれかを受ける。
UB−421の適切な体積は、指定された用量および対象の体重に基づく。コホート内の各個々の対象に同等の注入体積の薬剤が注入されるように、各個々の用量の体積を無菌の生理食塩水を用いて調節した。注入の全量は、10mg/kg用量のコホートでは約100mL、25mg/kg用量のコホートでは約200mLであった。各投与の注入時間は約1〜2時間であった。
6.割り当てられた介入
以下の介入が割り当てられる。
6.1.アームA:UB−421とHAARTとの併用療法
1年間続く2回の完全なサイクルの間、対象を適当なHAART療法で連続的に処置し、かつUB−421でも処置する。UB−421処置の各サイクルは、4ヶ月間にわたる10mg/kgのUB−421の毎週の投与または25mg/kgのUB−421の隔週での投与およびその後のUB−421処置のない2ヶ月間を含む。
1年間の処置期間の完了後、HAARTおよびUB−421の両療法を中止する。さらなる観察研究を行い、HAARTおよびUB−421の非存在下でウイルスリバウンドが全く認められないことによりHIV感染の機能的治癒を確信する。
6.1.アームB:HAART処置のみ
対照群として、別個のセットの対象を同じ期間中にUB−421で処置せずに適当なHAART療法で連続的に処置する。
1年間の処置期間の完了後、HAART療法を中止し、対象をウイルスリバウンドについて監視する。
Figure 2017529355
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Claims (30)

  1. CD4のドメイン1に対する抗体を薬理学上有効量で対象に投与する工程を含む、HIVに曝露された対象の処置方法。
  2. 前記抗体がCD4のドメイン1のCDR2領域に特異的に結合する請求項1記載の方法。
  3. 前記抗体がモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、又はそれらの組み合わせである請求項2記載の方法。
  4. 前記抗体がヒト化モノクローナル抗体である請求項2記載の方法。
  5. 前記ヒト化モノクローナル抗体が、
    配列番号1のCDR1、配列番号2のCDR2、及び配列番号3のCDR3を有する重鎖アミノ酸配列;及び
    配列番号4のCDR1、配列番号5のCDR2、及び配列番号6のCDR3を有する軽鎖アミノ酸配列;
    を有する請求項4記載の方法。
  6. 前記ヒト化モノクローナル抗体が、配列番号11のアミノ酸配列を有する重鎖;及び配列番号13のアミノ酸配列を有する軽鎖;を有する請求項4記載の方法。
  7. 前記ヒト化モノクローナル抗体が、配列番号10のアミノ酸配列を有する重鎖;及び配列番号8のアミノ酸配列を有する軽鎖;を有する請求項4記載の方法。
  8. 前記重鎖が配列番号7のアミノ酸配列を有する請求項7記載の方法。
  9. HIVへの曝露前に前記ヒト化抗体を前記対象に投与する請求項8記載の方法。
  10. HIVへの曝露後に前記ヒト化抗体を前記対象に投与する請求項8記載の方法。
  11. HIVへの曝露後48時間以内に前記ヒト化抗体を投与する請求項10記載の方法。
  12. 前記ヒト化抗体を少なくとも約5mg/kg体重の投与量で前記対象に投与する請求項8記載の方法。
  13. 前記ヒト化抗体を前記対象に複数回投与する請求項12記載の方法。
  14. 前記ヒト化抗体を1週間に1回または2週間に1回の間隔で前記対象に投与する請求項13記載の方法。
  15. 抗ウイルス剤を前記対象に投与する工程をさらに有する請求項13記載の方法。
  16. 前記抗ウイルス剤が高活性抗レトロウイルス療法(HAART)剤である請求項15記載の方法。
  17. 前記HAART剤が、プロテアーゼ阻害剤又は非ヌクレオシド系逆転写酵素阻害剤と組み合わせたヌクレオシド系逆転写酵素阻害剤を有する請求項16記載の方法。
  18. 前記ヒト化抗体を前記HAART剤と同時に投与する請求項16記載の方法。
  19. 前記ヒト化抗体およびHAART剤を前記対象にあるサイクルに亘って投与する請求項16記載の方法であって、前記サイクルが
    i)前記ヒト化抗体を4ヶ月の期間にわたって1週間に1回または2週間に1回の間隔で前記対象に投与し、その後の2ヶ月間を休薬期間とする工程;及び
    ii) i)における6ヶ月の期間にHAART剤を前記対象に連続的に投与する工程;
    を有する、上記方法。
  20. 前記対象を2サイクルに亘って処置する請求項18記載の方法。
  21. HIV感染を有する対象の処置方法であって、
    a)CD4のドメイン1に対する抗体を薬理学上有効量;及び
    b)高活性抗レトロウイルス療法(HAART)剤;
    を有する処置レジメンを前記対象に投与する工程を有する、上記方法。
  22. 前記抗体がCD4のドメイン1のCDR2領域に特異的に結合する請求項21記載の方法。
  23. 前記抗体がモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、又はそれらの組み合わせである請求項22記載の方法。
  24. 前記抗体がヒト化モノクローナル抗体である請求項22記載の方法。
  25. 前記ヒト化モノクローナル抗体が、
    配列番号1のCDR1、配列番号2のCDR2、及び配列番号3のCDR3を有する重鎖アミノ酸配列;及び
    配列番号4のCDR1、配列番号5のCDR2、及び配列番号6のCDR3を有する軽鎖アミノ酸配列;
    を有する請求項24記載の方法。
  26. 前記ヒト化モノクローナル抗体が、配列番号11のアミノ酸配列を有する重鎖;及び配列番号13のアミノ酸配列を有する軽鎖;を有する請求項24記載の方法。
  27. 前記ヒト化モノクローナル抗体が、配列番号10のアミノ酸配列を有する重鎖;及び配列番号8のアミノ酸配列を有する軽鎖;を有する請求項24記載の方法。
  28. 前記ヒト化抗体を少なくとも約5mg/kg体重の投与量で前記対象に投与する請求項27記載の方法。
  29. 前記処置レジメンをあるサイクルに亘って前記対象に投与する請求項21記載の方法であって、前記サイクルが
    i)前記ヒト化抗体を4ヶ月の期間にわたって1週間に1回または2週間に1回の間隔で前記対象に投与し、その後の2ヶ月間を休薬期間とする工程;及び
    ii) i)における6ヶ月の期間にHAART剤を前記対象に連続的に投与する工程;
    を有する、上記方法。
  30. 前記対象を2サイクルで処置する請求項18記載の方法。
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