JP2020097621A - 目的に合わせた親和性を有する抗トランスフェリンレセプター抗体 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、ヒトトランスフェリンレセプターに対して設計されたオフレートを有する抗トランスフェリンレセプター抗体及び血液脳関門シャトルモジュールとしてのその使用に関する。
脳への低浸透性を有する神経障害剤、例えば、大型のバイオ医薬又は小分子剤等の脳への浸透は、神経血管系単位(NVU)における他の細胞コンポーネントと共に、広範で、不浸透性の血液脳関門(BBB)により、厳密に制限されている。この障害を克服するための多くの戦略が試されてきた。その1つが、脳毛細管内皮に発現している内在性レセプター(血液脳関門レセプター)により媒介される経細胞輸送経路を利用するものである。脳へのバイオ医薬のレセプター媒介性送達を可能にするリコンビナントタンパク質、例えば、モノクローナル抗体又はペプチドが、これらのレセプターに対して設計されてきた。しかしながら、脳への取込みを最大化する戦略は、脳内皮細胞(BEC)への誤った局在化を最小化するが、BECにおける特定の細胞小器官(特に、バイオ医薬の分解をもたらす小器官)への蓄積の程度は、不明なままである。
本明細書に報告されている抗トランスフェリンレセプター抗体は、血液脳関門を通過させて、脳内に脳エフェクター実体を輸送する、血液脳関門シャトルモジュールとして使用することができることが見出されている。特定の実施態様では、血液脳関門シャトルモジュールは、トランスフェリンレセプターに特異的に結合する、一価の結合実体である。本明細書に報告されている抗トランスフェリンレセプター抗体は、血液脳関門シャトルモジュールとして使用された場合、例えば、神経障害、例えば、アルツハイマー病、パーキンソン病、及びアルツハイマー病とパーキンソン病との併存疾患の診断又は処置に有用である。
・ヒトトランスフェリンレセプター(huTfR)及びカニクイザルトランスフェリンレセプター(cyTfR)に結合し、
・カニクイザルトランスフェリンレセプターに対する抗トランスフェリンレセプター抗体128.1のオフレート以下の(すなわち、多くても)、ヒトトランスフェリンレセプターに対するオフレートを有し、ここで、該オフレートは、表面プラズモン共鳴により決定され、ここで、抗トランスフェリンレセプター抗体128.1は、配列番号:64の重鎖可変ドメインと配列番号:65の軽鎖可変ドメインとを有し、
・0.11/s〜0.0051/sであり、これらを含むヒトトランスフェリンレセプターに対するオフレートで結合する。
i)配列番号:01の重鎖可変ドメインから得られたヒト化重鎖可変ドメインと、
ii)配列番号:26の軽鎖可変ドメインから得られたヒト化軽鎖可変ドメインとを含み、
ここで、カニクイザルトランスフェリンレセプターに対する抗トランスフェリンレセプター抗体128.1のオフレート以下の(すなわち、多くても)、ヒトトランスフェリンレセプターに対するオフレートを有し、
ここで、該オフレートは、表面プラズモン共鳴により決定され、
ここで、抗トランスフェリンレセプター抗体128.1は、配列番号:64の重鎖可変ドメインと配列番号:65の軽鎖可変ドメインとを有する、
抗トランスフェリンレセプター抗体である。
i)配列番号:24のアミノ酸配列に対して少なくとも90%の配列同一性を有する重鎖可変ドメイン(VH)配列と、
ii)配列番号:37のアミノ酸配列に対して少なくとも90%の配列同一性を有する軽鎖可変ドメイン(VL)配列とを含み、
ここで、該抗体は、配列番号:24の重鎖可変ドメイン(VH)配列と配列番号:37の軽鎖可変ドメイン(VL)配列とを含む抗体と約同じオフレートを有する、抗トランスフェリンレセプター抗体である。
i)配列番号:24のアミノ酸配列を有する重鎖可変ドメイン(VH)配列と、
ii)配列番号:37のアミノ酸配列を有する軽鎖可変ドメイン(VL)とを含む、抗トランスフェリンレセプター抗体である。
i)トランスフェリンレセプター及びAベータの両方、又は
ii)トランスフェリンレセプター及びCD20の両方、又は
iii)トランスフェリンレセプター及びアルファ−シヌクレインの両方、又は
iv)トランスフェリンレセプター及びリン酸化タウの両方、又は
v)トランスフェリンレセプター及びHER2の両方、又は
vi)トランスフェリンレセプター及びグルコセレブロシダーゼの両方
に結合する。
i)場合により、変異P329G、L234A、及びL235Aを有するヒトIgG1サブクラスのホモ二量体Fc領域、又は
ii)場合により、変異P329G、S228P、及びL235Eを有するヒトIgG4サブクラスのホモ二量体Fc領域、又は
iii)ヘテロ二量体Fc領域であって、
a)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366Wを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、及びY407Vを含み、もしくは
b)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366W及びY349Cを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、Y407V、及びS354Cを含み、もしくは
c)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366W及びS354Cを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、Y407V、及びY349Cを含む、ヘテロ二量体Fc領域、又は
iv)ヒトIgG4サブクラスのヘテロ二量体Fc領域であって、両Fc領域ポリペプチドが、変異P329G、L234A、及びL235Aを含み、かつ
a)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366Wを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、及びY407Vを含み、もしくは
b)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366W及びY349Cを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、Y407V、及びS354Cを含み、もしくは
c)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366W及びS354Cを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、Y407V、及びY349Cを含む、ヘテロ二量体Fc領域、又は
v)ヒトIgG4サブクラスのヘテロ二量体Fc領域であって、両Fc領域ポリペプチドが、変異P329G、S228P、及びL235Eを含み、かつ
a)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366Wを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、及びY407Vを含み、もしくは
b)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366W及びY349Cを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、Y407V、及びS354Cを含み、もしくは
c)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366W及びS354Cを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、Y407V、及びY349Cを含む、ヘテロ二量体Fc領域
を含む。
i)配列番号:52、53、54、55、56、57、及び58からなる群より選択される重鎖可変ドメイン、ならびに、配列番号:60、61、62、及び63からなる群より選択される軽鎖可変ドメイン、又は
ii)配列番号:2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、及び25からなる群より選択される重鎖可変ドメイン、ならびに、配列番号:27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、及び47からなる群より選択される軽鎖可変ドメイン
を含む、抗トランスフェリンレセプター抗体である。
本明細書において、実施例8の経細胞輸送アッセイ法において、高い経細胞輸送を示す、ウサギ抗体299のヒト化変異体が報告される。同抗体は、ヒト及びカニクイザルトランスフェリンレセプターに対する交叉反応性を有する、すなわち、トランスフェリンレセプターの両オルソログに対して特異的に結合し、良好な細胞染色を示し、ヒトトランスフェリンレセプターに対して、カニクイザルトランスフェリンレセプターに対するマウス抗体128.1と同様の半減期(オフレートにより反映)を有する。
重鎖可変ドメインにおいて、配列番号:66、68、及び72のHVRと、
軽鎖可変ドメインにおいて、配列番号:75、76、及び78のHVRとを含む、
ヒト化抗体である。
a)ヒトサブクラスIgG1の全長抗体、又は
b)ヒトサブクラスIgG4の全長抗体、又は
c)変異L234A、L235A、及びP329Gを有するヒトサブクラスIgG1の全長抗体、
d)変異S228P、L235E、及び場合により、P329Gを有するヒトサブクラスIgG4の全長抗体、
e)両重鎖における変異L234A、L235A、及びP329G、ならびに、一方の重鎖における変異T366W及びS354C、ならびに、それぞれの他方の重鎖における変異T366S、L368A、Y407V、及びY349Cを有するヒトサブクラスIgG1の全長抗体、又は
f)両重鎖における変異S228P、L235E、及び場合により、P329G、ならびに、一方の重鎖における変異T366W及びS354C、ならびに、それぞれの他方の重鎖における変異T366S、L368A、Y407V、及びY349Cを有するヒトサブクラスIgG4の全長抗体
である。
i)配列番号:24の重鎖可変ドメイン及び配列番号:37の軽鎖可変ドメインを含む第1結合部位と、
ii)第2結合部位であって、
a)配列番号:81の重鎖可変ドメイン及び配列番号:82の軽鎖可変ドメイン、又は
b)配列番号:83の重鎖可変ドメイン及び配列番号:84の軽鎖可変ドメイン、又は
c)配列番号:85の重鎖可変ドメイン及び配列番号:86の軽鎖可変ドメイン、又は
d)配列番号:87の重鎖可変ドメイン及び配列番号:88の軽鎖可変ドメイン、又は
e)配列番号:91の重鎖可変ドメイン及び配列番号:92の軽鎖可変ドメイン、又は
f)配列番号:89の重鎖可変ドメイン及び配列番号:90の軽鎖可変ドメイン、又は
g)配列番号:93の重鎖可変ドメイン及び配列番号:94の軽鎖可変ドメイン、又は
h)配列番号:79の重鎖可変ドメイン及び配列番号:80の軽鎖可変ドメイン
から選択される第2結合部位と、
を含む二重特異性抗体である。
(a)アミノ酸残基26〜32(L1)、50〜52(L2)、91〜96(L3)、26〜32(H1)、53〜55(H2)、及び96〜101(H3)において生じる超可変ループ(Chothia, C. and Lesk, A.M., J. Mol. Biol. 196 (1987) 901-917)と、
(b)アミノ酸残基24〜34(L1)、50〜56(L2)、89〜97(L3)、31〜35b(H1)、50〜65(H2)、及び95〜102(H3)において生じるCDR(Kabat, E.A. et al., Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th ed. Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD (1991), NIH Publication 91-3242)と、
(c)アミノ酸残基27c〜36(L1)、46〜55(L2)、89〜96(L3)、30〜35b(H1)、47〜58(H2)、及び93〜101(H3)において生じる抗原コンタクト(MacCallum et al. J. Mol. Biol. 262: 732-745 (1996))と、
(d)HVRアミノ酸残基46〜56(L2)、47〜56(L2)、48〜56(L2)、49〜56(L2)、26〜35(H1)、26〜35b(H1)、49〜65(H2)、93〜102(H3)、及び94〜102(H3)を含む、(a)、(b)、及び/又は(c)の組み合わせとを含む。
100×分数X/Y
平衡解離定数(KD)は、分子間相互作用を説明するのに、一般的に使用される。平衡解離定数は、2つの分子の互いに対する相互作用強度(例えば、親和性)の測定値として使用される。このため、KD値は、生体分子間の相互作用の強度についての測定値である。
本明細書において、適切なBBB輸送を確保するために、特定の範囲内にあるヒトトランスフェリンレセプターに対する結合性に対するオフレートを有する、抗トランスフェリンレセプター抗体が報告される。この範囲は、カニクイザルトランスフェリンレセプターについての表面プラズモン共鳴により測定されるマウス抗トランスフェリンレセプター抗体128.1(配列番号:64及び65で与えられる可変ドメインアミノ酸配列)のオフレートによる一端、及び、そのオフレートの5%(すなわち、20倍遅い解離)による他端において定義される。一実施態様において、ヒトトランスフェリンレセプターに対するオフレートは、0.11/s〜0.0051/sであり、これらを含む。
・ヒトトランスフェリンレセプター(huTfR)及びカニクイザルトランスフェリンレセプター(cyTfR)に結合し、
・カニクイザルトランスフェリンレセプターに対する抗トランスフェリンレセプター抗体128.1のオフレート以下の(すなわち、多くても)、ヒトトランスフェリンレセプターに対するオフレート(単位1/s)を有し、ここで、該オフレートは、表面プラズモン共鳴により測定され、抗トランスフェリンレセプター抗体128.1は、配列番号:64の重鎖可変ドメインと配列番号:65の軽鎖可変ドメインとを有し、
・0.11/s〜0.0051/sであり、これらを含むヒトトランスフェリンレセプターに対するオフレートで結合する。
a)ヒトサブクラスIgG1の全長抗体、又は
b)ヒトサブクラスIgG4の全長抗体、又は
c)変異L234A、L235A、及びP329Gを有するヒトサブクラスIgG1の全長抗体、
d)変異S228P、L235E、及び場合により、P329Gを有するヒトサブクラスIgG4の全長抗体、
e)両重鎖における変異L234A、L235A、及びP329G、ならびに、一方の重鎖における変異T366W及びS354C、ならびに、それぞれの他方の重鎖における変異T366S、L368A、Y407V、及びY349Cを有するヒトサブクラスIgG1の全長抗体、又は
f)両重鎖における変異S228P、L235E、及び場合により、P329G、ならびに、一方の重鎖における変異T366W及びS354C、ならびに、それぞれの他方の重鎖における変異T366S、L368A、Y407V、及びY349Cを有するヒトサブクラスIgG4の全長抗体
である。
一実施態様では、Kdを、放射線ラベルされた抗原結合アッセイ法(RIA)により測定する。一実施態様では、RIAを、対象となる抗体のFab版とその抗原とにより行う。例えば、抗原に対するFabの溶液結合親和性を、用量設定系列のラベルしていない抗原の存在下において、Fabを最少濃度の(125I)ラベル抗原により平衡化し、ついで、結合した抗原を抗Fab抗体コートプレートで捕捉することにより測定する(例えば、Chen, Y. et al., J. Mol. Biol. 293 (1999) 865-881を参照のこと)。アッセイ法のための条件を確立するために、MICROTITER(登録商標)マルチウェルプレート(Thermo Scientific)を、50mM 炭酸ナトリウム(pH9.6)中の5μg/mL 捕捉性抗Fab抗体(Cappel Labs)により一晩コートし、その後、PBS中の2%(w/v) ウシ血清アルブミンにより、室温(約23℃)で2〜5時間ブロッキングする。非吸着性プレート(Nunc #269620)において、100pM又は26pM [125I]抗原を、対象となるFabの連続希釈と混合する(例えば、Presta, L.G. et al., Cancer Res. 57 (1997) 4593-4599における、抗VEGF抗体であるFab−12の評価と一致)。ついで、対象となるFabを、一晩インキュベーションする。ただし、このインキュベーションは、平衡が達成されるのを確保するために、より長い期間(例えば、約65時間)継続してもよい。その後、混合物を、室温でのインキュベーション(例えば、1時間)のために捕捉プレートに移す。ついで、溶液を除去し、プレートを、PBS中の0.1% ポリソルベート20(TWEEN-20(登録商標))で、8回洗浄する。このプレートを乾燥させた時点で、150μL/ウェル シンチラント(MICROSCINT-20(商標);Packard)を加え、プレートを、TOPCOUNT(商標)ガンマカウンタ(Packard)において、10分間カウントする。最大結合の20%以下を提供する各Fab濃度を、競合的結合アッセイ法に使用するために選択する。
特定の実施態様では、本明細書に提供されている抗体は、抗体フラグメントである。抗体フラグメントは、Fab、Fab’、Fab’−SH、F(ab’)2、Fv、及びscFvフラグメント、ならびに以下に記載されている他のフラグメントを含むが、これらに限定されない。特定の抗体フラグメントのレビューについて、Hudson, P.J. et al., Nat. Med. 9 (2003) 129-134を参照のこと。scFvフラグメントのレビューについて、例えば、Plueckthun, A., In; The Pharmacology of Monoclonal Antibodies, Vol. 113, Rosenburg and Moore (eds.), Springer-Verlag, New York (1994), pp. 269-315を参照のこと。国際公開公報第93/16185号;米国特許第5,571,894号、及び同第5,587,458号も参照のこと。サルベージレセプター結合エピトープ残基を含み、延長したin vivo半減期を有するFab及びF(ab’)2フラグメントの検討については、米国特許第5,869,046号を参照のこと。
特定の実施態様では、本明細書に提供されている抗体は、キメラ抗体である。特定のキメラ抗体は、例えば、米国特許第4,816,567号;及びMorrison, S.L. et al.,Proc. Natl. Acad. Sci. USA 81 (1984) 6851-6855に記載されている。一例において、キメラ抗体は、非ヒト可変領域(例えば、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、又は非ヒト霊長類、例えば、サル由来の可変領域)と、ヒト定常領域とを含む。更なる例において、キメラ抗体は、「クラススイッチ」抗体である。同抗体において、クラス又はサブクラスは、親抗体のクラス又はサブクラスから変化している。キメラ抗体は、その抗原結合フラグメントを含む。
特定の実施態様では、本明細書に提供されている抗体は、多重特異性抗体、例えば、二重特異性抗体である。多重特異性抗体は、少なくとも2種類の部位に対する結合特異性を有するモノクローナル抗体である。特定の実施態様では、結合特異性の1つは、トランスフェリンレセプターに対するものであり、他のものは、任意の他の抗原に対するものである。二重特異性抗体は、トランスフェリンレセプターを発現している細胞に対して、細胞毒を局在化させるのにも使用することができる。二重特異性抗体は、全長抗体又は抗体フラグメントとして調製することができる。
a)第1抗原に特異的に結合する抗体の第1軽鎖及び第1重鎖と、
b)第2抗原に特異的に結合する抗体の第2軽鎖及び第2重鎖であって、第2軽鎖及び第2重鎖の可変ドメインVL及びVHが、互いに置き換えられている第2軽鎖及び第2重鎖とを含み、
ここで、第1抗原又は第2抗原が、ヒトトランスフェリンレセプターである、二価の二重特異性抗体である。
i) a)に基づく第1軽鎖の定常ドメインCLにおいて、124位のアミノ酸(Kabatに従ったナンバリング)は、正に電荷したアミノ酸により置換されており、ここで、a)に基づく第1重鎖の定常ドメインCH1において、147位のアミノ酸又は213位のアミノ酸(Kabat EUインデックスに従ったナンバリング)は、負に電荷したアミノ酸により置換されているか、
あるいは、
ii) b)に基づく第2軽鎖の定常ドメインCLにおいて、124位のアミノ酸(Kabatに従ったナンバリング)は、正に電荷したアミノ酸により置換されており、ここで、b)に基づく第2重鎖の定常ドメインCH1において、147位のアミノ酸又は213位のアミノ酸(Kabat EUインデックスに従ったナンバリング)は、負に電荷したアミノ酸により置換されている。
i) a)に基づく第1軽鎖の定常ドメインCLにおいて、124位のアミノ酸は、リシン(K)、アルギニン(R)、又はヒスチジン(H)(Kabatに従ったナンバリング)により独立して(好ましい一実施態様では、リシン(K)又はアルギニン(R)により独立して)置換されており、ここで、a)に基づく第1重鎖の定常ドメインCH1において、147位のアミノ酸又は213位のアミノ酸は、グルタミン酸(E)又はアスパラギン酸(D)(Kabat EUインデックスに従ったナンバリング)により独立して置換されているか、
あるいは、
ii) b)に基づく第2軽鎖の定常ドメインCLにおいて、124位のアミノ酸は、リシン(K)、アルギニン(R)、又はヒスチジン(H)(Kabatに従ったナンバリング)により独立して(好ましい一実施態様では、リシン(K)又はアルギニン(R)により独立して)置換されており、ここで、b)に基づく第2重鎖の定常ドメインCH1において、147位のアミノ酸又は213位のアミノ酸は、グルタミン酸(E)又はアスパラギン酸(D)(Kabat EUインデックスに従ったナンバリング)により独立して置換されている。
a)第1抗原に特異的に結合する抗体の第1軽鎖及び第1重鎖と、
b)第2抗原に特異的に結合する抗体の第2軽鎖及び第2重鎖であって、第2軽鎖及び第2重鎖の可変ドメインVL及びVHが、互いに置き換えられており、ここで、第2軽鎖及び第2重鎖の定常ドメインCL及びCH1が、互いに置き換えられている第2軽鎖及び第2重鎖とを含み、
ここで、第1抗原又は第2抗原が、ヒトトランスフェリンレセプターである、二価の二重特異性抗体である。
a)第1抗原に特異的に結合する抗体の第1軽鎖及び第1重鎖と、
b)第2抗原に特異的に結合する抗体の第2軽鎖及び第2重鎖であって、第2軽鎖及び第2重鎖の定常ドメインCL及びCH1が、互いに置き換えられている第2軽鎖及び第2重鎖とを含み、
ここで、第1抗原又は第2抗原が、ヒトトランスフェリンレセプターである、二価の二重特異性抗体である。
a)第1抗原に特異的に結合し、2つの抗体重鎖及び2つの抗体軽鎖からなる全長抗体と、
b)1〜4個の更なる抗原に特異的に結合する(すなわち、第2及び/又は第3及び/又は第4及び/又は第5抗原、好ましくは、1つの更なる抗原、すなわち、第2抗原に特異的に結合する)1、2、3、又は4本の一本鎖Fabフラグメントとを含み、
ここで、前記b)に基づく一本鎖Fabフラグメントが、前記a)に基づく全長抗体に、ペプチドリンカーを介して、前記全長抗体における重鎖又は軽鎖のC末端又はN末端において融合しており、
ここで、第1抗原又は更なる抗原の1つが、ヒトトランスフェリンレセプターである、多重特異性抗体である。
a)第1抗原に特異的に結合し、2つの抗体重鎖及び2つの抗体軽鎖からなる全長抗体と、
b) ba)抗体重鎖可変ドメイン(VH)又は
bb)抗体重鎖可変ドメイン(VH)及び抗体定常ドメイン1(CH1)から成る第1ポリペプチドであって、前記第1ポリペプチドが、そのVHドメインのN末端により、ペプチドリンカーを介して、前記全長抗体における2つの重鎖の一方のC末端に融合している第1ポリペプチドと、
c) ca)抗体軽鎖可変ドメイン(VL)又は
cb)抗体軽鎖可変ドメイン(VL)及び抗体軽鎖定常ドメイン(CL)からなる第2ポリペプチドであって、前記第2ポリペプチドが、VLドメインのN末端により、ペプチドリンカーを介して、前記全長抗体における2つの重鎖の他方のC末端に融合している第2ポリペプチドとを含み、
ここで、第1ポリペプチドの抗体重鎖可変ドメイン(VH)と第2ポリペプチドの抗体軽鎖可変ドメイン(VL)とが共に、第2抗原に特異的に結合する抗原結合部位を形成しており、
ここで、第1抗原又は第2抗原が、ヒトトランスフェリンレセプターである、三価の二重特異性抗体である。
i)重鎖可変ドメインの44位に対する軽鎖可変ドメインの100位、又は
ii)重鎖可変ドメインの105位に対する軽鎖可変ドメインの43位、又は
iii)重鎖可変ドメインの101位に対する軽鎖可変ドメインの100位(通常、Kabat EUインデックスに従ったナンバリング)
a)第1抗原に特異的に結合する全長抗体の第1軽鎖及び第1重鎖と、
b)第2抗原に特異的に結合する全長抗体の第2(改変)軽鎖及び第2(改変)重鎖であって、可変ドメインVL及びVHが、互いに置き換えられており、及び/又は、ここで、定常ドメインCL及びCH1が、互いに置き換えられている第2(改変)軽鎖及び第2(改変)重鎖と、
c)1つ又は2つの更なる抗原(すなわち、第3及び/又は第4抗原)に特異的に結合し、ペプチドリンカーを介して、a)及び/又はb)における軽鎖又は重鎖のC末端又はN末端に融合している1〜4つの抗原結合ペプチドとを含み、
ここで、第1抗原もしくは第2抗原又は更なる抗原の1つが、ヒトトランスフェリンレセプターである、三重特異性又は四重特異性抗体である。
a)第1抗原に特異的に結合する(2つのFabフラグメントを含む)抗体の2つの軽鎖及び2つの重鎖と、
b)第2抗原に特異的に結合する抗体の2つの更なるFabフラグメントであって、前記更なるFabフラグメントが両方とも、ペプチドリンカーを介して、a)における重鎖のC末端又はN末端のいずれかに融合しているFabフラグメントとを含み、
ここで、Fabフラグメントにおいて、下記改変が行われており、
i) a)の両Fabフラグメント又はb)の両Fabフラグメントにおいて、可変ドメインVL及びVHが、互いに置き換えられており、及び/又は、定常ドメインCL及びCH1が、互いに置き換えられており、
あるいは、
ii) a)の両Fabフラグメントにおいて、可変ドメインVL及びVHが、互いに置き換えられており、定常ドメインCL及びCH1が、互いに置き換えられており、
ならびに、
b)の両Fabフラグメントにおいて、可変ドメインVL及びVHが、互いに置き換えられており、又は、定常ドメインCL及びCH1が、互いに置き換えられており、
あるいは、
iii) a)の両Fabフラグメントにおいて、可変ドメインVL及びVHが、互いに置き換えられており、又は、定常ドメインCL及びCH1が、互いに置き換えられており、
ならびに、
b)の両Fabフラグメントにおいて、可変ドメインVL及びVHが、互いに置き換えられており、定常ドメインCL及びCH1が、互いに置き換えられており、
あるいは、
iv) a)の両Fabフラグメントにおいて、可変ドメインVL及びVHが、互いに置き換えられており、b)の両Fabフラグメントにおいて、定常ドメインCL及びCH1が、互いに置き換えられており、
あるいは、
v) a)の両Fabフラグメントにおいて、定常ドメインCL及びCH1が、互いに置き換えられており、b)の両Fabフラグメントにおいて、可変ドメインVL及びVHが、互いに置き換えられており、
ここで、第1抗原又は第2抗原が、ヒトトランスフェリンレセプターである、二重特異性の四価抗体である。
i) a)の両Fabフラグメントにおいて、又は、b)の両Fabフラグメントにおいて、可変ドメインVL及びVHが、互いに置き換えられており、及び/又は、定常ドメインCL及びCH1が、互いに置き換えられている。
i) a)の両Fabフラグメントにおいて、可変ドメインVL及びVHが、互いに置き換えられており、及び/又は、定常ドメインCL及びCH1が、互いに置き換えられている。
i) a)の両Fabフラグメントにおいて、定常ドメインCL及びCH1が、互いに置き換えられている。
i) b)の両Fabフラグメントにおいて、可変ドメインVL及びVHが、互いに置き換えられており、及び/又は、定常ドメインCL及びCH1が、互いに置き換えられている。
i) b)の両Fabフラグメントにおいて、定常ドメインCL及びCH1が、互いに置き換えられている。
a)第1抗原に特異的に結合し、第1VH−CH1ドメイン対を含む第1抗体の(改変)重鎖であって、前記重鎖のC末端に、前記第1抗体の第2VH−CH1ドメイン対のN末端が、ペプチドリンカーを介して融合している第1抗体の(改変)重鎖と、
b) a)における前記第1抗体の2つの軽鎖と、
c)第2抗原に特異的に結合し、第1VH−CLドメイン対を含む第2抗体の(改変)重鎖であって、前記重鎖のC末端に、前記第2抗体の第2VH−CLドメイン対のN末端が、ペプチドリンカーを介して融合している第2抗体の(改変)重鎖と、
d) c)における前記第2抗体の2つの(改変)軽鎖であって、それぞれが、CL−CH1ドメイン対を含む(改変)軽鎖とを含み、
ここで、第1抗原又は第2抗原が、ヒトトランスフェリンレセプターである、二重特異性の四価抗体である。
a)第1抗原に特異的に結合する第1全長抗体の重鎖及び軽鎖と、
b)第2抗原に特異的に結合する第2全長抗体の重鎖及び軽鎖であって、重鎖のN末端が、軽鎖のC末端にペプチドリンカーを介して結合している第2全長抗体の重鎖及び軽鎖とを含み、
ここで、第1抗原又は第2抗原が、ヒトトランスフェリンレセプターである、二重特異性抗体である。
a)第1抗原に特異的に結合し、2つの抗体重鎖及び2つの抗体軽鎖からなる全長抗体と、
b)第2抗原に特異的に結合し、VH2ドメイン及びVL2ドメインを含むFvフラグメントであって、両ドメインが、ジスルフィド架橋を介して、互いに結合しているFvフラグメントとを含み、
ここで、VH2ドメイン又はVL2ドメインのいずれかのみが、ペプチドリンカーを介して、第1抗原に特異的に結合する全長抗体の重鎖又は軽鎖に融合しており、
ここで、第1抗原又は第2抗原が、ヒトトランスフェリンレセプターである、二重特異性抗体である。
a)第1抗原に特異的に結合する2つのFabフラグメントと、
b)CH1及びCLドメインが互いに交換されている、第2抗原に特異的に結合する1つのCrossFabフラグメントと、
c)第1Fc領域重鎖及び第2Fc領域重鎖を含む1つのFc領域とを含み、
ここで、2つのFabフラグメントにおけるCH1ドメインのC末端が、重鎖Fc領域ポリペプチドのN末端に結合しており、
ここで、CrossFabフラグメントにおけるCLドメインのC末端が、Fabフラグメントの一方におけるVHドメインのN末端に結合しており、
ここで、第1抗原及び第2抗原が、ヒトトランスフェリンレセプターである、
二重特異性で三価の抗体である。
a)第1抗原に特異的に結合する2つのFabフラグメントと、
b)CH1及びCLドメインが互いに交換されている、第2抗原に特異的に結合する1つのCrossFabフラグメントと、
c)第1Fc領域重鎖及び第2Fc領域重鎖を含む1つのFc領域とを含み、
ここで、第1FabフラグメントにおけるCH1ドメインのC末端が、一方の重鎖Fc領域ポリペプチドのN末端に結合しており、CrossFabフラグメントにおけるCLドメインのC末端が、他方の重鎖Fc領域ポリペプチドのN末端に結合しており、
ここで、第2FabフラグメントにおけるCH1ドメインのC末端が、第1FabフラグメントにおけるVHドメインのN末端、又は、CrossFabフラグメントにおけるVHドメインのN末端に結合しており、
ここで、第1抗原及び第2抗原が、ヒトトランスフェリンレセプターである、二重特異性で三価の抗体である。
a)第1抗原に特異的に結合し、2つの抗体重鎖及び2つの抗体軽鎖からなる全長抗体と、
b)第2抗原に特異的に結合し、重鎖フラグメント及び軽鎖フラグメントを含むVH2ドメイン及びVL2ドメインを含むFabフラグメントであって、軽鎖フラグメントにおいて、可変軽鎖ドメインVL2が、前記抗体の可変重鎖ドメインVH2により置き換えられており、重鎖フラグメントにおいて、可変重鎖ドメインVH2が、前記抗体の可変軽鎖ドメインVL2により置き換えられている、Fabフラグメントとを含み、
ここで、重鎖Fabフラグメントが、全長抗体の一方の重鎖におけるCH1ドメインと全長抗体の各Fc領域との間に挿入されており、軽鎖Fab領域のN末端が、全長抗体の軽鎖におけるC末端にコンジュゲートしており、同軽鎖が、重鎖Fabフラグメントが挿入されている全長抗体の重鎖と対合しており、
ここで、第1抗原及び第2抗原が、ヒトトランスフェリンレセプターである、二重特異性抗体である。
a)第1抗原に特異的に結合し、2つの抗体重鎖及び2つの抗体軽鎖からなる全長抗体と、
b)第2抗原に特異的に結合し、重鎖フラグメント及び軽鎖フラグメントを含むVH2ドメイン及びVL2ドメインを含むFabフラグメントであって、軽鎖フラグメントにおいて、可変軽鎖ドメインVL2が、前記抗体の可変重鎖ドメインVH2により置き換えられており、重鎖フラグメントにおいて、可変重鎖ドメインVH2が、前記抗体の可変軽鎖ドメインVL2により置き換えられている、Fabフラグメントとを含み、
ここで、Fabフラグメントにおける重鎖フラグメントのC末端が、全長抗体の一方の重鎖におけるN末端にコンジュゲートしており、Fabフラグメントにおける軽鎖フラグメントのC末端が、全長抗体の軽鎖におけるN末端にコンジュゲートしており、同軽鎖が、Fabフラグメントの重鎖フラグメントがコンジュゲートしている全長抗体の重鎖と対合しており、
ここで、第1抗原及び第2抗原が、ヒトトランスフェリンレセプターである、二重特異性抗体である。
− N、R、Q、K、D、E、及びWから選択されるアミノ酸による、411位のアミノ酸Tの置換(Kabat EUインデックスに従ったナンバリング)、
− R、W、Y、及びKから選択されるアミノ酸による、399位のアミノ酸Dの置換(Kabat EUインデックスに従ったナンバリング)、
− E、D、R、及びKから選択されるアミノ酸による、400位のアミノ酸Sの置換(Kabat EUインデックスに従ったナンバリング)、
− I、M、T、S、V、及びWから選択されるアミノ酸による、405位のアミノ酸Fの置換(Kabat EUインデックスに従ったナンバリング)、
− R、K、及びDから選択されるアミノ酸による、390位のアミノ酸Nの置換(Kabat EUインデックスに従ったナンバリング)、ならびに
− V、M、R、L、F、及びEから選択されるアミノ酸による、392位のアミノ酸Kの置換(Kabat EUインデックスに従ったナンバリング)
である。
特定の実施態様では、本明細書に提供されている抗体のアミノ酸配列変異体が企図される。例えば、抗体の結合親和性及び/又は他の生物学的特性を改善するのが望ましい場合ある。抗体のアミノ酸配列変異体は、抗体をコードするヌクレオチド配列内に適切な改変を導入することにより、又は、ペプチド合成により調製することができる。このような改変は、例えば、抗体のアミノ酸配列内の残基からの欠失、及び/又は、同配列内への挿入、及び/又は、同配列内の残基の置換を含む。欠失、挿入、及び置換の任意の組み合わせが、最終的な構築物に達するのに行うことができる。ただし、最終的な構築物は、所望の特徴、例えば、抗原結合性を有するという条件である。
特定の実施態様では、1つ以上のアミノ酸置換を有する抗体変異体が提供される。置換変異誘発の対象となる部位は、HVR及びFRを含む。保存的置換は、「保存的置換」の見出しで表1に示されている。より実質的な変化は、「例示的な置換」の見出しで表1に提供され、アミノ酸側鎖の分類を参照して、更に以下に記載されているように提供される。アミノ酸置換は、対象となる抗体内に導入することができ、生成物は、所望の活性、例えば、保持/活性化された抗原結合性、低下した免疫原性、又は改善したADCCもしくはCDCについてスクリーニングすることができる。
(1)疎水性:ノルロイシン、Met、Ala、Val、Leu、Ile;
(2)中性親水性:Cys、Ser、Thr、Asn、Gln;
(3)酸性:Asp、Glu;
(4)塩基性:His、Lys、Arg;
(5)鎖配向に影響を及ぼす残基:Gly、Pro;
(6)芳香族性:Trp、Tyr、Phe
特定の実施態様では、本明細書に提供されている抗体は、抗体がグリコシル化されている度合いを向上又は低下させるように変異させる。抗体に対するグリコシル化部位の付加又は欠失は、アミノ酸配列を変異させることにより、都合良く達成することができる。これにより、1つ以上のグリコシル化部位が形成又は除去される。
特定の実施態様では、1つ以上のアミノ酸改変は、本明細書に提供されている抗体のFc領域内に導入することができ、これにより、Fc領域変異体を生成することができる。Fc領域変異体は、1つ以上のアミノ酸位置にアミノ酸改変(例えば、置換)を含む、ヒトFc領域配列(例えば、ヒトIgG1、IgG2、IgG3、又はIgG4のFc領域)を含むことができる。
特定の実施態様では、システイン操作抗体、例えば、「チオMAb」を形成するのが望ましい場合がある。同抗体において、抗体の1つ以上の残基は、システイン残基により置換されている。特定の実施態様では、置換された残基は、抗体のアクセッシブル部位において起こる。システインによりそれらの残基を置換することにより、反応性チオール基は、抗体のアクセッシブル部位に位置することで、抗体を他の部分、例えば、薬剤部分又はリンカー−薬剤部分にコンジュゲートして、本明細書に更に記載されているように、免疫コンジュゲートを形成するのに使用することができる。特定の実施態様では、任意の1つ以上の下記残基:軽鎖のV205(Kabatナンバリング);重鎖のA118(EUナンバリング);及び重鎖Fc領域のS400(EUナンバリング)は、システインにより置換することができる。システイン操作抗体は、例えば、米国特許第7,521,541号に記載されているように生成することができる。
特定の実施態様では、本明細書に提供されている抗体は、当技術分野において公知であり、容易に利用できる、更なる非タンパク質性部分を含有するように更に改変することができる。抗体の誘導体化に適した部分は、水溶性ポリマーを含むが、これに限定されない。水溶性ポリマーの非限定的な例は、ポリエチレングリコール(PEG)、エチレングリコール/プロピレングリコールのコポリマー、カルボキシメチルセルロース、デキストラン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリ−1,3−ジオキソラン、ポリ−1,3,6−トリオキサン、エチレン/マレイン酸無水物コポリマー、ポリアミノ酸(ホモポリマー又はランダムコポリマーのいずれか)、及びデキストラン又はポリ(n−ビニルピロリドン)ポリエチレングリコール、プロピレングリコールホモポリマー、ポリプロピレンオキシド/エチレンオキシドコポリマー、ポリオキシエチル化ポリオール(例えば、グリセロール)、ポリビニルアルコール、及びこれらの混合物を含むが、これらに限定されない。ポリエチレングリコールプロピオンアルデヒドは、水中でのその安定性のために、製造中での利点を有することができる。このポリマーは、任意の分子量のものであることができ、分岐鎖又は非分岐鎖であることができる。抗体に付着するポリマー数は変化させることができ、2つ以上のポリマーが付着する場合、それらは、同じか又は異なる分子であることができる。一般的には、誘導体化に使用されるポリマーの数及び/又は種類は、改善されるべき抗体の特定の特性又は機能を含むがこれらに限定されない考慮に基づいて、抗体誘導体が規定条件下での治療に使用されるであろうかどうか等を決定することができる。
全ての態様の一実施態様では、本抗体は、トランスフェリンレセプターに対する少なくとも1つの結合特異性と、治療ターゲットに対する少なくとも1つの結合特異性とを有する、多重特異性抗体である。一実施態様において、本抗体は、ヒトトランスフェリンレセプターに結合する第1抗原結合部位と、脳抗原に結合する第2抗原結合部位とを含む。更なる実施態様では、脳抗原は、Aベータ、上皮成長因子レセプター(EGFR)、ヒト上皮成長因子レセプター2(HER2)、アルファ−シヌクレイン、CD20、グルコセレブロシダーゼ、又はアミロイド前駆体タンパク質(APP)からなる群より選択される。好ましい一実施態様では、本多重特異性抗体は、
i)トランスフェリンレセプター及びAベータの両方、又は
ii)トランスフェリンレセプター及びCD20の両方、又は
iii)トランスフェリンレセプター及びアルファ−シヌクレインの両方、又は
iv)トランスフェリンレセプター及びリン酸化タウの両方、又は
v)トランスフェリンレセプター及びHER2の両方、又は
vi)トランスフェリンレセプター及びグルコセレブロシダーゼの両方
に結合する。
− 一価の結合実体としてのBBBR発現細胞の効率的な細胞結合
− 一価の結合実体としての効率的なin vitro経細胞輸送
− ヒト−カニクイザル交叉反応性(例えば、BIAcore及びFACS実験において)
に関して特徴付けることができる。
i)ローディング期中に細胞内に取り込まれた一価の結合実体の量
ii)ローディング及び洗浄後4時間での一価の結合実体の基底側量
iii)ローディング及び洗浄後4時間での一価の結合実体の頂端側量
iv)ローディング及び洗浄後0時間及び4時間での(細胞溶解による)細胞中の一価の結合実体の量
v)ローディング及び洗浄後0時間及び4時間での一価の結合実体の総量
i)400pg以上のローディング期中に細胞内に取り込まれた一価の結合実体の量、
ii)100pg以上のローディング及び洗浄後4時間での一価の結合実体の基底側量、及び
iii)150pg以上のローディング及び洗浄後4時間での一価の結合実体の頂端側量
を示さなければならないことが、見出されている。
i)抗体128.1のローディングの60%以上の、ローディング期中に細胞内に取り込まれた一価の結合実体の量、
ii)抗体128.1の基底側量の60%以上の、ローディング及び洗浄後4時間での一価の結合実体の基底側量、及び
iii)抗体128.1の頂端側量の60%以上の、ローディング及び洗浄後4時間での一価の結合実体の頂端側量
を示さなければならない。
抗体は、例えば、米国特許第4,816,567号に記載されているリコンビナント法及び組成物を使用して産生することができる。一実施態様において、本明細書に記載されている抗トランスフェリンレセプター抗体をコードする単離された核酸が提供される。このような核酸は、抗体のVLを含むアミノ酸配列及び/又はVHを含むアミノ酸配列(例えば、抗体の軽鎖及び/又は重鎖)をコードすることができる。更なる実施態様では、このような核酸を含む1つ以上のベクター(例えば、発現ベクター)が提供される。更なる実施態様では、このような核酸を含むホスト細胞が提供される。1つのこのような実施態様では、ホスト細胞は、(1)抗体のVLを含むアミノ酸配列及び抗体のVHを含むアミノ酸配列をコードする核酸を含むベクター、又は、(2)抗体のVLを含むアミノ酸配列をコードする核酸を含む第1ベクター及び抗体のVHを含むアミノ酸配列をコードする核酸を含む第2ベクターを含む(例えば、(1)又は(2)によりトランスフォーメーションされている)。一実施態様において、ホスト細胞は、真核生物、例えば、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞又はリンパ球細胞(例えば、Y0、NS0、Sp20細胞)である。一実施態様において、抗トランスフェリンレセプター抗体を調製する方法が提供される。ここで、同方法は、抗体の発現に適した条件下において、上記で提供されている抗体をコードする核酸を含むホスト細胞を培養することと、場合により、ホスト細胞(又はホスト細胞培養培地)から、抗体を回収することとを含む。
本明細書に提供されている抗トランスフェリンレセプター抗体は、当技術分野において公知の種々のアッセイ法により、その物理的/化学的特性及び/又は生物学的活性を特定し、スクリーニングし、又は、特徴付けることができる。
一態様において、本発明の抗体を、その抗原結合活性について、例えば、公知の方法、例えば、ELISA、アルファLISA、ウェスタンブロット、抗体、又は逆相アレイ等により試験する。
特定の実施態様では、本明細書に提供されている抗トランスフェリンレセプター抗体はいずれも、生体サンプル中のヒトトランスフェリンレセプターの存在を検出するのに有用である。本明細書で使用する場合、「検出すること」という用語は、定量的又は定性的検出を包含する。特定の実施態様では、生体サンプルは、細胞又は組織、例えば、脳組織を含む。
本明細書に記載されている抗トランスフェリンレセプター抗体の医薬製剤は、所望の度合いの純度を有するこのような抗体を、1つ以上の任意の薬学的に許容し得る担体と混合することにより、凍結乾燥製剤又は水溶液の状態で調製される(Remington's Pharmaceutical Sciences, 16th edition, Osol, A. (ed.) (1980))。薬学的に許容し得る担体は、一般的には、利用される用量及び濃度において、レシピエントに対して非毒性であり、バッファー、例えば、リン酸、クエン酸、及び他の有機酸;アスコルビン酸及びメチオニンを含む抗酸化剤;保存剤(例えば、オクタデシルジメチルベンジルアンモニウムクロリド;ヘキサメトニウムクロリド;ベンザルコニウムクロリド;ベンゼトニウムクロリド;フェノール、ブチルもしくはベンジルアルコール;アルキルパラベン、例えば、メチルもしくはプロピルパラベン;カテコール;レゾルシノール;シクロヘキサノール;3−ペンタノール;及びm−クレゾール);低分子量(約10残基未満)ポリペプチド;タンパク質、例えば、血清アルブミン、ゼラチン、もしくは免疫グロブリン;親水性ポリマー、例えば、ポリ(ビニルピロリドン);アミノ酸、例えば、グリシン、グルタミン、アスパラギン、ヒスチジン、アルギニン、もしくはリシン;グルコース、マンノース、もしくはデキストリンを含む単糖類、二糖類、及び他の炭水化物;キレート剤、例えば、EDTA;糖、例えば、ショ糖、マンニトール、トレハロース、もしくはソルビトール;塩形成カウンターイオン、例えば、ナトリウム;金属錯体(例えば、Zn−タンパク質錯体);ならびに/又は非イオン性界面活性剤、例えば、ポリエチレングリコール(PEG)を含むが、これらに限定されない。本明細書において、例示的な薬学的に許容し得る担体は、間質薬分散剤、例えば、可溶性の中性活性ヒアルロニダーゼ糖タンパク質(sHASEGP)、例えば、ヒト可溶性PH−20ヒアルロニダーゼ糖タンパク質、例えば、rhuPH20(HYLENEX(登録商標)、Baxter International, Inc.)を更に含む。rhuPH20を含む特定の例示的なsHASEGP及び使用方法は、米国特許出願公開公報第2005/0260186号及び同第2006/0104968号に記載されている。一態様において、sHASEGPは、1つ以上の更なるグリコサミノグリカナーゼ、例えば、コンドロイチナーゼと組み合わせられる。
本明細書に提供されている抗TfR抗体のいずれかは、治療方法に使用することができる。一態様において、医薬として使用するための抗TfR抗体が提供される。例えば、本発明は、血液脳関門を通過させて、治療化合物を輸送する方法であって、抗体がそれに結合した治療化合物を、BBBを通過させて輸送するように、治療化合物に結合した抗TfR抗体(例えば、TfR及び脳抗原の両方に結合する多重特異性抗体)をBBBに暴露させることを含む、方法を提供する。別の例では、本発明は、血液脳関門を通過させて、神経障害剤を輸送する方法であって、抗体がそれに結合した神経障害剤を、BBBを通過させて輸送するように、脳障害剤に結合した本発明の抗TfR抗体(例えば、TfR及び脳抗原の両方に結合する多重特異性抗体)をBBBに暴露させることを含む、方法を提供する。一実施態様において、BBBは、哺乳類(例えば、ヒト)、例えば、神経障害を有するものにおけるものである。同神経障害は、アルツハイマー病(AD)、脳卒中、痴呆、筋ジストロフィー(MD)、多発性硬化症(MS)、筋委縮性側索硬化症(ALS)、嚢胞性線維症、アンゲルマン症候群、リドル症候群、パーキンソン病、ピック病、パジェット病、ガン、外傷性脳傷害等を含むが、これらに限定されない。一実施態様において、神経障害は、末梢神経、アミロイドーシス、ガン(例えば、CNS又は脳に関与する)、眼疾患もしくは障害、ウイルスもしくは細菌感染、(例えば、CNS又は脳の)炎症、虚血、神経変性疾患、発作、行動障害、リソソーム蓄積症等から選択される。本発明の抗体は、1つ以上の会合した活性成分/結合した治療化合物を、BBBを通過させて、このような障害がその分子、細胞、又はウイルス/細菌的基礎となるCNS/脳内に輸送するその能力のために、このような神経障害の処置に特に適している。末梢神経障害は、不適切又は制御されていない神経シグナル伝達又は同シグナル伝達の欠損により特徴付けられる、神経系の疾患又は異常であり、慢性疼痛(侵害受容性疼痛を含む)、ガン関連疼痛を含む身体組織に対する傷害により生じる疼痛、神経障害疼痛(神経、脊髄、又は脳における異常により生じる疼痛)、及び(精神障害に完全に又はほとんど関連する)精神性疼痛、頭痛、偏頭痛、末梢神経、ならびに、このような末梢神経障害に付随する兆候及び症候群、例えば、めまい又は吐き気を含むが、これらに限定されない。
本発明の別の態様では、上記された障害の治療、予防、及び/又は診断に有用な材料を含有する製品が提供される。本製品は、容器と、容器上又は該容器に関連するラベル又は添付文書を含む。適切な容器は、例えば、ボトル、バイアル、シリンジ、IV溶液バッグ等を含む。容器は、各種の材料、例えば、ガラス又はプラスチックから形成することができる。容器は、組成物自体、又は、症状を治療し、予防し、及び/又は診断するのに有効な別の組成物との組み合わせで、組成物を保持し、無菌アクセスポートを有してもよい(例えば、容器は、静脈内溶液バッグ又は皮下注射針により突き刺し可能なストッパーを有するバイアルでもよい)。組成物中の少なくとも1つの活性剤は、本発明の抗体である。ラベル又は添付文書は、組成物が選択された症状を処置するのに使用されることを示す。さらに、本製品は、(a)本製品に含有される組成物を含む第1容器であって、同組成物が本発明の抗体を含む第1容器と、(b)本製品に含有される組成物を含む第2容器であって、同組成物が更なる細胞毒又はその他の方法での治療剤を含む第2容器とを含む。本発明のこの実施態様における製品は、組成物が特定の症状を処置するのに使用することができることを示す添付文書を更に含んでもよい。代替的に又は追加的に、本製品は、薬学的に許容し得るバッファー、例えば、注射用静菌水(BWFI)、リン酸緩衝生理食塩水、リンゲル液、及びデキストロース溶液を含む第2(又は第3)容器を更に含む。他のバッファー、希釈剤、フィルタ、針、及びシリンジを含む、商業的及びユーザ視点から望ましい他の材料を更に含んでもよい。
下記は、本発明の方法及び組成物の例示である。種々の他の実施態様を実施でき、上記提供される一般記載を提供すると理解される。
リコンビナントDNA技術
標準的な方法を使用して、Sambrook, J. et al., Molecular cloning: A laboratory manual; Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York, 1989に記載されているように、DNAを操作した。分子生物学的試薬を、製造メーカーの説明書に従って使用した。
所望の遺伝子セグメントを、Geneart GmbH(Regensburg, Germany)での化学合成により調製した。合成した遺伝子フラグメントを、増殖/増幅用のE. coliプラスミド内にクローニングした。サブクローニングされた遺伝子フラグメントのDNA配列を、DNAシークエンシングにより確かめた。あるいは、短い合成DNAフラグメントを、化学的に合成したオリゴヌクレオチドをアニーリングさせることにより、又は、PCRによりアッセンブリした。各オリゴヌクレオチドを、metabion GmbH(Planegg-Martinsried, Germany)により調製した。
特に断りない限り、全ての市販の化学薬品、抗体、及びキットを、製造メーカーのプロトコールに従って提供されたまま使用した。
ウサギ及びマウスの免疫化
マウスの免疫化
NMRIマウスを、ヒト又はカニクイザルの全長TfRをコードするプラスミド発現ベクターを使用して、100μg ベクターDNAの皮内適用により遺伝学的に免疫化し、続けて、エレクトロポレーションした(0.1ms中に1000V/cmの2方形波、間隔0.125s、続けて、10ms中に287.5V/cmの4方形波、間隔0.125s)。0、14、28、42、56、70、及び84日目に、6又は7回のいずれかの連続的な免疫化を、マウスに受けさせた。4回目及び6回目の免疫化を、カニクイザルTfRをコードするベクターにより行った。ヒトTfRをコードするベクターを、他の全ての免疫化に使用した。血液を、36、78、及び92日目に採取し、血清を調製した。同血清を、ELISAによる力価測定に使用した(以下を参照のこと)。最も高い力価を有する動物を、96日目に、106個のヒトTF−1細胞又は50μg リコンビナントのヘリカルドメイン(Leu122で始まり、Asn608で終わり、ヒトFc領域に対するN末端融合物としてHEK293F細胞中で発現しており、プロテインA親和性クロマトグラフィー及びサイズ排除クロマトグラフィーにより精製される、ヒトTfRの細胞外ドメイン)を欠いたヒト可溶性TfRのいずれかの静脈内注入によりブースティングするのに選択した。モノクローナル抗体を、安定してトランスフェクションされたCHO−K1細胞の表面上に発現している、ヒト及びカニクイザルのトランスフェリンレセプターに結合するその能力に基づいて、ハイブリドーマ技術により単離した(実施例3を参照のこと)。
ニュージーランドホワイトウサギ又はヒト化抗体レパートリを発現しているトランスジェニックウサギを、ヒト又はカニクイザルの全長TfRをコードするプラスミド発現ベクターを使用して、400μg ベクターDNAの皮内適用により遺伝学的に免疫化し、続けて、エレクトロポレーションした(10ms中に750V/cmの5方形波、間隔1s)。0、14、28、56、84、及び112日目に、6回の連続的な免疫化を、ウサギに受けさせた。4回目及び6回目の免疫化を、カニクイザルTfRをコードするベクターにより行った。ヒトTfRをコードするベクターを、他の全ての免疫化に使用した。血液(推定合計血液量の10%)を、35、63、91、及び119日目に採取し、血清を調製した。同血清を、ELISAによる力価測定に使用した(以下を参照のこと)。末梢単核球を単離し、B細胞クローニング法における抗原特異的B細胞のソースとして使用した(実施例2を参照のこと)。
ヒトリコンビナント可溶性TfR(R&D Systems Cat. No. 2474-TR)を、96ウェルのNUNC Maxisorbプレートに、PBS中の3μg/mL、100μL/ウェルで固定し、続けて、同プレートを、PBS中の2% CroteinC、200μL/ウェルでブロッキングし、PBS中0.5% CroteinC、100μL/ウェルで、二重での抗血清の連続希釈を加え、(1)全てのマウス血清について、HRPコンジュゲートヤギ抗マウス抗体(Jackson Immunoresearch/Dianova 115-036-071;1/16000)、(2)全てのウサギ血清について、HRPコンジュゲートロバ抗ウサギIgG抗体(Jackson Immunoresearch/Dianova 711-036-152;1/16000)、(3)トランスジェニックウサギの血清のみについて、ウサギ抗ヒトIgG抗体(Pierce/Thermo Scientific 31423;1/5000)、(4)トランスジェニックウサギからの血清のみについて、ビオチン化ヤギ抗ヒトカッパ抗体(Southern Biotech/Biozol 2063-08、1/5000)及びストレプトアビジン−HRPにより検出し、PBS中の0.5% CroteinC、100μL/ウェルで希釈した。全ての工程について、プレートを、37℃で1時間インキュベーションした。全ての工程間において、プレートを、PBS中の0.05% Tween20で3回洗浄した。シグナルを、BM Blue POD Substrate soluble(Roche)を100μL/ウェルで加えることにより発生させ、1M HClを100μL/ウェルで加えることにより停止させた。吸光度を、参照としての690nmに対して、450nmで読み出した。力価を、最大半量シグナルをもたらす抗血清の希釈として定義した。
ウサギからのB細胞クローニング
ウサギ末梢血単核球(PBMC)の単離
要約すると、血液サンプルを、6匹の動物(2匹の野生型(wt)ウサギ及び4匹のトランスジェニック(tg)ウサギ)から採取した。これらのウサギを、2通りの免疫化キャンペーン:2匹のwtウサギ及び2匹のtgウサギを含む第1キャンペーン及び2匹のtgウサギを含む第2キャンペーンから得た(実施例「ウサギの免疫化」も参照のこと)。EDTA含有全血を、lympholyte mammal(Cedarlane Laboratories, Burlington, Ontario, Canada)を使用し、製造メーカーの仕様書に従って、密度遠心分離前に1×PBS(PAA, Pasching, Austria)で2倍希釈した。PBMCを、1×PBSで2回洗浄した。
RPMI1640(Pan Biotech, Aidenbach, Germany)に、10% FCS(Hyclone, Logan, UT, USA)、2mM グルタミン、1% ペニシリン/ストレプトマイシン溶液(PAA, Pasching, Austria)、2mM ピルビン酸ナトリウム、10mM HEPES(PAN Biotech, Aidenbach, Germany)、及び0.05mM β−メルカプトエタノール(Gibco, Paisley, Scotland)を添加した。
第1免疫化キャンペーン:CHO細胞のコンフルエントな単層で覆った、無菌の6ウェルプレート(細胞培養グレード)を、非特異的付着によるマクロファージ/単球及び非特異的に結合するリンパ球を枯渇させるのに使用した。
ヒトトランスフェリンレセプター陽性CHO細胞の単層で覆った6ウェルの組織培養プレートに、4mL 培地当たりに6×106個以下のPBLを播種し、インキュベーター中において37℃で1時間結合させた。付着しなかった細胞を、1×PBSで1〜2回、ウェルを注意深く洗浄することにより除去した。残りの付着した細胞を、トリプシンにより、インキュベーター中において37℃で10分間引き剥がした。トリプシン処理を、EL−4 B5培地により停止させた。細胞を、免疫蛍光染色まで、氷上で維持した。
抗IgG FITC(AbD Serotec, Dusseldorf, Germany)を、単一細胞ソーティングに使用した。表面染色のために、枯渇及び濃縮工程からの細胞を、PBS中の抗IgG FITC抗体と共にインキュベーションし、暗所において4℃で45分間インキュベーションした。染色後、PBMCを、氷冷PBSで2回洗浄した。最終的に、PBMCを、氷冷PBS中に再懸濁させ、FACS分析に直ちに供した。ヨウ化プロピジウム(BD Pharmingen, San Diego, CA, USA)を、FACS分析前に5μg/mLの濃度で加えて、死んだ細胞と生きている細胞との間を識別した。
ウサギB細胞の培養を、Zubler et al. (1985)に記載されている方法と同様の方法により準備した。簡潔に、単一ソーティングされたウサギB細胞を、200μL/ウェル Pansorbin Cells(1:100000)(Calbiochem (Merck), Darmstadt, Deutschland)、5% ウサギ胸腺細胞上清(charge TSN-M13 (10242), MicroCoat, Bernried, Germany)、及びガンマ線照射マウスEL−4−B5胸腺細胞(2.5×104個/ウェル)を含有するEL−4 B5培地を含む96ウェルプレート中で、インキュベーター中において、5% CO2の雰囲気下での37℃において7日間培養した。B細胞培養上清を、スクリーニングのために除去し、残った細胞を、直ちに収集し、RLTバッファー(Qiagen, Hilden, Germany) 100μL中において、−80℃で凍結させた。
細胞ELISAによるヒト及びカニクイザルTfR結合抗体の特定
ウサギB細胞又はマウスハイブリドーマの上清を、ヒト及びカニクイザルTfRを認識する抗体についてスクリーニングするために、安定してトランスフェクションされているCHO−K1細胞を使用する細胞ELISAを利用した。安定したトランスフォーマントを、ヒト又はカニクイザルTfRと、ネオマイシン−ホスホトランスフェラーゼのための発現カセットを含有する発現プラスミドによりCHO−K1細胞をトランスフェクションすることにより得た。トランスフェクション後、細胞を、500μg/mL G418(Life Technologies)を含有する増殖培地中で希釈した。クローンを増殖させた後、細胞を剥がし、MEM−75(Abcam)又は13E4(Life Technologies)及び、ヒトもしくはカニクイザルTfRのためのPEラベル二次抗体で染色した。高度に蛍光した細胞を、96ウェルプレートのウェル内で、単一細胞としてソーティングした(FACS Aria)。7日の増殖後、再度、クローンを、TfR発現について確認した。最も発現しているクローンを、細胞ELISA実験に選択した。
抗TfR抗体のクローニング及び発現
リコンビナントDNA技術
Sambrook, J. et al., Molecular cloning: A laboratory manual; Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York, 1989に記載されているように、標準的な方法を使用して、DNAを操作した。分子生物学的試薬を、製造メーカーの説明書に従って使用した。
所望の遺伝子セグメントを、Geneart GmbH(Regensburg、Germany)における化学合成により調製した。合成した遺伝子フラグメントを、増殖/増幅用のE. coliプラスミド中にクローニングした。サブクローニングした遺伝子フラグメントのDNA配列を、DNAシークエンシングにより確かめた。あるいは、短い合成DNAフラグメントを、化学的に合成したオリゴヌクレオチドをアニーリングさせることにより、又は、PCRによりアッセンブリした。各オリゴヌクレオチドを、metabion GmbH(Planegg-Martinsried, Germany)により調製した。
トータルRNAを、NucleoSpin 8/96 RNAキット(Macherey&Nagel; 740709.4, 740698)を使用し、製造メーカーのプロトコールに従って、(RLTバッファー−Qiagen - Cat. No 79216に再懸濁させた)B細胞ライゼートから調製した。RNAを、RNAseフリー水 60μLにより溶出した。RNA 6μLを使用し、製造メーカーの説明書に従って、Superscript III First-Strand Synthesis SuperMix(Invitrogen 18080-400)及びオリゴ−dT−プライマーを使用するリバーストランスクリプターゼ反応によりcDNAを生成した。全ての工程を、Hamilton ML Starシステムにおいて行った。cDNA 4μLを使用して、免疫グロブリン重鎖及び軽鎖の可変領域(VH及びVL)を、最終容量 50μLにおいて、野生型ウサギB細胞の重鎖についてのプライマーであるrbHC.up及びrbHC.do、軽鎖についてのプライマーであるrbLC.up及びrbLC.doと、トランスジェニックウサギB細胞の軽鎖についてのBcPCR_FHLC_leader.fw及びBcPCR_huCkappa.revを使用する、AccuPrime SuperMix(Invitrogen 12344-040)により増幅させた(以下の表を参照のこと)。全てのフォワードプライマーは、(VH及びVLそれぞれの)シグナルペプチドに特異的であった。一方、リバースプライマーは、(VH及びVLそれぞれの)定常領域に特異的であった。RbVH+RbVLについてのPCR条件は、下記の通りとした。94℃で5分の高温開始;94℃で20秒 35サイクル、70℃で20秒、68℃で45秒、及び68℃で7分での最後の伸長。HuVLについてのPCR条件は、下記の通りとした。94℃5分の高温開始;94℃で20秒 40サイクル、52℃で20秒、68℃で45秒、及び68℃で7分での最後の伸長。
ウサギモノクローナル二価抗体のリコンビナント発現のために、VH又はVLをコードするPCR産物を、オーバーハングクローニング法(RS Haun et al., BioTechniques (1992) 13, 515-518;MZ Li et al., Nature Methods (2007) 4, 251-256)により、発現ベクター内にcDNAとしてクローニングした。発現ベクターは、イントロンAを含む5’CMVプロモータと、3’BGHポリアデニル化配列とからなる発現カセットを含有した。同発現カセットに加えて、プラスミドは、E. coli中でのプラスミド増幅のための、pUC18由来の複製起点と、アンピシリン抵抗性を付与するベータ−ラクタマーゼ遺伝子とを含有した。基礎プラスミドの3つの変異体を使用した。1つのプラスミドは、VH領域を受け入れるように設計されたウサギIgG定常領域を含有する。一方、2つの更なるプラスミドは、VL領域を受け入れるウサギ又はヒトカッパLC定常領域を含有する。
モノクローナル一価抗体として選択した候補のリコンビナント発現のために、全てのVH鎖のウサギ定常領域を、CH3セグメント中にノブ突然変異を封入するヒト定常領域に変換した。ウサギ野生型B細胞由来のVL鎖のために、ウサギCカッパ定常領域を、ヒトに変換した。選択した候補のcDNA 4μLを使用して、免疫グロブリン重鎖及び軽鎖の可変領域を、最終容量 50μLにおいて、シグナルペプチドに特異的なフォワードプライマーと、(3’端における)(VH及びVLそれぞれの)ヒト定常領域に相同なオーバーラップ配列(20bp)を有するCDR3−J領域に特異的なリバースプライマーとを使用する、AccuPrime SuperMix(Invitrogen 12344-040)により増幅させた。VH及びVL鎖の増幅のためのPCR条件は、下記の通りとした。94℃で5分の高温開始;94℃で20秒 35サイクル、68℃で20秒、68℃で45秒、及び68℃で7分での最後の伸長。
一価の抗TfR抗体の一過性発現
抗体を、F17培地(Invitrogen Corp.)中で培養した、一過性にトランスフェクションしたHEK293細胞(ヒト胚性腎臓細胞系統293由来)中で、in vivoにおいて生成した。トランスフェクションのために、「293-Free」トランスフェクション試薬(Novagen)を使用した。上記されている抗体及び抗体ベースの改変分子を、個々の発現プラスミドから発現させた。トランスフェクションを、製造メーカーの説明書において特定されたように行った。リコンビナントタンパク質含有細胞の培養上清を、トランスフェクション後3〜7日で収集した。上清を、精製まで低温(例えば、−80℃)において保存した。
高スループットでの片腕トランスフェリンレセプター抗体の精製
96ディープウェルプレート中の片腕抗体を含有する洗浄上清 50mLを、MabSelectSuReカラム 200μLにロードした。pH7.4でのPBSによる洗浄工程後に、タンパク質を、Tecan/Atollシステムを使用して、2.5mM HClで溶出して、溶出液 0.5mLを得た。溶出液を、2M トリス pH8により中和した。精製したタンパク質を、Nanodrop分光計を使用して定量し、変性及び還元条件下におけるCE−SDS及び分析的SECにより分析した。高純度(95%超)のタンパク質を得るために、大部分の抗体は、サイズ排除クロマトグラフィーにおいて更に精製して、半抗体(half antibody)、ノブ−ノブ抗体、及びより高度の凝集体から分離しなければならない。次に、サンプル 500μLを、140mM NaCl pH6.0を含有する20mM ヒスチジン中で、Dionex UltiMate 3000を使用するSuperdex200 10/300GLに注入した。この方法は、1日当たりに25〜30個のサンプルを画分することができるため、片腕フォーマットでの大量のスクリーニングヒットを洗練することができる。画分をプールし、上記されたように再度分析した。
経細胞輸送アッセイ法のためのhCMEC/D3細胞培養
hCMEC/D3のための培地及びサプリメント(Weksler, B. B. et al., FASEB J. 19 (2005), 1872-1874)を、Lonzaから得た。hCMEC/D3細胞(26〜29回の継代)を、2.5% FBS、添加した成長因子の1/4を含有し、添加したヒドロコルチゾン、ゲンタマイシン、及びアスコルビン酸で完全に補完されたEBM2培地中で、コラーゲンコートしたカバーガラス(顕微鏡)又はフラスコにおいて、コンフルエントに培養した。
一価抗体の経細胞輸送アッセイ法
アッセイ法全体を、実施例1に記載されているのと別の方法で再構成した血清フリーEBM2培地中で行った。細胞を含むフィルタインサートを、一価抗体(濃度:2.67μg/mL)と共に、頂端側において、37℃で1時間インキュベーションした。続けて、頂端側及び基底側全体の培地を収集した。これらの値から、傍細胞フラックスを算出した。単層を、血清フリー培地中で、頂端側(400μL)及び基底側(1600μL)において、RTで3回×3〜5分間それぞれ洗浄した。全ての洗浄液を収集して、結合していない抗体の除去効率をモニターした。予め温めた培地を、頂端側チャンバに加え、フィルタを、(1% BSAを含有するPBSで一晩ブロッキングした)予め温めた培地 1600μLを含有する、新たな12ウェルプレートに移した。この時点で、特異的抗体取込みを決定するために、フィルタ上の細胞を、RIPAバッファー 500μL中で溶解させた。残ったフィルタを、37℃でインキュベーションし、サンプルを、種々の時点で収集して、抗体の頂端側及び/又は基底側での放出を決定した。サンプル中の抗体含量を、非常に高感度のIgG ELISAを使用して定量した(実施例3を参照のこと)。各時点において、データを、3つのフィルタ細胞培養物から生成した。
経細胞輸送アッセイ法後の高感度IgG ELISA
手順全体を、洗浄工程用の自動洗浄機を使用してRTで行った。384ウェルプレートを、PBS中の1μg/mL Fcγ−特異的な抗ヒト/マウスIgGにより、30μL/ウェルで2時間コートし、続けて、ヒト及びマウスIgGアッセイ法それぞれのために、1% BSA又は1% CroteinCを含有するブロッキングバッファーであるPBS中で、1時間インキュベーションした。経細胞輸送アッセイ法からの段階希釈したサンプルと、経細胞輸送アッセイ法に使用される標準的な濃度の抗体とを、プレートに加え、2時間インキュベーションした。4回の洗浄後、ブロッキングバッファー中の50ng/mL 抗ヒト/マウス−F(ab)2−ビオチンを、30μL/ウェルで加え、更に2時間インキュベーションした。6回洗浄した後、50ng/mL(huIgGアッセイ法)又は100ng/mL(mIgGアッセイ法) ポリ−HRP40−ストレプトアビジン(Fitzgerald;1% BSA及び0.05% Tween−20を含有するPBS中)を、30μL/ウェルで加え、30分間インキュベーションした。4回の洗浄後、免疫複合体を、BM化学発光基質(Roche)を30μL/ウェルで加えることにより検出した。発光シグナルを、発光プレートリーダを使用して測定し、濃度を、適合する検量線を使用して算出した。アッセイ法の感度を、10pg/mL〜10ng/mLの範囲とした。
hTfR変異体をトランスフェクションされた、CHO細胞の細胞ELISAによるエピトープマッピング
ヒトトランスフェリンレセプター(hTfR)上のエピトープ領域を決定可能にするために、ヒトとマウスとのTfR間のかなりの相同性(77%同一性)にも関わらず、両オルソログ間の良好な交差反応性を示す、細胞外部分に対する抗体が公知でないという論理的根拠に従って、突然変異を、表面露出アミノ酸のクラスターが整列させたマウスTfR配列(以下の表を参照のこと)中とは異なるアミノ酸を有する位置において、hTfR配列内に導入した。対応する突然変異を有するプラスミドのクローニングは上記されている。ヒトTfRバインダーのそれらのエピトープへの結合性をマッピングするために、CHO−K1細胞を、記載されているプラスミドにより、一過性にトランスフェクションした。抗体結合性を、細胞ELISAで測定した。簡潔に、通常の増殖培地(RPMI/10% FCS)中での実験の前日に、96ウェルプレートのウェル当たりに、104個の細胞を播種した。別の日に、培地を、OPTI-MEM血清低減培地(Gibco)に変更し、OPTI-MEM 1200μL、12μg プラスミドDNA、及びXtremeGENEトランスフェクション試薬(Roche) 12μLの混合物 10μLを、プレインキュベーションの30分後に、ウェルに加えた。細胞を、37℃/7.5% CO2で2日間インキュベーションした。ついで、培地を除去し、TfR抗体を、1nM〜100nMの濃度で増殖培地中に加え、続けて、4℃で2時間インキュベーションした。その後、抗体溶液を、PBS中の0.05% グルタルアルデヒドにより置き換えた。細胞を、RTで15分間固定し、ついで、PBSで2回洗浄し、HRPコンジュゲート抗ヒトFc二次抗体(BioRad;ELISAブロッキング試薬(Roche)中に1:2000)と共に、RTで1.5時間インキュベーションした。シグナルを、PBSで3回洗浄した後、ウェル当たりにTMB 50μLを使用して生成し、吸光度を、450nmで測定した。
ヒトTfR−抗体相互作用についての表面プラズモン共鳴系結合アッセイ法
結合性実験を、抗ヒトFab抗体(GE Healthcare, cat.no 28-9583-25)で予め処理したC1センサーチップ(GE Healthcare, cat.no. BR1005-35)を備える、BIAcore B 4000(GE Healthcare)において、標準的なアミノカップリング化学法を使用して、供給元のマニュアに従って行った。
マウス及びウサギ抗トランスフェリンレセプター抗体のVH及びVLドメインのヒト化
非ヒト抗トランスフェリンレセプター抗体を、下記のようにヒト化した。カッパ軽鎖を有するIgG1クラスの非ヒト抗トランスフェリンレセプター抗体のVH及びVLドメインを含むコード配列及びアミノ酸配列の特徴決定に基づいて、対応するヒト化抗トランスフェリンレセプター抗体を、クローン299についてのヒト生殖系フレームワークVH4_3及びVK1_10の組み合わせに基づくバックワード/フォワード変異をCDRグラフト化することにより生成した。
ヒト/カニクイザルTfRレセプター親和性を決定するための方法
この実施例において、解離挙動の比較についての、ヒトトランスフェリンレセプター親和性を決定するための方法を概説する。
ヒト/カニクイザルトランスフェリンレセプター解離のB4000相対順位付け
CAPセンサーチップ(Biotin CAPtureキットに備え付け、シリーズS #28-9202-34 GE)を、製造メーカーの説明書に従って、BIAcore B4000システムに搭載し、正規化し、流体力学法においてアドレスした。初回のサイクルにおいて、CAP試薬(該キットに備え付け)を、スポット1、2、4、及び5に対して、流速10μL/分で300秒間アドレスした。ヒトトランスフェリンレセプターの捕捉を、スポット1(ヒトトランスフェリンレセプター−ビオチン化)及びスポット5(カニクイザルトランスフェリンレセプター−ビオチン化)において、流速10μL/分及び接触時間30秒で行った。レセプターを、ランニングバッファー(1×PBS #28995084, GE Healthcare、0.25M NaClを添加)で、濃度50nMに希釈した。抗体を、全てのフローセルに、濃度系列100nM、50nM、25nM、及び0nMにおいて、流速30μL/分で180秒間注入した。解離時間を、300秒に設定した。CAPチップからの複合体全体の再生を、Biotin CAPtureキットに備え付けの再生溶液を利用して行った(流速10μL/分で120秒)。活性なタンパク質濃度を調整するために、2回目のサイクルを、スポット5において、ビオチン化プロテインA(#P2165-2MG, Sigma)を利用して、流速10μL/分及び接触時間30秒で行った。スポット1を、この対照サイクルでは、空のままとした。抗体及び再生を、サイクル1と同様に取り扱った。関連する反応速度データを、BIAcore B4000評価ソフトウェアを使用して算出した。ヒトトランスフェリンレセプターからの解離を、1:1解離フィットを適用して決定した。
Claims (23)
- ヒトトランスフェリンレセプターに特異的に結合するヒト化抗体であって、
重鎖可変ドメインにおいて、配列番号:66、68、及び72のHVRと、
軽鎖可変ドメインにおいて、配列番号:75、76、及び78のHVRとを含む、
ヒト化抗体。 - 配列番号:24の重鎖可変ドメインと、配列番号:37の軽鎖可変ドメインとを含む、請求項1記載のヒト化抗体。
- ヒト化抗体が、エフェクター機能サイレントである、請求項1又は2記載のヒト化抗体。
- ヒト化抗体が、ヒトトランスフェリンレセプター及びカニクイザルトランスフェリンレセプターに特異的に結合する、請求項1〜3のいずれか一項記載のヒト化抗体。
- ヒト化抗体が、ヒトトランスフェリンレセプターに対する少なくとも1つの結合特異性と、治療ターゲットに対する少なくとも1つの結合特異性とを有する多重特異性抗体である、請求項1〜4のいずれか一項記載のヒト化抗体。
- ヒト化抗体が、ヒトトランスフェリンレセプターに結合する第1抗原結合部位と、脳抗原に結合する第2抗原結合部位とを含む、請求項5記載のヒト化抗体。
- 脳抗原が、Aベータ、上皮成長因子レセプター(EGFR)、ヒト上皮成長因子レセプター2(HER2)、アルファ−シヌクレイン、CD20、アミロイド前駆体タンパク質(APP)、及びグルコセレブロシダーゼからなる群より選択される、請求項6記載のヒト化抗体。
- 多重特異性抗体が、
i)ヒトトランスフェリンレセプター及びAベータの両方、又は
ii)ヒトトランスフェリンレセプター及びCD20の両方、又は
iii)ヒトトランスフェリンレセプター及びアルファ−シヌクレインの両方、又は
iv)ヒトトランスフェリンレセプター及びリン酸化タウの両方、又は
v)ヒトトランスフェリンレセプター及びグルコセレブロシダーゼの両方
に結合する、請求項5〜7のいずれか一項記載のヒト化抗体。 - ヒト化抗体が、
i)配列番号:24の重鎖可変ドメイン及び配列番号:37の軽鎖可変ドメインを含む第1結合部位と、
ii)第2結合部位であって、
a)配列番号:81の重鎖可変ドメイン及び配列番号:82の軽鎖可変ドメイン、又は
b)配列番号:83の重鎖可変ドメイン及び配列番号:84の軽鎖可変ドメイン、又は
c)配列番号:85の重鎖可変ドメイン及び配列番号:86の軽鎖可変ドメイン、又は
d)配列番号:87の重鎖可変ドメイン及び配列番号:88の軽鎖可変ドメイン、又は
e)配列番号:91の重鎖可変ドメイン及び配列番号:92の軽鎖可変ドメイン、又は
f)配列番号:89の重鎖可変ドメイン及び配列番号:90の軽鎖可変ドメイン、又は
g)配列番号:93の重鎖可変ドメイン及び配列番号:94の軽鎖可変ドメイン、又は
h)配列番号:79の重鎖可変ドメイン及び配列番号:80の軽鎖可変ドメイン
から選択される第2結合部位と、を含む二重特異性抗体である、請求項1〜8のいずれか一項記載のヒト化抗体。 - ヒト化抗体が、
a)ヒトサブクラスIgG1の全長抗体、又は
b)ヒトサブクラスIgG4の全長抗体、又は
c)変異L234A、L235A、及びP329Gを有するヒトサブクラスIgG1の全長抗体、
d)変異S228P、L235E、及び場合により、P329Gを有するヒトサブクラスIgG4の全長抗体、
e)両重鎖における変異L234A、L235A、及びP329G、ならびに、一方の重鎖における変異T366W及びS354C、ならびに、それぞれの他方の重鎖における変異T366S、L368A、Y407V、及びY349Cを有するヒトサブクラスIgG1の全長抗体、又は
f)両重鎖における変異S228P、L235E、及び場合により、P329G、ならびに、一方の重鎖における変異T366W及びS354C、ならびに、それぞれの他方の重鎖における変異T366S、L368A、Y407V、及びY349Cを有するヒトサブクラスIgG4の全長抗体
である、請求項1〜9のいずれか一項記載のヒト化抗体。 - ヒト化抗体が、
i)場合により、変異P329G、L234A、及びL235Aを有するヒトIgG1サブクラスのホモ二量体Fc領域、又は
ii)場合により、変異P329G、S228P、及びL235Eを有するヒトIgG4サブクラスのホモ二量体Fc領域、又は
iii)ヘテロ二量体Fc領域であって、
a)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366Wを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、及びY407Vを含み、もしくは
b)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366W及びY349Cを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、Y407V、及びS354Cを含み、もしくは
c)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366W及びS354Cを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、Y407V、及びY349Cを含む、ヘテロ二量体Fc領域、又は
iv)ヒトIgG4サブクラスのヘテロ二量体Fc領域であって、両Fc領域ポリペプチドが、変異P329G、L234A、及びL235Aを含み、かつ
a)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366Wを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、及びY407Vを含み、もしくは
b)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366W及びY349Cを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、Y407V、及びS354Cを含み、もしくは
c)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366W及びS354Cを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、Y407V、及びY349Cを含む、ヘテロ二量体Fc領域、又は
v)ヒトIgG4サブクラスのヘテロ二量体Fc領域であって、両Fc領域ポリペプチドが、変異P329G、S228P、及びL235Eを含み、かつ
a)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366Wを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、及びY407Vを含み、もしくは
b)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366W及びY349Cを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、Y407V、及びS354Cを含み、もしくは
c)一方のFc領域ポリペプチドが、変異T366W及びS354Cを含み、他方のFc領域ポリペプチドが、変異T366S、L368A、Y407V、及びY349Cを含む、ヘテロ二量体Fc領域
を含む、請求項1〜9のいずれか一項記載のヒト化抗体。 - i)配列番号:52、53、54、55、56、57、及び58からなる群より選択される重鎖可変ドメイン、ならびに、配列番号:60、61、62、及び63からなる群より選択される軽鎖可変ドメイン、又は
ii)配列番号:2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、及び25からなる群より選択される重鎖可変ドメイン、ならびに、配列番号:27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、及び47からなる群より選択される軽鎖可変ドメイン
を含む、
ヒト化抗トランスフェリンレセプター抗体。 - 請求項1〜12のいずれか一項記載のヒト化抗体と、薬学的に許容し得る担体とを含む、
医薬製剤。 - 医薬として使用するための、請求項1〜12のいずれか一項記載のヒト化抗体。
- 神経障害を処置するための医薬の製造における、請求項1〜12のいずれか一項記載のヒト化抗体の使用。
- 神経障害が、末梢神経障害、神経変性疾患、ガン、眼疾患、発作性障害、リソソーム蓄積症、アミロイドーシス、ウイルス又は微生物疾患、虚血、行動障害、及びCNS炎症からなる群より選択される、請求項15記載の使用。
- 1つ以上の化合物を、BBBを通過させて輸送するための医薬の製造における、請求項1〜12のいずれか一項記載の抗体の使用。
- 神経障害の処置に使用するための、請求項1〜12のいずれか一項記載のヒト化抗体。
- 神経障害が、末梢神経障害、神経変性疾患、ガン、眼疾患、発作性障害、リソソーム蓄積症、アミロイドーシス、ウイルス又は微生物疾患、虚血、行動障害、及びCNS炎症からなる群より選択される、請求項18記載のヒト化抗体。
- 医薬の製造における、請求項1〜12のいずれか一項記載のヒト化抗体の使用。
- 医薬が、末梢神経障害、神経変性疾患、ガン、眼疾患、発作性障害、リソソーム蓄積症、アミロイドーシス、ウイルス又は微生物疾患、虚血、行動障害、及びCNS炎症からなる群より選択される神経障害の処置のためのものである、請求項20記載の使用。
- 請求項1〜12のいずれか一項記載のヒト化抗体を、神経障害を処置するために投与することを含む、
処置方法。 - 神経障害が、末梢神経障害、神経変性疾患、ガン、眼疾患、発作性障害、リソソーム蓄積症、アミロイドーシス、ウイルス又は微生物疾患、虚血、行動障害、及びCNS炎症からなる群より選択される、請求項22記載の方法。
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