JP4354633B2 - 低酸素調節性遺伝子 - Google Patents

Description

【０００１】
（技術分野）
低酸素において特異的に発現する遺伝子の同定、および診断および治療介入のための遺伝子および遺伝子産物の使用。
【０００２】
（関連技術の説明）
組織酸素化のレベルは、正常な発育および病的過程、例えば虚血、において重要な役割を演じている。組織酸素化は、アポトーシスおよび血管形成における両者において顕著な調節の役割を演じている（Ｂｏｕｃｋら、１９９６；Ｂｕｎｎら、１９９６；Ｄｏｒら、１９９７；Ｃａｒｍｅｌｉｅｔら、１９９８）。細胞増殖および生育が酸素欠乏状態（低酸素）により減少するとき、アポトーシス（総説として、Ｄｕｋｅら、１９９６を参照）および増殖阻止がおこる。血管形成（即ち、血管の生長、血管化）は、酸素低下の細胞が酸素恒常性を回復する試みとして内皮細胞の増殖および遊走を促進する因子を分泌するときに、促進される（総説として、Ｈａｎａｈａｎら、１９９６を参照）。
【０００３】
虚血疾患の病理は、例えば網膜症、急性腎不全、心筋梗塞および脳卒中のような血管の狭窄または閉塞に一般的に起因する、体臓器、組織または身体の１部分への血液供給の減少を含む。それゆえ、虚血状態によって誘導されるアポトーシスおよび血管形成は、また、これらの病理に関与している。新生血管形成は網膜症および腫瘍増殖のある種の型に見られる。血管形成は主要増殖に必要であり、血管形成の遅延は、悪性腫瘍および網膜症を制御する有用な手段であることが認められている。更に、腫瘍形成性細胞をアポトーシスに変化させること（即ち、プログラム細胞死）に誘導することは有用である。
【０００４】
しかしながら、これらの過程は、低酸素のような種々のストレスに反応する、多くの遺伝子によって制御される出来事の、複雑なカスケードである。低酸素ストレスに反応する、異なった遺伝子の発現は、アポトーシスあるいは血管形成のみならず、両者の引金を引くことができる。ガンにおいて、アポトーシスおよび血管形成関連遺伝子は、治療的ターゲットであることが観察された。しかし、低酸素それ自体は、より重篤な腫瘍形成表現型に寄与する、突然変異の選択における、臨界的な役割を演じている（Ｇｒａｅｂｅｒら、１９９６）。それゆえ、ガンおよび虚血のみでなく治療的に利用することができ、アポトーシスあるいは血管形成を誘導し、またはその進行を遅延させる、候補遺伝子または遺伝子産物を同定することが必要とされている。疾病およびそれに関連した病理と、上向きまたは下向き調節（応答）遺伝子の間の直接的因果関係を有する、遺伝子を同定することは有用である。
【０００５】
（発明の概要）
本発明によれば、配列番号１、配列番号２、配列番号３、配列番号４、および配列番号５を含む群に示された配列、またはそれらの相補的または対立遺伝子変異配列、および、それらに必要ならばヒトの相同体、を有する、低酸素応答性遺伝子をコードする、精製され、単離されおよびクローン化された核酸配列が提供される。本発明は更に、配列番号１、配列番号２、配列番号３、配列番号４、配列番号５および配列番号６に示す核酸配列によりコードされるタンパク質、およびタンパク質の見本として配列番号７−１１、を提供する。本発明は更に、配列番号１、配列番号２、配列番号３、配列番号４、配列番号５および配列番号６に示す核酸配列によりコードされるタンパク質、および配列番号７−１１を含むタンパク質に対して向けられた抗体を提供する。
【０００６】
本発明は、更に、配列番号１、配列番号２、配列番号３、配列番号４、配列番号５および配列番号６に示す、少なくとも１つの発現し得る核酸配列を持った、トランスジェニック動物および細胞株を提供する。本発明は更に、配列番号１、配列番号２、配列番号３、配列番号４、配列番号５および配列番号６に示す、少なくとも１つの核酸配列がノックアウトされた、ノックアウト真核生物を提供する。
【０００７】
本発明は、配列番号２；配列番号３；配列番号４；配列番号５；および配列番号６を含む群に示す核酸配列によりコードされる、少なくとも１つのタンパク質のアンタゴニストの治療的に有効な量を患者に投与することによる、治療を必要とする患者における、血管形成を調節する方法を提供する。別に、本発明は、配列番号２；配列番号３；配列番号４；配列番号５；および配列番号６に示す核酸配列に対する、少なくとも１つのアンチセンスオリゴヌクレオチド、またはそれらの配列またはそれらのタンパク質に直接的に対する優性ネガティブペプチドの、治療的に有効な量を患者に投与することによる、治療を必要とする患者における、血管形成を調節する方法を提供する。
【０００８】
本発明は更に、医薬として許容される担体中に有効成分として、配列番号２−６によりコードされたタンパク質、または配列番号７−８、１０−１１に示すタンパク質配列の治療的に有効な量を患者に投与することによる、治療を必要とする患者における、血管形成またはアポトーシスを調節する方法を提供する。
【０００９】
本発明は、配列番号２；配列番号３；配列番号４；配列番号５；および配列番号６（ヒト相同体）を含む群に示す配列の１つに、作用可能に結合した発現調節配列を含む発現可能なベクターを、治療を必要とする患者に、遺伝子治療を利用して、直接投与することによる、アポトーシスを調節する遺伝子を提供する方法を提供する。
【００１０】
本発明は、また、配列番号２；配列番号３；配列番号４；配列番号５；および配列番号６を含む群に示す配列の１つに、作用可能に結合した発現調節配列を含む発現可能なベクターを、治療を必要とする患者に、直接投与することによる、遺伝子治療を利用して血管形成を調節する遺伝子を提供する方法を提供する。
【００１１】
本発明は、配列番号２；配列番号３；配列番号４；配列番号５；および配列番号６を含む群に示す配列の少なくとも１つに対して向けられた、アンチセンスオリゴヌクレオチドの治療的に有効な量を患者に投与することによる、治療を必要とする患者における、低酸素状態に対する反応を調節する方法を提供する。本発明は、また、配列番号２；配列番号３；配列番号４；配列番号５；および配列番号６を含む群に示す配列の１つに作用可能に結合した発現調節配列を含む発現可能なベクターを、治療を必要とする患者に、直接投与することによる、遺伝子治療を利用して、低酸素調節性遺伝子を提供する方法を提供する。
【００１２】
本発明は、また、配列番号２；配列番号３；配列番号４；配列番号５；および配列番号６を含む群に示す、少なくとも１つの発現性遺伝子（上向き調節性）の存在または遺伝子産物について、患者からの体液または組織試料を分析し、そして、もし上向き調節性遺伝子または遺伝子産物が確かめられたなら虚血と決める、ステップを包含する、患者における虚血の存在を診断する方法を提供する。
【００１３】
（発明の詳細な説明）
本発明は、低酸素および虚血においてのみでない治療的および診断的に利用することができ、そしてアポトーシスまたは血管形成を調節する、候補遺伝子および遺伝子産物を同定するものである。調節（ｒｅｇｕｌａｔｅ）による、または調節（ｍｏｄｕｌａｔｅ）、あるいは調節（ｃｏｎｔｒｏｌ）による、ということは、そのプロセスが、プロセスにおける変化が効果的であるのに必要な程度を、および患者に関連する病態を、誘導するあるいは阻害することを意味する。誘導あるいは阻害が予測されるかどうかは、治療されるプロセスおよび疾病から明らかであり、医学部門の当業者には周知である。本発明は、疾病およびそれに関連した病理、と上向きまたは下向き調節（応答）遺伝子の間の直接的因果関係を有する、遺伝子治療、診断および治療のための遺伝子を同定する。それは、本発明が、原因と結果の間の生理的関係によって始められることである。
【００１４】
本発明は、発現の上向き調節による低酸素状態に少なくとも反応する、および配列番号１、配列番号２、配列番号３、配列番号４および配列番号５を含む群に示す配列およびそれらの類縁体および多型、またはそれらに対する相補的または対立変異配列を有する遺伝子をコードする、精製され、単離され、およびクローン化された核酸ポリヌクレオチド（配列）を提供する。本発明は、更に、上向き調節されることによって低酸素ストレスに反応する公知の遺伝子（ニューロロイキン）である配列番号６を提供する。配列番号６は、ニューロロイキンのヒト配列であり、ラット配列と９０％以上の相同性を有する。ヒト相同体が適当ならば使用される。ラットとヒトの配列の間には高い相同性があるので、ラット配列も必要によりプローブその他に使用することができる。
【００１５】
本発明は、更に、配列番号１、配列番号２、配列番号３、配列番号４、配列番号５に示す核酸配列によりコードされるタンパク質およびそれらの類縁体、およびタンパク質の見本として配列番号７および８ならびに配列番号９−１１、を提供する。本発明は更に、医薬として許容される担体中に有効成分として、配列番号２−６によりコードされたタンパク質、または配列番号７−８、１０−１１に示すタンパク質配列の治療的に有効量を患者に投与することによる、治療を必要とする患者における、血管形成またはアポトーシスを調節する方法を提供する。
【００１６】
タンパク質は組替え法により製造でき（総説的には、Ｍａｒｓｈａｋら、１９９６「タンパク質の精製および確認の戦略、実験課程マニュアル」、ＣＳＨＬ Ｐｒｅｓｓを参照）、そして類縁体は、転写後プロセッシングにより製造できる。ここで使われる「類縁体」という用語は、配列番号１−８の天然の配列と比較して、それらアミノ酸／ヌクレオチド配列に、幾分の相異を有する核酸配列またはタンパク質と定義される。元々、類縁体は、機能的に関係する部分に亙って、一般的に少なくとも７０％の相同性である。より好適な実施態様では、類縁体は、アミノ酸／ヌクレオチド配列に少なくとも８０％の相同性であり、および９５％相同性に近い。類縁体のアミノ酸またはヌクレオチド配列は、少なくとも１つの残基が欠失され、挿入され、あるいは置換されたとき、１次配列から異なるが、しかしタンパク質または核酸分は機能が残る。糖鎖形成による相異は、タンパク質類縁体を提供することができる。
【００１７】
「機能的な関連性」は分子の生物学的性質を云い、そしてこの文脈では、天然に生じるタンパク質または核酸分子によって直接的または間接的に行われる、ｉｎ ｖｉｖｏエフェクターまたは抗原機能または活性を意味する。エフェクター抗原機能は、レセプター結合、酵素活性または酵素調節活性、輸送体結合活性、ホルモン活性、細胞の細胞外マトリックスまたは細胞表面分子への吸着を促進または阻害する活性、あるいは機能タンパク質をコードし発現し得る核酸配列を有する構造的役割を含むが、これらを含むことには限定されない。抗原機能は、本質的に、天然に生じるタンパク質に対して生じた抗体との、交叉反応することのできるエピトープまたは抗原部位を有することを意味する。生物学的に活性な類縁体は、抗原機能をそれに加えて持っているが、その必要性はない、生来のエフェクター機能を共有している。
【００１８】
本発明は、更に、イムノアッセイその他に使用することのできる、配列番号１、配列番号２、配列番号３、配列番号４、配列番号５および配列番号６に示す核酸配列によりコードされるタンパク質に対して向けられた抗体を提供する。
【００１９】
抗体は、モノクローナル、ポリクローナルまたは組替え体であり得る。好都合には、抗体は、免疫原またはその１部分、例えば、配列に基く合成ペプチド、に対して調製され、あるいはクローニング技術によって組替えにより調製され得、また、天然の遺伝子産物および／またはその部分が単離されそして免疫原として使用される。免疫原は、Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｌａｎｅ、抗体：実験室マニュアル、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｂｏｒ，ＮＹ，１９８８およびＢｏｒｒｅｂａｅｃｋ、抗体工学−実践的ガイド、Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ ａｎｄ Ｃｏ．， １９９２、に総説適に記載されているように、当業者に周知の標準的な抗体生産技術によって抗体を製造するのに使用することができる。抗体断片は、当業者に周知の方法によって、抗体およびＦａｂ、Ｆ（ａｂ′）_{2 ′}およびＦｖを含む抗体から調整することができる。
【００２０】
ポリクローナル抗体を製造するためには、宿主、例えばウサギまたはヤギ、を免疫原または免疫原断片を、一般的にはアジュバントと一緒に、そして、必要ならば、担体に結合して免疫し；免疫原に対する抗体を血清から採取する。更に、ポリクローナル抗体は、単一特異性であるように、吸着することができる。即ち、単一特異性にするために、血清中に交叉反応性抗体が残存しないように、血清を関連する免疫原に対して吸着することができる。
【００２１】
モノクローナル抗体を製造するためには、免疫原と共に適当なドナー、一般的にはマウス、の高度免疫化、および脾臓の抗体産生細胞を単離することを含む。これらの細胞を、不死性を有する細胞、例えばミエローマ細胞、に融合して、不死性を有し、必要とする抗体を分泌する融合細胞ハイブリッドを造る。細胞を、全体として、培養し、モノクローナル抗体を、使用のために培地から採集する。
【００２２】
組替え抗体を製造するためには（総説的に、Ｈｕｓｔｏｎら、１９９１；Ｊｏｈｎｓｏｎ ａｎｄ Ｂｉｒｄ，１９９１；Ｍｅｒｎａｕｇｈ ａｎｄ Ｍｅｒｎａｕｇｈ，１９９５を参照）、動物の抗体を産生するＢリンパ球からのメッセンジャーＲＮＡ、またはハイブリドーマを逆転写して相補的ＤＮＡｓ（ｃＤＮＡｓ）を得る。全長または部分長であり得る、抗体ｃＤＮＡを増幅し、ファージまたはプラスミドにクローン化する。ｃＤＮＡは、分離されたまたはリンカーによって結合された、重鎖または軽鎖ｃＤＮＡの部分長であり得る。抗体、または抗体断片は、組替え抗体を得るため適当な発現系を用いて発現される。抗体ｃＤＮＡは、関連する発現ライブラリーをスクリーニングすることによって得ることもできる。
【００２３】
抗体は、周知である、固体支持基体に結合し、あるいは検出し得る部分に結合し、または両方をすることができる。（蛍光あるいは酵素的な部分の総説的考察は、Ｊｏｈｎｓｔｏｎｅ ＆ Ｔｈｏｒｐｅ、実践免疫化学、Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｏｘｆｏｒｄ，１９８２を参照。）抗体の固体支持基体への結合は、また、周知である。（総説的考察のためには、Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｌａｎｅ、抗体：実験室マニュアル、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｂｏｒ，ＮＹ， １９８８およびＢｏｒｒｅｂａｅｃｋ、抗体工学−実践的ガイド、Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ ａｎｄ Ｃｏ．，１９９２を参照）本発明において意図している検出し得る部分は、酵素および放射性マーカー、例えば蛍光、金属、ビオチン、金、フェリチン、アルカリ性ホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、ペルオキシダーゼ、ウレアーゼ、フルオレセイン、ローダミン、トリチウム、¹⁴Ｃおよびヨード化、を含むが、これらには限定されない。
【００２４】
本発明は、更に、配列番号１、配列番号２、配列番号３、配列番号４、配列番号５および配列番号６に示す、少なくとも１つの発現し得る核酸配列を持った、トランスジェニック動物および細胞株を提供する。発現し得るとは、遺伝子あるいは、発現させるために標的ゲノム中に遺伝子を置くことによって、発現に必要な全ての調節要素の配列を含むことを意味する。本発明は、更に、配列番号１、配列番号２、配列番号３、配列番号４、配列番号５および配列番号６に示す、少なくとも１つの核酸配列がノックアウトされた、ノックアウト真核生物を提供する。
【００２５】
これらのトランスジェニックおよびノックアウトは、周知の標準的方法、ならにび米国特許５，４８７，９９２、５，４６４，７６４、５，３８７，７４２、５，３６０，７３５、５，３４７，０７５、５，２９８，４２２、５，２８８，８４６、５，２２１，７７８、５，１７５，３８５、５，１７５，３８４、５，１７５，３８３、４，７３６，８６６、およびＢｕｒｋｅ ａｎｄ Ｏｌｓｏｎ（１９９１）、Ｃａｐｅｃｃｈｉ（１９８９）、Ｄａｖｉｅｓら（１９９２）、Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎら（１９９３）、Ｄｕｆｆ ａｎｄ Ｌｉｎｃｏｌｎ（１９９５）、Ｈｕｘｌｅｙら（１９９１）、Ｊａｋｏｂｏｖｉｔｓら（１９９３）、Ｌａｍｂら（１９９３）、Ｐｅａｒｓｏｎ ａｎｄ Ｃｈｏｉ（１９９３），Ｒｏｔｈｓｔｅｉｎ（１９９１）、Ｓｃｈｅｄｌら（１９９３）、Ｓｔｒａｕｓｓら（１９９３）に示された方法を使って構築される。更に、特許出願ＷＯ９４／２３０４９、ＷＯ９３／１４２００、ＷＯ９４／０６９０８、ＷＯ９４／２８１２３は、また、情報を提供する。
【００２６】
更に詳しくは、いずれの周知の技術も、動物の親系列をつくるために動物に発現可能に導入遺伝子を導入するために、使用可能である。そのような技術は、前核マイクロインジェクション（米国特許４，８７３，１９１）；胚株へのレトロウイルス媒介遺伝子転移（Ｖａｎ ｄｅｒ Ｐｕｔｔｅｎら、１９８５）；胚幹細胞における遺伝子ターゲッティング（Ｔｈｏｍｐｓｏｎら、１９８９；Ｍａｎｓｏｕｒ，１９９０および米国特許５，６１４，３９６）；胚の電気穿孔（Ｌｏ，１９８３）；および精子媒介遺伝子転移（Ｌａｖｉｔｒａｎｏら、１９８９）を含むが、これらには限定されない。このような技術の総説については、Ｇｏｒｄｏｎ（１９８９）を参照。
【００２７】
更に、直接ヒト導入遺伝子を運搬しない１つの親株は、導入遺伝子に近づくように遺伝子ターゲティングによって修飾された相同性の内在性遺伝子を、多分、有している。即ち、内在性遺伝子は「ヒト化された」および／または突然変異したのである（Ｒｅａｕｍｅら、１９９６）。もし、動物およびヒトの配列が本質的に相同性であるならば、「ヒト化された」遺伝子は必要とされないことを、注意しなければならない。トランスジェニック親は、また、必要により、非突然変異あるいは突然変異およびヒト化されているか、いないか、いずれかに、過剰発現配列を運搬することができる。「導入遺伝子」という用語は、それゆえ、これら全ての可能性を云うのに使われる。
【００２８】
更に、細胞は、各トランスジェニック親から導入遺伝子を運搬し、そして周知のように、初代細胞培養または細胞株を樹立するために使用される仔から単離することができる。
【００２９】
適切ならば、親株は導入遺伝子に対しホモ接合性である。更に、適切ならば、導入遺伝子に相同であるゲノムにおいて、内在性非導入遺伝子は非発現性である。非発現性は、内在性遺伝子は発現されず、この非発現は仔において遺伝し得ることを、意味する。例えば、内在性相同遺伝子は、周知の方法により「ノックアウトされる」ことができた。代りに、導入遺伝子の１つを受け取る親の株は、非発現にするように内在性相同遺伝子において突然変異を運搬することができた。
【００３０】
本発明は、配列番号１、配列番号２、配列番号３、配列番号４、配列番号５および配列番号６に示す核酸配列によってコードされる、少なくとも１つのタンパク質のアンタゴニストの、治療的に有効な量を患者に投与することによって、治療を必要とする患者において、血管形成を調節する方法を提供する。アンタゴニストは、以下に記載するような医薬として許容される担体で投与され、運ばれる。「アンタゴニスト」または「拮抗する」という用語は、その最も広い意味で使用される。拮抗は、遺伝子活性または遺伝子産物において阻害、不活化、遮断あるいは退行をもたらす機構または処置を含むことができる。遺伝子または遺伝子産物の阻害は、遺伝子または遺伝子産物が調節されている、相当する機能の増加を引き起こすことを注意せねばならない。拮抗の過程は、配列番号１−６の遺伝子産物に対する細胞のレセプターを遮断することを含み、以下に考察するようにアンチセンス治療を含むことができる。
【００３１】
本発明は、更に、医薬として許容される担体中に、配列番号７−１１からなる群から選択されたタンパク質配列である調節剤の、治療的に有効な量を患者に投与することによる、治療を必要とする患者における、血管形成またはアポトーシスを調節する方法を提供する。調節剤は、以下に記載するような医薬として許容される担体で投与され運搬される。例えば、患者は、腫瘍形成性細胞におけるアポトーシスあるいは、例えば、肢が再接合しなければならないような傷害状態、あるいは血管再生が必要とされる移植における、血管形成を含めることが必要であろう。
【００３２】
本発明は、配列番号１、配列番号２、配列番号３、配列番号４、配列番号５および配列番号６に示す核酸配列に対して向けられた少なくとも１つのアンチセンスオリゴヌクレオチド、または優性ネガティブペプチド（ｃＤＮＡまたはペプチドとしていずれか；Ｈｅｒｓｋｏｗｉｔｚ，１９８７）の治療的に有効量を患者に投与することによる、治療を必要とする患者における、血管形成またはアポトーシスを調節する方法を提供する。本発明は、また、配列番号１；配列番号２；配列番号３；配列番号４；配列番号５；および配列番号６を含む群に示す配列の少なくとも１つに対して向けられたアンチセンスオリゴヌクレオチドの治療的に有効な量を患者に投与することによる、治療を必要とする患者における、低酸素状態に対する反応を調節する方法を提供する。医薬組成物中の有効成分としてのアンチセンスオリゴヌクレオチドは、以下に記載するような医薬として許容される担体で投与され、運ばれる。
【００３３】
多くの総説が、アンチセンス（ＡＳ）技術およびその巨大な治療可能性についての側面を扱っている（ＷｒｉｇｈｔおよびＡｎａｚｏｄｏ，１９９５）。この急速に発展しつつある技術の、化学的（Ｃｒｏｏｋｅ，１９９５；Ｕｈｌｍａｎｎら、１９９０）、細胞的（Ｗａｇｎｅｒ，１９９４）および治療的（Ｈａｎａｎｉａら、１９９５；Ｓｃａｎｌｏｎら、１９９５；Ｇｅｗｉｒｔｚ，１９９３）可能性に関する総説がある。比較的短期間内に、培養初代細胞および細胞株におけるＡＳヌクレオチド配列のｉｎ ｖｉｔｒｏ使用、ならびに一過性に特異的過程を抑制したり体機能を変更するために、そのようなヌクレオチド配列をｉｎ ｖｉｖｏに投与することについての豊富な情報が蓄積された。更に、豊富な経験が、ヒトでの有効性を予想するために、動物モデルおよびヒトの臨床治験において、ｉｎ ｖｉｔｒｏおよびｉｎ ｖｉｖｏで得られる。
【００３４】
特異的遺伝子の発現におけるアンチセンス介入は、合成ＡＳオリゴヌクレオチド配列の使用によって達成することができる（最近の報告として、Ｌｅｆｅｂｖｒｅ−ｄ′Ｈｅｌｌｅｎｃｏｕｒｔら、１９９５；Ａｇｒａｗａｌ，１９９６；Ｌｅｖ−Ｌｅｈｍａｎら、１９９７を参照）。ＡＳオリゴヌクレオチド配列は、問題の標的ｍＲＮＡを相補しそしてＲＮＡ：ＡＳ二本鎖を形成するようデザインされた、典型的には１５−３０ｍｅｒでしかし７ｍｅｒ位小さい、短いＤＮＡ配列である（Ｗａｇｎｅｒら、１９９６）。この二本鎖形成は、関連のあるｍＲＮＡのプロセッシング、スプライシング、輸送または翻訳を防止することができる。更に、ある種のＡＳヌクレオチド配列は、それらの標的ｍＲＮＡとハイブリダイズするとき、細胞のＲＮａｓｅＨ活性をもたらすことができ、その結果ｍＲＮＡ分解の結果となる（Ｃａｌａｂｒｅｔｔａら、１９９６）。その場合、ＲＮａｓｅＨは、二本鎖のＲＮＡ成分を切断し、そしてＡＳを放出するかもしれず、標的ＲＮＡの付加的分子と更にハイブリダイズすることができる。更なる作用機作は、ＡＳのゲノムＤＮＡとの相互作用をおこし、転写的には不活性である３重らせんを生じる。
【００３５】
アンチセンスオリゴヌクレオチドに対する標的セグメントの配列は、配列が、相補的鋳型とのオリゴヌクレオチド２本鎖形成に重要な、適当なエネルギー関連性質を示すこと、および自己２量体化または自己相補性に対し低い可能性を示すようなことで選択される（Ａｎａｚｏｄｏら、１９９６）。例えば、コンピュータプログラムＯＬＩＧＯ（プライマー解析ソフトウエア，Ｖｅｒ．３．４）が、アンチセンス配列の融解温度、自由エネルギーの性状を決定するのに、そして自己２量体形成および自己相補性性状の可能性を推定するのに使用することができる。プログラムは、これら２つのパラメーター（自己２量体形成および自己相補性の可能性）の定量的推測の決定を可能にし、そして「可能性なし」または「幾分かの可能性」または「本質的に完全な可能性」の指示を与える。このプログラムを使用して、標的セグメントが一般的に、これらのパラメーターにおいて可能性なしの推定を有することで選択される。しかし、セグメントは、ある範疇の１つでは「幾分かの可能性」を有していても使用することができる。パラメーターの平衡は、周知のような選択で使用される。更に、オリゴヌクレオチドは、類縁体の置換が機能に実質的に影響しないように、必要により選択される。
【００３６】
ホスホロチオアート−アンチセンス−オリゴヌクレトチドは、通常、有効な濃度で著しい毒性を示さず、そして動物において充分な薬力学的半減期を示し（Ａｇａｒｗａｌら、１９９６）、そしてヌクレアーゼ耐性である。細胞の発達に関連したアンチセンスが誘導する機能消失表現型は、グリア繊維酸性タンパク質（ＧＦＡＰ）、ヒヨコにおける中脳蓋板の樹立（Ｇａｌｉｌｅｏら、１９９１）およびＮ−ｍｙｃタンパク質に見られ、神経外胚葉培養における細胞の不均一性の保持に必要である（上皮性細胞対神経芽細胞、それらのコロニー形成能、腫瘍形成性および接着において異なる）（Ｒｏｓｏｌｅｎら、１９９０；Ｗｈｔｅｓｅｌｌら、１９９１）ことが示された。分裂促進および血管形成性を有する、塩基性繊維芽細胞増殖因子（ｂＦｇＦ）のアンチセンスオリゴヌクレトチド阻害は、飽和状態および特異的な方法でグリオーマ細胞の増殖の８０％を抑制する（Ｍｏｒｒｉｏｓｏｎ，１９９１）。疎水性であるので、アンチセンスオリゴヌクレトチドはリン脂質膜とよく反応する。（Ａｋｈｔｅｒら、１９９１）。細胞の原形質膜とそれらの反応に次いで、それらは、特異的なレセプターが関与すると予想される飽和機構で（Ｙａｋｕｂｏｖら、１９８９）、生細胞に能動的（または受動的）に輸送される（Ｌｏｋｅら、１９８９）。
【００３７】
上記で考察したアンチセンスの代りに、リボザイムが利用できる。これは、化学量論的な考慮からアンチセンス療法が制限される場合に特に必要である（Ｓａｒｖｅｒら、１９９０、遺伝子調節および応用、３０５−３２５頁）。リボザイムは、標的ＲＮＡにおける特異的部位を開裂する、ＲＮＡ触媒活性（総説としてＣｅｃｈを参照）を有するＲＮＡ分子である。リボザイムによって開裂されるＲＮＡ分子の数は化学量論的に予測した数よりも多い（Ｈａｍｐｅｌ ａｎｄ Ｔｒｉｔｚ，１９８９；Ｕｈｌｅｎｂｅｃｋ，１９８７）。
【００３８】
リボザイムは、ＲＮＡのホスホジエステル結合開裂を触媒する。いくつかのリボザイム構造系列が同定されている、即ち、グループＩイントロン、ＲＮａｓｅＰ、肝炎デルタウイルスリボザイム、ハンマーヘッドリボザイムおよび元来タバコ輪転ウイルスサテライトＲＮＡ（ｓＴＲＳＶ）の−鎖（ｎｅｇａｔｉｖｅ ｓｔｒａｎｄ）から誘導されたヘアピンリボザイムである（Ｓｕｌｌｉｖａｎ，１９９４；米国特許５，２２５，３４７、４−５欄）。後者の２系列は、ウイロイドおよびウイルソイドから誘導され、そこで、リボザイムは、ローリングサークル型複製の間に創造された、オリゴマーからモノマーが分離すると信じられている（Ｓｙｍｏｎｓ，１９８９および１９９２）。ハンマーヘッドおよびヘアピンリボザイムの主題は、最も普通には、遺伝子治療のためにｍＲＮＡｓのトランス開裂に適応することである（Ｓｕｌｌｉｖａｎ，１９９４）。本発明において利用されるリボゾームの型は周知のように選択される。ヘアピンリボザイムは、目下、臨床治験中であり、好ましい型である。一般的に、リボザイムは長さで３０−１００ヌクレオチドである。
【００３９】
ヌクレオチドの修飾または類縁は、ヌクレオチドの治療の性質を改良するために導入することができる。改良された性質は、ヌクレアーゼ抵抗性の増加および／または細胞膜を透過する能力の増加を含む。
【００４０】
ヌクレアーゼ抵抗性は、必要ならば、使用および運搬の方法に必要なアンチセンスオリゴデオキシヌクレオチド、ｃＤＮＡおよび／またはリボザイムの生物活性を妨害しない周知の方法により、もたらされる（Ｉｙｅｒら、１９９０；Ｅｃｋｓｔｅｉｎ，１９８５；ＳｐｉｔｚｅｒおよびＥｃｋｓｔｅｉｎ，１９８８；Ｗｏｏｌｆら、１９９０；Ｓｈａｗら、１９９１）。ヌクレアーゼ抵抗性を増強するためにオリゴヌクレオチドになすことのできる修飾は、リン酸バックボーンのリンまたは酸素ヘテロ原子の修飾を含む。これらはメチルホスホネート、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエートおよびモルホリノオリゴマーの調製を含む。１実施態様において、４つないし６つの３′−末端ヌクレトチド塩基の間をつなぐホスホロチオエート結合を有することによって、提供される。代りに、ホスホロチオエート結合は、全てのヌクレオチド塩基を結合する。周知の他の修飾は、生物活性が保持され、しかしヌクレアーゼに対する安定性が実質的に増加しているなら使用可能である。
【００４１】
本発明は、また、オリゴヌクレオチドの機能に実質的に影響しない、本発明のオリゴヌクレオチドの全ての類縁体、あるいはオリゴヌクレオチドに対する修飾を含む。ヌクレオチドは、天然に生じたあるいは合成で修飾した塩基から選択することができる。天然に生じた塩基は、アデニン、グアニン、シトシン、チミンおよびウラシルを含む。オリゴヌクレオチドの修飾した塩基は、キサンチン、ヒポキサンチン、２−アミノアデニン、６−メチル、２−プロピルおよびその他のアルキルアデニン、５−ハロウラシル、５−ハロシトシン、６−アザシトシンおよび６−アザチミン、プソイドウラシル、４−チオウラシル、８−ハロアデニン、８−アミノアデニン、８−チオールアデニン、８−チオールアルキルアデニン、８−ヒドロキシルアデニンおよび他の８−置換アデニン、８−ハログアニン、８−アミノグアニン、８−チオールグアニン、８−チオアルキルグアニン、８−ヒドロキシルグアニンおよび他の置換グアニン、他のアザおよびデアザアデニン、他のアザおよびデアザグアニン、５−トリフルオロメチルウラシルおよび５−トリフルオロシトシン、を含む。
【００４２】
更に、ヌクレオチドの類縁体は、ヌクレオチドの構造が基本的に変更され、そして治療または実験試薬としてよりよく適するように、調製することができる。ヌクレオチド類縁体の例は、ＤＮＡ（またはＲＮＡ）のデオキシリボース（またはリボース）リン酸バックボーンが、ペプチドに見出されたものと類似のポリアミドバックボーンで置換されたペプチド核酸（ＰＮＡ）である。ＰＮＡ類縁体は、酵素による分解に対し抵抗性であり、そしてｉｎ ｖｉｖｏおよびｉｎ ｖｉｔｒｏで延命することが示された。更に、ＰＮＡｓは、相補的ＤＮＡ配列に対しＤＮＡ分子よりも、より強力に結合することが示された。この所見は、ＰＮＡ鎖とＤＮＡ鎖の間の電荷反発の欠如に帰せられる。オリゴヌクレオチドに行うことのできる他の修飾は、ポリマーバックボーン、環状バックボーン、あるいは鎖状バックボーンを含む。
【００４３】
医薬組成物の有効成分は、本発明の実施のために必要とされるヌクレアーゼ抵抗性であるオリゴヌクレオチド、または適当な配列および／またはリボザイムに対し、標的として同じ効果を有する事が示された、それらの断片を含むことができる。本発明に開示された有効成分の組み合わせは、アンチセンス配列の組み合わせを含めて使用することができる。
【００４４】
本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチド（および／またはリボザイム）およびｃＤＮＡは、リボ核あるいはデオキシリボ核ヌクレオチドに周知の方法により合成することができる。例えば、Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ ３８０Ｂ ＤＮＡ合成機を使用することができる。断片を使用するとき、２ないしそれ以上のそのような配列が合成され、そして本発明において使用されるように、共に連結される。
【００４５】
本発明のヌクレオチド配列は、直接あるいはウイルスまたは非ウイルスベクターにより運搬される。直接運搬するときは、配列は、一般的にヌクレアーゼ抵抗性にされる。代りに、配列は、以下において考察するように、配列が発現するように、発現カセットまはた構造に取り込まれることができる。一般的に、構造は、標的細胞内で配列が発現するように、適当な調節配列またはプロモーターを含む。
【００４６】
ネガティブ優性ペプチドは、タンパク質の１部、即ちペプチド、をコードする部分ｃＤＮＡ配列を称する（Ｈｅｒｓｋｏｗｉｔｚ，１９８７を参照）。このペプチドは、それが誘導されたタンパク質とは異なった機能を有することができる。それは、タンパク質全体と相互作用し、その活性を阻害することができ、また他のタンパク質と作用し、それらの活性をタンパク質全体に応答して阻害することができる。ネガティブ優性は、ペプチドが天然のタンパク質を凌駕することができ、それらの活性を阻害して、細胞に致死に対する抵抗性あるいは感受性のような異なった性質を与えることを意味する。治療介入のために、ペプチドそれ自体が医薬組成物の有効成分として運搬されるか、あるいはｃＤＮＡが、アンチセンス運搬と同じような方法を利用して、細胞に運搬することができる。
【００４７】
本発明は、配列番号１；配列番号２；配列番号３；配列番号４；配列番号５；および配列番号６を含む群に示す配列の１つに、作用可能に結合した発現調節配列を含む発現可能なベクターを、遺伝子治療を利用して、治療を必要とする患者に、直接投与することによる、アポトーシスを調節する遺伝子、血管形成を調節する遺伝子、あるいは低酸素を調節する遺伝子を提供する方法を提供する。
【００４８】
ここにおいて使用される「遺伝子治療による」とは、関連する遺伝物質（例えば、ＤＮＡまたはＲＮＡ）を、遺伝的または獲得性疾病または表現型状態を治療するか予防するために、宿主に移入することを云う。関連する遺伝物質は産物（例えば、治療的価値のあるタンパク質、ポリペプチド、ペプチド、機能的ＲＮＡ、アンチセンス）をコードし、ｉｎ ｖｉｖｏでの生産が望ましい。例えば、関連する遺伝物質は、ホルモン、レセプター、酵素、ポリペプチドまたはペプチドをコードすることができる。代りに、関連する遺伝物質は、自殺遺伝子をコードする。総説として、一般的に、教科書「遺伝子治療」（Ａｄｖａｎｃｅｓ ｉｎ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ４０，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，１９９７）を参照。
【００４９】
遺伝子治療に２つの基礎的アプローチが展開された：（１）ｅｘ ｖｉｖｏおよび（２）ｉｎ ｖｉｖｏ遺伝子治療。ｅｘ ｖｉｖｏ遺伝子治療において、細胞は患者から取り出され、培養されたものをｉｎ ｖｉｔｒｏで処理する。一般的に、機能的な置換する遺伝子が、必要に応じて発現系と共に、適当な遺伝子運搬ベヒクル／方法（トランスフェクション、形質導入、相同的組換え、等）を経て細胞に導入され、そして修飾された細胞は培養を行い、そして宿主／患者に返還される。これら遺伝的に再移植された細胞は、ｉｎ ｓｉｔｕで移入された遺伝物質を発現することが示された。
【００５０】
ｉｎ ｖｉｖｏ遺伝子治療においては、標的細胞は主体から取り出されず、むしろ運搬されるべき遺伝物質は、レシピエント内である、ｉｎ ｓｉｔｕでレシピエント生物の細胞に導入される。別の実施態様において、もし宿主遺伝子が欠損なら、遺伝子はｉｎ ｓｉｔｕで修復される（Ｃｕｌｖｅｒ，１９９８）。これら遺伝的に返還された細胞は、ｉｎ ｓｉｔｕで移入された遺伝物質を発現することが示されている。
【００５１】
遺伝子発現ベヒクルは、非相同の核酸を宿主に運搬／転移することができる。発現ベヒクルは、周知のような選択方法で細胞に核酸のターゲティング、発現および転写を制御するための要素を含む。遺伝子の５′ＵＴＲおよび／または３′ＵＴＲは、しばしば発現ベヒクルの５′ＵＴＲおよび／または３′ＵＴＲにより置換されることに注意しなければならない。それゆえ、ここで使われているように、発現ベヒクルは、必要とされるように、転移されるべき実際の遺伝子の５′ＵＴＲおよび／または３′ＵＴＲを含んではならず、特異的なアミノ酸をコードする領域のみを含む。
【００５２】
発現ベヒクルは、非相同性物質の転写を制御するプロモーターを含むことができ、選択的転写をする構成的または誘導的プロモーターのいずれかであり得る。必要な転写レベルを得るために要するエンハンサーは、随意に含むことができる。エンハンサーは、一般的に、プロモーターによって指図された基本的な転写レベルを変えるコード配列に（シスで）隣接して働く、非翻訳ＤＮＡ配列である。発現ベヒクルは、以下に記載する選択遺伝子を含むこともできる。
【００５３】
ベクターは、公知の技術内の種々の方法のいずれか１つによって細胞または組織に導入することができる。そのような方法は、一般的に以下の記載に見出すことができる。Ｓａｍｂｒｏｏｋら、「分子クローニング：実験室マニュアル（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）」，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８９、１９９２）、Ａｕｓｕｂｅｌら、「分子生物学における最近のプロトコル（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ）」，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ａｎｄ Ｓｏｎｓ，Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ，Ｍａｒｙｌａｎｄ（１９８９）、Ｃｈａｎｇら、「体性遺伝子治療（Ｓｏｍａｔｉｃ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ）」，ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ，Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ，ＭＩ（１９９５）、Ｖｅｇａら、「遺伝子ターゲッティング（Ｇｅｎｅ Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ）」，ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ，Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ，ＭＩ（１９９５）、Ｖｅｃｔｏｒｓ：「分子クローニングベクターおよびその使用の調査（Ａ Ｓｕｒｖｅｙ ｏｆ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｖｅｃｔｏｒｓ ａｎｄ Ｔｈｅｉｒ Ｕｓｅｓ）」，Ｂｕｔｔｅｒｗｏｒｔｈ，Ｂｏｓｔｏｎ ＭＡ（１９８８）およびＧｉｌｂｏａら、（１９８６）、および、例えば、安定または一過性のトランスフェクション、リポフェクション、電気穿孔および組換えウイルスベクターとの感染を含む。これらに加えて、中枢神経系に関与するベクターについては米国特許４，８６６，０４２、および陽性−陰性選択法については米国特許５，４６４，７６４および５，４８７，９９２を参照されたい。
【００５４】
感染による核酸の導入は、その他の方法よりもいくつかの利点がある。それらの感染性のためにより高い効率を得ることができる。更に、ウイルスは非常に特異的であり、特異的な細胞型において典型的に感染し繁殖する。それゆえ、それらの自然の特異性は、ｉｎ ｖｉｖｏまたは組織内あるいは細胞の混合培養で特異的な細胞に、ベクターを標的とするのに使用することができる。ウイルスベクターは、レセプターを介在させた場合を通して、標的特異性を変更する特異的レセプターまたはリガンドとの修飾に使用することができる。
【００５５】
組換え配列を導入し発現するためのＤＮＡウイルスベクターの特別の例は、アデノウイルス由来のベクターＡｄｅｎｏｐ５３ＴＫである。このベクターは、陽性または陰性選択のいずれか、および所望の組換え配列用の発現カセットで、ヘルペスウイルスのチミジンキナーゼ（ＴＫ）を発現する。このベクターは、上皮由来のほとんどのガンおよびその他を含むアデノウイルスレセプターを有する細胞に感染するのに使用することができる。このベクターおよび類似の所望の機能を示すその他のものは、細胞の混合集団を処理するのに使用することができ、そして、例えば、細胞、組織あるいはヒトの実質のｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｅｘ ｖｉｖｏ培養を含むことができる。
【００５６】
他の特徴を、安全性を確実にするため、および／または治療効率を増強するために、ベクターに加えることができる。そのような特徴は、例えば、組換えウイルスで感染した細胞に対する陰性選択に使用することができるマーカーを含む。そのような陰性選択マーカーの例は、抗生物質ガンシクロビルに対する感受性を付与する上記したＴＫ遺伝子である。陰性選択は、それゆえ、抗生物質の添加を通して誘導される自殺をおこすので、感染を制御することができる手段である。そのような保護は、例えば、もしウイルスベクターまたは組替え配列の変更した型を生産するような突然変異がおこれば、細胞の形質転換は起こらないことが確実になる。
【００５７】
特定の細胞型の発現を制限する特徴も、また、含むことができる。そのような特徴は、例えば、所望の細胞型に特異的なプロモーターおよび調節要素を含む。
【００５８】
更に、組換えウイルスベクターは、側方感染および標的特異性のような有利を与えるので、所望の核酸のｉｎ ｖｉｖｏ発現に有用である。側方感染は、例えば、レトロウイルスの生活環において遺伝性であり、単一感染細胞が多くの子孫のビリオンを生産し、それが分離して近辺の細胞に感染する過程である。その結果は、大きな領域が急速に感染され、その大部分が、元のウイルス粒子によって最初に感染されたのではなくなってしまう。このことは、感染剤が娘子孫を通してのみ広がる、感染の垂直性とは対照的である。ウイルスベクターは、側方に広がることができなくても造られる。この特徴は、もし所望の目的が、特定の遺伝子を限局された数の標的細胞にのみ導入することであるなら、有用である。
【００５９】
上記したように、ウイルスは、多くの場合、宿主の防御機構をのがれるために、進化した非常に特異的な感染剤である。典型的には、ウイルスは特定の細胞型に感染し繁殖する。ウイルスベクターのターゲティング特異性は、前以て定められた細胞型を特異的に標的とする自然の特異性を利用しており、それによって組替え遺伝子を感染細胞に導入するのである。本発明の方法において使用されるベクターは、標的となる所定の細胞に依存しており、当業者にはよく知られている。例えば、もし肺ガンを治療するとすれば、そのような上皮細胞に特異的なベクターが使用される。同様に、もし造血系の疾病あるいは病的状態を治療する場合、血液細胞およびその前駆体、好ましくは造血細胞の特異的な型、に特異的であるウイルスのベクターが使用される。
【００６０】
レトロウイルスベクターは、感染粒子としてあるいは１回限りの最初の感染を経験するためのいずれかに機能するように構成することができる。前者の場合、ウイルスのゲノムは、新しいウイルス粒子およびＲＮＡを合成するための全ての必要な遺伝子、調節配列およびパッケージングシグナルを保持するように修飾される。１度これら分子が合成されると、宿主細胞はＲＮＡを、更なる感染を経験することができる新しいウイルス粒子に包み込む。ベクターのゲノムは、また、所望の組換え遺伝子をコードし発現するように作り替えられる。非感染ウイルスベクターの場合、ベクターゲノムは、通常、ＲＮＡをウイルス粒子内にカプセル化するに必要とされるウイルスの、パッケージングシグナルを破壊するように突然変異する。そのようなシグナルがないと、形成するいかなる粒子も、ゲノムを含めず、それゆえ、続いて感染を行うことができない。ベクターの特定の型は、何に使うかの意図した応用次第である。実際のベクターは、また、周知技術内で知られており、いつでも手に入り、あるいは周知の方法を用いて当業者によって構築することができる。
【００６１】
組換えベクターは、いくつかの方法により投与することができる。もしウイルスベクターを使うなら、例えば、手順はそれらの標的特異性を利用することができ、従って、疾病部位に局所投与してはならない。しかし、局所投与は、迅速でより効果的治療ができ、投与は、例えば、主体に静脈または皮下注射により行うこともできる。ウイルスベクターの脊髄液への注射は、特に神経変性疾患の場合における投与方法として用いることができる。注射の後、ウイルスベクターは、注射に対する適当な標的特異性を有する宿主細胞を認識するまで循環する。
【００６２】
代りの投与方法は、疾病または病的状態の部位に局所的に直接接種するか、栄養分と共に部位につながっている、血管系にまたは脊髄液中に接種することによって行うことができる。局所投与は、稀釈効果がないこと、そして、それゆえに、多くの標的細胞において発現を達成するために少量の投与でよいので、有利である。更に、局所接種は、ベクターを接種領域の全ての細胞に感染するように使用できるので、別の投与形態に必要とされる標的必要条件を緩和することができる。もし発現が、投与された領域内の細胞の特定の部分集合に必要であるなら、必要な部分集合に特異的であるプロモーターおよび調節要素を、この目標を達成するために使用することができる。そのような非標的ベクターは、例えば、ウイルスベクター、ウイルスゲノム、プラスミド、ファージミド、その他であり得る。リポソームのようなトランスフェクションベヒクルも、また、上記した非ウイルスベクターを、接種領域内のレシピエント細胞に導入するのに使用することができる。そのようなトランスフェクションベヒクルは、当業者によって知られている。
【００６３】
上記した本発明の有効成分を含む医薬組成物は、医療の実施基準に従って、個々の患者の臨床状態、投与の部位および方法、投与計画、患者の年齢、性、体重その他医療の実施者に知られている因子を考慮して、投与され服用される。ここにおいて目的とする医薬として「有効な量」は、医療の分野で知られているような考慮によって決定される。その量は、医療分野の当業者による適切な手段として選択された、生存率の改善または急速な回復、あるいは、症状およびその他の指標の改善または除去を含み、それだけには限定されない、改善を達成するに有効でなければならない。医薬組成物は、有効成分の組み合わせであり得るが、しかし少なくとも１つの有効成分を含んでいる。
【００６４】
本発明の方法において、本発明の医薬組成物は、医薬組成物中の化合物の性質を考慮した種々の方法によって投与することができる。それらは、化合物としてあるいは医薬として許容される塩として投与することができ、そして単独で、または、医薬として許容される担体、稀釈剤、佐剤およびベヒクルとの組み合わせで投与することができる、ことに注目しなければならない。化合物は、経口、皮下または静脈内、動脈内、筋肉内、腹腔内、および鼻内、同様にクモ膜下および点滴技術を含む非経口、によって投与することができる。化合物のインプラントもまた有用である。治療される患者は、温血動物であり、特に、ヒトを含む哺乳類である。医薬として許容される担体、稀釈剤、佐剤およびベヒクル、更にインプラント担体は、一般的に、本発明の有効成分と反応しない、不活性、非毒性固体または液状賦形剤、稀釈剤またはカプセル化材料を云う。
【００６５】
ヒトは、一般的に、マウスまたはここにおいて例示したその他の実験動物よりも長く治療され、その治療は、疾病の経過および薬の効果の長さに比例していることが注目される。投薬は、単回投与または数日に亙る多回投与であるが、単回投与が好ましい。
【００６６】
投薬は、単回投与または数日に亙る多回投与である。治療は、一般的に疾病の経過および薬の効果の長さおよび治療されている患者の種類に比例した期間である。
【００６７】
本発明の化合物を、非経口的に投与するとき、一般的に単位投与注射可能な形態（溶液、懸濁剤、乳剤）に製剤化される。注射に適した医薬剤型は、滅菌水溶液あるいは分散剤、および滅菌注射可能溶液または分散剤に再構成するための滅菌粉末を含む。担体は、例えば、水、エタノール、ポリオール（例えば、グリセロール、プロピレングリコール、液状ポリエチレングリコール、その他）、それらの適当な混合物、および植物油、を含有した溶液または分散媒体であり得る。
【００６８】
適当な流動性を、例えば、レシチンのような被覆の使用により、分散剤の場合には必要な粒径の保持により、および界面活性剤の使用により、保持することができる。非水性ベヒクル、例えば綿実油、ゴマ油、オリーブオイル、大豆油、トウモロコシ油、ヒマワリ油、またはピーナツ油、およびエステル、例えばミリスチン酸イソプロピル、が化合物の組成物の溶媒系として使用される。更に、抗菌保存剤、抗酸化剤、キレート剤、およびバッファーを含め、組成物の安定性、無菌性、および等張性を増強する種々の添加物を加えることができる。微生物の作用の予防は、種々の抗菌および抗真菌剤、例えば、パラベン、クロロブタノール、フェノール、ソルビン酸、その他により確保することができる。多くの場合、等張剤、例えば、砂糖、塩化ナトリウム、その他を含むことが望ましい。注射可能な医薬形態の長期の吸収は吸収遅延剤、例えば、モノステアリン酸アルミニウムおよびゼラチンの使用によりもたらされる。本発明によれば、しかし、使用されるベヒクル、稀釈剤、または添加剤のいずれも、化合物と両立しなければならない。
【００６９】
滅菌注射可能溶液は、本発明の実施において利用される化合物を適当な溶媒の必要とする量に、所望により、その他の種々の成分と共にとり入れることによって調製することができる。
【００７０】
本発明の医薬製剤は、混合しても化学変化を起こさない担体、例えば種々のベヒクル、佐剤、添加剤、および稀釈剤を含有する注射可能な製剤において、患者に投与することができ；あるいは本発明において利用される化合物は、遅延放出皮下インプラントまたは標的送達システム、例えばモノクローナル抗体、ベクター化送達、イオン導入、ポリマー基剤、リポソーム、およびミクロスフィア、の形で、非経口的に患者に投与することができる。本発明において有用な送達システムの例としては以下を含む：５，２２５，１８２；５，１６９，３８３；５，１６７，６１６；４，９５９，２１７；４，９２５，６７８；４，４８７，６０３；４，４８６，１９４；４，４４７，２３３；４，４４７，２２４；４，４３９，１９６；および４，４７５，１９６。多くの他のそのようなインプラント、送達システム、およびモジュールは当業者に周知である。
【００７１】
本発明において利用される化合物の医薬製剤は、患者に経口で投与することができる。錠剤、懸濁液、溶液、乳化液、カプセル、粉末、シロップ、その他、の化合物を投与するような通常の方法が使用される。経口または静脈内に運搬し生物活性を保持している、公知の技術が好ましい。
【００７２】
１実施態様において、本発明の化合物は、血中濃度を適当なレベルにするよう静脈内注射によって最初投与することができる。患者のレベルは、経口投与形態によって保たれる、しかし他の投与形態も、患者の状態によっておよび上に示したように、使用可能である。投与される量は、治療される患者により変化し、そして、１日当り、約１００ｎｇ／ｋｇ体重から１００ｍｇ／ｋｇ体重と変化し、好ましくは、１日当り、１０μｇ／ｋｇから１０ｍｇ／ｋｇである。
【００７３】
本発明は、また、実施例においてここに記載したように、配列番号１；配列番号２；配列番号３；配列番号４；配列番号５；および配列番号６を含む群に示す、少なくとも１つの発現性遺伝子（上向き調節性）の存在または遺伝子産物、または配列番号７−１１に示すタンパク質について、患者からの体液または組織試料を分析し、そして、もし上向き調節性遺伝子または遺伝子産物が確かめられたなら虚血と決める、ステップを包含する、患者における虚血の存在を診断する方法を提供する。体液は、虚血の発生が起こりつつある組織から分泌されたタンパク質が局在している、涙、血清、尿、汗またはその他の体液を含む。遺伝子または遺伝子産物の更なる同定方法は、イムノアッセイ、例えばＥＬＩＳＡ、またはラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）であり、これらは特に試料中の遺伝子産物を同定するために当業者に周知のものとして使用し得る。組織試料の免疫組織化学染色も、また、同定に使用される。入手できるイムノアッセイは、特許および科学文献に広範に記載されている。例えば、米国特許３，７９１，９３２；３，８３９，１５３；３，８５０，７５２；３，８５０，５７８；３，８５３，９８７；３，８６７，５１７；３，８７９，２６２；３，９０１，６５４；３，９３５，０７４；３，９８４，５３３；３，９９６，３４５；４，０３４，０７４；４，０９８，８７６；４，８７９，２１９；５，０１１，７７１および５，２８１，５２１を参照。更に遺伝子の同定には、プライマーとして本発明の核酸配列を使用して、ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション、サザンブロティング、一本鎖立体配座多型、制限エンドヌクレアーゼフィンガープリント法（ＲＥＦ）、ＰＣＲ増幅およびＤＮＡチップ分析法を使用することができる。
【００７４】
上記の考察は、低酸素および虚血を調節する遺伝子の使用ならびにアポトーシスおよび血管形成を、事実を基本として行ったものである。本発明で使用された方法および利用は、以下の非制限的な実施例および添付の図面によって示すことができる。
【００７５】
（実施例）
方法：
分子生物学において使用されているほとんどの技術が、当該技術において広く実用化されており、ほとんどの実務家が、特定の条件および方法を記載している標準原材料に精通している。しかしながら、便宜上、以下の節は、指針として供するものである。
【００７６】
分子生物学における一般的方法：周知の標準的分子生物学の技術および特に記載しなかったものは、以下にもとづいた：特に、ノーザン解析およびＩｎ Ｓｉｔｕ分析について、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、「分子クローニング：実験室マニュアル（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）」、 Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８９）、およびＡｕｓｂｅｌら、「分子生物学における最新のプロトコル（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ）」，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ａｎｄ Ｓｏｎｓ，Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ，Ｍａｒｙｌａｎｄ（１９８９）、およびＰｅｒｂａｌ，「分子クローニングへの実用的手引き（Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ）」，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８８）、およびＷａｔｓｏｎら、「組換えＤＮＡ（Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ＤＮＡ）」，Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｂｏｏｋｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ。ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）については、「ＰＣＲプロトコル：方法と応用への手引き（ＰＣＲ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ：Ａ Ｇｕｉｄｅ Ｔｏ Ｍｅｔｈｏｄｓ Ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ）」，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ（１９９０）、により一般的に行われた。
【００７７】
その他の核酸技術に関連する反応および操作は、特に断らない限り、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、１９８９、「分子クローニング（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ）」：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、 Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、および米国特許４，６６６，８２８；４，６８３，２０２；４，８０１，５３１；５，１９２，６５９および５，２７２，０５７に一般的に記載されたようにして実施され、そしてこれらは参照することによりここにとり入れられている。
【００７８】
更に、フローサイトメトリーと組み合せて、Ｉｎ ｓｉｔｕ（Ｉｎ ｃｅｌｌ）ＰＣＲが、特異的なＤＮＡおよびｍＲＮＡ配列を含む細胞の検出に使用することができる（Ｔｅｓｔｏｎｉら、１９９６，Ｂｌｏｏｄ ８７：３８２２）。
【００７９】
免疫学における一般的方法：免疫学の標準的方法は周知であり、特に記載しないものは、一般的に、Ｓｔｉｔｅｓら（編）、「基礎的および臨床的免疫学（Ｂａｓｉｃ ａｎｄ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ）」（第８版）、Ａｐｐｌｅｔｏｎ ＆ Ｌａｎｇｅ，Ｎｏｒｗａｋ，ＣＴ（１９９４）およびＭｉｓｈｅｌｌ ａｎｄ Ｓｈｉｉｇｉ（編）、「細胞免疫学における選ばれた方法（Ｓｅｌｅｃｔｅｄ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｃｅｌｌｕｌａｒ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ）」，Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ ａｎｄ Ｃｏ．， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８０）、に従った。入手可能なイムノアッセイは特許および科学文献に広範に記載されている。例えば、米国特許３，７９１，９３２；３，８３９，１５３；３，８５０，７５２；３，８５０，５７８；３，８５３，９８７；３，８６７，５１７；３，８７９，２６２；３，９０１，６５４；３，９３５，０７４；３，９８４，５３３；３，９９６，３４５；４，０３４，０７４；４，０９８，８７６；４，８７９，２１９；５，０１１，７７１および５，２８１，５２１、同様にＳａｍｂｒｏｏｋら、「分子クローニング：実験室マニュアル（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）」、 Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１９８９を参照されたい。
【００８０】
ディファレンシャル分析
例えば、Ｃ６グリオーマ細胞またはその他の適当な細胞、細胞株あるいは組織は、正常な状態（標準酸素）または通常４ないし１６時間の酸素欠乏状態（低酸素）の下で増殖される。細胞を集め、ＲＮＡを細胞質抽出物および核分画から調製する。ＲＮＡ抽出に次いで、蛍光ｃＤＮＡプローブを調製する。各条件（例えば、４時間の低酸素および正常酸素）で、異なった蛍光色素で標識する。例えば、プローブは、低酸素の細胞から抽出したＲＮＡからＣｙ３−ｄＣＴＰ ｃＤＮＡおよび正常酸素の細胞から抽出したＲＮＡからＣｙ５−ｄＣＴＰ ｃＤＮＡの混合物から構成することができる。プローブは、低酸素に曝露されたＣ６細胞から由来の点状のｃＤＮＡクローンを個々に含有するミクロアレーにハイブリダイゼーションするのに使われる。差次的発現（ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）は、アレーのクローンの各々にハイブリダイズする蛍光ｃＤＮＡの量によって測定される。低酸素条件下で上向き調節（ｕｐ ｒｅｇｕｌａｔｅｄ）される遺伝子は、Ｃｙ３の蛍光をＣｙ５よりも多く有している。結果は、低酸素に非常に速く応答する、転写的に誘導されたｍＲＮＡの遺伝子を示している。
【００８１】
ディファレンシャルディスプレイ：
逆転写：ＲＮＡ２μｇを、容量６．５μｌ中オリゴｄＴプライマーの１ｐモルと、７０℃にて５分間加熱し、氷冷してアニールする。２μｌ反応バッファー（ｘ５）、１０ｍＭｄＮＴＰｍｉｘの１μｌ、およびＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔＩＩ逆転写酵素（ＧｉｂｃｏＢＲＬ）を加える。反応を４２℃にて１時間行う。反応を７０μｌのＴＥ（１０ｍＭ、Ｔｒｉｓ、ｐＨ＝８；０．１ｍＭ、ＥＤＴＡ）を加えて停止する。
【００８２】
分別提示に使用するオリゴヌクレオチド：オリゴヌクレオチドは、一般的にＤｅｌｔａ ＲＮＡ Ｆｉｎｇｅｒｐｒｉｎｔｉｎｇ ｋｉｔ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ Ｌａｂｓ．Ｉｎｃ．）に記載されているものである。
増幅反応：各反応は、２０μｌで行い、５０μＭのｄＮＴＰ−ｍｉｘ、各プライマーから１μＭ，１ｘポリメラーゼバッファー、ｅｘｐａｎｄポリメラーゼ（Ｂｅｏｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ）１単位、２μＣｉ［α−³²Ｐ］ｄＡＴＰおよび１μｌのｃＤＮＡ鋳型、を含む。サイクリング条件は一般的に：９５℃で３分、次いで９４℃で２分間、４０℃で５分間、６８℃で５分間の３サイクル。これは、９４℃で１分間２７サイクル、６０℃で２分間、６８℃で２分間と続ける。反応は、６８℃で７分間インキュベーションし、シーケンシング停止液（９５％ホルムアミド、１０ｍＭ−ＮａＯＨ、０．０２５％ブロモフェノールブルー、０．０２５％キシレンシアノール）２０μｌを加えることによって停止した。
【００８３】
ゲル分析：一般的に、３−４μｌを５％シーケンシングポリアクリルアミドゲルにかけ、試料を、遅速色素（キシレンシアノール）が底から約２ｃｍになるまで２０００ボルト／４０ミリアンペアで電気泳動する。ゲルを、ろ紙上に転移し、減圧下に乾燥し、Ｘ線フィルムに露光する。
【００８４】
分別バンドの回収：種々のプールの間で分別を示すバンドを乾燥ゲルから切り出し、微量遠心管中に置いた。滅菌Ｈ₂Ｏ−５０μｌを加え、管を１００℃に５分間加熱した。分別呈示に使用されると同じプライマーを使用して４９μｌ−ＰＣＲ反応に１μｌを加え、試料を、１分間９４℃、１分間６０℃および１分間６８℃の３０サイクルで増幅する。１０μｌをアガロースゲル上で解析し、可視化して増幅の成功を確認する。
【００８５】
リプレゼンテイショナル−ディファレンス分析
逆転写：上記と同じ、但し、２μｇポリＡ＋選択ｍＲＮＡと共に行う。
二本鎖ｃＤＮＡの調製：前ステップからのｃＤＮＡをアルカリ処理し、ｍＲＮＡを除き、沈殿し、２０μｌ−Ｈ₂Ｏに溶解する。５μｌバッファー、２μｌ−１０ｍＭ−ｄＡＴＰ、Ｈ₂Ｏで４８μｌにし、そして２μｌターミナル−デオキシヌクレオチド−トランスフェラーゼ（ＴｄＴ）を加える。反応は、３７℃にて２−４時間インキュベートする。５μｌオリゴｄＴ（１μｇ／μｌ）を加え、６０℃で５分インキュベートした。２００ｍＭ−ＤＴＴを５μｌ、１０ｘ切断バッファー（１００ｎＭ−ＭｇＣｌ₂、９００ｍＭ−Ｈｅｐｅｓ、ｐＨ６．６）１０μｌ、ｄＮＴＰｓ（１ｍＭ）１６μｌ、およびクレノウ１６単位を加え、混合物を室温で一夜インキュベートし、ｄｓ−ｃＤＮＡを生成させる。ＴＥ１００μｌを加え、フェノール／クロロホルムで抽出する。ＤＮＡが沈殿し、Ｈ₂Ｏ−５０μｌに溶解する。
【００８６】
リプレゼンテーションの生成：ｃＤＮＡをＤｐｎＩＩと共に、３μｌＤｐｎＩＩ反応バッファー２０ＶおよびＤｐｎＩＩを２５μｌｃＤＮＡに加えて消化し、そして３７℃にて５時間インキュベートする。５０μｌ−ＴＥを加え、フェノール／クロロホルムで抽出する。ｃＤＮＡが沈殿し、１０ｎｇ／μｌの濃度に溶解する。
【００８７】
ドライバー：１．２μｇＤｐｎＩＩ消化ｃＤＮＡ．各オリゴからの４μｌおよび５μｌ連結反応バッファーｘ１０および６０℃、１０分間アニールする。２μｌリガーゼを加え、１６℃にて一夜インキュベートする。連結反応混合物を１４０μｌＴＥを加えて稀釈する。増幅は、適当なプライマーおよび２μｌ連結反応産物を用いて２００μｌの容量で行い、各試料につき２０管中で繰り返した。ＴａｑＤＮＡポリメラーゼを加える前に、管を７２℃に３分間加熱する。ＰＣＲ条件は以下の通りである：７２℃５分、９５℃１分および７２℃３分の２０サイクル、続いて７２℃１０分間。各４反応を合わせ、フェノール／クロロホルムで抽出し、沈殿させた。増幅したＤＮＡは、０．５μｇ／μｌの濃度に溶解し、全ての試料をプールする。
【００８８】
サブトラクション：テスターＤＮＡ（２０μｌ）を上記のＤｐｎＩＩで消化し、１．２％アガロースゲル上で分離する。ＤＮＡをゲルから抽出し、２μｇを適当なオリゴに連結する。連結したテスターＤＮＡはＴＥで１０ｎｇ／μｌに稀釈する。ドライバーＤＮＡはＤｐｎＩＩで消化し、最終濃度０．５μｇ／μｌに再精製する。ドライバーＤＮＡ４０μｇをテスターＤＮＡ０．４μｇと混合する。抽出はフェノール／クロロホルムで行い、７０％エタノール２回洗滌で沈殿させ、ＤＮＡを３０ｍＭ−ＥＰＰＳ、ｐＨ８．０、３ｍＭ−ＥＤＴＡ、４μｌに再懸濁し、３５μｌミネラルオイルで重層した。９８℃、５分間で変成させ、６７℃に冷却し、５Ｍ−ＮａＣｌ、１μｌをＤＮＡに加えた。６７℃で２０時間インキュベートする。４００μｌＴＥを加えてＤＮＡを稀釈する。
【００８９】
増幅：差引きしたＤＮＡの最終濃度２００μｌでの増幅は、以下の通りである：バッファー、ヌクレオチドおよび稀釈ＤＮＡ２０μｌを加え、７２℃に加温し、ＴａｑＤＮＡポリメラーゼを加える。７２℃で５分間インキュベートし、適当なオリゴを加える。９５℃、１分、７０℃、３分の１０サイクルを行う。７２℃で１０分間インキュベートする。増幅は４つの別々の管で繰り返す。増幅したＤＮＡをフェノール／クロロホルムで抽出し、沈殿し、４つの管全てを４０μｌ、０．２ｘＴＥに合わせ、マングマメのヌクレアーゼで、以下の通り消化する：２０μｌ−ＤＮＡ４μｌバッファーに、１４μｌ−Ｈ₂Ｏおよび２μｌマングマメのヌクレアーゼ（１０単位／μｌ）２μｌをくわえる。３０℃、３５分間インキュベート＋最初のディファレンシャル産物（ＤＰＩ）。
【００９０】
ドライバーでの繰り返しサブトラクションハイブリダイゼーションおよびＰＣＲ増幅：適当なオリゴヌクレトチドをもちいて、ディファレンシャル比１：４００（ＤＰＩＩ）および１：４０，０００（ＤＰＩＩＩ）。ディファレンシャル産物を、個々のクローンの解析のためにＢＡＭＨＩ部位でＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔベクターにクローン化する。
【００９１】
遺伝子発現ミクロ−アレーを用いたディファレンシャル発現
上記したようにして単離されたメッセンジャーＲＮＡを、逆転写反応を使って蛍光ｄＮＴＰを標識し、標識ｃＤＮＡプローブを生成する。ｍＲＮＡを、正常酸素で培養したＣ６細胞から抽出し、Ｃｙ３−ｄＣＴＰ（Ａｍｅｒｓｈａｍ）で標識し、低酸素条件下で培養したＣ６細胞から抽出したｍＲＮＡをＣｙ５−ｄＣＴＰ（Ａｍｅｒｓｈａｍ）で標識する。２つの標識ｃＤＮＡプローブを混合し、そして、例えば、低酸素条件下で培養したＣ６細胞から調製した、ｃＤＮＡライブラリー由来の２０００ｃＤＮＡクローンからなるミクロアレー（Ｓｃｈｅｎａら、１９９６）にハイブリダイズする。ハイブリダイゼーションに続いて、ミクロアレーをレーザースキャナーを用いてスキャンし、蛍光色素の各蛍光量を、試験される元のｍＲＮＡ集団の各々におけるｍＲＮＡのレベルを与える、ミクロアレー上の各ｃＤＮＡにつき測定する。２つの異なった蛍光色素の間のミクロアレー上の各ｃＤＮＡクローンの蛍光を比較して、２つの実験条件の間の所定の遺伝子のディファレンシャル発現を測定する。
【００９２】
Ｉｎ ｓｉｔｕ分析
ｉｎ ｓｉｔｕ分析は、上記した低酸素条件に曝露した分別応答によって同定された候補遺伝子について行う。発現は、２つの実験系で調べた：固形腫瘍および低酸素網膜。
【００９３】
固形腫瘍は、マウスに、ディファレンシャル発現に使用した元のグリオーマ細胞の注射によって生じさせた。グリオーマ細胞は腫瘍を形成し、それを摘出し、薄切し、候補遺伝子の個々の発現レベルを測定するのに使用する。固形腫瘍モデル（Ｂｅｎｊａｍｉｎら、１９９７）は、候補遺伝子の発現が腫瘍の中心部に見出される低酸素領域の辺りに腫瘍が活性化されていることを示し、それゆえｉｎ ｖｉｖｏ低酸素調節性である。上向き調節は、更に、上向き調節遺伝子は、腫瘍増殖を継続するに必要な血管形成を促進することができることを、示唆している。
【００９４】
低酸素網膜モデルは、低酸素（虚血）に曝露され、そして直接網膜症を模倣している、臓器における発現レベルを測定する。網膜における低酸素は、網膜における血管を減少させる、低酸素に新生仔ラットを曝露することによって創生される（Ａｌｏｎら、１９９５）。正常の酸素レベルに移すと、相対的な低酸素が、血液供給の欠如によって起こる。低酸素網膜を摘出し、薄切し、候補遺伝子の発現をモニターするのに使用する。
【００９５】
結果
遺伝子発現ミクロアレー分析を利用して、配列番号１−６に示す遺伝子は、低酸素条件下で分化的に発現されていることが同定された。
【００９６】
図に示すように、低酸素条件下で差次的発現が観察された。ノーザン解析を、候補遺伝子から誘導した³²Ｐ−ｄＣＴＰ標識プローブで行った。ｍＲＮＡ２μｇをホルムアルデヒド含有アガロースゲルで分画し、ニトロセルロース膜にブロットし、そして標識ｃＤＮＡプローブにハイブリダイズした。低酸素の結果として発現の動力学をモニターするため、ｍＲＮＡを正常酸素中の細胞から調製し、そして低酸素条件に４および１６時間曝露した。解析の結果は、全ての遺伝子（配列番号１−６）が、遺伝子発現ミクロアレー分析によって得られた結果で確認され、低酸素条件によって誘導されていることが示された。
【００９７】
固形腫瘍モデルを使用したｉｎ ｓｉｔｕ解析において、配列番号１−６は上向き調節され、発現している。網膜モデルにおいて、配列番号１、２および６はこのモデルで上向き調節されていることが見出された。
【００９８】
配列番号１（ＲＴＰ８０１）は、配列番号２（ＲＴＰ７７９）のラット相同体である。タンパク質配列は、それぞれ配列番号９および配列番号１０である。これら遺伝子の両方共、遺伝子データベースに報告されていない、そして低酸素ストレス下で発現され、両者のｉｎ ｓｉｔｕ解析で上向き調節されている。この遺伝子の発現は、ａｄｃｔｉｖｅアポトーシスが生じている卵巣で、観察されている。その調節は、ＨＩＦ−１依存性（Ｃａｒｍｅｌｉｅｔら、１９９８）であり、更に、その遺伝子は低酸素誘導アポトーシスに関連していることを示している。いくつかの相同体が、ＲＴＰ８０１の３′ＵＴＲと転写因子（ラット）ｐｅｔ−１の５′ＵＴＲの間に見出された（Ｃａｒｍｅｌｉｅｔら、１９９８；Ｓｐｅｎｃｅら、１９９８；Ｆｙｏｄｏｒｏｖら、１９９８）。
【００９９】
配列番号３（ＲＴＰ２４１）は１９０２ｂｐの長さで、遺伝子データベースには報告されていない、そして低酸素ストレス下で発現され、ｉｎ ｓｉｔｕ解析で上向き調節されている。この遺伝子は、ｃｏｘ１４遺伝子の上流に位置している酵母の遺伝子と、いくつかの相同性を有している。この配列によりコードされるタンパク質（配列番号７）は、シグナルペプチド領域を含み、それゆえ分泌される。
【０１００】
配列番号４（ＲＴＰ２２０）は、４７１９ｂｐの長さで、遺伝子データベースには報告されておらず、そして低酸素ストレス下で発現され、ｉｎ ｓｉｔｕ解析で腫瘍において、上向き調節されている。この遺伝子は、ショウジョウバエからのａｎｎｉｌｉｎといくつかの相同性を有している。タンパク質配列は、配列番号１１に示される。
【０１０１】
配列番号５（ＲＴＰ９５３／３５９）は部分遺伝子配列で、遺伝子データベースには見出されておらず、そして低酸素ストレス下で発現され、ｉｎ ｓｉｔｕ解析で両者において、上向き調節されている。
【０１０２】
配列番号６（ＲＴＰ９７１）は、低酸素ストレス下で発現され、ｉｎ ｓｉｔｕ解析で、腫瘍において、上向き調節されている。始めの解析はラット配列を使用した。配列番号６は、ヒト相同体で、ラット配列と相同性が９０％より大である。予備的な配列解析に基いて、遺伝子Ｎｅｕｒｏｌｅｕｋｉｎまたはその遺伝子ファミリーのメンバーであるらしい。この遺伝子は低酸素条件に反応することは報告されておらず、アストロサイトに対する新しい自発運動能因子であると報告されている。報告されている遺伝子は、解糖酵素ホスホヘキソースイソメラーゼとして、そしてニューロンの生存因子として同定されているタンパク質（配列番号８、ヒト相同体）をコードする（Ｎｉｉｎａｋａら、１９９８；Ｗａｔａｎａｂｅら、１９９６）。
【０１０３】
アストロサイト自発運動能は、脳および網膜において血管の生成（血管形成）に重要な因子である。アストロサイトは、ＷＥＧＦのような血管形成因子の分泌により低酸素条件下に反応するので、酸素レベルセンサーと考えることができる。実験において、初代アストロサイト培養は樹立され、ｉｎ ｖｉｔｒｏで無血清で増殖し、そしてアストロサイトは不死化された。しかし、低酸素条件下で培養した網膜の培養からの順化培地を、アストロサイトの培養に加えると、自動運動能が観察された。もしニューロロイキン阻害剤（Ｏｂｅｓｅら、１９９０）、Ｄ−エリトース−４−リン酸（１．２５ｍＭで）を加えると、アストロサイト培養において明らかな阻害の指標が見られ、このことは、アストロサイト自動運動能（および星状化）はニューロロイキン活性に依存することを示している。その他の結果は、配列番号６は、また、ＨＩＦ−１依存性であり、さらに、このことは、遺伝子は、低酸素誘導性血管形成およびアポトーシスに関連していることを示している。
【０１０４】
この出願を通じて、米国特許を含め、種々の刊行物が、著者によって参照され、および番号により年号および特許が参照される。刊行物の全引用は以下に一覧される。これら刊行物および特許におけるそれらの内容の開示は、本発明が関連している技術水準をより完全に記載するために、本発明に参照することにより、ここにとり入れられている。
【０１０５】
本発明において、例示的方法で記載され、使用されている用語は、むしろ限定するよりも記載の用語の本質におけるものを意図していると、理解されるべきである。
【０１０６】
明らかに、本発明の多くの修飾および変形が、上記の教示に照らして可能である。それゆえ、付属した特許請求の範囲の範囲内において、本発明は、特異的に記載した態様とは異なる態様で実施され得ることが、理解されるべきである。
【０１０７】
引用文献
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【０１３９】
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【０１４１】
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【０１４２】
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【０１４３】
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【０１４４】
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【０１６１】
Ｒｏｓｏｌｅｎら（１９９０）、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．，５０：６３１６。
【０１６２】
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【０１６３】
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【０１６５】
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【０１６６】
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【０１６７】
Ｗａｇｎｅｒ（１９９４）、「アンチセンスオリゴデオキシヌクレオチドを用いた遺伝子阻害」、Ｎａｔｕｒｅ，３７２：３３３。
【０１６８】
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【０１６９】
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【０１７０】
Ｗｒｉｇｈｔ ＆ Ａｎａｚｏｄｏ（１９９５）、「アンチセンス分子と、癌およびＡＩＤＳ治療に対するその能力」、Ｃａｎｃｅｒ Ｊ． ８：１８５−１８９。
【０１７１】
Ｗｏｏｌｆら（１９９０）、「Ｘｅｎｏｐｕｓ ｏｏｃｙｔｅｓ（アフリカツメガエル）および胚での非修飾のおよびチオりん酸エステルのアンチセンスオリゴデオキシヌクレオチドの安定性、毒性および有効性」、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．，１８：１７６３−１７６９。
【０１７２】
配列表
（１）一般情報
（ｉ）出願人： Ｅｉｎａｔ，Ｐａｚ
Ｓｋａｌｉｔｅｒ，Ｒａｍｉ
（ｉｉ）発明の名称： 低酸素調節性遺伝子
（ｉｉｉ）配列の数： １１
（ｉｖ）通信先住所：
（Ａ）受信人： ＫＯＨＮ ＆ ＡＳＳＯＣＩＡＴＥＳ
（Ｂ）街： ３０５００ Ｎｏｒｔｈｗｅｓｔｅｒｎ Ｈｗｙ．，Ｓｕｉｔｅ ４０１
（Ｃ）市： Ｆａｒｍｉｎｇｔｏｎ Ｈｉｌｌｓ
（Ｄ）州： ミシガン
（Ｅ）国： 米国
（Ｆ）郵便番号： ４８３３４
（ｖ）コンピューター読み取り形式
（Ａ）媒体： フロッピーディスク
（Ｂ）コンピューター： ＩＢＭ ＰＣ コンパチブル
（Ｃ）ＯＳ： ＰＣ−ＤＯＳ／ＭＳ−ＤＯＳ
（Ｄ）ソフトウエア： ＰａｔｅｎｔＩｎ Ｒｅｌｅａｓｅ ＃１．０，バージョン ＃１．３０
（ｖｉ）出願データ
（Ａ）出願番号：
（Ｂ）出願日：
（Ｃ）分類：
（ｖｉｉｉ）代理人／特許事務所情報
（Ａ）氏名： Ｋｏｈｎ， Ｋｅｎｎｅｔｈ Ｉ．
（Ｂ）登録番号： ３０，９５５
（Ｃ）参照番号： ０１６８．０００３８
（ｉｘ）電話通信情報
（Ａ）電話： （２４８）５３９−５０５０
（Ｂ）テレファックス： （２４８）５３９５０５５
【０１７３】
（２）配列番号：１に関する情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ： １７５４塩基対
（Ｂ）配列の型： 核酸
（Ｃ）鎖の数： 一本鎖
（Ｄ）トポロジー： 直鎖状
（ｉｉ）配列の種類： ｃＤＮＡ
（ｉｉｉ）ハイポセティカル配列： ＮＯ
（ｉｖ）アンチセンス： ＮＯ
【０１７４】
（ｘｉ）配列： 配列番号：１：
【化１】

【０１７５】
（２）配列番号：２に関する情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ： １７８２塩基対
（Ｂ）配列の型： 核酸
（Ｃ）鎖の数： 一本鎖
（Ｄ）トポロジー： 直鎖状
（ｉｉ）配列の種類： ｃＤＮＡ
（ｉｉｉ）ハイポセティカル配列： ＮＯ
（ｉｖ）アンチセンス： ＮＯ
【０１７６】
（ｘｉ）配列： 配列番号：２：
【化２】

【０１７７】
（２）配列番号：３に関する情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ： １９００塩基対
（Ｂ）配列の型： 核酸
（Ｃ）鎖の数： 一本鎖
（Ｄ）トポロジー： 直鎖状
（ｉｉ）配列の種類： ｃＤＮＡ
（ｉｉｉ）ハイポセティカル配列： ＮＯ
（ｉｖ）アンチセンス： ＮＯ
【０１７８】
（ｘｉ）配列： 配列番号：３：
【化３】

【０１７９】
（２）配列番号：４に関する情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ： ４１２１塩基対
（Ｂ）配列の型： 核酸
（Ｃ）鎖の数： 一本鎖
（Ｄ）トポロジー： 直鎖状
（ｉｉ）配列の種類： ｃＤＮＡ
（ｉｉｉ）ハイポセティカル配列： ＮＯ
（ｉｖ）アンチセンス： ＮＯ
【０１８０】
（ｘｉ）配列： 配列番号：４：
【化４】

【化５】

【化６】

【０１８１】
（２）配列番号：５に関する情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ： ２０５９塩基対
（Ｂ）配列の型： 核酸
（Ｃ）鎖の数： 一本鎖
（Ｄ）トポロジー： 直鎖状
（ｉｉ）配列の種類： ｃＤＮＡ
（ｉｉｉ）ハイポセティカル配列： ＮＯ
（ｉｖ）アンチセンス： ＮＯ
【０１８２】
（ｘｉ）配列： 配列番号：５：
【化７】

【化８】

【０１８３】
（２）配列番号：６に関する情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ： １９８７塩基対
（Ｂ）配列の型： 核酸
（Ｃ）鎖の数： 一本鎖
（Ｄ）トポロジー： 直鎖状
（ｉｉ）配列の種類： ｃＤＮＡ
（ｉｉｉ）ハイポセティカル配列： ＮＯ
（ｉｖ）アンチセンス： ＮＯ
【０１８４】
（ｘｉ）配列： 配列番号：６：
【化９】

【化１０】

【０１８５】
（２）配列番号：７に関する情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ： ４６４アミノ酸
（Ｂ）配列の型： アミノ酸
（Ｃ）鎖の数： 一本鎖
（Ｄ）トポロジー： 直鎖状
（ｉｉ）配列の種類： タンパク質
（ｉｉｉ）ハイポセティカル配列： ＮＯ
【０１８６】
（ｘｉ）配列： 配列番号：７：
【化１１】

【化１２】

【０１８７】
（２）配列番号：８に関する情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ： ５５８アミノ酸
（Ｂ）配列の型： アミノ酸
（Ｃ）鎖の数： 一本鎖
（Ｄ）トポロジー： 直鎖状
（ｉｉ）配列の種類： タンパク質
（ｉｉｉ）ハイポセティカル配列： ＮＯ
【０１８８】
（ｘｉ）配列： 配列番号：８：
【化１３】

【化１４】

【０１８９】
（２）配列番号：９に関する情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ： ２２９アミノ酸
（Ｂ）配列の型： アミノ酸
（Ｃ）鎖の数： 一本鎖
（Ｄ）トポロジー： 直鎖状
（ｉｉ）配列の種類： タンパク質
（ｉｉｉ）ハイポセティカル配列： ＮＯ
【０１９０】
（ｘｉ）配列： 配列番号：９：
【化１５】

【０１９１】
（２）配列番号：１０に関する情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ： ２３２アミノ酸
（Ｂ）配列の型： アミノ酸
（Ｃ）鎖の数： 一本鎖
（Ｄ）トポロジー： 直鎖状
（ｉｉ）配列の種類： タンパク質
（ｉｉｉ）ハイポセティカル配列： ＮＯ
【０１９２】
（ｘｉ）配列： 配列番号：１０：
【化１６】

【０１９３】
（２）配列番号：１１に関する情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ： ８６４アミノ酸
（Ｂ）配列の型： アミノ酸
（Ｃ）鎖の数： 一本鎖
（Ｄ）トポロジー： 直鎖状
（ｉｉ）配列の種類： タンパク質
（ｉｉｉ）ハイポセティカル配列： ＮＯ
【０１９４】
（ｘｉ）配列： 配列番号：１１：
【化１７】

【化１８】

【化１９】

【化２０】

【図面の説明】
本発明の、別の有用性は、添付図面に関連して考慮するとき、以下の詳細な説明を参照することによって、よりよい理解に至ると同様に、直ちに正しく認識されるであろう。
図１は、ＲＴＰ８０１（配列番号１）の全長ｃＤＮＡクローンのｉｎ ｖｉｔｒｏ翻訳を示すコンピュータースキャンである。ｃＤＮＡクローンは共役転写−翻訳キット（Ｐｒｏｍｅｇａ）を使用してｉｎ ｖｉｔｒｏで翻訳された。翻訳産物は、アクリルアミドゲル上で分離され、Ｘ線フィルムに感光された。矢印でマークした、２つのクローンは、約３０ＫＤのサイズの予想したタンパク質を与えた。このことは推定の配列解析を確認している。
図２は、ＲＴＰ８０１（配列番号１）のノーザンブロット解析を示すコンピュータースキャンである。ＲＮＡは、０、４、または１６時間、低酸素に曝露した、ラットＣ６グリオーマ細胞から抽出した。各試料からのポリＡ＋選択ｍＲＮＡ（２μｇ）は変性アガロースゲル上で分離し、Ｎｙｔｒａｎ膜にブロットし、ｒｔｐ２４１プローブでハイブリダイズした。１．８Ｋｂの１つのバンドは、低酸素後顕著な誘導を示すことが観察される。
図３は、ＲＴＰ７７９（配列番号２）のノーザンブロット解析を示すコンピュータースキャンである。ＲＮＡは、０、４、または１６時間、低酸素に曝露した、ラットＣ６グリオーマ細胞から抽出した。各試料からのポリＡ＋選択ｍＲＮＡ（２μｇ）は変性アガロースゲル上で分離し、Ｎｙｔｒａｎ膜にブロットし、ｒｔｐ７７９プローブでハイブリダイズした。１．８Ｋｂの１つのバンドは、極端な差次的発現（ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）を示すことが観察される。
図４は、ＲＴＰ２４１（配列番号３）のノーザンブロット解析を示すコンピュータースキャンである。ＲＮＡは、０、４、または１６時間、低酸素に曝露した、ラットＣ６グリオーマ細胞から抽出した。各試料からのポリＡ＋選択ｍＲＮＡ（２μｇ）は変性アガロースゲル上で分離し、Ｎｙｔｒａｎ膜にブロットし、ｒｔｐ２４１プローブでハイブリダイズした。１．８Ｋｂおよび４Ｋｂの２つのバンドは、両方とも良好な差次的発現を示すことが観察される。
図５は、ＲＴＰ３５９（配列番号５）のノーザンブロット解析を示すコンピュータースキャンである。ＲＮＡは、０、４、または１６時間、低酸素に曝露した、ラットＣ６グリオーマ細胞から抽出した。各試料からのポリＡ＋選択ｍＲＮＡ（２μｇ）は変性アガロースゲル上で分離し、Ｎｙｔｒａｎ膜にブロットし、ｒｔｐ３５９プローブでハイブリダイズした。４．５Ｋｂの１つのバンドは、良好な差次的発現を示すことが観察される。

Claims (24)

1. 配列番号９および配列番号１０からなる群から選択されたアミノ酸配列を有する、単離されたポリペプチド。
2. 配列番号９のアミノ酸配列を有する、請求項１記載の単離されたポリペプチド。
3. 配列番号１０のアミノ酸配列を有する、請求項１記載の単離されたポリペプチド。
4. 配列番号９および配列番号１０からなる群から選択されたアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードする塩基配列を含む、単離された核酸分子。
5. 配列番号９のアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードする塩基配列を含む、請求項４記載の単離された核酸分子。
6. 配列番号１０のアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードする塩基配列を含む、請求項４記載の単離された核酸分子。
7. 配列番号１または配列番号２の塩基配列を有する、請求項４記載の単離された核酸分子。
8. 配列番号１の塩基配列を有する、請求項７記載の単離された核酸分子。
9. 配列番号２の塩基配列を有する、請求項７記載の単離された核酸分子。
10. 配列番号９および配列番号１０からなる群から選択されたアミノ酸配列を有するポリペプチドに特異的に結合する抗体。
11. 配列番号９のアミノ酸配列を有するポリペプチドに特異的に結合する、請求項１０記載の抗体。
12. 配列番号１０のアミノ酸配列を有するポリペプチドに特異的に結合する、請求項１０記載の抗体。
13. モノクローナル抗体またはポリクローナル抗体である、請求項１０記載の抗体。
14. 検出し得る部分に結合した、請求項１３記載の抗体。
15. 請求項８または請求項９記載の核酸によりコードされたポリペプチド分子。
16. 配列番号１の塩基配列を有する核酸によりコードされた、請求項１５記載のポリペプチド分子。
17. 配列番号２の塩基配列を有する核酸によりコードされた、請求項１５記載のポリペプチド分子。
18. 配列番号１または配列番号２の塩基配列を有する核酸によりコードされた、単離されたポリペプチド分子。
19. 配列番号１の塩基配列を有する核酸によりコードされた、請求項１８記載のポリペプチド分子。
20. 配列番号２の塩基配列を有する核酸によりコードされた、請求項１８記載のポリペプチド分子。
21. 配列番号１０のアミノ酸配列を有する請求項１記載のポリペプチドをコードするｍＲＮＡを標的とする、ＲＮＡ分子であって、
    前記標的とすることが前記ｍＲＮＡのプロセッシング、スプライシング、輸送または翻訳を防止する、上記ＲＮＡ分子。
22. 前記標的とすることがｍＲＮＡ分解となる、請求項２１記載のＲＮＡ分子。
23. 前記ＲＮＡがアンチセンスＲＮＡである、請求項２１記載のＲＮＡ分子。
24. 前記ＲＮＡがリボザイムである、請求項２１記載のＲＮＡ分子。

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