JP5009621B2 - チオール開裂し得るマイトマイシンコンジュゲート - Google Patents

Description

本発明は、マイトマイシンＣの細胞毒性を低下させる方法、そしてマイトマイシンＣを多剤耐性細胞に投与する方法に関する。マイトマイシンＣを、この薬剤を疎水性部分に開裂可能結合で連結させることで構成させたプロドラッグコンジュゲート（ｃｏｎｊｕｇａｔｅ）の形態で提供する。より詳細には、本プロドラッグコンジュゲートを、この薬剤を脂質に開裂可能結合で連結させて前記脂質をリポソーム製剤の中に取り込ませることで構成させる。本プロドラッグコンジュゲートは、マイトマイシンＣを非修飾状態で放出するのに適する穏やかなインビボチオール開裂条件下で開裂できる。

マイトマイシンは数種の多様な癌に処方される確立された化学療法剤であり、そのような癌には乳癌、胃癌、食道癌および膀胱癌が含まれる。この薬剤はＤＮＡを架橋させることで働き、その結果として、癌細胞は増殖することができなくなる。それを患者に静脈内投与した時に毒性が理由で起こる一般的な副作用には、発熱、悪心、嘔吐、骨髄抑制などが含まれる（非特許文献１）。薬剤毒性が化学療法に関連したただ１つの問題ではない。別の問題は薬剤耐性である。ある種の腫瘍、例えば非小細胞肺癌および結腸癌などは一次耐性を示す、即ち現在利用可能な通常の化学療法薬に１回目に接触した時点でも反応を示さない。他の種類の腫瘍は獲得耐性を示し、これはいろいろな種類の薬剤感受性腫瘍に発生する。薬剤耐性癌細胞は２種類の獲得薬剤耐性を示す、即ち単一の薬剤に耐性を示すか或は同じ作用機構を有する単一の種類の抗癌剤に耐性を示す細胞が存在する。２番目の種類は、細胞がいろいろな作用機構を有する化学的に多様な数種または数多くの抗癌剤に幅広い耐性を示すことを伴う。その２番目の種類の獲得耐性は多剤耐性として知られる。

多剤耐性はまたある種の腫瘍細胞にも見られ、例えば腎および結腸腫瘍などに見られ、それらは一次耐性を示す。即ち、獲得多剤耐性とは対照的に、特定種の腫瘍はいろいろな化学治療薬に対して最初の治療にも応答を示さない。

多剤耐性は、しばしば、薬物流出に関与する通常の遺伝子、即ち細胞表面糖蛋白質であるＰ−糖蛋白質のＭＤＲ１遺伝子の発現が増加することを伴う。Ｐ−糖蛋白質の発現は細胞内薬剤蓄積量低下と相互に関係している、即ちＰ−糖蛋白質は、薬剤を当該細胞から移動させることで前記薬剤が前記細胞の中に蓄積しないようにするエネルギー依存ポンプまたは輸送分子として働く。

Ｐ−糖蛋白質は通常主に上皮および内皮表面に発現して吸収および／または分泌にある役割を果たすと思われる。それは疎水性薬剤を細胞から追い出すことでそれらの細胞質内濃度を低下させ、こうして毒性を低下させる活性のある輸送体である。Ｐ−糖蛋白質は、通常の細胞の中では、毒性のある代謝産物または生体異物である化合物を体から排出させる機能を果たす（非特許文献２）。

Ｐ−糖蛋白質を発現する癌には、ＭＤＲ１遺伝子を正常に発現する組織に由来する癌、即ち肝臓癌、結腸癌、腎臓癌、膵臓癌および副腎癌が含まれる。そのような遺伝子の発現は、また、白血病、リンパ腫、乳癌および卵巣癌および他のいろいろな癌で多剤耐性薬剤を用いた化学療法を行っている過程中にも見られる。そのような癌は最初は化学療法に反応するが、その癌が再発した時には、その癌細胞はしばしばＰ−糖蛋白質をより多い量で発現する。Ｐ−糖蛋白質を通常は発現しないが癌発生中にＰ−糖蛋白質発現の増加が起こる組織に由来する癌が存在する。一例は慢性骨髄性白血病であり、これが急性転化すると、以前に成された治療履歴に関係無くＰ−糖蛋白質がより多い量で発現するようになる（非特許文献３）。

ＭＤＲ１がコードしたＰ−糖蛋白質ポンプ（ｐｕｍｐ）は、多種多様な物質を認識して輸送するが、そのような物質には、天然産物である大部分の抗癌剤、例えばドキソルビシン、ダウノルビシン、ビンブラスチン、ビンクリスチン、アクチノマイシンＤ、パクリタキセル、テニポシドおよびエトポシドが含まれる（非特許文献４）。多剤耐性をしばしば伴う薬剤は、より一般的には、植物または菌・カビが源のアルカロイドもしくは抗生物質であり、それらにはビンカアルカロイド、アントラサイクリン、エピポドフィロトキシンおよびダクチノマイシンが含まれる。アルキル化剤、例えばメルファラン、ナイトロジェンマスタードおよびマイトマイシンＣなどへの交差耐性もしばしば観察される（非特許文献５）。癌細胞が多剤耐性を示すと明らかに化学療法の成功が制限されかつ患者の予後が劣ると推測される。

リポソームは多様な治療目的で用いられる封入型脂質小胞であり、これは特にリポソームを全身投与して治療薬を標的領域もしくは細胞に運ぶ目的で用いられる。表面が水溶性で生物適合性の重合体、特にポリエチレングリコールの鎖でグラフトされているリポソームが重要な薬剤担体になってきている。そのようなリポソームが示す血液循環寿命の方が重合体被膜をもたないリポソームのそれよりも長い。その接合させた重合体鎖が当該リポソームを遮蔽または覆うことで、血漿蛋白質による非特異的相互作用を最小限にする。それによって、今度は、当該リポソームがインビボで排出または除去される速度が遅くなる、と言うのは、そのようなリポソームはマクロファージにも他の細網内皮系細胞にも認識されないで循環するからである。その上、そのようなリポソームは向上した浸透性および保持効果も示す（非特許文献６）ことから、損傷を受けたか或は膨張した血管系部位、例えば炎症部位である腫瘍などに蓄積する傾向がある。

全身投与したリポソームが標的領域、細胞または部位に到達し得るように血液循環時間を長くすることがしばしば望まれている。例えば、腫瘍領域に対するリポソーム治療では血液循環時間が約１２時間以上であるのが好適である、と言うのは、そのリポソームは全身に分布した後に腫瘍領域の中に侵入する必要があるからである。

多剤耐性細胞が吸収し得るマイトマイシンＣ製剤を提供することができれば、これは望ましいことである。また、血液循環寿命が長くかつ取り込んでいる薬剤を所望時間保持する能力を有するにも拘らず薬剤を要求に応じて放出し得るリポソーム組成物を調製することができれば、これも望ましいことである。また、遊離形態の薬剤と同様な効力を有するにも拘らず全身毒性が低下したマイトマイシンＣ製剤を提供することができれば、これも望ましいことである。その上、細胞毒性のあるマイトマイシンＣの放出が腫瘍内の内因性条件に反応して起こるようにすることができれば、これも望ましいことである。
ＨＡＲＲＩＳＯＮ’Ｓ ＰＲＩＮＣＩＰＬＥＳ ＯＦ ＩＮＴＥＲＮＡＬ ＭＥＤＩＣＩＮＥ、Ｗｉｌｓｏｎ他編集、第１２版、パート１１、１５９２頁、１９９１ Ｅｎｄｉｃｏｔｔ，Ｊ．およびＬｉｎｇ，Ｖ．、Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．、５８：１３７−１７１、（１９８９） Ｇｏｔｔｅｓｍａｎ，Ｍ．Ｍ．、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ、５３：７４７−７５４（１９９３） Ｇｏｔｔｅｓｍａｎ，Ｍ．他、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｏｐｉｎｉｏｎ ｉｎ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ａｎｄ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ、６：６１０−６１７（１９９６） Ｅｎｄｉｃｏｔｔ，Ｊ．およびＬｉｎｇ，Ｖ．、Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．、５８：１３７−１７１、（１９８９） Ｍａｅｄａ Ｈ．他、Ｊ．Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｒｅｌｅａｓｅ、６５（１−２）：２７１（２０００）

（発明の要約）
従って、本発明の目的は、遊離形態の薬剤に比べて毒性が低くかつ多剤耐性細胞が取り込み得るマイトマイシンＣリポソーム製剤を提供することにある。即ち、マイトマイシンＣはこれを遊離形態で投与すると多剤耐性細胞の中に蓄積されないが、それを本明細書に記述するリポソーム製剤の中に取り込ませたプロドラッグコンジュゲートの形態で投与すると、それは前記細胞の中に蓄積し得る。

本発明は、１つの面において、マイトマイシンＣがインビボで示す細胞毒性を低くする方法を包含し、この方法は、マイトマイシンＣを小胞形成性脂質（ｖｅｓｉｃｌｅ−ｆｏｒｍｉｎｇ ｌｉｐｉｄ）と約１から約３０モルパーセントの範囲の一般形態：

［ここで、Ｌは、リポソーム脂質二重層の中に取り込ませるに適した疎水性部分であり、Ｒ^１は、ジチオベンジル部分と共有結合しているマイトマイシンＣであり、そしてＣＨ_２Ｒ^１基の位置はオルソ位およびパラ位から選択される］
で表されるコンジュゲートで構成させたリポソーム組成物の形態で供給することを含んで成る。

１つの態様では、マイトマイシンＣをウレタン（カルバメート）結合で共有結合させる。

別の態様では、Ｌをコレステロール、ジアシルグリセロールおよび燐脂質から成る群から選択する。

別の態様では、マイトマイシンＣをジチオベンジル部分と共有結合させることで構造：

［ここで、Ｒ^４は、マイトマイシンＣの残基を表す］
で表されるコンジュゲートを生じさせるが、このコンジュゲートでは、マイトマイシンＣのアジリジン部分の中の第二級アミンが前記ジチオベンジルとマイトマイシンＣの間のウレタン結合を形成している。

本発明は、別の面において、マイトマイシンＣを多剤耐性細胞に投与する方法を包含し、この方法は、マイトマイシンＣを小胞形成性脂質と約１から約３０モルパーセントの範囲の一般形態：

［ここで、Ｌは、リポソーム脂質二重層の中に取り込ませるに適した疎水性部分であり、Ｒ^１は、ジチオベンジル部分と共有結合しているマイトマイシンＣであり、そしてＣＨ_２Ｒ^１基の位置はオルソ位およびパラ位から選択される］
で表されるコンジュゲートで構成させたリポソーム組成物の形態で投与することを含んで成る。

以下の本発明の詳細な説明を添付図と協力させて読むことで本発明の前記および他の目的および特徴がより詳細に理解されるであろう。
（発明の詳細な説明）
Ｉ． 定義
語句「リポソーム脂質二重層の中に取り込ませるに適した疎水性部分」は、リポソーム脂質二重層の疎水性二重層領域と一体化し得る疎水性部分を含んで成る材料のいずれかを意味する。そのような疎水性部分は典型的に脂質であり、それには、疎水性脂質尾部と親水性極性頭部を有する両親媒性脂質、例えば燐脂質およびジアシルグリセロールなどが含まれる。また、トリグリセリド、ステロール、燐脂質、ジアシルグリセロール、ステロールおよびトリグリセリドの誘導体、そして天然源に由来するか或は合成的に作られた他の脂質も考えられる。

「治療薬の残基」の場合の如き用語「残基」は、薬剤分子が別の分子と反応して結合を形成していて当該薬剤分子の少なくとも１個の原子が前記結合の形成で追い出されたか或は取り除かれていることを意味する。

「脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣ」の言及は、図６Ａの化合物ＸＶＩＩＩを指す。

本明細書で用いる如き「ポリペプチド」はアミノ酸の重合体を指すものであり、アミノ酸の重合体の特定の長さを指すものでない。従って、例えば用語「ペプチド、オリゴペプチド、蛋白質および酵素」はポリペプチドの定義の範囲内に含まれる。この用語はまたポリペプチドの発現後修飾、例えばグリコシル化、アセチル化、燐酸化なども包含する。

本明細書では下記の省略形を用いる：ＰＥＧ：ポリ（エチレングリコール）、ｍＰＥＧ：メトキシ−ＰＥＧ、ＤＴＢ：ジチオベンジル、ＤＳＰＥ：ジステアロイルホスファチジルエタノールアミン、ＨＳＰＣ：水添大豆ホスファチジルコリン、ＭＭＣ：マイトマイシンＣ。
ＩＩ．コンジュゲート組成物および製造方法
本発明は、１つの面において、形態：

［ここで、Ｌは、リポソーム脂質二重層の中に取り込ませるに適した疎水性部分であり、Ｒ^１は、ジチオベンジル部分と共有結合している治療薬残基を表し、そしてＣＨ_２Ｒ^１基の位置はオルソ位およびパラ位から選択される］
で表されるコンジュゲートを包含する。前記疎水性部分Ｌは典型的に脂質、例えばジアシルグリセロール、ステロール、燐脂質、このような脂質の誘導体、天然に存在する他の脂質およびそれらの合成類似物などである。

本コンジュゲートでは治療薬とジチオベンジル部分が共有結合で結合しており、それによって、薬剤の残基がもたらされ、それを前記構造物の中のＲ^１で表す。そのような結合は、本分野の技術者が理解するであろうように、当該薬剤および反応化学に応じて多様である。好適な態様では、当該治療薬をウレタン、アミン、アミド、カーボネート、チオカーボネート、エーテルおよびエステルから成る群から選択した結合で前記ジチオベンジル部分と共有結合させる。

ウレタン結合はＯ（Ｃ＝Ｏ）ＮＨ−Ｒ^４またはＯ（Ｃ＝Ｏ）Ｎ＝Ｒ^４［ここで、Ｒ^４は治療薬の残基を表す］の形態を取る。例えば、第一級もしくは第二級アミンを含有する薬剤、例えば少しではあるが挙げるとマイトマイシンＣ、マイトマイシンＡ、ブレオマイシンおよび治療用ポリペプチドなどは当該薬剤の中のアミン部分が反応してウレタン結合を形成する。

カーボネート結合はＯ（Ｃ＝Ｏ）Ｏ−Ｒ^４［ここで、Ｒ^４は薬剤の残基を表す］の形態を取り、そのようなカーボネート結合は当該薬剤の中のフェノールもしくはアルコールもしくはヒドロキシル部分に由来する。チオ−カーボネートはＯ（Ｃ＝Ｏ）Ｓ−Ｒ^４［ここで、Ｒ^４は薬剤の残基を表す］の形態を取り、そのような結合は当該薬剤のある部分に由来する。ジチオベンジルアルコールと反応してカーボネート結合を形成するそのような部分を有する典型的な薬剤には、フルオロデオキシウリジン、ヨードデオキシウリジン、エトポシド、ＡＺＴ、アシクロビル、ビダラビン、アラビノシルシトシン、ペントスタチン、キニジン、ミトキサントロンおよびアトロピンが含まれる。

エステル結合はＯ（Ｃ＝Ｏ）−Ｒ^４［ここで、Ｒ^４は薬剤の残基を表す］の形態を取る。そのような結合は当該治療薬の中のカルボン酸部分との反応に由来し、クロラムブシルとジチオベンジルの間のエステル結合を有するコンジュゲートの例を以下に記述する。メトトレキセートが本コンジュゲートのジチオベンジル部分と一緒にエステル結合を形成し得る薬剤の別の例である。

当該薬剤とジチオベンジル部分を結合させているウレタン、カーボネートもしくはエステル結合を有するコンジュゲートは一般に下記の構造で描写可能である：

ここで、Ｒ^４は当該治療薬の残基を表す。

別の態様における本コンジュゲートはエーテル結合を含有し、これはＯ−Ｒ^４の形態を取り、ここで、Ｒ^４は当該治療薬の残基を表す。そのような結合は典型的に当該薬剤が有するアルコール官能との反応に由来する。

アミン結合は形態Ｎ＝Ｒ^４で表され、ここで、Ｒ^４は当該薬剤の残基を表しそして前記結合はジチオベンジルのＣＨ_２部分と当該薬剤が有するＮとの直接結合である。薬剤である５−フルオロウラシルとのコンジュゲートが米国特許第６，３４２，２４４号に挙げられている一例であり、その場合にはアミン結合が生じる。また、ペプチドを治療薬として用いた時にもアミド結合が生じる可能性があり、この場合には、アミノ酸、例えばアスパラギン酸またはグルタミン酸などの残基が有する遊離カルボン酸とジチオベンジルアミンを縮合させる。

アミド結合はＮＨ（Ｃ＝Ｏ）−Ｒ^４［ここで、Ｒ^４は当該治療薬の残基を表す］の形態を取る。

図１に、本発明に従う典型的なコンジュゲートを生じさせるに適した合成反応スキームを示す。この態様では、中間体化合物であるパラ−ジアシルジグリセロールジチオベンズアルコール（化合物ＩＶ）を合成して、それを選択した治療薬と更に反応させる。化合物ＩＶの調製では、実施例１に記述するように、３−メルカプト−１，２−プロパンジオール（化合物Ｉ）を過酸化水素と反応させることでｒａｃ−３，３’−ジチオビス（１，２−プロパンジオール）（化合物ＩＩ）を生じさせる。ｒａｃ−３，３’−ジチオビス（１，２−プロパンジオール）に疎水性部分Ｒによるアシル化を受けさせる。Ｒは例えば炭素原子数が約８から約２４の脂肪酸であってもよい。実施例１に、Ｒがステアリン酸である反応手順を詳述する。別の態様におけるＲは、炭素原子数が約１２から約２２の脂肪酸である。化合物ＩＩにアシル化を受けさせてｒａｃ−３，３’−ジチオビス（１，２−プロパンジステアロイル）（化合物ＩＩＩ）を生じさせ、それを塩化スルフリルおよび４−メルカプトベンズアルコールと反応させることで所望の中間体生成物であるパラ−ジアシルジグリセロール−ジチオベンズアルコール（化合物ＩＶ）を生じさせる。化合物ＩＶは反応性カルボキシル部分（Ｒ’ＣＯ_２Ｈ）を含有する薬剤と容易に反応して、脂質−ジチオベンジル（ＤＴＢ）−薬剤コンジュゲートをもたらすが、このコンジュゲートでは、前記薬剤がエステル結合によってＤＴＢと接合している（化合物Ｖ）。化合物ＩＶはまた反応性アミン部分（Ｒ’−ＮＨ_２）を含有する薬剤とも容易に反応し、それによって、脂質−ＤＴＢ−薬剤コンジュゲートが生じるが、このコンジュゲートでは、前記薬剤がウレタン結合によってＤＴＢと接合している（化合物ＶＩ）。化合物ＩＶはまた反応性ヒドロキシル部分（Ｒ’ＯＨ）を含有する薬剤とも容易に反応し、それによって、脂質−ＤＴＢ−薬剤コンジュゲートが生じるが、このコンジュゲートでは、前記薬剤がカーボネート結合でＤＴＢと接合している（化合物ＶＩＩ）。

本発明のコンジュゲートで用いるに適した薬剤はいろいろ考えられる。特に、本発明は、反応に適したアミン（ＮＨまたはＮＨ_２）、カルボキシル、スルフヒドリルまたはヒドロキシル部分を有する薬剤を意図する。「反応に適した」を本明細書で用いる場合、これは、当該薬剤がジチオベンジル部分、例えばジチオベンジルアルコールなどの形態の部分と反応し得る前記詳述した部分の１つを有することを意味する。典型的な薬剤には、反応に適したＮＨ基を有する５−フルオロウラシル、反応性カルボキシルを有するクロラムブシル、および反応性アミン（アジリジン基）を有するマイトマイシンＣが含まれる。５−フルオロウラシルおよびクロラムブシルを用いたコンジュゲートの合成が米国特許第６，３６５，１７９号に挙げられており、マイトマイシンＣを用いたコンジュゲートの合成を図２−６に関係させて考察する。使用を意図する他の典型的な薬剤には、マイトマイシンＣ、マイトマイシンＡ、ブレオマイシン、ドキソルビシン、ダウノルビシン、フルオロデオキシウリジン、ヨードデオキシウリジン、エトポシド、ＡＺＴ、アシクロビル、ビダラビン、アラビノシルシトシン、ペントスタチン、キニジン、アトロピン、クロラムブシル、メトトレキセート、ミトキサントロンおよび５−フルオロウラシルが含まれる。また、ポリペプチド、アミノグリコシド、アルカロイドは全部本発明で用いるに適することも理解されるであろう。

実施例１に、また、本コンジュゲートを生じさせる時の中間体化合物として使用可能なオルソジアシルジグリセロールジチオベンズアルコールの製造に適した反応条件も詳細に示す。

図２Ａ−２Ｂに、脂質−ＤＴＢ−薬剤コンジュゲートの製造（図２Ａ）そして前記コンジュゲートが還元剤の存在下でチオール開裂を起こすことを示す（図２Ｂ）。図２Ａに示すように、疎水性部分Ｒが脂肪酸Ｒ”（ＣＯ）ＯＨ、例えばステアリン酸（ＣＨ_３（ＣＨ_２）_１６ＣＯ_２Ｈ）などに由来する図１の化合物ＶＩＩとアミン含有薬剤、即ちＨ_２Ｎ−薬剤をホスゲン（ＣＯＣｌ_２）の存在下で反応させる。この反応によって、図２Ａに示す脂質−ＤＴＢ−薬剤コンジュゲートがもたらされる。このコンジュゲートは還元条件にさらされる、即ち還元剤、例えばシステインまたはグルタチオンなどと接触すると分解を起こし、それによって、図２Ｂに示す生成物が生じる。示すように、本コンジュゲートがチオール開裂を起こすと結果として当該薬剤が非修飾の天然状態で再生して来る。これは望ましい特徴である、と言うのは、以下に示すように、前記薬剤はコンジュゲートの状態でリポソーム（これをインビボで被験体に投与する）の中に容易に取り込まれ得るからである。その上、前記薬剤は前記コンジュゲートの形態の時には毒性がない（このこともまた以下に示す）。前記コンジュゲートは投与されそして内因性還元剤と接触するか或は外来の還元剤と接触した後に分解を起こし、それによって、生物学的活性を有する未変性状態の薬剤が生じる。

図３Ａに、マイトマイシンＣプロドラッグコンジュゲートの合成を示す。この示す反応スキームでは、反応性アミン部分を含有する薬剤であるマイトマイシンＣ（化合物ＸＶＩＩ、図３Ｂ）とパラ−ジアシル−ジグリセロール−ジチオベンザルアルコール（化合物ＩＶ）をホスゲンの存在下で反応させることでジアシルジグリセロール−ジチオベンジル−マイトマイシンＣコンジュゲート（化合物ＸＶＩＩＩ）を生じさせる。この合成の詳細を実施例２に示す。

図３Ｂに、ジアシルジグリセロール−ＤＴＢ−マイトマイシンＣコンジュゲートのチオール分解を示す。前記コンジュゲートは還元剤が存在すると分解を起こし、それによって、マイトマイシンＣ（化合物ＸＶＩＩ）と示す他の生成物の再生がもたらされる。

この上に述べたように、本コンジュゲートに含める疎水性部分は無数の疎水性部分、例えば脂質などから選択可能である。１つの態様では、ジアシルジグリセロール脂質を用いて構造：

［ここで、Ｒ^２およびＲ^３は、炭素原子数が約８から約２４の範囲の炭化水素である］
で表されるコンジュゲートを生じさせることができる。

そのような疎水性部分としては、ジアシルグリセロールに加えて、他の脂質も考えられる。図４に、コレステロールを本コンジュゲートに含める疎水性部分として用いる別の態様を示す。コレステロール（化合物ＸＩＶ）とメタンスルホニルクロライドをトリエチルアミン（ＴＥＡ）存在下のジクロロメタン中で反応させる。次に、その結果として生じた中間体をチオール誘導体に変化させ、そして最終的に重要なジチオベンジルアルコールに変化させ、これを用いてマイトマイシンＣをこの上にジアシルグリセロールに関して記述した様式と同様な様式で連結させる。

コレステロール−ＤＴＢ−マイトマイシンＣコンジュゲートを生じさせるに適した代替反応スキームを図５に示す。メトキシカルボニルジチオエチルアミンはコレステロールクロロホルメートと直接反応してウレタン結合を形成する。次に、メルカプトベンジルアルコールを用いてＤＴＢ−コレステロール複合体を得る。マイトマイシンＣをこの上および実施例２に記述するようにして連結させる。

本発明の裏付けで実施した研究（以下に記述）では、図３Ａに記述したようにして生じさせたコンジュゲート（化合物ＸＶＩＩ）、即ちパラ−ジステアロリル−ＤＴＢ−マイトマイシンＣを用いた。参照を容易にする目的で、そのようなコンジュゲートを図６Ａに示す。他のジアシル脂質、例えばジパルミトイル脂質などを用いることも可能であると理解されるべきであり、図６Ｂにパラ−ジパルミトイル−ＤＴＢ−マイトマイシンＣコンジュゲートを示す。また、そのようなコンジュゲートはまた異性結合も持つ可能性があることは理解されるであろう。これは図６Ｃに示す如きオルソジパルミトイル−ＤＴＢ−マイトマイシンＣコンジュゲートで明らかである。
ＩＩＩ． コンジュゲート含有リポソームの調製
本発明の方法では、小胞形成性脂質とマイトマイシンＣプロドラッグコンジュゲートで構成させたリポソーム組成物の形態でマイトマイシンＣプロドラッグコンジュゲートを提供する。リポソームは多様な治療目的で用いられる密封型脂質小胞であり、特に、リポソームを全身投与することによって治療薬を標的領域または細胞に運ばせる。特に、親水性重合体鎖、例えばポリエチレングリコール（ＰＥＧ）などの表面被膜を有するリポソームが薬剤担体として望ましい、と言うのは、そのようなリポソームが示す血液循環寿命の方が重合体被膜を持たないリポソームが示すそれよりも長いからである。そのような重合体は血中蛋白質に対するバリヤーとして働くことで前記蛋白質と当該リポソームの結合を防止しかつ当該リポソームがマクロファージおよび他の細網内皮系細胞によって認識されて吸収および除去されるのを妨害するからである。

本発明に従うリポソームはコンジュゲートを脂質（１つの態様における脂質は小胞形成性脂質である）および場合により他の二重層構成要素と一緒に含有する。「小胞形成性小胞」は、水中で二重層小胞を自然発生的に形成する脂質である。そのような小胞形成性脂質は、好適には、炭化水素鎖、典型的にはアシル鎖を２本有しかつ極性のある頭部基を有する。合成の小胞形成性脂質および天然に存在する小胞形成脂質が本技術分野でいろいろ知られており、それらの２本の炭化水素鎖は長さが典型的に炭素原子約１２から約２４個分でありそしてそれらの不飽和度はいろいろである。その例には、燐脂質、例えばホスファチジルコリン（ＰＣ）、ホスファチジルエタノールアミン（ＰＥ）、ホスファチジン酸（ＰＡ）、ホスファチジルイノシトール（ＰＩ）およびスフィンゴミエリン（ＳＭ）が含まれる。本発明で用いるに好適な脂質は水添大豆ホスファチジルコリン（ＨＳＰＣ）である。別の好適な系列の脂質はジアシルグリセロールである。そのような脂質は商業的に入手可能であるか或は公開された方法に従って調製可能である。

そのような小胞形成性脂質の選択では、それがある度合の流動性または剛性を達成し、当該リポソームが血清中で示す安定性を制御しかつ当該リポソームの中に取り込ませておいた薬剤が放出される速度を制御するように選択してもよい。相対的に堅い脂質、例えば相転移温度が比較的高い、例えば約８０℃に及ぶ脂質を組み込むことで、脂質二重層がより硬質であるか或は二重層が液晶性であるリポソームを生じさせることができる。硬質の脂質、即ち飽和脂質は脂質二重層の膜をより堅くするに役立つ。また、脂質二重層構造物の膜の堅さに貢献する他の脂質成分、例えばコレステロールなども知られている。

脂質流動性は、相対的に流動する脂質、典型的には液体から液晶相への転移温度が比較的低い、例えば室温（約２０−２５℃）以下である脂質相を有する脂質を組み込むことで達成される。

そのようなリポソームにまた脂質二重層の中に取り込まれ得る他の成分、例えばステロールなどを含有させることも可能である。そのような他の成分は典型的に二重層膜の疎水性内部領域と接触する疎水性部分と膜の外部の極性表面に向かって配向する極性のある頭部基部分を有する。

本発明のリポソームに含める別の脂質成分は、親水性重合体による誘導体化を受けさせた小胞形成性脂質である。このような脂質成分では、脂質に誘導体化を受けさせると、結果として、親水性重合体鎖の表面被膜が脂質二重層の内側および外側両方の表面に形成されるようになる。脂質組成物に含有させるそのような誘導体化を受けさせた脂質のパーセントを典型的には約１−２０モルパーセントの範囲にする。

小胞形成性脂質による誘導体化に適した親水性重合体には、ポリビニルピロリドン、ポリビニルメチルエーテル、ポリメチルオキサゾリン、ポリエチルオキサゾリン、ポリヒドロキシプロピルオキサゾリン、ポリヒドロキシプロピルメタアクリルアミド、ポリメタアクリルアミド、ポリジメチルアクリルアミド、ポリヒドロキシプロピルメタアクリレート、ポリヒドロキシエチルアクリレート、ヒドロキシメチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、ポリエチレングリコールおよびポリアスパルタミドが含まれる。そのような重合体はホモ重合体またはブロックもしくはランダム共重合体として使用可能である。

好適な親水性重合体鎖はポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、好適には分子量が約５００から約１０，０００ダルトンの範囲、好適には約１，０００から約５，０００ダルトンの範囲のＰＥＧ鎖である。メトキシもしくはエトキシでキャップされた（ｃａｐｐｅｄ）ＰＥＧ類似物もまた好適な親水性重合体である。そのような重合体はいろいろな重合体の大きさ、例えば約１２から約２２０，０００ダルトンの大きさで商業的に入手可能である。

本発明のリポソームに含有させる脂質−ＤＴＢ−薬剤コンジュゲートの量は典型的に約１から約３０モルパーセント、好適には約５から約３０モルパーセント、より好適には約５から約２０モルパーセントである。本発明の裏付けで実施した研究では、実施例４Ａ−４Ｂに記述するように、小胞形成性脂質である水添大豆ホスファチジルコリン（ＨＳＰＣ）とメトキシ−ポリエチレングリコールによる誘導体化を受けさせたジステアロイルホスファチジルエタノールアミン（ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ）と図６Ａに示したコンジュゲート、即ちパラ−ジステアロイル−ＤＴＢ−マイトマイシンＣ（化合物ＸＶＩＩＩ）で構成させたリポソームを調製した。そのようなリポソーム製剤の１つにコレステロールを含め（実施例４Ａ）、脂質ＨＳＣＰ／コレステロール／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／パラ−ジステアロイル−ＤＴＢ−マイトマイシンＣ（化合物ＸＶＩＩＩ）を６０／３０／５／５のモル比で存在させた。コレステロールを含有しない２番目の製剤を調製して特徴付けた（実施例４Ｂ）。このような製剤では脂質ＨＳＣＰ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／パラ−ジステアロイル−ＤＴＢ−マイトマイシンＣ（化合物ＸＶＩＩ）を９０／５／５のモル比で存在させた。
ＩＶ． コンジュゲート含有リポソームのインビトロ特徴付け
Ａ． インビトロ薬剤放出
実施例４Ａ−４Ｂに記述するようにしてリポソームを調製して、それらを還元剤と接触させた後にマイトマイシンＣが放出される速度をインビトロで測定することで、それらの特徴付けを行った。インビトロ研究では、試験媒体にシステインを典型的には約１５０μＭの濃度で添加することで還元条件を誘発した。インビボの内因性還元条件は脂質−ＤＴＢ−薬剤コンジュゲートがチオール開裂分解を起こして当該薬剤が放出されるに充分であり得ることは理解されるであろう。更に、適切な還元剤、例えばシステインまたはグルタチオンなどを投与することでインビボの還元条件を人工的に誘発することも可能であると考えている。

リポソーム製剤、例えばＨＳＰＣ／コレステロール／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／コンジュゲート化合物ＸＶＩＩＩ（本明細書では以降「コレステロール含有製剤」）およびＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／コンジュゲート化合物ＸＶＩＩＩ（本明細書では以降「コレステロール無しリポソーム製剤」）を１５０μＭのシステインの存在下３７℃で２４時間インキュベートした。選択した時間点でサンプルを取り出して高性能液クロ（ＨＰＬＣ）で分析することで、コンジュゲートの量および遊離マイトマイシンＣの量を量化した。そのＨＰＬＣ条件を実施例５に記述する。

図７Ａ−７Ｂに、２種類のリポソーム製剤が示したＨＰＬＣクロマトグラムを示す。図７Ａにコレステロール無しリポソーム製剤が示した結果を示す。ゼロ時点の時には遊離マイトマイシンＣは検出されず、測定可能な薬剤は全部リポソームに拘束されている脂質−ＤＴＢ−薬剤コンジュゲートの形態である。インキュベーション時間が長くなるにつれてリポソームから放出されて遊離形態で検出されるマイトマイシンＣの量が多くなるに伴ってコンジュゲートに拘束された状態で存在しているマイトマイシンＣの量が相当して少なくなった。

図７Ｂに、コレステロール含有リポソーム製剤が示した結果を示す。ゼロ時点の時に採取した１番目のサンプルには遊離マイトマイシンＣは全く検出されなかった。システインを１５０μＭ存在させてインキュベーションを１時間行うと遊離薬剤が少量ではあるが検出され、このことは、リポソームに拘束されている脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンコンジュゲートが分解を起こしたことを示している。図７Ａとの比較において、コレステロール含有リポソームがもたらしたコンジュゲート分解速度の方が遅く、従って薬剤放出速度が遅い。

図８は、前記２種類のリポソーム製剤から放出されたマイトマイシンＣのパーセントを示す図である（図７Ａ−７Ｂに示したクロマトグラムから測定）。コレステロール無しリポソーム（黒菱形）が示した放出速度の方がコレステロール含有リポソームのそれ（黒丸）よりも高かった。コレステロール無し製剤の場合にはリポソーム拘束コンジュゲートからマイトマイシンＣの５０％以上が２時間で放出された。両方の製剤とも２４時間のインキュベーション期間が終了した時点で薬剤の８０％以上が放出された。

別の研究では、システインを１．５ｍＭ存在させて前記２種類のリポソーム製剤をインキュベートした。分析を実施例５に記述した如く実施して、結果を図９Ａ−９Ｂに示す。図９Ａに、コレステロール無しリポソームの中に取り込ませた脂質−ＤＴＢ−薬剤コンジュゲート（ＨＳＰＣ／ＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣ）から放出されたマイトマイシンＣのパーセントを示す。比較の目的で、また、１５０μＭ用いたインキュベーション中に放出された放出パーセント（黒菱形）も示す。分かるであろうように、還元剤をより高い濃度（１．５ｍＭ、白菱形）で用いてインキュベートするとコンジュゲート分解速度および薬剤放出速度が速くなる。

図９Ｂに、コレステロール含有リポソーム製剤が示した結果を示す。リポソームを１．５ｍＭのシステイン存在下でインキュベートした時にそれが示した分解速度（白丸）の方が同じリポソームを１５０μＭのシステインを存在させてインキュベートした時の分解速度（黒丸）よりも有意に速い。
Ｂ． インビトロ細胞毒性
脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣコンジュゲート（化合物ＸＶＩＩＩ）を含有させたリポソームがインビトロで示す細胞毒性の評価をＭ−１０９細胞、即ちマウス肺癌株を用いて実施した。実施例６に記述するように、Ｍ１０９細胞を遊離マイトマイシンＣの存在下またはジステアロイル−ＤＴＢ−マイトマイシンＣコンジュゲート含有リポソームの存在下でインキュベートした。実施例６Ａに示すモル比を用いて実施例４Ａ−４Ｂに記述するようにして調製したリポソームに試験を受けさせた。そのようなコンジュゲートのチオール開裂分解およびマイトマイシンＣの放出を起こさせる目的で試験細胞のいくつかにシステインを１５０μＭ、５００μＭおよび１０００μＭの濃度で添加した。

実施例６に記述するように、対照増殖速度の５０％抑制（ＩＣ_５０）をもたらす薬剤濃度としてＩＣ５０値を採用した。その結果を表１に示す。

細胞毒性研究で測定したＭ１０９マウス癌細胞増殖速度パーセントを図１０に示す。この増殖速度パーセントをＭ１０９細胞がマイトマイシンＣもシステインも存在しない時に増殖する速度を基にしたパーセントとして表し、これをマイトマイシンＣ濃度（ｎＭ）の関数として示す。細胞増殖速度を実施例６に記述するようにして測定した。分かるであろうように、細胞増殖速度パーセントはコレステロール含有リポソーム（白丸）およびコレステロール無しリポソーム製剤（黒四角）の両方ともシステイン濃度を高くするにつれて低下する。また、システインは遊離マイトマイシンＣの活性には全く影響を与えずかつマイトマイシンＣは前記コンジュゲートから放出されて細胞増殖を有効に抑制することも分かるであろう。

Ｍ１０９マウス癌細胞を遊離形態のマイトマイシンＣで処置した時またはリポソーム拘束脂質−ＤＴＢ−薬剤コンジュゲートの形態のマイトマイシンＣで処置した時のインビトロ増殖速度を図１１Ａ−１１Ｂに示す。図１１Ａに、コレステロールを含有させていないリポソーム製剤が示した結果を示す。この図では、Ｍ１０９細胞が示した増殖速度をＭ１０９細胞が薬剤もシステインも存在しない時に示した増殖を基にしたパーセントとして表し、これをマイトマイシンＣ濃度（ｎＭ）の関数として示す。前記細胞を遊離形態のマイトマイシンＣで処置した時（白三角）および遊離形態のマイトマイシンＣに加えて１０００μＭのシステインで処置した時（黒三角）に増殖速度が低下することが示されたが、これは前記薬剤が遊離形態の時に毒性があることによる。細胞をＨＳＰＣ／ＰＥＧ−ＤＳＰＥ／ＤＳＰＥ−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソーム製剤で処置した時（白丸）および前記リポソーム製剤に加えてシステインを１５０μＭの濃度で添加（白菱形）、５００μＭの濃度で添加（黒丸）および１０００μＭの濃度で添加（白四角）した時に示された細胞毒性はシステイン用量依存様式であった。

図１１Ｂは、コレステロール含有リポソーム製剤に関する同様な図である。細胞をコレステロール含有リポソーム組成物に加えてシステインを１５０μＭの濃度（白菱形）、５００μＭの濃度（黒丸）および１０００μＭの濃度（白四角）で用いて処置した時に観察したパターンも同じであった。即ち、システイン濃度を高くするにつれて細胞増殖速度が遅くなった。このことは、システインで誘発されるマイトマイシンＣ放出とシステイン濃度が直接相互関係を有することを示している。そのようなリポソーム製剤とは対照的に、遊離形態のマイトマイシンＣで処置した細胞がインビトロで示した増殖速度（白三角）は、遊離形態のマイトマイシンＣに加えて１０００μＭのシステインを用いて処置した細胞が示した増殖速度（黒三角）と同じであった。

図１２に、遊離マイトマイシンＣおよびリポソーム製剤が示した細胞毒性上昇パーセントをシステイン濃度（μＭ）の関数として示す。ＩＣ５０降下パーセント、例えばシステインを存在させない時のＩＣ５０を基準にしたシステインを存在させた時のＩＣ５０に１００を掛けた値［（ＩＣ５０_{ｎｏ ｃｙｓｔｅｉｎｅ}／ＩＣ５０_{ｃｙｓｔｅｉｎｅ}）ｘ１００］で細胞毒性上昇率を決定した。分かるであろうように、コレステロール含有リポソーム（白三角）およびコレステロール無しリポソーム製剤（黒丸）の両方ともシステイン濃度を高くするにつれて細胞毒性上昇パーセントが有意に高くなる。遊離マイトマイシンＣが示す細胞毒性（黒四角）はシステインの存在による影響を受けない。

そのような細胞毒性データは、コレステロール無しリポソーム製剤の方がシステインによる影響を大きく受けることを示している。コレステロール無しリポソーム製剤が特定のシステイン濃度の時に示したＩＣ５０が遊離薬剤単独が示したそれより低い度合は２倍のみである。コレステロール含有リポソーム製剤が示す細胞毒性の方がコレステロール無しリポソーム製剤が示すそれよりも低い。このようなデータは、また、システインは腫瘍細胞の細胞毒性に影響を与えずかつ遊離マイトマイシンＣが示す細胞毒性にも影響を与えないことも示している。また、システインはリポソーム拘束マイトマイシンＣが示す細胞毒性を用量依存様式で高めることも前記データから明らかである。このように、リポソーム製剤に関して観察した細胞毒性効果は大部分がマイトマイシンＣが脂質−ＤＴＢ−薬剤コンジュゲートからシステインの媒介で放出されることで説明される。
Ｃ． インビボ薬物速度
ラットを用いてコレステロール含有リポソームおよびコレステロール無しリポソーム製剤がインビボで示す薬物速度を測定した。実施例７に記述するようにして、動物にマイトマイシンＣを遊離形態でか或は本発明に従う脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣコンジュゲート形態でリポソームの中に取り込ませた形態で約０．１ｍｇ／ｍＬの量で１回ボーラス静脈注入することで前記動物を処置した。注入後に血液サンプルを採取してマイトマイシンＣの量を分析した。その結果を図１３Ａ−１３Ｂに示す。

図１３Ａに、ラット血液中のマイトマイシンＣ濃度（μｇ／ｍＬ）を静脈内注入後の時間（時）の関数として示す。分かるであろうように、遊離形態で静脈内投与した遊離マイトマイシンＣ（白四角）は血液から迅速に排出される。リポソーム拘束脂質−ＤＴＢ−薬物コンジュゲート形態のマイトマイシンＣは実質的により長い時間に渡って循環状態のままである。コレステロール含有リポソームに拘束されているマイトマイシンＣ（黒菱形）およびコレステロール無しリポソームに拘束されているマイトマイシンＣ（黒丸）は２０−２５時間に渡って血液中に１０μｇ／ｍＬを超える量で検出された。

図１３Ｂに、試験製剤を静脈内注入した後に血液の中に存在したままである注入用量に対するパーセントを時間（時）の関数として示す。約５分間を超える時間点まで血液の中に存在したままである遊離マイトマイシンＣの量（白四角）は実質的にゼロである。しかしながら、前記リポソーム製剤の場合には、それを注入してから２０時間経ってもマイトマイシンＣの量の約１５−１８パーセントは循環状態のままである。このことは、マイトマイシンＣ−ＤＴＢ−脂質コンジュゲートは循環中にリポソームの中に安定な状態で存在したままであることと血漿中で起こるチオール開裂は最小限であることを示している。従って、本システムは長期循環型リポソーム［Ｓｔｅａｌｔｈ（商標）リポソーム］（これは長期の血液循環寿命を有しかつ腫瘍の中に蓄積される度合が高い）に適合し得ると思われる。

マイトマイシンＣを薬剤−ＤＴＢ−脂質プロドラッグコンジュゲートの形態でリポソームの中に取り込ませた時にこの薬剤が示す毒性が低下することを図１４に示す。このようなリポソームをＨＳＰＣとｍＰＥＧ−ＤＳＰＥとパラ−ジステアロイル−ＤＴＢ−マイトマイシンＣを９０／５／５のモル比で用いて構成させた（この上に記述したコレステロール無し製剤）。リポソームをメスのＢａｌｂ／ｃマウスに１０ｍｇ／ｋｇの用量で１回の用量が１０ｍｇの薬剤／ｋｇになるように３回注入した。対照動物には遊離マイトマイシンＣを１０ｍｇ／ｋｇの用量で投与した。図１４に示すように、試験物質を投与してから３、７および１１日後に動物の体重を測定した。動物を遊離形態のマイトマイシンＣで処置すると体重が大きく失われ、試験日１１日を超えて生存することは無かった。動物にマイトマイシンＣをリポソームの中に取り込ませたプロドラッグコンジュゲートの形態で投与した時の体重損失は最小限であり、試験日１９日目の時にあらゆる動物が生存していた。

他の研究において、実施例４に記述した如く調製したリポソームを下記の２種類のマウス癌モデルで試験した：腫瘍の大きさを終点として用いたＭ１０９足蹠接種モデルおよび生存率を終点として用いたＣ２６腹腔内腫瘍モデル。試験マウスに腫瘍細胞を接種（実施例８）した後、それらを遊離マイトマイシンＣまたはリポソームの中に取り込ませたプロドラッグコンジュゲート形態のマイトマイシンＣで処置した。

図１５Ａに示す研究では、腫瘍（Ｍ１０９腫瘍細胞）接種後７日目のマウスに試験化合物を静脈内に２ｍｇ／ｋｇの用量で注入することで処置した。２番目の静脈内投与を腫瘍接種後１３日目に与えた。足蹠の大きさを規則的間隔で測定した。図１５Ａに、未処置対照マウスの場合の結果（白四角）および遊離マイトマイシンＣで処置した動物の場合の結果（白三角）またはリポソーム製剤（ＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣ；黒丸）で処理した動物の場合の結果を示す。未処置対照動物の腫瘍の大きさは試験期間全体に渡って絶えず大きくなった。マイトマイシンＣで処置した動物が示した腫瘍増殖の方が遅いことに加えて、リポソームの中に取り込ませたプロドラッグコンジュゲート形態のマイトマイシンＣで処置した動物の足蹠の大きさの方が小さいことで明らかなように、リポソーム製剤を用いた時に得られた効力の方が遊離形態のマイトマイシンＣを用いた時のそれよりも高かった。

図１５Ｂに、マイトマイシンＣの用量を２ｍｇ／ｋｇおよび４ｍｇ／ｋｇにする以外は同様な研究で得た結果を示す。足蹠の大きさの中央値（ｍｍ）をＭ１０９腫瘍細胞をマウスの足に接種した後の日数の関数として測定した。未処置のマウス［対照マウス；（白四角）］が示した足蹠厚み中央値は絶えず大きくなった。遊離マイトマイシンＣ（白三角）を２ｍｇ／ｋｇ（破線）または４ｍｇ／ｋｇ（実線）の量で用いて処置したマウスが７、１４および２１日目に示した腫瘍増殖プロファイルもＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソーム（黒丸）を２ｍｇ／ｋｇ（破線）または４ｍｇ／ｋｇ（実線）の量で用いて処置したマウスが７、１４および２１日目に示した腫瘍増殖プロファイルも用量が相当する用量の時には同様であった。しかしながら、遊離形態のマイトマイシンＣで処置した動物が示した生存率の方が低く、遊離マイトマイシンＣを４ｍｇ／ｋｇの用量で投与した動物が示した中毒死亡率は８０％であった。このように、マイトマイシンＣをリポソームの中に取り込ませたプロドラッグコンジュゲートの形態で投与した時にもたらされる効力は遊離薬剤の場合のそれと同様ではあるが、毒性が低い。別の研究において、システインをリポソーム製剤に外来物として一緒に投与した時の効果を評価した。マウスにＭ１０９腫瘍細胞を接種しそして未処置のままにするか或は接種してから５日後に遊離薬剤形態またはリポソームプロドラッグコンジュゲート形態のマイトマイシンＣを６ｍｇ／ｋｇの量で用いて処置した。リポソームプロドラッグを６ｍｇ／ｋｇの量で用いた処置を１２日目および１９日目に繰り返した。遊離ＭＭＣを用いた処置ではマウスが６ｍｇ／ｋｇの注入に２回以上耐えることができなかったことから、繰り返し処置は行なわなかった。本リポソーム−プロドラッグで処置した試験マウスの一群にはまたシステインもマウス１匹当たり５ｍｇの量で与えた。その結果を図１６Ａ−１６Ｂに示す。図１６Ａに足蹠大きさの中央値（ｍｍ）をＭ１０９腫瘍細胞をマウスの足に接種した後の日数の関数として示す。未処置の対照マウス（白四角）では足蹠の厚みが絶えず厚くなった。ＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソームを６ｍｇ／ｋｇの量で用いて処置したマウスが５、１２および１９日目に示した腫瘍増殖速度（黒丸、黒菱形）の方が、遊離マイトマイシンＣで処置したマウスが示した腫瘍増殖速度（白三角）よりも遅かった。システインを６−８、１４−１６および２１−２３日目に皮下投与した。本リポソーム製剤で処置しておいたマウスにシステインを投与すると（黒菱形）効力がより高くなり、そのような試験動物が示した足蹠厚み増加の速度が最も遅かったが、その差は統計学的には有意ではなかった。

図１６Ｂに、図１６Ａに挙げたようにして処置したマウスに関して、足蹠腫瘍の大きさが４ｍｍ未満の生存マウスのパーセントを腫瘍接種後の日数の関数として示す。この図は、下降段階として下記の２種類のイベントを記録した図である：死亡（中毒死）および４ｍｍを超える腫瘍寸法。未処置マウス（白四角）は全部が約２３日の試験日後に腫瘍の大きさが４ｍｍを超えていた。本リポソーム製剤で処置したマウス（黒丸、黒菱形）では遊離形態の薬剤で処置した動物が示した中毒死（白三角）の時間よりも長い時間に渡って中毒死を示すことなく腫瘍の大きさも４ｍｍ未満であった。

別の研究では、マウスに１０^６個のＣ２６腫瘍細胞を腹腔内接種した。接種して５日後のマウスを遊離形態の薬剤またはリポソームの中に取り込ませた薬剤−ＤＴＢ−脂質コンジュゲートとして６ｍｇ／ｋｇの量で静脈内注入することで処置した。その結果を図１７に示し、この図では、生存パーセントをＣ２６腫瘍細胞をマウスに接種した後の時間の関数としてプロットする。未処置マウス（四角）は試験日数が２３日を超えて生存することはなかった。遊離マイトマイシンＣを６ｍｇ／ｋｇ用いて処置したマウスが試験日４０日の時に生存した率は１０％のみであった（三角）。それとは対照的に、マイトマイシンＣをリポソーム中のプロドラッグ形態で６ｍｇ／ｋｇの量で用いて処置したマウス（丸）では試験日が４０日の時に３０％以上が生存しており、そして本リポソーム製剤を６ｍｇ／ｋｇ（２回）用いて処置したマウスでは４０％以上が生存していた（菱形）。本リポソーム製剤で処置したマウスは遊離形態の薬剤で処置した時に比べて実質的に高い用量、例えば約２倍多い用量、ある場合には３倍多い用量のマイトマイシンＣに耐え得ることは注目に値する。

別の研究では、Ｍ１０９細胞の亜株（ｓｕｂｌｉｎｅ）であるＭ１０９Ｒ細胞を多剤耐性細胞として選択して用いた。マウスに薬剤耐性Ｍ１０９Ｒ癌細胞を接種した後、５日目および１２日目に試験物質を静脈内注射することで処置した。その結果を図１８−１９に示す。

図１８に、足蹠の大きさ中央値（ｍｍ）をＭ１０９Ｒ腫瘍細胞接種後の時間の関数として示す。未処置マウス（白四角）では腫瘍の大きさが絶えず大きくなった。ほぼ１３０日目まで、ＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソームを８ｍｇ／ｋｇ用いて処置したマウス（黒丸、実線）が示した足蹠の大きさの方が遊離マイトマイシンＣを同様な用量で用いて処置したマウスのそれ（白三角）よりも小さかった。ＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソームを８ｍｇ／ｋｇの用量で用いて２回処置したマウスの足蹠の大きさの増加（黒丸、破線）は１６８日の試験期間全体に渡ってほとんどない度合から測定不能な度合であった。

図１９Ａ−１９Ｂに、マイトマイシンＣの用量を１０ｍｇ／ｋｇにしそして試験群の１つにシステインを投与する以外は同様な試験マウスの結果を示す。図１９Ａに、未処置マウス（白四角）、ポリエチレングリコール鎖の被膜を有するリポソームの中に取り込ませておいたドキソルビシンを１０ｍｇ／ｋｇの用量で用いて２回処置したマウス［Ｓｔｅａｌｔｈ（商標）、白三角］、ＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソームを１０ｍｇ／ｋｇの用量で２回用いて処置したマウス（黒丸）［システイン無し（黒丸、実線）またはシステインをマウス１匹当たり５ｍｇ投与（黒丸、破線）］が示した試験マウス体重中央値（グラム）を腫瘍接種後の日数の関数として示す。リポソーム−ドキソルビシンで処置したマウスは体重の損失を示し、このことは、その用量は実際それらが耐え得る最大許容用量であることを示している。それとは対照的に、リポソームＭＭＣプロドラッグを用いた時にはシステインを用いた時にも用いない時にも重量損失を全く観察しなかった。

図１９Ｂに、試験動物の足蹠厚みの中央値を示す。ＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソームの形態のマイトマイシンＣで処置（５日目と１２日目に１０ｍｇ／ｋｇの用量で２回）したマウス（黒丸）では、システインを使用（黒丸、破線）してもシステインを使用しなく（黒丸、実線）ても足蹠の大きさの増加にはほとんどか或は全く影響がなかった。実際、マウス個体を基にして、測定可能な腫瘍を有する１５匹のマウスの中の１１匹は完全な腫瘍緩解を示した。未処置のまま（白四角）もリポソームに取り込ませたドキソルビシンを用いた処置（白三角）も足蹠厚みの増加をもたらした。この研究のデータをまた図１９Ｃにも足蹠厚みが５ｍｍ未満の生存マウスのパーセントとして腫瘍接種後の日数の関数として示す。

図１８−１９に示したデータは、マイトマイシンＣをリポソームの中に取り込ませた薬剤−脂質コンジュゲートの形態で投与すると多剤耐性細胞はそれを吸収して細胞の中に細胞毒性をもたらすに充分な量で蓄積し得ることを示している。Ｍ１０９Ｒ細胞は、このような薬剤耐性癌モデルで予測されるように、リポソームに取り込ませておいたドキソルビシンには反応を示さなかった（図１９Ｂ）。

前記から本発明のいろいろな面および特徴が明らかであろう。本明細書に示した研究は、マイトマイシンＣを脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣプロドラッグとして調合しておくとそれをインビボで投与することができることを示している。この見いだしたことは、遊離形態のマイトマイシンＣは極めて毒性が高く、従ってインビボ使用にはしばしば適さないことを考慮すると重要である。その上、マイトマイシンＣを脂質とのプロドラッグコンジュゲートの形態で動物に投与するならば、この薬剤を遊離形態で投与する時の量の２倍または３倍の用量で投与することができる。本明細書に示した研究は、また、マイトマイシンＣを脂質−ＤＴＢ−薬剤コンジュゲートの形態で投与すると多剤耐性細胞がそれを吸収し得ることも示している。ジスルフィド還元酵素であるチオレドキシンの濃度はいろいろな原発腫瘍の方が健康な組織よりも高いことが研究文献に示されていた［Ｐｏｗｉｓ他、Ｆｒｅｅ Ｒａｄｉｃａｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ ＆ Ｍｅｄ．、２９：３１２（２０００）；Ｅｎｇｍａｎ，Ｌ．他、Ｂｉｏｏｒｇａｎｉｃ ａｎｄ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ １１：５０９１、（２０００）］。そのようにチオレドキシンの濃度は腫瘍細胞の方が高いことから、ここに記述するマイトマイシンＣコンジュゲートを用いるとユニークな相乗作用が得られる、と言うのは、天然の還元酵素源は標的組織の中に集中するからである。

以下の実施例は本明細書に記述する発明を更に説明するものであり、決して本発明の範囲を限定することを意図するものでない。
材料
あらゆる材料を商業的に適切な製造供給元、例えばＡｌｄｒｉｃｈ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎなどから入手した。
［実施例１］

パラ−ジアシルジグリセロールジチオベンズアルコール（化合物ＩＶ）およびオルソ−ジアシルジグリセロールジチオベンズアルコールの合成
Ａ． パラ−ジアシルジグリセロールジチオベンズアルコール
この反応を図１に示す。化合物ＩＩおよびＩＩＩの調製ではＳｎｙｄｅｒ，Ｗ．Ｒ．、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｌｉｐｉｄ Ｒｅｓｅａｒｃｈ、２８：９４９（１９８７）の手順に従った。

１００ｍｌの丸底フラスコに入れた５ｍｌの水に３−メルカプト−１，２−プロパンジオール（化合物Ｉ、１ｇ、９．２６ミリモル）を入れて、これを氷浴の中に置いた。このフラスコを急速撹拌しながら温度を３０−４０℃の範囲に維持しつつ過酸化水素（正確に０．５モル当量、５２５μｌ、４．６３ミリモル）を滴下した。発熱過程が終了した時点で反応物を室温で一晩撹拌した。ロータリーエバポレーターを用いてアセトニトリルを２０ｍｌづつ連続添加することで水を共沸させた。そのようなアセトニトリル添加過程を３から４回または水全部が除去されて透明な油がもたらされるまで繰り返した。金属製スパチュラでフラスコを引っ掻きそして−２０℃に一晩冷却すると油状生成物が固化した［化合物ＩＩ、ｒａｃ−３，３’−ジチオビス（１，２−プロパンジオール）］。その白亜固体をＰ_２Ｏ_５の上に置いて真空下で乾燥させた。
収量：６３０ｍｇ、６３％。^１ＨＮＭＲ（ＣＤ_３ＯＤ、３６０ＭＨｚ）δ ２．７７、２．９５（２ｘｄ、ＣＨ_２ＯＨ、２Ｈ）、３．５９（Ｍ、ＳＣＨ_２、２Ｈ）、３．８７（ｍ、ＣＨ、１Ｈ）ｐｐｍ。

オーブンで乾燥しておいた１００ｍＬの丸底フラスコに前記ｒａｃ−３，３’−ジチオビス（１，２−プロパンジオール）生成物（化合物ＩＩ）（９８０ｍｇ、４．６ミリモル）を入れて乾燥塩化メチレン（４０ｍＬ）に溶解させることを通して、前記化合物にアシル化を受けさせた。それにステアリン酸（４．９２ｇ、１７．１ミリモル）および触媒として４−トルエンスルホン酸４−ジメチルアミノピリジニウム（１．３８ｇ、４．６ミリモル）を加えて室温（２５℃）で２０分間撹拌した。次に、ジイソプロピルカルボジイミド（３．１ｍＬ、２０ミリモル）をピペットで入れた後、室温で一晩反応させた。ＧＦ上のＴＬＣ ｓｉｌｉｃ（ヘキサン中１０％の酢酸エチル）はジオール基の反応が完了したことを示していた［ｒａｃ−３，３’−ジチオビス（１，２−プロパンジオール）Ｒ_ｆ＝０．６０；ｒａｃ−３，３’−ジチオビス（１，２−プロパンジステアロイル）Ｒ_ｆ＝０．３５］。この反応混合物に若干塩基性のイオン交換樹脂であるＡｍｂｅｒｌｙｓｔ（商標）Ａ−２１（〜３ｇ）および強酸性のイオン交換樹脂であるＡｍｂｅｒｌｙｓｔ（商標）１５（〜３ｇ）を加えた。振とうを３０分間行った後、前記樹脂を濾過し、そしてその濾液を乾固させた。その残留物にイソプロパノール（各々１００ｍＬ）を用いた再結晶化を３回受けさせた。固体状生成物であるｒａｃ−３，３’−ジチオビス（１，２−プロパンジステアロイル）（化合物ＩＩＩ）を集めてＰ_２Ｏ_５上で乾燥させた。収率：７０％、４．１ｇ。融点５４−５５℃。^１ＨＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３、３６０ＭＨｚ）δ ０．８６（ｔ、ＣＨ_３、６Ｈ）、１．２２（ｓ、脂質、５６Ｈ）、１．４８（ｍ、ＣＨ_２ＣＨ_２（ＣＯ）Ｏ、４Ｈ）、２．２６（２ｘｔ、ＣＨ_２（ＣＯ）Ｏ、４Ｈ）、２．８７（ｄ、ＣＨ_２Ｓ、２Ｈ）、４．０３および４．２２（２ｘｄ、脂質のＣＨ_２ＣＨ、２Ｈ）、４．９７（ｍ、脂質のＣＨＣＨ_２）ｐｐｍ。

次の段階で、ｒａｃ−３，３’−ジチオビス（１，２−プロパンジステアロイル）（化合物ＩＩＩ）（２．９７ｇ、２．３３ミリモル）の溶体をトルエン（３０ｍＬ）に溶解させた後、氷浴の中に置いた。塩化スルフリル（１．９ｍＬ、２３．２ミリモル）をピペットでフラスコの中に入れた後、その混合物を冷氷浴温度で３０分間撹拌した。次に、前記フラスコを室温に置いて更に３０分間撹拌した。ロータリーエバポレーターを用いて余分な塩化スルフリルを除去した。この反応フラスコに新しい分量（２０ｍＬ）のトルエンを加えた後、氷浴の上に置いた。これに、４−メルカプトベンズアルコール（７８０ｍｇ、５．６ミリモル）をトルエンに入れることで生じさせた溶液をゆっくりした速度で加えた。５時間の反応時間後、ロータリーエバポレーターを用いて溶媒全部を蒸発させて乾固させた。前記反応フラスコに温かい酢酸エチル（１０ｍＬ）を加えることで固体を溶解させた後、不溶物を濾過で除去した。その酢酸エチル溶液にエーテルを５０ｍＬ加えることで沈澱を起こさせた後、固体状生成物（パラ−ジアシル−ジグリセロール−ジチオベンザルアルコール、化合物ＩＶ）を濾過で集めた。この過程を２回繰り返した。収率：７５％。

前記生成物（パラ−ジアシル−ジグリセロール−ジチオベンザル−アルコール、化合物ＩＶ）を精製する目的で、シリカゲルカラム（２０ｘ２．５ｃｍ）をクロロホルム中で調製した。サンプルを最低限量のクロロホルムに溶解させた後、クロマトグラフィーにかけて、異なる２種類の可動相を加えた。最初に１００％ＣＨＣｌ_３（１００ｍｌ）で溶離させた。この画分には純度が低いジチオベンジルアルコールが入っていた。^１ＨＮＭＲで立証した。次に、可動相をクロロホルム中１５％のメタノールに変えて、フラッシュクロマトグラフィーで高純度生成物を集めた。５００ｍｌのＣＨ_３ＯＨ：ＣＨＣｌ_３（１５：８５）で溶離させることで高純度のＤＧＴＢＡ（ＴＬＣで一斑点）を集めた。溶媒を蒸発させた後、ｔ−ＢｕＯＨを用いて固体を凍結乾燥させそしてＰ_２Ｏ_５の上に置いて真空下で乾燥させた。この最終的な精製で収率が４０％（１．４ｇ）にまで低下した。^１ＨＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３、３６０ＭＨｚ）δ ０．８６（ｔ、ＣＨ_３、６Ｈ）、１．２２（ｓ、脂質、５６Ｈ）、１．４８（ｍ、ＣＨ_２ＣＨ_２（ＣＯ）Ｏ、４Ｈ）、２．２６（２ｘｔ、ＣＨ_２（ＣＯ）Ｏ、４Ｈ）、２．８７（ｄ、ＣＨ_２Ｓ、２Ｈ）、４．０３および４．２２（２ｘｄ、脂質のＣＨ_２ＣＨ、２Ｈ）、４．６９（ｓ、ＣＨ_２、ｂｚ、２Ｈ）、４．９７（ｍ、脂質のＣＨＣＨ_２）、７．３６および７．５６（ｄ、ＣＨ_２、芳香族、４Ｈ）ｐｐｍ。

５ｍｇのサンプルに元素分析を実験室（Ｍｉｄｗｅｓｔ Ｍｉｃｒｏ Ｌａｂ）で受けさせた。
分析 理論値 測定値
炭素 ７０．９３％ ７０．６７％
水素 １０．５０％ １０．４１％
硫黄 ８．２５％ ８．３１％
Ｂ． オルソジグリセロールジチオベンズアルコール
ｒａｃ−３，３’−ジチオビス（１，２−プロパンジステアロイル）（化合物ＩＩＩ）（２００ｍｇ、０．１５６ミリモル）の溶体をトルエン（３０ｍＬ）に溶解させた後、氷浴の中に置いた。塩化スルフリル（３９μｌ、０．４７ミリモル）をピペットでフラスコの中に入れた後、その混合物を冷氷浴温度で３０分間撹拌した。次に、前記フラスコを室温に置いて更に３０分間撹拌した。ロータリーエバポレーターを用いて余分な塩化スルフリルを除去した。この反応フラスコに新しい分量（２０ｍＬ）のトルエンを加えた後、氷浴の上に置いた。これに、２−メルカプトベンズアルコール（４８ｍｇ、３５ミリモル）をトルエンに入れることで生じさせた溶液をゆっくりした速度で加えた。５時間の反応時間後、ロータリーエバポレーターを用いて溶媒全部を蒸発させて乾固させた。前記反応フラスコに温かい酢酸エチル（１０ｍＬ）を加えることで固体を溶解させた後、不溶物を濾過で除去した。その酢酸エチル溶液にエーテルを５０ｍＬ加えることで沈澱を起こさせた後、固体状生成物（オルソ−ジアシル−ジグリセロール−ジチオベンザルアルコール）を濾過で集めた。この過程を２回繰り返した。その固体をＰ_２Ｏ_５の上に置いて真空下で乾燥させた。収率：７５％、１９０ｍｇ。^１ＨＮＭＲ：（ＣＤＣｌ_３、３６０ＭＨｚ）δ ０．８６（ｔ、ＣＨ_３、６Ｈ）、１．２５（ｓ、脂質、５６Ｈ）、１．５８（ｍ、ＣＨ_２ＣＨ_２（ＣＯ）Ｏ、４Ｈ）、２．２８（２ｘｔ、ＣＨ_２（ＣＯ）Ｏ、４Ｈ）、２．９１（ｄ、ＣＨ_２Ｓ、２Ｈ）、４．１４および４．３５（２ｘｄ、脂質のＣＨ_２ＣＨ、２Ｈ）、４．８６（ｓ、ＣＨ_２、ｂｚ、２Ｈ）、５．２６（ｍ、脂質のＣＨＣＨ_２）、７．３１（ｍ、芳香族、２Ｈ）、７．４８および７．７５（ｄ、芳香族、２Ｈ）ｐｐｍ。
［実施例２］

パラ−ジアシルジグリセロールジチオベンザル−マイトマイシンＣ（化合物ＸＶＩＩＩ）の合成
この反応を図３Ａに示す。

５０ｍＬの丸底フラスコにホスゲン（３．１ミリモル）およびトルエン（５ｍＬ）を仕込んで、その溶液を０℃に冷却した。パラ−ジアシル−ジグリセロール−ジチオベンザル−アルコール（化合物ＩＶ、実施例１に記述した如く調製、０．３１ミリモル）がトルエン（２．５ｍＬ）に入っている溶液を調製した。次に、このアルコール溶液を前記ホスゲン溶液に滴下した。この混合物を室温に一晩温めた。１８時間後、この溶液に濃縮を真空下で受けさせることで余分なホスゲンを除去した。この粗アシルクロライドをトルエン（５ｍＬ）に再溶解させた。

マイトマイシンＣ（０．３１ミリモル）とジメチルアミノピリジン（０．０３１ミリモル）とＤＭＦ（１ｍＬ）の溶液を調製した。このマイトマイシンＣ溶液を前記塩化アシル溶液に滴下した。１時間後、トルエンを蒸発させて除去した後、その粗生成物をシリカ使用クロマトグラフィーにかけた（ヘキサン：酢酸エチル １：１）。次に、その精製した生成物をｔ−ＢｕＯＨ（５０ｍＬ）で取り上げた後、凍結乾燥させた。この生成物は紫色の固体であった（１８３ｍｇ、５３％）。Ｒ_ｆ＝０．３８（５０％ヘキサン：酢酸エチル）；^１ＨＮＭＲ（３６０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ_３）δ ０．８８（ｔ、Ｊ＝６．８Ｈｚ、６Ｈ）、１．２６（ｓ、５８Ｈ）、１．５８−１．６８（ｍ、４Ｈ）、１．７６（ｓ、３Ｈ）、２．２９（ｔ、Ｊ＝７．６Ｈｚ、４Ｈ）、２．９３−２．９６（ｍ、２Ｈ）、３．１９（ｓ、３Ｈ）、３．２９（ｄｄ、Ｊ＝４．７および２．９Ｈｚ、１Ｈ）、３．４１（ｄｄ、Ｊ＝５．０およ２．２Ｈｚ、１Ｈ）、３．４８（ｄｄ、Ｊ＝１３．７および２．５Ｈｚ、１Ｈ）、３．６７（ｄｄ、Ｊ＝１１．５および４．７Ｈｚ、１Ｈ）、（ｄｄｄ、Ｊ＝１２．２および５．８および２．５Ｈｚ、１Ｈ）、４．２７−４．３６（ｍ、２Ｈ）、４．４３（ｄ、Ｊ＝１３．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．６１（ｓ、２Ｈ）、４．９０（ｄｄｄ、Ｊ＝１０．４および５．０および２．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．００−５．１２（ｍ、３Ｈ）、５．２６−５．３０（ｍ、１Ｈ）、７．３２（ｄ、Ｊ＝８．６Ｈｚ、２Ｈ）、７．５０（ｄ、Ｊ＝７．９Ｈｚ、２Ｈ）；ＭＡＬＤＩ ＭＳ Ｃ_６２Ｈ_９９Ｎ_４Ｏ_１１Ｓ_２Ｎａの計算値：１１６４、測定ｍ／ｚ １１６４（Ｍ＋Ｎａ）。
［実施例４］

リポソーム調製
Ａ． コレステロール含有リポソーム
１． リポソーム調製
１ｍＬの乾燥エタノールに６０−６５℃でＨＳＰＣを５９ｍｇ、コレステロールを１４．４ｍｇ、ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥを１７．４ｍｇおよびパラ−ジステアロイル−ＤＴＢ−マイトマイシンＣを７．４ｍｇ（６０／３０／５／５のモル比）加えた後、溶解するまで、ほぼ１０分間混合した。

蒸留水中１０ｍＭのヒスチジンと１５０ｍＭのＮａＣｌで構成させた水和用媒体を７０℃に温めた。

この温めた（６３−６７℃の）水和用媒体を混合しながらこれに前記温めた脂質溶液を迅速添加することで大きさが不均一なリポソームが入っている懸濁液を生じさせた。この懸濁液を６３−６７℃で１時間混合した。
２． 押出し
前記リポソームをテフロンが内張りされているステンレス鋼製容器の中に入っているポリカーボネート製フィルターカートリッジに通して制御した様式で押出すことで大きさを所望の平均粒径に合わせた。この押出し工程全体、即ち６−８時間に渡って、そのリポソーム懸濁液を６３−６５℃に保持した。
３． 透析濾過（Ｄｉａｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ）
前記リポソーム懸濁液からエタノールを透析濾過で除去した。ヒスチジン（１０ｍＭ）と塩化ナトリウム（１５０ｍＭ）を無菌水に溶解させることでヒスチジン／塩化ナトリウム溶液を調製した。この溶液のｐＨを約７に調整した。この溶液を０．２２μｍのＤｕｒａｐｏｒｅフィルターに通して濾過した。このリポソーム懸濁液を前記ヒスチジン／塩化ナトリウム溶液で約１：１（体積／体積）の比率に希釈した後、ポリスルホン製中空繊維限外濾過装置に通す透析濾過を行った。前記ヒスチジン／塩化ナトリウム溶液に対する体積交換を８回実施することでエタノールを除去した。この過程の流体温度を約２０−３０℃に保持した。全透析濾過時間は約４．５時間であった。
４． 無菌濾過
前記リポソーム懸濁液を３３−３８℃に加熱した後、０．２μｍのＧｅｌｍａｎ Ｓｕｐｏｒポリエーテルスルホン製フィルターに通して濾過した。全濾過時間は約１０分間であった。

各処理段階（水和、押出し、透析および濾過）後に脂質濃度およびコンジュゲート／薬剤濃度をＨＰＬＣで測定した。動的光散乱を用いてリポソームの粒径を測定しかつＨＰＬＣを用いて外部懸濁用媒体の中に入っている結合していない「遊離」マイトマイシンＣの量を測定した。

Ｂ． コレステロール無しリポソーム製剤
ＨＳＰＣとｍＰＥＧ−ＤＳＰＥとパラ−ジステアロイル−ＤＴＢ−マイトマイシンＣが９０／５／５のモル比の脂質組成を用いてリポソームをこの上に記述したようにして調製した。具体的には、１ｍＬのエタノールにＨＳＰＣを８８．５ｍｇ、ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ（ＰＥＧのＭＷが２０００ダルトン）を１７．９ｍｇおよび前記コンジュゲートを７．３ｍｇ溶解させた。各処理段階後にリポソームの大きさ、脂質および薬剤の濃度、そして外部の懸濁用媒体に入っている遊離マイトマイシンＣの濃度を測定した。

［実施例５］

インビトロ特徴付けのＨＰＬＣ条件
実施例４Ａ−４Ｂに記述したようにして調製したリポソームを０．６Ｍのオクタイルグルコピラノシドで希釈した。前記リポソームを１５０ｍＭのシステインの存在下３７℃でインキュベートした。サンプルを時間ゼロ、３０分、１時間、２時間、４時間および２４時間の時に取り出した。３．５ｘ５ｃｍのＷａｔｅｒ Ｓｙｍｍｅｔｒｙ Ｃ８カラムを用いたＨＰＬＣで２０μＬの体積を分析した。流量を１ｍＬ／分にしそして可動相の勾配を下記の如くにした：
出発 １０％ＭＥＯＨ ９０％ １０ｍＭ ＮａＰＯ_４、ｐＨ＝７
５分 ２５％ＭＥＯＨ ７５％ １０ｍＭ ＮａＰＯ_４、ｐＨ＝７
１０分 ２５％ＭＥＯＨ ７５％ １０ｍＭ ＮａＰＯ_４、ｐＨ＝７
１５分 １００％ＭＥＯＨ −
２５分 １００％ＭＥＯＨ −
３０分 １０％ ９０％ １０ｍＭ ＮａＰＯ_４、ｐＨ＝７
３５分 １０％ＭＥＯＨ ９０％ １０ｍＭ ＮａＰＯ_４、ｐＨ＝７
［実施例６］

細胞毒性試験
Ａ． リポソーム調製
実施例４Ａ−４Ｂに記述した如く調製したリポソームはＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／ジステアロイル−ＤＴＢ−マイトマイシンＣ（９０／５／５）またはＨＳＰＣ／コレステロール／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／ジステアロイル−ＤＴＢ−マイトマイシンＣ（９０／４５／５／５）で構成されていた。これらのリポソーム製剤を０．４５μｍのセルロース膜に通して無菌濾過したが、押出しで大きさを小さくすることは行わなかった。リポソーム形成後、リポソームをイソプロパノールに１０−２０倍の希釈度で溶解させて３６０ｎｍの所の吸光度を用いてマイトマイシンＣの濃度を測定しかつ無機燐酸塩検定を用いて燐脂質濃度を測定した。

コレステロール含有リポソームの平均直径は２７５±９０ｎｍであった。コレステロール無しリポソームの平均直径は１５０±５０ｎｍであった。燐脂質濃度は両方のリポソーム製剤とも１０μＭ／ｍＬでありそしてマイトマイシンＣの濃度は両方の製剤とも１２０μｇ／ｍＬであった。
Ｂ． 化学療法剤感受性検定および増殖速度測定
遊離マイトマイシンＣまたはリポソームの中に取り込ませたジステアロイル−ＤＴＢ−マイトマイシンＣコンジュゲートの形態のマイトマイシンＣが示す細胞毒性効果を以前に記述されたメチレンブルー染色方法［Ｈｏｒｏｗｉｔｚ，Ａ．Ｔ．他、Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ、１１０９：２０３−２０９（１９９２）］に若干の修飾を受けさせた方法を用いて比色分析で検定した。この検定が完了した時点で細胞を固定しそしてメチレンブルー染色検定を用いて評価した。

この検定では、２００μＬ分量（ＲＰＭＩ−１６４０培地＋１０％ウシ胎仔血清）の中で指数関数的に増殖している培養物から１５００個のＭ１０９マウス癌細胞を９６穴平底ミクロタイタープレートの上に置いて平板培養した。２０時間の培養（この間に細胞が付着しかつ増殖を再開する）後、各穴に試験製剤（遊離マイトマイシンＣまたはリポソーム製剤）を２０μＬ加えた。薬剤の濃度を１０倍高くする毎に４点薬剤濃度試験を行った。各試験を３個の穴および２個の並列プレートで重複して実施した。細胞に処置を７２時間に渡って連続的に受けさせた。

７２時間の処置時間後、各穴に２．５％グルタルアルデヒドを５０μｌ添加して１０分間置くことで培養物を固着させた。前記プレートを脱イオン水で３回、０．１Ｍのホウ酸塩緩衝液（ｐＨ８．５）で１回洗浄した後、１００μｌのメチレンブルー［０．１Ｍのホウ酸塩緩衝液（ｐＨ８．５）中１％］を用いて室温（２０−２５℃）で６０分間染色した。前記プレートを脱イオン水浴の中で濯ぐことを５回行うことで細胞と結合しなかった染料を除去した後、乾燥させた。０．１ＮのＨＣｌを２００μＬ用いて染料を３７℃で６０分間抽出した後、ミクロプレート分光光度計を用いて光学密度を測定した。

血球計算板を用いて細胞数を数えることで測定した細胞数と分光光度計による吸光度は良好な相互関係を示した。試験終了時の細胞数と吸光度の間の線形関係が確保されるような初期細胞平板培養密度を選択した。各試験毎に初期平均吸光度を測定する目的で薬剤を添加する前に６個の穴に固着を受けさせた。この値を用い、下記の式：ＤＴ＝ｌｎ ２／ｌｎ［（ＯＤ_ｔ／ＯＤ_ｃ）／ｈ］［式中、ＤＴ＝倍増時間（時）、ＯＤ_ｔ＝試験終了時の試験穴の光学密度、ＯＤ_ｃ＝試験開始時の対照穴の光学密度、ｈ＝培養時間（時）］を用いて、対照および薬剤処置細胞が示す増殖速度（ＧＲ）および倍増時間（ＤＴ）を計算した。

増殖速度をＧＲ＝（ｌｎ ２／ＤＴ）として計算した。薬剤処置細胞が示した増殖速度を未処置の対照細胞が示した増殖速度で割ることで増殖抑制パーセント、即ち対照増殖速度に対するパーセントを得た。細胞抑制曲線の２つの最も近い値を補間することで対照増殖速度の５０％抑制（ＩＣ_５０）をもたらす薬剤濃度を計算した。

マイトマイシンＣには検定を１０^−８−１０^−５Ｍの範囲で受けさせた。コンジュゲートを拘束しているリポソーム製剤には検定を１０^−８−３ｘ１０^−５Ｍの範囲で受けさせた。相互作用試験ではマイトマイシンＣまたはリポソーム製剤と一緒にシステイン（ＳＩＧＭＡ、セントルイス、ＭＯ）を最終濃度が１５０、５００または１０００μＭになるように加えた。

その結果を表１および図１０、１１Ａ−１１Ｂおよび１２に示す。
［実施例７］

インビボ薬物速度試験
Ａ． リポソーム製剤
コレステロール含有リポソームおよびコレステロール無しリポソームを実施例５Ａおよび５Ｂに記述した如く調製した。

１１９μＬのエタノールに遊離形態のマイトマイシンＣを１１．９ｍｇ溶解させることでマイトマイシンＣの溶液を調製した。溶解後、ヒスチジンが１０ｍＭで食塩水が１５０ｍＭの溶液を約１１．８μＬ加えた。使用に先立って前記マイトマイシンＣ溶液を前記ヒスチジン／食塩水溶液で１００μｇ／ｍＬになるように希釈した後、濾過した。
Ｂ． 動物
８匹のラットを無作為に下記の如き処置群に分けた：

試験製剤をボーラス投薬として１回静脈内注入することで投与した。注入後下記の時間の時に各動物から血液サンプルを採取した：３０秒、１５分、３０分、１時間、２時間、４時間、８時間、２４時間、４８時間、７２時間および９６時間。血液サンプル中のマイトマイシンＣ量を以下に示すＨＰＬＣ手順で測定した。５．１ｍＬの７．５％ＥＤＴＡにヨードアセトアミドを１９９．３ｍｇ入れることでヨードアセトアミンが２００ｍＭの溶液を生じさせた。１μＬの各血液サンプルに前記２００ｍＭのヨードアセトアミド溶液を１５μＬ入れた。
Ｃ． 血漿中のマイトマイシンＣを測定するＨＰＬＣ方法
１． 溶液調製
１Ｌの容量フラスコに脱イオン水を充填してこれに燐酸アンモニウムを１．３２１ｇ入れることを通して、燐酸アンモニウム含有量が１０ｍＭの緩衝剤水溶液（ｐＨ＝７）を調製した。前記混合物を撹拌しながらｏ−燐酸を用いてｐＨを７．０に調整した。この緩衝液を使用前に０．４５μｍのナイロン製フィルターに通して濾過した。

Ｗａｔｅｒｓ Ａｌｌｉａｎｃｅ双対ポンプを用いて可動相であるメタノールと前記緩衝剤水溶液を勾配プログラムに従って混合した。
２． 標準溶液および品質制御サンプルの調製
２種類の個々別々の重量のマイトマイシンＣおよびマイトマイシンＣコンジュゲートを標準サンプルおよび品質制御サンプルとして調製した。マイトマイシンＣおよびマイトマイシンＣコンジュゲートを１ｍｇづつ計り取って個別に１ｍＬの希釈剤（クロロホルムが２０％でメタノールが８０％の混合物）に溶解させた。両方の化合物の原液の濃度を１ｍｇ／ｍＬにした。標準サンプルおよび品質制御サンプルに関して５μｇ／ｍＬから１００μｇ／ｍＬの濃度を得る目的で数種の希釈液を希釈状態で作成した。

０．１ｍＬ分量のラット血漿に適当量（１０μＬ−５０μＬ）のマイトマイシンＣおよびマイトマイシンＣコンジュゲート標準溶液を添加した。マイトマイシンＣおよびマイトマイシンＣコンジュゲートそれぞれの濃度範囲を０．０５−５．０μｇ／ｍＬおよび０．１−５μｇ／ｍＬにした。メタノールを用いて最終体積を１ｍＬに調整した。品質制御サンプルを調製する時にも同様な手順に従った。ラット血漿中の品質制御サンプルの濃度をマイトマイシンＣの場合には０．１、０．５および５μｇ／ｍＬにしそしてマイトマイシンＣコンジュゲートの場合には０．１、１および５μｇ／ｍＬにした。これらのサンプルを室温において３，０００ｒｐｍで１０分間回転させて沈降させた。３００μＬの上澄み液を注入用インサート（ｉｎｓｅｒｔ）が３００μＬ入っているＨＰＬＣ用瓶に移した。
３． サンプル調製
９００μＬのメタノールを用いて１００μＬの血漿サンプルを変性させた後、３，０００ｒｐｍの遠心分離に１０分間かけた。３００μＬ分量の上澄み液を注入用インサートが３００μＬ入っているＨＰＬＣ用瓶に移した。
４． クロマトグラフィー条件
４．６ｍｍｘ５ｃｍのＳｕｐｅｌｃｏ（商標）Ｃ−８（５μ）カラムを用いた。可動相Ａを１０ｍＭの燐酸アンモニウム（ｐＨ７）にした。可動相Ｂをメタノールにした。流量を１ｍＭ／分にしそして３６０ｎｍの紫外線で検出した。注入体積を４０μＬにしそして典型的な実行時間は１５分間であった。勾配プログラムは下記の通りであった：

低濃度から高濃度で調製した線形標準（６種類の濃度）を注入した。次に、分析の目的で品質制御サンプルおよび血漿サンプルを注入した。

ＰＥ−Ｎｅｌｓｏｎ Ｔｕｒｂｏｃｈｒｏｍ（バージョン４．１）システムを用いてピーク面積および保持時間を測定した。線形回帰プログラムを用いてマイトマイシンＣおよびマイトマイシンＣコンジュゲートの濃度を計算した。６種類の濃度の標準的反応を検査することでこの方法の線形度を評価した。１／ｘ^２の重み係数を用いてデータを線形回帰式ｙ＝Ｂ＊ｘ＋Ａに適合させた。標準サンプルに加えて品質制御サンプルの逆計算濃度からこの方法の精度および正確さを計算した。

その結果を図１３Ａ−１３Ｂに示す。
［実施例８］

インビボ試験
スパソゲン（Ｓｐａｔｈｏｇｅｎ）の無い特殊な施設の中に１０週令のメスＢＡＬＢ／ｃマウスを維持した。Ｍ１０９細胞またはＭ１０９Ｒ細胞をインビトロ懸濁液の状態で増殖させた。５０μＬ（１０^６個の細胞）をマウスの右後足蹠に注入した。試験終了時まで足蹠の厚みをカリパスで測定し、試験が終了した時点でマウスを屠殺し、最終的な腫瘍数を記録し、そして対照および腫瘍を接種した足蹠を足関節の高さの所で切断して重量を測定した。正常な足蹠および腫瘍を有する足蹠の間の重量の差として腫瘍重量を推定した。１グループ当たりの最終的な腫瘍罹病率の差が統計学的に有意であるか否かを分割表およびフィッシャーの直接確率検定で分析した。その結果を図１５Ａ−１５Ｂおよび図１６Ａ−１６Ｂ、図１８、図１９Ａ−１９Ｃに示す。

本発明を個々の態様に関して記述してきたが、本発明から逸脱しない限りいろいろな変更および修飾を成してもよいことは本分野の技術者に明らかであろう。

図１に、パラ−ジアシルジグリセロール−ジチオベンジルアルコールを調製して更にアミン含有、ヒドロキシ含有またはカルボキシ含有薬剤と反応させる合成反応スキームを示す。 図２Ａに、アミノ含有薬剤を反応性ジアシルジグリセロール−ジチオベンジルカーボネートと結合させる一般的反応スキームを示す。 図２Ｂに、図２Ａに示したコンジュゲートがチオール開裂を起こした後の生成物を示す。 図３Ａに、ジアシルジグリセロール−ジチオベンジル−マイトマイシンＣコンジュゲートを生じさせる合成反応スキームを示す。 図３Ｂに、図３Ａに示したコンジュゲートがチオール開裂を起こした後の生成物を示す。 図４に、コレステロール−ジチオベンジル−マイトマイシンＣコンジュゲートを生じさせる合成反応スキームを示す。 図５に、コレステロール−ジチオベンジル−マイトマイシンＣコンジュゲートを生じさせる別の合成反応スキームを示す。 図６Ａ−６Ｃに、３種類の脂質−ジチオベンジル−マイトマイシンＣコンジュゲートであるパラ−ジステアロイル−ＤＴＢ−マイトマイシンＣ（図６Ａ）、パラ−ジパルミトイル−ＤＴＢ−マイトマイシンＣ（図６Ｂ）およびオルソ−ジパルミトイル−ＤＴＢ−マイトマイシンＣ（図６Ｃ）の構造を示す。 図７Ａ−７Ｂは、ＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣ（図７Ａ）およびＨＳＰＣ／コレステロール／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣ（図７Ｂ）で構成させたリポソームが示したＨＰＬＣクロマトグラムであり、各図に、一連のクロマトグラムを当該リポソームをシステインの存在下でインキュベートした時間の関数として示す。 図８は、ＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣ（黒菱形）およびＨＳＰＣ／コレステロール／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣ（黒丸）で構成させたリポソームから放出されるマイトマイシンＣのパーセントをシステイン存在下のインキュベーション時間の関数として示す図である。 図９Ａ−９Ｂは、ＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソーム（図９Ａ）およびＨＳＰＣ／コレステロール／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソーム（図９Ｂ）から放出されるマイトマイシンＣのパーセントをシステインを１５０μＭの濃度（黒記号）および１．５ｍＭの濃度（白記号）で存在させてインキュベートした時間の関数として示す図である。 図１０は、遊離マイトマイシンＣ（白三角）、ＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソーム（黒四角）およびＨＳＰＣ／コレステロール／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソーム（白丸）を存在させた時のＭ１０９細胞の増殖速度（薬剤もシステインも存在させていない時のＭ１０９細胞の増殖を基準にしたパーセントとして表す）をマイトマイシンＣの量（ｎＭ）の関数として示す図である。 図１１Ａは、Ｍ１０９細胞の増殖速度（薬剤もシステインも存在させていない時のＭ１０９細胞の増殖を基準にしたパーセントとして表す）をマイトマイシンＣ濃度（ｎＭ）の関数として示す図である。遊離形態のマイトマイシンＣで処置した細胞（白三角）および遊離形態のマイトマイシンＣに加えて１０００μＭのシステインで処置した細胞（黒三角）を示す。また、ＨＳＰＣ／ＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソーム製剤で処置した細胞（白丸）および前記リポソーム製剤に加えてシステインを１５０μＭ（白菱形）、５００μＭ（黒丸）および１０００μＭ（白四角）の濃度で添加することで処置した細胞も示す。 図１１Ｂは、Ｍ１０９細胞の増殖速度（薬剤もシステインも存在させていない時のＭ１０９細胞の増殖を基準にしたパーセントとして表す）をマイトマイシンＣ濃度（ｎＭ）の関数として示す図である。遊離形態のマイトマイシンＣで処置した細胞（白三角）および遊離形態のマイトマイシンＣに加えて１０００μＭのシステインで処置した細胞（黒三角）を示す。また、ＨＳＰＣ／コレステロール／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソーム製剤で処置した細胞（白丸）および前記リポソーム製剤に加えてシステインを１５０μＭ（白菱形）、５００μＭ（黒丸）および１０００μＭ（白四角）の濃度で添加することで処置した細胞も示す。 図１２は、遊離マイトマイシンＣ（黒四角）、ＨＳＰＣ／コレステロール／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソームと結合しているマイトマイシンＣ（黒丸）およびＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソームと結合しているマイトマイシンＣ（白三角）がシステインがいろいろな濃度の時にＭ１０９細胞に対してインビトロで示す細胞毒性上昇パーセント［（ＩＣ５０_{ｎｏ ｃｙｓｔｅｉｎｅ}／ＩＣ５０_{ｃｙｓｔｅｉｎｅ}）ｘ１００で決定した時の］を示す図である。 図１３Ａは、遊離マイトマイシンＣ（白四角）、ＨＳＰＣ／コレステロール／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソーム（黒菱形）およびＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソーム（黒丸）を静脈内注入した後のラット血液中のマイトマイシンＣ濃度を注入後の時間（時）の関数として示す図である。 図１３Ｂは、遊離マイトマイシンＣ（白四角）、ＨＳＰＣ／コレステロール／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソーム（黒菱形）およびＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソーム（黒丸）を静脈内注入した後のラット血液中に残存する注入用量パーセントを注入後の時間（時）の関数として示す図である。 図１４は、遊離マイトマイシンＣ（白四角）またはＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソームの形態のマイトマイシンＣ（黒丸）を注入した後の平均体重（グラム）を注入後の時間（日数）の関数として示す図である。 図１５Ａは、マウスを未処置のまま［対照マウス；（白四角）］または遊離マイトマイシンＣによる処置を受けさせた場合（白三角）またはＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソームによる処置を受けさせた場合（黒丸）の足蹠の大きさの中央値（ｍｍ）をマウスの足にＭ１０９腫瘍細胞を接種した後の日数の関数として示す図である。 図１５Ｂは、マウスを未処置のまま［対照マウス；（白四角）］または遊離マイトマイシンＣによる処置（白三角）を２ｍｇ／ｋｇ（破線）または４ｍｇ／ｋｇ（実線）の量で受けさせるか或はＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソームによる処置（黒丸）を２ｍｇ／ｋｇ（破線）または４ｍｇ／ｋｇ（実線）の量で受けさせた場合の足蹠の大きさの中央値（ｍｍ）をマウスの足にＭ１０９腫瘍細胞を接種した後の日数の関数として示す図である。 図１６Ａは、マウスを未処置のまま［対照マウス；（白四角）］または遊離マイトマイシンＣを６ｍｇ／ｋｇ用いた処置を受けさせた場合（白三角）またはＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソームを６ｍｇ／ｋｇ用いた処置を５日目、１２日目および１９日目の３回受けさせた場合（黒丸、黒菱形）［黒菱形で表す動物にはシステインを６−８日目、１４−１６日目および２１−２３日目に注入することで与えた］の足蹠の大きさの中央値（ｍｍ）をマウスの足にＭ１０９腫瘍細胞を接種した後の日数の関数として示す図である。 図１６Ｂは、図１６Ａに挙げた如き処置を受けさせたマウスに関して足蹠腫瘍の大きさが４ｍｍ未満の生存マウスのパーセントを腫瘍接種後の日数の関数として示す図である。 図１７は、マウスを未処置のまま（四角）、遊離マイトマイシンＣを６ｍｇ／ｋｇ用いた処置を受けさせた場合（三角）またはＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソームを６ｍｇ／ｋｇ用いた処置を１回受けさせた場合（丸）または６ｍｇ／ｋｇ用いた処置を２回とシステインを用いた処置を受けさせた場合（菱形）の生存パーセントをＣ２６腫瘍細胞をマウスに接種した後の時間の関数として示す図である。 図１８は、マウスを未処置のまま（白四角）、遊離マイトマイシンＣを８ｍｇ／ｋｇ用いた処置を受けさせた場合（白三角）、ＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソームを８ｍｇ／ｋｇ用いた処置を１回（黒丸、実線）または２回（黒丸、破線）受けさせた場合の足蹠の大きさの中央値（ｍｍ）をＭ１０９−Ｒ腫瘍細胞をマウスに接種した後の時間の関数として示す図である。 図１９Ａは、マウスを未処置のまま（白四角）、ポリエチレングリコール鎖の被膜を有するリポソームに取り込ませたドキソルビシンを１０ｍｇ／ｋｇ用いて２回処置した場合［Ｓｔｅａｌｔｈ（商標）、白三角］、ＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソームを１０ｍｇ／ｋｇ用いた２回の処置（黒丸）をシステイン無し（黒丸、実線）または５ｍｇ／ｋｇのシステインと一緒に用いて受けさせた場合（黒丸、破線）の体重中央値（グラム）を腫瘍接種後の日数の関数として示す図である。 図１９Ｂは、マウスを未処置のまま（白四角）、ポリエチレングリコール鎖の被膜を有するリポソームに取り込ませたドキソルビシンを１０ｍｇ／ｋｇ用いて２回処置した場合［Ｓｔｅａｌｔｈ（商標）、白三角］、ＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソームを１０ｍｇ／ｋｇ用いた２回の処置（黒丸）をシステイン無し（実線）または５ｍｇ／ｋｇのシステインと一緒に用いて受けさせた場合（破線）の足蹠厚みの中央値（ｍｍ）を腫瘍接種後の日数の関数として示す図である。 図１９Ｃは、マウスを未処置のまま（白四角）、ポリエチレングリコール鎖の被膜を有するリポソームに取り込ませたドキソルビシンを１０ｍｇ／ｋｇ用いて２回処置した場合［Ｓｔｅａｌｔｈ（商標）、白三角］、ＨＳＰＣ／ｍＰＥＧ−ＤＳＰＥ／脂質−ＤＴＢ−マイトマイシンＣで構成させたリポソームを１０ｍｇ／ｋｇ用いた２回の処置（黒丸）をシステイン無し（実線）または５ｍｇ／ｋｇのシステインと一緒に用いて受けさせた場合（破線）の足蹠腫瘍が５ｍｍ未満の生存マウスのパーセントをＭ１０９Ｒ細胞腫瘍接種後の日数の関数として示す図である。

Claims (5)

1. Ｐ−糖蛋白質を発現する多剤耐性細胞の治療のためのリポソーム組成物であって、小胞形成性脂質と１から３０モルパーセントの範囲の一般形態：
   

   

   ［ここで、Ｌは、リポソーム脂質二重層の中に取り込ませるに適した疎水性部分であり、Ｒ^１は、ジチオベンジル部分と共有結合しているマイトマイシンＣであり、そしてＣＨ_２Ｒ^１基の位置はオルソ位およびパラ位から選択される］
   で表されるコンジュゲートで形成されているリポソームを含んで成る組成物。
2. マイトマイシンＣがウレタン結合で共有結合している請求項１記載の組成物。
3. Ｌがコレステロール、ジアシルグリセロールおよび燐脂質から成る群から選択される請求項１記載の組成物。
4. 前記コンジュゲートが構造：
   

   

   ［ここで、Ｒ^４は、マイトマイシンＣの残基を表す］
   で表されるコンジュゲートを形成するように前記ジチオベンジル部分と共有結合しているマイトマイシンＣを含んで成る請求項１記載の組成物。
5. Ｒ^４の第二級アミン部分が前記ジチオベンジルとマイトマイシンＣの間のウレタン結合を形成している請求項４記載の組成物。

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