JP5091496B2 - 菌が定着した活性炭の製造方法及び菌体定着装置 - Google Patents
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Description
特に、生産現場で問題となっている土壌病害は、その回避のためには病害菌を殺菌する必要がある。従来、臭化メチル、クロルピクリンなどの薬剤による土壌くん蒸処理や蒸気消毒、熱水消毒、太陽熱消毒などの熱による土壌消毒処理が行われている。しかしながら、このくん蒸処理や消毒処理は、土壌中の微生物を有害無害に関わらず、すべて殺菌してしまい微生物生態系を破壊してしまう。
さらに、薬剤には人畜に毒性があり、環境保全型農業推進などの観点から、農薬を使用しない防除技術へ注目が高まっている。
木炭、活性炭、泥炭、石炭などの炭化物による土壌改良効果は、有用微生物の「すみか」として好適な環境付与などの点から古くより注目されているが、これは炭化物への土壌菌の自然担持効果を期待したものであり、有用な土壌菌の積極的な菌相形成を目的としたものではない。特に、上記のような殺菌剤によるくん蒸処理や消毒処理を行っている農地では、炭化物の鋤込みだけでは土壌改良効果は期待できない。
また、炭化物に土壌菌を担持させた土壌改良剤(特許文献1及び特許文献2)も提案されているが、より生育促進や耐病性向上効果の高いものが望まれている。
すなわち、本発明は、通気性のある容器に活性炭と好気性菌を投入し、前記容器を回転させながら好気性菌の培養を行うことを含む好気性菌が定着した活性炭の製造方法を提供する。
また、本発明は、菌体定着装置であって、通気性を有し、回転自在に支持された、活性炭を収容するための活性炭保持容器と、培養液を収容するための培養液容器と、前記活性炭保持容器を前記培養液容器に収容された培養液に浸漬させた状態と、浸漬させない状態との間で切換えるための切換え手段と、前記活性炭保持容器を回転させるための回転手段とを有する、菌体定着装置を提供する。
本発明で用いる活性炭としては、コークス、石炭ピッチ、石油ピッチ、コールタール、亜炭、褐炭、瀝青炭、無煙炭、泥炭、草炭、ピート炭、石油蒸留残渣などの鉱物系原料、アクリル樹脂、フェノール樹脂などの有機材料系原料、木質材料、果実殻・果実種子、パルプ廃棄物、製糖廃棄物、再生繊維などの植物系原料などを活性化させたものが挙げられる。活性炭の粒径、比表面積、硬度、密度などの性状は特に制限されない。活性炭の粒径は、好ましくは0.1〜20mmであり、より好ましくは0.5〜5mmである。活性炭の比表面積は、好ましくは10〜2000m2/gであり、より好ましくは10〜100m2/gである。活性炭の硬度は、好ましくは1〜20であり、より好ましくは10〜20である。活性炭の密度は、好ましくは1〜3g/m3であり、より好ましくは1.5〜2g/m3である。上記活性炭を得る方法としては従来からよく知られているいずれの方法を用いてもよい。本発明においては、活性炭としてビール粕の炭化物を用いるのが好ましい。
本発明においては、上記従来技術を利用してビール粕を粒状、棒状などの適当な形状に成形した後、炭化処理をして得た炭化物を用いてもよい。得られた炭化物から適当な大きさのものを選択することにより、又は炭化物を破砕若しくは粉砕し、篩い分けすることにより、植物の種類、植物の生育段階及び植物栽培容器の種類に適合した大きさの植物の生育促進又は病害抑制資材を得ることができる。例えば、5〜30mm程度に砕いて用いてもよい。
尚、本発明で用いるビール粕の炭化物は通常次のような物性値を有するものである。
比表面積:1〜20m2/g
硬度 :10〜20(木炭硬度計による測定値、20が上限)
密度 :1.8〜2.0g/m3
ここで、比表面積はN2ガス吸着−BET法、NOVA1000(Quantchrome)で測定した値である。硬度は三浦式木炭硬度計で測定した値である。密度はHeガス比較式法1000型(東京サイエンス社製)で測定した値である。
投入する好気性菌の形態は特に限定されないが、例えばビール粕脱水ろ液やポテトデキストロース寒天培地にて前培養した形態で投入してもよい。
活性炭排出口(9)から活性炭保持容器(2)に活性炭を投入する(図2(a))。培養液容器(4)に培養液を投入して活性炭保持容器(2)内の活性炭を培養液に浸漬した状態で、活性炭保持容器(2)を回転させる(図2(b))。培養液容器(4)を回転させて培養液容器(4)から自然落下により培養液を流出させる(図2(c))。活性炭排出口(9)から活性炭保持容器(2)に好気性菌を投入し、活性炭保持容器(2)を回転させて好気性菌を培養する(図2(d))。活性炭排出口(9)が下を向くように活性炭保持容器(2)を回転させ、これと前後して培養液容器(4)を活性炭保持容器(2)と排出口(7)との間から退避させ、これに続いて活性炭保持容器(2)の開閉扉を開けて活性炭保持容器(2)内の好気性菌が定着した活性炭を排出口(7)を介して回収する(図2(e))。
回転ボールミル(直径11cm×15cmの通気性のある円筒状容器)にビール粕の炭化物(商品名「モルトセラミックス」、粒径:3mm、比表面積:20m2/g、硬度:20、密度2.0g/m3)200gと、PGPF菌(GS8−2)を前培養したビール粕脱水ろ液150mLとを投入し、PGPF菌(GS8−2)の培養を7日間行った(25℃)。
前培養は保存用寒天斜面培地からポテトデキストロース寒天平板培地に植菌して25℃、5日間培養した寒天片(直径5mm)20片をビール粕脱水ろ液150mLに加え25℃、7日間の条件で行った。
培養は、6時間に1回、1分間(回転の速さは12回/1分間)前記容器を回転させて行った。
1L容三角フラスコにビール粕の炭化物(商品名「モルトセラミックス」、粒径:3mm、比表面積:20m2/g、硬度:20、密度2.0g/m3)200gと、PGPF菌(GS8−2)を前培養したビール粕脱水ろ液150mLとを投入し、PGPF菌(GS8−2)の培養を7日間行った(25℃)。
前培養は保存用寒天斜面培地からポテトデキストロース寒天平板培地に植菌して25℃、5日間培養した寒天片(直径5mm)20片をビール粕脱水ろ液150mLに加え25℃、7日間の条件で行った。
実施例1又は比較例1で培養した含菌モルトセラミックス10gに滅菌水90mLを加え、1時間往復振とうした(振とうは135回/1分間)。
振とう後の菌体懸濁液を用いて細胞内ATP量を定量し、含菌モルトセラミックスに定着した生菌数を評価した。
細胞内ATP量の定量はルミノメーター(ルミテスターC−100;キッコーマン(株)製)を用いて行った。結果を下記表1に示す。
実施例1又は比較例1で培養した含菌モルトセラミックスを土壌に混合し(5%(w/v))、150mL容ポットに充填して、キュウリ(品種;トキワ地這)を播種した。播種後28日目の地上部乾物重を測定して、生育促進効果を評価した。結果を下記表2に示す。
Claims (3)
- 菌体定着装置であって、
通気性を有し、回転自在に支持された、活性炭を収容するための活性炭保持容器と、
培養液を収容するための培養液容器と、
前記活性炭保持容器を前記培養液容器に収容された培養液に浸漬させた状態と、浸漬させない状態との間で切換えるための切換え手段と、
前記活性炭保持容器を回転させるための回転手段とを有する、
菌体定着装置。 - 前記活性炭保持容器及び前記培養液容器の下方に設けられた排出口を有し、
前記切換え手段が、前記培養液を前記培養液容器から流出させるように前記培養液容器を駆動するようになった、
請求項1記載の菌体定着装置。 - 前記活性炭保持容器及び前記培養液容器の下方に設けられた排出口を有し、
前記活性炭保持容器が開閉自在の活性炭排出口を備え、
前記切換え手段が、前記培養液容器を前記活性炭保持容器と前記排出口との間から移動させるようになっており、
前記回転手段は、前記活性炭保持容器の活性炭排出口が下方を向くように前記活性炭保持容器を回転させるようになった、
請求項1記載の菌体定着装置。
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