JP6868306B2

JP6868306B2 - 細胞導入剤

Info

Publication number: JP6868306B2
Application number: JP2019521531A
Authority: JP
Inventors: 敏宏赤池; 光昭後藤; 禎子関
Original assignee: BMG Inc
Current assignee: BMG Inc
Priority date: 2017-05-29
Filing date: 2017-05-29
Publication date: 2021-05-12
Anticipated expiration: 2037-05-29
Also published as: JPWO2018220665A1; WO2018220665A1; US20200140892A1

Description

本発明は、糖鎖高分子で被覆された複合体粒子を含む、細胞導入剤であって、複合体粒子が、リン酸、炭酸、及びカルシウムを含むアパタイトからなる、細胞導入剤に関する。

哺乳動物細胞へのＤＮＡの導入は遺伝子の構造、機能および制御に関する極めて有効な研究手法となっており、遺伝子治療やＤＮＡワクチンなどの分野で期待されている。従来の遺伝子導入法としては、レトロウイルス、アデノウイルスなどの組換え体を遺伝子治療用のベクターとして用いるウイルス法が一般的である。

しかし、ウイルスは、それ自体の毒性や免疫原性等の危険性が問題として指摘されている。また、適用可能な遺伝子のサイズの制限や高価格等の問題点が知られている。

このため、基礎研究や遭伝子治療への応用のために、ウイルスベクターに代わるウイルスを用いない遺伝子導入（トランスフェクション）技術の開発が現在盛んになされている。非ウイルス性遺伝子導入方法としては、ＤＮＡとカルシウムの共沈物を用いるリン酸カルシウム法、リポソーム等のカチオン性脂質とアニオン性のＤＮＡとの複合体粒子を形成するリポフェクション法等が様々な方法が知られている。

ポリヌクレオチド等の目的の物質を細胞内導入するための細胞導入剤として、リン酸カルシウム系材料からなる細胞導入が知られている（特許文献１）。

しかし、これらの細胞導入剤には、生体適合性に欠けるという欠点があった。

国際公開第２００４／０４３３７６号

本発明は、生体適合性に優れた細胞導入剤を提供する。

本発明者らは、上記課題を解決するため鋭意研究の結果、リン酸カルシウム系材料からなる複合体粒子を糖鎖高分子で被覆することによって、生体適合性を付与することができることを見出し、本発明を完成させた。

すなわち、本発明は、以下のとおりである。

本発明の細胞導入剤は、生体適合性に優れるという効果を有する。

ポリリジン−ラクトビオン酸の^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルである。１．３〜１．８ｐｐｍは、ポリリジンに由来するピーク、２．７〜４．２ｐｐｍは糖鎖に由来するピークである。ポリリジン−Ｎ−アセチルグルコサミンの^１Ｈ−ＮＭＲスペクトルである。０．３〜１．８ｐｐｍは、ポリリジンに由来するピーク、２．７〜４．２ｐｐｍは糖鎖に由来するピークである。３Ｔ３細胞と、実施例で作成したｐＥＧＦＰ−Ｎ２プラスミドを含有する各種糖鎖高分子コートの炭酸アパタイトナノ粒子と相互作用させた後、２４時間後の蛍光写真である。Ｈｅｌａ細胞と、実施例で作成したｐＥＧＦＰ−Ｎ２プラスミドを含有する各種糖鎖高分子コートの炭酸アパタイトナノ粒子と相互作用させた後、２４時間後の蛍光写真である。ＨｅｐＧ２細胞と、実施例で作成したｐＥＧＦＰ−Ｎ２プラスミドを含有する各種糖鎖高分子コートの炭酸アパタイトナノ粒子と相互作用させた後、２４時間後の蛍光写真である。３Ｔ３細胞と、実施例で作成したｐＴ２−ＲＦＰプラスミドを含有する各種糖鎖高分子コートの炭酸アパタイトナノ粒子と相互作用させた後、２４時間後の蛍光写真である。

本発明の細胞導入剤は、目的物質を極めて効率的に細胞内に導入することができる。目的物質は、限定されることはないが、薬剤、タンパク質、及びポリヌクレオチドを挙げることができる。

本発明の細胞導入剤は、糖鎖高分子で被覆された複合体粒子を含むことを特徴とする。この複合体粒子は、リン酸、炭酸、及びカルシウムを含むアパタイトからなる。

本発明の複合体粒子は、従来公知の方法によって製造することができる。たとえば、リン酸イオン及び炭酸イオンを含む溶液にカルシウムイオンを含む溶液を加えることによって、本発明のアパタイトを製造することができる。

本発明において、複合体粒子を構成するリン酸カルシウム系材料は、ＣａとＰＯ4を主要成分とする材料である。本発明においては、リン酸カルシウム系材料がアパタイト類であることが好ましい。アパタイト類としては、ハイドロキシアパタイト、炭酸アパタイト等を用いることができるが、特に炭酸アパタイトを用いることが好ましい。

本発明に好適に用いられる炭酸アパタイトは、Ｃａ_10-mＸ_m（ＰＯ₄）₆（ＣＯ₃）_1-nＹ_nで表される。ここで、Ｘは、炭酸アパタイトにおけるＣａを部分的に置換しうる元素であり、例えばＳｒ、Ｍｎ、希土類元素等を例示できる。ｍは、０以上１以下の正数であり、０以上０．１以下であることが好ましく、０以上０．０１以下であることがより好ましく、０以上０．００１以下であることが特に好ましい。また、Ｙは、炭酸アパタイトにおけるＣＯ₃を部分的に置換しうる単位であり、ＯＨ、Ｆ、Ｃｌ等を例示できる。ｎは、０以上０．１以下の正数であり、０以上０．０１以下であることが好ましく、０以上０．００１以下であることがより好ましく、０以上０．０００１以下であることが特に好ましい。

本発明の複合体粒子は、それを含む溶液に糖鎖高分子を加えることによって、糖鎖高分子によって被覆することができる。

本発明の糖鎖高分子の主鎖は、従来公知の任意の高分子であることができる。好ましくは、糖鎖高分子の主鎖は、ポリリジン、キトサン、ポリグルタミン酸又はポリエチレンイミンである。

本発明の細胞導入剤に含まれる複合体粒子の平均粒径は、５００ｎｍ以下であることが好ましく、４００ｎｍ以下がより好ましく、３００ｎｍ以下がさらに好ましく、２００ｎｍ以下が特に好ましい。複合体粒子の平均粒径が小さいほど、複合体粒子の細胞内への取り込み効率を向上させることができる。複合体粒子の平均粒径の下限については特に限定はないが、通常は１ｎｍ以上である。

本発明の糖鎖高分子に導入する糖鎖は、従来公知の任意の糖鎖を用いることができる。本発明で糖鎖とは、各種の糖がグリコシド結合によってつながりあった化合物であり、結合した等の数は、２つ以上である。本発明の糖鎖高分子に導入する糖鎖の末端は、ガラクトース、グルコース、マンノース、Ｎ−アセチルグルコサミン、Ｎ−アセチルガラクトサミン、フコース、又はシアル酸であることが好ましい。

本発明に使用可能な薬剤の具体例としては、抗癌剤および抗腫瘍抗生物質を挙げることができる。抗癌剤の具体例には、メトトレキセート（Ｍｅｔｈｏｔｒｅｘａｔｅ、抗葉酸剤）、ビンブラスチン（Ｖｉｎｂｌａｓｔｉｎｅ、ビンカアルカロイド）、アントラサイクリン（Ａｎｔｒａｃｙｃｌｉｎｅｓ；ダウノマイシン（Ｄａｕｎｏｍｙｃｉｎ）、アドリアマイシン（Ａｄｒｉａｍｙｓｉｎ））が含まれる。抗腫瘍抗生物質にはドゥオカルマイシン（Ｄｕｏｃａｒｍｙｃｉｎ）、エネダインズ（Ｅｎｅｄｉｙｎｅｓ）、ネオカルジノスタチン（Ｎｅｏｃａｒｚｉｎｏｓｔａｔｉｎ）、カリケアマイシン（Ｃａｌｉｃｈｅａｍｉｃｉｎ）、マクロライド（Ｍａｃｒｏｌｉｄｅ）を含む。このような薬剤を用いて複合体粒子を形成することにより、薬剤の細胞内導入効率を向上させることができるため、各種の疾患治療に好適に利用することができる。

ポリヌクレオチドとしては、ＤＮＡ、ＲＮＡのいずれも使用することができる他、ＤＮＡおよびＲＮＡからなる混成ポリヌクレオチド等も使用することができる。例えば、本発明の細胞導入剤を用いて遺伝子組換えを行う場合は、発現させようとする遺伝子を含むベクターＤＮＡを用いて複合体粒子を形成すればよい。ここでＤＮＡとしては、環状のプラスミドＤＮＡ、直鎖プラスミドＤＮＡ、人工染色体、三重鎖ＤＮＡなどのいかなるＤＮＡを用いてもよい。あるいは、細胞機能を調整することができるＲＮＡ、例えばアンチセンスＲＮＡ、ＲＮＡ干渉を生じさせるｓｉＲＮＡを用いて複合体粒子を形成してもよい。

本発明の細胞導入剤は前記複合体粒子を含有するものである。本発明の細胞導入剤は、目的の物質を変性させることなく細胞に導入できる限り、その剤型には特別の制限がなく、粉末、固形物、溶液等、どのような剤型であっても構わない。

本発明において、目的物質を導入する標的となる細胞としては、細菌細胞、放線菌細胞、酵母細胞、カビ細胞、植物細胞、昆虫細胞、動物細胞等の各種細胞を使用することができる。このうち、動物細胞、中でも哺乳類細胞を好ましく使用することができる。目的物質を導入する標的となる細胞は、ｉｎｖｉｔｒｏ、ｉｎｖｉｖｏのいずれも含まれる。すなわち、培養細胞、培養組織、生体などいかなる細胞を用いてもよい。

培養細胞を用いる場合は、本発明の細胞導入剤を含有する培地を調製し、この培地を用いて通常の培養条件にて培養することによって、細胞内に目的物質を導入することができる。

また、本発明の細胞導入剤を各種疾患治療のための医薬として用いる場合は、例えば、薬理活性を有する物質とリン酸カルシウム系材料から構成される複合体粒子を含む細胞導入剤を調製し、これを哺乳類動物（ヒトを含む）の皮下や筋肉内、腹腔内あるいは血管内等に投与して、生体細胞に薬理活性を有する物質を直接導入することもできる。

また、遺伝子治療のための医薬として用いる場合、細胞機能を調整することができるポリヌクレオチド（例えば、ベクターＤＮＡ、アンチセンスＲＮＡ、ＲＮＡｉ等）とリン酸カルシウム系材料から構成される複合体粒子を含む細胞導入剤を調製し、対象とする細胞への導入及び発現させることができる。遺伝子治療を行う対象となる疾患としては、例えば、癌又は遺伝病などの疾患が挙げられる。

以下、実施例に基づき、本発明についてさらに詳細に説明する。なお、本発明は下記実施例に限定されるものではない。

市販のＰＢＳ粉末（Ｇｉｂｃｏ）を濃度１０倍になるように作成し、その５０ｍｌに炭酸水素ナトリウム２．０５ｇを溶解し、ｐＨを７．４に調整した。これに、ＧＦＰの発現遺伝子を組み込んだベクター（ｐＴ２−ＧＦＰ）を１μｇ／ｍｌの濃度となるように添加して、３０分インキュベートした。その後、塩化カルシウム溶液（１Ｍ）を５．２ｍｌ添加し、３０分、３７℃でインキュベートした。その後、生理食塩水９ｍｌに上記溶液を１ｍｌ添加し、直ちにバス型ソニケーター（ＵＳ−１０ＰＳ、エスエヌディー）にて一分間超音波処理した。その後、すぐにＤＬＳ（ＭａｌｖｅｒｎゼータサイザーナノＺＳ９０及び大塚電子ＤＬＳ−１０００）で粒径を測定した。糖鎖コーティングを施す場合には、生理食塩水で希釈する際に糖鎖高分子を所定量（５．２ｍｌ）添加した。
この１０倍濃度のＰＢＳから作製した炭酸アパタイトナノ粒子の希釈前の粒径（ｎｍ）の平均値（散乱強度）は、２３４３．６±４０７１．０（ピーク１：２４７．２±１５４．９、ピーク２：７７７５．５±４３０８．１）であるのに対し、希釈後では、平均値（個数換算）８．５±２．２であった。このように高濃度で作成した炭酸アパタイトナノ粒子を希釈することにより簡便に平均粒径が、６〜１１ｎｍの炭酸アパタイトナノ粒子を作成することができた。

市販のＰＢＳ粉末（Gibco）を濃度１０倍になるように作成し、その５０ｍｌに炭酸水素ナトリウム２．０５ｇを溶解し、ｐＨを７．４に調整した。これに、ＧＦＰの発現遺伝子を組み込んだベクター（ｐＴ２−ＧＦＰ）を１μｇ／ｍｌの濃度となるように添加して、３０分インキュベートした。その後、塩化カルシウム溶液（２０ｍＭ）を５．２ｍｌ添加し、３０分、４，２０，３７℃でインキュベートした。その後、生理食塩水９ｍｌに上記溶液を１ｍｌ添加し、その後、すぐにＤＬＳ（ＭａｌｖｅｒｎゼータサイザーナノＺＳ９０及び大塚電子ＤＬＳ−１０００）で粒径を測定した。糖鎖コーティングを施す場合には、生理食塩水で希釈する際に糖鎖高分子を所定量（５．２ｍｌ）添加した。
この１０倍濃度のＰＢＳから作製した炭酸アパタイトナノ粒子の希釈前の粒径（ｎｍ）の平均値（散乱強度）は、３７℃で作製したとき個数換算で、１１７０〜１３９０ｎｍであるのに対し、２０℃では、７２．２〜１０６ｎｍ、４℃では、１０１〜１２７ｎｍであった。このことから、低温下で作製することにより、平均粒径が、７０〜１３０ｎｍの炭酸アパタイトナノ粒子を作成することができた。

市販のＤＭＥＭ５０ｍｌに炭酸水素ナトリウム１８５ｍｇ（２．２ｍｍｏｌ）を添加し、ｐＨを７．４に調整した。これに、ＧＦＰの発現遺伝子を組み込んだベクター（ｐＴ２−ＧＦＰあるいは、ｐT２―ＲＦＰ、あるいはｐＥＧＦＰ−Ｎ２）を１μｇ／ｍｌの濃度となるように添加して、３０分インキュベートした。その後、この溶液１ｍｌに塩化カルシウム溶液（１Ｍ）を５μｌ添加し、３０分、３７℃でインキュベートした。これを所定の細胞数で培養した細胞培養シャーレ（６穴シャーレ、細胞数１ｘ１０^５/ｍｌ）に１００μｌずつ添加し、一昼夜培養した後、ＧＦＰの発現量を定量化した。糖鎖コーティングを施す場合には、塩化カルシウムを添加する前に糖鎖高分子を所定量（５μｌ）添加した。結果を図３〜５に示した。
このデータから３Ｔ３細胞、Ｈｅｌａ細胞、ＨｅｐＧ２細胞のいずれにおいても、糖鎖によって細胞へのプラスミドの導入に差異が生じており、細胞内でのGFPの発光が異なっていた。特に、ラクトース、N-アセチルグルコサミンで増加、マンノースで減少となり、糖鎖間で異なることがわかる。従って、細胞での糖鎖認識とその後の炭酸アパタイトナノ粒子の取り込みが変化していることが明らかになった。

市販のＰＢＳ粉末（Gibco）を濃度１０倍になるように作成し、その５０ｍｌに炭酸水素ナトリウム２．０５ｇを溶解し、ｐＨを７．４に調整した。これに、ＧＦＰの発現遺伝子を組み込んだベクター（ｐＴ２−ＧＦＰ）を１μｇ／ｍｌの濃度となるように添加して、３０分インキュベートした。その後、塩化カルシウム溶液（１Ｍ）を５．２ｍｌ添加し、３０分、３７℃でインキュベートした。その後、純水９ｍｌに上記溶液を１ｍｌ添加し、直ちにバス型ソニケーター（US-10PS、エスエヌディー）にて一分間超音波処理した。その後、すぐにＤＬＳ（ＭａｌｖｅｒｎゼータサイザーナノＺＳ９０及び大塚電子ＤＬＳ−１０００）で粒径を測定した。糖鎖コーティングを施す場合には、純水で希釈する際に糖鎖高分子を所定量（５．２ｍｌ）添加した。

市販のＰＢＳ粉末（Ｇｉｂｃｏ）を濃度１０倍になるように作成し、その５０ｍｌに炭酸水素ナトリウム２．０５ｇを溶解し、ｐＨを７．４に調整した。これに、ＧＦＰの発現遺伝子を組み込んだベクター（ｐＴ２−ＧＦＰ）を１μｇ／ｍｌの濃度となるように添加して、３０分インキュベートした。その後、塩化カルシウム溶液（２０ｍＭ）を５．２ｍｌ添加し、３０分、３７℃でインキュベートした。その後、純水９ｍｌに上記溶液を１ｍｌ添加し、直ちにバス型ソニケーター（ＵＳ−１０ＰＳ、エスエヌディー）にて１０分間超音波処理した。その後、調製した溶液５ｍｌとＰＬｙｓ−ＬＡ（０．０００１、０．００１、０．００５、及び０．０１％）５ｍｌとを混合し、経時変化（０、５、１０、及び１５分後）を、ＤＬＳ（ＭａｌｖｅｒｎゼータサイザーナノＺＳ９０及び大塚電子ＤＬＳ−１０００）で粒径を測定した。その結果、ポリマー濃度が０．００５％以上では、平均粒径が２０ｎｍ以下の炭酸アパタイトナノ粒子が作製できた（表１）。また、この粒径は他のポリマーを用いても同様の結果を得た。

市販のＰＢＳ粉末（Ｇｉｂｃｏ）を濃度１０倍になるように作成し、その５０ｍｌに炭酸水素ナトリウム２．０５ｇを溶解し、ｐＨを７．４に調整した。これに、ＧＦＰの発現遺伝子を組み込んだベクター（ｐＴ２−ＧＦＰ）を１μｇ／ｍｌの濃度となるように添加して、３０分インキュベートした。その後、塩化カルシウム溶液（２０ｍＭ）を５．２ｍｌ添加し、３０分、３７℃でインキュベートした。その後、純水９ｍｌに上記溶液を１ｍｌ添加し、直ちにバス型ソニケーター（ＵＳ−１０ＰＳ、エスエヌディー）にて１０分間超音波処理した。その後、経時変化（０、５、１０、３０、及び３５分後）を、ＤＬＳ（ＭａｌｖｅｒｎゼータサイザーナノＺＳ９０及び大塚電子ＤＬＳ−１０００）で粒径を測定した。糖鎖コーティングを施す場合には、調製した溶液５ｍｌとＰＬｙｓ−ＬＡ（０．００５％）５ｍｌとを混合し、経時変化（１５、２０、２５、４５及び５０分後）を、ＤＬＳ（ＭａｌｖｅｒｎゼータサイザーナノＺＳ９０及び大塚電子ＤＬＳ−１０００）で粒径を測定した。その結果、

市販のＤＭＥＭ５０ｍｌに炭酸水素ナトリウム１８５ｍｇ（２．２ｍｍｏｌ）を添加し、ｐＨを７．４に調整した。これに、ＧＦＰの発現遺伝子を組み込んだベクター（ｐＴ２−ＲＦＰ）を１μｇ／ｍｌの濃度となるように添加して、３０分インキュベートした。その後、この溶液１ｍｌに塩化カルシウム溶液（２０ｍＭ）を５μｌ添加し、３０分、３７℃でインキュベートした。これを所定の細胞数で培養した細胞培養シャーレ（６穴シャーレ、細胞数１ｘ１０^５/ｍｌ）に１００μｌずつ添加し、一昼夜培養した後、ＲＦＰの発現量を定量化した。糖鎖コーティングを施す場合には、塩化カルシウムを添加前か、又は塩化カルシウムを添加後３０分間インキュベーション前に糖鎖高分子を所定量（５μｌ）添加した。また、同様にマンノース−６−リン酸等のリン酸化糖を２．２ｍＭの濃度でコーティングした。

２０ｍＭＣａを添加した後にＰｌｙｓ−糖コートすると３００〜６００ｎｍのアパタイトが形成されるが、２０ｍＭＣａを添加する前にＰＬｙｓ−糖コートを実施すると３０〜５０ｎｍのアパタイトが形成された。

図６からは、糖鎖認識に応じて３T３細胞への取り込みが変化し、炭酸アパタイトナノ粒子に糖鎖がコーティングされ取り込まれていることがわかる。同様にマンノース−６−リン酸コート炭酸アパタイトナノ粒子も糖鎖認識され細胞に取り込まれている。

各種分子量のポリ−Ｌ−リジン１ｇ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）を１０ｍｌのＴＥＭＥＤバッファー（１０ｍＭ、ｐＨ４．０）に溶解し水溶液とした。これにラクトビオン酸５００ｍｇを、添加した後、３０分間撹拌した後、ＥＤＣの５００ｍｇ（東京化成）を添加した。その後、３日間撹拌、反応させた。得られた糖鎖高分子は、純水６０Ｌに対して透析したのち、凍結乾燥を行って、目的物を得た。
この合成は、公開番号、特開平７−９００８０の方法に従って行った。

糖鎖は、ガラクトース、グルコース、マンノース、Ｎ−アセチルグルコサミン、Ｎ−アセチルガラクトサミンの２量体や誘導体を用いて、上記同様にして合成し、目的物を得た。

各種分子量のポリ−Ｌ−リジン１ｇ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）を１０ｍｌのホウ酸バッファー（１００ｍＭ、ｐＨ８．０）に溶解し水溶液とした。これにラクトビオン酸２００ｍｇを、添加した後、２日間撹拌した後、シアノ化ホウ素ナトリウムの２００ｍｇ（和光）を添加した。その後、３日間撹拌、反応させた。得られた糖鎖高分子は、純水６０Ｌに対して透析したのち、凍結乾燥を行って、目的物を得た（図１及び２）。

各種分子量のポリエチレンイミン１ｇ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）を１０ｍｌのホウ酸バッファー（１００ｍＭ、ｐＨ８．０）に溶解し水溶液とした。これにラクトビオン酸２００ｍｇを、添加した後、２日間撹拌した後、シアノ化ホウ素ナトリウムの２００ｍｇ（和光）を添加した。その後、３日間撹拌、反応させた。得られた糖鎖高分子は、純水６０Ｌに対して透析したのち、凍結乾燥を行って、目的物を得た。

各種分子量のキトサン１ｇ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）を１０ｍｌのＴＥＭＥＤバッファー（１０ｍＭ、ｐＨ４．０）に溶解し水溶液とした。これにラクトビオン酸５００ｍｇを、添加した後、３０分間撹拌した後、ＥＤＣの５００ｍｇ（東京化成）を添加した。その後、３日間撹拌、反応させた。得られた糖鎖高分子は、純水６０Ｌに対して透析したのち、凍結乾燥を行って、目的物を得た。

ＰＢＳ５０ｍｌに炭酸水素ナトリウム０．１８５ｇを加えてｐＨ７．４に調整した。これに、ポリリジン−ＬＡ（ラクトース結合ポリリジン）を最終濃度０．０１、０．００１、０．０００１ｗ／ｖ％となるように添加した後、塩化カルシウム溶液を所定量添加して、直ちにバス型ソニケーター（US-10PS、エスエヌディー）にて一分間超音波処理した。その後、すぐにＤＬＳ（ＭａｌｖｅｒｎゼータサイザーナノＺＳ９０及び大塚電子ＤＬＳ−１０００）で粒径を測定した。

本発明の細胞導入剤は、目的の物質を細胞内に導入するために有用である。

Claims

リン酸、炭酸、及びカルシウムを含むアパタイトからなる複合体粒子の製造方法であって、該複合体粒子の平均粒径が、１０ｎｍ以下であり、
カルシウムイオン、リン酸イオン、及び炭酸水素イオンを含有する組成物を調製することにより、前記複合体粒子を形成する工程であって、リン酸イオンが１０倍濃度のＰＢＳである工程、そして
得られた複合体粒子を１／１０に希釈する工程
を含む、複合体粒子の製造方法。
リン酸、炭酸、及びカルシウムを含むアパタイトからなる複合体粒子の製造方法であって、該複合体粒子の平均粒径が、７０〜１３０ｎｍであり、
カルシウムイオン、リン酸イオン、及び炭酸水素イオンを含有する組成物を調製することにより、前記複合体粒子を形成する工程であって、リン酸イオンが１０倍濃度のＰＢＳであり、該工程が、４℃〜２０℃で行われる工程
を含む、複合体粒子の製造方法。