JP7519082B2

JP7519082B2 - 抗菌剤、口腔用組成物、洗口剤、歯磨き剤、及び、医薬又は医薬部外品

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Publication date: 2024-07-19
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Description

本発明は虫歯菌ストレプトコッカス・ミュータンス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｍｕｔａｎｓ）に対する抗菌剤およびその用途などに関する。

現在、口腔細菌学という研究分野の中で、口腔の病原細菌が原因とされる二大疾患として、虫歯（う蝕）と歯周病が問題視されている。
また、細菌そのもの以外に歯周病菌の巣で生産された菌体成分、毒素、酵素などが生体に害を及ぼすとして、口腔内の細菌の中でも、特に、歯周病細菌と全身疾患（動脈硬化、脳梗塞、虚血性心疾患、糖尿病、アルツハイマー病、骨粗鬆症など）との関わりが注目されている。

歯を失う原因のほとんどが虫歯と歯周病であるが、まだこれらの疾患を確実に予防する方法は見つかっていない。虫歯や歯周病は、歯垢、糖、唾液、ｐＨなどの各種要因が重なって発症する疾患であるが、近年の研究により、虫歯と歯周病はそれぞれ虫歯菌と歯周病菌などの細菌が原因となって引き起こされる感染症であることが明かとなっており、虫歯はストレプトコッカス・ミュータンス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｍｕｔａｎｓ）（以下、Ｓ．ｍｕｔａｎｓ）が、歯周病はトレポネーマ・デンティコーラ（Ｔｒｅｐｏｎｅｍａｄｅｎｔｉｃｏｌａ）、ポルフィロモナス・ジンジバリス（Ｐｏｒｐｈｙｒｏｍｏｎａｓｇｉｎｇｉｖａｌｉｓ）、タネレラ・フォーサイシア（Ｔａｎｎｅｒｅｌｌａｆｏｒｓｙｔｈｉａ）およびスピロヘータなどが原因菌として知られている。
虫歯とは、口の中に生息するＳ．ｍｕｔａｎｓという細菌によって歯が溶かされていく病気のことで、成人日本人の８割以上に、少なくとも一本は虫歯があるといわれている。虫歯は、歯の表面のエナメル質が虫歯の直接の原因となるＳ．ｍｕｔａｎｓが産生する乳酸によって侵されることで進行が始まる。具体的には、まず、Ｓ．ｍｕｔａｎｓが産生する菌体結合型の非水溶性グルカン合成酵素グルコシルトランスフェラーゼによってショ糖から非水溶性グルカンとよばれる粘着性物質が産生され、この粘着性物質にさらに虫歯菌をはじめとする種々の細菌が付着増殖することによって多量の歯垢が形成される。歯垢１グラム（湿重量）中には約１０^８個の多種類の細菌が存在し、これらの細菌は互いに自然の平衡を保っているが、この種々の細菌の比率は、歯垢の成熟の度合いによって変化する。すなわち、ごく初期の歯垢は大部分がグラム陽性の球菌Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ、桿菌Ｎｏｃａｒｄｉａであるが、時間の経過とともに糸状菌Ａｃｔｉｎｏｍｙｃｅｓ、桿菌ならびにスピロヘータなどが増加し、グラム陰性嫌気性菌が多くなってくる。そして、前述の非水溶性グルカンとよばれる粘着性物質が歯に歯垢を付着させ、Ｓ．ｍｕｔａｎｓやそのほかの細菌の温床（バイオフィルム）を作ることになる。
口腔内のバイオフィルムはデンタルプラークとも呼ばれ、消毒剤が深部まで届きにくく、内部にいくほど嫌気度が高いといった特徴があり、病原細菌の温床となっている。そして、Ｓ．ｍｕｔａｎｓによって作られた乳酸が歯の外側のエナメル質を溶かし、このとき、歯の表面が乳白色や薄茶色になる。さらに、歯の外側のエナメル質を溶かしつくし、内側の象牙質をも溶かし始めることになる。この段階では、虫歯になった部分は黒くなり、虫歯になっていくことになる。冷たいものや熱いものがしみたり、痛みを感じたりするのもこの時期で、痛みを感じたときには、外側のエナメル質は溶かされてしまった後なので、既に手遅れになってしまう。
そして最後には、エナメル質や象牙質はボロボロに侵され、歯には黒い穴が開き、Ｓ．ｍｕｔａｎｓは歯髄にまで達して歯随炎を引き起こす。この後、Ｓ．ｍｕｔａｎｓが歯根にまで達すると、もう歯には根本が残されているだけで、もはや形はなくなる。このように、虫歯とは、放っておくと歯が全部なくなってしまいかねない、あなどれない歯の病気である。

この虫歯の予防のために最も重要なことは、口腔内のＳ．ｍｕｔａｎｓを減らすか殺菌することである。前者のＳ．ｍｕｔａｎｓを減らす方法としては、各種の抗菌剤によるＳ．ｍｕｔａｎｓの生育阻害や生育抑制が中心であった。具体的には、抗菌性を有する様々な化学合成化合物（特開２０１３－０１４５２１号公報を参照）や天然物の抽出物（特開２００６－０４５１２１号公報を参照）を用いた事例などが数多く開示されている。

加えて、Ｓ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果に関しての記載はないものの食酢の主成分である酢酸が有する食中毒菌に対する強力な生育阻害効果についても公開されている（非特許文献１および２を参照）。

一方、後者のＳ．ｍｕｔａｎｓを殺菌する方法としては、ソフォラフラバノンＧ－５－メチルエーテルなどの殺菌剤を用いる事例（特開２００５－１７０８８５号公報を参照）などが数多く開示されているが、いずれの場合もこれらの化学合成化合物については副作用の危険性があり得ることから、近年はこれら化学合成化合物を使用しない様々な方法が開示されている。例えば、ハイドロキシアパタイト微粉末を水溶性セルロース溶液に配合して歯面上にハイドロキシアパタイト微粉末を長く滞留させる方法（特開平１０－５９８１４号公報を参照）などである。ただ、ハイドロキシアパタイトは菌の吸着により除菌するものであり、虫歯菌の増殖自体を防ぐことができないことや、Ｓ．ｍｕｔａｎｓによる非水溶性グルカンの生成を抑制する効果を持たないため、除菌により残ったＳ．ｍｕｔａｎｓの再増殖やこの再増殖したＳ．ｍｕｔａｎｓによる非水溶性グルカンの生成が起こることになり、完全な虫歯予防とはならないのが現状であった。

これらの抗菌剤を用いる方法においては、その抗菌剤の有効濃度としては、１００μｇ／ｍＬ以上を要するものがほとんどであり、安全性の面からもより低濃度で抗菌効果が期待できる抗菌剤の開発が望まれていた。

これら以外にも、乳酸菌のプロバイオティクス効果を活用してＳ．ｍｕｔａｎｓを除菌する方法として、数多くの虫歯予防の口腔用組成物（特開２００５－２９８３４６号公報および非特許文献３を参照）や乳酸菌や乳酸菌発酵液を含有したプラーク除去効果と殺菌活性に優れた口腔用組成物、ビフィズス菌、乳酸菌や酪酸菌に属する菌とこれらの菌が資化しうる糖類を含有した虫歯予防剤や治療剤なども開示されている。

ところで、これらの乳酸菌やビフィズス菌は、Ｓ．ｍｕｔａｎｓの増殖抑制や歯垢の原因となる非水溶性グルカンの生成を抑制する効果により、虫歯予防組成物としてある程度の効果を有しているが、Ｓ．ｍｕｔａｎｓを除菌する効果は無く、虫歯予防に対してそれほど大きな効果は期待できないのが現状であった。

また、虫歯予防性栄養甘味料を用いる方法についても、各種の方法（特開昭５２－０９６７７５号公報を参照）が開示されている。さらに、キシリトールを用いる方法についても、各種の方法（特開２００１－１７８３９５号公報、非特許文献４～１１などを参照）が開示されているが、日常の食生活では発酵性糖類を摂取せざるを得ないことから、これらの方法はいずれも短期的な効果しか期待できない限定的なものであった。

Ｓ．ｍｕｔａｎｓの温床となるバイオフィルム形成に対する阻害剤を用いる方法も、セロトニン（特開２０１５－０１００７６号公報を参照）を用いる方法などが開示されているが、いずれも十分な虫歯予防を実現できるレベルにはなかった。

以上のように、天然由来の安全な抗菌剤の開発が望まれているが、いまだ十分な検討には至っていないのが現状であった。

特開２０１３－０１４５２１号公報特開２００６－０４５１２１号公報特開２００５－１７０８８５号公報特開平１０－５９８１４号公報特開２００５－２９８３４６号公報特開昭５２－０９６７７５号公報特開２００１－１７８３９５号公報特開２０１５－０１００７６号公報

円谷悦造，浅井美都，▲辻▼畑茂朝，塚本義則，大田美智男．感染症学雑誌，７１：４４３－４５０（１９９７）円谷悦造，浅井美都，▲辻▼畑茂朝，塚本義則，大田美智男．感染症学雑誌，７１：４５１－４５８（１９９７）Ｋ．Ｍ．Ｓａｌｌｉｅｔａｌ．Ａｒｃｈ．ＯｒａｌＢｉｏｌ．，７０：３９－４６（２０１６）Ｓ．Ａｓｓｅｖｅｔａｌ．Ａｃｔａ．Ｐａｔｈｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｓｃａｎｄ．Ｂ．，９４：９７－１０２（１９８６）Ｓ．Ａｓｓｅｖｅｔａｌ．Ａｃｔａ．Ｐａｔｈｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｓｃａｎｄ．Ｂ．，９１：２６１－２６５（１９８３）Ｈ．Ｋａｋｕｔａｅｔａｌ．ＣａｒｉｅｓＲｅｓ．，３７：４０４－４０９（２００３）Ｅ．Ｍ．Ｓ▲ｏ▼ｄｅｒｌｉｎｇｅｔａｌ．ＣｕｒｒｅｎｔＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，５６：３８２－３８５（２００８）Ｒａｄｍｅｒｉｋｈｉ，Ｓｅｔａｌ．ＪｏｕｒｎａｌｏｆＲｅｓｔｏｒａｔｉｖｅＤｎｔｉｓｔｒｙ，１：９５－９８（２０１３）Ｄｅｃｋｅｒ，Ｅ－Ｍｅｔａｌ．ＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌＪｏｕｒｎａｌｏｆＯｒａｌＳｃｉｅｎｃｅ，６：１９５－２０４（２０１４）Ｅｌ－Ｓｈｅｒｂｉｎｙ，ＧＭ．Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃｕｒｒ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ａｐｐ．Ｓｃｉ．，３：１－１０（２０１４）Ｎａｙａｋ，ＰＡｅｔａｌ．Ｃｌｉｎｉｃａｌ，ＣｏｓｍｅｔｉｃａｎｄＩｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎａｌＤｅｎｔｉｓｔｒｙ．６：８９－９４（２０１４）古賀泰裕．食品工業，４５：７４－７９（２００２）

本発明の課題は、Ｓ．ｍｕｔａｎｓに対して極微量で効果が発揮され、かつ細胞毒性がなく人体への影響がない安全性の高い抗菌剤およびその用途を提供することを課題とする。

本発明者等は、上記課題を解決すべく鋭意研究を重ね、イソフラボン資化性微生物Ｎｏ．４４－３菌株（以下、イソフラボン資化性微生物）の乾燥菌体の脂質抽出物からカラムクロマトグラフィーと薄層クロマトグラフィー（以下、ＴＬＣ）による単離と精製によって得られた化合物が、Ｓ．ｍｕｔａｎｓに対して非常に高い生育阻害効果を有することを見いだし、ガスクロマトグラフィー／マススペクトロメトリー分析（以下、ＧＣ／ＭＳ分析）によって当該化合物の化学構造を推定するととともに、これを有効成分とするＳ．ｍｕｔａｎｓの生育阻害のための抗菌剤および当該抗菌剤を含有する口腔内組成物として本発明を完成するに至った。

本発明によれば、極微量で虫歯の予防及び治療に有効で、かつ人体への影響がない安全性が高いＳ．ｍｕｔａｎｓに対する抗菌剤および口腔用組成物が提供される。

微生物乾燥菌体からの脂質成分抽出のプロトコールＳ．ｍｕｔａｎｓの生育に対するＤＭＳＯ濃度の影響イソフラボン資化性微生物Ｎｏ．４４－３株菌体由来の脂質抽出物のＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果イソフラボン資化性微生物Ｎｏ．４４－３株菌体由来の脂質抽出物のシリカゲルカラムクロマトグラフィーシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより得られたフラクション（ＩＦ－１～ＩＦ－１６）のＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果シリカゲルカラムクロマトグラフィーにより得られたフラクション（ＩＦ－１７～ＩＦ－２９）のＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果ＩＦ６フラクションのＴＬＣかきとり画分のＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果ＩＦ１１フラクションのＴＬＣかきとり画分のＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果ＩＦ６－２画分のＴＬＣかきとり画分のＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果ＩＦ１１－２画分のＴＬＣかきとり画分のＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果ＩＦ６－２－Ｃの濃度とＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果ＩＦ１１－２－Ｂの濃度とＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果ＩＦ６－２－Ａ、ＩＦ６－２－ＢおよびＩＦ６－２－Ｃのトリメチルシリル化物から検出された成分１（グリセロールのトリメチルシリル化物）の質量スペクトルＩＦ６－２－Ａ、ＩＦ６－２－ＢおよびＩＦ６－２－Ｃのメチル化物から検出された成分２（パルミチン酸メチル）の質量スペクトルＩＦ６－２－Ａ、ＩＦ６－２－ＢおよびＩＦ６－２－Ｃのメチル化物から検出された成分３（ステアリン酸メチル）の質量スペクトルＩＦ１１－２－Ａ、ＩＦ１１－２－ＢおよびＩＦ１１－２－Ｃのメチル化物から検出された成分４（デヒドロアビエチン酸メチル）の質量スペクトルＩＦ６－２－Ａ、ＩＦ６－２－ＢおよびＩＦ６－２－Ｃの推定化学構造ＩＦ１１－２－Ａ、ＩＦ１１－２－ＢおよびＩＦ１１－２－Ｃの推定化学構造

本発明における虫歯菌ストレプトコッカス・ミュータンスに有効な抗菌剤の有効成分は、式（１）の化合物、または式（１）の化合物を１以上含む物質の混合物である。

［式中のＲ ^１、Ｒ ^２、Ｒ ^３は以下の（ｅ）～（ｈ）のいずれかの条件を満たす。

（ｅ）Ｒ ^１がパルミチン酸残基であり、Ｒ ^２がステアリン酸残基であり、Ｒ ^３がデヒドロアビエチン酸残基である；
（ｆ）Ｒ ^１がステアリン酸残基であり、Ｒ ^２がパルミチン酸残基であり、Ｒ ^３がデヒドロアビエチン酸残基である；
（ｇ）Ｒ ^１がパルミチン酸残基であり、Ｒ ^２がデヒドロアビエチン酸残基であり、Ｒ ^３がステアリン酸残基である；
（ｈ）Ｒ ^１がステアリン酸残基であり、Ｒ ^２がデヒドロアビエチン酸残基であり、Ｒ ^３がパルミチン酸残基である］
以下、本発明を詳細に説明する。

本発明の抗菌剤の有効成分である式（１）で表わされる化合物（以下、本化合物）は、イソフラボン資化性微生物（ＢａｃｉｌｌｕｓｓｕｂｔｉｌｉｓないしはＢ．ｍｅｔｈｙｌｔｒｏｐｈｉｃｕｓに属する安全性の高い細菌）の乾燥菌体より以下に述べる方法で得ることができる。

まず、原料となるイソフラボン資化性微生物は、適切な栄養源を含む滅菌平面寒天培地を用いて３０℃で４８間培養した後、平面寒天培地の表面に生育した当該微生物菌体をかきとって凍結乾燥などの乾燥法によって乾燥菌体を得る。次に、この乾燥菌体をクロロホルム／メタノール／水系で超音波処理をすることで脂質成分を抽出し、このクロロホルム層から減圧濃縮で得られた本化合物を含む脂質抽出物の乾燥物を１％（ｗ／ｖ）濃度になるようにジメチルスルホキシド（以下、ＤＭＳＯ）に溶解し、Ｓ．ｍｕｔａｎｓの生育阻害試験に供した。また、本化合物はイソフラボン資化性微生物より得られた当該脂質抽出物のシリカゲルなどの吸着カラムクロマトグラフィーおよびＴＬＣにより単離と精製され、最終的にこの精製された本化合物を前記のＳ．ｍｕｔａｎｓの生育阻害試験とともにＧＣ／ＭＳ分析による構造解析に供した。

イソフラボン資化性微生物菌体からの脂質の抽出方法としては、一般に用いられる方法でよく、例えば、有機溶媒中に原料イソフラボン資化性微生物の乾燥菌体を長時間浸漬する方法、有機溶媒の沸点以下の温度で加温、撹拌しながら抽出を行い、ろ過して抽出物を得る方法などがある。
抽出工程に使用する有機溶媒としては、酢酸メチル、酢酸エチル、酢酸ブチルなどの低級脂肪酸エステル類、またはメタノール、エタノール、イソプロパノールなどの低級アルコール類、またはメチルエーテル、エチルエーテル、テトラヒドロフラン、ジオキサンなどのエーテル類、またはアセトン、メチルエチルケトンなどのケトン類などが挙げられ、これらの有機溶媒の混合溶媒も用いることができる。

精製工程に使用するカラムクロマトグラフィーとしては、セライト、フロリジル、シリカゲルなどの吸着クロマトグラフィーおよびＯＤＳなどの逆相クロマトグラフィーを用いることができる。シリカゲルカラムクロマトグラフィーでは、シリカゲルを充填したカラムを用いて抽出物を吸着させ、クロロホルムとメタノールの混液などで目的の化合物を溶出して分離する。ここで用いる溶媒はヘキサン、ベンゼン、トルエン、エチルエーテル、酢酸エチル、アセトン、ジクロロメタン、クロロホルム、メタノール、エタノール、イソプロパノールなどを単独または混合して用いることができる。

前記の方法により得られた本化合物の生育阻害効果については、培養器として９６ウェルのマイクロプレートを用いて、Ｓ．ｍｕｔａｎｓの生育用の培地にＤＭＳＯに溶解した本化合物とＳ．ｍｕｔａｎｓの種培養液を接種して培養を行い、この培養液の濁度をマイクロプレートリーダーにより波長５７０ｎｍの吸光度として測定し、本化合物の代わりにＤＭＳＯのみとＳ．ｍｕｔａｎｓの種培養液を接種して培養を行った対照区の培養液の吸光度と比較することで容易に評価することができる。

本発明においては、本化合物は前記のイソフラボン資化性微生物の乾燥菌体からの製造法以外に、グリセロールとパルミチン酸およびステアリン酸を原料とした酵素合成法や化学合成法によっても得ることができる。この場合は、グリセロールと脂肪酸から位置選択的に脂肪酸をエステル化することができる酵素リパーゼを用いた酵素合成法を利用することが望ましい。使用する酵素としては、植物、動物、微生物起源の各種のリパーゼ、エステラーゼなどが挙げられ、市販品が好適に利用される。酵素合成法としては、微生物起源のアルカリ性リパーゼを用いる方法（特開昭６１－２６８１９２号公報を参照）やカンジダ（Ｃａｎｄｉｄａ）由来のリパーゼを用いる方法（非特許文献１２を参照）などが挙げられる。また、生成したグリセロールの脂肪酸エステル（アシルグリセロール）は、前記したようにシリカゲルクロマトグラフィーやＨＰＬＣなどにより精製することができる。

本化合物は、安全性の高い抗菌性成分として医薬、医薬部外品、食品添加物、動物薬、動物飼料添加物などに広く利用でき、特に、虫歯の予防剤および治療剤として有用である。具体的には、練り歯磨き、洗口剤（マウスウォッシュ）、医薬および医薬部外品に配合して利用することができる。

本化合物を含有させた抗菌剤の使用態様・剤型については、特に限定されることはなく、例えば、固形状、粉状、液状、ペースト状、粉末、スプレー剤、ムース剤、錠剤など、用途に応じて多岐にわたって選択され、これらへの製剤化は常套的な方法により行われ得る。

本発明の抗菌剤中における有効成分の含有量は、その使用態様・剤型により適宜変更しうるが、例えば、有効成分を０．０００００２～２０重量％、好ましくは０．００００２～１０重量％程度含有させることが例示可能である。

本発明の抗菌剤、ならびに虫歯の予防剤および／または治療剤の形態は、特に制限されないが、例えば、口腔用組成物とすることができる。

医薬および医薬部外品を調製する場合は、通常、前記有効成分と好ましくは薬学的に許容される担体を含む製剤として調製する。薬学的に許容される担体とは、一般的に、前記有効成分とは反応しない、不活性の、無毒の、固体または液体の、増量剤、希釈剤またはカプセル化材料などをいい、例えば、水、エタノール、ポリオール（例えば、グリセロール、プロピレングリコール、液体ポリエチレングリコールなど）、適切なそれらの混合物、植物性油などの溶媒または分散媒体などが挙げられる。

本発明の抗菌剤によってその生育が阻害され、殺菌されうる微生物としては、虫歯菌である、ストレプトコッカス・ミュータンス（Ｓ．ｍｕｔａｎｓ）を挙げることができる。

以下、試験例を挙げて本発明について更に詳細に説明するが、本発明はこれらによって何ら制限されるものではない。

試験例１

本試験例は本発明の有効成分の虫歯の原因とされるＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果を調べるために、次に示す試験方法（供試菌株、種培養液の調製、供試試料の調製、生育阻害試験）により実施した。

（１）供試菌株
虫歯の原因とされるＳ．ｍｕｔａｎｓの被験菌としては理研ＪＣＭより分譲されたＳ．ｍｕｔａｎｓ（ＪＣＭＳ．ｍｕｔａｎｓＣｌａｒｋｅ１９２４）を用いた。まず、滅菌したＬＢ培地（細菌用富栄養培地）の平面寒天培地を作製し、そこに上記の分譲されたＳ．ｍｕｔａｎｓの懸濁液を無菌的に１００μＬ塗布した後、３０℃で４８時間培養して形成されたコロニーを単分離してトリプティックソイ培地（以下、ＴＳＢ培地）の液体培地に移植して３０℃で４８時間培養後、このＳ．ｍｕｔａｎｓの培養液１容量と滅菌グリセロール１容量をよく混合したものを液体窒素中で瞬時に凍結してディープフリーザー（－８１℃）に保存した。

（２）種培養液の調製
Ｓ．ｍｕｔａｎｓの生育阻害試験用の種培養液の調製には、蒸留水１００ｍＬに対してＴＳＢ培地を２％（ｗ／ｖ）濃度とフルクトースを５％（ｗ／ｖ）濃度含有する滅菌液体培地（以下、ＴＳＢ液体培地）を用い、このＴＳＢ液体培地１０ｍＬに対して前記の－８１℃で凍結保存されたＳ．ｍｕｔａｎｓの凍結融解液を１００μＬ接種した後、３０℃で４８時間培養したものを種培養液として生育阻害試験用の本培養に用いた。

（３）供試試料の調製
供試試料としては、イソフラボン資化性微生物由来の脂質抽出物を調製した。まず、ペプトンと酵母エキスをそれぞれ１％（ｗ／ｖ）含有する滅菌平面寒天培地（以下、１％（ｗ／ｖ）ペプトン－１％（ｗ／ｖ）酵母エキス平面寒天培地）に前記の予めディープフリーザー（－８１℃）で保存されたイソフラボン資化性微生物の凍結融解液１００μＬを塗布した後、３０℃で４８時間培養した。これにより得られた平面寒天培地の表面の菌体を薬さじでかきとり、蒸留水に懸濁した後、この懸濁液を凍結乾燥処理した。このようにして得られた菌体の凍結乾燥物に対して、図１に示す微生物乾燥菌体からの脂質成分抽出プロトコールに従ってイソフラボン資化性微生物由来の脂質物質を含有する三つの下層（クロロホルム層）を得た。次に、これら三つのクロロホルム層を全て集めて分液ロートで分離し、分離されたクロロホルム層はロータリーエバポレーターを用いて４０℃で減圧蒸留して乾燥物を得た。続いて、この乾燥物が１％（ｗ／ｖ）濃度になるようにＤＭＳＯに溶解したものを生育阻害試験用の供試試料とした。

（３）生育阻害試験
Ｓ．ｍｕｔａｎｓの生育阻害試験はいずれもｎ＝３以上で行われ、ポジティブコントロール区としては、０．１％（ｗ／ｖ）濃度でほぼ全ての食品腐敗細菌や食中毒細菌の生育を完全に阻止できる強力な抗菌物質である酢酸（非特許文献１および２を参照）および／またはＳ．ｍｕｔａｎｓに対して生育阻害効果を有するキシリトールをそれぞれ０．１％（ｗ／ｖ）濃度で用いた。Ｓ．ｍｕｔａｎｓの生育阻害試験は９６ウェルのマイクロプレートを用いて滅菌ＴＳＢ液体培地９８μＬと前述のＳ．ｍｕｔａｎｓの種培養液１００μＬの合計１９８μＬに対して前述で調製されたそれぞれの生育阻害試験用の供試試料（有効成分の乾燥物を１％（ｗ／ｖ）濃度含有するＤＭＳＯ溶液）２μＬを加えてよく混合した。次に、この混合液については、マイクロプレートリーダ（ＩｎｆｉｎｉｔｅＦ５０）を用いて波長５７０ｎｍで初発の吸光度を測定した後、９６ウェルのマイクロプレートを３０℃で２４時間培養したものについて、同様に波長５７０ｎｍで吸光度を測定して対照区（ＤＭＳＯ１％添加区）の吸光度と比較してＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果について有意差検定（ｓｔｕｄｅｎｔ－ｔ、両側検定２、非等分散３）を行い、ｐ＜０．０５、ｐ＜０．０１およびｐ＜０．００１の有意差が認められたものを有意差ありと判定した。

この生育阻害試験では、生育阻害試験用のイソフラボン資化性微生物由来の脂質抽出物の供試試料（微生物由来の脂質抽出物の乾燥物を１％（ｗ／ｖ）濃度含有するＤＭＳＯ溶液）２μＬが新鮮ＴＳＢ培地９８μＬと種培養液１００μＬの合計１９８μＬに添加される。よって、対照区は生育阻害試験用の脂質粗抽出物の供試試料の代わりに２μＬを新鮮ＴＳＢ培地９８μＬとＳ．ｍｕｔａｎｓの種培養液１００μＬからなる合計１９８μＬに添加されることからそのＤＭＳＯは１％（ｗ／ｖ）濃度になる。そこで、ＤＭＳＯ自体のＳ．ｍｕｔａｎｓの生育に対する影響の有無について調べるべく、予備実験を行った結果、図２に示す通り、ＤＭＳＯ無添加区に対してＤＭＳＯの２％（ｗ／ｖ）溶液でも生育に対して有意差は認められないことが確認された。
イソフラボン資化性微生物の乾燥菌体由来の脂質抽出物の乾燥物を１％（ｗ／ｖ）濃度含有するＤＭＳＯ溶液２μＬを新鮮ＴＳＢ培地９８μＬとＳ．ｍｕｔａｎｓの種培養液１００μＬからなる合計１９８μＬに添加した試験区と前記供試試料の代わりにＤＭＳＯを２μＬ添加した対照区を３０℃で２４時間培養した培養液についてその濁度を波長５７０ｎｍの吸光度として測定して、この両者について有意差検定を行ってＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果を調べた結果、図３に示す通り試験区において対照区と比較してｐ＜０．００１の有意差を持って生育阻害効果が認められた。

試験例２

本試験例は前記のイソフラボン資化性微生物由来の脂質抽出物中のＳ．ｍｕｔａｎｓの生育阻害効果を有する有効成分の単離と精製を行うために、次に示す試験方法（微生物菌体の大量培養と脂質抽出物の調製、カラムクロマトグラフィーによる有効成分の分画、薄層クロマトグラフィーによる有効成分の分画、有効成分の濃度と生育阻害効果）により実施した。

（１）イソフラボン資化性微生物菌体の大量培養と脂質抽出物の調製
Ｓ．ｍｕｔａｎｓに対して有効な生育阻害効果が認められたイソフラボン資化性微生物については、滅菌処理された１％（ｗ／ｖ）ペプトン－１％（ｗ／ｖ）酵母エキス平面寒天培地１００枚（２０ｍＬ／枚）に対し、予め－８１℃で凍結保存された当該微生物の凍結融解液を無菌的に１００μＬずつ塗布して３０℃で４８時間培養して大量の菌体を作製した。この大量培養で得られた菌体を平面寒天培地から寒天が混ざらないようにかきとり、蒸留水５０ｍＬに懸濁し、次いで、この懸濁液を凍結乾燥させて微生物菌体の乾燥物９．１５ｇを得た。次いで、この微生物菌体の乾燥物９．１５ｇに対し、蒸留水１１０ｍＬ、クロロホルム１４０ｍＬ、メタノール２８０ｍＬを加え、ソニケーターによる超音波処理を６０分間行った後、下層のクロロホルム層を回収した。次に、上層の水層にクロロホルム１３８ｍＬと蒸留水１１０ｍＬを加え、ソニケーターによる超音波処理を６０分間行った後、同様に下層のクロロホルム層を回収した。上層の水層に対しては、更にクロロホルム１３８ｍＬとメタノール３４ｍＬを加え、超音波処理を３０分間行った後、静置して分液し、下層のクロロホルム層を回収した。そして、これら三つのクロロホルム層を集めてロータリーエバポレーターを用いて４０℃で減圧濃縮して脂質抽出物の乾燥物４６０．７ｍｇを得た。この脂質抽出物の乾燥物をクロロホルムとメタノールの等量混合溶液１０ｍＬに対して溶解したものを８０００ｒｐｍで１０分間遠心処理した後、得られた上清液を乾燥させて脂質抽出物の乾燥物４１０．５ｍｇを得た。

（２）カラムクロマトグラフィーによる有効成分の分画
得られたイソフラボン資化性微生物由来の脂質抽出物４１０．５ｍｇを用いてシリカゲルを担体としたシリカゲルクロマトグラフィーを行った。カラム（内径２０ｍｍ×長さ５００ｍｍ）にクロロホルムに懸濁したシリカゲル６０（７０～２３０メッシュ）を充填し、安定化させた後、クロロホルム５．０ｍＬに脂質抽出物４１０．５ｍｇを溶解したものをカラムの上部に吸着させた後、表１に示す溶離液を極性の低いクロロホルム１００％から極性の高いクロロホルムとメタノールの等量混合溶液（クロロホルム：メタノール＝１：１）へとそれぞれ４００ｍＬずつ順次流して、フラクションコレクターで自動分取した。これらの全てのフラクションについて、予め分光光度計を用いた吸収波長の測定において当該脂質抽出物のクロロホルム溶解液で顕著な吸収が認められた３３０ｎｍの波長で吸光度を測定して図４に示す通りにクロマトグラフを作成して吸光度のピークごとに２９フラクション（ＩＦ１～ＩＦ２９）にまとめた。

次いで、各フラクションについては、４０℃減圧下で溶媒を除去し、それぞれの乾燥物を得た。乾燥物重量については表２に記載した。

前述の２９フラクション（ＩＦ１～ＩＦ２９）についてそれぞれの乾燥物の濃度が１％（ｗ／ｖ）濃度になるようにＤＭＳＯに溶解した生育阻害試験用の脂質抽出物の供試試料について、ＤＭＳＯを１％（ｗ／ｖ）濃度含有するＴＳＢ液体培地１００μＬを対照区、酢酸を０．１％（ｗ／ｖ）濃度ないしはキシリトールを０．１％（ｗ／ｖ）濃度含有するＴＳＢ液体培地１００μＬをポジティブコントロール区および脂質抽出物の乾燥物を１％（ｗ／ｖ）濃度含有するＤＭＳＯ溶液（供試試料）を２μＬ含むＴＳＢ液体培地１００μＬに対して、それぞれＳ．ｍｕｔａｎｓの種培養液１００μＬを接種して３０℃で２４時間培養した培養液の波長５７０ｎｍでの吸光度を比較することで、Ｓ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果を調べた結果、図５Ａと図５Ｂに示す通り、ＩＦ１、ＩＦ６、ＩＦ７、ＩＦ８、ＩＦ９、ＩＦ１０、ＩＦ１２およびＩＦ１３に０．１％（ｗ／ｖ）濃度酢酸含有ポジティブコントロール区と同等以上の有意な生育阻害効果が認められた。

（３）ＴＬＣによる有効成分の分画
ＴＬＣは、シリカゲル７０ＦＭＴＬＣプレートワコー２００ｍｍ×２００ｍｍ（以下、シリカゲル薄層プレート）を必要に応じて細断してサイズを調整して使用した。Ｒｆ測定用には１０～３０ｍｍ×５０ｍｍ、物質のかきとり用には１００ｍｍ×１００ｍｍないしは１００ｍｍ×２００ｍｍのシリカゲル薄層プレートを用いた。カラムクロマトグラフィーによって分画された各フラクション中に含まれる脂質抽出物はプラスチックチップを用いてＴＬＣ上に３～５回スポットした後、風乾した。展開液としては、ヘキサン：酢酸エチル＝７５：２５～６０：４０やクロロホルム：メタノール＝９０：１０～８０：２０などから適宜選択して用いた。展開を終えたＴＬＣプレートは風乾して溶媒を飛散させた後、りんモリブデン酸・エタノール溶液（１０ｇりんモリブデン酸／１００ｍＬエタノール）に５秒間浸したものを乾熱機で１３０℃、５～１０分間加熱処理を行って発色させて各スポットのＲｆ値を測定した。次いで、ＴＬＣの分画スポットからかきとられたシリカゲルはいずれもクロロホルムとメタノールの等量混合溶液２０ｍＬで抽出した後、ろ過を行い、このろ液はロータリーエバポレーターを用いて４０℃下で減圧濃縮により溶媒を飛散させて得られる乾燥物の乾燥重量を測定した後、それぞれ乾燥物の重量％濃度が１％（ｗ／ｖ）になるようにＤＭＳＯに溶解したものを生育阻害試験用の供試試料に供した。

当該フラクションＩＦ１～ＩＦ２９については、シリカゲル薄層プレートでＴＬＣ展開を行い、そのスポットのＲｆ値のパターンが類似するフラクションを表３に示すように６つに再グループ化した。

前記の再グループ化したＩＦ１、ＩＦ２、ＩＦ６、ＩＦ７、ＩＦ１１およびＩＦ１２のフラクションについては、更にシリカゲル薄層プレート（１００ｍｍ×２００ｍｍ）を用いてヘキサン：酢酸エチル＝７５：２５からなる展開液にてＴＬＣ展開した結果、表４に示す３１画分に分画された。

このＩＦ１の９画分、ＩＦ２の３画分、ＩＦ６の６画分、ＩＦ７の４画分、ＩＦ１１の４画分及びＩＦ１２の５画分の合計３１画分のそれぞれの乾燥物を１％（ｗ／ｖ）濃度含有するＤＭＳＯ溶液を用いて同様の方法にてＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果を調べた結果、図６に示す通り、ＩＦ６フラクションからＩＦ６－２画分（図６Ａ）およびＩＦ１１フラクションからＩＦ１１－２画分（図６Ｂ）にポジティブコントロールの０．１％（ｗ／ｖ）濃度酢酸含有ポジティプコントロール区と同等以上の強力な生育阻害効果が認められた。

そこで、０．１％（ｗ／ｖ）濃度酢酸含有ポジティブコントロール区と同等以上の生育阻害効果が認められたＩＦ６－２画分とＩＦ１１－２画分について更に異なる展開液（ヘキサン：酢酸エチル＝５０：５０）でＴＬＣ分画した結果、それぞれＩＦ６－２画分は、ＩＦ６－２－Ａ、ＩＦ６－２－ＢおよびＩＦ６－２－Ｃ、ＩＦ１１－２画分からはＩＦ１１－２－Ａ、ＩＦ１１－２－ＢおよびＩＦ１１－２－Ｃの３つの画分に分画された。そして、それぞれの３つの画分の乾燥物を１％（ｗ／ｖ）濃度含有するＤＭＳＯ溶液を調製した後、前記の同様の方法にてＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果を調べた結果、図７Ａと図７Ｂに示す通り、全てにおいて対照区と比べて有意差を伴って生育阻害効果が認められたが、その中でもＩＦ６－２－Ｃ画分とＩＦ１１－２－Ｂ画分に０．１％（ｗ／ｖ）濃度の酢酸含有ポジティブコントロール区以上の有意差を伴った強力な生育阻害効果が確認された。他方、これ以外のＩＦ６－２－Ａ、ＩＦ６－２－Ｂ、ＩＦ１１－２－ＡおよびＩＦ１１－２－Ｃの４つの画分は０．１％（ｗ／ｖ）濃度キシリトール含有ポジティブコントロール区と同等の生育阻害効果であった。

（４）有効成分の濃度と生育阻害効果
次に、０．１％（ｗ／ｖ）酢酸溶液と同等以上の生育阻害効果が確認されたＩＦ６－２－ＣとＩＦ１１－２－Ｂのそれぞれの％（ｗ／ｖ）濃度と生育阻害効果について更に詳しく調べた結果、ＩＦ６－２－Ｃでは、図８Ａに示す通り、１．０、０．５および０．２５％（ｗ／ｖ）濃度の全てにおいて対照区と比べてｐ＜０．００１の有意差を伴って生育阻害効果が認められたと同時に、１．０％（ｗ／ｖ）濃度においては、Ｓ．ｍｕｔａｎｓの生育を完全に阻止する強力な生育阻害効果が認められた。一方、０．５および０．２５％（ｗ／ｖ）濃度では、生育を完全に阻害することはできないことが分かった。

他方、ＩＦ１１－２－Ｂでは、図８Ｂに示す通り、１．０、０．５および０．２５％（ｗ／ｖ）濃度の全てにおいて対照区と比べてｐ＜０．０１以上の有意差を伴って生育阻害効果が認められたものの、１．０と０．５％（ｗ／ｖ）濃度では、ほぼ完全に生育を阻止できたのに対して、０．２５％（ｗ／ｖ）濃度では、その生育を完全には阻止できなかった。

以上の結果からＳ．ｍｕｔａｎｓの完全な生育阻害効果を発揮するために不可欠なＩＦ６－２－ＣやＩＦ１１－２－Ｂの重量％濃度を算出すると、接種される供試試料の希釈倍数は２μＬ（供試試料の接種量）／２００μＬ（全培養液量）より１００倍となることから、Ｓ．ｍｕｔａｎｓの完全な生育阻害効果を発揮するためのＩＦ６－２－ＣやＩＦ１１－２－Ｂの重量％濃度としては、１％（ｗ／ｖ）／１００＝０．０１％（ｗ／ｖ）以上と算出された。

試験例３

本試験例はイソフラボン資化性微生物由来の脂質抽出物中の有効成分ＩＦ６－２－Ａ、ＩＦ６－２－ＢおよびＩＦ６－２－Ｃ並びにＩＦ１１－２－Ａ、ＩＦ１１－２－ＢおよびＩＦ１１－２－Ｃはそれぞれ極性の異なる２種類の展開溶媒（極性の低いものと極性の高い２種類）を用いて行われたＴＬＣで単一スポットであることを確認した後、その化学構造を明らかにするために、次に示す試験方法（トリメチルシリル化物およびメチル化物の調製、ＧＣ／ＭＳ分析）により実施した。

（１）有効成分ＩＦ６－２－Ａ、ＩＦ６－２－ＢおよびＩＦ６－２－Ｃのトリメチルシリル化物およびメチル化物の調製
トリメチルシリル化は、それぞれの乾燥物１ｍｇに市販のシリル化剤ＴＭＳＩ－Ｈを過剰に添加して室温で２時間放置した後、ヘキサン１ｍＬを加えて、よく撹拌した後、上層を採取し、これに蒸留水１ｍＬを加えて撹拌・洗浄した後、それぞれの上層のヘキサン層を分取してＧＣ／ＭＳ分析に供した。

メチル化は、市販の脂肪酸メチル化キットを用いてそれぞれの乾燥物１ｍｇを密閉容器に入れ、メチル化試薬Ａを０．５ｍＬ、メチル化試薬Ｂを０．５ｍＬ加えた。密閉後、３７℃で１時間反応させ、メチル化試薬Ｃを加え密閉後、３７℃で２０分放置して反応させた。次いで、抽出試薬としてヘキサン１．０ｍＬを加え、ボルテックスでよく混合後、二層に分離したら、境界面の白い濁った層が混ざらないように上層を別容器に移した。
次に、採取した上層に蒸留水１ｍＬを加えて撹拌・洗浄を２回繰り返し、それぞれの上層のヘキサン層についてリトマス紙でｐＨが中性付近であることを確認した後、ＧＣ／ＭＳ分析に供した。

（２）ＧＣ／ＭＳ分析
ＧＣ／ＭＳ分析は、フロンティアラボ社製カラムＵｌｔｒａＡＬＬＯＹ－５（ＭＳ／ＨＴ、長さ３０ｃｍ、内径０．２５ｍｍ、膜厚０．２５μｍ）を装着したアジレント社製ＧＣ／ＭＳ６８９０Ｎ／５９７３Ｎｅｔｗｏｒｋを用いて、ポリ５％フェニル９５％ジメチルシロキサンでオーブン温度５０～３００℃（１０℃／ｍｉｎ）、注入口温度３００℃、ＧＣ／ＭＳインターフェイス温度３２０℃（熱分解装置－ＧＣ間およびＧＣ－ＭＳ間の双方）、イオン源温度２３０℃、四重極温度１５０℃、試料サンプル注入量５μＬで測定した。

ＩＦ６－２－Ａ、ＩＦ６－２－ＢおよびＩＦ６－２－Ｃ並びにＩＦ１１－２－Ａ、ＩＦ１１－２－ＢおよびＩＦ１１－２－Ｃのトリメチルシリル化物のＧＣ／ＭＳ分析の結果、いずれからも図９に示す通り、グリセロールのトリメチルシリル化物（成分１）と同一の質量スペクトルが検出された。

ＩＦ６－２－Ａ、ＩＦ６－２－ＢおよびＩＦ６－２－Ｃのメチル化物のＧＣ／ＭＳ分析の結果、いずれからも図１０と図１１に示す通り、二つの長鎖飽和脂肪酸のメチルエステルであるパルミチン酸メチル（成分２）とステアリン酸メチル（成分３）のそれぞれと同一の質量スペクトルが検出された。

他方、ＩＦ１１－２－Ａ、ＩＦ１１－２－ＢおよびＩＦ１１－２－Ｃのメチル化物のＧＣ／ＭＳ分析の結果、いずれからも図１０と図１１に示す二つの長鎖飽和脂肪酸のメチルエステルであるパルミチン酸メチル（成分２）とステアリン酸メチル（成分３）に加えて図１２デヒドロアビエチン酸メチル（成分４）のそれぞれと同一の質量スペクトルが検出された。

これらの事実から、ＩＦ６－２－Ａ、ＩＦ６－２－ＢおよびＩＦ６－２－Ｃの化学構造としては、図１３に示す通り、グリセロールの二つのヒドロキシ基にパルミチン酸とステアリン酸が一分子ずつエステル結合した３種類のジアシルグリセロール（以下、ＤＡＧ）と推定された。詳しくは、１－パルミトイル－２－ステアロイルジアシルグリセロール（１－ＰＡ－２－ＳＡ－ＤＡＧ）、１－ステアロイル－２－パルミトイルジアシルグリセロール（１－ＳＡ－２－ＰＡ－ＤＡＧ）および１－パルミトイル－３－ステアロイルジアシルグリセロール（１－ＰＡ－３－ＳＡ－ＤＡＧ）（＝１－ステアロイル－３－パルミトイルグリセロール（１－ＳＡ－３－ＰＡ－ＤＡＧ））の３種類である。

他方、ＩＦ１１－２－Ａ、ＩＦ１１－２－ＢおよびＩＦ１１－２－Ｃの化学構造としては、図１４に示す通り、グリセロールの三つのヒドロキシル基にパルミチン酸、ステアリン酸およびデヒドロアビエチン酸が一分子ずつエステル結合した３種類のデヒドロアビエチン酸ジアシルグリセロールと推定された。詳しくは、１－パルミトイル－２－ステアロイル－３－デヒドロアビエトイルジアシルグリセロール（１－ＰＡ－２－ＳＡ－３－ＤＨＡ－ＤＡＧ）、１－ステアロイル－２－パルミトイル－３－デヒドロアビエトイルジアシルグリセロール（１－ＳＡ－２－ＰＡ－３－ＤＨＡ－ＤＡＧ）および１－パルミトイル－３－ステアロイル－２－デヒドロアビエトイルジアシルグリセロール（１－ＰＡ－３－ＳＡ－２－ＤＨＡ－ＤＡＧ）（＝１－ステアロイル－３－パルミトイル－２－デヒドロアビエトイルジアシルグリセロール（１－ＳＡ－３－ＰＡ－２－ＤＨＡ－ＤＡＧ））の３種類である。

次に、当該ジアシルグリセロール化合物のＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果の強さについて、ポジティブコントロールの酢酸やキシリトールと比較すると、まず、グリセロールの二つのヒドロキシ基にパルミチン酸とステアリン酸が一分子ずつエステル結合したジアシルグリセロール（ＤＡＧ）と推定されるＩＦ６－２－Ａ、ＩＦ６－２－ＢおよびＩＦ６－２－Ｃの場合は、そのモル分子量は５９６となり、その０．０１％（ｗ／ｖ）濃度溶液のモル濃度（Ｍ）は１Ｌ中に含まれる当該ジアシルグリセロールの質量数／当該ジアシルグリセロールのモル分子量＝０．１０／５９６＝０．０００１６７Ｍ（＝０．１６７ｍＭ）に相当することになる。

他方、グリセロールの三つのヒドロキシ基にパルミチン酸、ステアリン酸およびデヒドロアビエチン酸が一分子ずつエステル結合したデヒドロアビエチン酸ジアシルグリセロールと推定されるＩＦ１１－２－Ａ、ＩＦ１１－２－ＢおよびＩＦ１１－２－Ｃの場合は、そのモル分子量８８１となり、その０．０１％（ｗ／ｖ）濃度溶液のモル濃度は前記と同様に計算すると、０．０００１１４Ｍ（＝０．１１４ｍＭ）になる。

他方、０．１％（ｗ／ｖ）濃度酢酸溶液の酢酸のモル濃度は１Ｌ中に含まれる酢酸の質量数／酢酸のモル分子量＝１／６０＝０．０１６７Ｍ（＝１６．７ｍＭ）、キシリトール０．１％（ｗ／ｖ）溶液のモル濃度は１Ｌ中に含まれるキシリトールの質量数／キシリトールのモル分子量＝１／１５２＝０．００６５８Ｍ（＝６．５８ｍＭ）となることから、当該パルミチン酸とステアリン酸のジアシルグリセロールのＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果の強さは、酢酸に対するモル比で１００倍、キシリトールに対するモル比で約３９倍強い生育阻害効果が期待されるものと算出された。
即ち、当該ジアシルグリセロールは酢酸およびキシリトールと比較して、それぞれ１／１００、１／３９の低濃度でも同等の生育阻害効果が期待できるものと推定された。

一方、グリセロールの残りのヒドロキシ基にデヒドロアビエチン酸がエステル結合したパルミチン酸とステアリン酸のジアシルグリセロールのＳ．ｍｕｔａｎｓに対する生育阻害効果の強さは、酢酸に対するモル比で１４６倍、キシリトールに対するモル比で約５８倍強い生育阻害効果が期待されるものと算出された。
即ち、当該デヒドロアビエチン酸結合ジアシルグリセロールは酢酸およびキシリトールと比較して、それぞれ１／１４６、１／５８の低濃度でも同等の生育阻害効果が期待できるものと推定された。

本発明は練り歯磨きや洗口剤（マウスウォッシュ）などのオーラルケア、歯科器具、医療器具、医薬品、医薬部外品、水道および清掃業などの分野などにおいて利用可能である。

以下、実施例を挙げて本発明を更に詳細に説明するが、それらによって本発明は制限されるものではない。
実験例１５－２８は実施例であり、実験例１－１４は参考例である。

実施例１～７

＜実験例１～７＞
グリセロールの二つのヒドロキシ基にパルミチン酸とステアリン酸を一分子ずつエステル結合する３種類のジアシルグリセロール化合物、またはこれらの化合物を１以上含む物質の混合物を有効成分とする虫歯の予防用および／または治療用の口腔組成物として、１－パルミトイル－３－ステアロイルジアシルグリセロールおよび／または１－パルミトイル－２－ステアロイルジアシルグリセロールおよび／または１－ステアロイル－２－パルミトイルジアシルグリセロールを用い、以下の表５記載の実験例１から７に示す処方にて、チューブ入り練り歯磨きを調製した。

実施例８～１４

＜実験例８～１４＞
グリセロールの二つのヒドロキシ基にパルミチン酸とステアリン酸を一分子ずつエステル結合する３種類のジアシルグリセロール化合物、またはこれらの化合物を１以上含む物質の混合物を有効成分とする虫歯の予防用および／または治療用の口腔組成物として、１－ステアロイル－３－パルミトイルジアシルグリセロールおよび／または１－ステアロイル－２－パルミトイルジアシルグリセロールおよび／または１－パルミトイル－２－ステアロイルジアシルグリセロールを用い、以下の表６に記載の実験例８から１４に示す処方にて、樹脂容器入り洗口剤を調製した。

実施例１５～２１

＜実験例１５～２１＞
グリセロールの三つのヒドロキシ基にパルミチン酸、ステアリン酸およびデヒドロアビエチン酸が一分子ずつエステル結合する３種類のデヒドロアビエチン酸結合ジアシルグリセロール化合物、またはこれらの化合物を１以上含む物質の混合物を有効成分とする虫歯の予防用および／または治療用の口腔組成物として、１－パルミトイル－３－ステアロイル－２－デヒドロアビエトイルジアシルグリセロールおよび／または１－パルミトイル－２－ステアロイル－３－デヒドロアビエトイルジアシルグリセロールおよび／または１－ステアロイル－２－パルミトイル－３－デヒドロアビエトイルジアシルグリセロールを用い、以下の表７記載の実験例１５から２１に示す処方にて、チューブ入り練り歯磨きを調製した。

実施例２２～２８

＜実験例２２～２８＞
グリセロールの三つのヒドロキシ基にパルミチン酸、ステアリン酸およびデヒドロアビエチン酸が一分子ずつエステル結合する３種類のデヒドロアビエチン酸結合ジアシルグリセロール化合物、またはこれらの化合物を１以上含む物質の混合物を有効成分とする虫歯の予防用および／または治療用の口腔組成物として、１－パルミトイル－３－ステアロイル－２－デヒドロアビエトイルジアシルグリセロールおよび／または１－パルミトイル－２－ステアロイル－３－デヒドロアビエトイルジアシルグリセロールおよび／または１－ステアロイル－２－パルミトイル－３－デヒドロアビエトイルジアシルグリセロールを用い、以下の表７に記載の実験例２２から２８に示す処方にて、樹脂容器入り洗口剤を調製した。

Claims

式（１）の化合物、または式（１）の化合物を１以上含む物質の混合物を有効成分とする虫歯菌ストレプトコッカス・ミュータンスに有効な抗菌剤。

［式中のＲ^１、Ｒ^２、Ｒ^３は以下の（ｅ）～（ｈ）のいずれかの条件を満たす。

（ｅ）Ｒ^１がパルミチン酸残基であり、Ｒ^２がステアリン酸残基であり、Ｒ^３がデヒドロアビエチン酸残基である；
（ｆ）Ｒ^１がステアリン酸残基であり、Ｒ^２がパルミチン酸残基であり、Ｒ^３がデヒドロアビエチン酸残基である；
（ｇ）Ｒ^１がパルミチン酸残基であり、Ｒ^２がデヒドロアビエチン酸残基であり、Ｒ^３がステアリン酸残基である；
（ｈ）Ｒ^１がステアリン酸残基であり、Ｒ^２がデヒドロアビエチン酸残基であり、Ｒ^３がパルミチン酸残基である］
請求項１に記載の虫歯菌ストレプトコッカス・ミュータンスに有効な抗菌剤を含有する口腔組成物。
請求項１又は請求項２に記載の虫歯菌ストレプトコッカス・ミュータンスに有効な抗菌剤を含有する洗口剤。
請求項１又は請求項２に記載の虫歯菌ストレプトコッカス・ミュータンスに有効な抗菌剤を含有する歯磨き剤。
請求項１又は請求項２に記載の虫歯菌ストレプトコッカス・ミュータンスに有効な抗菌剤を含有する医薬又は医薬部外品。