JP7671780B2 - マンノース末端のｎ－グリカンを有する組換え糖タンパク質を生産する遺伝子改変細胞株 - Google Patents

マンノース末端のｎ－グリカンを有する組換え糖タンパク質を生産する遺伝子改変細胞株 Download PDF

Info

Publication number
JP7671780B2
JP7671780B2 JP2022564107A JP2022564107A JP7671780B2 JP 7671780 B2 JP7671780 B2 JP 7671780B2 JP 2022564107 A JP2022564107 A JP 2022564107A JP 2022564107 A JP2022564107 A JP 2022564107A JP 7671780 B2 JP7671780 B2 JP 7671780B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
mgat1
glucocerebrosidase
cells
cell
mannose
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
JP2022564107A
Other languages
English (en)
Other versions
JP2023527109A (ja
Inventor
シュ、リーチン
ワン、フォンリン
ヂョウ、ヤンファン
ポン、ヤンズ－
ツァイ、ジェシン
ヂョウ、ウェイチャン
シ－、シァォブォ
ワン、ウェイウェン
ワン、ティンティン
ヤン、チュンシォン
チェン、ヂュェンミン
グゥォ、ジェレミー
Original Assignee
ウーシー バイオロジクス アイルランド リミテッド
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by ウーシー バイオロジクス アイルランド リミテッド filed Critical ウーシー バイオロジクス アイルランド リミテッド
Publication of JP2023527109A publication Critical patent/JP2023527109A/ja
Priority to JP2024203541A priority Critical patent/JP2025037919A/ja
Application granted granted Critical
Publication of JP7671780B2 publication Critical patent/JP7671780B2/ja
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/87—Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation
    • C12N15/90—Stable introduction of foreign DNA into chromosome
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/43—Enzymes; Proenzymes; Derivatives thereof
    • A61K38/46—Hydrolases (3)
    • A61K38/47—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2), e.g. cellulases, lactases
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/102—Mutagenizing nucleic acids
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/113—Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing
    • C12N15/1137—Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing against enzymes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/87—Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation
    • C12N15/90—Stable introduction of foreign DNA into chromosome
    • C12N15/902—Stable introduction of foreign DNA into chromosome using homologous recombination
    • C12N15/907—Stable introduction of foreign DNA into chromosome using homologous recombination in mammalian cells
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10—Transferases (2.)
    • C12N9/1048—Glycosyltransferases (2.4)
    • C12N9/1051—Hexosyltransferases (2.4.1)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14—Hydrolases (3)
    • C12N9/16—Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
    • C12N9/22—Ribonucleases [RNase]; Deoxyribonucleases [DNase]
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14—Hydrolases (3)
    • C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00—Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/005—Glycopeptides, glycoproteins
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Y—ENZYMES
    • C12Y204/00—Glycosyltransferases (2.4)
    • C12Y204/01—Hexosyltransferases (2.4.1)
    • C12Y204/01101—Alpha-1,3-mannosyl-glycoprotein 2-beta-N-acetylglucosaminyltransferase (2.4.1.101)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Y—ENZYMES
    • C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01045—Glucosylceramidase (3.2.1.45), i.e. beta-glucocerebrosidase
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2310/00—Structure or type of the nucleic acid
    • C12N2310/10—Type of nucleic acid
    • C12N2310/20—Type of nucleic acid involving clustered regularly interspaced short palindromic repeats [CRISPR]
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Y—ENZYMES
    • C12Y204/00—Glycosyltransferases (2.4)
    • C12Y204/01—Hexosyltransferases (2.4.1)

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

本出願は、全体として、マンノース末端のＮ－グリカンを有する組換え糖タンパク質を生産する遺伝子改変細胞株、および前記組換え糖タンパク質を生産する方法、または前記細胞、クローン又は細胞株を作製する方法に関する。
商業的に有用な糖タンパク質の１つとして、グルコセレブロシドのセラミドとグルコースへの加水分解を触媒するβ－グルコセレブロシダーゼが挙げられる。生体内のβ－グルコセレブロシダーゼの欠損に起因して、グルコセラミドが末梢マクロファージ内に蓄積することによって細胞が増大し、脾臓、肝臓、骨髄の機能不全と低下をもたらす常染色体劣性リソソーム蓄積症であるゴーシェ病を引き起こす可能性があるため、組換え発現されたβ－グルコセレブロシダーゼの外因性投与は、当分野においてゴーシェ病を治療するための魅力的な方法であると考えられている。
ただ、胎盤由来の未改変のヒトβ－グルコセレブロシダーゼは、露出したマンノース残基がないため、マンノース受容体を介したエンドサイトーシスを介して、樹状細胞やマクロファージのような必要な細胞にほとんど取り込まれないという問題がある。そのため、例えば、Ｎ－グリカンのマンノースをブロックする残基を除去する（マンノースをＮ－グリカンの末端残基として露出させる）ことによって、β－グルコセレブロシダーゼのような、マンノース末端のＮ－グリカンを有する組換え発現された糖タンパク質を便利かつ効果的に生産して、マンノース受容体を介した糖タンパク質の必要な細胞内への取り込みを促進する需要が高まっている。
したがって、マンノース末端のＮ－グリカンを有する組換え糖タンパク質を生産するように操作された細胞株が必要とされている。さらに、これらの操作された細胞株は、タンパク質の高生産性、高品質、高酵素活性を保ちながら、末端マンノース残基のタンパク質を安定的に生産することが望ましいとされている。
本発明の発明者らは、驚くべきことに、挿入突然変異によってマンノシル（α－１，３－）－組換え糖タンパク質β－１，２－Ｎ－アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼ１（ＭＧＡＴ１）遺伝子が欠損している遺伝子改変細胞株を発見した。前記細胞株は、ＲＣＡによる選択により、ＭＧＡＴ１をコードする染色体配列のコーディング領域に６００ｂｐ未満の挿入を含む。本発明の細胞株によって生産される組換え糖タンパク質は、高タンパク質生産性、高タンパク質品質、及び高酵素活性を有する。
本発明の様々な局面において、一の局面として、マンノシル（α－１，３－）－糖タンパク質β－１，２－Ｎ－アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼ１（ＭＧＡＴ１）が欠損している細胞株を提供し、前記細胞株はＭＧＡＴ１をコードする染色体配列のコーディング領域に６００ｂｐ未満の挿入を含む。一の実施形態において、前記細胞株は、ＭＧＡＴ１をコードする染色体配列のコーディング領域に４００、２００、１００、５０、３０、１０又は５ｂｐ未満の挿入を含む。一の実施形態において、前記細胞株は、ＭＧＡＴ１をコードする染色体配列のコーディング領域に１ｂｐの挿入を含む。一の実施形態において、ＭＧＡＴ１をコードする染色体配列は、標的エンドヌクレアーゼを介したゲノム編集技術によって改変され、標的エンドヌクレアーゼを介したゲノム編集技術は、例えば、クラスター化して規則的な配置の短い回文配列リピート（ＣＲＩＳＰＲ）、ジンクフィンガーヌクレアーゼ（ＺＦＮ）、又は転写活性化因子様エフェクターヌクレアーゼ（ＴＡＬＥＮ）である。一の実施形態において、細胞は動物細胞であり、好ましくは哺乳動物細胞であり、より好ましくはチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞である。一の実施形態において、前記細胞株は、１つまたは複数の末端マンノース残基を含む少なくとも１つの糖タンパク質を発現する。一の実施形態において、糖タンパク質は、β－グルコセレブロシダーゼのような酵素である。
本発明の別の局面は、組換え糖タンパク質を生産する方法であって、
（１）前記遺伝子改変細胞株を培養することと、
（２）糖タンパク質を回収することと、を含む方法である。
本発明の別の局面は、マンノース末端のＮ－グリカンを有する１つまたは複数の末端マンノース残基を有する組換え糖タンパク質を生産する方法であって、
（１）前記組換え糖タンパク質をコードする遺伝子を細胞株に導入することと、
（２）工程（１）により得られた細胞株におけるマンノシル（α－１，３－）－組換え糖タンパク質β－１，２－Ｎ－アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼ１（ＭＧＡＴ１）遺伝子を突然変異させることと、
（３）前記組換え糖タンパク質を発現させることと、を含み、
ＭＧＡＴ１遺伝子はＣＲＩＳＰＲによって突然変異され、ｓｇＲＮＡは、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４の核酸配列を含むか又はそれからなり、またはＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４の核酸配列と少なくとも９０％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％の配列同一性を有する核酸配列を含むか又はそれからなる方法である。
一の実施形態において、細胞株は、ＲＣＡによって選択される。一の実施形態において、糖タンパク質はβ－グルコセレブロシダーゼのような酵素である。一の実施形態において、前記方法は、バッチリフィーディングアッセイ（ｂａｔｃｈ ｒｅｆｅｅｄｉｎｇ ａｓｓａｙ）において突然変異細胞株を選択する工程をさらに含む。一の実施形態において、バッチリフィーディングアッセイは、生産媒体を毎日更新する工程を含む。一の実施形態において、組換え糖タンパク質は、１つまたは複数の末端マンノース残基、好ましくは１～９の末端マンノース残基、より好ましくは３～６の末端マンノース残基を有するＮ－グリカン、および、末端マンノース残基をブロックしない任意の１～３のフコース残基を含み、Ｎ－グリカンは、Ｍａｎ３、Ｍａｎ４、Ｍａｎ４＋１Ｆ、Ｍａｎ５、Ｍａｎ５＋１Ｆ、およびＭａｎ６からなる群から選択される。一の実施形態において、組換え糖タンパク質に結合したマンノース末端のＮ－グリカンの割合は、８０％、８５％、８６％、８７％、８８％又は８９％より高い。一の実施形態において、酵素活性は、０．５Ｕ／ｍＬを上回る。一の実施形態において、細胞は動物細胞であり、好ましくは哺乳動物細胞であり、より好ましくはチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞である。
本発明の別の局面は、本発明に係る細胞株又は方法によって生産される、β－グルコセレブロシダーゼのような組換え糖タンパク質を含む。本発明の別の局面は、ゴーシェ病のようなβ－グルコセレブロシダーゼ欠損に関する疾患を治療する方法であって、本発明に開示したβ－グルコセレブロシダーゼのような組換え糖タンパク質を、それを必要とする受験者に投与することを含む方法を含む。本発明のさらに別の局面は、前記方法によって作製される細胞、クローン又は細胞株である。
本発明の別の局面は、治療有効量の組換え酵素、緩衝液、浸透圧調節剤、および界面活性剤を含む医薬製剤である。一の実施形態において、酵素は、含有量が５０～１５０Ｕ／ｍｌであるβ－グルコセレブロシダーゼである。一の実施形態において、緩衝液は、含有量が２～１０ｇ／ｍＬであるクエン酸緩衝液である。一の実施形態において、浸透圧調節剤は、含有量が４０～１２０ｇ／Ｌであるスクロースである。一の実施形態において、界面活性剤は、含有量が０．１～１ｇ／Ｌであるポリソルベート８０である。一の実施形態において、前記製剤のｐＨは５～７である。
上記は、要約であるため、簡潔かつ概括的な必須内容しか含まれておらず、詳細が省略されている。したがって、上記要約が例示のみを目的とし、限定を意図していないことは、当業者には理解するであろう。本明細書に記載の方法、組成物および／または装置、および／または他の主題の他の形態、特徴や利点は、本発明による教示の下で明らかになる。上記要約は、後述の発明を実施するための形態でさらに説明される概念の選択を簡潔に紹介したものである。上記要約は、クレームされた主題の主要な特徴または必須特徴を特定することを意図したものではなく、クレームされた主題の範囲を決定する際の補助として使用することを意図したものでもない。さらに、本出願に引用されたすべての参考文献、特許、及び公開された特許出願は、その内容全体が参照により本出願に組み込まれる。
図１は、Ｃａｓ９とｓｇＲＮＡ５を含むプラスミドを示す図である。 図２は、ＭＧＡＴ１遺伝子が突然変異されたモノクローンのグリカンクロマトグラムである。 図３は、野生型ＭＧＡＴ１を含むコントロールプールのグリカンクロマトグラムである。
本発明は、様々な異なる形で実施され得るが、ここに開示したのは、本発明の原則を例示する具体的かつ例示的な実施形態である。本発明は、これらの具体的かつ例示的な実施形態に限定されないことが強調されるべきである。なお、本発明で使用されるいずれのセクションの見出しは文の構成のみを目的としており、説明されている主題を限定するものとして解釈されるべきではない。
（定義）
本明細書で特に定義しない限り、本発明に関連する科学用語や技術用語は、当業者にとって一般的に理解されている意味を有するものとする。また、文脈上別段の要求がない限り、単数形の用語は複数形を含み、複数形の用語は単数形を含むものとする。より具体的には、単数形の「ａ」、「ａｎ」及び「ｔｈｅ」は、本明細書および特許請求の範囲で使用される場合、文脈が明確に指示しない限り、複数の指示対象を含む。そのため、例えば、「タンパク質（ａ ｐｒｏｔｅｉｎ）」の場合は、複数のタンパク質を含み、「細胞（ａ ｃｅｌｌ）」の場合は、細胞及びその類似物の混合物を含む。本出願において、別段の説明がない限り、「または（又は）」は、「および／または」を意味する。また、用語の「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」、ならびに「ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ」や「ｃｏｍｐｒｉｓｅｄ」のようなその他の形態は、限定的なものではない。さらに、明細書および特許請求の範囲における範囲は、２つの端点およびその間にあるすべての点を含む。
本発明で使用される「遺伝子」とは、遺伝子産物をコードするＤＮＡ領域（エクソン及びイントロンを含む）、および、制御配列がコード配列および／または転写配列に隣接するか否かに関らず、遺伝子産物の生産を制御するすべてのＤＮＡ領域のことをいう。したがって、遺伝子は、プロモーター配列、ターミネーター、リボソーム結合部位及び内部リボソーム進入部位のような翻訳制御配列、エンハンサー、サイレンサー、インスレーター、境界エレメント、複製起点、マトリックス結合部位、及び遺伝子座制御領域を含むが、必ずしもこれらに限らない。
本発明の文脈において、Ｎ－アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼＩ（ＧｌｃＡｃ－Ｔ Ｉ又はＧｎＴ Ｉ）、またはＮ－グリコシル－オリゴ糖－糖タンパク質Ｎ－アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼＩとも呼ばれるＭＧＡＴ１は、成長中のＮ－グリカンにおけるオリゴマンノースコア（即ち、Ｍａｎ５ＧｌｃＮＡｃ２（Ｍａｎ５）部分）へのＮ－アセチルグルコサミン（ＧｌｃＮＡｃ）の転移を触媒する。ＭＧＡＴ１の機能不全は、Ｎ－グリカンの性質に影響を与えるので、β－グルコセレブロシダーゼのような、末端マンノース残基のＮ－グリカンを有する糖タンパク質が得られる。本発明の文脈において、ＭＧＡＴ１は、ＧｎＴ Ｉと交換可能に使用される。
本発明で使用される用語の「モノクローン（ｍｏｎｏｃｌｏｎｅ）」とは、細胞複製を繰り返すことによって、単一の祖先細胞から生産される細胞群のことをいう。本発明のより具体的な文脈において、β－グルコセレブロシダーゼのような組換え糖タンパク質を発現するモノクローンは、β－グルコセレブロシダーゼのような組換え糖タンパク質を発現するプール（ｐｏｏｌ）に由来する単一細胞をクローニングすることによって作製され得る。
本発明で使用される用語の「突然変異（ｍｕｔａｔｉｏｎ又はｍｕｔａｔｉｎｇ又はｍｕｔａｔｅｄ）」とは、削除突然変異又は挿入突然変異をいう。本発明のより具体的な文脈において、挿入突然変異とは、標的タンパク質をコードする遺伝子、またはタンパク質をコードする遺伝子に作動可能に結合した制御核酸配列、例えば、プロモーターやエンハンサーにおける１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０またはそれ以上の塩基対の挿入を意味する。具体的な実施例では、細胞株におけるマンノシル（α－１，３－）－組換え糖タンパク質β－１，２－Ｎ－アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼ１（ＭＧＡＴ１）遺伝子の突然変異は、挿入突然変異によって行われる。削除突然変異とは、標的タンパク質をコードする遺伝子、またはタンパク質をコードする遺伝子に作動可能に結合した制御核酸配列、例えば、プロモーターやエンハンサーにおける１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０またはそれ以上の塩基対の削除を意味する。当業者であれば、標的タンパク質をコードする遺伝子、またはタンパク質をコードする遺伝子に作動可能に結合した制御核酸配列、例えば、プロモーターやエンハンサーへの削除、置換又は挿入突然変異の導入がノックアウト（ｋｎｏｃｋ ｏｕｔ）に含まれ、また、突然変異によってタンパク質の不活性化などの発現レベルの低下や機能的欠損を引き起こすことを知っている。
本発明で使用される用語の「プール」とは、混合細胞集団をいう。本発明のより具体的な文脈において、β－グルコセレブロシダーゼのような組換え糖タンパク質を発現するプールは、β－グルコセレブロシダーゼのような組換え糖タンパク質をコードする遺伝子を宿主細胞にトランスフェクトすることによって作製することができる。
用語の「組換え」とは、２つのポリヌクレオチド間の遺伝情報の交換プロセスをいう。本発明では、「相同組換え」とは、例えば、細胞内の二重鎖切断の修復中に起こるそのような交換の特殊形態をいう。このプロセスは、２つのポリヌクレオチド間の配列類似性が必要とされ、「ドナー」又は「交換」分子を使用して、「標的」分子（即ち、二重鎖切断を経た分子）をテンプレート修復し、また、ドナーから標的への遺伝情報の移行をもたらすために、「非交差遺伝子変換（ｎｏｎ－ｃｒｏｓｓｏｖｅｒ ｇｅｎｅ ｃｏｎｖｅｒｓｉｏｎ）」または「ショートトラクト遺伝子変換（ｓｈｏｒｔ ｔｒａｃｔ ｇｅｎｅ ｃｏｎｖｅｒｓｉｏｎ）」として様々な形で知られている。いかなる特定の理論に縛られることなく、そのような移行は、切断された標的及びドナーの間に形成されるヘテロ二重鎖ＤＮＡのミスマッチ修正、および／またはドナーが標的の一部となる遺伝情報を再合成するために使われる「合成依存性ストランドアニーリング（ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ－ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｓｔｒａｎｄ ａｎｎｅａｌｉｎｇ）」、および／または関連プロセスを含み得る。そのような特殊な相同組換えは、標的分子の配列の変化をもたらし、ドナーポリヌクレオチドの配列の一部又は全部が標的ポリヌクレオチドに組み込まれるようになることが多い。
本発明で使用される用語の「配列同一性」とは、配列が比較ウィンドウにおいてヌクレオチド間又はアミノ酸間で比較して得られた同一である程度をいう。したがって、「配列同一性のパーセンテージ」は、最適にアラインされた２つの配列を比較ウィンドウにおいて比較し、同一の核酸塩基（例えば、Ａ、Ｔ、Ｃ、Ｇ、Ｉ、Ｕ）または同一のアミノ酸残基（例えば、Ａｌａ、Ｐｒｏ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｇｌｙ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、Ｐｈｅ、Ｔｙｒ、Ｔｒｐ、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ｈｉｓ、Ａｓｐ、Ｇｌｕ、Ａｓｎ、Ｇｌｎ、ＣｙｓおよびＭｅｔ）が両配列に生じる位置の数を求めてマッチング位置の数を特定し、マッチング位置の数を比較ウィンドウにおける位置の総数（つまり、ウィンドウサイズ）で割り、その結果に１００を掛けることで、配列同一性のパーセンテージを得ることによって算出される。本発明では、配列同一性のパーセンテージは、少なくとも８０％、８１％、８２％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％又は１００％である。
用語の「医薬製剤」とは、有効成分の生物学的活性を有効にするような形態のものであって、製剤が投与される受験者が許容できないような毒性を有する追加の成分を含まない製剤をいう。
医薬製剤の文脈で使用される用語の「安定」とは、タンパク質が保存時に物理的安定性および／または化学的安定性および／または生物学的活性を保持することをいう。安定性は、選択された温度、および選択された時間で測定できる。製剤は、室温（約２５℃）または４０℃で少なくとも３ヶ月間、および／または約２～８℃で少なくとも１年間安定であることが好ましい。
用語の「緩衝液」とは、その酸塩基共役成分の作用によりｐＨの変化に抵抗する緩衝溶液をいう。本発明における緩衝液は、約４～８、好ましくは約４．５～７、最も好ましくは約５．０～６．５の範囲のｐＨを有する。ｐＨをこの範囲に調整する緩衝液の例として、酢酸、コハク酸、グルコース酸、ヒスチジン、クエン酸および他の有機酸緩衝液が挙げられる。
用語の「浸透圧調節剤」とは、所望のレベルの浸透圧を得るように製剤に添加される試薬をいう。浸透圧は、１ｋｇの溶液に溶解した浸透圧活性粒子の濃度として表すことができる。浸透圧調節剤の例として、糖および／または糖アルコールが挙げられる。
用語の「界面活性剤」とは、界面活性を有する試薬をいう。本発明で使用される界面活性剤の例として、ポリソルベートおよびポロキサマー（ｐｏｌｏｘａｍｅｒ）が挙げられる。
用語の「再構成」とは、タンパク質が希釈液中に分散するように、凍結乾燥タンパク質製剤を希釈液に溶解することをいう。再構成された製剤は、投与に適している。
全体的には、本発明に記載の細胞及び組織培養、分子生物学、免疫学、微生物学、遺伝学、およびタンパク質・核酸化学、並びにハイブリダイゼーションに関する用語および技術は、当分野において周知であり、一般的に使用されているものである。別段の説明がない限り、本発明の方法および技術は、全体的に、当分野で既知のもの、および本明細書で引用・議論される各種一般的及び具体的な参考文献に記載されている通常の方法によって、実施される。本発明に記載の分析化学、合成有機化学、および医薬品化学・創薬化学に関する用語や、それらの実験手順及び技術は、当分野において周知であり、一般的に使用されているものである。なお、本発明で使用されるいずれのセクションの見出しは文の構成のみを目的としており、説明されている主題を限定するものとして解釈されるべきではない。
（細胞株）
本発明の一の局面は、マンノシル（α－１，３－）－組換え糖タンパク質β－１，２－Ｎ－アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼ１（ＭＧＡＴ１）が欠損している細胞株であって、ＭＧＡＴ１をコードする染色体配列のコーディング領域に６００ｂｐ未満の挿入を含む細胞株を含む。
一の実施形態において、前記ＭＧＡＴ１欠損細胞株は、ＭＧＡＴ１をコードする染色体配列に約１～５９９ｂｐの挿入を含む。別の実施形態において、前記ＭＧＡＴ１欠損細胞株は、ＭＧＡＴ１のコーディング領域に約１～５０ｂｐ、約５０～１００ｂｐ、約１００～２００ｂｐ、約２００～３００ｂｐ、約３００～４００ｂｐ、または約６００ｂｐ未満の挿入を含む。例示的な実施形態では、前記ＭＧＡＴ１欠損細胞株は、ＭＧＡＴ１をコードする染色体配列に約１ｂｐ、２ｂｐ、３ｂｐ、４ｂｐ、５ｂｐ、１０ｂｐ、２５ｂｐ又は５０ｂｐの挿入を含むことが、ＭＧＡＴ１の機能的欠損をもたらす。ＭＧＡＴ１をコードする染色体配列に約１～５９９ｂｐを挿入することが、ＭＧＡＴ１の発現欠損や不活性化をもたらす。ＭＧＡＴ１をコードする配列は、リーディングフレームのシフトを経て、タンパク質産物の生産が妨げられる。後述する標的エンドヌクレアーゼを介したゲノム編集技術によって、ＭＧＡＴ１をコードする染色体配列を突然変異させることができる。
一の実施形態において、前記ＭＧＡＴ１欠損細胞株は、ＭＧＡＴ１をコードする染色体配列に約１～１３００ｂｐの削除を含む。別の実施形態において、前記ＭＧＡＴ１欠損細胞株は、ＭＧＡＴ１のコーディング領域に約１～５０ｂｐ、約５０～１００ｂｐ、約１００～２００ｂｐ、約２００～３００ｂｐ、約３００～４００ｂｐ、約４００～６００ｂｐ、または約６００ｂｐを上回った削除を含む。例示的な実施形態では、前記ＭＧＡＴ１欠損細胞株は、ＭＧＡＴ１をコードする染色体配列に約１ｂｐ、２ｂｐ、３ｂｐ、４ｂｐ、５ｂｐ、１０ｂｐ、２５ｂｐ又は５０ｂｐの削除を含むことが、ＭＧＡＴ１の機能的欠損をもたらす。ＭＧＡＴ１をコードする染色体配列に約１～５９９ｂｐを削除することが、ＭＧＡＴ１の発現欠損や不活性化をもたらす。ＭＧＡＴ１をコードする配列は、リーディングフレームのシフトを経て、タンパク質産物の生産が妨げられる。後述する標的エンドヌクレアーゼを介したゲノム編集技術によって、ＭＧＡＴ１をコードする染色体配列を突然変異させることができる。
いくつかの実施形態において、組換え糖タンパク質の生産に使用可能な細胞は、原則として、当業者に知られている、組換え糖タンパク質を表現可能なすべての細胞である。前記細胞は、動物細胞、特に哺乳動物細胞であっても良い。哺乳動物細胞の例として、ＣＨＯ（チャイニーズハムスター卵巣）細胞、好ましくはＣＨＯ－Ｋ１細胞、ハイブリドーマ、ＢＨＫ（ベビーハムスター腎臓）細胞、骨髄腫細胞、例えばＨＥＫ－２９３細胞、ヒトリンパ芽球様株細胞、Ｅ１不死化ＨＥＲ細胞のようなヒト細胞、例えばＮＳＯ細胞のようなマウス細胞が挙げられる。一の実施形態において、前記細胞は、動物細胞であり、好ましくは哺乳動物細胞であり、より好ましくはチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞である。例示的な実施形態では、前記細胞株は、糖タンパク質などのような組換えタンパク質の生産に広く使用されるタイプである。例示的な実施形態では、前記細胞株は、ＣＨＯ細胞株である。ＡＴＣＣから数多くのＣＨＯ細胞株が得られる。適切なＣＨＯ細胞株には、ＣＨＯ－Ｋ１細胞およびその誘導体が含まれるが、それらに限らない。
一の実施形態において、前記細胞株は、１つまたは複数の末端マンノース残基を有する少なくとも１つの糖タンパク質を発現する。一の実施形態において、糖タンパク質は、β－グルコセレブロシダーゼである。
（標的エンドヌクレアーゼを介したゲノム編集技術）
一の実施形態において、ＭＧＡＴ１をコードする染色体配列は、標的エンドヌクレアーゼを介したゲノム編集技術によって改変され、標的エンドヌクレアーゼを介したゲノム編集技術は、例えば、クラスター化して規則的な配置の短い回文配列リピート（ＣＲＩＳＰＲ）、ジンクフィンガーヌクレアーゼ（ＺＦＮ）又は転写活性化因子様エフェクターヌクレアーゼ（ＴＡＬＥＮ）である。
細菌において適応免疫システムを形成するＣＲＩＳＰＲシステムは、ゲノム工学用に改変されている。工学用のＣＲＩＳＰＲシステムには、ガイドＲＮＡ（ｇＲＮＡ又はｓｇＲＮＡ）と、ＣＲＩＳＰＲ関連のエンドヌクレアーゼ（Ｃａｓエンドヌクレアーゼ）の２つの要素が含まれている。ｇＲＮＡは、Ｃａｓ結合に必要な足場配列（ｓｃａｆｆｏｌｄ ｓｅｑｕｅｎｃｅ）と、改変されるゲノム標的を定義するユーザ定義の約２０のヌクレオチドスペーサーと、で構成される短い合成ＲＮＡである。本発明では、ｇＲＮＡとｓｇＲＮＡは互いに交換可能に使用することができる。そのため、ｇＲＮＡに存在する標的配列を変更するだけで、Ｃａｓタンパク質のゲノム標的を変更することができる。
Ｃａｓ９やＣｐｆ１のようなエンドヌクレアーゼと、標的とする遺伝子に特異的なｇＲＮＡを共発現することによって、ＣＲＩＳＰＲを利用してノックアウト（例えば、突然変異）細胞や動物を作製することができる。ゲノム標的は、（１）配列がゲノムの残りの部分に対して独特である、（２）標的がプロトスペーサー隣接モチーフ（ＰＡＭ）の直近に存在する、という２つの条件を満たせば、約２０のヌクレオチドの任意のＤＮＡ配列とすることができる。このＰＡＭ配列は標的結合に不可欠だが、正確な配列はＣａｓタンパク質によって決まるものである。一般的に使用されるＣａｓタンパク質は、化膿レンサ球菌Ｃａｓ９（ＳｐＣａｓ９）である。発現されると、このＣａｓ９タンパク質とｇＲＮＡは、ｇＲＮＡ足場とＣａｓ９の表面に露出した正電荷を帯びた溝との間の相互作用によって、リボ核タンパク質複合体を形成する。Ｃａｓ９は、ｇＲＮＡ結合時にコンフォメーション変化を経て、分子を不活性化かつ非ＤＮＡ結合コンフォメーションから、活性化されたＤＮＡ結合コンフォメーションにシフトさせる。重要なことに、ｇＲＮＡのスペーサー領域は、標的ＤＮＡと自由に相互作用することができる。
Ｃａｓ９は、ｇＲＮＡスペーサー配列が標的ＤＮＡと十分な相同性を共有している場合にのみ、与えられた遺伝子座を切断する。Ｃａｓ９－ｇＲＮＡ複合体が推定されるＤＮＡ標的と結合されると、シード配列（ｇＲＮＡ標的配列の３’末端の８～１０の塩基）が標的ＤＮＡにアニールし始める。シード配列と標的ＤＮＡ配列がマッチする場合、ｇＲＮＡが３’から５’方向に標的ＤＮＡにアニールし続ける。Ｃａｓ９のジッパーのようなアニールメカニズムは、３’シード配列内の標的配列間のミスマッチが標的切断を完全に無効にする一方、ＰＡＭから遠位の５’末端に向かうミスマッチが、多くの場合、依然として標的切断を可能にする理由を説明できる。
Ｃａｓ９ヌクレアーゼには、ＲｕｖＣとＨＮＨという２つの機能的なエンドヌクレアーゼドメインがある。Ｃａｓ９は、標的結合時に２回目のコンフォメーション変化を経て、標的ＤＮＡの反対側の鎖を切断するようにヌクレアーゼドメインを配置する。Ｃａｓ９を介したＤＮＡ切断の最終結果として、標的ＤＮＡ内（ＰＡＭ配列の上流側の約３～４のヌクレオチド）に二重鎖切断（ＤＳＢ）が形成される。
得られたＤＳＢは、その後、（１）効率的だがエラーが発生しやすい非相同末端結合（ＮＨＥＪ）経路と、（２）効率は低いが忠実度の高い相同組換え修復（ＨＤＲ）経路という２つの修復経路のいずれか１つによって修復される。ＮＨＥＪ修復経路は、最も活発な修復メカニズムであり、ＤＳＢ部位における小さなヌクレオチドの挿入又は削除（ｉｎｄｅｌｓ）を頻繁に引き起こす。Ｃａｓ９とｇＲＮＡを発現する細胞集団が多様な突然変異をもたらすから、ＮＨＥＪを介したＤＳＢ修復のランダム性は、実用上重要な意味を持つ。ほとんどの場合、ＮＨＥＪは、標的ＤＮＡに小さなｉｎｄｅｌｓを生じさせ、その結果、アミノ酸の削除、挿入又はフレームシフト突然変異が生じ、標的遺伝子のオープンリーディングフレーム（ＯＲＦ）内に時期尚早の終止コドンが生じる。理想的な最終結果は、標的遺伝子内の機能喪失突然変異である。
実施形態において、ＣＲＩＳＰＲに基づく手段によるＭＧＡＴ１遺伝子のノックアウト突然変異は、例えば、Ｙａｎｇ ２０１４ （Ｙａｎｇ， ｅｔ ａｌ．， ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ９－Ｄｉｒｅｃｔｅｄ Ｇｅｎｏｍｅ Ｅｄｉｔｉｎｇ ｏｆ Ｃｕｌｔｕｒｅｄ Ｃｅｌｌｓ． Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， ２０１４， １０７（１）：３１．１．１－３１．１．１７）に教示されているものなど、実行可能な任意のプロトコルによって実施することができる。より具体的な実施形態において、ＭＧＡＴ１遺伝子は、ＣＲＩＳＰＲに基づく手段によって突然変異され、ここで、ｓｇＲＮＡは、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４を含むか又はそれからなり、または、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４と少なくとも９０％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％の配列同一性を有する核酸配列を含むか又はそれからなる。
（組換え糖タンパク質、細胞、クローン又は細胞株を生産する方法）
本発明の別の局面は、マンノース末端のＮ－グリカンを有する１つまたは複数の末端マンノース残基を有する組換え糖タンパク質を生産する方法であって、
（１）前記組換え糖タンパク質をコードする遺伝子を細胞株に導入することと、
（２）工程（１）により得られた細胞株におけるマンノシル（α－１，３－）－組換え糖タンパク質β－１，２－Ｎ－アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼ１（ＭＧＡＴ１）遺伝子を突然変異させることと、
（３）前記組換え糖タンパク質を発現させることと、を含み、
ＭＧＡＴ１遺伝子はＣＲＩＳＰＲによって突然変異され、ｓｇＲＮＡは、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４の核酸配列を含むか又はそれからなり、またはＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４の核酸配列と少なくとも９０％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％の配列同一性を有する核酸配列を含むか又はそれからなる方法である。
本発明の別の局面は、マンノース末端のＮ－グリカンを有する組換え糖タンパク質を生産する細胞、クローン又は細胞株を作製する方法であって、
（１）前記組換え糖タンパク質をコードする遺伝子を細胞株に導入することと、
（２）工程（１）により得られた細胞株におけるマンノシル（α－１，３－）－組換え糖タンパク質β－１，２－Ｎ－アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼ１（ＭＧＡＴ１）遺伝子を突然変異させることと、を含み、
ＭＧＡＴ１遺伝子はＣＲＩＳＰＲによって突然変異され、ｓｇＲＮＡは、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４の核酸配列を含むか又はそれからなり、またはＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４の核酸配列と少なくとも９０％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％の配列同一性を有する核酸配列を含むか又はそれからなる方法である。
本発明で使用可能なプラスミドは、意図された目的のための市販のいずれのものであっても良い。当業者であれば、どのプラスミドがどの目的に適しているかを容易に知ることができ、使用されるプラスミドのバラツキが本発明の方法・製品による技術的効果を実質的に変化させないことを理解できる。
一の実施形態において、ＣＨＯ細胞のような細胞に遺伝子を導入するためのプラスミドは、例えば、複製起点（ｏｒｉ）、プロモーター、目的の遺伝子を移行するためのマルチクローニング部位、および、１つまたは複数の選択マーカーエンコーディング遺伝子（ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ ｍａｒｋｅｒｓ－ｅｎｃｏｄｉｎｇ ｇｅｎｅｓ）などの要素をシングル環状配列に組み込むことによって、手動で調製することができる。ＣＨＯ細胞のような細胞に遺伝子を導入するために従来から使用されているプラスミドの非限定的な例としては、ｐＭＸ２４１（Ａｄｄｇｅｎｅ Ｃａｔ．Ｎｏ．２３０１７）などが挙げられる。
一の実施形態において、ＣＲＩＳＰＲによるプラスミドは、例えば、複製起点（ｏｒｉ）、プロモーター、意図的に設計されたｓｇＲＮＡを受容するためのｓｇＲＮＡ足場、ＣＲＩＳＰＲ関連（Ｃａｓ）エンドヌクレアーゼをコードする遺伝子、および、１つまたは複数の選択マーカーエンコーディング遺伝子などの要素をシングル環状配列に組み込むことによって、手動で調製することができる。ＣＲＩＳＰＲによる従来から利用可能なノックアウトベクターの非限定的な例としては、ｐＳｐＣａｓ９（ＢＢ）－２Ａ－Ｐｕｒｏ（ＰＸ４５９）Ｖ２．０（Ａｄｄｇｅｎｅ Ｃａｔ．Ｎｏ．６２９８８）などが挙げられる。
本発明において、選択マーカーは、当分野で市販されているいずれのものであっても良い。例えば、選択マーカーは、ネオマイシン、ピューロマイシン、ハイグロマイシン、ゼオシン、ブラストサイジンなどを含むが、これらに限定されない。
一の実施形態において、細胞株は、ＲＣＡによって選択される。一の実施形態において、トランスフェクト細胞は、ヒマ凝集素－Ｉ（ＲＣＡ－Ｉ）によって培養する。ＭＧＡＴ１欠損細胞株は、ヒマ凝集素－Ｉ（ＲＣＡ－Ｉ）による培養によってさらにエンリッチすることができる。ＲＣＡ－Ｉは、末端マンノース残基に結合しない細胞毒性のレクチンであるため、ＭＧＡＴ１活性が欠けている細胞（末端マンノース残基を有する糖タンパク質を生産する細胞だから）の選択を可能にする。
一の実施形態において、前記細胞は、動物細胞であり、特に哺乳動物細胞であり、より好ましくはチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞である。例示的な実施形態では、前記細胞株は、糖タンパク質などのような組換えタンパク質の生産に広く使用されるタイプである。例示的な実施形態では、前記細胞株は、ＣＨＯ細胞株である。ＡＴＣＣから数多くのＣＨＯ細胞株が得られる。適切なＣＨＯ細胞株には、ＣＨＯ－Ｋ１細胞およびその誘導体が含まれるが、それらに限らない。
（組換え糖タンパク質）
本発明の別の局面は、本発明の方法によって生産されるマンノース末端のＮ－グリカンを有する、β－グルコセレブロシダーゼのような組換え糖タンパク質を含む。
一の実施形態において、前記組換え糖タンパク質は、β－グルコセレブロシダーゼのような酵素である。一の実施形態において、前記組換え糖タンパク質は、１つまたは複数の末端マンノース残基を含むＮ－グリカンを有する。いくつかの実施形態では、前記組換え糖タンパク質は、２～９の末端マンノース残基（Ｍａｎ２～Ｍａｎ９とも呼ばれる）、例えば、３～６の末端マンノース残基（Ｍａｎ３～Ｍａｎ６とも呼ばれる）、および、末端マンノース残基をブロックしない任意の１～３のフコース残基（１Ｆ～３Ｆとも呼ばれる）、例えば、１のフコース残基（１Ｆとも呼ばれる）を含むＮ－グリカンを有する。本発明における例示的なＮ－グリカンは、Ｍａｎ３、Ｍａｎ４、Ｍａｎ４＋１Ｆ、Ｍａｎ５、Ｍａｎ５＋１Ｆ、Ｍａｎ６などからなる群から選択される。一の実施形態において、組換え糖タンパク質に結合したマンノース末端のＮ－グリカンの割合は、８０％、８５％、８６％、８７％、８８％又は８９％より高い。
酵素活性は、ｐ－ニトロフェニル－ｂ－Ｄ－グルコピラノシド（Ｓｉｇｍａ－Ｎ７００６）を基質として使用して測定した。放出された生成物は、プレートリーダー（ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＤＥＶＩＣＥ，ｉ３Ｘ）によって４０５ｎｍでの吸光度を測定することによって検出された４－ニトロフェノール（Ｓｉｇｍａ－３５８３６－１Ｇ）であった。４－ニトロフェノールの濃度を定量化するために、参照標準曲線を並行してアッセイした。酵素活性は、１ｍＬあたりのｐ－ニトロフェニル－ｂ－Ｄ－グルコピラノシドから放出される１ナノモルの４－ニトロフェノールを、３７℃で１時間あたり触媒するために使われる酵素の量として定義される。一の実施形態において、本発明の細胞株によって生産されるβ－グルコセレブロシダーゼの酵素活性は、約０．２Ｕ／ｍＬ、約０．３Ｕ／ｍ、約０．４Ｕ／ｍＬ、約０．５Ｕ／ｍＬ、約０．６Ｕ／ｍＬより上回る。
組換え糖タンパク質は精製されており、その純度は、約７０％を上回り、約７５％を上回り、約８０％を上回り、約８５％を上回り、約９０％を上回る。純度は、それぞれＣａｌｉｐｅｒ－ＳＤＳ及びＳＥＣ－ＨＰＬＣアッセイによって検出できる。
（治療方法）
本発明の別の局面は、ゴーシェ病のようなβ－グルコセレブロシダーゼ欠損に関する疾患を治療する方法であって、本発明に開示したβ－グルコセレブロシダーゼのような、マンノース末端のＮ－グリカンを有する組換え糖タンパク質を、それを必要とする受験者に投与することか、又は、ゴーシェ病のようなβ－グルコセレブロシダーゼ欠損に関する疾患の治療のための組成物の製造における、本発明に開示したβ－グルコセレブロシダーゼのようなマンノース末端のＮ－グリカンを有する組換え糖タンパク質の使用を含む方法である。
 発明の効果
本発明の方法・製品によって達成できる効果は、以下のようにまとめることができる。
第１に、ＣＨＯ細胞のような細胞におけるβ－グルコセレブロシダーゼのような組換え糖タンパク質を発現するＭＧＡＴ１遺伝子の突然変異によって、本発明は、高純度・高品質・高酵素活性を有する。
第２に、本発明は、より高い突然変異效率を有する特異性ｓｇＲＮＡ（例えば、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４に示されるｓｇＲＮＡ＿５）を含む新しいプラスミドを開発した。
第３に、本発明では、ＭＧＡＴ１欠損細胞株は、ＭＧＡＴ１欠損細胞株の生産工程において、ヒマ凝集素－Ｉ（ＲＣＡ－Ｉ）による培養によりさらにエンリッチすることができる。
第４に、本発明では、細胞内のＭＧＡＴ１遺伝子の突然変異の前に、組換え糖タンパク質をコードする遺伝子を細胞に導入しており、このようにしたメリットは、クローンスクリーニングのための発現された組換え糖タンパク質に対する製品品質属性（ＰＱＡ）及び生産性に関する要求が明確なため、マンノース末端のＮ－グリカンを有する組換え糖タンパク質は、従来技術の方法よりも時短かつ低コストでかつ作業効率高く生産できる。対照的に、最適な宿主細胞をスクリーニングするためのＰＱＡ及び生産性に関する明確に定義された基準がないため、ＭＧＡＴ１遺伝子突然変異を有する最優良宿主細胞をスクリーニングした後に、組換え糖タンパク質をコードする遺伝子を突然変異宿主細胞に導入することは難しくなる。なお、本発明の方法では、突然変異とクローニングは、同じ工程で実施されるものである。
（医薬製剤）
本発明の別の局面は、β－グルコセレブロシダーゼの医薬製剤を含む。前記製剤は、治療有効量のβ－グルコセレブロシダーゼ、緩衝液、浸透圧調節剤及び界面活性剤を含む。一の実施形態において、β－グルコセレブロシダーゼの含有量は、５０～１５０Ｕ／ｍｌ、７５～１２５Ｕ／ｍｌ、８０～１２０Ｕ／ｍｌ、９０～１１０Ｕ／ｍｌ又は１００Ｕ／ｍｌである。一の実施形態において、緩衝液は、含有量が２～１０ｇ／ｍＬ、３～９ｇ／ｍＬ、４～８ｇ／ｍＬ、５～７ｇ／ｍＬ又は５～６ｇ／ｍＬであるクエン酸緩衝液である。一の実施形態において、浸透圧調節剤は、含有量が４０～１２０ｇ／Ｌ、５０～１１０ｇ／Ｌ、６０～１００ｇ／Ｌ、７０～９０ｇ／Ｌ又は８０ｇ／Ｌであるスクロースである。一の実施形態において、界面活性剤は、含有量が０．１～１ｇ／Ｌ、０．１～０．９ｇ／Ｌ、０．１～０．８ｇ／Ｌ、０．１～０．７ｇ／Ｌ、０．１～０．６ｇ／Ｌ、０．１～０．５ｇ／Ｌ、０．１～０．４ｇ／Ｌ、０．１～０．３ｇ／Ｌ又は０．２ｇ／Ｌであるポリソルベート８０である。一の実施形態において、前記製剤のｐＨは５～７である。
本発明に記載の医薬製剤は、保存期間が延長され安定性が向上されたβ－グルコセレブロシダーゼの安定な製剤を提供する。前記製剤は、２～８℃で少なくとも１２週間、又は室温（約２５℃）で少なくとも１２週間、又は４０℃で少なくとも４週間安定的である。前記製剤は、異なる保存条件下において、その物理的および／または化学的および／または生物的活性を保持できる。
（配列表のまとめ）
本出願には、以下のように大量の核酸及びアミノ酸を含む配列表が添付されている。
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１は、ヒトβ－グルコセレブロシダーゼのアミノ酸配列（ＮＰ＿０００１４８．２）である（ｈｔｔｐｓ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｐｒｏｔｅｉｎ／ＮＰ＿０００１４８．２）。
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２は、ヒトβ－グルコセレブロシダーゼの核酸配列（ＮＭ＿０００１５７．３）である（ｈｔｔｐｓ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｎｕｃｃｏｒｅ／ＮＭ＿０００１５７．３）。
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３は、ＣＨＯ－Ｋ１細胞内のＭＧＡＴ１遺伝子のゲノム核酸配列である。
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ： ４は、ｓｇＲＮＡ＿５の核酸配列である。
（略語）
Ｃａｓ：ＣＲＩＳＰＲ関連
ＣＥＸ：陽イオン交換
ＣＨＯ細胞：チャイニーズハムスター卵巣細胞
ＣＲＩＳＰＲ：クラスター化して規則的な配置の短い回文配列リピート
ＤＳＢ：二重鎖切断
ＦＡＣＳ：蛍光活性化セルソーティング
ＧｎＴ Ｉ：Ｎ－アセチル－グルコサミニルトランスフェラーゼ Ｉ
ｇＲＮＡ：ガイドＲＮＡ
ＨＤＲ：相同組換え修復
ＨＩＬＩＣ：親水性相互作用液体クロマトグラフィー
ＬＤＣ：限界希釈クローニング
ＭＧＡＴ１：マンノシル（α－１，３－）－組換え糖タンパク質β－１，２－Ｎ－アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼ
ＮＨＥＪ：非相同末端結合
ＯＲＦ：オープンリーディングフレーム
ｏｒｉ：複製起点
ＰＡＭ：プロトスペーサー隣接モチーフ
ＰＣＲ：ポリメラーゼ連鎖反応
Ｑｐ：比生産性
ＲＴ：応答対取得時間
ｓｇＲＮＡ：一本鎖ガイドＲＮＡ
ＳｐＣａｓ９：化膿レンサ球菌Ｃａｓ９
ＴＡＬＥＮ：転写活性化因子様エフェクターヌクレアーゼ
ＵＰＬＣ：超高パフォーマンス液体クロマトグラフィー
ＶＣＤ：可変細胞濃度
ＶＩＡ：生存率
ＺＦＮ：ジンクフィンガーヌクレアーゼ
２－ＡＢ：２－アミノベンズアミド
［実施例］
全体的に説明された本発明は、以下の実施例を参照するとより分かりやすくなる。以下の実施例は、例示のみを目的とし、本発明を限定する意図がない。これらの実施例は、以下の実験が実施されたすべての実験又は唯一の実験であることを表す意図がない。
［実施例Ｉ］
（β－グルコセレブロシダーゼを安定的に発現するＣＨＯ細胞の作製）
ジェンバンクにアクセッション番号ＮＰ＿０００１４８．２で登録されているβ－グルコセレブロシダーゼ（ｈｔｔｐｓ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｐｒｏｔｅｉｎ／ＮＰ＿０００１４８．２，ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１）をコードするための、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２（ＮＭ＿０００１５７．３，ｈｔｔｐｓ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｎｕｃｃｏｒｅ／ＮＭ＿０００１５７．３で入手可能）に示される核酸配列を含むプラスミドと、Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｉｎｃ．から購入できるＢＭ００１Ｈ培地で培養されたＣＨＯ－Ｋ１細胞に、市販のリポフェクションによって、それぞれトランスフェクトされた２つの抗生物質である。
酵素活性は、ｐ－ニトロフェニル－ｂ－Ｄ－グルコピラノシド（Ｓｉｇｍａ－Ｎ７００６）を基質として使用して測定した。放出された生成物は、プレートリーダー（ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＤＥＶＩＣＥ，ｉ３Ｘ）によって４０５ｎｍでの吸光度を測定することによって検出された４－ニトロフェノール（Ｓｉｇｍａ－３５８３６－１Ｇ）であった。４－ニトロフェノールの濃度を定量化するために、参照標準曲線を並行してアッセイした。酵素活性は、１ｍＬあたりのｐ－ニトロフェニル－ｂ－Ｄ－グルコピラノシドから放出される１ナノモルの４－ニトロフェノールを、３７℃で１時間あたり触媒するために使われる酵素の量として定義される。
比較的高い酵素活性、及びバッチリフィード培養における良好な生存率を備えた安定プールを選択し、クローニングに使用した。結果は表１に示す。
Figure 0007671780000001
［実施例ＩＩ］
（β－グルコセレブロシダーゼを安定的に発現するプールにおけるＭＧＡＴ１遺伝子の突然変異）
Ｃａｓ９と、ＭＧＡＴ１を標的とするｇＲＮＡとを含むプラスミドを構築した。ＭＧＡＴ１を標的とするｇＲＮＡを設計した後に、図１に示すＣａｓ９タンパク質を含むインハウスベクターにライゲイト（ｌｉｇａｔｅｄ）した。ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４（ｓｇＲＮＡ＿５，ＴＧＡＣＡＡＴＧＧＣＡＡＧＧＡＧＣＡＧＡ）に示されるｓｇＲＮＡ５を、さらなる使用のために選択した。
図１に示すｓｇＲＮＡ＿５プラスミドは、市販のリポフェクションによって、実施例Ｉの方法で調製されたプールにトランスフェクトした。
ＲＣＡＩ（ヒマ凝集素）は、野生型ＣＨＯ－Ｋ１細胞に対する毒性が非常に高く、ＲＣＡＩ選択から生き残ったすべての突然変異体が機能不全のＭＧＡＴ１を含んでいたため、クローンスクリーニングにも適用された。クローンが９６ウェルプレートに回収したら、それらを２つのプレートに分割し、一方のプレートＡを通常の培地で培養し、他方のプレートＢをＲＣＡ選択を有する培地で培養される。ＲＣＡＩを含む培地のプレートＢから回収したクローンは、酵素活性アッセイによって選択・スクリーニングした。酵素活性スクリーニング後、酵素活性が比較的高く、単一細胞の画像からモノクローナル性が確認されたモノクローンを、通常の培地で培養したプレートＡから選択し、プレートＡから増殖させた。
モノクローンは、順に９６ウェルプレートから２４ウェルプレートへと増殖され、その後スピンチューブに回された。増殖中に増殖不十分なクローンを廃棄した。その間に、シーケンシングによってすべてのモノクローンに対しＭＧＡＴ１突然変異分析を行い、ＭＧＡＴ１突然変異を持つクローンをバッチリフィードスクリーニング用に選択した。接種時に、細胞培養物を、スピンチューブ内で５×１０５細胞／ｍＬの濃度でフレッシュな生産培地に希釈することによって接種した。培地の大部分は、３日目から、フレッシュな生産培地で毎日リフレッシュされた。ＶＣＤが安定期（ｐｌａｔｅａｕ）に達したとき、ブリーディングプロセス（ｂｌｅｅｄｉｎｇ ｐｒｏｃｅｓｓ）を毎日行い、このプロセスにおいて、ＶＣＤが翌日にピークＶＣＤを維持できるように調節された。消耗量に応じてグルコースも培養物に添加した。培地の大部分が頻繁にリフレッシュされたので、細胞は最適な状態で培養でき、従来のフェッドバッチプロセス（ｆｅｄ－ｂａｔｃｈ ｐｒｏｃｅｓｓ）と比較して、通常、ＶＩＡがよりよく維持される。その結果、バッチリフィードは、例えば、この場合の内因性プロテアーゼ又は酵素の影響を受けやすい融合タンパク質のような壊れやすい生物製剤の生産により適している。クローンのバッチリフィード上清を酵素活性分析に供した。クローンの酵素活性も、ｐ－ニトロフェニル－ｂ－Ｄ－グルコピラノシド（Ｓｉｇｍａ－Ｎ７００６）を基質として使用して測定した。放出された生成物は、プレートリーダー（ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＤＥＶＩＣＥ，ｉ３Ｘ）によって４０５ｎｍでの吸光度を測定することによって検出された４－ニトロフェノール（Ｓｉｇｍａ－３５８３６－１Ｇ）であった。４－ニトロフェノールの濃度を定量化するために、参照標準曲線を並行してアッセイした。酵素活性は、１ｍＬあたりのｐ－ニトロフェニル－ｂ－Ｄ－グルコピラノシドから放出される１ナノモルの４－ニトロフェノールを、３７℃で１時間あたり触媒するために使われる酵素の量として定義される。中国特許出願ＣＮ１０８５８８１２７Ａに開示された方法に従って調製されたクローンをコントロールとして使用した。
より高いβ－グルコセレブロシダーゼ酵素活性及びＱｐを有する最優良なクローンを選択し、それらの上清を、陽イオン交換クロマトグラフィー及び疎水性相互作用クロマトグラフィーによって精製した。精製された酵素に対し、ＳＥＣ、Ｃａｌｉｐｅｒ－ＳＤＳ、Ｎ－グリカン分析を行った。
最終クローンは、酵素活性、Ｑｐ、細胞培養パフォーマンス、モノクローナル性、低コピー数、および、ＳＥＣ、マンノースレベル、Ｃａｌｉｐｅｒ－ＳＤＳ（非還元）を含む製品品質に基づいて選択した。最終クローンは、元のＭＧＡＴ１配列の機能領域に単一核酸が挿入され、当該遺伝子の機能不全を引き起こしたことを示した（表２）。
Figure 0007671780000002
最終クローンは、コントロールクローンよりも高い酵素活性と優れた生産性を示した（表３）。最終クローンの平均酵素活性は、０．５４Ｕ／ｍＬであったのに対し、コントロールクローンの平均酵素活性は０．２６Ｕ／ｍＬであった。また、最終クローンの平均Ｑｐは、コントロールクローンよりも高い０．０２０Ｕ／ｍＬ／細胞／日であった。
Figure 0007671780000003
最終クローンで生産されたβ－グルコセレブロシダーゼの非還元純度及び還元純度のそれぞれを、Ｃａｌｉｐｅｒ－ＳＤＳアッセイによって検出し、Ｃａｌｉｐｅｒ ＬＣ９０ ＣＥ－ＳＤＳ ゲル技術、ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ
Figure 0007671780000004
タンパク質を分析できる、自動化されたチップに基づく蛍光検出法を設計した。データに示すように、非還元β－グルコセレブロシダーゼの純度は８７．７％であった一方、コントロールクローンの純度は７０．６％であった（表４）。
Figure 0007671780000005
最終クローンのモノマーと凝集体を分析するために特異性ＳＥＣ方法を開発した。Ａｇｉｌｅｎｔ ＡｄｖａｎｃｅＢｉｏ ＳＥＣカラム（３００Å，７．８ｍｍ×３００ｍｍ，２．７μｍ）を使用し、定組成溶出勾配（ｉｓｏｃｒａｔｉｃ ｅｌｕｔｉｏｎ ｇｒａｄｉｅｎｔ）を適用して分離した。表５に示すように、最終クローンから発現したβ－グルコセレブロシダーゼモノマーのパーセンテージは、コントロールクローンよりも高かった。
Figure 0007671780000006
β－グルコセレブロシダーゼのＮ結合グリコシル化に対するＭＧＡＴ１遺伝子の突然変異の影響が特定された。ＵＰＬＣ法によってＮ－グリカンの特性（ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ）を分析した。Ｎ＿オリゴ糖は、高速ペプチドＮ－グリコシダーゼＦ（ＰＮＧａｓｅ Ｆ）酵素によって放出され、放出されたオリゴ糖は２－ＡＢによって標識した。Ｎ－グリカンの分離と分量には、ＨＩＬＩＣに基づいたＵＰＬＣを適用した。野生型ＭＧＡＴ１遺伝子を含むプールをコントロールとして使用した。
表６及び図２に示すように、最終クローンから発現したβ－グルコセレブロシダーゼに結合したすべてのＮ－グリカンのうち、８９．３％がマンノース末端のＮ－グリカン、即ち、Ｎ結合Ｍａｎ３、Ｍａｎ４、Ｍａｎ４＋１Ｆ、Ｍａｎ５、Ｍａｎ５＋１Ｆ、Ｍａｎ６などであった。コントロールプール（図３）と比較して、最終クローンにおけるＮ結合Ｍａｎ５の割合が著しく増加し、Ｍａｎレベルが遥かに高くなった。これらのデータは、β－グルコセレブロシダーゼを発現するＣＨＯ細胞におけるＭＡＧＴ１遺伝子の突然変異によって、組換えβ－グルコセレブロシダーゼに結合したマンノース末端のＮ－グリカンの割合を著しく増加させたことを明らかにした。
Figure 0007671780000007
［実施例ＩＩＩ］
（製剤の調製）
実施例ＩＩの最終クローンから生産されたβ－グルコセレブロシダーゼを表７のように製剤に作製した。
Figure 0007671780000008
前記製剤に使用された原料には、クエン酸緩衝液２０ｍＭ、スクロース８％（ｗ／ｖ）、０．０２％（ｗ／ｖ）ＰＳ８０、ｐＨ６．０が含まれる。
（１ｋｇのＰＳ８０保存溶液（１０％ｗ／ｗ）の調製）
成分は、ＰＳ８０を１００ｇ、水を９００ｇで計量された。計量された原料を容器に入れた。すべてのＰＳ８０が溶解したと視認するまで溶液を混合した。
（１ｋｇの製剤緩衝液の調製）
成分は、クエン酸一水和物を０．６４ｇ、クエン酸三ナトリウム二水和物を４．８１ｇ、スクロースを７７．５２ｇ、１０％（ｗ／ｗ） ＰＳ８０保存溶液を１．９４ｇ、水を９１５．０９ｇで計量された。計量された賦形剤をすべて１Ｌの容器に移した。総重量が１０００ｇになるまで水を入れた。すべての賦形剤が完全に溶解したと視認するまで溶液を混合した。
（１ＬのＤＳの希釈と混合）
製剤緩衝液をＤＳに追加し（例えば、酵素比活性が４４．５Ｕ／ｍｇかつ酵素活性が４．１ｍｇ／ｍＬ）、タンパク質（１００Ｕ／ｍＬ）の混合を完了させる。０．５５ＬのＤＳを容器に注いだ後、０．４５Ｌの製剤緩衝液も同じ容器に入れた。次に、希釈されたＤＳを均一に混合した。
［実施例ＩＶ］
（製剤研究）
表８は、前記製剤の主要なパフォーマンス研究を示している。この研究は、前記製剤は、２～８℃で少なくとも１２週間、又は室温（約２５℃）で少なくとも１２週間、又は４０℃で少なくとも４週間安定的であることを明らかにした。前記製剤は、異なる保存条件下において、その物理的および／または化学的および／または生物的活性を保持できる。
Figure 0007671780000009
Figure 0007671780000010
Figure 0007671780000011
（外観）
ガラスバイアルの外壁を洗浄した後、ガラスバイアルのネックをＹＢ－２ライトボックスのゴボの端から２５ｃｍ離れたところに近づけた。色、透明さ、及び見える粒子を含むサンプルの外観を、２０００～３７５０ｌｘの照明レベルで白黒の背景に対して検査した。
（浸透圧）
２０μＬの希釈されていないサンプルの浸透圧を、Ａｄｖａｎｃｅｄ ２０２０によって測定した。測定の前後に、浸透圧計は、２９０ｍＯｓｍ参照溶液によって校正された。
（ｐＨ）
ｐＨ計は、使用前に３つの異なる標準緩衝液（ｐＨ４．０１，７．００及び９．２１）によって校正した。その後、各サンプルに対し、ローディング量（ｌｏａｄｉｎｇ ｖｏｌｕｍｅ）５０μＬでｐＨを測定した。
（水分）
水分含有量は、Ｍｅｔｔｌｅｒ Ｔｏｌｅｄｏ Ｃ３０Ｄ Ｋａｒｌ Ｆｉｓｃｈｅｒ電量計で測定した。室温は約１５～３０℃、空気湿度は５０％以下であった。最初に分析物を添加し、相対シフトが１５μｇ／分未満になるまで装置のバランスを取った。次に凍結乾燥粉末を開いて計量し、装置が水分含有量の読み取り値を示すまで装置に添加した。凍結乾燥粉末による空気中の水分の吸収を避けるために、開封から粉末計量までの工程を速やかに行わなければならない。
（再構成時間）
ｆｌｉｐ－ｏｆｆアルミニウムキャップをガラスバイアルから取り外し、凍結乾燥サンプルに対する直接衝突を避けるために、超純水をバイアル壁から滅菌済みインジェクターで添加した。バイアルをわずかに回転させ、超純水を完全に浸透させた後、静置した。凍結乾燥サンプルが完全に溶解するまで、超純水を注入した時間を記録した。
（タンパク質濃度）
サンプルが均一に混合された後、ＮａｎｏＤｒｏｐ ２０００分光光度計を使用してＵＶ２８０測定値によってタンパク質濃度を特定した。減光係数は、１．７０３ＡＵ＊ｍＬ＊ｍｇ－１＊ｃｍ－１であった。すべての測定は、毎回２．５μＬのローディング量で２回繰り返され、平均値を取った。
（ＣＥ－ＳＤＳ（ＮＲ＆Ｒ））
高電圧の直流電界によって駆動されるＣＥ－ＳＤＳは、分子サイズによってサンプルを分離できるキャピラリー電気泳動法である。担体は、キャピラリー内に充填された連続ゲルであって、キャピラリー内でモレキュラーシーブを形成し、分離チャネルとして機能する連続ゲルであった。ＣＥ－ＳＤＳの場合、電気泳動前のサンプル調製には、ＳＤＳの存在下での特定濃度のサンプルの熱変性が含まれ、これにより、サンプルの固有電荷がマスクされ、すべての種（ｓｐｅｃｉｅｓ）に対し類似の電荷対サイズ比が付与された。一定の電界を印加すると、サンプルはサイズに応じて異なる速度で陽極に向かって移動する。
（ＣＥ－ＳＤＳ－ＮＲ）
ＷＢＰ１０８用のＣＥ＿ＮＲ法は次の実験条件下で行われた：全体積が２５μＬになるように、サンプル５０μｇを希釈溶液ＰＢ－ＣＡに移した後、最終体積が１０５μＬになるように１％ＳＤＳサンプル緩衝液７５μＬとアルキル化試薬５μＬを添加して、溶液を完全に混合した。サンプルをヒートブロック（ｈｅａｔｉｎｇ ｂｌｏｃｋ）において６０℃で１０分間インキュベートした後、室温で少なくとも３分間冷却した。調製されたサンプル９０μＬをインサートに移し、インサートをバイアルに入れた。バイアルに蓋をした後、バイアルをサンプル分析用のサンプルバイアルホルダーに入れた。注射時間は４０秒であった。
（ＣＥ－ＳＤＳ－Ｒ）
ＣＥ＿Ｒ法は次の実験条件下で行われた：全体積が２５μＬになるように、サンプル５０μｇを希釈溶液ＰＢ－ＣＡに移した後、最終体積が１０５μＬになるように１％ＳＤＳサンプル緩衝液７５μＬと還元試薬５μＬを添加して、溶液を完全に混合した。サンプルをヒートブロックにおいて６０℃で１０分間インキュベートした後、室温で少なくとも３分間冷却した。調製されたサンプル９０μＬをインサートに移し、インサートをバイアルに入れた。バイアルに蓋をした後、バイアルをサンプル分析用のサンプルバイアルホルダーに入れた。注射時間は４０秒であった。
（ＲＰ－ＨＰＬＣ）
逆相クロマトグラフィー（ＲＰＣ）とは、非極性逆相担体を固定相とし、極性有機溶媒の水溶液を移動相として、溶質の極性（疎水性）の違いにより溶質を分離・精製する溶出クロマトグラフィーのことである。溶質は、疎水性相互作用によって固定相の表面に分布する。しかし、ＲＰＣ固定相の表面は非極性基で完全に覆われており、強い疎水性を示す。そのため、極性有機溶媒（例えば、メタノール、アセトニトリルなど）又はその水溶液を使用して溶出・分離する必要がある。
ＲＰ法は、次の実験条件下でＨＰＬＣシステムで行われた：Ｗａｔｅｒｓ ＢｉｏＲｅｓｏｌｖｅ ＴＭ ＰＲ ｍＡｂ ポリフェニル，４５０Ａ，２．７ｕｍ，２．１ｍｍ＊１５０ｍｍ，１／ｐｋをカラムとして使用する；０．１％ＴＦＡを含んだ水溶液と０．１％ＴＦＡを含んだＡＣＮ溶液を移動相として適用する；ＵＶ検出器の波長として２８０ｎｍを選択する；カラム温度は４５℃に設定する；サンプルは５℃に置かれる；アイソクラチック流量は０．３ｍＬ／分である；注射量は１０μｇ、実行時間は２７分である。
（ＳＥＣ－ＨＰＬＣ）
ゲルろ過法とも呼ばれるサイズ排除クロマトグラフィー（ＳＥＣ）法は、分子がカラムに充填されたＳＥＣ樹脂を通過するときに、サイズ（流体力学的半径）の違いによって分子を分離する。ＳＥＣ樹脂は、分離される分子と相互作用しないように設計された球状粒子の多孔質マトリックスで構成される。カラムに適用された後、細孔よりも大きな分子はビーズに拡散できないため、最初に溶出する。細孔サイズよりも小さい分子はそのサイズに基づいてさまざまな程度で細孔に浸透できる。
ＳＥＣ法は、次の実験条件下でＨＰＬＣシステムにより行われた：Ａｇｉｌｅｎｔ ＡｄｖａｎｃｅＢｉｏ ＳＥＣ（３００Å，７．８ｍｍ＊３００ｍｍ，２．７μｍ）をカラムとして使用する；５５ｍＭクエン酸ナトリウム＋ ２００ｍＭ Ｌ－アルギニン（ｐＨ５．５±０．１）を移動相として適用する；ＵＶ検出器の波長として２８０ｎｍを選択する；カラム温度は４５℃に設定する；サンプルは５℃に置かれる；アイソクラチック流量は０．６ｍＬ／分である；注射量は３０μｇ、実行時間は４０分である。以下に示す例外を除いて、このＳＥＣ法は、本レポートにおけるすべての研究に適用される。
（ＤＬＳ）
散乱現象は、溶液中の粒子のブラウン運動により、レーザー光が粒子を通過する際に発生する。粒子の流体力学的半径は、ＤＬＳで溶液中の粒子の拡散係数を測定することによって計算及び取得できる。ＤＬＳ分析は、Ｍａｌｖｅｒｎ ＺＥＮ３６００で実施された。サンプル７０μＬを、２５℃で実験するために、バイオセーフティフード内の使い捨てキュベットに添加した。
（ＨＩＡＣ）
サブ可視粒子（Ｓｕｂ－ｖｉｓｉｂｌｅ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ） は、ＨＩＡＣシステムによって監視された。各サンプルは、４回の連続実行（１ｍＬ／実行）で実験された。最初の実行結果が破棄され、残りの３回の実行の平均値が記録された。最後に、データはソフト
Figure 0007671780000012
数として表示された。
（酵素活性）
希釈した酵素を、２０ｍＭ ｐ－ＮＰＧと３７℃で１ｈ混合した。グリシンを１Ｍ添加して反応を停止させた。４０５ｎｍでの吸光度を測定し、サンプル中の酵素の活性に比例する信号を生成した。酵素反応生成物Ｐ－ＮＰの標準曲線をプロットし、ＳｏｆｔＭａｘソフトウェアを使用して線形回帰モデルに従って回帰した。実験サンプルのＯＤ値を、標準曲線と比較して実験サンプルの酵素活性を計算した。
当業者であれば、本発明が、その主旨または中心的な属性から逸脱することなく、他の具体的な形態で具現化され得ることをさらに理解するであろう。本発明の上記説明は、その例示的な実施形態のみを開示し、他の変形例が本発明の範囲内であると考えられることが理解されるべきである。したがって、本発明は、本明細書で詳細に説明された特定の実施形態に限定されない。むしろ、本発明の範囲および内容を示すものとして、特許請求の範囲を参照すべきである

Claims (1)

  1. 治療有効量のβ－グルコセレブロシダーゼ、緩衝液、浸透圧調節剤、および界面活性剤を含む医薬製剤であって、
    前記β－グルコセレブロシダーゼは含有量が１００Ｕ／ｍＬであり、前記緩衝液は含有量が５～６ｇ／Ｌであるクエン酸緩衝液であり、前記浸透圧調節剤は含有量が８０ｇ／Ｌであるスクロースであり、前記界面活性剤は含有量が０．２ｇ／Ｌであるポリソルベート８０であり、前記製剤のｐＨは５．５～６．５である、ことを特徴とする、医薬製剤。
JP2022564107A 2020-04-23 2021-04-21 マンノース末端のｎ－グリカンを有する組換え糖タンパク質を生産する遺伝子改変細胞株 Active JP7671780B2 (ja)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2024203541A JP2025037919A (ja) 2020-04-23 2024-11-05 マンノース末端のｎ－グリカンを有する組換え糖タンパク質を生産する遺伝子改変細胞株

Applications Claiming Priority (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CNPCT/CN2020/086499 2020-04-23
CN2020086499 2020-04-23
CN202110411715 2021-04-16
CN202110411715.6 2021-04-16
PCT/CN2021/088609 WO2021213422A1 (en) 2020-04-23 2021-04-21 A genetically modified cell line producing a recombinant glycoprotein having a mannose-terminated n-glycan

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2024203541A Division JP2025037919A (ja) 2020-04-23 2024-11-05 マンノース末端のｎ－グリカンを有する組換え糖タンパク質を生産する遺伝子改変細胞株

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2023527109A JP2023527109A (ja) 2023-06-27
JP7671780B2 true JP7671780B2 (ja) 2025-05-02

Family

ID=78270255

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2022564107A Active JP7671780B2 (ja) 2020-04-23 2021-04-21 マンノース末端のｎ－グリカンを有する組換え糖タンパク質を生産する遺伝子改変細胞株
JP2024203541A Pending JP2025037919A (ja) 2020-04-23 2024-11-05 マンノース末端のｎ－グリカンを有する組換え糖タンパク質を生産する遺伝子改変細胞株

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2024203541A Pending JP2025037919A (ja) 2020-04-23 2024-11-05 マンノース末端のｎ－グリカンを有する組換え糖タンパク質を生産する遺伝子改変細胞株

Country Status (7)

Country Link
US (1) US20240167010A9 (ja)
EP (1) EP4139442A4 (ja)
JP (2) JP7671780B2 (ja)
KR (1) KR20230002792A (ja)
CN (1) CN115867644B (ja)
TW (1) TWI876033B (ja)
WO (1) WO2021213422A1 (ja)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN116574687A (zh) * 2023-05-10 2023-08-11 华东理工大学 一种提高鸭坦布苏病毒e蛋白亚单位疫苗免疫保护力的方法和应用
WO2025238106A1 (en) 2024-05-15 2025-11-20 M6P Therapeutics (Switzerland) GmbH Lysosome-targeting degradation fusion design

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2011184445A (ja) 2003-04-27 2011-09-22 Protalix Ltd 植物培養における高マンノースタンパク質の製造
JP2013500976A (ja) 2009-07-28 2013-01-10 シャイア ヒューマン ジェネティック セラピーズ インコーポレイテッド ゴーシェ病を治療するための組成物および方法

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20060008415A1 (en) * 2004-06-25 2006-01-12 Protein Design Labs, Inc. Stable liquid and lyophilized formulation of proteins
US20110030072A1 (en) * 2008-12-04 2011-02-03 Sigma-Aldrich Co. Genome editing of immunodeficiency genes in animals
CN108771655A (zh) * 2011-10-28 2018-11-09 诚信生物公司 含有氨基酸的蛋白质制剂
US9376484B2 (en) * 2012-01-11 2016-06-28 Sigma-Aldrich Co. Llc Production of recombinant proteins with simple glycoforms
US10016449B2 (en) * 2013-05-28 2018-07-10 Momenta Pharmaceuticals, Inc. Pharmaceutical compositions

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2011184445A (ja) 2003-04-27 2011-09-22 Protalix Ltd 植物培養における高マンノースタンパク質の製造
JP2013500976A (ja) 2009-07-28 2013-01-10 シャイア ヒューマン ジェネティック セラピーズ インコーポレイテッド ゴーシェ病を治療するための組成物および方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN115867644B (zh) 2025-10-10
WO2021213422A1 (en) 2021-10-28
US20240167010A9 (en) 2024-05-23
CN115867644A (zh) 2023-03-28
KR20230002792A (ko) 2023-01-05
US20230287378A1 (en) 2023-09-14
TW202206594A (zh) 2022-02-16
TWI876033B (zh) 2025-03-11
EP4139442A4 (en) 2024-06-19
JP2025037919A (ja) 2025-03-18
EP4139442A1 (en) 2023-03-01
JP2023527109A (ja) 2023-06-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2025037919A (ja) マンノース末端のｎ－グリカンを有する組換え糖タンパク質を生産する遺伝子改変細胞株
JP6921797B2 (ja) ヒト疾患に関連する生物製剤およびタンパク質の産生のための修飾ポリヌクレオチド
JP6971953B2 (ja) 修飾ポリヌクレオチドを封入する脂質ナノ粒子を含む組成物
KR101454646B1 (ko) 히알루로니다아제의 안정화 제제 및 이를 포함하는 액상제제
US12421299B2 (en) Expression of FC-containing proteins
KR102186997B1 (ko) 단백질 정제의 신규한 방법
CA1171372A (en) Method of cell culture
US9943575B2 (en) Pharmaceutical compositions of tenecteplase
DE69737457T2 (de) O-fukosyltransferase
CN110339349A (zh) 一种重组人尿激酶原组合物及其制备方法
TW202536174A (zh) 一種製備重組人透明質酸酶的方法及應用
RU2809355C1 (ru) РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДА pET32a-TNF-Thy, ОБЕСПЕЧИВАЮЩАЯ СИНТЕЗ ГИБРИДНОГО БЕЛКА α-ФАКТОР НЕКРОЗА ОПУХОЛЕЙ - ТИМОЗИН АЛЬФА 1, ШТАММ БАКТЕРИЙ ESCHERICHIA COLI BL21 (DE3)/pET32A-TNF-Thy - ПРОДУЦЕНТ ГИБРИДНОГО БЕЛКА TNF-Thy, СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ГИБРИДНОГО БЕЛКА TNF-Thy И ЛЕКАРСТВЕННОЕ СРЕДСТВО
JPH02255091A (ja) 変異型ヒトリゾチーム
CN120137925A (zh) 具有低免疫原性且高活性的人源尿酸氧化酶突变体
WO2020022924A1 (ru) Способ очистки имиглюцеразы
MXPA97007645A (en) Obtaining recombinant human erythropoyetine with a superior living biological activity expressed in hamster ovary cells ch
JPH0217153B2 (ja)

Legal Events

Date Code Title Description
A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20230113

A529 Written submission of copy of amendment under article 34 pct

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A529

Effective date: 20221209

A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20230112

A977 Report on retrieval

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007

Effective date: 20231129

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20240109

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20240313

A02 Decision of refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02

Effective date: 20240702

RD01 Notification of change of attorney

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A7426

Effective date: 20241011

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821

Effective date: 20241015

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20241105

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20241115

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821

Effective date: 20250108

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20250415

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20250421

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 7671780

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150