JP7675009B2 - アレナウイルス感染症の治療のための化合物 - Google Patents
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Description
この特許出願は、部分的には、全ての目的のために参照によりその全体が本明細書に組み込まれる2018年12月6日出願の米国仮特許出願第62/776,390号の続きであり、その優先権の利益を主張する。
本発明は、米国立衛生研究所によって授与されたR44 AI112097の下で政府の支援を受けて行われた。政府は本発明に一定の権利を有する。
本発明は、ヒト、他の哺乳動物、又は細胞培養物におけるアレナウイルス感染を阻害するための複素環化合物の使用、ラッサ、ボリビア、アルゼンチン、ベネズエラ、ブラジル、チャパレ及びルジョーの出血熱などのアレナウイルス感染症を治療する方法、アレナウイルスの複製を阻害する方法、アレナウイルスの量を低減する方法、並びにそのような方法のために使用することができる組成物に関する。
アレナウイルス科は、29種(かつ増えている)のマイナス鎖のエンベロープRNAウイルスの多様なファミリーを含む。アレナウイルスは、血清学、遺伝的及び地理的なデータに基づいて、旧世界と新世界の2つのグループに分かれている。旧世界のウイルスは、主に南アフリカと西アフリカ全土で発見され、ラッサ(LASV)、ルジョー(LUJV)、モペイア(MOPV)、イッピー及びモバラ(MOBV)ウイルスと共に、原型のリンパ球性脈絡髄膜炎ウイルス(LCMV)を含む。LASVとLUJVの両方は致死性出血熱(HF)を引き起こす可能性があり、LCMV感染は無菌性髄膜炎と関連付けられる。ラッサ(LASV)だけでも、西アフリカでは毎年30万超の疾患症例を引き起こすと推定されており、そのうち入院患者の15~20%が死亡し、生存者は永久的な両側性難聴を含む後遺症を患うことが多い。主に南米大陸に位置する大きな新世界アレナウイルス群は、3つのクレードA、B、及びCに分かれており、このグループのウイルスの多くは致命的なHFを引き起こす可能性があるので、クレードBが重要である。クレードBのHFウイルスには、タカリベ(TCRV)及びアマパリ(AMPV)などの非HFウイルスと共に、フニン(JUNV)、マチュポ(MACV)、グアナリト(GTOV)、サビア(SABV)及びチャパレが含まれる。ヒトの感染は、感染したげっ歯類の排泄物との接触、又はげっ歯類の尿若しくは唾液で汚れた小さな粒子の吸入(エアロゾル感染)によって起こる。主に院内状況(例えば、病院)で人から人への伝播の証拠もある。ウイルスの潜伏期間は1~2週間であり、続いて発熱、全身倦怠感、衰弱、咽頭痛、頭痛、咳、下痢、及び嘔吐が続く。これらの全身症状は、アレナウイルス感染を鑑別的に診断することを困難にさせる。症状が悪化するにつれて、予後不良は、胸水、顔面浮腫、神経学的合併症及び粘膜表面からの出血を含むことが示されている。現在のアレナウイルス治療はリバビリンの使用に限定され、早期に与えられ、重大な副作用と関連付けられる場合にのみ部分的に有効である。フニンウイルス用のワクチンが開発されているが、その使用は主に、アルゼンチンの農場労働者の最も危険な集団に制限されており、他のアレナウイルスについて承認されたワクチンはない。非常に望ましい予防ワクチンは、急速に出現する、抗原的に異なる新しいウイルス株に対する効果的な対策であるとは限らないが、既存のワクチン開発及び生産戦略は、現在の又は出現するアレナウイルスの多様なファミリーに適切に応答することはできない。したがって、新しい広域スペクトルの抗ウイルス薬は、アレナウイルス感染の固有領域だけでなく、潜在的な生物兵器剤に対する保護手段としての第1線治療及び/又は予防を提供することができる。
Aは、独立してC及びNから選択され;
Gは、独立してCH、CD、及びNから選択され;
Eは、独立してCH、CD、及びNから選択され;
Jは、独立して
から選択され;
R2は、独立してH、D、-OR3、-R4、-NHR10、-CONHR10から選択され;
R3は、独立してH、D、C1~C6アルキル、C2~C6アルケニル、(C3~C10)シクロアルキル、(C2~C9)シクロヘテロアルキル、-NHC(O)R4、-C(O)NHR10、及び-C(O)R10から選択され、式中、各C1~C6アルキルは、任意にD、ハロゲン、-OH、-OR4、-NHR10で置換されており;
R4は、独立して、任意にD、ハロゲン、-OH、-OR10、及びNHR10で置換されているC1~C6アルキル及び(C2~C9)シクロヘテロアルキルから選択され;
R5は、独立して、H、D、C1~C6アルキル、C2~C6アルケニル、C2~C6アルキニル、ハロゲン、-OR3、-CO2R10、-NHC(O)R4、-C(O)NHR10、-NHR10、-CHNHR10、-CN、-CR4、及び-C(O)R10から選択され、式中、各C1~C6アルキルは、任意にDで置換されており;
R6は、独立してH、D、ハロゲン、-OR3、及びR4から選択され;
R9は、独立してH、D、ハロゲン、C1~C6アルキル、及び-OR10から選択され;
R10は、独立してH、D、-OH、C1~C6アルキル及びC2~C6アルケニルから選択され;
Eが、N、CH又はCDの場合、AがCであり、GがCH又はCDであり、Jは
AがNの場合、Jは
但し、以下の化合物は除外される:
一実施形態において、本方法は、構造式I
(式中、
Aは、独立してC及びNから選択され;
Gは、独立してCH、CD、及びNから選択され;
Eは、独立してCH、CD、及びNから選択され;
Jは、独立して
R2は、独立してH、D、-OR3、-R4、-NHR10、-CONHR10から選択され;
R3は、独立してH、D、C1~C6アルキル、C2~C6アルケニル、(C3~C10)シクロアルキル、(C2~C9)シクロヘテロアルキル、-NHC(O)R4、-C(O)NHR10、及び-C(O)R10から選択され、式中、各C1~C6アルキルは、任意にD、ハロゲン、-OH、-OR4、-NHR10で置換されており;
R4は、独立して、任意にD、ハロゲン、-OH、-OR10、及びNHR10で置換されているC1~C6アルキル及び(C2~C9)シクロヘテロアルキルから選択され;
R5は、独立して、H、D、C1~C6アルキル、C2~C6アルケニル、C2~C6アルキニル、ハロゲン、-OR3、-CO2R10、-NHC(O)R4、-C(O)NHR10、-NHR10、-CHNHR10、-CN、-CR4、及び-C(O)R10から選択され、式中、各C1~C6アルキルは、任意にDで置換されており;
R6は、独立してH、D、ハロゲン、-OR3、及びR4から選択され;
R9は、独立してH、D、ハロゲン、-OR10、及びC1~C6アルキルから選択され;
R10は、独立してH、D、-OH、C1~C6アルキル、及びC2~C6アルケニルから選択され;
Eが、N、CH又はCDの場合、AがCであり、GがCH又はCDであり、Jは
AがNの場合、Jは
但し、以下の化合物は除外される:
Aは、独立してC及びNから選択され;
Gは、独立してCH、CD、及びNから選択され;
Eは、独立してCH、CD、及びNから選択され;
Jは、独立して
R2は、独立してH、D、-OR3、-R4、-NHR10、-CONHR10から選択され;
R3は、独立してH、D、C1~C6アルキル、C2~C6アルケニル、(C3~C10)シクロアルキル、(C2~C9)シクロヘテロアルキル、-NHC(O)R4、-C(O)NHR10、及び-C(O)R10から選択され、式中、各C1~C6アルキルは、任意にD、ハロゲン、-OH、-OR4、-NHR10で置換されており;
R4は、独立して、任意にD、ハロゲン、-OH、-OR10、及びNHR10で置換されているC1~C6アルキル及び(C2~C9)シクロヘテロアルキルから選択され;
R5は、独立して、H、D、C1~C6アルキル、C2~C6アルケニル、C2~C6アルキニル、ハロゲン、-OR3、-CO2R10、-NHC(O)R4、-C(O)NHR10、-NHR10、-CHNHR10、-CN、-CR4、及び-C(O)R10から選択され、式中、各C1~C6アルキルは、任意にDで置換されており;
R6は、独立してH、D、ハロゲン、-OR3、及びR4から選択され;
R9は、独立してH、D、ハロゲン、-OR10、及びC1~C6アルキルから選択され;
R10は、独立してH、D、-OH、C1~C6アルキル及びC2~C6アルケニルから選択され;
Eが、N、CH又はCDの場合、AがCであり、GがCH又はCDであり、Jは
AがNの場合、Jは
但し、以下の化合物は除外される:
本明細書で使用する用語「含む(comprising)」及び「含む(including)」は、そのオープンで非制限的な意味で使用される。
)、点線のくさび(
本発明の化合物は、以下に記載の反応経路及び合成スキームを用い、容易に入手可能である出発材料を用いて当技術分野で利用可能な技術を用いて調製され得る。本発明の特定の実施形態の調製は、以下の実施例に詳述されているが、当業者は、記載される調製物が、本発明の他の実施形態を調製するように容易に適合され得ることを認識するであろう。例えば、本発明による非例示的化合物の合成は、当業者に明らかな改変によって、例えば、干渉基を適切に保護することによって、当技術分野で公知の他の適切な試薬への変更によって、又は反応条件の日常的な変更を行うことによって実行され得る。あるいは、本明細書で言及されるか、又は当技術分野で公知の他の反応は、本発明の他の化合物を調製するための適応性を有すると認識されるであろう。
スキーム5
実施例A1~A3の中間体の調製
5-ブロモ-N1-(4-イソプロポキシフェニル)-4-メチルベンゼン-1,2-ジアミン
1,4-ジオキサン(15mL)中の6-ブロモ-1-(4-(tert-ブトキシ)フェニル)-5-メチル-1H-ベンゾ[d]イミダゾール(1g、2.79mmol)の溶液に、(4-(2-ヒドロキシプロパン-2-イル)フェニル)ボロン酸、(0.502g、2.79mmol)、[1,1-ビス(ジフェニルホスフィノ)フェロセン]パラジウム(II)ジクロリド(230mg、0.279mmol)、炭酸カリウム(1.15g、8.4mmol)及び水(5mL)を添加した。得られた反応混合物を窒素で10分間脱気し、次いで、一晩100℃に加熱した。次いで、反応混合物を酢酸エチルで希釈し、水で洗浄した。有機相をNa2SO4上で乾燥させ、濾過し、真空濃縮した。残渣をSiO2カラムクロマトグラフィー(ヘキサイン/EtOAc 7:3から1:4)により精製し、無色油として826mgの生成物を得た。1H NMR (500 MHz, DMSO-d6) δ 8.48 (s, 1H), 7.67 (s, 1H), 7.58 (d, 2H), 7.52 (d, 2H), 7.31 (s, 1H), 7.29 (d, 2H), 7.17 (d, 2H), 5.01 (s, 1H), 2.32 (s, 3H), 1.46 (s, 6H), 1.34 (d, 9H). LC/MS m/z: 415.32 (M+H)+。
6-ブロモイミダゾ[1,2-a]ピリジン-7-カルボニトリル
メチル2-ブロモ-4-((4-イソプロポキシフェニル)アミノ)-5-ニトロベンゾエート
工程1:1,6-ビス(4-イソプロポキシフェニル)-1H-ベンゾ[d][1,2,3]トリアゾール-5-カルボアルデヒド
工程1:6-ブロモ-7-メチルイミダゾ[1,2-a]ピリミジン
工程1:4-(3-(4-(tert-ブトキシ)フェニル)-7-メチルイミダゾ[1,2-a]ピリジン-6-イル)フェノール
マイクロ波反応器バイアルに6-ブロモ-3-(4-(tert-ブトキシ)フェニル)-7-メチルイミダゾ[1,2-a]ピリジン(25mg、0.07mmol)、4-ヒドロキシフェニルボロン酸(11mg、0.083mmol、1.2当量)、Pd(dppf)Cl2(6mg、10モル%)、及び炭酸カリウム(30mg、210mmol、3当量)を添加する。次いで、1.5mLの1,4-ジオキサン及び0.5mLの水を添加し、窒素を5分間泡立てることによって混合物を脱気した。次いで、バイアルをしっかりとキャップし、80℃で1時間マイクロ波照射に供する。得られた混合物を酢酸エチルで希釈し、水層を酢酸エチルで3回抽出し、続いてNa2SO4上で乾燥させて、蒸発させ、粗生成物を得る。粗材料を、溶出液として100%酢酸エチルを用いるシリカゲルフラッシュクロマトグラフィーを用いて精製し、薄茶色油として20mgの表題化合物を得る。LC/MS m/z: 373.35 (M+H)+。
アレナウイルス糖タンパク質を発現するVSVシュードタイプシステム(本明細書で、LASV-p、MACV-p、JUNV-p、GTOV-p及びTCRV-pと呼ばれる偽ウイルス)並びにレニラルシフェラーゼレポーター遺伝子複素環化合物を利用して、VSV糖タンパク質を発現する天然VSVウイルスではなく、偽ウイルスの感染を阻害する個々の化合物を同定するためにスクリーニングした。VSV糖タンパク質を発現するVSVウイルス、又はLASV、MACV、JUNV、GTOV及びTCRV糖タンパク質を有する偽ウイルス(LASV-p、MACV-p、JUNV-p、GTOV-p及びTCRV-p)を、培養HEK293T細胞(ATCC CRL-3216)内で作製し、10cm皿内で10%FBS、1×Pen-Strep、非必須アミノ酸及びL-グルタミンを補充したDMEM中で増殖させた。細胞が約80%のコンフルエンスに達すると、所望の糖タンパク質をコードする15μgのpCAGGSプラスミド及び45μlのPEI(ポリエチレンイミン)トランスフェクション試薬(PEI MAX、Polysciences社、番号24765)の混合物でトランスフェクトした。細胞を5%CO2、37℃で5時間溶液とインキュベートし、次いで、洗浄し、混合物を補充済みDMEMと置き換え、37℃、5%CO2で約16~18時間インキュベートした。その後、細胞を、約50μlのVSVレポーターウイルスに感染させ、VSV糖タンパク質をルシフェラーゼレポーター遺伝子に置換した。細胞を1時間感染させ、次いで、PBSで1回を洗浄し、補充済み培地内でインキュベートした。感染の24時間後、上清を収集し、遠心分離して、0.45μmのフイルターを通して濾過することによって清澄化し、-80℃で保存した。VSV-ルシフェラーゼとアレナウイルス糖タンパク質シュードタイプの両方を、ルシフェラーゼアッセイプロトコル(下記)に記載のように、Vero細胞における発光活性について滴定した。Vero細胞(ATCC:CCL-81)を、透明な384ウェルプレート(3000細胞/ウェル)内の補充済みDMEM培地中で増殖させた。37℃、5%CO2で一晩インキュベートした後、細胞をアッセイ培地中の所望の濃度の化合物及び偽ウイルスで処理した。アッセイ培地は、50%のOpti-MEM、50%DMEM、1%FBS、Pen-Strep、非必須アミノ酸及びL-グルタミンからなっていた。生じたウイルス上清の各々を希釈し(1:100~1:2000)、類似の200以上の発光シグナル/バックグラウンド値を得た。化合物試験ウェル中の最終DMSO濃度を1%以下で保持し、対照ウェルをアッセイ培地及び1%DMSOで処理した。細胞を37℃、5%CO2で24時間インキュベートした。化合物-ウイルス混合物を感染の24時間後に細胞から吸引し、PBSで1回を洗浄した。次いで、メーカーの指示に従って希釈したルシフェラーゼキットの20μlの溶解緩衝液を用いて細胞を溶解した。約20分間インキュベートした後、5μlの細胞溶解物を不透明な白色プレートに移し、緩衝液で希釈した12.5μlのセレンテラジンと混合した。この混合物をプレートシェーカー上で10分間、室温でインキュベートし、次いで、プレートリーダー(535nm発光のBeckman Coulter DTX 880マルチモード検出器)を用いて発光を読み取った。化合物含有ウェル及び対照ウェルの発光シグナルを得て、各化合物の活性(ルシフェラーゼシグナルの阻害)%を決定した。
シュードタイプアッセイにおける活性化合物も、3日間にわたって細胞毒性について評価した。化合物を連続希釈し、Vero細胞(4000細胞/ウェル)に添加し、最終DMSO濃度を、1%のFBSを有する最小必須培地(MEM)からなる増殖培地中で1%に維持した。プレートを3日間、37℃でインキュベートし、次いで、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)で洗浄して死細胞を除去した。1時間の中性赤色色素で細胞を染色し、次いで、50%エタノール溶液/1%酢酸溶液で脱染色することによってCPEを評価した。吸光度を、Spectramax Plus 384分光光度計で540nm及び690nmで読み取った。データを(540nm~690nm)として分析し、次いで、未処理の対照と比較して、細胞生存率%を得た。
12ウェル使い捨て細胞培養プレートにおいて、コンフルエント又はコンフルエントに近い細胞培養単層を調製した。細胞を、10%FBSを補充したMEM又はDMEMで維持した。抗ウイルスアッセイでは、同じ培地を用いたが、FBSを2%以下に低下させ、1%ペニシリン/ストレプトマイシンを補充した。試験化合物を、2×MEM又は2×DMEMにおいて7つの半log10最終濃度(01~10μM)で調製した。試験化合物及び陽性対照化合物(ファビピラビル又はリバビリン)を、生物学的3つ組で、並行して調べた。このアッセイを、最初に、細胞の12ウェルプレートから増殖培地を除去することによって開始し、所定の濃度の化合物及び0.01のMOIのウイルス又は約50~100個のプラーク形成ユニット(pfu)で負荷した。細胞を60分間:100μLの接種物/ウェル、37℃、5%CO2、一定の穏やかな揺れでインキュベートした。ウイルス接種物を除去し、細胞を洗浄し、2×MEMで1:1希釈し、対応する薬物濃度と共に2%FBS及び1%ペニシリン/ストレプトマイシンを補充した1%アガロース又は1%メチルセルロースのいずれかを覆った。細胞を、5日間、5%CO2、37℃でインキュベートした。次いで、オーバーレイを取り除き、プレートを、10%緩衝化ホルマリン中の0.05%クリスタルバイオレットで、室温で約20分間染色した。プレートを洗浄し、乾燥させ、プラークの数を数えた。化合物希釈の各セットにおけるプラークの数を、未処理のウイルス対照に対する割合に変換した。次いで、50%有効(EC50、ウイルス阻害)濃度を、線形回帰分析によって計算した。CC50をEC50で割った商から、選択指数(SI)値を得る。10以上のSI値を示す化合物は活性があると見なした。
VYR試験は、ウイルス複製を阻害する試験化合物の濃度を直接判定するものである。化合物及びウイルスを、Vero細胞に3~4日間添加し、その時に上清を除去し、感染性粒子について試験した。上清を、希釈あたり3又は4個のマイクロウェルを用いて、96ウェルプレート中のVero細胞の新鮮な単層上にてウイルスのlog10希釈物を滴定した。ウェルを、別々のCPEが観察された後に、ウイルスの有無についてスコア化した。各濃度で得られるウイルスのlog10に対する阻害剤濃度をプロットすると、線形回帰による90%有効濃度の計算が可能となる。加えて、細胞毒性CC50値を決定するために、ウイルスを含まないVero細胞にて並行して化合物を異なる濃度で調べた。選択指数(SI)をCC50/EC90の比として計算した。
選択化合物を、ELISAベースのアッセイを用いて、天然の複製タカリベ(TCRV)ウイルス(TRVL-11573、BEI Resources)に対して試験した。Vero細胞(ATCC:CCL-81)を、96ウェルフォーマット(5000細胞/ウェル)中の補充済みDMEM培地中で増殖させた。一晩インキュベーションした後、1%FBS及び補助剤を有するMEM培地中で、細胞をTCRV及び所望の濃度の化合物で処理した。化合物試験ウェル中の最終DMSO濃度を1%以下に保持し、対照ウェルをTCRV又は培地及び1%DMSOで処理した。5%CO2、37℃での5日間のインキュベーション後に、細胞を2%のパラホルムアルデヒドで45分間固定し、次いで、PBSで洗浄した。その後、細胞を0.25%のトリトン-Xで透過処理し、次いで、TCRVを以下のプロトコルに従って、ELISAを用いて検出した。TCRVヌクレオタンパク質と交差反応するモノクローナル抗フニンウイルス抗体(BEI 番号NR 41860)を用いて細胞を染色した。洗浄後、細胞をビオチン共役二次抗体で処理し、その後、ストレプトアビジン共役西洋ワサビペルオキシダーゼで処理した。ウェルにTMB基質を添加し、2Mの硫酸を用いて反応を停止した。吸光度を、プレートリーダー(450nm発光のベックマンコールターDTX 880マルチモード検出器)を用いて読み取った。化合物含有ウェル及び対照ウェルについてのOD測定値を得て、各化合物の%活性を決定した。
インビトロでアレナウイルスに対する広範な阻害活性を実証する化合物の能力に加えて、化合物はまた、アレナウイルスを阻害し、インビボで哺乳動物におけるアレナウイルス感染症の治療方法を提供するために使用される特定の薬物様特性を有する必要がある。そのような化合物は、肝臓ミクロソームCYP p450酵素による代謝分解に対する化学的安定性、細胞透過性及び経口生物学的利用能(薬物が経口で送達される場合)及び心臓安全性に関連付けられるhERGイオンチャネルの阻害の欠如を含むがこれらに限定されない薬物様特性を示し得る[Kerns,E.H.Li,D. 薬物様特性:ADMEから毒性最適化の概念、構造設計及び方法(Drug-like Properties: Concepts, Structure Design and Methods from ADME to Toxicity Optimization),(2008) Academic Press,Burlington MA]。上記の出版物は、全ての目的のために参照により本明細書に組み込まれる。化学シリーズの薬剤様特性を特徴付けるため、実施例の化合物を、ヒト、マウス、モルモット、サル、ラット、マウス、又はイヌの肝臓ミクロアッセイにおける代謝安定性について(表4)、及びhERGイオンチャネルの阻害について(表5)評価した。親の60%超の残存を示す化合物は、魅力的な化学的安定性を示す。ヒト及び非ヒト種における良好なミクロソーム安定性の実証は、前臨床動物研究で化合物を試験し、最適化する能力を促進する。
異なるクラスに属する薬物は、QT延長及び場合によっては、重篤な心室性不整脈に関連付けられることが示されている。これらの有害事象の最も一般的な機構は、1以上の心臓カリウムチャネル、特にhERGの阻害である。この電流は心筋細胞再分極に重要であり、QT間隔を延長する薬物の共通の標的である。したがって、この研究の試験物を、hERGチャネルを阻害する能力を決定するために特徴付けた。イオンチャネル活性を、hERG mRNAを発現する安定的にトランスフェクトされたチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞株を用いて測定した。CHO細胞株で発現するこのクローンチャネルの薬理学は、天然組織で観察されたものと非常によく似ている。細胞を10%FBS、1%ペニシリン/ストレプトマイシン及び500μg/mlのG418を含むDMEM/F12中で培養した。試験前に、細胞をAccumax(Innovative Cell Technologies)を用いて収集した。電気生理学的記録では、次の溶液を使用した:外部溶液:2mMのCaCl2;2mMのMgCl2;4mMのKCl;150mMのNaCl;10mMのグルコース;10mMのHEPES;305~315mOsm;pH7.4(5MのNAOHで調整);内部溶液:140mMのKCl;10mMのMgCl2;6mMのEGTA;5mMのHEPES-Na;5mMのATP-Mg;295~305mOsm;pH7.25(1MのKOHで調整)。全細胞記録を、AVIVAのSealChip(登録商標)技術を用いてPX7000A(Axon Instruments)を用いて行った。細胞を、-80mVの保持電位で電圧クランプした。次いで、hERG電流を、脱分極工程で300ミリ秒間、-50mVに活性化した。-50mVのこの第1の工程を、テール電流のピーク振幅を測定するためのベースラインとして用いた。次に、チャンネルを活性化するために、+20mVまでの電圧工程を5秒間適用した。最後に、5秒間、-50mVに戻す工程により活性化を除去し、非活性化テール電流を記録した。0.1%DMSO(ビヒクル)を含む外部溶液を細胞に加え、ベースラインを確立した。電流を3~10分間安定させた後、試験物を加えた。試験物溶液を、4つの別々の添加で細胞に添加した。細胞を、試験物の効果が定常状態に達するまで、最大で12分、試験溶液中に保持した。次に、1mMのシサプリド(陽性対照)を添加した。最後に、外部溶液による洗浄を、リカバリ電流が定常状態になるまで行った。データ解析を、DataXpress(Axon Instruments)、Clampfit(Axon Instruments)及びOrigin(OriginLab Corporation)ソフトウェアを用いて行った。
Claims (13)
-
からなる群から選択され、
Dは、少なくとも45%の重水素の組み込みを示す、化合物、又はその溶媒和物、水和物、医薬として許容される塩。 - 前記化合物が、
からなる群から選択される、請求項1に記載の化合物、又はその溶媒和物、水和物、医薬として許容される塩。 - 前記化合物は、
である、請求項2に記載の化合物、又はその医薬として許容される塩。 -
からなる群から選択される、化合物、又はその溶媒和物、水和物、医薬として許容される塩。 - 前記化合物は、
である、請求項4に記載の化合物、又はその医薬として許容される塩。 - 請求項1~5のいずれか一項に記載の化合物、又はその医薬として許容される塩と、医薬として許容される担体、希釈剤若しくはビヒクルとを含む、医薬組成物。
- 医薬として使用するための、請求項6に記載の医薬組成物。
- アレナウイルス科エンベロープウイルスファミリーのウイルスに関連する感染症を治療する方法で使用するための、請求項6に記載の医薬組成物。
- 請求項1~5のいずれか一項に記載の医薬として許容される用量の化合物が、
医薬として許容される用量の、リバビリン、ポリメラーゼ阻害剤、ファビピラビル、トリアザビリン、低分子干渉RNA(siRNA)、ワクチン、モノクローナル抗体、及び免疫調節薬から選択される化合物の少なくとも1つと共に投与される、請求項8に記載の感染症を治療する方法で使用するための、請求項6に記載の医薬組成物。 - 請求項3に記載の化合物、又はその医薬として許容される塩と、医薬として許容される担体、希釈剤若しくはビヒクルとを含む、医薬組成物。
- アレナウイルス科エンベロープウイルスファミリーのウイルスに関連する感染症を治療する方法で使用するための、請求項10に記載の医薬組成物。
- 請求項3に記載の医薬として許容される用量の化合物が、医薬として許容される用量のファビピラビルと共に投与される、請求項11に記載の感染症を治療する方法で使用するための、請求項10に記載の医薬組成物。
- ラッサウイルスに関連する感染症を治療する方法において使用するための、請求項6又は10に記載の医薬組成物。
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