JP7707065B2 - Angptl8を阻害するための新規のrna組成物および方法 - Google Patents
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Description
基準として役立つ核酸配列が本明細書に開示されている。同じ配列を特許事項のために標準的な要件に従った形式の配列表に提示する。標準的な配列表といかなる配列の相違がある場合も、本明細書に記載されている配列が基準であるものとする。本出願は、電子的にASCII形式で提出された配列表を含み、その全体を参照によって本明細書に組み入れる。2019年11月15日に作成された上記ASCIIコピーの名称は、022548_P1058_SL.txtであり、サイズは244,191バイトである。
- Bは、複素環式核酸塩基であり、
- L1およびL2の一方は、式(I)の化合物を前記鎖と連結するヌクレオシド間連結基であり、L1およびL2の他方は、H、保護基、リン部分もしくは式(I)の化合物を前記鎖と連結するヌクレオシド間連結基であり、
- Yは、O、NH、NR1もしくはN-C(=O)-R1であり、式中、R1は、以下であり:
・ 場合により、ハロゲン原子、(C1~C6)アルキル基、(C3~C8)シクロアルキル基、(C3~C14)ヘテロ環、(C6~C14)アリール基、(C5~C14)ヘテロアリール基、-O-Z1、-N(Z1)(Z2)、-S-Z1、-CN、-C(=J)-O-Z1、-O-C(=J)-Z1、-C(=J)-N(Z1)(Z2)、および-N(Z1)-C(=J)-Z2から選択される1つもしくはそれ以上の基によって置換された(C1~C20)アルキル基(式中、
Jは、OもしくはSであり、
Z1およびZ2のそれぞれは、独立して、H、場合により、ハロゲン原子および(C1~C6)アルキル基から選択される1つもしくはそれ以上の基によって置換された(C1~C6)アルキル基である)、
・ 場合により、ハロゲン原子および(C1~C6)アルキル基から選択される1つもしくはそれ以上の基によって置換された(C3~C8)シクロアルキル基、
・ 基-[C(=O)]m-R2-(O-CH2-CH2)p-R3(式中、
mは、0もしくは1を意味する整数であり、
pは、0から10の範囲の整数であり、
R2は、場合により、(C1~C6)アルキル基、-O-Z3、-N(Z3)(Z4)、-S-Z3、-CN、-C(=K)-O-Z3、-O-C(=K)-Z3、-C(=K)-N(Z3)(Z4)、もしくは-N(Z3)-C(=K)-Z4によって置換された(C1~C20)アルキレン基であり、
Kは、OもしくはSであり、
Z3およびZ4のそれぞれは、独立して、H、場合により、ハロゲン原子および(C1~C6)アルキル基から選択される1つもしくはそれ以上の基によって置換された(C1~C6)アルキル基であり、
R3は、水素原子、(C1~C6)アルキル基、(C1~C6)アルコキシ基、(C3~C8)シクロアルキル基、(C3~C14)ヘテロ環、(C6~C14)アリール基もしくは(C5~C14)ヘテロアリール基からなる群から選択されるか、
もしくはR3は、細胞標的化部分である)、
- X1およびX2はそれぞれ、独立して水素原子、(C1~C6)アルキル基であり、
- Ra、Rb、RcおよびRdのそれぞれは、独立して、Hもしくは(C1~C6)アルキル基である。
A4は、OHもしくはNHC(=O)-R5であり、式中、R5は、場合により、ハロゲン原子によって置換された(C1~C6)アルキル基である。
本開示の特定の態様は、ANGPTL8を標的とする二本鎖リボ核酸(dsRNA)分子に関する。本明細書中で使用される場合、「二本鎖RNA」または「dsRNA」という用語は、2本の逆平行で実質的に相補的な核酸鎖を有する二本鎖構造を含むオリゴリボヌクレオチド分子を指す。二本鎖構造を形成する2本の鎖は、1つのより大きなRNA分子の異なる部分である場合もあり、またはそれらは別個のRNA分子にある場合もある。2本の鎖が別個のRNA分子上にある場合、dsRNA構造は、小分子干渉RNA(siRNA)として機能することができる。2本の鎖が1つのより大きな分子の一部であり、第1の鎖の3’末端と第2の鎖の5’末端との間で連続したヌクレオチドの鎖によって連結されている場合、連結するRNA鎖は、「ヘアピンループ」と言及され、RNA分子は、「短ヘアピンRNA」、または「shRNA」と呼ばれる場合もある。RNA鎖は、同じまたは異なる数のヌクレオチドを有する場合もある。二本鎖構造に加えて、dsRNAは、1つまたはそれ以上(例えば、1、2、もしくは3つ)のヌクレオチドのオーバーハングを含む場合もある。
いくつかの実施形態において、(センス鎖中の)センス配列および(アンチセンス鎖中の)アンチセンス配列のそれぞれは、9~30ヌクレオチド長である。例えば、各配列は、21、22、23、24、25、26、27、28、29、または30の上限および9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、または20の独立して選択される下限を有するヌクレオチド長の任意の範囲が可能である。いくつかの実施形態において、各配列中のヌクレオチドの数は、15~25(すなわち、各配列において15から25ヌクレオチド)、15~30、16~29、17~28、18~28、18~27、18~26、18~25、18~24、18~23、18~22、18~21、18~20、19~30、19~29、19~28、19~27、19~26、19~25、19~24、19~23、19~22、または19~21が可能である。
いくつかの実施形態において、本開示のdsRNAは、センスおよびアンチセンス鎖の一方または両方の3’末端、5’末端、または両末端に1つまたはそれ以上のオーバーハングを含む。いくつかの実施形態において、1つまたはそれ以上のオーバーハングは、dsRNAの安定性および/または阻害活性を向上させる。
本開示のdsRNAのアンチセンス鎖は、ANGPTL8 RNA(例えば、mRNA)中の12~30ヌクレオチド長の標的配列と実質的または完全に相補的なアンチセンス配列を含む。例えば、標的配列は、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、または30の上限および12、13、14、15、16、17、18、または19の独立して選択される下限を有するヌクレオチド長の任意の範囲が可能である。いくつかの実施形態において、標的配列中のヌクレオチドの数は、15~25、15~30、16~29、17~28、18~28、18~27、18~26、18~25、18~24、18~23、18~22、18~21、18~20、19~30、19~29、19~28、19~27、19~26、19~25、19~24、19~23、19~22、または19~21が可能である。
配列番号6および138;
配列番号23および155;
配列番号40および172;
配列番号41および173;
配列番号42および174;
配列番号43および175;
配列番号44および176;
配列番号67および199;
配列番号100および232;
配列番号123および255;
配列番号124および256;または
配列番号131および263。
配列番号23および155;
配列番号42および174;
配列番号43および175;または
配列番号44および176。
本開示のdsRNAは、例えば、細胞取り込み、標的配列に対する親和性、阻害活性、および/または安定性を向上させるために1つまたはそれ以上の修飾を含むことができる。修飾としては、例えば、末端修飾、塩基修飾、糖修飾/置換、および骨格修飾を含む、当該技術分野において既知の任意の修飾を挙げることができる。末端修飾としては、例えば、5’末端修飾(例えば、リン酸化、コンジュゲーション、および反転結合(inverted linkage))ならびに3’末端修飾(例えば、コンジュゲーション、DNAヌクレオチド、および反転結合)を挙げることができる。塩基修飾としては、例えば、安定化塩基、不安定化塩基もしくは広範なレパートリーのパートナーと塩基対を作る塩基による置換、塩基の除去(ヌクレオチドの脱塩基修飾)、またはコンジュゲートされた塩基を挙げることができる。糖修飾または置換としては、例えば、糖部分の2’もしくは4’位における修飾、または糖部分の置換を挙げることができる。骨格修飾としては、例えば、1つまたはそれ以上のホスホロチオアート、ホスホロジチオアート、リン酸トリエステル、メチルおよびその他のアルキルホスホナート、ホスフィナート、ならびにホスホルアミダートによる、例えば、リン酸ジエステル結合の修飾または置換を挙げることができる。
- Bは、複素環式核酸塩基であり;
- L1およびL2の一方は、式(I)の化合物をポリヌクレオチドと連結するヌクレオシド間連結基であり、L1およびL2の他方は、H、保護基、リン部分もしくは式(I)の化合物をポリヌクレオチドと連結するヌクレオシド間連結基であり、
- Yは、O、NH、NR1もしくはN-C(=O)-R1であり、式中、R1は、以下であり:
・ 場合により、ハロゲン原子、(C1~C6)アルキル基、(C3~C8)シクロアルキル基、(C3~C14)ヘテロ環、(C6~C14)アリール基、(C5~C14)ヘテロアリール基、-O-Z1、-N(Z1)(Z2)、-S-Z1、-CN、-C(=J)-O-Z1、-O-C(=J)-Z1、-C(=J)-N(Z1)(Z2)、および-N(Z1)-C(=J)-Z2から選択される1つもしくはそれ以上の基によって置換された(C1~C20)アルキル基(式中、
Jは、OもしくはSであり、
Z1およびZ2のそれぞれは、独立して、H、場合により、ハロゲン原子および(C1~C6)アルキル基から選択される1つもしくはそれ以上の基によって置換された(C1~C6)アルキル基である)、
・ 場合により、ハロゲン原子および(C1~C6)アルキル基から選択される1つもしくはそれ以上の基によって置換された(C3~C8)シクロアルキル基、
・ 基-[C(=O)]m-R2-(O-CH2-CH2)p-R3(式中、
mは、0もしくは1を意味する整数であり、
pは、0から10の範囲の整数であり、
R2は、場合により、(C1~C6)アルキル基、-O-Z3、-N(Z3)(Z4)、-S-Z3、-CN、-C(=K)-O-Z3、-O-C(=K)-Z3、-C(=K)-N(Z3)(Z4)、もしくは-N(Z3)-C(=K)-Z4によって置換された(C1~C20)アルキレン基であり、
Kは、OもしくはSであり、
Z3およびZ4のそれぞれは、独立して、H、場合により、ハロゲン原子および(C1~C6)アルキル基から選択される1つもしくはそれ以上の基によって置換された(C1~C6)アルキル基であり、
R3は、水素原子、(C1~C6)アルキル基、(C1~C6)アルコキシ基、(C3~C8)シクロアルキル基、(C3~C14)ヘテロ環、(C6~C14)アリール基もしくは(C5~C14)ヘテロアリール基からなる群から選択されるか、もしくはR3は、細胞標的化部分である)、
- X1およびX2はそれぞれ、独立して水素原子、(C1~C6)アルキル基であり、
- Ra、Rb、RcおよびRdのそれぞれは、独立して、Hもしくは(C1~C6)アルキル基である。
A4は、OHまたはNHC(=O)-R5であり、式中、R5は、場合により、ハロゲン原子によって置換された(C1~C6)アルキル基である。
本dsRNAは、1つまたはそれ以上のリガンドまたは部分と共有結合的または非共有結合的に連結させることができる。そのようなリガンドおよび部分の例は、例えば、Jeongら、Bioconjugate Chem.(2009年)20:5~14頁およびSebestyenら、Methods Mol. Biol.(2015年)1218:163~86頁に見出すことができる。いくつかの実施形態において、dsRNAは、1つまたはそれ以上のリガンドとリンカーを介してコンジュゲートされる/結びつけられる。例えば、多価(例えば、二価、三価、または四価)の分岐リンカーを含む、当該技術分野において既知の任意のリンカーを使用することができる。リンカーは、切断可能または切断不可能な場合もある。リガンドをdsRNAとコンジュゲートすることは、その分布を変え、その細胞の吸収および/もしくは特定の組織に対する標的化および/もしくは1つもしくはそれ以上の特定の細胞タイプ(例えば、肝臓細胞)による取り込みを増大させ、ならびに/またはdsRNAの存続期間もしくは半減期を増大させることもある。いくつかの実施形態において、疎水性リガンドは、dsRNAとコンジュゲートされ、細胞膜の直接的な浸透および/または細胞(例えば、肝臓細胞)を超えた取り込みを促進する。ANGPTL8標的dsRNA(例えば、siRNA)に関して、標的組織は、肝臓の実質細胞(例えば、肝細胞)を含む、肝臓である場合もある。
本開示のdsRNAは、当該技術分野において既知の任意の方法によって合成することができる。例えば、dsRNAは、自動合成機の使用によって、(例えば、市販のインビトロRNA合成キットを使用した)インビトロ転写および精製によって、細胞(例えば、dsRNAをコードする発現カセット/ベクターを含む細胞)からの転写および精製などによって合成することができる。いくつかの実施形態において、dsRNAのセンスおよびアンチセンス鎖は、別々に合成された後、アニーリングされて、dsRNAを形成する。いくつかの実施形態において、式(I)の修飾ヌクレオチドを含み、場合により、細胞標的化部分(例えば、GalNAc)とコンジュゲートされたdsRNAは、国際公開第2019/170731号の開示に従って調製することができる。
本開示の特定の態様は、本明細書に記載されているdsRNAを含む組成物(例えば、医薬組成物)に関する。いくつかの実施形態において、本組成物は、薬学的に許容される賦形剤をさらに含む。いくつかの実施形態において、本組成物は、ANGPTL8遺伝子の発現または活性に関連する疾患または障害を処置するのに有用である。いくつかの実施形態において、ANGPTL8遺伝子の発現に関連する疾患または障害は、高トリグリセライド血症などの脂質代謝障害および/または本明細書に記載されている任意のその他の状態である。本開示の組成物は、送達の様式に基づいて製剤化することができ、例えば、非経口投与による肝臓への送達のために製剤化された組成物を含む。
リポソームは、親油性材料および水性内部から形成される膜を有する単層または多重膜ベシクルである。いくつかの実施形態において、リポソームは、球状の二重膜または複数の二重膜中に配置された両親媒性脂質から構成されるベシクルである。水性部分は、送達される組成物を含む。カチオン性リポソームは、細胞壁と融合できるという利点をもつ。リポソームの利点としては、例えば、天然のリン脂質から得られるリポソームが生体適合性であり、生分解性であること;リポソームが広い範囲の水溶性および脂溶性薬物を含むことができること;ならびにリポソームがその内部区画にカプセル化された薬物を代謝および分解から保護することができることが挙げられる(Rosoff、Pharmaceutical Dosage Forms、Lieberman、RiegerおよびBanker(編)、1988年、Marcel Dekker, Inc.、New York、N.Y.、第1巻、245頁)。リポソーム製剤の調製において重要な考慮すべき事項は、リポソームの脂質表面電荷、ベシクルサイズおよび水様液の体積である。例えば、dsRNAを送達するために設計されたカチオン性リポソームおよび立体的に安定化されたリポソームを使用することができる。例えば、Podestaら、Methods Enzymol.(2009年)464:343~54頁;米国特許第5,665,710号を参照。
いくつかの実施形態において、本開示のdsRNAは、脂質製剤中に完全にカプセル化されて、例えば、以下に限定されない、SPLP、pSPLP、またはSNALPなどの核酸・脂質粒子を形成する。本明細書中で使用される場合、「SNALP」という用語は、SPLPを含む、安定な核酸・脂質粒子を指す。本明細書中で使用される場合、「SPLP」という用語は、脂質ベシクル内にカプセル化されたプラスミドDNAを含む核酸・脂質粒子を指す。核酸・脂質粒子、例えば、SNALPは、一般にカチオン性脂質、非カチオン性脂質、および粒子の凝集を防ぐ脂質(例えば、PEG・脂質コンジュゲート)を含む。SNALPおよびSPLPは、静脈(i.v.)注射後に長い循環存続期間を示し、遠位部位(例えば、投与部位から物理的に離れた部位)に蓄積するため、全身適用に有用である。SPLPは、「pSPLP」を含み、これらとしては、国際公開第2000/003683号に記載されているカプセル化された凝縮剤・核酸複合体が挙げられる。
インビボでdsRNA分子を首尾よく送達するために検討する重要な要素としては、(1)送達分子の生物学的安定性、(2)非特異的効果の予防、および(3)標的組織における送達分子の蓄積が挙げられる。dsRNAの非特異的効果は、例えば、組織への直接注射もしくは挿入による局部投与によって、または調製物を局所投与することによって最小限にすることができる。疾患の処置のためのdsRNAの全身投与では、dsRNAを、修飾するか、あるいは薬物送達系を使用して送達することができ;いずれの方法も、インビボにおけるエンドおよびエキソヌクレアーゼによるdsRNAの急速な分解を妨げるよう働く。RNAの修飾または医薬賦形剤も、dsRNA組成物の標的組織に対する標的化を可能にし、望ましくないオフターゲット効果を回避することができる。上記のとおり、dsRNA分子を、コレステロールなどの親油性基との化学的コンジュゲーションによって修飾して、細胞取り込みを増大させ、分解を防ぐことができる。いくつかの実施形態において、dsRNAは、ナノ粒子(例えば、リン酸カルシウムナノ粒子)、デンドリマー、ポリマー、リポソーム、またはカチオン性送達系などの薬物送達系を使用して送達される。正の電荷をもつカチオン性送達系は、(負の電荷をもつ)dsRNA分子の結合を促進し、負の電荷をもつ細胞膜における相互作用も増大させて、細胞によるdsRNAの効率的な取り込みを可能にする。カチオン性脂質、デンドリマー、またはポリマーは、dsRNAと結合させるか、またはdsRNAを入れるベシクルもしくはミセルを形成させることができる(例えば、Kimら、Journal of Controlled Release(2008年)129(2):107~16頁を参照)。ベシクルまたはミセルの形成は、全身投与されたときにdsRNAの分解をさらに妨げる。カチオン性dsRNA複合体を生成および投与する方法は、当該技術分野において知られている。いくつかの実施形態において、dsRNAは、全身投与のためのサイクロデキストリンと複合体を形成することができる。
本開示のdsRNAは、標的細胞にdsRNAをコードする組み換えベクター(DNAもしくはRNAベクター)を導入することによって標的細胞に間接的に送達することができる。dsRNAは、細胞内のベクターから、例えば、shRNAの形態で発現されることになり、shRNAは、その後、siRNAに細胞内でプロセシングされる。いくつかの実施形態において、ベクターは、プラスミド、コスミド、またはウイルスベクターである。いくつかの実施形態において、ベクターは、原核細胞における発現に適合している。いくつかの実施形態において、ベクターは、大腸菌(E.coli)における発現に適合している。いくつかの実施形態において、ベクターは、真核細胞における発現に適合している。いくつかの実施形態において、ベクターは、酵母菌細胞における発現に適合している。いくつかの実施形態において、ベクターは、脊椎動物細胞における発現に適合している。例えば、アデノウイルス(AV)、アデノ随伴ウイルス(AAV)、レトロウイルス(例えば、レンチウイルス(LV)、ラブドウイルス、マウス白血病ウイルスなど)、ヘルペスウイルス、SV40ウイルス、ポリオーマウイルス、パピローマウイルス、ピコルナウイルス、ポックスウイルス(例えば、オルソポックスまたはアビポック)など由来のベクターを含む、当該技術分野において既知のdsRNAをコードすることが可能な任意の発現ベクターを使用することができる。ウイルスベクターまたはウイルス由来のベクターの指向性は、必要に応じて1つもしくはそれ以上の他のウイルスのエンベロープタンパク質もしくはその他の表面抗原でベクターをシュードタイプすることによって、または異なるウイルスカプシドタンパク質を代わりに用いることによって改変することができる。例えば、レンチウイルスベクターは、水疱性口内炎ウイルス(VSV)、狂犬病ウイルス、エボラウイルス、Mokolaウイルスなどの表面タンパク質でシュードタイプすることができる。AAVベクターは、異なる血清型のカプシドタンパク質を発現するようベクターを操作することによって異なる細胞を標的とするように作製することができる。例えば、血清型2のゲノムに基づいて血清型2のカプシドを発現するAAVベクターは、AAV2/2と呼ばれる。AAV2/2ベクター中のこの血清型2のカプシド遺伝子を、血清型5のカプシド遺伝子によって置き換えて、AAV2/5ベクターを生成することができる。異なる血清型のカプシドタンパク質を発現するAAVベクターを構築するための技術は、以前に示されている(例えば、Rabinowitzら、J. Virol.(2002年)76:791~801頁を参照)。
本開示の特定の態様は、対象(例えば、ヒトなどの霊長類対象)におけるANGPTL8遺伝子の発現を阻害するための方法であって、治療有効量の1つもしくはそれ以上の本開示のdsRNA、1つもしくはそれ以上の本開示のベクター、または1つもしくはそれ以上の本開示の医薬組成物を投与することを含む方法に関する。本開示の特定の態様は、1つまたはそれ以上の本明細書に記載されている状態(例えば、高トリグリセライド血症などのANGPTL8関連状態)を処置する方法および/または予防する方法であって、1つもしくはそれ以上の本開示のdsRNAおよび/または1つもしくはそれ以上の本開示のベクターおよび/または1つもしくはそれ以上の本明細書に記載されているdsRNAを含む1つもしくはそれ以上の医薬組成物を投与することを含む方法に関する。いくつかの実施形態において、対象におけるANGPTL8発現のダウンレギュレートは、対象における本明細書に記載されている状態(例えば、高トリグリセライド血症などのANGPTL8関連状態)の1つまたはそれ以上の症状を軽減する。
本開示の特定の態様は、ANGPTL8関連状態(例えば、高トリグリセライド血症などの脂質代謝障害)の処置および/もしくは予防に有用な1つもしくはそれ以上の本明細書に記載されているdsRNA、ベクター、もしくは組成物(例えば、医薬組成物)を含む製造品またはキットに関する。製造品またはキットは、容器と、容器上のまたは容器に関連するラベルまたは添付文書とをさらに含む場合もある。適した容器としては、例えば、ボトル、バイアル、シリンジ、静注液バッグなどが挙げられる。容器は、ガラスまたはプラスチックなどのさまざまな材料から形成することができる。容器は、単独で、もしくは疾患を処置もしくは予防するのに有効な別の組成物と組み合わされた組成物を保持し、滅菌した入り口を有することもできる(例えば、容器は、皮下注射針が貫通可能な栓を有する静注液バッグもしくはバイアルが可能である)。組成物中の少なくとも1つの活性剤は、本明細書に記載されるdsRNAである。ラベルまたは添付文書は、組成物がANGPTL8関連状態を処置するために使用されることを示す。いくつかの実施形態において、状態は、高トリグリセライド血症などの脂質代謝障害および/または本明細書に記載されている別の状態である。さらに、製造品またはキットは、(a)中に入れられた本明細書に記載されているdsRNAを含む組成物を有する第1の容器;および(b)中に入れられた第2の治療用薬剤を含む組成物を有する第2の容器(例えば、本明細書に記載されている追加の薬剤)を含む。本開示のこの態様における製造品またはキットは、組成物が特定の疾患を処置するために使用することができることを示す添付文書をさらに含むことができる。あるいは、またはさらに、製造品またはキットは、注射用の静菌水(BWFI)、リン酸緩衝生理的食塩水、リンゲル液およびデキストロース溶液などの薬学的に許容されるバッファーを含む第2の(または第3の)容器をさらに含むことができる。それは、その他のバッファー、希釈剤、フィルター、注射針、およびシリンジを含む、商業的および/または使用者の観点から望ましいその他の材料をさらに含むことができる。
非標的化対照siRNA(NT対照)を含む、siRNAを、固相オリゴヌクレオチド合成を使用して作製した。
siRNA生成
RNAオリゴヌクレオチドを、2’-OMeもしくは2’-F修飾を有する市販のウリジンの5’-O-DMT-3’-O-(2-シアノエチル-N,N-ジイソプロピル)ホスホラミダイトモノマー(SAFC)、4-N-アセチルシチジン(CAc)、6-N-ベンゾイルアデノシン(ABz)および2-N-イソブチリルグアノシン(GiBu)、ならびに固相担体5’-O-DMT-チミジン-CPGおよび3’-O-DMT-チミジン-CPG(invdT、Link)を使用して、固相合成および脱保護に関する標準的なプロトコルに従って、1μmol(インビトロ)もしくは10μmol(インビボ)のスケールでABI 394 DNA/RNAまたはBioAutomation MerMade 12合成機において合成した(Beaucageら、Curr. Opin. Drug Discov. Devel.(2008年)11:203~16頁;Muellerら、Curr. Org. Synth.(2004年)1:293~307頁)。
バッファーA:1.50L H2O、2.107g NaClO4、438mg EDTA、1.818g TRIS、540.54g 尿素、pH7.4。
バッファーB:1.50L H2O、105.34g NaClO4、438mg EDTA、1.818g TRIS、540.54g 尿素、pH7.4。
インビトロ実験(100μM溶液)およびインビボ実験(10mg/ml)のために、PBS中のsiRNAの保存液を、等モル量の相補的なセンスおよびアンチセンス鎖を1×PBSバッファー中で混合することによって調製した。その溶液を90℃に10分間加熱し、室温にゆっくりと冷まして、アニーリングプロセスを完了させた。siRNAを、HPLCによってさらに特徴づけ、使用まで凍結保存した。
各siRNAの配列、およびヌクレオチド修飾を含む配列を上記表1および2に示す。
修飾siRNAを、50%マウス血清中でヌクレアーゼ安定性に関して試験した。1×DPBS(Life Technologies、カタログ番号14190-094)中の2.5μMのsiRNA 160μLおよびマウス血清160μL(Sigma、カタログ番号M5905)を、37℃で最大72hインキュベートした。各時点(0h、8h、24h、32h、48h、56h、および72h)において、反応の20μLを採取し、停止液(Tissue & Cell Lysis Solution(Epicentre、カタログ番号MTC096H)、プロテイナーゼK(Sigma、カタログ番号P2308)、水)で65℃において30分間クエンチした。Waters 2695 Separation Moduleおよび2487 Dual Absorbance DetectorにおけるHPLC分析に先立って、RNアーゼフリー水を各サンプルに添加した。その溶液を、DNAPac PA200分析カラム(Thermo Scientific、カタログ番号063000)を使用したHPLCによって分析した。
方法
細胞および組織培養
ヒトHep3B細胞を、37℃、5% CO2および95%相対湿度(RH)で増殖させ、10% FBSを加えたEMEM培地(ATCC、カタログ番号30-2003)中で培養した。
Hep3B細胞におけるノックダウン実験のために、96ウェルプレート(Greiner、カタログ番号655180)に20,000細胞/ウェルを使用した。その細胞に、リバーストランスフェクション設定において製造業者のプロトコルに従って、Lipofectamine RNAiMAXトランスフェクション試薬(Thermo Fisher)を0.2μL/ウェル使用して0.1nMおよび1nMのANGPTL8 siRNAをトランスフェクションし、培地を変えずに48hインキュベートした。通常、試験サンプル毎にN=4の技術的反復を行った。
siRNAトランスフェクションまたは自然なsiRNA取り込みの48または72時間後、細胞のRNAを、手順中のDNアーゼステップを含む、製造業者のプロトコルに従ってPromegaのSV96 total RNA isolation system(カタログ番号Z3500)の使用によって回収した。
IC50測定のために、96ウェルプレートの20,000のヒトHep3B細胞に、5~8倍希釈段階を使用して25nMから開始する7つの濃度の示したANGPTL8 siRNAを、Lipofectamine RNAiMAXを用いて48時間トランスフェクションした。各siRNAに関する半数阻害濃度(IC50)を、Biostat-Speed統計計算ツールを利用することによって計算した。RatkovskyおよびReedy(Biometrics(1986年)42(3):575~82頁)による4パラメーターロジスティックモデルを使用して結果を得た。SAS v9.1.3ソフトウェアにおいてLevenberg-Marquardtアルゴリズムを使用した非線形回帰によって補正を得た。
96ウェルプレートの各ウェル当たり10,000のHep3B細胞の培養物の5nMおよび50nMのsiRNAトランスフェクションの72時間後に、各サンプル中の細胞生存率/毒性の比を求めることによって細胞傷害性を測定した。細胞生存率を、製造業者のプロトコルに従ってCellTiter-Gloアッセイ(Promega、カタログ番号G7570)を使用した細胞内ATP含有量の決定によって測定した。細胞毒性を、製造業者のプロトコルに従ってToxiLightアッセイ(Lonza、カタログ番号LT07-217)を使用して上清において測定した。10nMのAllStars Hs Cell Death siRNA(Qiagen、カタログ番号SI04381048)、25μMのケトコナゾール(Calbiochem、カタログ番号420600)および1%のTriton X-100(Sigma、カタログ番号T9284)を毒性の陽性対照として使用した。
ヒトANGPTL8を標的とする際に有用なsiRNAを特定するために、コンピュータでのライブラリー生成のために以下の基準を適用した:まず、18ヌクレオチドの重なる部分を有する、NM_018687.6に示されているヒトANGPTL8 mRNA配列からの19塩基長をコンピュータで特定した。862個の19塩基長の得られたプールを、その後、カニクイザル(Macaca fascicularis)(カニクイザル)のANGPTL8 mRNA配列とアライメントし、カニクイザルにおいて2個以上のミスマッチを有するすべての配列を除外した。これにより、ミスマッチが0個の401個のsiRNA配列、およびミスマッチが1個のさらに294個のsiRNA配列が残った。
方法
非標的化対照siRNA(NT対照)を含む、GalNAc-siRNAを、示された配列に基づいて生成した(上の配列表を参照)。
ヒト(BioreclamationIVT、カタログ番号M00995-P)およびカニクイザル(Primacyt、カタログ番号CHCP-I-T)初代肝細胞を以下のとおり培養した:播種および解凍キット(Primacyt、カタログ番号PTK-1)を使用して、凍結保存細胞を解凍し、播種し、37℃、5% CO2および95% RHでインキュベートした。播種の6時間後、培地を1% FBSを加えた維持培地(KaLy-Cell、カタログ番号KLC-MM)に変えた。
自然な取り込み条件下におけるヒトおよびカニクイザル初代肝細胞の用量・活性関係およびIC50測定を示すために、96ウェルプレートの50,000~70,000細胞を、培地を変えずに、10倍希釈段階を使用して10μM~0.01nMの範囲の濃度のsiRNAとともに72時間インキュベートした。各siRNAに関する半数阻害濃度(IC50)を、Biostat-Speed統計計算ツールを利用することによって計算した。RatkovskyおよびReedy(Biometrics(1986年)42(3):575~582頁)による4パラメーターロジスティックモデルを使用して結果を得た。SAS v9.1.3ソフトウェアにおいてLevenberg-Marquardtアルゴリズムを使用した非線形回帰によって補正を得た。
強力なsiRNAの選択後、本発明者らは、選択した分子がインビボにおける肝臓特異的なsiRNA送達に適したGalNAcコンジュゲートの文脈において活性を保持するかどうかを実証することに着手した。本発明者らは、この活性が前臨床種であるカニクイザル(M.fascicularis)(カニクイザル)の細胞において持続するかどうかも評価した。
方法
細胞および組織培養
ヒトHep3B細胞を、37℃、5% CO2および95% RHで増殖させ、10% FBSを加えたEMEM培地(ATCC、カタログ番号30-2003)中で培養した。
ヒトPBMCの上清中のIFNαタンパク質濃度を以下のとおり定量した:細胞培養上清25μLを、MesoScale Discoveryの技術に基づくそれ自体が確立された電気化学発光アッセイを利用し、pan IFNαモノクローナル捕捉抗体(MT1/3/5、Mabtech)を使用したIFNα濃度の測定のために使用した。あるいは、ヒトIFNα2aアイソフォーム特異的アッセイ(カタログ番号K151VHK)を、MesoScaleのU-PLEXプラットフォームに基づいて、供給業者のプロトコルに従って利用した。
ヒト初代肝細胞におけるsiRNAの細胞傷害性を、自然な取り込み条件下における1μM、5μMおよび25μMのsiRNAとの96ウェルプレートの1ウェル当たり45,000~50,000細胞のインキュベーションの72時間後に、各サンプル中の細胞生存率/毒性の比を求めることによって測定した。細胞生存率を、CellTiter-Gloアッセイ(Promega、カタログ番号G7570)を使用して細胞内ATP含有量を求めることによって測定し、上清中の細胞毒性を、製造業者のプロトコルに従ってLDHアッセイ(Sigma、カタログ番号11644793001)を使用して測定した。25μMのケトコナゾールおよび1%のTriton X-100を、陽性対照として使用した。
GalNAcコンジュゲートsiRNAを、実施例1に記載されている方法を使用してヌクレアーゼ安定性に関して試験した。
インビボにおけるヒトANGPTL8を標的とするGalNAc-siRNAの効果を評価するために、マウスにおいてアデノ随伴ウイルスベクターに基づく導入遺伝子発現系を利用した。この目的を達成するために、ApoA2プロモーターからヒトANGPTL3およびANGPTL8を同時にコードするバイシストロン性mRNAの肝臓特異的な発現を伴うAAV8ベクター(Vectalys、Toulouse、France)、を、siRNA投薬前に雌のC57BL/6マウス(Charles River、Germany)に静脈内投与した。AAVベクターから発現されたヒトANGPTL3の血清レベルが十分に高い血清レベルに達した後、(非標的化対照を含む)GalNAcコンジュゲートsiRNAを15mg/kg(n=8)で皮下投与した。ヒトANGPTL8を標的とするsiRNAの活性を、代用物としてヒトANGPTL3を測定することによって定量した。
siRNAで処置したマウスにおける血清ANGPTL3タンパク質レベルを、R&D SystemsのヒトANGPTL3 Quantikine ELISAキット(カタログ番号DANL30)を利用することによって定量した。ANGPTL3血清レベルを、非標的化対照siRNAで処置した群と比較して計算した。
ヒト初代細胞においてインビトロでのANGPTL8を標的とする12個のGalNAc-siRNAの免疫応答を、siRNAのトランスフェクションに応じて健康な3人の異なるドナーから単離したヒト初代PBMCから分泌されるインターフェロンαの産生(図3)を調べることによって測定した。いかなる試験siRNAに関してもヒトPBMCにおける免疫刺激のサインは確認されなかった。
方法
修飾GalNAc siRNA配列の生成
式(I)の修飾ヌクレオチドを有するさらに最適化されたGalNAc siRNA配列を、国際公開第2019/170731号に記載されているとおりに合成した。すべてのオリゴヌクレオチドを、ABI 394合成機において合成した。市販の(Sigma Aldrich)標準的な保護基を有するDNA-、RNA-、2’-OMe-RNA、および2’-デオキシ-F-RNA-ホスホラミダイト、例えば、5’-O-ジメトキシトリチル-チミジン-3’-O-(N,N-ジイソプロピル-2-シアノエチル-ホスホラミダイト、5’-O-ジメトキシトリチル-2’-O-tert-ブチルジメチルシリル-ウラシル-3’-O-(N,N-ジイソプロピル-2-シアノエチル)-ホスホラミダイト、5’-O-ジメトキシトリチル-2’-O-tert-ブチルジメチルシリル-N4-シチジン-3’-O-(N,N-ジイソプロピル-2-シアノエチル)-ホスホラミダイト、5’-O-ジメトキシトリチル-2’-O-tert-ブチルジメチルシリル-N6-ベンゾイル-アデノシン-3’-O-(N,N-ジイソプロピル-2-シアノエチル)-ホスホラミダイト、5’-O-ジメトキシトリチル-2’-O-tert-ブチルジメチルシリル-N2-イソブチリル-グアノシン-3’-O-(N,N-ジイソプロピル-2-シアノエチル)-ホスホラミダイト、5’-O-ジメトキシトリチル-2’-O-メチル-ウラシル-3’-O-(N,N-ジイソプロピル-2-シアノエチル)-ホスホラミダイト、5’-O-ジメトキシトリチル-2’-O-メチル-N4-シチジン-3’-O-(N,N-ジイソプロピル-2-シアノエチル)-ホスホラミダイト、5’-O-ジメトキシトリチル-2’-O-メチル-N6-ベンゾイル-アデノシン-3’-O-(N,N-ジイソプロピル-2-シアノエチル)-ホスホラミダイト,5’-O-ジメトキシトリチル-2’-O-メチル-N2-イソブチリル-グアノシン-3’-O-(N,N-ジイソプロピル-2-シアノエチル)-ホスホラミダイト,5’-O-ジメトキシトリチル-2’-デスオキシ-フルオロ-ウラシル-3’-O-(N,N-ジイソプロピル-2-シアノエチル)-ホスホラミダイト、5’-O-ジメトキシトリチル-2’-デオキシ-フルオロ-N4-シチジン-3’-O-(N,N-ジイソプロピル-2-シアノエチル)-ホスホラミダイト、5’-O-ジメトキシトリチル-2’-デオキシ-フルオロ-N6-ベンゾイル-アデノシン-3’-O-(N,N-ジイソプロピル-2-シアノエチル)-ホスホラミダイト、および5’-O-ジメトキシトリチル-2’-デオキシ-フルオロ-N2-イソブチリル-グアノシン-3’-O-(N,N-ジイソプロピル-2-シアノエチル)-ホスホラミダイトならびに対応する固相担体材料(CPG-500Å、ローディング40μmol/g、ChemGenes)を、自動オリゴヌクレオチド合成のために使用した。
イオン交換:AKTA精製装置、(Thermo Fisher Scientific DNAPac PA200セミ分取イオン交換カラム、8μm粒子、幅22mm×長さ250mm)。
バッファーA:1.5L H2O、2.107g NaClO4、438mg EDTA、1.818g TRIS、540.54g 尿素、pH7.4。
バッファーB:1.5L H2O、105.34g NaClO4、438mg EDTA、1.818g TRIS、40.54g 尿素、pH7.4。
オリゴヌクレオチドの単離を、4倍容量のエタノールの添加および-20℃における保管により引き起こされる沈殿によって達成した。
最適化されたANGPTL8 siRNAの安定性を、以下を除いて実施例1に記載されているとおりに判定した:siRNAを37℃で0h、24h、48h、72h、96h、および168hインキュベートした。プロテイナーゼKをQiagen(カタログ番号19133)から購入し、HPLC分析を、1260 DAD検出器を使用したAgilent Technologies 1260 Infinity II機器において実施した。
ヒトHep3B細胞、ヒト初代肝細胞、および初代ヒトPBMCを、単離し、実施例2~4に記載されているとおりに培養した。mRNAの分析を、実施例2に記載されているとおりに行った。細胞傷害性を、実施例2に記載されているとおりにヒトHep3B細胞の5nMおよび50nMのsiRNAトランスフェクションの72時間後に測定した。ヒトPBMCの上清中のIFNαタンパク質濃度を、実施例4に記載されているとおりに定量した。
修飾GalNAc-ANGPTL8 siRNAのインビボ活性を、ヒトANGPTL3およびANGPTL8 mRNAをコードするバイシストロン性AAV8ベクターにより形質導入されたマウスにおいて実施例4に記載されているとおりに測定した。実施例4とは対照的に、6mg/kgの単回のsiRNA用量を、各処置群当たり5匹の雄のC57BL/6マウスに皮下注射した。血清ANGPTL3レベルを、ELISAによって測定した。
修飾GalNAc-ANGPTL8 siRNAで処置したマウスにおける血清ANGPTL3タンパク質レベルを、肝臓インビボsiRNA活性の測定の代用物として使用し、実施例4に記載されているとおりに定量した。
54個の異なるsiRNA修飾パターンを、設計し、2個のGalNAcコンジュゲートsiRNAコンストラクトに適用した(siRNA#023-cおよびsiRNA#042-c)。2×54個のsiRNA分子のライブラリー(siRNA#023-c-01からsiRNA#023-c-54およびsiRNA#042-c-01からsiRNA#042-c-54、表3および4)を、それぞれのsiRNAセンス鎖の5’末端にある3個の連続した修飾GalNAcコンジュゲートヌクレオチドを使用して合成した。
ヒトANGPTL8 mRNA配列(配列番号529)
1 ataccttaga ccctcagtca tgccagtgcc tgctctgtgc ctgctctggg ccctggcaat
61 ggtgacccgg cctgcctcag cggcccccat gggcggccca gaactggcac agcatgagga
121 gctgaccctg ctcttccatg ggaccctgca gctgggccag gccctcaacg gtgtgtacag
181 gaccacggag ggacggctga caaaggccag gaacagcctg ggtctctatg gccgcacaat
241 agaactcctg gggcaggagg tcagccgggg ccgggatgca gcccaggaac ttcgggcaag
301 cctgttggag actcagatgg aggaggatat tctgcagctg caggcagagg ccacagctga
361 ggtgctgggg gaggtggccc aggcacagaa ggtgctacgg gacagcgtgc agcggctaga
421 agtccagctg aggagcgcct ggctgggccc tgcctaccga gaatttgagg tcttaaaggc
481 tcacgctgac aagcagagcc acatcctatg ggccctcaca ggccacgtgc agcggcagag
541 gcgggagatg gtggcacagc agcatcggct gcgacagatc caggagagac tccacacagc
601 ggcgctccca gcctgaatct gcctggatgg aactgaggac caatcatgct gcaaggaaca
661 cttccacgcc ccgtgaggcc cctgtgcagg gaggagctgc ctgttcactg ggatcagcca
721 gggcgccggg ccccacttct gagcacagag cagagacaga cgcaggcggg gacaaaggca
781 gaggatgtag ccccattggg gaggggtgga ggaaggacat gtaccctttc atgcctacac
841 acccctcatt aaagcagagt cgtggcatct caaaaaaaaa aaaaaaaa
ヒトANGPTL8ポリペプチド配列(配列番号530)
MPVPALCLLW ALAMVTRPAS AAPMGGPELA QHEELTLLFH GTLQLGQALN
GVYRTTEGRL TKARNSLGLY GRTIELLGQE VSRGRDAAQE LRASLLETQM
EEDILQLQAE ATAEVLGEVA QAQKVLRDSV QRLEVQLRSA WLGPAYREFE
VLKAHADKQS HILWALTGHV QRQRREMVAQ QHRLRQIQER LHTAALPA
カニクイザルANGPTL8 mRNA配列(配列番号531)
1 atgggggatg ccctcccctc cttccctggg gtgcagtcac tgaccggcag ggcctggctg
61 gggtcctcgc ctgtcatgta ctgcactcgc acggcaaggt tgcgcacgga gccctggcgg
121 ctgctgaagt tgaggctgtg cgggtacacg tacagcagac cctcagtcat gctagtgcct
181 gctctgtgcc tgctgtgggc cctggcaatg gtgatccagc ctgcctcagc ggcccccgtg
241 ggcagcccag aactggcaga gcatgaggag ctgaccctgc tcttccatgg gaccctgcag
301 ctgggccagg ccctcaatgg tgtgtacaag accacggagg gacggctgac aaaggccagg
361 aacagcctgg gtctctatgg ccgcacagtg gaactcctgg ggcaggaggt cagccggggc
421 cgggatgcag cccaggaact tcgggcaagc ctgttggaga ctcagatgga ggaggatatt
481 ctgcagctga aggcagaggc catagccgag gtgctggagg aggtggccca ggcacagaag
541 gtgctacagg acagcgtgcg gcggctagaa gtccagctga ggagcgcctg gctgggccct
601 gcctaccaag aatttgaggt cttaaaggct cacgctgaca agcagagcca catcctgtgg
661 gccctcacag gccacgtgca gcggcagagg cgggagatgg tggcacagca gcatcggctg
721 cgacagatcc aggagagaat ccacaaagcg gcgctcccag cctgaatctg cctggatgga
781 actgaggacc aaccatgctg caaggaacac ttccacgccc catgaggccc ctgaacaggg
841 aggagctgcc tgttcactgg gatcagccag ggcgcccggc cccacttctg agcacagagc
901 agagacagac gcaggcaggg acaaaggcag aggacgtagc cccattgggg aggggtggag
961 gaaggatgtg taccctttca tacctacaca ccccccttat taaagcagag tcgtggcatc
1021 tca
カニクイザルANGPTL8ポリペプチド配列(配列番号532)
MLVPALCLLW ALAMVIQPAS AAPVGSPELA EHEELTLLFH GTLQLGQALN
GVYKTTEGRL TKARNSLGLY GRTVELLGQE VSRGRDAAQE LRASLLETQM
EEDILQLKAE AIAEVLEEVA QAQKVLQDSV RRLEVQLRSA WLGPAYQEFE
VLKAHADKQS HILWALTGHV QRQRREMVAQ QHRLRQIQER IHKAALPA
Claims (51)
- アンジオポエチン様タンパク質8(ANGPTL8)遺伝子のRNA転写物上の標的配列を標的とすることによってヒトANGPTL8遺伝子の発現を阻害する二本鎖リボ核酸(dsRNA)であって、該dsRNAは、センス配列を含むセンス鎖、およびアンチセンス配列を含むアンチセンス鎖を含み、センス配列は、標的配列と少なくとも95%同一であり、標的配列は、配列番号529のヌクレオチド315~333である、前記dsRNA。
- センス鎖およびアンチセンス鎖は、15~25の連続するヌクレオチドの領域にわたり互いに相補的である、請求項1に記載のdsRNA。
- センス鎖およびアンチセンス鎖は、30ヌクレオチド長を超えない、請求項1または2に記載のdsRNA。
- dsRNAは、配列番号155のヌクレオチド配列と少なくとも95%同一であるアンチセンス配列を含む、請求項1~3のいずれか1項に記載のdsRNA。
- センス配列およびアンチセンス配列は、相補的であり、
a)センス配列は、配列番号23のヌクレオチド配列を含むか;または
b)アンチセンス配列は、配列番号155のヌクレオチド配列を含む、
請求項1に記載のdsRNA。 - dsRNAのセンス鎖およびアンチセンス鎖はそれぞれ、配列番号23および155のヌクレオチド配列を含む、請求項5に記載のdsRNA。
- dsRNAは、1つまたはそれ以上の修飾ヌクレオチドを含み、該1つまたはそれ以上の修飾ヌクレオチドのうちの少なくとも1つは、2’-デオキシ-2’-フルオロ-リボヌクレオチド、2’-デオキシリボヌクレオチド、または2’-O-メチル-リボヌクレオチドである、請求項1~6のいずれか1項に記載のdsRNA。
- dsRNAは、そのセンスまたはアンチセンス鎖の3’末端に反転2’-デオキシリボヌクレオチドを含む、請求項1~7のいずれか1項に記載のdsRNA。
- センス鎖およびアンチセンス鎖の一方または両方は、
a)1つもしくはそれ以上のヌクレオチドを含む5’オーバーハング;および/または
b)1つもしくはそれ以上のヌクレオチドを含む3’オーバーハング
をさらに含む、請求項1~8のいずれか1項に記載のdsRNA。 - dsRNA中のオーバーハングは、2または3ヌクレオチドを含む、請求項9に記載のdsRNA。
- dsRNA中のオーバーハングは、1つまたはそれ以上のチミンを含む、請求項9または10に記載のdsRNA。
- センス配列およびアンチセンス配列は、交互の2’-O-メチルリボヌクレオチドおよび2’-デオキシ-2’-フルオロリボヌクレオチドを含む、請求項1~11のいずれか1項に記載のdsRNA。
- a)センス鎖は、配列番号287のヌクレオチド配列を含み;ならびに/または
b)アンチセンス鎖は、配列番号419のヌクレオチド配列を含む、
請求項1に記載のdsRNA。 - dsRNAのセンス鎖およびアンチセンス鎖はそれぞれ、配列番号287および419のヌクレオチド配列を含む、請求項13に記載のdsRNA。
- dsRNAは、リンカーを用いて、または用いずに1つまたはそれ以上のリガンドとコンジュゲートされている、請求項1~14のいずれか1項に記載のdsRNA。
- リガンドは、コレステロール誘導体または親油性部分である、請求項15に記載のdsRNA。
- リガンドは、N-アセチルガラクトサミン(GalNAc)であり、dsRNAは、1つまたはそれ以上のGalNAcとコンジュゲートされている、請求項15に記載のdsRNA。
- dsRNAは、小分子干渉RNA(siRNA)である、請求項1~17のいずれか1項に記載のdsRNA。
- dsRNAは、短ヘアピンRNA(shRNA)である、請求項1~17のいずれか1項に記載のdsRNA。
- dsRNAの一方または両方の鎖は、1つまたはそれ以上の、
の構造を有する化合物または薬学的に許容されるその塩を含み、式中:
- Bは、複素環式核酸塩基であり、
- L1およびL2の一方は、式(I)の化合物を前記鎖と連結するヌクレオシド間連結基であり、L1およびL2の他方は、H、保護基、リン部分もしくは式(I)の化合物を前記鎖と連結するヌクレオシド間連結基であり、
- Yは、O、NH、NR1もしくはN-C(=O)-R1であり、式中、R1は、以下であり:
・ (C1~C20)アルキル基、
・ (C3~C8)シクロアルキル基、
・ 基-[C(=O)]m-R2-(O-CH2-CH2)p-R3(式中
mは、0もしくは1を意味する整数であり、
pは、0から10の範囲の整数であり、
R2は、(C1~C20)アルキレン基であり、
R3は、水素原子、(C1~C6)アルキル基、(C1~C6)アルコキシ基、(C3~C8)シクロアルキル基、(C3~C14)ヘテロ環、(C6~C14)アリール基もしくは(C5~C14)ヘテロアリール基からなる群から選択されるか、もしくは
R3は、細胞標的化部分である)、
- X1およびX2はそれぞれ、独立して水素原子、(C1~C6)アルキル基であり、- Ra、Rb、RcおよびRdのそれぞれは、独立して、Hもしくは(C1~C6)アルキル基である、
請求項1~19のいずれか1項に記載のdsRNA。 - 前記(C1~C20)アルキル基は、ハロゲン原子、(C1~C6)アルキル基、(C3~C8)シクロアルキル基、(C3~C14)ヘテロ環、(C6~C14)アリール基、(C5~C14)ヘテロアリール基、-O-Z1、-N(Z1)(Z2)、-S-Z1、-CN、-C(=J)-O-Z1、-O-C(=J)-Z1、-C(=J)-N(Z1)(Z2)、および-N(Z1)-C(=J)-Z2から選択される1つもしくはそれ以上の基によって置換され、式中、Jは、OもしくはSであり、Z1およびZ2のそれぞれは、独立して、H、(C1~C6)アルキル基である、請求項20に記載のdsRNA。
- 前記Z1およびZ2のそれぞれは、独立して、H、ハロゲン原子および(C1~C6)アルキル基から選択される1つもしくはそれ以上の基によって置換された(C1~C6)アルキル基である、請求項21に記載のdsRNA。
- 前記(C3~C8)シクロアルキル基は、ハロゲン原子および(C1~C6)アルキル基から選択される1つもしくはそれ以上の基によって置換されている、請求項20に記載のdsRNA。
- 前記(C1~C20)アルキレン基は、(C1~C6)アルキル基、-O-Z3、-N(Z3)(Z4)、-S-Z3、-CN、-C(=K)-O-Z3、-O-C(=K)-
Z3、-C(=K)-N(Z3)(Z4)、もしくは-N(Z3)-C(=K)-Z4によって置換されており、式中、Kは、OもしくはSであり、Z3およびZ4のそれぞれは、独立して、H、(C1~C6)アルキル基である、請求項20に記載のdsRNA。 - 前記Z3およびZ4のそれぞれは、独立して、H、ハロゲン原子および(C1~C6)アルキル基から選択される1つもしくそれ以上の基によって置換された(C1~C6)アルキル基である、請求項24に記載のdsRNA。
- 1つまたはそれ以上の式(I)の化合物を含み、式中、Yは、
a)R1が、非置換(C1~C20)アルキル基である、NR1;
b)R1が、メチル、イソプロピル、ブチル、オクチル、およびヘキサデシルを含む群から選択されるアルキル基を含む非置換(C1~C16)アルキル基である、NR1;
c)R1が、(C3~C8)シクロアルキル基である、NR1;
d)R1が、シクロヘキシル基である、NR1;
e)R1が、(C6~C14)アリール基によって置換された(C1~C20)アルキル基である、NR1;
f)R1が、フェニル基によって置換されたメチル基である、NR1;
g)N-C(=O)-R1;または
h)R1が、メチルまたはペンタデシルである、N-C(=O)-R1
である、請求項20~25のいずれか1項に記載のdsRNA。 - 前記(C3~C8)シクロアルキル基は、ハロゲン原子および(C1~C6)アルキル基から選択される1つもしくはそれ以上の基によって置換されている、請求項26に記載のdsRNA。
- YがN-C(=O)-R1であり、R1が置換された(C1~C20)アルキル基である、請求項26に記載のdsRNA。
- 1つまたはそれ以上の式(I)の化合物または薬学的に許容されるその塩を含み、式中、Bは、ピリミジンおよびプリンからなる群から選択される、請求項20~28のいずれか1項に記載のdsRNA。
- 前記R5はハロゲン原子によって置換された(C1~C6)アルキル基である、請求項30に記載のdsRNA。
- R3は、N-アセチル-ガラクトサミン、または薬学的に許容されるその塩である、請求項20~31のいずれか1項に記載のdsRNA。
- 2から10個の式(I)の化合物、または薬学的に許容されるその塩を含む、請求項20~33のいずれか1項に記載のdsRNA。
- 2から10個の式(I)の化合物は、センス鎖上にある、請求項34に記載のdsRNA。
- センス鎖は、5’末端に2から5つの式(I)の化合物を含み、および/または3’末端に1から3つの式(I)の化合物を含む、請求項20~35のいずれか1項に記載のdsRNA。
- a)前記センス鎖の5’末端にある2から5つの式(I)の化合物は、3つの連続したlgT3ヌクレオチドを含む;ならびに/または
b)前記センス鎖の3’末端にある1から3つの式(I)の化合物は、2つの連続したlT4を含む、請求項37に記載のdsRNA。 - リン酸ジエステル、リン酸トリエステル、ホスホロチオアート、ホスホロジチオアート、アルキル-ホスホナートおよびホスホルアミダート骨格連結基、または薬学的に許容されるその塩からなる群から独立して選択される1つまたはそれ以上のヌクレオシド間連結基を含む、請求項1~38のいずれか1項に記載のdsRNA。
- 配列番号23、155、287、または419のいずれかの核酸配列を含む、請求項1に記載のdsRNA。
- 請求項1~40のいずれか1項に記載のdsRNAおよび薬学的に許容される賦形剤を含む医薬組成物。
- ANGPTL8発現を阻害することを必要とするヒトにおいてANGPTL8発現を阻害する際に使用するための、請求項1~40のいずれか1項に記載のdsRNAを含む医薬組成物または請求項41に記載の医薬組成物。
- ANGPTL8発現を阻害することを必要とするヒトにおいてANGPTL8発現を阻害するための医薬の製造における、請求項1~40のいずれか1項に記載のdsRNAまたは請求項41に記載の医薬組成物の使用。
- ヒトの肝臓におけるANGPTL8遺伝子の発現は、dsRNAによって阻害される、請求項42に記載の医薬組成物。
- ヒトの肝臓におけるANGPTL8遺伝子の発現は、dsRNAによって阻害される、請求項43に記載の使用。
- ANGPTL8関連状態を処置または予防することを必要とするヒトにおいてANGPTL8関連状態を処置または予防する際に使用するための、請求項1~40のいずれか1項に記載のdsRNAを含む医薬組成物または請求項41に記載の医薬組成物。
- ANGPTL8関連状態を処置または予防することを必要とするヒトにおいてANGPTL8関連状態を処置または予防するための医薬の製造における、請求項1~40のいずれか1項に記載のdsRNAまたは請求項41に記載の医薬組成物の使用。
- ANGPTL8関連状態は、脂質代謝障害である、請求項46に記載の医薬組成物。
- ANGPTL8関連状態は、脂質代謝障害である、請求項47に記載の使用。
- 脂質代謝障害は、高トリグリセライド血症である、請求項48に記載の医薬組成物。
- 脂質代謝障害は、高トリグリセライド血症である、請求項49に記載の使用。
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