JPH01100193A - ポリマーに固定されたコフアクターを有する酵素リアクター - Google Patents
ポリマーに固定されたコフアクターを有する酵素リアクターInfo
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- C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は酵素反応に必要なコファクターをポリマーに固
定させるための改良された方法、および1種またはそれ
以上の酵素に加えて、ポリマーに固定された本発明によ
るコファクターの1棟またはそれ以上を含有する酵素リ
アクターに関する。
定させるための改良された方法、および1種またはそれ
以上の酵素に加えて、ポリマーに固定された本発明によ
るコファクターの1棟またはそれ以上を含有する酵素リ
アクターに関する。
酵素反応は選択性が高く収量が良いので価値ある化学的
化合物の製造において益々重要になってきていることは
知られている。その場合酵素は種々の方法で固定されそ
して次に不均一相触媒として使用される。これらは次に
反応混合物から容易に分離することができそして再使用
できる。
化合物の製造において益々重要になってきていることは
知られている。その場合酵素は種々の方法で固定されそ
して次に不均一相触媒として使用される。これらは次に
反応混合物から容易に分離することができそして再使用
できる。
酵素または酵素複合物が低分子量コファクターの存在下
においてのみ活性である場合はコファクターを同じく固
定する必要があった。なぜなら、さもなければ反応混合
物にコファクターを常に新たに添加する必要があったか
らである。
においてのみ活性である場合はコファクターを同じく固
定する必要があった。なぜなら、さもなければ反応混合
物にコファクターを常に新たに添加する必要があったか
らである。
容易に溶解する低分子量コファクターは反応生成物から
簡単な膜p過によっては分離できず、このことが高価な
コファクターの完全な損失と同時に、得られる最終生成
物の汚染をもたらしていた。それゆえかかるコファクタ
ーをポリマーに固定するだめの多くの研究が報告されて
いる( P、 −0,Larssonおよびに、 Mo
5bach氏のBioteohnol、 Bioeng
t 13 (1971)、393;J、 Grunwa
ldおよびTh、 M、 8. Chang氏のBio
chem。
簡単な膜p過によっては分離できず、このことが高価な
コファクターの完全な損失と同時に、得られる最終生成
物の汚染をもたらしていた。それゆえかかるコファクタ
ーをポリマーに固定するだめの多くの研究が報告されて
いる( P、 −0,Larssonおよびに、 Mo
5bach氏のBioteohnol、 Bioeng
t 13 (1971)、393;J、 Grunwa
ldおよびTh、 M、 8. Chang氏のBio
chem。
Biophys、 Res、 Commun、 81
(1978) 、565 ;西ドイツ特許第26310
45号;西ドイツ特許第2841414号;および 西
ドイツ特許公開第2930087号参照)。
(1978) 、565 ;西ドイツ特許第26310
45号;西ドイツ特許第2841414号;および 西
ドイツ特許公開第2930087号参照)。
アデニン環系を有し、固形担体あるいは可溶性ポリマー
に共有結合されているコファクター例えばニコチンアミ
ド−アデニンジヌクレオチド(NAD /NADH)、
ニコチンアミドーアデニンジヌクレオチドホスヘート(
NADP /NADPH)、アデノシン1燐酸(AMP
) 、アデノシン2燐酸(ADP )、アデノシン3
燐酸(A’rP )、フラビン−アデニンジヌクレオチ
ド(FAD/FADH2) 、および補酵素Aはすでに
大規模に用いられている。従って固形担体に結合された
コファクターはアフイニテイクロマトグラフイーにおけ
るリガンドとして用いられる。共有結合されたコファク
ターを有する水溶性ポリマーはアフイニテイ分別におい
て非常に有用である。NAD /NADHおよびNAD
P /NADPHのようなコファクターは再生できそし
て酵素系中において再循環使用されうる。
に共有結合されているコファクター例えばニコチンアミ
ド−アデニンジヌクレオチド(NAD /NADH)、
ニコチンアミドーアデニンジヌクレオチドホスヘート(
NADP /NADPH)、アデノシン1燐酸(AMP
) 、アデノシン2燐酸(ADP )、アデノシン3
燐酸(A’rP )、フラビン−アデニンジヌクレオチ
ド(FAD/FADH2) 、および補酵素Aはすでに
大規模に用いられている。従って固形担体に結合された
コファクターはアフイニテイクロマトグラフイーにおけ
るリガンドとして用いられる。共有結合されたコファク
ターを有する水溶性ポリマーはアフイニテイ分別におい
て非常に有用である。NAD /NADHおよびNAD
P /NADPHのようなコファクターは再生できそし
て酵素系中において再循環使用されうる。
アデニン環系を含有しかつポリマーに結合されたコアア
クタ−を製造するには初めに、高分子の官能基と反応し
うる反応性の基に6位のN原子を結合させる。その場合
初めにアデニン環系を高分子との反応を可能にすべき他
の官能基を有するアルキル化剤とN(1)原子上で反応
させる。アルキル化剤としてはヨード酢酸のようなハロ
ゲノカルボン酸、3,4−エポキシ酪酸のようなエポキ
シド、プロピオノラクトンのようなラクトンあるいはエ
チレンイミンのようなアジリジンが適当である。
クタ−を製造するには初めに、高分子の官能基と反応し
うる反応性の基に6位のN原子を結合させる。その場合
初めにアデニン環系を高分子との反応を可能にすべき他
の官能基を有するアルキル化剤とN(1)原子上で反応
させる。アルキル化剤としてはヨード酢酸のようなハロ
ゲノカルボン酸、3,4−エポキシ酪酸のようなエポキ
シド、プロピオノラクトンのようなラクトンあるいはエ
チレンイミンのようなアジリジンが適当である。
AMP 、ADPおよびATPの場合はアルキル化に続
いて直ちにジムロー(Dimroth )転位によりN
(6)形が生成される。ジムロー転位に続き高分子との
反応が行われる。NAD およびNADPの場合ジムロ
ー転位に先立ち還元がそしてジムロー転位の後にニコチ
ンアミド環の再酸化が行われる。
いて直ちにジムロー(Dimroth )転位によりN
(6)形が生成される。ジムロー転位に続き高分子との
反応が行われる。NAD およびNADPの場合ジムロ
ー転位に先立ち還元がそしてジムロー転位の後にニコチ
ンアミド環の再酸化が行われる。
しかしながら、ポリマーへのコファクターの固定に必要
なこれら反応順序は満足できるものでないことがすでに
西ドイツ特許第2,841,414号に記載されている
。何故なら必要な多数の反応により収量の低下が生じ従
って高価なコファクターが12〜40%の少量でしかポ
リマーに固定され得ないからである。それゆえ収量を収
容するには1−位がアルキル化されたアデニン誘導体を
ポリマーに付加したのちにジムロー転位にかけることが
提案された。それにより収量損失は低下されうるが、し
かし必要とされる反応工程数は同じままであり、モして
NAD および+ NADP 誘導体の場合にはなおニコチンアミド環の還
元および再、酸化を行う必要がある。
なこれら反応順序は満足できるものでないことがすでに
西ドイツ特許第2,841,414号に記載されている
。何故なら必要な多数の反応により収量の低下が生じ従
って高価なコファクターが12〜40%の少量でしかポ
リマーに固定され得ないからである。それゆえ収量を収
容するには1−位がアルキル化されたアデニン誘導体を
ポリマーに付加したのちにジムロー転位にかけることが
提案された。それにより収量損失は低下されうるが、し
かし必要とされる反応工程数は同じままであり、モして
NAD および+ NADP 誘導体の場合にはなおニコチンアミド環の還
元および再、酸化を行う必要がある。
それゆえ高価なコファクターの収量損失および活性損失
を低下させるためにコファクターをポリマーに結合させ
る方法を簡単化するというa題が存在していた。
を低下させるためにコファクターをポリマーに結合させ
る方法を簡単化するというa題が存在していた。
本発明により、芳香族アミノ基またはベンジルアミノ基
を有するコファクターをはじめに例えばチオホスゲンと
の反応により相当するインチオシアネートに変換し、そ
して次にこれを官能基を有する適描なポリマーに付加す
ることにより前記目的が達成された。例えばコファクタ
ーとしてNAD)!を使用しそしてアミン基を有するポ
リマーを用いた場合は、一般式 を有するチオ尿素誘導体が生成される。ヒドロキシル基
を有するポリマーを使用する場合は相当するチオカルバ
メートが生成される。インチオシアネートおよびアミノ
−またはヒドロキシル−基を有する化合物からのチオ尿
素およびチオカルバメートの製造は現在知られている(
L。
を有するコファクターをはじめに例えばチオホスゲンと
の反応により相当するインチオシアネートに変換し、そ
して次にこれを官能基を有する適描なポリマーに付加す
ることにより前記目的が達成された。例えばコファクタ
ーとしてNAD)!を使用しそしてアミン基を有するポ
リマーを用いた場合は、一般式 を有するチオ尿素誘導体が生成される。ヒドロキシル基
を有するポリマーを使用する場合は相当するチオカルバ
メートが生成される。インチオシアネートおよびアミノ
−またはヒドロキシル−基を有する化合物からのチオ尿
素およびチオカルバメートの製造は現在知られている(
L。
Drobnica 、 P、 Kr1sian、 J、
Augustin in ” TheChemist
ry of Functional Groups″(
Patai 。
Augustin in ” TheChemist
ry of Functional Groups″(
Patai 。
Ed、)part 2 :Cyanates and
their Deriva−tives”、Wiley
、 New York、 Chapter 22 .1
00る参照)。
their Deriva−tives”、Wiley
、 New York、 Chapter 22 .1
00る参照)。
コファクターの結合用に選択すべきポリマーは水溶性で
なければならない、何故ならコファクターを水不溶性ポ
リマーに結合させた場合は結合されたNADを完全に還
元することがもはや不可能であり、それゆえにかなりの
活性損失が生ずるからである(H,−L、 Schmi
dt氏他、Eur。
なければならない、何故ならコファクターを水不溶性ポ
リマーに結合させた場合は結合されたNADを完全に還
元することがもはや不可能であり、それゆえにかなりの
活性損失が生ずるからである(H,−L、 Schmi
dt氏他、Eur。
J、 Biochem、 67.295−302(19
76) 参照)。
76) 参照)。
コファクターを固定するには、第1または第2アミノ基
をイする水溶性ポリマーが好ましい。
をイする水溶性ポリマーが好ましい。
ビニルアミンとビニルメチルアセトアミドとのまたはビ
ニルメチルアミンとビニルメチルアセトアミドとの共重
合体であって、モノマーの比が1:99から40:60
kRHk%であることができる共重合体が特に良いこと
が判明した。
ニルメチルアミンとビニルメチルアセトアミドとの共重
合体であって、モノマーの比が1:99から40:60
kRHk%であることができる共重合体が特に良いこと
が判明した。
これら共重合体を製造するにはN−ビニルホルムアミド
またはN−ビニル−N−メチルホルムアミドを他の水溶
性N−ビニルアミド、例えばN−ビニル−N−メチルア
セドア之ドまたはN−ビニルピロリドンと反応させそし
て組み込まれたN−ビニルホルムアミド単位またはN−
ビニル−N−メチルホルムアミド単位を強酸好ましくは
塩酸を用いて水溶液中で加水分解してN−ビニルアミン
またはN−ビニル−N−メチルアミン鎖構成員となす。
またはN−ビニル−N−メチルホルムアミドを他の水溶
性N−ビニルアミド、例えばN−ビニル−N−メチルア
セドア之ドまたはN−ビニルピロリドンと反応させそし
て組み込まれたN−ビニルホルムアミド単位またはN−
ビニル−N−メチルホルムアミド単位を強酸好ましくは
塩酸を用いて水溶液中で加水分解してN−ビニルアミン
またはN−ビニル−N−メチルアミン鎖構成員となす。
他のビニルアミドと対照的にこれらホルムアミドは非常
に容易に加水分解されつる結果、他の重合されたN−ビ
二ルアミドが可なりの程度に同時に加水分解を受けるこ
とはない。最後に、脱離された蟻酸および用いられた塩
酸をイオン交換により除去する。
に容易に加水分解されつる結果、他の重合されたN−ビ
二ルアミドが可なりの程度に同時に加水分解を受けるこ
とはない。最後に、脱離された蟻酸および用いられた塩
酸をイオン交換により除去する。
重合されるN−ビニルホルムアミド量またはN−ビニル
−N−メチルホルムアミド量を変動させることにより塩
基の含量が任意に調整されうる。N−ビニルホルムアミ
ドを共重合に用いるならばf&終主生成物N−ビニルア
ミン単位を含有し、モしてN−ビニル−N−メチルホル
ムアミドを共重合さ、せる場合は最終生成物はN−ビニ
ル−N−メチルアミン鎖構成員を含有する。
−N−メチルホルムアミド量を変動させることにより塩
基の含量が任意に調整されうる。N−ビニルホルムアミ
ドを共重合に用いるならばf&終主生成物N−ビニルア
ミン単位を含有し、モしてN−ビニル−N−メチルホル
ムアミドを共重合さ、せる場合は最終生成物はN−ビニ
ル−N−メチルアミン鎖構成員を含有する。
しか゛しながら例えばN−ビニルホルムアミド、N−ビ
ニル−N−メチルホルムアミドおよびN−ビニル−N−
メチルアセトアミドからなる三元共重合を行うこともで
きる。これらポリマーを加水分解することにより第1お
よび第2ビニルアミン単位すなわち異なる塩基反応性を
有し、同様にコファクターの固定に適するポリマー状担
体物質を得ることができる。
ニル−N−メチルホルムアミドおよびN−ビニル−N−
メチルアセトアミドからなる三元共重合を行うこともで
きる。これらポリマーを加水分解することにより第1お
よび第2ビニルアミン単位すなわち異なる塩基反応性を
有し、同様にコファクターの固定に適するポリマー状担
体物質を得ることができる。
ポリ−N−ビニルホルムアミドホモポリマーまたはポリ
−N−ビニル−N−メチルホルムアミドホモポリマーの
部分加水分解によっても非常に類似したポリマーが得ら
れる。その場合酸の量および加水分解時間を変動させる
ことにより同様に塩基の割合が任意按調整されうる。N
−ビニルホルムアミドおよびN−ビニル−N−メチルホ
ルムアミドを共重合させ次に部分加水分解することによ
っても異なる塩基反応性を有する水溶性のポリマー状担
体物質を合成することができる。
−N−ビニル−N−メチルホルムアミドホモポリマーの
部分加水分解によっても非常に類似したポリマーが得ら
れる。その場合酸の量および加水分解時間を変動させる
ことにより同様に塩基の割合が任意按調整されうる。N
−ビニルホルムアミドおよびN−ビニル−N−メチルホ
ルムアミドを共重合させ次に部分加水分解することによ
っても異なる塩基反応性を有する水溶性のポリマー状担
体物質を合成することができる。
塩基性で、水溶性の担体物質を所望の平均分子寸法に調
整するには、多数の手段例えば重合−度、溶媒および開
始剤濃度を選択することにより広い範囲(分子ff11
0,000〜500,000)で変動させることができ
る。
整するには、多数の手段例えば重合−度、溶媒および開
始剤濃度を選択することにより広い範囲(分子ff11
0,000〜500,000)で変動させることができ
る。
部分的にアルキルアミンで置換されたα、β−ポ!J−
(2−ヒドロキシエチル) −D、L−アスパルタミド
を用いても同様に良好に実施できた。
(2−ヒドロキシエチル) −D、L−アスパルタミド
を用いても同様に良好に実施できた。
しかしながらインチオシアネートと反応する官能基を有
する他の水溶性ポリマーも使用されうる。例えばポリエ
チレンイミンまたは水溶液炭水化物も使用されうる。
する他の水溶性ポリマーも使用されうる。例えばポリエ
チレンイミンまたは水溶液炭水化物も使用されうる。
本発明による方法を用いて、コファクターを活性損失を
伴うことなく実際上定量的収量でポリマーにうまく固定
することができ、その上これまで必要とみなされてきた
多段階の反応工程を回避できる。かくして得られたポリ
マーに固定されたコファクターは種々の方法で使用され
うる。これらは例えば1種またはそれ以上の酵素と一緒
にマイクロカプセル中に封入されうる。
伴うことなく実際上定量的収量でポリマーにうまく固定
することができ、その上これまで必要とみなされてきた
多段階の反応工程を回避できる。かくして得られたポリ
マーに固定されたコファクターは種々の方法で使用され
うる。これらは例えば1種またはそれ以上の酵素と一緒
にマイクロカプセル中に封入されうる。
基質および反応生成物の透過を許容するがしかし酵素(
類)および結合されたコファクターは保持する半透過性
壁を有するかかるマイクロカプセルの製造は以前から知
られている( Th、M、S。
類)および結合されたコファクターは保持する半透過性
壁を有するかかるマイクロカプセルの製造は以前から知
られている( Th、M、S。
Chang、 Biomedioal Appl、、
Immobilized EnzymeProtein
s、 Vol、 1 (1977)、69、Plenu
m、 NewYork1977参照)。
Immobilized EnzymeProtein
s、 Vol、 1 (1977)、69、Plenu
m、 NewYork1977参照)。
これら酵素は、用いられた酵素およびコファクターをリ
アクター中に保持するが、しかし低分子量生成物および
未反応の基質を透過せしめる役目をする限外濾過膜を備
えた換りアクタ−中においても、ポリマーに固定された
コファクターと一緒に使用されうる。かかる膜リアクタ
ーはすでに現在性われており、例えば西ドイツ特許公開
第2.930.078号に記載されている。
アクター中に保持するが、しかし低分子量生成物および
未反応の基質を透過せしめる役目をする限外濾過膜を備
えた換りアクタ−中においても、ポリマーに固定された
コファクターと一緒に使用されうる。かかる膜リアクタ
ーはすでに現在性われており、例えば西ドイツ特許公開
第2.930.078号に記載されている。
コファクター(類)が数種の反応を順次触媒できそして
その際再びそれらの当初の状態に戻されるならば、手透
過性マイクロカプセルを用いても、そしてまた限外濾過
セル中でも酵素反応は継続的に行われつる。例えば、N
ADはりんご酸デヒドロゲナーゼによりマレートをオキ
サロアセテートに変換しうる。その際生成されるNAD
Hは次にアルコールデヒドロゲナーゼによりアセトアル
デヒドをエタノールに還元しつる。
その際再びそれらの当初の状態に戻されるならば、手透
過性マイクロカプセルを用いても、そしてまた限外濾過
セル中でも酵素反応は継続的に行われつる。例えば、N
ADはりんご酸デヒドロゲナーゼによりマレートをオキ
サロアセテートに変換しうる。その際生成されるNAD
Hは次にアルコールデヒドロゲナーゼによりアセトアル
デヒドをエタノールに還元しつる。
そのあとに再びNADか残り、これが再び還元に利用さ
れうる。かくしてかかる系は恒常的に再生され、この反
応は理論上無期限に実施されうる。しかしながら実際上
は数種の酵素およびコファクターからなるかかる系はそ
れらの活性を次第に失うことが見出されている。しかし
ながら実施例において詳細に記載される実験により明ら
かであるように、本発明により調製された酵素リアクタ
ーにおいては、何らの活性損失も観察されない。さらに
、本発明によりコファクターは1容器反応で固定されか
つほとんど定量的収率で得られている。
れうる。かくしてかかる系は恒常的に再生され、この反
応は理論上無期限に実施されうる。しかしながら実際上
は数種の酵素およびコファクターからなるかかる系はそ
れらの活性を次第に失うことが見出されている。しかし
ながら実施例において詳細に記載される実験により明ら
かであるように、本発明により調製された酵素リアクタ
ーにおいては、何らの活性損失も観察されない。さらに
、本発明によりコファクターは1容器反応で固定されか
つほとんど定量的収率で得られている。
実施例 1
6−インチオシアナトーニコチンアミドーアデニンジヌ
クレオチド(” NAD−NC8”)の調製2ミリモル
のNADを気泡計数器を備えた丸底フラスコ中でH2O
10−中に溶解させそして少量のNa2CO!iを加え
た。はげしく攪拌しなからCHCL310 rnt中の
チオホスゲン20ミリモルの溶液を20℃でこれに加え
た。pHは10分毎に検査し、少量の炭酸ナトリウムの
添加により5.5〜8.5に保持した。3.5時間後に
はpHは最早や変化せずそして何らそれ以上のガス発生
が観察されなくなった。この混合物を真空下に蒸発乾固
させそして凍結乾燥した。淡帯褐色の生成物混合物は溶
離剤として水/アセトニトリルを用いシリカゲル上のカ
ラムクロマトグラフィーにより副生物から精製した。し
かしながら、生成物の混合物を未精製のままポリマーと
の反応に使用することが好ましい(実施例2参照)、何
故ならポリマーに固定された生成物は限外濾過により実
質上より簡単に精製でき、またNAD−NC8の感度は
精製期間中に二量化および三量化による損失を生ずるか
らである。
クレオチド(” NAD−NC8”)の調製2ミリモル
のNADを気泡計数器を備えた丸底フラスコ中でH2O
10−中に溶解させそして少量のNa2CO!iを加え
た。はげしく攪拌しなからCHCL310 rnt中の
チオホスゲン20ミリモルの溶液を20℃でこれに加え
た。pHは10分毎に検査し、少量の炭酸ナトリウムの
添加により5.5〜8.5に保持した。3.5時間後に
はpHは最早や変化せずそして何らそれ以上のガス発生
が観察されなくなった。この混合物を真空下に蒸発乾固
させそして凍結乾燥した。淡帯褐色の生成物混合物は溶
離剤として水/アセトニトリルを用いシリカゲル上のカ
ラムクロマトグラフィーにより副生物から精製した。し
かしながら、生成物の混合物を未精製のままポリマーと
の反応に使用することが好ましい(実施例2参照)、何
故ならポリマーに固定された生成物は限外濾過により実
質上より簡単に精製でき、またNAD−NC8の感度は
精製期間中に二量化および三量化による損失を生ずるか
らである。
実施例 2
ビニルアミン/ビニルメチルアセトアミド共重合体(4
,8: 95.2重量%)と6−インチオシアナト−ニ
コチンアミド−アデニンジヌクレオチド(NAD−NC
8)との反応 H2O5mj中の863’lfのポリY −(NH2基
91ミリモル)に50dの丸底フラスコ中20℃で水2
〇−中のNAD−NC82ミリモルの溶液1〇−を加え
、lNNaOHを用いてpH8に調整しそしてこの溶液
を20℃で15時間攪拌した。次にこの溶液を限外p過
セル中セルロースアセテート膜(排除限界二分子量5o
oo)を通し3バールの加圧下に限外濾過し、その際水
50ゴずつを充填して再び濾過する操作を10回反復し
た。
,8: 95.2重量%)と6−インチオシアナト−ニ
コチンアミド−アデニンジヌクレオチド(NAD−NC
8)との反応 H2O5mj中の863’lfのポリY −(NH2基
91ミリモル)に50dの丸底フラスコ中20℃で水2
〇−中のNAD−NC82ミリモルの溶液1〇−を加え
、lNNaOHを用いてpH8に調整しそしてこの溶液
を20℃で15時間攪拌した。次にこの溶液を限外p過
セル中セルロースアセテート膜(排除限界二分子量5o
oo)を通し3バールの加圧下に限外濾過し、その際水
50ゴずつを充填して再び濾過する操作を10回反復し
た。
残留物および10個の透過物を石分光計でλ=257
nmで測定した(吸光度測定)。透過物は限外濾過が進
行するにつれて小さくなる吸収、すなわち漸減してゆ(
NAD含量を示した。残留物は使用されたNADの70
〜90%を含有していた。
nmで測定した(吸光度測定)。透過物は限外濾過が進
行するにつれて小さくなる吸収、すなわち漸減してゆ(
NAD含量を示した。残留物は使用されたNADの70
〜90%を含有していた。
この結果は、凍結乾燥された残留物を秤量し、水に溶解
した試料の吸光を測定しそして純粋なNAD+を用いて
作成された標準曲線と比較することにより確認された。
した試料の吸光を測定しそして純粋なNAD+を用いて
作成された標準曲線と比較することにより確認された。
残留物を凍結乾燥すると122の生成物が得られた(ポ
リマーに基づき85%)。
リマーに基づき85%)。
この生成物はベーリンガー・マンハイム(Boehri
nger Mannheim )社の標準アッセイにお
いてりんご酸デヒドロゲナーゼを用いるマレートの測定
、アルコールデヒドロゲナーゼを用いるエタノールの測
定および乳酸デヒドロゲナーゼを用いるラクテートの測
定にコファクターとしてNAD の代りに用いられた。
nger Mannheim )社の標準アッセイにお
いてりんご酸デヒドロゲナーゼを用いるマレートの測定
、アルコールデヒドロゲナーゼを用いるエタノールの測
定および乳酸デヒドロゲナーゼを用いるラクテートの測
定にコファクターとしてNAD の代りに用いられた。
NAD をポリマーに固定された等価量のNADで置
き代えた場合でも酵素活性および従ってコファクター活
性はすべての場合に無変化であった。
き代えた場合でも酵素活性および従ってコファクター活
性はすべての場合に無変化であった。
実施例 3
アミノエチル基で部分置換されたα、β−ポリ−(2−
ヒドロキシエチル) −D、L −7スパルタミド(H
2N−PHEA )のこれらアミノ基を介す灯―−NC
8への・結合 H2N−PHEAは−10モル/gのアミノ基を含有し
た。ここに用いられる条件下にインチオシアナートと反
応するのは主に7ミノ基であるので、NAD−NC8は
このアミノ基数に対して化学m論的に使用された。16
gのポリマー(アミノ基1.5X10 モル)を10
0−の丸底フラスコ中20℃で約25−のH2O中に溶
解させそして1.4X10−’モルのNAD−NC8の
溶液を加えた。NaOHを用いてpHを8に調整した。
ヒドロキシエチル) −D、L −7スパルタミド(H
2N−PHEA )のこれらアミノ基を介す灯―−NC
8への・結合 H2N−PHEAは−10モル/gのアミノ基を含有し
た。ここに用いられる条件下にインチオシアナートと反
応するのは主に7ミノ基であるので、NAD−NC8は
このアミノ基数に対して化学m論的に使用された。16
gのポリマー(アミノ基1.5X10 モル)を10
0−の丸底フラスコ中20℃で約25−のH2O中に溶
解させそして1.4X10−’モルのNAD−NC8の
溶液を加えた。NaOHを用いてpHを8に調整した。
この混合物を20℃で20時間攪拌しそして次にセルロ
ースアセテート膜(排除限界:分子1i 5000 )
を通し3バールで限外濾過し、その際すれぞれ60−ず
つ水を充填しそして再び濾過する工程を6回反復した。
ースアセテート膜(排除限界:分子1i 5000 )
を通し3バールで限外濾過し、その際すれぞれ60−ず
つ水を充填しそして再び濾過する工程を6回反復した。
透過物および残留物の257 nmでのU′vg&収を
比較することにより生成物中のNAD含量を測定した。
比較することにより生成物中のNAD含量を測定した。
用いられた量の80%であった。残留物を凍結乾燥して
総数ffi14g(92%)を得た。従って有効な接合
収率は87%であった。
総数ffi14g(92%)を得た。従って有効な接合
収率は87%であった。
実施例 4
ポリマーに固定されたNADを有する酵素系のマイクロ
カプセル化 酵素系としてはペーリンガー・マンハイム社から販売さ
れているマレートアッセイと同様にして、りんご酸デヒ
ドロゲナーゼ(MDI)をグルタミン酸−オキサロ酢酸
トランスアミナーゼ(GOT)と組み合せて用いた。こ
こではL−マレートはMDHによりNADを用いてオキ
サロアセテー) 、NAD)!およびHに変換された。
カプセル化 酵素系としてはペーリンガー・マンハイム社から販売さ
れているマレートアッセイと同様にして、りんご酸デヒ
ドロゲナーゼ(MDI)をグルタミン酸−オキサロ酢酸
トランスアミナーゼ(GOT)と組み合せて用いた。こ
こではL−マレートはMDHによりNADを用いてオキ
サロアセテー) 、NAD)!およびHに変換された。
平衡をL−マレートからシフトさせるためにはオキサロ
アセテートをGOTおよびグルタレ−トの添加によりL
−アスパルテートおよびα−ケトグルタレートに変換さ
せた。
アセテートをGOTおよびグルタレ−トの添加によりL
−アスパルテートおよびα−ケトグルタレートに変換さ
せた。
代表的な実験においては、5”l/ldMDH溶液0.
01m、2岬/+d GO’r懸濁液0.01m(いず
れも水中)、および実施例2記載のHAD−ポリマー2
5.5F(’;’1 oq NAD)に水を加えて1.
42−とじた。この溶液0.3−を2%アルギネー)2
Q/<SO水溶液1gと混合しそして注射器部よび針(
内径0.21111 )を用い、平均分子ff1580
0を有するポリリジンの0.4%水溶液中に噴霧した。
01m、2岬/+d GO’r懸濁液0.01m(いず
れも水中)、および実施例2記載のHAD−ポリマー2
5.5F(’;’1 oq NAD)に水を加えて1.
42−とじた。この溶液0.3−を2%アルギネー)2
Q/<SO水溶液1gと混合しそして注射器部よび針(
内径0.21111 )を用い、平均分子ff1580
0を有するポリリジンの0.4%水溶液中に噴霧した。
噴霧された溶液931岬から558qのマイクロカプセ
ルが得られ、これらは15分後にポリリジン溶液からと
り出され(デカンテーション)そして次に1%NaC1
水溶液で洗った。次にカプセルを12.5%グルタルジ
アルデヒド溶液中に1分間入れて架橋させた。カプセル
を400−ビーカー中で水中に置きそして窒素を吹き込
むことにより攪拌した。17時間、2日、3日、6日お
よび7日後に上澄み溶液の一部分をとり、257nmで
の溶液の昔吸収を測定してNAD 標準曲線と比較し、
それにより上澄み溶液中のNAD含量(すなわちカプセ
ルからの失われたNAD )を測定した。下記の結果
が得られた。
ルが得られ、これらは15分後にポリリジン溶液からと
り出され(デカンテーション)そして次に1%NaC1
水溶液で洗った。次にカプセルを12.5%グルタルジ
アルデヒド溶液中に1分間入れて架橋させた。カプセル
を400−ビーカー中で水中に置きそして窒素を吹き込
むことにより攪拌した。17時間、2日、3日、6日お
よび7日後に上澄み溶液の一部分をとり、257nmで
の溶液の昔吸収を測定してNAD 標準曲線と比較し、
それにより上澄み溶液中のNAD含量(すなわちカプセ
ルからの失われたNAD )を測定した。下記の結果
が得られた。
9日後に約0.7X10″′3ミリモルのNADに相当
する44カプセルをとり、そしてベーリンガー・マンハ
イム社の!レートアラ七イに記載された条件下にマレー
ト、の変換に使用した。マイクロカプセルは等両全のN
AD を用いて過剰のマレートから30分以内で0.0
04vを変換させた(理論的変換はL−マレート0.0
03岬)。
する44カプセルをとり、そしてベーリンガー・マンハ
イム社の!レートアラ七イに記載された条件下にマレー
ト、の変換に使用した。マイクロカプセルは等両全のN
AD を用いて過剰のマレートから30分以内で0.0
04vを変換させた(理論的変換はL−マレート0.0
03岬)。
実施例 5
ポリマーに固定されたNADを用いる半連続的な酵素リ
アクター、コファクターは再循INKより再生 ここでは酵素系としてぎ酸デヒドロゲナーゼ(FDH)
および乳酸デヒドロゲナーゼ(LDH)が用いられ、ホ
ルメートはNAD を用いてFDHによりCO2およ
びNADHに変換されそしてピルベートはNADHを用
いてLDHによりラクテートに変換される。ピルベート
およびホルメートは基質として過剰に用いられ、CO2
は逃散されそしてラクテートは反応の唯一の生成物とし
て溶液中で測定された。酵素およびNAD−ポリマーを
保持するにはセルロースアセテ−)Mの限外p過膜を用
いた(排除限界分子量: 5000)。反応は限外濾過
セル中で行われ、反応混合物は2パールの圧力の下に置
かれそして7ラクシミンとして採取された透過物中の2
クテートを測定できた。
アクター、コファクターは再循INKより再生 ここでは酵素系としてぎ酸デヒドロゲナーゼ(FDH)
および乳酸デヒドロゲナーゼ(LDH)が用いられ、ホ
ルメートはNAD を用いてFDHによりCO2およ
びNADHに変換されそしてピルベートはNADHを用
いてLDHによりラクテートに変換される。ピルベート
およびホルメートは基質として過剰に用いられ、CO2
は逃散されそしてラクテートは反応の唯一の生成物とし
て溶液中で測定された。酵素およびNAD−ポリマーを
保持するにはセルロースアセテ−)Mの限外p過膜を用
いた(排除限界分子量: 5000)。反応は限外濾過
セル中で行われ、反応混合物は2パールの圧力の下に置
かれそして7ラクシミンとして採取された透過物中の2
クテートを測定できた。
実施例2によるNAD−ポリマー(NAD O,021
ミリモルに相当) 、LDH0,1’vSFD)! 4
単位、ピルベート0.26ミリモルおよびホルメー)0
.25ミリモルをpH7:2の燐酸塩緩衝液3,7−中
で用いた。攪拌下およびN2加圧2バールの下に透過フ
ラクションを30分毎に集めた。各7ラクシヨンを集め
たのちpH72の燐酸塩緩衝液を用いて濃縮物をもとの
3.7−となした。さらに各第4フジクシヨン後に0.
26ミリモルのピルベートおよび0.26ミリモルのホ
ルメートを加えた。
ミリモルに相当) 、LDH0,1’vSFD)! 4
単位、ピルベート0.26ミリモルおよびホルメー)0
.25ミリモルをpH7:2の燐酸塩緩衝液3,7−中
で用いた。攪拌下およびN2加圧2バールの下に透過フ
ラクションを30分毎に集めた。各7ラクシヨンを集め
たのちpH72の燐酸塩緩衝液を用いて濃縮物をもとの
3.7−となした。さらに各第4フジクシヨン後に0.
26ミリモルのピルベートおよび0.26ミリモルのホ
ルメートを加えた。
透過物をベーリンガー・マンハイム社から販売されてい
るラクテート測定アッセイを用いてラクテート含量につ
いて検べた。22個のフラクションについて、1透過フ
ラクシヨン(1dfつ)尚り3〜6X10 ミリモルの
ラクテートが得られた。アッセイを中断しそして2日後
(週末)に続行したのちも各透過フラクション中の2ク
テート含量は同じ一定したレベルのままであった。
るラクテート測定アッセイを用いてラクテート含量につ
いて検べた。22個のフラクションについて、1透過フ
ラクシヨン(1dfつ)尚り3〜6X10 ミリモルの
ラクテートが得られた。アッセイを中断しそして2日後
(週末)に続行したのちも各透過フラクション中の2ク
テート含量は同じ一定したレベルのままであった。
実施例 6
A、 N−ビニルアミン含量4.8 mi量%を有する
N−ビニルアミン/N−ビニル−N−メチルアセトアミ
ド共重合体の製造 N−ビニル−N−メチルアセトアミド36gおよびN−
ビニルホルムアミド3りをインプロパツール40d中で
開始剤としてのα、αI−アゾイソブチロニトリル40
0wgを用い80℃で共重合させた(24時間)。
N−ビニルアミン/N−ビニル−N−メチルアセトアミ
ド共重合体の製造 N−ビニル−N−メチルアセトアミド36gおよびN−
ビニルホルムアミド3りをインプロパツール40d中で
開始剤としてのα、αI−アゾイソブチロニトリル40
0wgを用い80℃で共重合させた(24時間)。
次にイソプロパツールを、水を同時に添加(40df)
Lながら留置した。生成したポリマー水溶液に濃塩酸4
0−を添加しそして8時間110℃で加熱した。この強
酸性反応混合物を水で希釈しそして次に強塩基性イオン
交換体を用いて塩酸およびぎ酸を除去した。真空下(−
100ミリパー/L/)にa縮後に、〜4.8 J&量
%のN−ビニルアミン含量を有するN−ビニルアミン/
N−ビニル−N−メチルアセトアミド共重合体の水溶液
が得られた。ポリマー溶液の固形物含量33.3%、p
H値11.5、そしてポリマーの低下した粘度0.25
dl/9が測定された( H2020%溶液、25℃で
測定)。
Lながら留置した。生成したポリマー水溶液に濃塩酸4
0−を添加しそして8時間110℃で加熱した。この強
酸性反応混合物を水で希釈しそして次に強塩基性イオン
交換体を用いて塩酸およびぎ酸を除去した。真空下(−
100ミリパー/L/)にa縮後に、〜4.8 J&量
%のN−ビニルアミン含量を有するN−ビニルアミン/
N−ビニル−N−メチルアセトアミド共重合体の水溶液
が得られた。ポリマー溶液の固形物含量33.3%、p
H値11.5、そしてポリマーの低下した粘度0.25
dl/9が測定された( H2020%溶液、25℃で
測定)。
B、N−ビニルアミン含!1.5.7重量%を有するN
−ビニルアミン/N−ビニルピロリドン共重合体の製造 N−ビニルピロリドン20りおよびN−ビニルホルムア
ミド2りを、NHaOH溶液1−を加えた水120mj
中で80℃およびアルゴン被覆の下に重合させた。開始
剤α、α′−アゾイソブチロニトリル110■、重合時
間24時間、生成した共重合体水溶液に濃塩酸145−
を添加しそしてこの混合物を7時間還流下に加熱した(
110℃)。
−ビニルアミン/N−ビニルピロリドン共重合体の製造 N−ビニルピロリドン20りおよびN−ビニルホルムア
ミド2りを、NHaOH溶液1−を加えた水120mj
中で80℃およびアルゴン被覆の下に重合させた。開始
剤α、α′−アゾイソブチロニトリル110■、重合時
間24時間、生成した共重合体水溶液に濃塩酸145−
を添加しそしてこの混合物を7時間還流下に加熱した(
110℃)。
次に反応混合物をAで記載されるようにして強塩基性イ
オン交換体で処理した。ここでN−ビニルアミン含量5
.7重量%を有するN−ビニルアミン/N−ビニルピロ
リドン共重合体の水溶液160りが得られた。ポリマー
溶液の固形物含量953%、pH値10.1そしてポリ
マーの低下した粘度1.61d/gが測定された(H2
020%溶液、25℃で測定)。
オン交換体で処理した。ここでN−ビニルアミン含量5
.7重量%を有するN−ビニルアミン/N−ビニルピロ
リドン共重合体の水溶液160りが得られた。ポリマー
溶液の固形物含量953%、pH値10.1そしてポリ
マーの低下した粘度1.61d/gが測定された(H2
020%溶液、25℃で測定)。
c、N−ビニル−N−メチルアミン/N −ビニル−N
−メチルホルムアミド共重合体の製造(方法Bによる) 開始剤としてα、α′−アゾイソブチロニトリルt−用
い、N−ビニル−N−メチルホルムアミドを重合させそ
して水溶液中塩酸を用い100℃でこのホモポリマーを
部分的に加水分解した。時間および塩酸濃度の函数とし
ての部分氷解の結果を以下の表に示す。
−メチルホルムアミド共重合体の製造(方法Bによる) 開始剤としてα、α′−アゾイソブチロニトリルt−用
い、N−ビニル−N−メチルホルムアミドを重合させそ
して水溶液中塩酸を用い100℃でこのホモポリマーを
部分的に加水分解した。時間および塩酸濃度の函数とし
ての部分氷解の結果を以下の表に示す。
棒時間 95%塩基性N 13.5%塩基性
N2時間 15.7%塩基性N 20.1%塩
基性N方法(a)では1モルのN−ビニル−N−メチル
ホルムアミドに対し1モルのHCtを、方法(′b)で
は1モルに対し2.5モルのHCtを用いた。
N2時間 15.7%塩基性N 20.1%塩
基性N方法(a)では1モルのN−ビニル−N−メチル
ホルムアミドに対し1モルのHCtを、方法(′b)で
は1モルに対し2.5モルのHCtを用いた。
塩基性窒素の値はぎ酸および塩酸をイオン交換体により
除去したあとに測定された。100%加水分解は塩基性
窒素価24.9%に相当する。例えば塩基性窒素が90
%である場合、N−ビニル−N−メチルアミン/H−ビ
ニルーN−メチルホルムアミド共重合体はN−ビニル−
N−メチルアミン含量36.0重量%を有する。
除去したあとに測定された。100%加水分解は塩基性
窒素価24.9%に相当する。例えば塩基性窒素が90
%である場合、N−ビニル−N−メチルアミン/H−ビ
ニルーN−メチルホルムアミド共重合体はN−ビニル−
N−メチルアミン含量36.0重量%を有する。
特許出願人 ヘキスト・アクチェンゲゼルシャフト外
2名
2名
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1)芳香族アミノ基またはベンジルアミノ基を有するコ
フアクターをはじめに相当するイソチオシアネートに変
換し、そしてこれを次に適当な官能基を有するポリマー
に付着させることからなるコフアクターをポリマーに結
合させる方法。 2)ポリマーが水溶性である請求項1記載の方法。 5)水溶性ポリマーが第1または第2アミノ基を有する
請求項2記載の方法。 4)水溶性ポリマーがビニルアミンとビニルメチルアセ
タミドとの共重合体であるかまたはビニルメチルアミン
とビニルメチルアセタミドとの共重合体であつて、モノ
マーの比が1:99から40:60重量%であることが
できる共重合体である請求項3記載の方法。 5)水溶性ポリマーが部分的にアルキルアミンで置換さ
れたα,β−ポリ−(2−ヒドロキシエチル)−D,L
−アスパルタミドである請求項3記載の方法。 6)水溶性ポリマーがポリエチレンイミンまたは水溶性
炭水化物である請求項2記載の方法。 7)チオ尿素またはチオカルバメート橋により芳香族ア
ミノ基またはベンジルアミノ基を介して水溶性ポリマー
に結合されたコフアクター。 8)請求項7記載のポリマーに結合されたコフアクター
および1種またはそれ以上の酵素を含有する酵素リアク
ター。 9)ポリマーに結合されたコフアクターおよび酵素がマ
イクロカプセル中に含有された請求項8記載の酵素リア
クター。 10)ポリマーに結合されたコフアクターおよび酵素が
限外ろ過膜を備えた膜リアクター中に含有された請求項
8記載の酵素リアクター。
Applications Claiming Priority (2)
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