JPH01126557A - 免疫測定用試薬 - Google Patents
免疫測定用試薬Info
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- JPH01126557A JPH01126557A JP28310587A JP28310587A JPH01126557A JP H01126557 A JPH01126557 A JP H01126557A JP 28310587 A JP28310587 A JP 28310587A JP 28310587 A JP28310587 A JP 28310587A JP H01126557 A JPH01126557 A JP H01126557A
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Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
A産業上の利用分野
本発明は、固相を用いた免疫測定試薬であり、固相にア
ルミナ単結晶(Al□03)を使い、ポリリジン層とグ
ルタルアルデヒド層と抗体または抗原層を順次形成して
、固相への抗体結合量及び抗体結合力を増加させ、測定
範囲の拡大、検出限界の感度の上昇、及び再現性の向上
を得た免疫測定試薬に関するものである。
ルミナ単結晶(Al□03)を使い、ポリリジン層とグ
ルタルアルデヒド層と抗体または抗原層を順次形成して
、固相への抗体結合量及び抗体結合力を増加させ、測定
範囲の拡大、検出限界の感度の上昇、及び再現性の向上
を得た免疫測定試薬に関するものである。
B発明の概要
本発明は、アルミナ単結晶(A+*OS)を固相として
、その固相上に、ポリリジン層とグルタルアルデヒド層
と抗体または抗原層を順次形成したことからなる免疫測
定試薬に関するものである。
、その固相上に、ポリリジン層とグルタルアルデヒド層
と抗体または抗原層を順次形成したことからなる免疫測
定試薬に関するものである。
C従来の技術
固相を用いる免疫学的測定法には、大きく分けて、競合
法と非競合法に分類される。前者の代表例は、第1抗体
固相法、後者は、サンドイッチ測定法がある。
法と非競合法に分類される。前者の代表例は、第1抗体
固相法、後者は、サンドイッチ測定法がある。
このサンドイツチ法は、固相に抗体を吸着させ、そこに
抗原をトラップさせる。次に酵素標識抗体をその抗原に
結合させ、結合した酵素標識抗体量から抗原の量を測定
する方法である。
抗原をトラップさせる。次に酵素標識抗体をその抗原に
結合させ、結合した酵素標識抗体量から抗原の量を測定
する方法である。
上記の原理のため、サンドイツチ法の検出感度を上昇さ
せるためには、固相への抗体結合量及び抗体結合力が、
大きく影響してくる。
せるためには、固相への抗体結合量及び抗体結合力が、
大きく影響してくる。
従来、固相の材料としてはポリスチレン、ガラス、アク
リルニ1〜リルーブクジエンースチレン共重合樹脂(略
してABS)などが多く用いられた。
リルニ1〜リルーブクジエンースチレン共重合樹脂(略
してABS)などが多く用いられた。
これらの固相への抗体結合方法は、多くは物理的に吸着
させる方法であった。しかし、この方法では、固相の抗
体結合量が少ない、固相の抗体結合力が弱い、測定値の
バラツキが大きい、非特異的吸着が大きいなどの問題点
があった。
させる方法であった。しかし、この方法では、固相の抗
体結合量が少ない、固相の抗体結合力が弱い、測定値の
バラツキが大きい、非特異的吸着が大きいなどの問題点
があった。
以前、特願昭60−45742で本発明者らが出願した
「免疫学的な測定試薬の調整法とこれによって得た試薬
」では、上記の問題点を解決するために、固相をアミノ
酸処理した後、二官能性アルデヒド処理し、抗体結合さ
せたものであり、その効果は上記問題点を解決するに至
った。
「免疫学的な測定試薬の調整法とこれによって得た試薬
」では、上記の問題点を解決するために、固相をアミノ
酸処理した後、二官能性アルデヒド処理し、抗体結合さ
せたものであり、その効果は上記問題点を解決するに至
った。
D発明が解決しようとする問題点
しかし、免疫測定試薬としての検出限界、測定範囲及び
再現性のより一層の向上が望まれていた。
再現性のより一層の向上が望まれていた。
本発明は、かかる問題点を解決するためになされたもの
で、固相の抗体結合量が多く、固相の抗体結合力も強く
、測定値のバラツキが小さい、非特異的吸着の少ない免
疫測定試薬を得ることはもちろんの事として、免疫測定
試薬としての測定範囲の拡大、検出限界の感度上昇及び
再現性のより一層の向上を成し得た免疫測定試薬を得る
ことを目的とする。
で、固相の抗体結合量が多く、固相の抗体結合力も強く
、測定値のバラツキが小さい、非特異的吸着の少ない免
疫測定試薬を得ることはもちろんの事として、免疫測定
試薬としての測定範囲の拡大、検出限界の感度上昇及び
再現性のより一層の向上を成し得た免疫測定試薬を得る
ことを目的とする。
E問題点を解決するための手段
この発明に係わる免疫測定試薬では、ポリリジン層とグ
ルグルアルデヒド層と抗体または抗原層を順次形成した
、生体親和性の高いアルミナ単結晶(A l x O3
)を使い、そのアルミナ単結晶(人1zoi)を固相と
したものである。
ルグルアルデヒド層と抗体または抗原層を順次形成した
、生体親和性の高いアルミナ単結晶(A l x O3
)を使い、そのアルミナ単結晶(人1zoi)を固相と
したものである。
F作用
生体親和性の高いアルミナ単結晶(人1□03)を固相
に使うことにより、固相とポリリジンの結合力と結合量
が増加する。それにより、架橋するグルタルアルデヒド
量が増加し、抗体結合量及び抗体結合力が増加する。
に使うことにより、固相とポリリジンの結合力と結合量
が増加する。それにより、架橋するグルタルアルデヒド
量が増加し、抗体結合量及び抗体結合力が増加する。
G実施例
(11”’ic E A (ガン胎児性抗原)を用いた
抗体結合量の評価 実施例1゜ 第1図は本発明の一実施例を示す免疫測定試薬の調整方
法図である。
抗体結合量の評価 実施例1゜ 第1図は本発明の一実施例を示す免疫測定試薬の調整方
法図である。
調整方法は、アルミナ単結晶(A+zO3) (息下、
A1.sボールと略す)をAl(0,1mg/−ポリリ
ジンを含む0.15mol/ lホウ酸緩衝液(pH8
,5) )中に室温で、1晩浸漬してポリリジン処理を
行った。
A1.sボールと略す)をAl(0,1mg/−ポリリ
ジンを含む0.15mol/ lホウ酸緩衝液(pH8
,5) )中に室温で、1晩浸漬してポリリジン処理を
行った。
蒸留水で洗浄し、5%グルタルアルデヒド水溶液ニ、3
0℃で2時間浸漬してグルクルアルデヒド処理を行った
。蒸留水で洗浄し、B液(Q、ll11g/mi免疫グ
ロブリンG(IgGと略す)、0.1mol/ lリン
酸緩衝液(PH7,s) ) 4℃で1晩浸漬した。さ
らにB液で洗浄した後、C液(0,O1mol/ j
リン酸緩衝液(p[(7,0)、0.1mol/j N
a1l、0.1*牛血清アルブミン(B S Aと略す
)、0.1XNaNs ffl、合液)で洗浄した後、
C液に浸漬し、4℃で保存した。
0℃で2時間浸漬してグルクルアルデヒド処理を行った
。蒸留水で洗浄し、B液(Q、ll11g/mi免疫グ
ロブリンG(IgGと略す)、0.1mol/ lリン
酸緩衝液(PH7,s) ) 4℃で1晩浸漬した。さ
らにB液で洗浄した後、C液(0,O1mol/ j
リン酸緩衝液(p[(7,0)、0.1mol/j N
a1l、0.1*牛血清アルブミン(B S Aと略す
)、0.1XNaNs ffl、合液)で洗浄した後、
C液に浸漬し、4℃で保存した。
本実施例では、IgGを抗ガン胎児性抗原(抗CEAと
略す)−IgGとして被覆AI、sボールを調整した。
略す)−IgGとして被覆AI、sボールを調整した。
第2図は競合反応による抗体結き量の測定操作図であり
、第1図の方法で調整された抗CEA−IgG被覆A1
.sボールを1”■−〇 E A溶液(約2X10’C
pm[カウントバー・ミニフッ])100μ I 、
CEA溶液(0〜11000n/mt’)100μl
SC液100μlの混合溶液で1晩反応させ、洗浄後
、γ−ウェルカウンターで計測した。
、第1図の方法で調整された抗CEA−IgG被覆A1
.sボールを1”■−〇 E A溶液(約2X10’C
pm[カウントバー・ミニフッ])100μ I 、
CEA溶液(0〜11000n/mt’)100μl
SC液100μlの混合溶液で1晩反応させ、洗浄後
、γ−ウェルカウンターで計測した。
第1図で調整した抗CEA−IgG被覆At、sボール
を第2図の通り、”’Ic E Aにより、抗体結合量
を測定した。結果は、第3図に示す。
を第2図の通り、”’Ic E Aにより、抗体結合量
を測定した。結果は、第3図に示す。
比較例1゜
第1図と同様の方法で、抗CEA−IgG被覆ポリスチ
レンボールを調整し、第2図と同様の方法で、抗体結合
量を測定した。
レンボールを調整し、第2図と同様の方法で、抗体結合
量を測定した。
結果は、第3図に示す。
第3図は、実施例1と比較例1の結果であり、A1.s
ボールとポリスチレンボールの抗体結合量変化図である
。図において(a)は実施例1、(b)は比較例1の結
果を示している。
ボールとポリスチレンボールの抗体結合量変化図である
。図において(a)は実施例1、(b)は比較例1の結
果を示している。
図より、抗体結合量はAI、sボールの方がポリスチレ
ンボールより相対的に大であることが判明した。
ンボールより相対的に大であることが判明した。
これは、AI、sがポリスチレンに比べて生体親和性が
強いためである。
強いためである。
(2)酵素標識抗体の固相への非特異的吸着の評価実施
例2゜ 第4図は酵素免疫測定(Enzyme Immuno
人5sayEIAと略す)を行う時のIgG−COD(
グルコースオキシダーゼ)標識抗体調整方法図であり、
第5図は非特異的吸着の評価方法の操作図である。
例2゜ 第4図は酵素免疫測定(Enzyme Immuno
人5sayEIAと略す)を行う時のIgG−COD(
グルコースオキシダーゼ)標識抗体調整方法図であり、
第5図は非特異的吸着の評価方法の操作図である。
IgG−COD標識抗体調整方法は、まずCOD約3m
g70.3mNを4倍量のO,1mol/ lリン酸緩
衝ン戊(PH7,0) lこ溶かし、GOD: GMB
S(ザクシンイミジル−4−マレイミドブチレイ1−)
=1:5Gの比で添加し、それをO,1mol/ lリ
ン酸l!衛液(pl(6,0)で平衡化したセファデッ
クスG 25 (1x30カラム)を用いて12nJ/
hrで脱塩し、1rnlずつ分取し、マレイミドCOD
を得た。次に、IgGに2m&’の0.1mol/j’
リン酸緩衝’75 (p[[6,o) 5mmol
/ l EDT人を加又、S−アセチルメルカプトこは
く酸を(S−アセチルメルカプトこはく酸: IgG
=300: 1の比で)ジメチルフォルマイトに溶解
し添加する。室温で30分間攪拌後、0.1mol/#
I・リス−塩酸(p[H,O) 0.1−10.1m
ol/1EDTA(pH7,0)0.02m1.1 m
ol// ヒドロキシジアミン水溶液(pli7. O
) 0.1+njを各々加え、30℃4分間反応させた
。D液で平衡化したセファデックスG 25 (1x3
0カラム)を用いて、12mN/hrの速度て脱塩し、
1 meずつ分取し、水冷中コロジオンバッグで濃縮し
、SH−1gGJe得た。得られたマレイミドCODと
SH−IgGを等モル混和し、30℃1時間静置後、4
℃で1晩静置した。0.1mol/eリン酸緩衝液(p
HG、5)、5 mmol/ l EDT人で平衡化し
たセファクリル300 (1x90カラム)に、6mt
’/hrで上記試料を溶出し、1−ずつ分取し、IgG
−COD標識抗体を得た。これを0.1%Nap、、0
.1%BSAとなるように添加し、4℃で保存する。
g70.3mNを4倍量のO,1mol/ lリン酸緩
衝ン戊(PH7,0) lこ溶かし、GOD: GMB
S(ザクシンイミジル−4−マレイミドブチレイ1−)
=1:5Gの比で添加し、それをO,1mol/ lリ
ン酸l!衛液(pl(6,0)で平衡化したセファデッ
クスG 25 (1x30カラム)を用いて12nJ/
hrで脱塩し、1rnlずつ分取し、マレイミドCOD
を得た。次に、IgGに2m&’の0.1mol/j’
リン酸緩衝’75 (p[[6,o) 5mmol
/ l EDT人を加又、S−アセチルメルカプトこは
く酸を(S−アセチルメルカプトこはく酸: IgG
=300: 1の比で)ジメチルフォルマイトに溶解
し添加する。室温で30分間攪拌後、0.1mol/#
I・リス−塩酸(p[H,O) 0.1−10.1m
ol/1EDTA(pH7,0)0.02m1.1 m
ol// ヒドロキシジアミン水溶液(pli7. O
) 0.1+njを各々加え、30℃4分間反応させた
。D液で平衡化したセファデックスG 25 (1x3
0カラム)を用いて、12mN/hrの速度て脱塩し、
1 meずつ分取し、水冷中コロジオンバッグで濃縮し
、SH−1gGJe得た。得られたマレイミドCODと
SH−IgGを等モル混和し、30℃1時間静置後、4
℃で1晩静置した。0.1mol/eリン酸緩衝液(p
HG、5)、5 mmol/ l EDT人で平衡化し
たセファクリル300 (1x90カラム)に、6mt
’/hrで上記試料を溶出し、1−ずつ分取し、IgG
−COD標識抗体を得た。これを0.1%Nap、、0
.1%BSAとなるように添加し、4℃で保存する。
非特異的吸着は、第5図に示すように、第1図で得られ
た抗CEA−IgG被覆・A1.sボールを、C液で希
釈した抗CEA−IgG−GOD標識抗体0.1−とC
液0.2mlに室温で1晩静置し、蒸留水で洗浄後、0
.5moI/Iグルコース、O,O1mol/ l酢酸
緩衝液(pH’5.1) 0.3mjを加え、37℃2
時間静置した。
た抗CEA−IgG被覆・A1.sボールを、C液で希
釈した抗CEA−IgG−GOD標識抗体0.1−とC
液0.2mlに室温で1晩静置し、蒸留水で洗浄後、0
.5moI/Iグルコース、O,O1mol/ l酢酸
緩衝液(pH’5.1) 0.3mjを加え、37℃2
時間静置した。
0.1r+t’サンプリングし、2X1G−’+ol/
J’ルミノール、0、2mol/ (l炭酸緩衝液(p
H9,8)0.5mj、6X10−’IIIo l /
lフェリシアン化カリ水溶w10.5+nl!を各添加
し、15秒待ち、16〜45秒間の発光量を算出する乙
とによって求めた。
J’ルミノール、0、2mol/ (l炭酸緩衝液(p
H9,8)0.5mj、6X10−’IIIo l /
lフェリシアン化カリ水溶w10.5+nl!を各添加
し、15秒待ち、16〜45秒間の発光量を算出する乙
とによって求めた。
比較例2゜
第1図と同様に調整した抗CE A’−I gG被覆ポ
リスチレンボールを用いて、第5図の様にポリスチレン
ボールの非特異的吸着量を求めた。
リスチレンボールを用いて、第5図の様にポリスチレン
ボールの非特異的吸着量を求めた。
実施例2と比較例2で、酵素標識抗体の固相への非特異
的吸着を比較した。なお、評価法は、添加IgG−GO
D標識抗体に対するIgG−COD標識抗体の固相への
吸着量の割合(%)とした。結果を表1に示す。
的吸着を比較した。なお、評価法は、添加IgG−GO
D標識抗体に対するIgG−COD標識抗体の固相への
吸着量の割合(%)とした。結果を表1に示す。
表IA1.sボールとポリスチレンボールサンドイッチ
測定法の感度を左右する主な要因の1つである酵素標識
抗体の固相への非特異的吸着ば両者に差がないという結
果を得た。これは抗体を固相へ吸着後、牛血清アルブミ
ンによるブロックがA1.sの場合でも、ポリスチレン
と同程度に有効であるためである。
測定法の感度を左右する主な要因の1つである酵素標識
抗体の固相への非特異的吸着ば両者に差がないという結
果を得た。これは抗体を固相へ吸着後、牛血清アルブミ
ンによるブロックがA1.sの場合でも、ポリスチレン
と同程度に有効であるためである。
(3)検出限界、測定範囲の評価
第6図は測定範囲および検出限界の比較操作図である。
以下にその操作を示す。第1図の操作で得られた抗CE
A−IgG被覆A1.sボールおよび抗CEA−IgG
被覆ポリスチレンボールをCEA標準1々(C液で希釈
)0.1−とC液0.2ml’に室温で6時間静置し、
蒸留水で洗浄後、C液で希釈した抗CEA−IgG−G
OD標識抗体0.1mt’とC液0.2mlに室渇で1
晩静置し、蒸留水で洗浄後、0.5mo 171グルコ
ース、0.01mol/l酢酸緩衝液(p[5,1)
0.3mjを加え、37℃2時間静置した。0.1−サ
ンプリングし、2X10−’+ol/ lルミノール、
0.2mol/l’炭酸緩衝液(pH9,8)O,Sm
J’、 8X10−”mol/J 7 エリシアン化カ
リ水溶液0.5mjを各添加し、15秒待ち、16〜4
5秒間の発光量を算出する。
A−IgG被覆A1.sボールおよび抗CEA−IgG
被覆ポリスチレンボールをCEA標準1々(C液で希釈
)0.1−とC液0.2ml’に室温で6時間静置し、
蒸留水で洗浄後、C液で希釈した抗CEA−IgG−G
OD標識抗体0.1mt’とC液0.2mlに室渇で1
晩静置し、蒸留水で洗浄後、0.5mo 171グルコ
ース、0.01mol/l酢酸緩衝液(p[5,1)
0.3mjを加え、37℃2時間静置した。0.1−サ
ンプリングし、2X10−’+ol/ lルミノール、
0.2mol/l’炭酸緩衝液(pH9,8)O,Sm
J’、 8X10−”mol/J 7 エリシアン化カ
リ水溶液0.5mjを各添加し、15秒待ち、16〜4
5秒間の発光量を算出する。
実施例2と比較例2について検出限界および測定範囲を
比較した。第7図は、その結果であり、CEA濃度−発
光量変化図である。図において、(e)は実施例2、(
d)は比較例2の結果を示している。
比較した。第7図は、その結果であり、CEA濃度−発
光量変化図である。図において、(e)は実施例2、(
d)は比較例2の結果を示している。
図よりA1.sの方が、ポリスチレンよりCEAの検出
限界、測定範囲いずれも優れていることが判明した。
限界、測定範囲いずれも優れていることが判明した。
これは、A1.sの抗体結合量が、大であることと、固
相への抗体結合の際、抗体の免疫活性が失われにくいこ
との2点が挙げられる。また、AI、sとポリスチレン
の測定上限が同値なのは、添加した酵素標識抗体量が制
限因子になっているためと考える。
相への抗体結合の際、抗体の免疫活性が失われにくいこ
との2点が挙げられる。また、AI、sとポリスチレン
の測定上限が同値なのは、添加した酵素標識抗体量が制
限因子になっているためと考える。
(4)検出限界における再現性の評価
実施例2と比較例2で検出限界における口内変動と日間
変動を比較した。結果を表2に示す。
変動を比較した。結果を表2に示す。
表2A1.sボールとポリスチレンボール日内変動 測
定回数n = 8 日間変動 測定回数n=6 表中()は、CEA濃度を示す。
定回数n = 8 日間変動 測定回数n=6 表中()は、CEA濃度を示す。
検出限界でのA1.Sボールの再現性が、ポリスチレン
ボールよりも優れている。これは、AI。
ボールよりも優れている。これは、AI。
Sボールの抗体結合量が多く、比較する固相の個体差が
、ポリスチレンボールよりも小さいためである。
、ポリスチレンボールよりも小さいためである。
(5)固相の抗体結合調整法の評価
比較例3゜
第8図は、比較例3を示す操作方法図である。
調整方法は、B液に4℃で1晩浸漬し、さらにB液で洗
浄した後、C液で3回洗浄した後、C液に浸漬し、4℃
で保存する。
浄した後、C液で3回洗浄した後、C液に浸漬し、4℃
で保存する。
比較例4゜
第9図は、比較例4を示す操作方法図である。
調整方法は、A1.gボールをA液中に室温で、1晩浸
漬してポリリジン処理を行った。蒸留水で洗浄し、B液
で4℃で1晩浸漬した。さらにB液で洗浄した後、C液
で3回洗浄した後、Cwlに浸漬し、4℃で保存する。
漬してポリリジン処理を行った。蒸留水で洗浄し、B液
で4℃で1晩浸漬した。さらにB液で洗浄した後、C液
で3回洗浄した後、Cwlに浸漬し、4℃で保存する。
比較例5゜
第10図は、比較例5を示す操作方法図である。
Fl整方法は、AI、Sボールを5%グルタルアルデヒ
ド水溶液に、30℃で2時間浸漬してグルタルアルデヒ
ド処理を行った。蒸留水で洗浄し、BwR4℃で1晩浸
漬した。さらにB液で洗浄した後、C液で3回洗浄した
後、C液に浸漬し、4℃で保存する。
ド水溶液に、30℃で2時間浸漬してグルタルアルデヒ
ド処理を行った。蒸留水で洗浄し、BwR4℃で1晩浸
漬した。さらにB液で洗浄した後、C液で3回洗浄した
後、C液に浸漬し、4℃で保存する。
実施例2と比較例3,4,5について測定範囲及び検出
限界を第6図の方法で比較した。第11図はその結果で
、処理条件の比較図である。
限界を第6図の方法で比較した。第11図はその結果で
、処理条件の比較図である。
図において、(e)は比較例3、(f)は比較例4、(
に)は比較例5の結果を示している。
に)は比較例5の結果を示している。
図より、第1図の方法で、WMしたA1.sの方がCE
Aの検出限界及び測定範囲のいずれにおいても優れてい
ることが判明した。
Aの検出限界及び測定範囲のいずれにおいても優れてい
ることが判明した。
第1図の調整法はボールをポリリジンで被覆後、グルタ
ルアルデヒドで架橋されるため、固相が安定する。この
様な安定した固相に結合した抗体により、抗体結合量及
び抗体結合力が増加しな。
ルアルデヒドで架橋されるため、固相が安定する。この
様な安定した固相に結合した抗体により、抗体結合量及
び抗体結合力が増加しな。
今回は抗体量を検出するための標識物を酵素(COD)
の場合のみ記したが、酵素のみならず蛍光発光物質、放
射性同位元素でも同様な結果を得ている。以下に標識物
の例を示す。酵素(グルコースオキシダーゼ、西洋ワサ
ビペルオキシダーゼ、β−D−ガラクトシグーゼ、グル
コース6リン酸、脱水素酵ズ、アルカリホスファターゼ
等)、発光[t (フルオレセインイソチオシアネ−1
・、テトラメチルローダミンイソチオシアネート等)、
化学発光物質(アミノエチルエチルイソルミノール、ア
ミノブチルエチルイソルミノール、アミノペンチルエチ
ルイソルミノール、アミノヘキシルエチルイソルミノー
ル等)、放射性同位光?(’H。
の場合のみ記したが、酵素のみならず蛍光発光物質、放
射性同位元素でも同様な結果を得ている。以下に標識物
の例を示す。酵素(グルコースオキシダーゼ、西洋ワサ
ビペルオキシダーゼ、β−D−ガラクトシグーゼ、グル
コース6リン酸、脱水素酵ズ、アルカリホスファターゼ
等)、発光[t (フルオレセインイソチオシアネ−1
・、テトラメチルローダミンイソチオシアネート等)、
化学発光物質(アミノエチルエチルイソルミノール、ア
ミノブチルエチルイソルミノール、アミノペンチルエチ
ルイソルミノール、アミノヘキシルエチルイソルミノー
ル等)、放射性同位光?(’H。
目C,32P、 12’I 、””I等)H発明の効果
ポリリジン層とグルクルアルデヒド層と抗体または抗原
層を順次形成した、生体親和性の高いアルミナ単結晶(
Altos)を固相としたので、ポリリジンの被覆量が
上昇し、グルタルアルデヒド処理によって、ポリリジン
の一部のアミノ基が互いにグルタルアルデヒドで、架橋
されるため固相が安定する。この様な安定しな固相に結
合した抗体により、抗体結合量及び抗体結合力が増加す
る。
層を順次形成した、生体親和性の高いアルミナ単結晶(
Altos)を固相としたので、ポリリジンの被覆量が
上昇し、グルタルアルデヒド処理によって、ポリリジン
の一部のアミノ基が互いにグルタルアルデヒドで、架橋
されるため固相が安定する。この様な安定しな固相に結
合した抗体により、抗体結合量及び抗体結合力が増加す
る。
そのため、従来よりも測定範囲が拡大し、検出限界が上
昇し、再現性が向上するという効果がある。
昇し、再現性が向上するという効果がある。
第1図は本発明の一実施例を示す免疫測定試薬の調整方
法図、第2図は競合反応による抗体結合量の測定操作図
、第3図はA1.sボールとポリスチレンボールの抗体
結合量変化図、第4図は■gG−GOD標識抗体Fl整
方法図、第5図は非特異的吸着の評価方法の操作図、第
6図は測定範囲および検出限界の比較操作図、第7図は
CEA濃度−発光量変化図、第8図は比較例3を示す操
作方法図、第9図は比較例4を示す操作方法図、第1θ
図は比較例5を示す操作方法図、第11図はその結果で
、処理条件の比較図である。
法図、第2図は競合反応による抗体結合量の測定操作図
、第3図はA1.sボールとポリスチレンボールの抗体
結合量変化図、第4図は■gG−GOD標識抗体Fl整
方法図、第5図は非特異的吸着の評価方法の操作図、第
6図は測定範囲および検出限界の比較操作図、第7図は
CEA濃度−発光量変化図、第8図は比較例3を示す操
作方法図、第9図は比較例4を示す操作方法図、第1θ
図は比較例5を示す操作方法図、第11図はその結果で
、処理条件の比較図である。
Claims (2)
- (1)ポリリジン層とグルタルアルデヒド層と抗体また
は抗原層を順次形成したアルミナ単結晶を固相としたこ
とを特徴とする免疫測定用試薬。 - (2)前記抗体は、抗ガン胎児性抗原−免疫グロブリン
Gとしたことを特徴とする特許請求の範囲第1項記載の
免疫測定用試薬。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP28310587A JPH01126557A (ja) | 1987-11-11 | 1987-11-11 | 免疫測定用試薬 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP28310587A JPH01126557A (ja) | 1987-11-11 | 1987-11-11 | 免疫測定用試薬 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01126557A true JPH01126557A (ja) | 1989-05-18 |
Family
ID=17661282
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP28310587A Pending JPH01126557A (ja) | 1987-11-11 | 1987-11-11 | 免疫測定用試薬 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH01126557A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0456126U (ja) * | 1990-09-20 | 1992-05-14 | ||
| US9938378B2 (en) | 2011-04-20 | 2018-04-10 | Spheritech Ltd | Cross-linked poly-E-lysine non-particulate support |
-
1987
- 1987-11-11 JP JP28310587A patent/JPH01126557A/ja active Pending
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0456126U (ja) * | 1990-09-20 | 1992-05-14 | ||
| US9938378B2 (en) | 2011-04-20 | 2018-04-10 | Spheritech Ltd | Cross-linked poly-E-lysine non-particulate support |
| US10266652B2 (en) | 2011-04-20 | 2019-04-23 | Spheritech Ltd. | Cross-linked poly-E-lysine non-particulate support |
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