JPH01143835A - フィブリノゲンおよび因子x3を含有する無菌の血漿−タンパク質を調整する方法 - Google Patents
フィブリノゲンおよび因子x3を含有する無菌の血漿−タンパク質を調整する方法Info
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- JPH01143835A JPH01143835A JP63260363A JP26036388A JPH01143835A JP H01143835 A JPH01143835 A JP H01143835A JP 63260363 A JP63260363 A JP 63260363A JP 26036388 A JP26036388 A JP 26036388A JP H01143835 A JPH01143835 A JP H01143835A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、クエン酸塩で安定化されたヒト血漿から、こ
とにフィブリノゲン接着剤の一成分として適する、フィ
ブリノゲンおよび因子XIIIを含有する無菌の血漿−
タンパク質溶液を調製する方法に関する。
とにフィブリノゲン接着剤の一成分として適する、フィ
ブリノゲンおよび因子XIIIを含有する無菌の血漿−
タンパク質溶液を調製する方法に関する。
(従来の技術並びに発明が解決しようとする課題)血漿
からフィブリノゲンを調製する幾つかの異なる方法は文
献から知られている。それらの大部分は、コーン(Ch
on)(Journal of theAmerica
n 5ociety 72[1950]、5B4−47
4)により記載されるエタノール沈澱を用いる。1つの
既知の他の方法は、プロベック(Blomb’1ck)
ら(Archlv rVr Keel 10[195B
]、29,415−43)により記載された。
からフィブリノゲンを調製する幾つかの異なる方法は文
献から知られている。それらの大部分は、コーン(Ch
on)(Journal of theAmerica
n 5ociety 72[1950]、5B4−47
4)により記載されるエタノール沈澱を用いる。1つの
既知の他の方法は、プロベック(Blomb’1ck)
ら(Archlv rVr Keel 10[195B
]、29,415−43)により記載された。
血漿分画は非常に感染を受けやすいように思われる。そ
れらは、とくにB型肝炎ウィルスおよび非A/非B型肝
炎ウィルスおよび現在ではヒト免疫欠損ウィルス(HI
V)を伝達する危険を伴う。
れらは、とくにB型肝炎ウィルスおよび非A/非B型肝
炎ウィルスおよび現在ではヒト免疫欠損ウィルス(HI
V)を伝達する危険を伴う。
フィブリノゲンおよびコーンlフラクションは、なかで
も、肝炎の危険性において高い危険の調製物であるもの
である(J、P、Hoof’nagel etal、J
、Lab、Cl1n、Med、88[197B]、10
2およびW、Doleschel et al、Wle
ner Llln、Wschr、89[1977] 、
383)。
も、肝炎の危険性において高い危険の調製物であるもの
である(J、P、Hoof’nagel etal、J
、Lab、Cl1n、Med、88[197B]、10
2およびW、Doleschel et al、Wle
ner Llln、Wschr、89[1977] 、
383)。
それゆえ、大きい血漿プールから集めたフィブリノゲン
調製物の臨床的使用は米国において禁止されている。
調製物の臨床的使用は米国において禁止されている。
診断の手段を使用して血漿プールから肝炎に対して安全
な血液生成物を調製することは不可能であるので、血液
成分を滅菌する種々の方法が開発されて来ている。低温
殺菌(60℃において10時間)はアルブミンについて
首尾よく用いられて来ており、そして、数年以前、因子
II、因子■および因子X■のような感受性血漿タンパ
ク質を滅菌するために、例えば、アミノ酸および単糖類
およびオリゴ糖のような安定剤との組み合わせで記載さ
れている(欧州特許出願(EP−B) 0018561
号)。
な血液生成物を調製することは不可能であるので、血液
成分を滅菌する種々の方法が開発されて来ている。低温
殺菌(60℃において10時間)はアルブミンについて
首尾よく用いられて来ており、そして、数年以前、因子
II、因子■および因子X■のような感受性血漿タンパ
ク質を滅菌するために、例えば、アミノ酸および単糖類
およびオリゴ糖のような安定剤との組み合わせで記載さ
れている(欧州特許出願(EP−B) 0018561
号)。
これらの安定剤の存在下の低温殺菌の有効性は、決定さ
れてきておらず、そして現在試験されている。
れてきておらず、そして現在試験されている。
G、A、Oグリツボ(LoGrlppo)およびH,ハ
ヤシ(Hayasl)(Henry Ford Ho5
p、Med、J、21[1973]。
ヤシ(Hayasl)(Henry Ford Ho5
p、Med、J、21[1973]。
181)およびF、v、ハートマン(Hartmann
) (Blbl。
) (Blbl。
Hae*ato1.7[1985]、225)は、ヒト
血漿のβ−プロピオラクトンによる処置および紫外線照
射を組み合わせた、低温滅菌の方法を記載した。
血漿のβ−プロピオラクトンによる処置および紫外線照
射を組み合わせた、低温滅菌の方法を記載した。
既に精製したフィブリノゲン分画のβ−プロピオラクト
ンおよび紫外線照射による滅菌は、それ以上凝固しない
フィブリノゲン生成物を生ずる(R,Kotitsch
eke & V、5tephan、Proteinsお
よびRe1ated 5ubjects、Vol、28
.Protides of’B1o1ogieal
PIuids、Peeters )1..28thCo
11oquiui、1980,0xford、Nev
York、Toronto、およびParis、Per
gamon Press、333−37;II。
ンおよび紫外線照射による滅菌は、それ以上凝固しない
フィブリノゲン生成物を生ずる(R,Kotitsch
eke & V、5tephan、Proteinsお
よびRe1ated 5ubjects、Vol、28
.Protides of’B1o1ogieal
PIuids、Peeters )1..28thCo
11oquiui、1980,0xford、Nev
York、Toronto、およびParis、Per
gamon Press、333−37;II。
Brunner et al、、Verhandlun
gen der Deutsh。
gen der Deutsh。
Ge5ellsch、fi;r Inn、Med、79
[1983]、1130−14;およびW、Doles
chel & W、Auersvald、Pharma
co1gy2[1989]、1)。
[1983]、1130−14;およびW、Doles
chel & W、Auersvald、Pharma
co1gy2[1989]、1)。
欧州特許出願(E P −B) 0014333号は、
血漿分画、フィブリノゲン、因子II、因子VII、因
子IXおよび因子Xを含有するプロトロンビン複合体、
抗トロンビン■、および貯蔵安定血清タンパク質の溶液
を、クエン酸塩で安定化しそしてβ−プロピオラクトン
および紫外線照射で処理した血漿から調製することを記
載している。
血漿分画、フィブリノゲン、因子II、因子VII、因
子IXおよび因子Xを含有するプロトロンビン複合体、
抗トロンビン■、および貯蔵安定血清タンパク質の溶液
を、クエン酸塩で安定化しそしてβ−プロピオラクトン
および紫外線照射で処理した血漿から調製することを記
載している。
フィブリノゲンは、この方法において、β−プロピオラ
クトンで処理し、そして紫外線で照射したクエン酸塩血
漿のプールから、コロイド状ケイ酸上への吸着および引
き続く溶離によって調製される。このタイプのフイブリ
ノゲンは因子XIIIを含有しないので、このフィブリ
ノゲンはフィブリン接着剤の一成分として適当ではない
。接着剤中で使用されるという要件を満足するためのフ
ィブリノゲンを調製するために、それを濃縮された因子
X■で濃縮しなくてはならない。
クトンで処理し、そして紫外線で照射したクエン酸塩血
漿のプールから、コロイド状ケイ酸上への吸着および引
き続く溶離によって調製される。このタイプのフイブリ
ノゲンは因子XIIIを含有しないので、このフィブリ
ノゲンはフィブリン接着剤の一成分として適当ではない
。接着剤中で使用されるという要件を満足するためのフ
ィブリノゲンを調製するために、それを濃縮された因子
X■で濃縮しなくてはならない。
生物学的フィブリン接着剤系における別のフィブリンポ
リマーを、カルシウムイオンおよびトロンビンで活性化
した因子X■で架橋し、不溶性固体の弾性フィブリン凝
固物を生成する(H,P、Spangler &P、B
raun、Grundlagen derPibrln
klebung 1n der operative
Medlzln。
リマーを、カルシウムイオンおよびトロンビンで活性化
した因子X■で架橋し、不溶性固体の弾性フィブリン凝
固物を生成する(H,P、Spangler &P、B
raun、Grundlagen derPibrln
klebung 1n der operative
Medlzln。
Deerf’1eld Beach、Florida
and Ba5e1.EditlonMedizin、
Welnheim、 1983)。
and Ba5e1.EditlonMedizin、
Welnheim、 1983)。
フィブリン接着剤系の因子X■含量の重要性は、生体内
皮膚結合試験において立証された(H,P、Sp’rn
gler er al、Wlen、K11n、Voch
enschr。
皮膚結合試験において立証された(H,P、Sp’rn
gler er al、Wlen、K11n、Voch
enschr。
85[1973コ、827) 。
ヒト血漿から無菌の因子因子X■濃縮物を調製する方法
は非常に経費がかかるので、それらは好ましくはヒト胎
盤から調製される(カナダ国特許957943)、ウィ
ンケルマン(1/Inke1man)ら(Throsb
osls and Haesostasls 55[1
98B]、3.402−05)は、寒冷沈降物を除去し
た、血漿から濃縮した因子XIIIを調製することを記
載している。
は非常に経費がかかるので、それらは好ましくはヒト胎
盤から調製される(カナダ国特許957943)、ウィ
ンケルマン(1/Inke1man)ら(Throsb
osls and Haesostasls 55[1
98B]、3.402−05)は、寒冷沈降物を除去し
た、血漿から濃縮した因子XIIIを調製することを記
載している。
ヒト因子XIIIを含有する溶液は、ウィルスの伝達を
防止するために滅菌しなくてはならない(欧州特許出願
(EP−8) 0037078号)。
防止するために滅菌しなくてはならない(欧州特許出願
(EP−8) 0037078号)。
本発明の目的は、ヒト血漿から、因子X■およびフィブ
リノゲンの両者を含有する無菌安定な血漿−タンパク質
溶液を調製することであり、これを血漿に関して濃縮し
、そしてことにフィブリン接着剤の一成分として適当で
ある。
リノゲンの両者を含有する無菌安定な血漿−タンパク質
溶液を調製することであり、これを血漿に関して濃縮し
、そしてことにフィブリン接着剤の一成分として適当で
ある。
(課題を解決するための手段)
この目的は、本発明に従い、クエン酸塩で安定化された
血漿をβ−プロピオラクトンで処理し、そして紫外線で
照射し、因子II、因子VII、因子IXおよび因子X
をタンパク質を吸着するアニオン交換体への吸着によっ
て除去し、前記溶液が一3℃において9容量%の濃度を
有するまで、コンパニオンタンパク質(compani
onproteins)をエタノールで沈澱させ、沈澱
を遠心分離し、そしてクエン酸塩緩衝液中にpue、a
sおよび37℃の温度において撹拌しながら溶解し、フ
ィブリノゲン溶液のタンパク質レベルをクエン酸ナトリ
ウム溶液でta、ag/iに調製し、さらにコンパニオ
ンタンパク質をエタノール、グリシンクエン酸塩緩衝液
、およびクエン酸ナトリウムの溶液で沈澱させ、沈澱を
遠心分離し、フイブリノゲンおよび因子XIIIを残溜
物から、溶液が一3℃において9容量%の最終濃度を有
するまで、エタノールを添加することによって沈澱させ
、撹拌しながら、沈澱をクエン酸塩緩衝液中1::pH
B、35および37℃の温度においてフィブリノゲンの
所望濃度に溶解し、そして溶液をフィルター−清浄化デ
ィスクおよびミリポア滅菌フィルターでP遇することに
おいて達成される。
血漿をβ−プロピオラクトンで処理し、そして紫外線で
照射し、因子II、因子VII、因子IXおよび因子X
をタンパク質を吸着するアニオン交換体への吸着によっ
て除去し、前記溶液が一3℃において9容量%の濃度を
有するまで、コンパニオンタンパク質(compani
onproteins)をエタノールで沈澱させ、沈澱
を遠心分離し、そしてクエン酸塩緩衝液中にpue、a
sおよび37℃の温度において撹拌しながら溶解し、フ
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ウム溶液でta、ag/iに調製し、さらにコンパニオ
ンタンパク質をエタノール、グリシンクエン酸塩緩衝液
、およびクエン酸ナトリウムの溶液で沈澱させ、沈澱を
遠心分離し、フイブリノゲンおよび因子XIIIを残溜
物から、溶液が一3℃において9容量%の最終濃度を有
するまで、エタノールを添加することによって沈澱させ
、撹拌しながら、沈澱をクエン酸塩緩衝液中1::pH
B、35および37℃の温度においてフィブリノゲンの
所望濃度に溶解し、そして溶液をフィルター−清浄化デ
ィスクおよびミリポア滅菌フィルターでP遇することに
おいて達成される。
血漿をβ−プロピオラクトンで出発血漿の0.2〜0o
35容量%の濃度範囲およびpH7,2において処理す
る。紫外線の線量は、217時間の割合で厚さ0.1!
assの血漿の層からlamにおいて、700rpmで
紫外線管を回転させて、4X20ワツトである。
35容量%の濃度範囲およびpH7,2において処理す
る。紫外線の線量は、217時間の割合で厚さ0.1!
assの血漿の層からlamにおいて、700rpmで
紫外線管を回転させて、4X20ワツトである。
β−プロピオラクトンおよび紫外線照射で処理した血漿
を、この方法において、因子II、因子VII、因子I
Xおよび因子Xを分離しないで、分画する場合、得られ
る分画は不安定なフィブリノゲンおよび因子XIIIを
含有し、生成物はゲル化および凝固し、それ以上の処理
を不可能とすることを意味する。
を、この方法において、因子II、因子VII、因子I
Xおよび因子Xを分離しないで、分画する場合、得られ
る分画は不安定なフィブリノゲンおよび因子XIIIを
含有し、生成物はゲル化および凝固し、それ以上の処理
を不可能とすることを意味する。
(発明の効果)
本発明に従う方法は、クエン酸塩で安定化したヒト血漿
から、出発血漿に関して濃縮された形態でフィブリノゲ
ンおよび因子x■を含有する、高い凝固および肝炎安定
性の、治療学的に有用な、血漿タンパク質の溶液を提供
する。この溶液は、フィブリン接着剤の一成分として殊
に適する。
から、出発血漿に関して濃縮された形態でフィブリノゲ
ンおよび因子x■を含有する、高い凝固および肝炎安定
性の、治療学的に有用な、血漿タンパク質の溶液を提供
する。この溶液は、フィブリン接着剤の一成分として殊
に適する。
次の表は、本発明に従って調製された使用すべき目的に
したがって異なるタンパク質濃度をもつ、2つの血漿−
タンパク質溶液の性質を示す。
したがって異なるタンパク質濃度をもつ、2つの血漿−
タンパク質溶液の性質を示す。
表
(g/l) (g/i) (
U/m1)(実施例) 次の実施例により、本発明を説明する。
U/m1)(実施例) 次の実施例により、本発明を説明する。
実施例
合計重量が37.2kgの新鮮な凍結したクエン酸塩血
漿の60個の血漿袋を、+8℃で一夜放置した。次いで
、袋を層流の下でメスで開き、そして加熱ジャケットを
有するボイラー中で、凍結した血漿を、撹拌しながら、
37℃において融解した。
漿の60個の血漿袋を、+8℃で一夜放置した。次いで
、袋を層流の下でメスで開き、そして加熱ジャケットを
有するボイラー中で、凍結した血漿を、撹拌しながら、
37℃において融解した。
血漿プールをほぼ45分間はぼ10℃に冷却した。92
.50m1のβ−プロピオラクトン(0,25%)を、
撹拌しながら、血漿中に滴下した。
.50m1のβ−プロピオラクトン(0,25%)を、
撹拌しながら、血漿中に滴下した。
pl+が7.2になったとき、それをINの水酸化ナト
リウムを室温にお輩で1時間添加することによって維持
し、11の水酸化物が消費された。
リウムを室温にお輩で1時間添加することによって維持
し、11の水酸化物が消費された。
21/時間の割合で流れるβ−プロピオラクトン処理し
た血漿の0.15mmの厚さの層を、700rpmで回
転する紫外線管を使用して、4×20ワツトの紫外線輻
射に暴露した。
た血漿の0.15mmの厚さの層を、700rpmで回
転する紫外線管を使用して、4×20ワツトの紫外線輻
射に暴露した。
1.5gのDEAEセファデックス(Sephadex
)A50を、血漿の1 kgにつき使用してPP5B因
子を吸着した。バッチを1時間放置し、そしてセファデ
ックスを一夜沈澱させた。血漿を沈降物から、次の日に
、ライザー(rlser>およびポンプで除去した。
)A50を、血漿の1 kgにつき使用してPP5B因
子を吸着した。バッチを1時間放置し、そしてセファデ
ックスを一夜沈澱させた。血漿を沈降物から、次の日に
、ライザー(rlser>およびポンプで除去した。
pHを7.2に調節し、そして血漿を0℃に冷却した。
96%のエタノールを、濃度が9%となるまで、撹拌し
ながら添加した。温度を一3℃に低下させた。沈澱を1
4時間続けた。沈澱を一15℃で11/分およびllo
00rpm+;:おいて角度をもった遠心分離器で遠心
分離した。
ながら添加した。温度を一3℃に低下させた。沈澱を1
4時間続けた。沈澱を一15℃で11/分およびllo
00rpm+;:おいて角度をもった遠心分離器で遠心
分離した。
沈澱した血漿−タンパク質分画(350gの沈澱)を1
200 mlのクエン酸塩緩衝液中に、pH64−5お
よび+37℃の温度において45分間、撹拌しながら溶
解した。
200 mlのクエン酸塩緩衝液中に、pH64−5お
よび+37℃の温度において45分間、撹拌しながら溶
解した。
タンパク質のレベルをクエン酸ナトリウム溶液(0,0
55モル)でpH6.35において13.8g / 1
に調節した。コンパニオンタンパク質を、フィブリノゲ
ン溶液の1kgにつき、240 mlのグリシンクエン
酸塩緩衝液、280m1のエタノール、および15(1
0mlのクエン酸塩溶液で沈澱させた。沈澱後はぼ1時
間において、沈澱を遠心分離し、そしてエタノールを濃
度が3℃において9%にな7るまで添加することによっ
て、フィブリノゲンおよび因子XIIIを残溜物から沈
澱させた。
55モル)でpH6.35において13.8g / 1
に調節した。コンパニオンタンパク質を、フィブリノゲ
ン溶液の1kgにつき、240 mlのグリシンクエン
酸塩緩衝液、280m1のエタノール、および15(1
0mlのクエン酸塩溶液で沈澱させた。沈澱後はぼ1時
間において、沈澱を遠心分離し、そしてエタノールを濃
度が3℃において9%にな7るまで添加することによっ
て、フィブリノゲンおよび因子XIIIを残溜物から沈
澱させた。
沈澱を+37℃において溶液の緩衝液で所望濃度撹拌し
ながら、稀釈した。
ながら、稀釈した。
フィブリノゲン溶液を、最初、フィルター−清浄化ディ
スクで濾過し、次いでミリポア滅菌フィタルーで濾過し
た。滅菌濾過した溶液をさらに使用するため一80℃で
深冷凍結した。
スクで濾過し、次いでミリポア滅菌フィタルーで濾過し
た。滅菌濾過した溶液をさらに使用するため一80℃で
深冷凍結した。
本発明に従う方法を第1図示のフローチャートで示す。
このフローチャートは、無菌血漿−タンパク質溶液(フ
ィブリノゲンおよび因子X■)の調製を示す。
ィブリノゲンおよび因子X■)の調製を示す。
第1図は本発明方法の1実施例をフローチャートで示し
た説明図である。 特許出願人 ビオテスト ファルマ ゲゼルシャフト ミツト ベシュレンクター 外′36 −
た説明図である。 特許出願人 ビオテスト ファルマ ゲゼルシャフト ミツト ベシュレンクター 外′36 −
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、ヒト血漿がクエン酸塩で安定化されておりかつ前記
ヒト血漿からタンパク質を吸着するアニオン交換体への
吸着によって因子II、因子VII、因子IXおよび因子Xが
分離されており、そして前記ヒト血漿から他のコンパニ
オンタンパク質をエタノールを使用する分画化沈澱によ
って分離する、ヒト血漿からフィブリノゲンおよび因子
XIIIを含有する無菌の安定な血漿タンパク質溶液を調
製する方法であって、クエン酸塩で安定化された血漿を
β−プロピオラクトンで処理し、そして紫外線で照射し
、因子II、因子VII、因子IXおよび因子Xをタンパク質
を吸着するアニオン交換体への吸着によって除去し、前
記溶液が−3℃において9容量%の濃度を有するまで、
前記コンパニオンタンパク質をエタノールで沈澱させ、
沈澱を遠心分離し、そしてクエン酸塩緩衝液中にpH6
.35および37℃の温度において撹拌しながら溶解し
、フィブリノゲン溶液のタンパク質レベルをクエン酸ナ
トリウム溶液で13.3g/lに調節し、さらにコンパ
ニオンタンパク質をエタノール、グリシンクエン酸塩緩
衝液、およびクエン酸ナトリウムの溶液で沈澱させ、沈
澱を遠心分離し、フィブリノゲンおよび因子XIIIを残
留物から、溶液が−3℃において9容量%の最終濃度を
有するまで、エタノールを添加することによって沈澱さ
せ、撹拌しながら、沈澱をクエン酸塩緩衝液中にpH6
.35および37℃の温度においてフィブリノゲンの所
望濃度に溶解し、そして溶液をフィルター−清浄化ディ
スクおよびミリポア滅菌フィルターで濾過することを特
徴とする方法。 2、β−プロピオラクトンを使用する処理は、出発血漿
の0.2〜0.35容量%の範囲の濃度およびpH7.
2において実施することを特徴とする特許請求の範囲第
1項記載の方法。 3、タンパク質吸着性アニオン交換体はジエチルアミノ
エチル基をもつ架橋したデキストランまたはセルロース
であり、そして血漿の1kgにつき0.5〜3gの濃度
で使用することを特徴とする特許請求の範囲第1項記載
の方法。 4、コンパニオンタンパク質は、1kgのフィブリノゲ
ン溶液から、260mlのエタノール、240mlグリ
シンクエン酸塩緩衝液および1500mlのクエン酸ナ
トリウム溶液で沈澱させることを特徴とする特許請求の
範囲第1項記載の方法。 5、所望のフィブリノゲン濃度は40〜80g/lの範
囲であることを特徴とする特許請求の範囲第1項記載の
方法。
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