JPH01162144A - 電気泳動用媒体膜及び電気泳動方法 - Google Patents
電気泳動用媒体膜及び電気泳動方法Info
- Publication number
- JPH01162144A JPH01162144A JP62320708A JP32070887A JPH01162144A JP H01162144 A JPH01162144 A JP H01162144A JP 62320708 A JP62320708 A JP 62320708A JP 32070887 A JP32070887 A JP 32070887A JP H01162144 A JPH01162144 A JP H01162144A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- electrophoresis
- gel
- membrane
- film
- aqueous gel
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 title claims abstract description 59
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 49
- 108010025899 gelatin film Proteins 0.000 claims abstract description 28
- 238000002347 injection Methods 0.000 claims abstract description 9
- 239000007924 injection Substances 0.000 claims abstract description 9
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims description 30
- 229920000936 Agarose Polymers 0.000 claims description 25
- 238000001853 pulsed-field electrophoresis Methods 0.000 claims description 14
- -1 polyethylene terephthalate Polymers 0.000 claims description 8
- 229920000139 polyethylene terephthalate Polymers 0.000 claims description 7
- 239000005020 polyethylene terephthalate Substances 0.000 claims description 7
- 229920000620 organic polymer Polymers 0.000 claims description 6
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 claims description 4
- 229920003229 poly(methyl methacrylate) Polymers 0.000 claims 2
- 239000004926 polymethyl methacrylate Substances 0.000 claims 2
- 238000000926 separation method Methods 0.000 abstract description 17
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 abstract description 9
- 239000000654 additive Substances 0.000 abstract description 2
- 239000004094 surface-active agent Substances 0.000 abstract description 2
- 230000000996 additive effect Effects 0.000 abstract 1
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 description 38
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 31
- 230000005684 electric field Effects 0.000 description 19
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 11
- 238000012300 Sequence Analysis Methods 0.000 description 9
- 108091028043 Nucleic acid sequence Proteins 0.000 description 8
- 239000011543 agarose gel Substances 0.000 description 8
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 7
- 238000013508 migration Methods 0.000 description 7
- 230000005012 migration Effects 0.000 description 7
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 6
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 4
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 4
- 235000010724 Wisteria floribunda Nutrition 0.000 description 3
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 3
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 3
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 3
- 238000005194 fractionation Methods 0.000 description 3
- OSBLTNPMIGYQGY-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol;2-[2-[bis(carboxymethyl)amino]ethyl-(carboxymethyl)amino]acetic acid;boric acid Chemical group OB(O)O.OCC(N)(CO)CO.OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O OSBLTNPMIGYQGY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000008051 TBE buffer Substances 0.000 description 2
- 238000003200 chromosome mapping Methods 0.000 description 2
- ZMMJGEGLRURXTF-UHFFFAOYSA-N ethidium bromide Chemical compound [Br-].C12=CC(N)=CC=C2C2=CC=C(N)C=C2[N+](CC)=C1C1=CC=CC=C1 ZMMJGEGLRURXTF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229960005542 ethidium bromide Drugs 0.000 description 2
- 238000001502 gel electrophoresis Methods 0.000 description 2
- 239000003607 modifier Substances 0.000 description 2
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 description 2
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 2
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 2
- 230000002285 radioactive effect Effects 0.000 description 2
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 2
- 125000006850 spacer group Chemical group 0.000 description 2
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 2
- 102000053602 DNA Human genes 0.000 description 1
- 108020003215 DNA Probes Proteins 0.000 description 1
- 239000003298 DNA probe Substances 0.000 description 1
- 238000001712 DNA sequencing Methods 0.000 description 1
- 108010010803 Gelatin Proteins 0.000 description 1
- 239000000020 Nitrocellulose Substances 0.000 description 1
- 229920002319 Poly(methyl acrylate) Polymers 0.000 description 1
- 239000007983 Tris buffer Substances 0.000 description 1
- 239000003945 anionic surfactant Substances 0.000 description 1
- 238000000376 autoradiography Methods 0.000 description 1
- 229920000402 bisphenol A polycarbonate polymer Polymers 0.000 description 1
- KGBXLFKZBHKPEV-UHFFFAOYSA-N boric acid Chemical compound OB(O)O KGBXLFKZBHKPEV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004327 boric acid Substances 0.000 description 1
- 229920002301 cellulose acetate Polymers 0.000 description 1
- 239000000919 ceramic Substances 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 239000013611 chromosomal DNA Substances 0.000 description 1
- 210000000349 chromosome Anatomy 0.000 description 1
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 238000000354 decomposition reaction Methods 0.000 description 1
- 208000028659 discharge Diseases 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 150000002148 esters Chemical class 0.000 description 1
- 239000007850 fluorescent dye Substances 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 239000008273 gelatin Substances 0.000 description 1
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 description 1
- 235000019322 gelatine Nutrition 0.000 description 1
- 235000011852 gelatine desserts Nutrition 0.000 description 1
- 238000012252 genetic analysis Methods 0.000 description 1
- 238000010353 genetic engineering Methods 0.000 description 1
- 238000009396 hybridization Methods 0.000 description 1
- 238000003384 imaging method Methods 0.000 description 1
- 229920002521 macromolecule Polymers 0.000 description 1
- IZXGZAJMDLJLMF-UHFFFAOYSA-N methylaminomethanol Chemical compound CNCO IZXGZAJMDLJLMF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000012982 microporous membrane Substances 0.000 description 1
- 238000000465 moulding Methods 0.000 description 1
- 229920001220 nitrocellulos Polymers 0.000 description 1
- 239000002736 nonionic surfactant Substances 0.000 description 1
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 description 1
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 description 1
- 210000004940 nucleus Anatomy 0.000 description 1
- 229920000728 polyester Polymers 0.000 description 1
- 229920006254 polymer film Polymers 0.000 description 1
- 229920005862 polyol Polymers 0.000 description 1
- 229920000915 polyvinyl chloride Polymers 0.000 description 1
- 239000004800 polyvinyl chloride Substances 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000002601 radiography Methods 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 238000012163 sequencing technique Methods 0.000 description 1
- 239000012192 staining solution Substances 0.000 description 1
- 238000004381 surface treatment Methods 0.000 description 1
- LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N tris Chemical compound OCC(N)(CO)CO LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[発明の属する技術分野]
本発明は電気泳動用媒体及び電気泳動方法に間するもの
で、詳しくは、高分子量の蛋白、巨大DNA分子のパル
ス電場印加による電気泳動分離に有用な電気泳動用媒体
及び電気泳動方法に間するものである。
で、詳しくは、高分子量の蛋白、巨大DNA分子のパル
ス電場印加による電気泳動分離に有用な電気泳動用媒体
及び電気泳動方法に間するものである。
本発明の電気泳動用媒体はパルス電場による巨大DNA
の分離分析に有用なアガロース系水性ゲルからなる電気
泳動用媒体である。また1本発明の方法は、パルス電場
による巨大DNAの分離技術と膜厚勾配を有する(膜厚
グラジェント)アガロース系水性ゲル電気泳動媒体を組
み合わせることにより。
の分離分析に有用なアガロース系水性ゲルからなる電気
泳動用媒体である。また1本発明の方法は、パルス電場
による巨大DNAの分離技術と膜厚勾配を有する(膜厚
グラジェント)アガロース系水性ゲル電気泳動媒体を組
み合わせることにより。
従来公知の方法では不可能であるか又は充分な分離分析
を実施できなかったような巨大DNAの分離分析を可能
とする電気泳動方法である。
を実施できなかったような巨大DNAの分離分析を可能
とする電気泳動方法である。
本発明の電気泳動用媒体及び電気泳動方法の適用可能分
野として、染色体DNAの分離分析、染色体マツピング
、各種生物の遺伝子ライブラリの作成等がある。
野として、染色体DNAの分離分析、染色体マツピング
、各種生物の遺伝子ライブラリの作成等がある。
[従来の技術]
ゲル電気泳動は、遺伝子工学の分野において蛋白質や核
酸のような高分子物質を分離する手段として極めて重要
である。染色体マツピングなど巨大DNA分離分析にお
いて、従来の連続電気泳動法では十数にbp(bpはl
塩基対を表わし、 Kbpは1000塩基対を表わす)
以下の分子量範囲のDNAが分離可能であり、これ以上
の分子量範囲のDNAは分離不可能であった。近年にお
いて遺伝子関連の研究が進むにつれて、 DNA塩基配
列決定の操作の迅速化が急務となっている。また口NA
シークエンス(塩基配列)解析において、数百塩基程度
の分子量差のDNAフラグメントは相互の泳動速度差が
小さく泳動分離バンドの上下間係の判別がしづらいので
、シーフェンス解析において読み取り誤差が大きくなり
大きな支障があった。
酸のような高分子物質を分離する手段として極めて重要
である。染色体マツピングなど巨大DNA分離分析にお
いて、従来の連続電気泳動法では十数にbp(bpはl
塩基対を表わし、 Kbpは1000塩基対を表わす)
以下の分子量範囲のDNAが分離可能であり、これ以上
の分子量範囲のDNAは分離不可能であった。近年にお
いて遺伝子関連の研究が進むにつれて、 DNA塩基配
列決定の操作の迅速化が急務となっている。また口NA
シークエンス(塩基配列)解析において、数百塩基程度
の分子量差のDNAフラグメントは相互の泳動速度差が
小さく泳動分離バンドの上下間係の判別がしづらいので
、シーフェンス解析において読み取り誤差が大きくなり
大きな支障があった。
1982年CANTORらはPu1se Gradie
nt Electro−phoresis (交差する
電界を交互に印加する電気泳動方法)を案出し、特表昭
59−502037に開示している。その他の現在まで
に提案された方法として、0LSONらのNuclei
c Ac1ds Res、、li、5647(1984
)に記載の0PAGE(Ortho8onal Fie
ld Alternation Ge1Electro
phoresis)。
nt Electro−phoresis (交差する
電界を交互に印加する電気泳動方法)を案出し、特表昭
59−502037に開示している。その他の現在まで
に提案された方法として、0LSONらのNuclei
c Ac1ds Res、、li、5647(1984
)に記載の0PAGE(Ortho8onal Fie
ld Alternation Ge1Electro
phoresis)。
FIGE(Field Inversion Gel
Electropboresis)が知られている。
Electropboresis)が知られている。
これらの電気泳動方法は、いずれも電界方向を周期的に
変化させることによりDNAの形状を変化させて塩基数
の異なるDNAを相互に分離する方法である。
変化させることによりDNAの形状を変化させて塩基数
の異なるDNAを相互に分離する方法である。
0FAGE法においては電極を45度の角度で設置し。
あいだの空間にアガロースの1%ゲルを置き、印加電界
の強度をIOV/cm程度に設定し、数十秒の周期で交
互に電界を印加し、約15時間電気泳動することにより
、約400KbpのDNAまで分離することができる。
の強度をIOV/cm程度に設定し、数十秒の周期で交
互に電界を印加し、約15時間電気泳動することにより
、約400KbpのDNAまで分離することができる。
これら方法による分離の問題点は、電界の方向に角度が
ついていることに起因して、泳動像が歪むので、DNA
分子の分子量を決定する際に誤差が大きくなるという欠
点を有していることである。
ついていることに起因して、泳動像が歪むので、DNA
分子の分子量を決定する際に誤差が大きくなるという欠
点を有していることである。
さらにDNAシークエンス決定操作においては泳動像の
歪によりバンドの上下間係が判別しにくくなるという重
大な欠点も有している。
歪によりバンドの上下間係が判別しにくくなるという重
大な欠点も有している。
FIGE法は電界の方向を180度で(正反対向きに)
反転させる方法である。この方法は電場方向が正確に一
定方向に向かっているため分離像が歪むといった問題点
はない。しかし、この方法においては分離するDNAの
分子量の大きさに対応させてパルスの条件を選択設定す
るのではあるが、ゲル膜全体にわたって逆方向と順方向
に一定の電界を印加するので、目的のDNA分離領域の
分子量の形状を効率良く変形させるには不充分である。
反転させる方法である。この方法は電場方向が正確に一
定方向に向かっているため分離像が歪むといった問題点
はない。しかし、この方法においては分離するDNAの
分子量の大きさに対応させてパルスの条件を選択設定す
るのではあるが、ゲル膜全体にわたって逆方向と順方向
に一定の電界を印加するので、目的のDNA分離領域の
分子量の形状を効率良く変形させるには不充分である。
このためDNAの分画可能分子量範囲が狭いという問題
点がある。かかる問題点を解決することは、DNAシー
クエンス解析及び遺伝子解析のスピードを上げるために
切望されていることである。
点がある。かかる問題点を解決することは、DNAシー
クエンス解析及び遺伝子解析のスピードを上げるために
切望されていることである。
[発明の目的]
本発明の目的はパルスフィールド電気泳動法に有用な改
良されたアガロース系水性ゲルからなる電気泳動用媒体
を提供することである。
良されたアガロース系水性ゲルからなる電気泳動用媒体
を提供することである。
本発明の他の目的は巨大DNA分子を分離するための電
気泳動法におけろ分画可能分子量範囲を広げたパルスフ
ィールド電気泳動方法に有用なアガロース系水性ゲルか
らなる電気泳動用媒体を提供することである。
気泳動法におけろ分画可能分子量範囲を広げたパルスフ
ィールド電気泳動方法に有用なアガロース系水性ゲルか
らなる電気泳動用媒体を提供することである。
本発明の他の目的は巨大DNA分子の分子量に適した電
気泳動条件を容易に設定することがてき。
気泳動条件を容易に設定することがてき。
かつ短時間の泳動操作で高い分画性能が達成されるパル
スフィールド電気泳動方法に有用なアガロース系水性ゲ
ルからなるを提供することである。
スフィールド電気泳動方法に有用なアガロース系水性ゲ
ルからなるを提供することである。
本発明の目的はアガロース系水性ゲルからなる電気泳動
用媒体を用いる改良されたパルスフィールド電気泳動法
を提供することである。
用媒体を用いる改良されたパルスフィールド電気泳動法
を提供することである。
本発明の他の目的は巨大DNA分子を分離するための電
気泳動法における分画可能分子量範囲を広げたパルスフ
ィールド電気泳動方法を提供することである。
気泳動法における分画可能分子量範囲を広げたパルスフ
ィールド電気泳動方法を提供することである。
本発明の池の目的は巨大DNA分子の分子量に適した電
気泳動条件を容易に設定することができ。
気泳動条件を容易に設定することができ。
かつ短時間の泳動操作で高い分画性能が達成されるパル
スフィールド電気泳動方法を提供することである。
スフィールド電気泳動方法を提供することである。
[発明の構成]
本発明は。
■厚さ勾配を有するアガロース系水性ゲルからなる電気
泳動用媒体膜、及び。
泳動用媒体膜、及び。
■厚さ勾配を有するアガロース系水性ゲルからなる電気
泳動用媒体膜を用いることを特徴とするパルスフィール
ド電気泳動方法。
泳動用媒体膜を用いることを特徴とするパルスフィール
ド電気泳動方法。
である。
[発明の構成の詳細な説明]
本発明の厚さ勾配を有するアガロース系水性ゲルからな
る電気泳動用媒体膜に用いられるアガロースとしては、
巨大分子量のDNA分離又は塩基解析に通常用いられる
7ガロースを用いることができる。アガロースとしては
、低電気浸透性、中電気浸透性、高電気浸透性アガロー
スのいずれをも用いることができる。用いることのでき
るアガロースの例として、特開昭55−5730.特開
昭55−110946、特表昭57−502098等の
各公報に記載のアガロース等がある。水性ゲルには公知
の添加剤9例えば界面活性剤(例、ノニオン性界面活性
剤、アニオン性界面活性剤)、p)lバッファー組成物
、変性剤、ポリオール化合物(例、グリセロール)、変
性剤等を公知の含有量範囲で含有させろことができる。
る電気泳動用媒体膜に用いられるアガロースとしては、
巨大分子量のDNA分離又は塩基解析に通常用いられる
7ガロースを用いることができる。アガロースとしては
、低電気浸透性、中電気浸透性、高電気浸透性アガロー
スのいずれをも用いることができる。用いることのでき
るアガロースの例として、特開昭55−5730.特開
昭55−110946、特表昭57−502098等の
各公報に記載のアガロース等がある。水性ゲルには公知
の添加剤9例えば界面活性剤(例、ノニオン性界面活性
剤、アニオン性界面活性剤)、p)lバッファー組成物
、変性剤、ポリオール化合物(例、グリセロール)、変
性剤等を公知の含有量範囲で含有させろことができる。
水性ゲルの濃度としては約0.4%〜約4.0%の範囲
内で目的又はDNA試料の分子量範囲等に応じて選択さ
れた実質的に一定の適宜な濃度値で用いられる。水性ゲ
ル膜の厚さを変化させる範囲は、特に制限はないが、約
100Lffr1〜約l0IIIIHの範囲であり、実
用的に好ましい範囲としては約100u+n〜約5II
R1である。水性ゲル膜の厚さ勾配は直線9指数関数、
対数、階段状関数又は前記関数の任意の組み合わせで表
わされる直線、折れ線又は曲線から適宜に選択して用い
られろ。水性ゲル膜の厚さ変化は、試料注入側(陰極側
)のゲル膜厚が反対側の側(陽極側)のゲル膜厚より大
きいように通常設定されるが、目的又はDNA試料の分
子量範囲等に応じて逆の膜厚変化を採用することもでき
る。
内で目的又はDNA試料の分子量範囲等に応じて選択さ
れた実質的に一定の適宜な濃度値で用いられる。水性ゲ
ル膜の厚さを変化させる範囲は、特に制限はないが、約
100Lffr1〜約l0IIIIHの範囲であり、実
用的に好ましい範囲としては約100u+n〜約5II
R1である。水性ゲル膜の厚さ勾配は直線9指数関数、
対数、階段状関数又は前記関数の任意の組み合わせで表
わされる直線、折れ線又は曲線から適宜に選択して用い
られろ。水性ゲル膜の厚さ変化は、試料注入側(陰極側
)のゲル膜厚が反対側の側(陽極側)のゲル膜厚より大
きいように通常設定されるが、目的又はDNA試料の分
子量範囲等に応じて逆の膜厚変化を採用することもでき
る。
電気泳動用媒体膜を支える支持体として通常カラス、セ
ラミックス、電気絶縁性有機ポリマーからなる平滑表面
の板又は薄板(シート)を用いることができる。有機ポ
リマーからなる板又はシートの例として、ポリアクリル
故エステル(例、ポリメチルアクリレート)ポリマーシ
ート、ポリ塩化ビニルシート、ポリエステル(例、ビス
フェノールAのポリカルボネート、ポリエチレンテレフ
タレート)等がある。好ましい有機ポリマー支持体とし
てポリメチル7クリレート、ポリエチレンテレフタレー
トがある。有機ポリマー支持体の表面は公知の物理化学
的表面処理(例、紫外線照射処理、グロー放電処理)及
びl又は下塗層設置(例、セルロースアセテート下塗層
、ゼラチン下塗層)をすることが好ましい。支持体はゲ
ル媒体膜の片側のみに配置してもよく、または9両側か
らゲルを支持してもよい。ゲル膜の作成方法としては、
2枚のガラス板又はポリマー板をスペーサーを両端部に
介して薄い厚さでかつ所望の厚さの変化を有する空間を
作成し、その内部空間に7ガロースの水溶液を注入して
ゲルを形成させるモウルド法、又は支持体の上に7ガロ
ースの水溶液を塗布して乾燥させる方法によって厚さを
変化させてゲル膜を作成することができる。モウルド法
の場合には一方の支持体の厚さを変化させる。あるいは
所望の厚さ変化を有するスペーサーを用いて2枚の支持
体の間隔を適宜に変化させるで、所望のゲル膜厚グラジ
ェントを得ることができる。
ラミックス、電気絶縁性有機ポリマーからなる平滑表面
の板又は薄板(シート)を用いることができる。有機ポ
リマーからなる板又はシートの例として、ポリアクリル
故エステル(例、ポリメチルアクリレート)ポリマーシ
ート、ポリ塩化ビニルシート、ポリエステル(例、ビス
フェノールAのポリカルボネート、ポリエチレンテレフ
タレート)等がある。好ましい有機ポリマー支持体とし
てポリメチル7クリレート、ポリエチレンテレフタレー
トがある。有機ポリマー支持体の表面は公知の物理化学
的表面処理(例、紫外線照射処理、グロー放電処理)及
びl又は下塗層設置(例、セルロースアセテート下塗層
、ゼラチン下塗層)をすることが好ましい。支持体はゲ
ル媒体膜の片側のみに配置してもよく、または9両側か
らゲルを支持してもよい。ゲル膜の作成方法としては、
2枚のガラス板又はポリマー板をスペーサーを両端部に
介して薄い厚さでかつ所望の厚さの変化を有する空間を
作成し、その内部空間に7ガロースの水溶液を注入して
ゲルを形成させるモウルド法、又は支持体の上に7ガロ
ースの水溶液を塗布して乾燥させる方法によって厚さを
変化させてゲル膜を作成することができる。モウルド法
の場合には一方の支持体の厚さを変化させる。あるいは
所望の厚さ変化を有するスペーサーを用いて2枚の支持
体の間隔を適宜に変化させるで、所望のゲル膜厚グラジ
ェントを得ることができる。
本発明の電気泳動方法の特徴をなす電界の印加方法につ
いて説明する。従来の一定の方向に直流電圧をかける電
気泳動法と異なり9本発明のパルスフィールド(パルス
電界)電気泳動法では周期的に電場の向きを180度(
正反対の方向に〉反転させながら電気泳動を実施する。
いて説明する。従来の一定の方向に直流電圧をかける電
気泳動法と異なり9本発明のパルスフィールド(パルス
電界)電気泳動法では周期的に電場の向きを180度(
正反対の方向に〉反転させながら電気泳動を実施する。
電場はパルス状に印加する。印加電圧はゲル膜40cm
当り(以下同じ)約−5000Vから約+5000〜′
の間の任意の電圧1直で、かつ約o、oot秒〜約10
00秒の任意の時間で、電位を同期的に変化させる。巨
大DljA(数十Kbpから数千にhp)の分離のため
には約−1000Vから約+100OVの電圧が用いら
れ、 DNAシークエンス解析のための分子量範囲のD
NA(約300bpから約1000bp)の分離のため
には約−5ooovから約+5000Vの範囲の電圧が
用いられる。電界印加の方法としては特に制限はないが
、例えば順方向の電圧を大きく逆方向の電圧を小さくし
てもよい、また逆に順方向の電圧を逆方向の電圧よりも
小さくしてもよい。実質的に順方向の泳動速度が逆方向
の泳動速度より大きくなるように電圧の印加時間を選ぶ
ことが原則である。パルスの印加時間としては特に制限
はないが分画する分子量の大きさにより選択されるもの
であるが、好ましい印加時間は約1ミリ秒から約100
0秒、特に巨大DNAの分離においては約1秒から約1
000秒の範囲が好ましく、DNAシークエンス解析に
おいては約1317秒から約1秒の範囲が好ましく用い
られる。作用させるパルス電場の波形は9例えば、矩形
波、鋸歯波、正弦波等のいかなる波形でもよく、制限は
ない。
当り(以下同じ)約−5000Vから約+5000〜′
の間の任意の電圧1直で、かつ約o、oot秒〜約10
00秒の任意の時間で、電位を同期的に変化させる。巨
大DljA(数十Kbpから数千にhp)の分離のため
には約−1000Vから約+100OVの電圧が用いら
れ、 DNAシークエンス解析のための分子量範囲のD
NA(約300bpから約1000bp)の分離のため
には約−5ooovから約+5000Vの範囲の電圧が
用いられる。電界印加の方法としては特に制限はないが
、例えば順方向の電圧を大きく逆方向の電圧を小さくし
てもよい、また逆に順方向の電圧を逆方向の電圧よりも
小さくしてもよい。実質的に順方向の泳動速度が逆方向
の泳動速度より大きくなるように電圧の印加時間を選ぶ
ことが原則である。パルスの印加時間としては特に制限
はないが分画する分子量の大きさにより選択されるもの
であるが、好ましい印加時間は約1ミリ秒から約100
0秒、特に巨大DNAの分離においては約1秒から約1
000秒の範囲が好ましく、DNAシークエンス解析に
おいては約1317秒から約1秒の範囲が好ましく用い
られる。作用させるパルス電場の波形は9例えば、矩形
波、鋸歯波、正弦波等のいかなる波形でもよく、制限は
ない。
電気泳動操作様式としては垂直式電気泳動法。
水平式電気泳動法等公知のいずれの様式を用いてもよい
。
。
巨大DNAのような二重鎖DNAの検出には、電気泳動
後エチジウムプロミドのような蛍光剤を用いて発色させ
て可視化させた後写真を撮り分離状況を解析する。 D
NA塩基配列解析においては9通常DNAを放射性化合
物でラベルし、一定時間の電気泳動を行った後、ゲル膜
を支持体からはずし、薄いポリマーフィルムで覆った状
態にてオートラジオグラフィー処理、又はイメージング
プレートを有するコンピユーテッドラジオグラフィー装
置による処理を行って9分離パターンを可視化する。色
素又は蛍光色素でラベルした核酸フラグメントを含む試
料を用いて電気泳動分離する場合には9分離パターンを
光−電気変換素子を含む装置により分離パターンを可視
化することができる。
後エチジウムプロミドのような蛍光剤を用いて発色させ
て可視化させた後写真を撮り分離状況を解析する。 D
NA塩基配列解析においては9通常DNAを放射性化合
物でラベルし、一定時間の電気泳動を行った後、ゲル膜
を支持体からはずし、薄いポリマーフィルムで覆った状
態にてオートラジオグラフィー処理、又はイメージング
プレートを有するコンピユーテッドラジオグラフィー装
置による処理を行って9分離パターンを可視化する。色
素又は蛍光色素でラベルした核酸フラグメントを含む試
料を用いて電気泳動分離する場合には9分離パターンを
光−電気変換素子を含む装置により分離パターンを可視
化することができる。
■工歪亘
実施例1
[膜厚グラジェントアガロースゲル膜の調製120cm
角の平滑表面のガラス板を用いてゲル濃度1.5%の7
ガロース水性ゲル膜を下記組成のTOEバッファー水溶
液ににアガロースを溶解したゲル形成液(アガロース水
溶液)を塗布した後、低温度に保ちゲル化させてゲル膜
厚を2.On+mから5.0ma+ (ゲル膜l)及び
0.5mmから5.0IIIm(ゲル膜2)に直線状に
変化させた膜厚勾配の異なる2種類のアガロース水性ゲ
ル膜を作成した。
角の平滑表面のガラス板を用いてゲル濃度1.5%の7
ガロース水性ゲル膜を下記組成のTOEバッファー水溶
液ににアガロースを溶解したゲル形成液(アガロース水
溶液)を塗布した後、低温度に保ちゲル化させてゲル膜
厚を2.On+mから5.0ma+ (ゲル膜l)及び
0.5mmから5.0IIIm(ゲル膜2)に直線状に
変化させた膜厚勾配の異なる2種類のアガロース水性ゲ
ル膜を作成した。
■TBEバッファーの組成
Tris()リス(ヒドロキシメチル)アミノ−メタン
の慣用名) 103g硼酸
55gEDTAφ2Na
塩 9.3g水を加えて
10.OLにする■アガロース水
溶液の組成 アガロース 150g上記
T上記式ッファー 10Lついて
得られたアガロース水性ゲル膜の膜厚の大きい側の端部
近傍にサイズ10mm X 15s+mのウェル型のコ
ームを用いて常法によりサンプル用ウェルを作成した。
の慣用名) 103g硼酸
55gEDTAφ2Na
塩 9.3g水を加えて
10.OLにする■アガロース水
溶液の組成 アガロース 150g上記
T上記式ッファー 10Lついて
得られたアガロース水性ゲル膜の膜厚の大きい側の端部
近傍にサイズ10mm X 15s+mのウェル型のコ
ームを用いて常法によりサンプル用ウェルを作成した。
[膜厚グラジェントアガロースゲル膜の性能評価実験]
DNA試料として、TdCDNA(166にb)、λD
NA (48にb)。
NA (48にb)。
λDNAの旧nd mによる分解物を用いた。各DNA
試料の0.02μgを、10%グリセロール、0.00
15%プロむフェノールブルーを含む上記と同じ成分濃
度のTOEバッファー水溶液5μLに溶解して用いた。
試料の0.02μgを、10%グリセロール、0.00
15%プロむフェノールブルーを含む上記と同じ成分濃
度のTOEバッファー水溶液5μLに溶解して用いた。
試料はピペットの先端をカットしたG11son Pi
petmanを用いてウェルに充填した。ついで、パル
スを印加する前に一方向の直流電界下で15分かけて試
料をアガロースゲル膜中に導入した。
petmanを用いてウェルに充填した。ついで、パル
スを印加する前に一方向の直流電界下で15分かけて試
料をアガロースゲル膜中に導入した。
電気泳動操作は膜厚の大きい側の端部を陰極側に接続し
、温度を14.0℃に維持してパルス・インバージョン
法に従って電気泳動を行った。電気泳動条件は第1表に
示したとおりであった。
、温度を14.0℃に維持してパルス・インバージョン
法に従って電気泳動を行った。電気泳動条件は第1表に
示したとおりであった。
泳動終了後に、 TBEバッファー1mL当たり0.5
μgの臭化エチジウムを含有する染色液にゲルを浸漬し
てDNAの泳動像を可視化した。ついて可視泳動像をフ
ジインスタント白黒フィルム(商品名FP−3000B
)を用い短波紫外光照射下で写真撮影した。
μgの臭化エチジウムを含有する染色液にゲルを浸漬し
てDNAの泳動像を可視化した。ついて可視泳動像をフ
ジインスタント白黒フィルム(商品名FP−3000B
)を用い短波紫外光照射下で写真撮影した。
写真の泳動像で各DNAの移動距離を調べたところ。
第1表に記載の結果が得られた。
比較例1
ゲル膜厚2.Ommで一定である他は実施例1と同様の
アガロース水性ゲル膜(ゲル膜3)を作成した。
アガロース水性ゲル膜(ゲル膜3)を作成した。
ついで実施例1と同様にして性能評価実験を実施したと
ころ、第1表に記載の結果が得られた。
ころ、第1表に記載の結果が得られた。
第1表の結果から9本発明の膜厚グラジェントを有する
アガロースゲル膜を用いたパルスフィールド電気泳動方
法ににおいては、 DNA試料の移動距離は比較例の厚
さ−様なゲル膜を用いた方法に比べて顕著に広くなって
おり2本発明のゲル媒体及び泳動方法の効果は明らかで
ある。
アガロースゲル膜を用いたパルスフィールド電気泳動方
法ににおいては、 DNA試料の移動距離は比較例の厚
さ−様なゲル膜を用いた方法に比べて顕著に広くなって
おり2本発明のゲル媒体及び泳動方法の効果は明らかで
ある。
実施例2
実施例1と同様にしてアガロースゲル形成液を調製し、
厚さ250μmの無色ポリエチレンテレフタレートフィ
ルムの上に第1表と同様の水性ゲル膜を作成した。この
アガロースゲル膜を用いて実施例1と同様にして電気泳
動を行ったところ、実施例1と同様な結果が得られた。
厚さ250μmの無色ポリエチレンテレフタレートフィ
ルムの上に第1表と同様の水性ゲル膜を作成した。この
アガロースゲル膜を用いて実施例1と同様にして電気泳
動を行ったところ、実施例1と同様な結果が得られた。
この性能評価実験により、支持体としてポリエチレンテ
レフタレートフィルムを用いたアガロースゲル膜におい
てもガラス板を支持体として用いた場合と同様のDNA
分画性能を有することが明らかになった。
レフタレートフィルムを用いたアガロースゲル膜におい
てもガラス板を支持体として用いた場合と同様のDNA
分画性能を有することが明らかになった。
実施例3
厚さ250μmの無色透明ポリエチレンテレフタレート
フィルムの上にアガロース水溶液を塗布した後、低温度
に保ちゲル化させてゲル膜厚を2.0mmから5.0關
(ゲル膜4)及び0.5開から5.0mm(ゲル膜6)
に指数関数曲線状に変化させた膜厚勾配の異なる2種類
のアガロース水性ゲル膜(いずれも膜の一方側の膜表面
は直線状で、膜厚変化曲線は直線状の表面に向かって凸
状)を作成した。ゲルの厚さの厚い端部近傍の一部を鋭
いカッターナイフを用いて切取り試料注入用のウェルを
作成した。
フィルムの上にアガロース水溶液を塗布した後、低温度
に保ちゲル化させてゲル膜厚を2.0mmから5.0關
(ゲル膜4)及び0.5開から5.0mm(ゲル膜6)
に指数関数曲線状に変化させた膜厚勾配の異なる2種類
のアガロース水性ゲル膜(いずれも膜の一方側の膜表面
は直線状で、膜厚変化曲線は直線状の表面に向かって凸
状)を作成した。ゲルの厚さの厚い端部近傍の一部を鋭
いカッターナイフを用いて切取り試料注入用のウェルを
作成した。
上記の7ガロースゲル膜を用いて実施例1と同様にして
電気泳動を行ったところ、第2表に示すとおり、このゲ
ル膜も分画可能なりNA分子量範囲が広く、解像度が高
いことが明らかになった。
電気泳動を行ったところ、第2表に示すとおり、このゲ
ル膜も分画可能なりNA分子量範囲が広く、解像度が高
いことが明らかになった。
圓工至亘
第 1 表
第 2 表
特許出願人 富士写真フィルム株式会社手続補正書く自
発) 昭和62年12月28日 l 事件の表示 昭和62年12月18日付特許願(
H)2 発明の名称 電気泳動用媒体膜及び電気泳動
方法3 補正をする者 事件との関係 特許出願人 住 所 神奈川県南足柄市中沼210番地富士写真
フィルム株式会社東京本社 電話(03)406−2537 4 補正により増加する発明の数 なし −一、
−1,。
発) 昭和62年12月28日 l 事件の表示 昭和62年12月18日付特許願(
H)2 発明の名称 電気泳動用媒体膜及び電気泳動
方法3 補正をする者 事件との関係 特許出願人 住 所 神奈川県南足柄市中沼210番地富士写真
フィルム株式会社東京本社 電話(03)406−2537 4 補正により増加する発明の数 なし −一、
−1,。
6 補正の内容
(1)明細書第4頁第9〜14行のjまた・・・支障が
あった。Jを「染色体や巨大DNAから目的のDNA領
域を効率よく分離することに時間がかかり、DNA塩基
配列決定の効率を悪くしている。1に訂正する。
あった。Jを「染色体や巨大DNAから目的のDNA領
域を効率よく分離することに時間がかかり、DNA塩基
配列決定の効率を悪くしている。1に訂正する。
(2)明細書第5頁第15〜17行のrさらに・・・欠
点も有している。」を削除する。
点も有している。」を削除する。
(3)明細書第6頁第6〜7行のF DNAシークエン
ス解析及び遺伝子解析1を「遺伝子解析及びDNAシー
クエンス解析jに訂正する。
ス解析及び遺伝子解析1を「遺伝子解析及びDNAシー
クエンス解析jに訂正する。
(4)明細書10頁第5行の「乾燥1をrゲル化」に訂
正する。
正する。
(5)明細書第10頁第13行の「説明する。jと「従
来の1の間にr電界の印加方法としてはCANToRら
の方法、0FAGE法等の公知の方法を適用することが
でき、制限はない。」を挿入する。
来の1の間にr電界の印加方法としてはCANToRら
の方法、0FAGE法等の公知の方法を適用することが
でき、制限はない。」を挿入する。
(6)明細書第10頁第18〜20行の「印加電圧は・
・・任意の時間で1を「泳動方向の長さ約50mmから
約50cmの範囲のゲル膜について9両端(陽極と陰極
)に印加する電圧(電位差)は約+IOVから約+50
00X・又は約−10vカら約−5000V、好ましく
は約+30vカら約+2000V又は約−30Vから約
−2000−゛の範囲内で適宜に選択された電圧値で、
かつ約1ミリ秒から約l000秒、好ましくは約100
ミlJ秒から約1000秒の範囲内で適宜に選択された
時間で1に訂正する。
・・任意の時間で1を「泳動方向の長さ約50mmから
約50cmの範囲のゲル膜について9両端(陽極と陰極
)に印加する電圧(電位差)は約+IOVから約+50
00X・又は約−10vカら約−5000V、好ましく
は約+30vカら約+2000V又は約−30Vから約
−2000−゛の範囲内で適宜に選択された電圧値で、
かつ約1ミリ秒から約l000秒、好ましくは約100
ミlJ秒から約1000秒の範囲内で適宜に選択された
時間で1に訂正する。
(7)明細書第10頁第20行の 「約0.001秒〜
約1000秒」を「約1ミリ秒から約1000秒、好ま
しくは約100ミリ秒から約1000秒1に訂正する。
約1000秒」を「約1ミリ秒から約1000秒、好ま
しくは約100ミリ秒から約1000秒1に訂正する。
(8)明細書第10頁最下行の 「約−1000Vから
約十1000VJを「約+50Vから約+100OV又
は約−50Vから約−1000V Jに訂正する。
約十1000VJを「約+50Vから約+100OV又
は約−50Vから約−1000V Jに訂正する。
(9)明細書第11頁第1〜4行のF、DNAシークエ
ンス・・・電圧が用いられ1を削除する。
ンス・・・電圧が用いられ1を削除する。
(lO)明細書第11頁第12行の 「約1ミリ秒から
約1000秒jの次にr、好ましくは約100ミリ秒か
ら約1000秒jを挿入する。
約1000秒jの次にr、好ましくは約100ミリ秒か
ら約1000秒jを挿入する。
(!l)明細書10頁第第14行のr好ましく」をr好
ましい。」に訂正する。
ましい。」に訂正する。
(12)明細書第11頁第14〜15行のF 、DNA
シークエンス・・・好ましく用いられる。jを削除する
。
シークエンス・・・好ましく用いられる。jを削除する
。
(13)明細書12頁第3〜6行のr DNA塩基配列
解析・・・状態にて1を「別法として、ニトロセルロー
ス微多孔性膜のようなメンプラン膜にDNAをトランス
ファー(SOUTHERNプロッティング法)させ、つ
いて放射性同位元素でラベルしたDNAプローブでハイ
ブリダイゼーションさせた後、Jに訂正する。
解析・・・状態にて1を「別法として、ニトロセルロー
ス微多孔性膜のようなメンプラン膜にDNAをトランス
ファー(SOUTHERNプロッティング法)させ、つ
いて放射性同位元素でラベルしたDNAプローブでハイ
ブリダイゼーションさせた後、Jに訂正する。
以上
Claims (12)
- (1)厚さ勾配を有するアガロース系水性ゲルからなる
電気泳動用媒体膜。 - (2)試料注入側(陰極側)のゲル膜厚が反対側(陽極
側)のゲル膜厚より大きい特許請求の範囲第1項に記載
の電気泳動用媒体膜。 - (3)ゲル膜厚勾配が直線、指数関数、対数、階段状関
数又は前記関数の任意の組み合わせで表わされる直線、
折れ線又は曲線である特許請求範囲第1項に記載の電気
泳動用媒体膜。 - (4)前記ゲル膜が有機ポリマーシートに支持されてい
る特許の請求範囲第1項に記載の電気泳動用媒体膜。 - (5)前記ポリマーシートがポリエチレンテレフタレー
ト、ポリメチルメタアクリレートからなるシートである
特許請求の範囲第4項に記載の電気泳動用媒体膜。 - (6)前記ゲル膜が試料注入のための注入孔を有するも
のである特許請求の範囲第1項に記載の電気泳動用媒体
膜。 - (7)厚さ勾配を有するアガロース系水性ゲルからなる
電気泳動用媒体膜を用いることを特徴とするパルスフィ
ールド電気泳動方法。 - (8)試料注入側(陰極側)のゲル膜厚が反対側(陽極
側)のゲル膜厚より大きい特許請求の範囲第7項に記載
のパルスフィールド電気泳動方法。 - (9)ゲル膜厚勾配が直線、指数関数、対数、階段状関
数又は前記関数の任意の組み合わせで表わされる直線、
折れ線又は曲線である特許請求範囲第7項に記載のパル
スフィールド電気泳動方法。 - (10)前記ゲル膜が有機ポリマーシートに支持されて
いる特許の請求範囲第7項に記載のパルスフィールド電
気泳動方法。 - (11)前記ポリマーシートがポリエチレンテレフタレ
ート、ポリメチルメタアクリレートからなるシートであ
る特許請求の範囲第10項に記載のパルスフィールド電
気泳動方法。 - (12)前記ゲル膜が試料注入のための注入孔を有する
ものである特許請求の範囲第7項に記載のパルスフィー
ルド電気泳動方法。
Priority Applications (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP62320708A JPH01162144A (ja) | 1987-12-18 | 1987-12-18 | 電気泳動用媒体膜及び電気泳動方法 |
| DE19883855429 DE3855429T2 (de) | 1987-12-18 | 1988-12-15 | Verfahren zur Elektrophorese |
| EP19880121001 EP0320937B1 (en) | 1987-12-18 | 1988-12-15 | Elektrophoresis method |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP62320708A JPH01162144A (ja) | 1987-12-18 | 1987-12-18 | 電気泳動用媒体膜及び電気泳動方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01162144A true JPH01162144A (ja) | 1989-06-26 |
Family
ID=18124443
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP62320708A Pending JPH01162144A (ja) | 1987-12-18 | 1987-12-18 | 電気泳動用媒体膜及び電気泳動方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH01162144A (ja) |
-
1987
- 1987-12-18 JP JP62320708A patent/JPH01162144A/ja active Pending
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Day et al. | Electrophoresis for genotyping: microtiter array diagonal gel electrophoresis on horizontal polyacrylamide gels, hydrolink, or agarose | |
| Garoff et al. | Improvements of DNA sequencing gels | |
| Vesterberg | History of electrophoretic methods | |
| Yoshino et al. | Temperature sweep gel electrophoresis: a simple method to detect point mutations | |
| JPS63502131A (ja) | 電場反転ゲル電気泳動 | |
| Celis et al. | High-resolution two-dimensional gel electrophoresis of proteins: isoelectric focusing and nonequilibrium pH gradient electrophoresis (NEPHGE) | |
| Lim et al. | [12] Analysis of DNA-protein interactions by affinity coelectrophoresis | |
| Serwer | Gel electrophoresis with discontinuous rotation of the gel: An alternative to gel electrophoresis with changing direction of the electrical field | |
| JPH087185B2 (ja) | マクロ分子の調製および分離方法 | |
| Rana et al. | Electrophoresis: Basic principle, types, and applications | |
| JPH09201200A (ja) | 絡み合ったポリマー網状組織による試料混合物中の核酸配列決定鋳型の閉じ込め | |
| US4722777A (en) | Improvement of electrophoretic element using polyacrylamide gel | |
| EP0246873A2 (en) | Element for electrophoresis | |
| Haas et al. | Horizontal polyacrylamide gel electrophoresis for the separation of DNA fragments | |
| JP4342954B2 (ja) | 逆行する高親和性インターカレーション型色素を用いた核酸の電気泳動分離検出 | |
| JPH04335152A (ja) | 水平式ゲル電気泳動装置 | |
| WO2002044708A1 (fr) | Procede d'analyse d'acides nucleiques | |
| Guttman et al. | Ultrathin‐layer gel electrophoresis of biopolymers | |
| Righetti et al. | Recent advances in electrophoretic techniques for the characterization of protein biomolecules: A poker of aces | |
| Budowle et al. | Discontinuous polyacrylamide gel electrophoresis of DNA fragments | |
| Westermeier | Gel electrophoresis | |
| US6878254B2 (en) | Size separation of analytes using monomeric surfactants | |
| JPH01162144A (ja) | 電気泳動用媒体膜及び電気泳動方法 | |
| WO2000052458A1 (en) | Two-dimensional separating method | |
| US4925545A (en) | Method of generating pH functions in electrophoresis and isoelectric focusing |