JPH01165960A - トランスフェリンの測定方法 - Google Patents

トランスフェリンの測定方法

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JPH01165960A
JPH01165960A JP32376987A JP32376987A JPH01165960A JP H01165960 A JPH01165960 A JP H01165960A JP 32376987 A JP32376987 A JP 32376987A JP 32376987 A JP32376987 A JP 32376987A JP H01165960 A JPH01165960 A JP H01165960A
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JP
Japan
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transferrin
monoclonal antibody
cell
iron
antibody recognizing
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Pending
Application number
JP32376987A
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English (en)
Inventor
Kuniyo Inoue
國世 井上
Shigeo Murata
村田 茂穂
Shunichi Aitsu
合津 俊一
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Tosoh Corp
Original Assignee
Tosoh Corp
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Publication date
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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IG], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IG], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans

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  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は、トランスフェリンに対するモノクローナル抗
体を利用した、試料中のトランスフェリンの測定法に関
するものである。
〔従来の技術〕
トランスフェリンはシデロフィリン、鉄結合性グロブリ
ンとも呼ばれ、血中の輸送鉄と結合する分子量75. 
OQDのタンパク質である。正常成人では血清中に2−
3μ97m1の鉄と結合しうる量のトランスフェリンが
存在し、この量を総鉄結合能(tota71ron b
indingcapacity)という。このうち約1
/6すなわち0.8−1.5 μ97m1の鉄とトラン
スフェリンが結合しており、残りの鉄と結合していない
トランスフェリン量を不飽和鉄結合能(unsatur
ated 1ron binding capacit
yi以下UよりCとする)という。
幼若赤血球はトランスフェリンと結合した鉄に対する受
容体を持っており、血清鉄がヘモグロビンの合成に利用
されるためには、トランスフェリンに結合されていなけ
ればならない。
トランスフェリンは貯蔵鉄レベルを敏感に反映する。故
に鉄代謝と造血の重要な指標となる。またトランスフェ
リンは、細胞増殖、生体防御上重要な物質であり、各種
病態を反映する。血中のトランスフェリンの増加は貯蔵
鉄の減少を示す。貯蔵鉄は妊娠の進行と共に減少する。
また、鉄欠乏性貧血、急性肝炎、急性肝障害でトランス
フェリンは増加する。また血中のトランスフェリンの低
下は貯蔵鉄の増加を示す。高頻度にトランスフエランス
フニリン血症があげられる。
従来、血中のトランスフェリンを測定する方法としては
い(つかの方法が提案されている。
UよりOを充分カバーできる量の鉄を血清に加え、血清
中のトランスフェリンを鉄で飽和させ、UIBOに結合
しないで残った鉄イオンを鉄吸着材で吸着除去する。そ
の後は血清鉄の測定法に準じて比色法、電極法、原子吸
光法などで鉄を定量する。これらめ方法ではそれぞれ特
定の測定装置を必要とする。
またトランスフェリンに対する抗体を利用する免疫化学
的測定法がすでに報告されている(日本季 臨床 1985年秋増刊 上巻 546頁)。これらは
免疫拡散法、ラジオイムノアッセイ、比濁測定法でトラ
ンスフェリンを測定している。これらは、測定時間も長
(また、操作も繁雑である。
〔発明が解決しようとする問題点〕 本発明は、トランスフェリンに特異的なモノクローナル
抗体を用いる免疫測定法により、上記の問題点を解決し
簡便かつ高感度に当該トランスフェリンを測定する方法
を提供することを目的とするものである。
〔問題を解決するための手段および作用〕本発明者らは
、トランスフェリンに特異的なモノクローナル抗体を複
数個作製し、これを用いて免疫測定法の検討を行った。
その結果、本発明に関わるモノクローナル抗体は、トラ
ンスフェリン測定用試薬として極めて有用であることを
見いだし本発明に到達した。
すなわち、本発明は、試料中のトランスフェリンを測定
する方法において、トランスフェリンを認識するモノク
ローナル抗体を用いることを特徴とする試料中のトラン
スフェリンの測定方法である。
本発明におけるモノクローナル抗体は、好ましくは、ト
ランスフェリンで免疫された動物の抗体産生細胞と骨髄
腫細胞(ミエローマ)とを融合させることにより、トラ
ンスフェリンを認識するモノクローナル抗体を産生ずる
細胞を得、ついでハイブリドーマおよび/または、これ
に由来する細胞株を培養し、培養物からトランスフェリ
ンを認識するモノクローナル抗体を採取することにより
獲られる。トランスフェリンを認識するモノクローナル
抗体を産生ずるハイブリドーマは、手法それ自体は公知
である細胞融合法「ジー、ケーラー(G Kohler
)とシー、ミルシュタイン(clMilstein)。
ネイチ−y −(Nature) 256巻、495頁
、1975年」によって製造することができる。本発明
においては、この方法により、トランスフェリンを認識
する、複数種のモノクローナル抗体を得た。これらは当
該トランスフェリンの互いに異なる部位を認識する抗体
であった。
トランスフェリンに対して特異的に結合しうるモノクロ
ーナル抗体を用いて、サンドインチ法。
競合法による免疫測定法が可能になった。
例えばサンドインチ法による免疫測定法では抗体を同相
に固定化する場合、その方法は公知の方法を採用でき、
固相としては、例えば、ガラス、ポリスチレン、ポリエ
チレン、ポリ塩化ビニル、ラテックス、アガロース、セ
ルロース、メタアクリレート等を用いたマイクロタイタ
ープレートや粒子などが好ましい。また標識剤が結合さ
れた抗体を作製する際の標識化の方法、その検出方法は
なんら限定されるものではなく、公知の方法により標識
化及び測定することができる。標識剤としては、酵素を
用いる方法では、パーオキシダーゼ。
β−D−ガラクトシダーゼ、アルカリホスファターゼ等
の酵素が、放射性物質を用いる方法では、t2i工、3
H等が、螢光物質を用いる方法としては、フルオレスカ
ミン、フルオレスカミン・インチオシアネート等が通常
使用されるが、その他のものでもよい。標識剤が酵素で
ある場合には、その活性を測定するために基質が用いら
れる。例えば、パーオキシダーゼの基質としては 2.
2/−アジノジー〔3−エチルベンズチアゾリンスルホ
ン酸〕ニアンモニウム塩(以下ABTSとする) −H
,O,、5−アミノザリチル酸−H,O,、O−フェニ
レンジアミン−H,O,等が、β−D−ガラクトシダー
ゼの基質としては、0−ニトロフェニル−β−D−ガラ
クトピラノシド等が、アルカリ・ホスファターゼの基質
としては、p−ニトロフェニルホスフェート等が用いら
れる。測定のためには、これらの試薬以外にも、溶解剤
、洗浄剤1反応停止剤等の公知の試薬が使用される。
〔発明の効果〕
トランスフェリンを特異的に認識するモノクローナル抗
体を用いる本発明の方法で、試料中のトランスフェリン
゛は、1−320 n9/rrtの範囲で測定可能であ
り、試料を微量しか必要としないものである。本法は、
トランスフェリンに特異的な測定方法であり、従来法に
比べきわめて簡便であり短時間に多数の検体の測定が可
能である。
〔実施例〕
以下、実施例により本発明を詳述する。しかし、本発明
は、これら実施例のみに限定されるものではない。
実施例1 (1)トランスフェリンで免疫されたマウスの抗体産生
細胞と骨髄腫細胞(ミエローマ)とを融合させることに
より、トランスフェリンを認識するモノクローナル抗体
を産生ずる細胞を得、ついで該ハイプリドーマに由来子
る細胞株を培養し、培警物からトランスフェリンを認識
するモノクローナル抗体を採取した。
(2)未処理96ウエルーマイクロタイターフレート(
ヌンクプレート、インターメッド社製)の各ウェルにQ
、1M炭酸ナトリウム緩衝液(pH9,6)に溶解した
、1μ9/コのマウスの抗トランスフェリンモノクロー
ナル抗体(名称Aとする)の溶液250μtを加えて、
4℃−夜インキユベートした。
次に、各ウェルの溶液を除去し、リン酸緩衝化生理食塩
水(0,85%NaC1含有0.01Mリン酸緩衝液、
pH7,0,以下PBSとする)0.04%ツイーン(
tween)  20を含有させた溶液(以下PBs−
Tと略す)で3回洗浄した後、1%BSA(ウシ血清ア
ルブミン)を含有するPBS−T溶液300μtを加え
て、4℃でブロッキング処理しそのまま4℃にて保存し
た。
(3)西洋ワサビパーオキシダーゼ(以下、HRPと略
す)標識抗体の調製: 0.3M重炭酸す) IJウム緩衝液(pHal)に溶
解したHRP溶液(5rv/−)に111−7#オロー
2.4−ジニトロベンゼンのエタノール溶液0.1コを
加え、室温にて1時間反応させた。次に、1106M過
ヨウ素酸ナトリウム1.Od加えて、30分間反応させ
た。未反応の過ヨウ素酸ナトリウムを0.16 Mのエ
チレングリコール1.0ゴ加えて除去した後、0.01
M炭酸ナトリウム緩衝液(pH9,5)で透析した。
次に、マウスの抗トランスフェリン・モノクローナル抗
体(名称Bとする。モノクローナル抗体Aとは異なる部
位を認識する。)5m9を加え、5時間反応させた。水
素化ホウ素ナトリウム5In9を加え、4℃で一夜放置
した。
上記のようにして得られた反応物をTSK−ゲル()−
3000SW(東ソー■製、商品名)を用いる高速液体
クロマトグラフィーにて精製し、HRP標識抗体を得た
(4)酵素免疫測定法による試料中のトランスフェリン
の定量: 本実施例中の(2)で述べた方法で作製したモノクロー
ナル抗体を固定化したマイクロタイタープレートを室温
にもどし、PBS−Tで洗浄した後、精製したトランス
フェリン1−520 n9/−を含有する正常ウサギ血
清を標準物質として各ウェルに20μtずつ加えた。つ
いで、HRP標識抗体4.2ダ/ゴを1.5チ正常ウサ
ギ血清、0.0075チミオグロビン、0.0075チ
精製白糖、O,o6チ卵白アルブミンを含むPBS−T
溶液(以下抗原抗体反応用PBEI−T溶液とする)で
1.000倍に希釈し、各ウェルに300μtずつ添加
し、室温で3時間インキュベートした後、溶液を除去し
てから、PBS−T溶液で3回洗浄した。
さらに、1.2q6ABTs及びCL C11% H,
O,を含有する(11Mクエン酸緩衝液(pH4,1)
からなる基質溶液を各ウェルに添加し、室温で30分間
反応させた後、1Mシーウ酸溶液を100μを加えて反
応を停止させた。各ウェルについて、波長415nm、
対照波長492 nmの吸収強度を自動マイクロタイタ
ープレートリーダー(東ソー■製、MPR−A、4.商
品名)で測定し、標準物質の濃度及び吸収強度をプロッ
トし表1のごとき結果を得て、検量線を作成した。
表1

Claims (1)

    【特許請求の範囲】
  1. (1)試料中のトランスフェリンを測定する方法におい
    て、トランスフェリンを特異的に認識するモノクローナ
    ル抗体を用いることを特徴とする試料中のトランスフェ
    リンの測定方法。
JP32376987A 1987-12-23 1987-12-23 トランスフェリンの測定方法 Pending JPH01165960A (ja)

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EP88121529A EP0324969A3 (en) 1987-12-23 1988-12-22 Method of measuring transferrin
AU27417/88A AU630865B2 (en) 1987-12-23 1988-12-23 Measurement of transferrin

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AU2741788A (en) 1989-06-29
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EP0324969A3 (en) 1990-08-01

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