JPH0121754B2 - - Google Patents

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JPH0121754B2
JPH0121754B2 JP59230894A JP23089484A JPH0121754B2 JP H0121754 B2 JPH0121754 B2 JP H0121754B2 JP 59230894 A JP59230894 A JP 59230894A JP 23089484 A JP23089484 A JP 23089484A JP H0121754 B2 JPH0121754 B2 JP H0121754B2
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JP
Japan
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yeast
flocculating
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saccharomyces
spores
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JP59230894A
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Japanese (ja)
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JPS61108375A (en
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Shinichi Asano
Kenji Kida
Motozumi Yamadaki
Shigeru Morimura
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Kanadevia Corp
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Hitachi Zosen Corp
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Publication date
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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/01Preparation of mutants without inserting foreign genetic material therein; Screening processes therefor
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02EREDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
    • Y02E50/00Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
    • Y02E50/10Biofuels, e.g. bio-diesel

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  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

産業上の利用分野 この発明は、優れた凝集性を有する酵母の製造
法に関するものである。 近年、石油代替エネルギーとして、石油化学に
よらずに得られる発酵アルコールが注目されてい
る。これはさとうきびやこれから採つた糖蜜、さ
つまいも、じやがいも、とうもろこしなどのセル
ロース質またはでん粉質を原料とし、これらを微
生物の働きによつて発酵させることにより製造さ
れる。 一般にアルコール発酵では、アルコールの生産
性は発酵槽内の菌体濃度に比例する。そこで発酵
槽内の菌体濃度を高める手段として、優れた凝集
性を有する酵母を用いることが考えられる。すな
わち、酵母が優れた凝集性を有していると、酵母
の沈降速度が速くなり、そのため固液分離が迅速
かつ容易になし得る。そして例えば回分発酵にお
いては、発酵液を単に静置するだけで菌体を沈降
堆積させることができ、発酵液と菌体の分離を容
易に行なつて菌体を再使用に供することができ
る。また連続発酵においては、小径の流動部とこ
れの上に連設された菌体沈降用の大径の沈降部と
これに内装された菌体沈降部材とを主体とした塔
型発酵槽を用いることにより、培地の供給量が増
大しても菌体を沈降させてその流出を防止するこ
とができる。このように凝集性を有する酵母を用
いると、凝集性を有しない酵母を用いた場合に比
べて多くの利点があり、そのため新規凝集性酵母
が要望せられている。 従来技術およびその問題点 従来から、上記の要望にこたえるべく、凝集性
酵母を取得する試みがなされて来たが、従来の酵
母は自然界から得られた野生株であつて、たとえ
ば土壌を探査し特定の土壌から分離したものであ
つた。 しかしこのように自然界から所望の菌株を見つ
け出して分離する作業は、はなはだ煩わしいもの
であり、また所望の菌株を採取できる確実性の乏
しいものであつた。 この発明は上記のような実情からなされたもの
であつて、優れた凝集性を有する酵母を実験室で
得ることのできる凝集性酵母の製造法を提供する
ことを目的とする。 問題点を解決するための手段 この発明による凝集性酵母の製造法は、サツカ
ロマイセス(Saccharomyces)属に属する凝集
性を有しない酵母を胞子形成処理し、得られた胞
子を変異処理し、変異胞子を培養し、得られた集
落からレプリカ法によつて変異株を検出し、DF
値4以上の凝集性を有する酵母を分離することを
特徴とするものである。 この明細書において、酵母の凝集性の程度
(Degree of flocculation)は、以下に示すギリ
ランド・テスト(Gilliland test)(European
Journal of Applied Microbiology and
Biotechnlogy第7巻、第227―234頁、1979年)
により求められたDF値で表示される。すなわち
供試菌株をYPG培地(注1)で30℃で16時間振
盪培養した後、菌体の沈降速度、沈降菌体の容量
および硬さを肉眼観察により対照菌株と比較し、
表1に示すDF値0から5の6段階で凝集の程度
を表示する。
INDUSTRIAL APPLICATION FIELD This invention relates to a method for producing yeast having excellent flocculating properties. In recent years, fermented alcohol, which can be obtained without petrochemistry, has been attracting attention as an energy alternative to petroleum. It is manufactured from sugar cane, molasses extracted from sugar cane, cellulosic or starchy materials such as sweet potatoes, potatoes, and corn, and by fermenting them using the action of microorganisms. Generally, in alcohol fermentation, alcohol productivity is proportional to the bacterial cell concentration in the fermenter. Therefore, as a means to increase the bacterial cell concentration in the fermenter, it is possible to use yeast that has excellent flocculating properties. That is, when yeast has excellent flocculating properties, the sedimentation rate of yeast becomes faster, and therefore solid-liquid separation can be performed quickly and easily. For example, in batch fermentation, the bacterial cells can be deposited by simply allowing the fermentation liquid to stand still, and the fermentation liquid and the bacterial cells can be easily separated and the cells can be reused. In continuous fermentation, a tower-type fermenter is used, which mainly consists of a small-diameter flow section, a large-diameter sedimentation section for bacterial cell sedimentation connected above the flow section, and a bacterial cell sedimentation member built into this. Thereby, even if the amount of culture medium supplied increases, the bacterial cells can be sedimented and their outflow can be prevented. As described above, the use of yeast that has flocculating properties has many advantages over the use of yeast that does not have flocculating properties, and therefore new flocculating yeasts are in demand. Prior art and its problems In the past, attempts have been made to obtain flocculating yeast in order to meet the above demands, but the conventional yeast is a wild strain obtained from the natural world. It was isolated from a specific soil. However, the task of finding and isolating a desired bacterial strain from the natural world is extremely troublesome, and there is little certainty that the desired bacterial strain can be collected. This invention was made in view of the above-mentioned circumstances, and it is an object of the present invention to provide a method for producing flocculating yeast that allows yeast with excellent flocculating properties to be obtained in a laboratory. Means for Solving the Problems The method for producing flocculating yeast according to the present invention involves sporulation treatment of non-flocculating yeast belonging to the genus Saccharomyces, mutation treatment of the obtained spores, and mutant spores. The mutant strain was detected from the resulting colony by the replica method, and DF
This method is characterized by separating yeast having a flocculating property of value 4 or higher. In this specification, the degree of flocculation of yeast is determined by the Gilliland test (European test) shown below.
Journal of Applied Microbiology and
Biotechnology Vol. 7, pp. 227-234, 1979)
The DF value calculated by is displayed. That is, after culturing the test bacterial strain in YPG medium (Note 1) at 30°C for 16 hours with shaking, the sedimentation rate of the bacterial cells, the volume and hardness of the sedimented bacterial cells were compared with the control strain by visual observation,
The degree of aggregation is displayed in six stages from DF value 0 to 5 shown in Table 1.

【表】 この発明による酵母製造法において、親酵母で
ある凝集性を有しない酵母としては、アルコール
発酵能に優れかつ胞子形成能を有する酵母であれ
ば、限定なく適用できる。 胞子形成処理は常法に従つてなされる。通常は
凝集性を有しない酵母をYPG寒天培地(注2)
で培養した後、胞子形成寒天培地(注3)に塗抹
する方法がとられる。また単独胞子由来の細胞を
得るには、酵母細胞壁溶解用の溶菌酵素を用いて
子のうを溶解した後、マイクロマニプユレータを
用いて胞子を分離する方法、または同じく溶菌酵
素で子のうを溶解した後、超音波処理により胞子
を分散させ、胞子を栄養寒天培地で培養する方法
がとられる。 また変異処理は、胞子形成処理により得られた
胞子または子のうに公知の突然変異処理、たとえ
ば紫外線、X線、γ線を照射する物理的方法、エ
チルメタンスルホネート、N―メチル―N′―ニ
トロ―N―ニトロソグアニジン、4―ニトロキノ
リン―N―オキサイドなどの変異誘起剤を接触し
た後に選択培地に生育する化学的方法のいずれに
よつても行なわれるが、エチルメタンスルホネー
トを用いる方法が特に好ましい。 変異株の検出はレプリカ法によつて行なう。す
なわち、変異胞子をYPG寒天培地のような完全
培地で培養することによつて得られた集落のプレ
ートをマスタープレートとし、殺菌した布地など
を用いて、同プレート上の集落を所定の栄養要素
を含まない最少培地のプレート上に移し、同培地
でこれを培養する。上記の栄養要素を必要とする
集落は最少培地のプレート上では発育しないの
で、このプレート上の集落とマスタープレート上
の集落とを比較することによつて、容易に栄養要
求性株を検出することができる。 検出した栄養要求性株をついでマスタープレー
トから釣菌して他の菌株から分離する。こうし
て、所望の凝集性を有する酵母を得る。 酵母の培地としては、炭素源、窒素源、無機イ
オン、さらに必要ならば有機微量栄養素を含有す
る通常の培地が使用できる。炭素源としてはグル
コース、ガラクトース、フラクトース、シユーク
ロース、スターチ加水分解物、果汁、セルロース
分解物などの炭水化物がよく用いられる。特に好
適な培地は、酵母エキス1g、ポリペプトン2
g、グルコース2g、蒸留水100mlよりなる培地
であり、この培地のPHは無調整で5.5である。 培養は温度25〜40℃好ましくは30〜37℃で、PH
3.0〜7.0好ましくはPH3.5〜6.0で行なわれる。 この発明の好ましい実施態様においては、凝集
性を有しない酵母として財団法人発酵研究所の保
存菌であるDF値0の酵母サツカロマイセス・セ
ルビシエ(Saccharomyces cerevisiae)IFO―
0224(以下、単にIFO―0224と記す)を用い、凝
集性を有する酵母としてDF値4の酵母サツカロ
マイセス・セルビシエ(Saccharomyces
cerevisiae)RM―17(微工研菌寄第7770号)(以
下、単にRM―17と記す)を得る。またもう一つ
の好ましい実施態様においては、凝集性を有しな
い酵母としてDF値0の酵母サツカロマイセス・
ウバルム(Saccharomyces uvarum)DF―0
(微工研菌寄第7791号)(以下、単にDF―0と記
す)を用い、凝集性を有する酵母としてDF値4
の酵母サツカロマイセス・ウバルム
(Saccharomyces uvarum)AM―7(微工研菌
寄第7790号)(以下、単にAM―7と記す)を得
る。 親酵母であるDF―0は、凝集性を有する酵母
サツカロマイセス・ウバルム(Saccharomyces
uvarum)ATCC―26602(DF値=3)の自然突然
変異株であつて、突然変異の結果凝集性を消失し
たものである(DF値=0)。 これら実施態様の各親酵母IFO―0224および
DF―0は、それぞれ下記表2に示すごとき諸性
質(発酵性および資化性の有無、生理的性質)を
有する。
[Table] In the yeast production method according to the present invention, any yeast that has excellent alcohol fermentation ability and spore forming ability can be used as the parent yeast that does not have flocculating properties. Sporulation treatment is carried out according to conventional methods. Normally, yeast that does not have flocculating properties are grown on YPG agar medium (Note 2).
After culturing on a spore-forming agar medium (Note 3), a method is used. To obtain cells derived from single spores, the asci are lysed using a lytic enzyme for lysing the yeast cell wall, and then the spores are separated using a micromanipulator, or the asci are separated using a lytic enzyme. After dissolving the spores, the spores are dispersed by ultrasonication, and the spores are then cultured on a nutrient agar medium. The mutation treatment may also include physical methods of irradiating the spores or asci obtained by sporulation treatment with ultraviolet rays, X-rays, gamma rays, ethyl methanesulfonate, N-methyl-N'-nitro -N-nitrosoguanidine, 4-nitroquinoline-N-oxide, or any other chemical method that involves contact with a mutagenic agent followed by growth on a selective medium, but a method using ethyl methanesulfonate is particularly preferred. . Detection of mutant strains is performed by the replica method. That is, a plate of colonies obtained by culturing mutant spores on a complete medium such as YPG agar medium is used as a master plate, and the colonies on the same plate are treated with predetermined nutritional elements using sterilized cloth. Transfer it to a plate of minimal medium without containing it, and culture it in the same medium. Colonies that require the above nutritional elements do not grow on minimal medium plates, so auxotrophic strains can be easily detected by comparing the colonies on this plate with those on the master plate. Can be done. The detected auxotrophic strain is then picked from the master plate and separated from other strains. In this way, yeast having the desired flocculating properties is obtained. As a yeast medium, a conventional medium containing a carbon source, a nitrogen source, inorganic ions, and, if necessary, organic micronutrients can be used. Carbohydrates such as glucose, galactose, fructose, sucrose, starch hydrolyzate, fruit juice, and cellulose decomposition products are often used as carbon sources. A particularly suitable medium is yeast extract 1g, polypeptone 2g
g, glucose 2 g, and distilled water 100 ml, and the pH of this medium is 5.5 without adjustment. Culture at a temperature of 25-40℃, preferably 30-37℃, and a pH of
It is carried out at a pH of 3.0 to 7.0, preferably 3.5 to 6.0. In a preferred embodiment of the present invention, the yeast Saccharomyces cerevisiae IFO-, which has a DF value of 0 and is kept at the Fermentation Research Institute, is used as a non-flocculating yeast.
0224 (hereinafter simply referred to as IFO-0224) was used to test the yeast Saccharomyces cerevisiae, which has a DF value of 4 as a yeast with flocculating properties.
cerevisiae) RM-17 (hereinafter simply referred to as RM-17). In another preferred embodiment, the yeast Saccharomyces having a DF value of 0 is used as the non-flocculating yeast.
Saccharomyces uvarum DF-0
(Feikoken Bacteria No. 7791) (hereinafter simply referred to as DF-0), the DF value was 4 as a yeast with flocculating properties.
The yeast Saccharomyces uvarum AM-7 (Feikoken Bibori No. 7790) (hereinafter simply referred to as AM-7) is obtained. The parent yeast DF-0 is a yeast that has flocculating properties, Saccharomyces ubarum (Saccharomyces ubarum).
uvarum) ATCC-26602 (DF value = 3), which has lost its aggregation property as a result of the mutation (DF value = 0). Each parent yeast IFO-0224 and
DF-0 has various properties (fermentability and assimilation, physiological properties) as shown in Table 2 below.

【表】 表2中、ラフイノースの発酵性は、結合部が切
断されて生じる構成単糖フラクトース、グルコー
スおよびガラクトースのうちいくつかの糖を発酵
できるかにより表示される。すなわち、発酵性1/
3とはフラクトースのみを発酵する場合を、発酵
性2/3とはフラクトースおよびグルコースを発酵
する場合を、および発酵性3/3とはすべての構成
単糖を発酵する場合をそれぞれ意味する。 またこれら実施態様で得られたRM―17および
AM―7は、それぞれ下記の菌学的性質を有す
る。すなわちこれら酵母は ・ DF値4なる凝集性を有し、液体培養では著
しい沈降性を示す。 ・ 廃糖密(たとえば15%の全糖分を含む廃糖
密)を発酵し、7〜9vol%のエタノールを生成
する。 ・ 寒天平板上で多少硬い集落を形成する。 ・ 胞子形成能を有する。 ・ RM―17は生育にアデニンおよびヒスチジン
を要求する。 なお、サツカロマイセス(Saccharomyces)
属に属する酵母は下記のような菌学的性質を有す
ることが知られている(J.Lodder著「The
Yeasts,A Taxonomic Study」第2版、
North―Holland Publishing社発行、1970年)。 すなわち、この属に属する酵母は、 ・ 多極出芽によつて増殖する。 ・ 子のう胞子を形成する。 ・ 硝酸塩を資化しない。 ・ 真菌糸を欠くかまたはわずかしか形成しな
い。 ・ 成熟子のうは容易に開裂しない。 ・ 胞子の形状は球形ないし卵形である。 ・ グルコースをよく発酵する。 ・ 麦芽汁培地に皮膜を形成しない。 発明の効果 この発明は以上のとおり構成されているので、
優れた凝集性を有する酵母を実験室において創製
することができる。したがつて従来のように自然
界から所望の菌株を見つけ出して土壌から分離す
るといつた煩わしい作業が必要でない上に、所望
の凝集性酵母を確実に製造することができる。そ
してこうして得られた凝集性酵母を用いてアルコ
ール発酵を行なうことにより、冒頭で説明したよ
うに回分発酵においても連続発酵においてもアル
コール発酵槽内の菌体濃度を高く維持して、エタ
ノールの生産性を大幅に向上することができる。 実施例 つぎにこの発明の実施例を示し、上記効果を実
証する。 実施例1 (RM―17の製造) 凝集性を有しない酵母サツカロマイセス・セル
ビシエ(Saccharomyces cerevisiae)IFO―
0224をYPG寒天培地(注2)で30℃で24時間培
養し、ついで胞子形成寒天培地(注3)に塗抹
し、30℃で3〜5日間培養を行なつた。こうして
胞子を形成させた。 ついで胞子数が107個/mlになるように、子の
うを無菌水1mlに懸濁させ、集菌後リン酸緩衝液
(注4)で洗浄した。ついで子のうを溶菌酵素溶
液(注5)2ml中で30℃で1時間振盪して、子の
うを溶解させた。ついで集菌後、遊離した胞子を
無菌水1mlで洗浄してリン酸緩衝液3mlに懸濁さ
せた。 この懸濁液に変異誘起剤としてエチルメタンス
ルホネートを0.1ml添加し、懸濁液を30℃で2時
間振盪した。こうして胞子を変異処理した。つい
で集菌後、変異胞子をリン酸緩衝液0.2mlに懸濁
させ、懸濁液に5%チオ硫酸ナトリウム水溶液3
mlを添加して、懸濁液を30℃で10分間振盪した。
こうして変異誘起剤を中和した。 集菌後、変異胞子をリン酸緩衝液1mlで2回洗
浄して同緩衝液5mlに懸濁させ、懸濁液を氷冷下
に3分間超音波処理することにより変異胞子を懸
濁液中に分散させた。ついで集菌後、懸濁液を無
菌水で濃度1/105〜1/106に希釈し、希釈懸濁液
0.1mlをYPG寒天培地(注2)に塗抹して30℃で
48時間培養し、単独胞子由来の集落を得た。 こうして得られた集落のプレートをマスタープ
レートとしてレプリカ法により変異株の検出を行
なつた。すなわち、殺菌したベルベツト布地を用
いて、前記マスタープレートの集落を最小培地
(注6)にレプリカし、同培地で30℃で4日間培
養し、最小培地で増殖できない菌株をマスタープ
レートにおいて検出し、これを栄養要求性変異株
としてマスタープレートから釣菌した。 その結果マスタープレートの菌株25株のうち凝
集性に優れた株サツカロマイセス・セルビシエ
(Saccharomyces cerevisiae)RM―17(微工研
菌寄第7770号)を得た。この株はアデニンおよび
ヒスチジン要求性の菌株であつた。 実施例2 (AM―7の製造法) 凝集性を有しない酵母としてサツカロマイセ
ス・ウバルム(Saccharomyces uvarum)DF―
0(微工研菌寄第7791号)を用い、実施例1と同
じ操作を繰返した。 その結果マスタープレートの菌株40株のうち凝
集性に優れた株サツカロマイセス・ウバルム
(Saccharomyces uvarum)AM―7(微工研菌
寄第7790号)を得た。 凝集性の測定 実施例1および実施例2で得られたRM―17お
よびAM―7について、凝集性の程度すなわち
DF値を前述の方法によりそれぞれ測定したとこ
ろ、DF値はいずれも4であつた。 培地および試薬 培地および試薬はそれぞれつぎのとおりであ
る。 (注1) YPG培地 酵母エキス 10g/ ポリペプトン 20g/ グルコース 20g/ (注2) YPG寒天培地 酵母エキス 10g/ ポリペプトン 20g/ グルコース 20g/ 寒 天 20g/ (注3) 胞子形成培地 酢酸ナトリウム 5g/ 寒 天 20g/ (注4) リン酸緩衝液 0.1Mリン酸緩衝液 PH=7.5 (注5) 溶菌酵素溶液 0.1Mリン酸緩衝液(PH7.5)にザイモリア
ーゼ20T(生化学工業社製)を0.05%溶か
した溶液2mlと、2―メルカプトエタノー
ル1.4μとの混合液 (注6) 最小培地 Difco―Yeast Nitrogen Base W/O
Amino acid(Difco社製) 6.7g/ グルコース 20g/ 寒 天 20g/
[Table] In Table 2, the fermentability of raffinose is indicated by whether it can ferment some of the constituent monosaccharides fructose, glucose, and galactose produced by cleavage of the bond. That is, fermentability 1/
3 means that only fructose is fermented, 2/3 fermentability means that fructose and glucose are fermented, and 3/3 fermentability means that all constituent monosaccharides are fermented. Also, RM-17 and RM-17 obtained in these embodiments
AM-7 has the following mycological properties. That is, these yeasts have a flocculating property with a DF value of 4, and exhibit a remarkable sedimentation property in liquid culture. - Fermenting waste molasses (e.g. waste molasses containing 15% total sugar) to produce 7-9 vol% ethanol.・ Forms somewhat hard colonies on the agar plate.・Has spore-forming ability.・RM-17 requires adenine and histidine for growth. In addition, Saccharomyces
Yeast belonging to the genus are known to have the following mycological properties (J. Lodder, “The
Yeasts, A Taxonomic Study” 2nd edition,
North-Holland Publishing, 1970). That is, yeast belonging to this genus: • Propagate by multipolar budding. - Forms ascospores.・Do not assimilate nitrates. - Lacking or forming only a few fungal threads.・Mature asci do not cleave easily.・The shape of the spores is spherical or oval. - Ferment glucose well. - Does not form a film on the wort medium. Effects of the invention Since this invention is configured as described above,
Yeast with excellent flocculating properties can be created in the laboratory. Therefore, there is no need for the conventional troublesome work of finding a desired strain of bacteria from nature and separating it from soil, and the desired flocculating yeast can be reliably produced. By carrying out alcohol fermentation using the flocculating yeast obtained in this way, the bacterial cell concentration in the alcohol fermenter can be maintained at a high level in both batch fermentation and continuous fermentation as explained at the beginning, increasing ethanol productivity. can be significantly improved. Examples Next, examples of the present invention will be shown to demonstrate the above effects. Example 1 (Production of RM-17) Non-flocculating yeast Saccharomyces cerevisiae IFO-
0224 was cultured on a YPG agar medium (Note 2) at 30°C for 24 hours, then spread on a sporulation agar medium (Note 3), and cultured at 30°C for 3 to 5 days. In this way, spores were formed. Next, the asci were suspended in 1 ml of sterile water so that the number of spores was 10 7 /ml, and after collection, the cells were washed with phosphate buffer (Note 4). The ascus was then shaken in 2 ml of lytic enzyme solution (note 5) at 30°C for 1 hour to dissolve the ascus. After bacterial collection, the released spores were washed with 1 ml of sterile water and suspended in 3 ml of phosphate buffer. To this suspension, 0.1 ml of ethyl methanesulfonate was added as a mutagenic agent, and the suspension was shaken at 30°C for 2 hours. The spores were thus mutated. After collecting the bacteria, the mutant spores were suspended in 0.2 ml of phosphate buffer, and the suspension was added with 3 ml of 5% sodium thiosulfate aqueous solution.
ml was added and the suspension was shaken for 10 minutes at 30°C.
The mutagen was thus neutralized. After collection, the mutant spores are washed twice with 1 ml of phosphate buffer, suspended in 5 ml of the same buffer, and the suspension is sonicated for 3 minutes on ice to remove the mutant spores in the suspension. It was dispersed into After collecting bacteria, dilute the suspension with sterile water to a concentration of 1/10 5 to 1/10 6 to obtain a diluted suspension.
Spread 0.1ml onto YPG agar medium (Note 2) and incubate at 30℃.
After culturing for 48 hours, colonies derived from single spores were obtained. Using the colony plate thus obtained as a master plate, mutant strains were detected by the replica method. That is, using sterilized velvet cloth, replicate the colony on the master plate onto a minimal medium (Note 6), culture it on the same medium at 30°C for 4 days, and detect strains that cannot grow on the minimal medium on the master plate, This was harvested from the master plate as an auxotrophic mutant strain. As a result, out of the 25 strains on the master plate, the strain Saccharomyces cerevisiae RM-17 (Feikoken Bacteria Collection No. 7770) with excellent aggregation properties was obtained. This strain was an adenine and histidine auxotrophic strain. Example 2 (Production method of AM-7) Saccharomyces uvarum DF- as a yeast without flocculating property
The same operation as in Example 1 was repeated using 0 (Feikoken Bibori No. 7791). As a result, the strain Saccharomyces uvarum AM-7 (Feikoken Bacteria Collection No. 7790), which had excellent aggregation properties, was obtained among the 40 strains on the master plate. Measurement of cohesiveness Regarding RM-17 and AM-7 obtained in Example 1 and Example 2, the degree of cohesiveness, i.e.
When the DF value was measured by the method described above, the DF value was 4 in all cases. Medium and reagents The medium and reagents are as follows. (Note 1) YPG medium yeast extract 10g / Polypeptone 20g / Glucose 20g / (Note 2) YPG agar medium Yeast extract 10g / Polypeptone 20g / Glucose 20g / Agar 20g / (Note 3) Sporulation medium Sodium acetate 5g / Agar 20g/ (Note 4) Phosphate buffer 0.1M phosphate buffer PH = 7.5 (Note 5) Lytic enzyme solution 0.1M phosphate buffer (PH 7.5) with 0.05% Zymolyase 20T (Seikagaku Corporation) A mixture of 2ml of the dissolved solution and 1.4μ of 2-mercaptoethanol (Note 6) Minimal medium Difco-Yeast Nitrogen Base W/O
Amino acid (manufactured by Difco) 6.7g/Glucose 20g/Agar 20g/

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 サツカロマイセス(Saccharomyces)属に
属する凝集性を有しない酵母を胞子形成処理し、
得られた胞子を変異処理し、変異胞子を培養し、
得られた集落からレプリカ法によつて変異株を検
出し、DF値4以上の凝集性を有する酵母を分離
することを特徴とする、優れた凝集性を有する酵
母の製造法。 2 凝集性を有しない酵母としてサツカロマイセ
ス・セルビシエ(Saccharomyces cerevisiae)
IFO―0224またはサツカロマイセス・ウバルム
(Saccharomyces uvarum)DF―O(微工研菌寄
第7791号)を用いる、特許請求範囲第1項記載の
製造法。 3 凝集性を有しない酵母としてDF値0の酵母
サツカロマイセス・セルビシエ
(Saccharomyces cerevisiae)IFO―0224を用
い、凝集性を有する酵母としてDF値4の酵母サ
ツカロマイセス・セルビシエ(Saccharomyces
cerevisiae)RM―17(微工研菌寄第7770号)を得
る、特許請求の範囲第1項記載の製造法。 4 凝集性を有しない酵母としてDF値0の酵母
サツカロマイセス・ウバルム(Saccharomyces
uvarum)DF―0(微工研菌寄第7791号)を用い、
凝集性を有する酵母としてDF値4の酵母サツカ
ロマイセス・ウバルム(Saccharomyces
uvarum)AM―7(微工研菌寄第7790号)を得
る、特許請求の範囲第1項記載の製造法。
[Claims] 1. A yeast that does not have flocculating properties and belongs to the genus Saccharomyces is subjected to sporulation treatment,
The obtained spores are subjected to mutation treatment, the mutant spores are cultured,
1. A method for producing yeast with excellent flocculating properties, which comprises detecting mutant strains from the obtained colonies by a replica method and isolating yeast with flocculating properties with a DF value of 4 or more. 2. Saccharomyces cerevisiae as a non-flocculating yeast
The manufacturing method according to claim 1, which uses IFO-0224 or Saccharomyces uvarum DF-O (Feikokenbokuyori No. 7791). 3 The yeast Saccharomyces cerevisiae IFO-0224 with a DF value of 0 was used as the yeast without flocculation, and the yeast Saccharomyces cerevisiae with a DF value of 4 was used as the yeast with flocculation.
cerevisiae) RM-17 (Feikoken Bibori No. 7770). 4 The yeast Saccharomyces ubarum has a DF value of 0 as a yeast that does not have flocculating properties.
uvarum) DF-0 (Feikoken Bibori No. 7791),
The yeast Saccharomyces ubarum has a DF value of 4 as a yeast with flocculating properties.
uvarum) AM-7 (Feikoken Bibori No. 7790).
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