JPH0121757B2 - - Google Patents
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- JPH0121757B2 JPH0121757B2 JP59230897A JP23089784A JPH0121757B2 JP H0121757 B2 JPH0121757 B2 JP H0121757B2 JP 59230897 A JP59230897 A JP 59230897A JP 23089784 A JP23089784 A JP 23089784A JP H0121757 B2 JPH0121757 B2 JP H0121757B2
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- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
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Description
産業上の利用分野
この発明は、優れた凝集性を有する新規酵母に
関するものである。
近年、石油代替エネルギーとして、石油化学に
よらずに得られる発酵アルコールが注目されてい
る。これはさとうきびやこれから採つた糖蜜、さ
つまいも、じやがいも、とうもろこしなどのセル
ロース質またはでん粉質を原料とし、これらを微
生物の働きによつて発酵させることにより製造さ
れる。
一般にアルコール発酵では、アルコールの生産
性は発酵槽内の菌体濃度に比例する。そこで発酵
槽内の菌体濃度を高める手段として、優れた凝集
性を有する酵母を用いることが考えられる。すな
わち、酵母が優れた凝集性を有していると、酵母
の沈降速度が速くなり、そのため固液分離が迅速
かつ容易になし得る。そして例えば回分発酵にお
いては、発酵液を単に静置するだけで菌体を沈降
堆積させることができ、発酵液と菌体の分離を容
易に行なつて菌体を再使用に供することができ
る。また連続発酵においては、小径の流動部とこ
れの上に連設された菌体沈降用の大径の沈降部と
これに内装された菌体沈降部材とを主体とした塔
型発酵槽を用いることにより、培地の供給量が増
大しても菌体を沈降させてその流出を防止するこ
とができる。このように凝集性を有する酵母を用
いると、凝集性を有しない酵母を用いた場合に比
べて多くの利点があり、そのため新規凝集性酵母
が要望せられている。
従来技術およびその問題点
従来から、上記の要望にこたえるべく、凝集性
酵母を取得する試みがなされて来たが、従来の酵
母は自然界から得られた野生株であつて、たとえ
ば土壌を探査し特定の土壌から分離したものであ
つた。
しかしこのように自然界から所望の菌株を見つ
け出して分離する作業は、はなはだ煩わしいもの
であり、また所望の菌株を採取できる確実性の乏
しいものであつた。
この発明は上記のような実情からなされたもの
であつて、優れた凝集性を有しかつ実験室で得る
ことのできる新規凝集性酵母を提供することを目
的とする。
問題点を解決するための手段
この発明は、
・ DF値4なる凝集性を有し、
・ 生育にアデニンおよびヒスチジンを要求し、
・ 球形ないし卵形の形態を成す、
酵母サツカロマイセス・セルビシエ
(Saccharomyces cerevisiae)RM―17(微工研
菌寄第7770号)(以下これをRM―17と記す)で
ある。
この明細書において、酵母の凝集性の程度
(Degree of flocculation)は、以下に示すギリ
ランド・テスト(Gilliland test)(European
Journal of Applied Microbiology and
Biotechnology第7巻、第227―234頁、1979年)
により求められたDF値で表示される。すなわち
供試菌株をYPG培地(注1)で30℃で16時間振
盪培養した後、菌体の沈降速度、沈降菌体の容量
および硬さを肉眼観察により対照菌体と比較し、
表1に示すDF値0から5の6段階で凝集の程度
を表示する。
INDUSTRIAL APPLICATION FIELD This invention relates to a novel yeast having excellent flocculating properties. In recent years, fermented alcohol, which can be obtained without petrochemistry, has been attracting attention as an energy alternative to petroleum. It is manufactured from sugar cane, molasses extracted from sugar cane, cellulosic or starchy materials such as sweet potatoes, potatoes, and corn, and by fermenting them using the action of microorganisms. Generally, in alcohol fermentation, alcohol productivity is proportional to the bacterial cell concentration in the fermenter. Therefore, as a means to increase the bacterial cell concentration in the fermenter, it is possible to use yeast that has excellent flocculating properties. That is, when yeast has excellent flocculating properties, the sedimentation rate of yeast becomes faster, and therefore solid-liquid separation can be performed quickly and easily. For example, in batch fermentation, the bacterial cells can be deposited by simply allowing the fermentation liquid to stand still, and the fermentation liquid and the bacterial cells can be easily separated and the bacterial cells can be reused. In addition, in continuous fermentation, a tower-type fermenter is used, which mainly consists of a small-diameter flow section, a large-diameter sedimentation section for bacterial cell sedimentation connected above the flow section, and a bacterial cell sedimentation member built into this. Thereby, even if the amount of culture medium supplied increases, the bacterial cells can be sedimented and their outflow can be prevented. As described above, the use of yeast that has flocculating properties has many advantages over the use of yeast that does not have flocculating properties, and therefore new flocculating yeasts are in demand. Prior art and its problems In the past, attempts have been made to obtain flocculating yeast in order to meet the above demands, but the conventional yeast is a wild strain obtained from the natural world. It was isolated from a specific soil. However, the task of finding and isolating a desired bacterial strain from the natural world is extremely troublesome, and there is little certainty that the desired bacterial strain can be collected. The present invention was made in view of the above-mentioned circumstances, and an object of the present invention is to provide a novel flocculating yeast that has excellent flocculating properties and can be obtained in a laboratory. Means for Solving the Problems This invention is directed to the yeast Saccharomyces cerevisiae, which: - has a flocculating property with a DF value of 4, - requires adenine and histidine for growth, and - has a spherical or oval shape. ) RM-17 (Feikoken Bibori No. 7770) (hereinafter referred to as RM-17). In this specification, the degree of flocculation of yeast is determined by the Gilliland test (European test) shown below.
Journal of Applied Microbiology and
Biotechnology Vol. 7, pp. 227-234, 1979)
The DF value calculated by is displayed. That is, after culturing the test bacterial strain in YPG medium (Note 1) at 30°C for 16 hours with shaking, the sedimentation rate of the bacterial cells, the volume and hardness of the sedimented bacterial cells were compared with the control bacterial cells by visual observation,
The degree of aggregation is displayed in six stages from DF value 0 to 5 shown in Table 1.
【表】【table】
【表】
RM―17は下記の菌学的性質を有する。すなわ
ちRM―17は、
・ DF値4なる凝集性を有し、液体培養では著
しい沈降性を示す。
・ 廃糖蜜(たとえば15%の全糖分を含む廃糖
蜜)を発酵し、7〜9vol%のエタノールを生成
する。
・ 寒天平板上で多少硬い集落を形成する。
・ 生育にアデニンおよびヒスチジンを要求す
る。
・ 胞子形成能を有する。
RM―17の培地としては、炭素源、窒素源、無
機イオン、さらに必要ならば有機微量栄養素を含
有する通常の培地が使用できる。炭素源としては
グルコース、ガラクトース、フラクトース、シユ
ークロース、スターチ加水分解物、果汁、セルロ
ース分解物などの炭水化物がよく用いられる。特
に好適な培地は、酵母エキス1g、ポリペプトン
2g、グルコース2g、蒸留水100mlよりなる培
地であり、この培地のPHは無調整で5.5である。
RM―17の培養は温度25〜40℃好ましくは30〜
37℃で、PH3.0〜7.0好ましくはPH3.5〜6.0で行な
われる。
つぎにRM―17の製造法について説明する。
RM―17は、財団法人発酵研究所の保存菌であ
るDF値0の酵母サツカロマイセス・セルビシエ
(Saccharomyces cerevisiae)IFO―0224(以下、
単にIFO―0224と記す)を胞子形成処理し、得ら
れた胞子を変異処理し、変異胞子を培養し、得ら
れた集落からレプリカ法によつて変異株を検出
し、これを分離することにより製造される。
胞子形成処理は常法に従つてなされる。通常は
凝集性を有しない酵母をYPG寒天培地(注2)
で培養した後、胞子形成寒天培地(注3)に塗抹
する方法がとられる。また単独胞子由来の細胞を
得るには、酵母細胞壁溶解用の溶菌酵素を用いて
子のうを溶解した後、マイクロマニプユレータを
用いて胞子を分離する方法、または同じく溶菌酵
素で子のうを溶解した後、超音波処理により胞子
を分散させ、胞子を栄養寒天培地で培養する方法
がとられる。
変異処理は、胞子形成により得られた胞子また
は子のうに公知の突然変異処理、たとえば紫外
線、X線、γ線を照射する物理的方法、エチルメ
タンスルホネート、N―メチル―N′―ニトロ―
N―ニトロソグアニジン、4―ニトロキノリン―
N―オキサイドなどの変異誘起剤を接触した後に
選択培地に生育する化学的方法のいずれによつて
も行なわれるが、エチルメタンスルホネートを用
いる方法が特に好ましい。
変異株の検出はレプリカ法によつて行なう。す
なわち、変異胞子をYPG寒天培地のような完全
培地で培養することによつて得られた集落のプレ
ートをマスタープレートとし、殺菌した布地など
を用いて、同プレート上の集落を所定の栄養要素
を含まない最少培地のプレート上に移し、同培地
でこれを培養する。上記の栄養要素を必要とする
集落は最少培地のプレート上では発育しないの
で、このプレート上の集落とマスタープレート上
の集落とを比較することによつて、容易に栄養要
求性株を検出することができる。
検出した栄養要求性株をついでマスタープレー
トから釣菌して他の菌株から分離する。こうし
て、所望の凝集性を有する酵母を得る。
RM―17の製造過程における培地および培養条
件は、前述したRM―17自体の培地および培養条
件と同じである。
親酵母であるIFO―0224はDF値0であつて全
く凝集性を示さない。また、RM―17,IFO―
0224などのサツカロマイセス・セルビシエに属す
る酵母は、下記表2に示すごとき諸性質(発酵性
および資化性の有無、生理的性質)を有する。[Table] RM-17 has the following mycological properties. That is, RM-17: - Has a flocculating property with a DF value of 4, and exhibits significant sedimentation property in liquid culture. - Fermenting blackstrap molasses (for example, blackstrap molasses with 15% total sugar content) to produce 7-9 vol% ethanol.・ Forms somewhat hard colonies on the agar plate. - Requires adenine and histidine for growth.・Has spore-forming ability. As a medium for RM-17, a conventional medium containing a carbon source, a nitrogen source, inorganic ions, and, if necessary, organic micronutrients can be used. Carbohydrates such as glucose, galactose, fructose, sucrose, starch hydrolyzate, fruit juice, and cellulose decomposition products are often used as carbon sources. A particularly suitable medium is a medium consisting of 1 g of yeast extract, 2 g of polypeptone, 2 g of glucose, and 100 ml of distilled water, and the pH of this medium is 5.5 without adjustment. RM-17 is cultured at a temperature of 25-40℃, preferably 30-40℃.
It is carried out at 37° C. and at a pH of 3.0 to 7.0, preferably 3.5 to 6.0. Next, the manufacturing method of RM-17 will be explained. RM-17 is the yeast Saccharomyces cerevisiae IFO-0224 (hereinafter referred to as
(simply referred to as IFO-0224) is subjected to sporulation treatment, the resulting spores are subjected to mutation treatment, the mutant spores are cultured, the mutant strain is detected from the obtained colony by the replica method, and the mutant strain is isolated. Manufactured. Sporulation treatment is carried out according to conventional methods. Normally, yeast that does not have flocculating properties are grown on YPG agar medium (Note 2).
After culturing on a spore-forming agar medium (Note 3), a method is used. To obtain cells derived from single spores, the asci are lysed using a lytic enzyme for lysing the yeast cell wall, and then the spores are separated using a micromanipulator, or the asci are separated using a lytic enzyme. After dissolving the spores, the spores are dispersed by ultrasonication, and the spores are then cultured on a nutrient agar medium. The mutation treatment is performed by subjecting the spores or asci obtained by sporulation to known mutation treatments, such as physical methods of irradiating ultraviolet rays, X-rays, γ-rays, ethyl methanesulfonate, N-methyl-N'-nitro-
N-nitrosoguanidine, 4-nitroquinoline-
Although this can be done by any chemical method involving contact with a mutagenic agent such as N-oxide followed by growth on a selective medium, the method using ethyl methanesulfonate is particularly preferred. Detection of mutant strains is performed by the replica method. That is, a plate of colonies obtained by culturing mutant spores on a complete medium such as YPG agar medium is used as a master plate, and the colonies on the same plate are treated with predetermined nutritional elements using sterilized cloth. Transfer it to a plate of minimal medium without containing it, and culture it in the same medium. Colonies that require the above nutritional elements do not grow on minimal medium plates, so auxotrophic strains can be easily detected by comparing the colonies on this plate with those on the master plate. Can be done. The detected auxotrophic strain is then picked from the master plate and separated from other strains. In this way, yeast having the desired flocculating properties is obtained. The medium and culture conditions in the manufacturing process of RM-17 are the same as the medium and culture conditions for RM-17 itself described above. IFO-0224, the parent yeast, has a DF value of 0 and shows no flocculation. Also, RM―17, IFO―
Yeast belonging to Satucharomyces cerevisiae such as 0224 has various properties (fermentability and assimilation, physiological properties) as shown in Table 2 below.
【表】【table】
【表】
表2中、ラフイノースの発酵性は、結合部が切
断されて生じる構成単糖フラクトース、グルコー
スおよびガラクトースのうちいくつの糖を発酵で
きるかにより表示される。すなわち、発酵性1/3
とはフラクトースのみを発酵する場合を、発酵性
2/3とはフラクトースおよびグルコースを発酵す
る場合を、および発酵性3/3とはすべての構成単
糖を発酵する場合をそれぞれ意味する。
なお、サツカロマイセス(Saccharomyces)
属に属する酵母は下記のような菌学的性質を有す
ることが知られている(J.Lodder著「The
Yeasts,A Taxonomic Study」第2版、
North―Holland Publishing社発行、1970年)。
すなわち、この属に属する酵母は、
・ 多極出芽によつて増殖する。
・ 子のう胞子を形成する。
・ 硝酸塩を資化しない。
・ 真菌糸を欠くかまたはわずかしか形成しな
い。
・ 成熟子のうは容易に開裂しない。
・ 胞子の形状は球形ないし卵形である。
・ グルコースをよく発酵する。
・ 麦芽汁培地に皮膜を形成しない。
発明の効果
この発明は以上のとおり構成されているので、
優れた凝集性を有する新規酵母を実験室において
創製することができる。したがつて従来のように
自然界から所望の菌株を見つけ出して土壌から分
離するといつた煩わしい作業が必要でない上に、
所望の凝集性酵母を確実に製造することができ
る。そしてこうして得られた凝集性酵母を用いて
アルコール発酵を行なうことにより、冒頭で説明
したように回分発酵においても連続発酵において
もアルコール発酵槽内の菌体濃度を高く維持し
て、エタノールの生産性を大幅に向上することが
できる。
実施例
つぎにこの発明の実施例を示し、上記効果を実
証する。
a 製造例
凝集性を有しない酵母サツカロマイセス・セル
ビシエ(Saccharomyces cerevisiae)IFO―
0224をYPG寒天培地(注2)で30℃で24時間培
養し、ついで胞子形成寒天培地(注3)に塗抹
し、30℃で3〜5日間培養を行なつた。こうして
胞子を形成させた。
ついで胞子数が107個/mlになるように、子の
うを無菌水1mlに懸濁させ、集菌後リン酸緩衝液
(注4)で洗浄した。ついで子のうを溶菌酵素溶
液(注5)2ml中で30℃で1時間振盪して、子の
うを溶解させた。ついで集菌後、遊離した胞子を
無菌水1mlで洗浄してリン酸緩衝液3mlに懸濁さ
せた。
この懸濁液に変異誘起剤としてエチルメタンス
ルホネートを0.1ml添加し、懸濁液を30℃で2時
間振盪した。こうして胞子を変異処理した。つい
で集菌後、変異胞子をリン酸緩衝液0.2mlに懸濁
させ、懸濁液に5%チオ硫酸ナトリウム水溶液3
mlを添加して、懸濁液を30℃で10分間振盪した。
こうして変異誘起剤を中和した。
集菌後、変異胞子をリン酸緩衝液1mlで2回洗
浄して同緩衝液5mlに懸濁させ、懸濁液を氷冷下
に3分間超音波処理することにより変異胞子を懸
濁液中に分散させた。ついで集菌後、懸濁液を無
菌水で濃度1/105〜1/106に希釈し、希釈懸濁液
0.1mlをYPG寒天培地(注2)に塗抹して30℃で
48時間培養し、単独胞子由来の集落を得た。
こうして得られた集落のプレートをマスタープ
レートとしてレプリカ法により変異株の検出を行
なつた。すなわち、殺菌したベルベツト布地を用
いて、前記マスタープレートの集落を最小培地
(注6)にレプリカし、同培地で30℃で4日間培
養し、最小培地で増殖できない菌株をマスタープ
レートにおいて検出し、これを栄養要求性変異株
としてマスタープレートから釣菌した。
その結果マスタープレートの菌株25株のうち凝
集性に優れた株サツカロマイセス・セルビシエ
(Saccharomyces cerevisiae)RM―17(微工研
菌寄第7770号)を得た。この株はアデニンおよび
ヒスチジン要求性の菌株であつた。
b 凝集性の測定
こうして得られたRM―17について凝集性の程
度すなわちDF値を前述の方法により測定したと
ころ、DF値は4であつた。
c 使用例 (アルコール連続発酵)
RM―17を用いてつぎの操作によりアルコール
連続発酵を行ない、そのアルコール発酵能を調べ
た。
発酵装置として、第1図に示すアルコール発酵
装置を用いた。これは実容積700mlのガラス製流
動層型発酵槽1を主体とし、温度制御およびPH制
御できるように構成されている。そして発酵原料
はポンプ2によつて同槽1の底部に供給され、反
応液はポンプ3で同槽の頂部から底部に戻され、
槽頂の菌体沈降部4から流出するようになつてい
る。
500ml坂口フラスコにおいてYPG培地(注1)
100mlを調整し、これを温度121℃で10分間殺菌し
た後、YPG寒天斜面培地(注2)に保存した
RM―17株を1白菌耳植菌し、30℃で1夜培養し
た。こうして活性なRM―17の前培養液を得た。
フイリピン産廃糖蜜培地(注7)700mlが入つ
ている発酵槽1に上記前培養液100mlを入れ、発
酵温度30℃で8時間回分培養を行なつた。ついで
上記廃糖蜜培地を発酵槽1に流量35ml/時(希釈
率=0.05時-1)で連続的に供給し、培地の供給量
を徐々に増加ていつて連続発酵を行なつた。
その結果、培地供給量を175ml/時(希釈率=
0.25時-1)に増加しても、RM―17の優れた凝集
性により、槽内に直径1〜4mmのフロツクが形成
されて、槽内の菌体濃度(注8)は47g/とい
う高い値に維持された。また産生アルコールは61
g/という高い濃度で得られ、アルコール生産
性(注9)は第2図に示すように14g/・時と
いう高い値に達した。
d 比較例
酵母としてRM―17の代わりにIFO―0224を用
い、その他の事項を上記使用例と同じにして、上
記操作を繰返した。
その結果、培地供給量が70ml/時(希釈率=
0.1時-1)を超えると、アルコール生産性(注9)
は第2図に示すように4g/・時から急激に低
下した。
e 培地および試薬
培地および試薬はそれぞれつぎのとおりであ
る。
(注1) YPG培地
酵母エキス 10g/
ポリペプトン 20g/
グルコース 20g/
(注2) YPG寒天培地
酵母エキス 10g/
ポリペプトン 20g/
グルコース 20g/
寒天 20g/
(注3) 胞子形成培地
酢酸ナトリウム 5g/
寒天 20g/
(注4) リン酸緩衝液
0.1Mリン酸緩衝液
PH=7.5
(注5) 溶菌酵素溶液
0.1Mリン酸緩衝液(PH7.5)にザイモリアーゼ
20T(生化学工業社製)を0.05%溶かした溶液2
mlと、2―メルカプトエタノール1.4μとの混合
液。
(注6) 最小培地
Difco―Yeast Nitrogen Base W/O
Amino acid(Difco社製) 6.7g/
グルコース 20g/
寒天 20g/
(注7) フイリピン産廃糖蜜培地
フイリピン産廃糖蜜 280g/
硫酸アンモニウム 2.8g/
ピロ亜硫酸カリウム 0.5g/
消泡剤 0.2g/
とよりなる混合液を硫酸でPH4.5に調整したもの。
(注8) 菌体濃度
発酵槽内の培養液を一定量とり、遠心分離機で
菌体を集め、洗浄後、これを温度800℃で燃焼し、
焼失した重量を菌体量として算出したもの。
(注9) アルコール生産性
培養液1当り1時間に生産されるアルコール
の重量(g)。[Table] In Table 2, the fermentability of raffinose is expressed by how many sugars it can ferment out of the constituent monosaccharides fructose, glucose, and galactose produced by cleavage of the bond. That is, fermentability 1/3
"fermentability" means the case where only fructose is fermented, "2/3 fermentability" means the case where fructose and glucose are fermented, and "fermentability 3/3" means the case where all the constituent monosaccharides are fermented. In addition, Saccharomyces
Yeast belonging to the genus are known to have the following mycological properties (J. Lodder, “The
Yeasts, A Taxonomic Study” 2nd edition,
North-Holland Publishing, 1970). That is, yeast belonging to this genus: • Propagate by multipolar budding. - Forms ascospores.・Do not assimilate nitrates. - Lacking or forming only a few fungal threads.・Mature asci do not cleave easily.・The shape of the spores is spherical or oval. - Ferment glucose well. - Does not form a film on the wort medium. Effects of the invention Since this invention is configured as described above,
A new yeast with excellent flocculation properties can be created in the laboratory. Therefore, there is no need for the conventional troublesome work of finding the desired bacterial strain from nature and isolating it from the soil.
Desired flocculating yeast can be reliably produced. By carrying out alcohol fermentation using the flocculating yeast obtained in this way, the bacterial cell concentration in the alcohol fermenter can be maintained at a high level in both batch fermentation and continuous fermentation as explained at the beginning, increasing ethanol productivity. can be significantly improved. Examples Next, examples of the present invention will be shown to demonstrate the above effects. a Production example Non-flocculating yeast Saccharomyces cerevisiae IFO
0224 was cultured on a YPG agar medium (Note 2) at 30°C for 24 hours, then spread on a sporulation agar medium (Note 3), and cultured at 30°C for 3 to 5 days. In this way, spores were formed. Next, the asci were suspended in 1 ml of sterile water so that the number of spores was 10 7 /ml, and after collection, the cells were washed with phosphate buffer (Note 4). The ascus was then shaken in 2 ml of lytic enzyme solution (note 5) at 30°C for 1 hour to dissolve the ascus. After bacterial collection, the released spores were washed with 1 ml of sterile water and suspended in 3 ml of phosphate buffer. To this suspension, 0.1 ml of ethyl methanesulfonate was added as a mutagenic agent, and the suspension was shaken at 30°C for 2 hours. The spores were thus mutated. After collecting the bacteria, the mutant spores were suspended in 0.2 ml of phosphate buffer, and the suspension was added with 3 ml of 5% sodium thiosulfate aqueous solution.
ml was added and the suspension was shaken for 10 minutes at 30°C.
The mutagen was thus neutralized. After harvesting, the mutant spores are washed twice with 1 ml of phosphate buffer, suspended in 5 ml of the same buffer, and the suspension is sonicated for 3 minutes on ice to remove the mutant spores in the suspension. It was dispersed into After collecting bacteria, dilute the suspension with sterile water to a concentration of 1/10 5 to 1/10 6 to obtain a diluted suspension.
Spread 0.1ml onto YPG agar medium (Note 2) and incubate at 30℃.
After culturing for 48 hours, colonies derived from single spores were obtained. Using the colony plate thus obtained as a master plate, mutant strains were detected by the replica method. That is, using sterilized velvet cloth, replicate the colony on the master plate onto a minimal medium (Note 6), culture it on the same medium at 30°C for 4 days, and detect strains that cannot grow on the minimal medium on the master plate, This was harvested from the master plate as an auxotrophic mutant strain. As a result, out of the 25 strains on the master plate, the strain Saccharomyces cerevisiae RM-17 (Feikoken Bacteria Collection No. 7770) with excellent agglutination properties was obtained. This strain was an adenine and histidine auxotrophic strain. b Measurement of cohesiveness The degree of cohesiveness, ie, DF value, of the thus obtained RM-17 was measured by the method described above, and the DF value was 4. c Usage Example (Continuous Alcohol Fermentation) Continuous alcohol fermentation was performed using RM-17 according to the following procedure, and its alcohol fermentation ability was investigated. As the fermentation apparatus, an alcohol fermentation apparatus shown in FIG. 1 was used. This mainly consists of a glass fluidized bed fermenter 1 with an actual volume of 700 ml, and is configured to be able to control temperature and pH. Then, the fermentation raw material is supplied to the bottom of the tank 1 by pump 2, and the reaction liquid is returned from the top to the bottom of the tank by pump 3.
It is designed to flow out from the bacterial cell sedimentation section 4 at the top of the tank. YPG medium (Note 1) in a 500ml Sakaguchi flask
After adjusting 100 ml and sterilizing it at a temperature of 121°C for 10 minutes, it was stored in a YPG agar slant medium (Note 2).
RM-17 strain was inoculated into one white fungus ear and cultured at 30°C overnight. In this way, an active RM-17 preculture solution was obtained. 100 ml of the above preculture solution was placed in fermenter 1 containing 700 ml of Philippine molasses medium (Note 7), and batch culture was carried out at a fermentation temperature of 30° C. for 8 hours. Next, the molasses medium was continuously supplied to the fermenter 1 at a flow rate of 35 ml/hour (dilution rate = 0.05 hour -1 ), and the supply amount of the medium was gradually increased to carry out continuous fermentation. As a result, the medium supply amount was 175ml/hour (dilution rate =
0.25 hours -1 ), the excellent flocculation properties of RM-17 form flocs with a diameter of 1 to 4 mm in the tank, and the bacterial cell concentration (Note 8) in the tank remains as high as 47 g/1. The value was maintained. Also, the alcohol produced is 61
The alcohol productivity (Note 9) reached a high value of 14 g/hr, as shown in Figure 2. d Comparative Example The above operation was repeated using IFO-0224 instead of RM-17 as the yeast and making other matters the same as in the above usage example. As a result, the medium supply amount was 70ml/hour (dilution rate =
If it exceeds 0.1 h -1 ), alcohol productivity (Note 9)
As shown in FIG. 2, the amount decreased rapidly from 4 g/h. e Medium and reagents The medium and reagents are as follows. (Note 1) YPG medium yeast extract 10g / Polypeptone 20g / Glucose 20g / (Note 2) YPG agar medium Yeast extract 10g / Polypeptone 20g / Glucose 20g / Agar 20g / (Note 3) Sporulation medium Sodium acetate 5g / Agar 20g / (Note 4) Phosphate buffer 0.1M phosphate buffer PH = 7.5 (Note 5) Lytic enzyme solution Zymolyase in 0.1M phosphate buffer (PH 7.5)
Solution 2 of 0.05% 20T (manufactured by Seikagaku Corporation)
ml and 1.4μ of 2-mercaptoethanol. (Note 6) Minimal medium Difco-Yeast Nitrogen Base W/O
Amino acid (manufactured by Difco) 6.7g / Glucose 20g / Agar 20g / (Note 7) Philippine molasses medium Philippine molasses 280g / Ammonium sulfate 2.8g / Potassium pyrosulfite 0.5g / Antifoaming agent 0.2g / A mixed solution consisting of: adjusted to pH4.5 with sulfuric acid. (Note 8) Bacterial cell concentration Take a certain amount of the culture solution in the fermenter, collect the bacterial cells with a centrifuge, wash them, and burn them at a temperature of 800℃.
The weight lost by fire was calculated as the amount of bacterial cells. (Note 9) Alcohol productivity Weight (g) of alcohol produced per hour per culture solution.
第1図は連続発酵のフローシート、第2図は希
釈率とアルコール生産性の関係を示すグラフであ
る。
FIG. 1 is a flow sheet for continuous fermentation, and FIG. 2 is a graph showing the relationship between dilution rate and alcohol productivity.
Claims (1)
(Saccharomyces cerevisiae)RM―17(微工研
菌寄第7770号)。[Scope of Claims] 1. The yeast Saccharomyces cerevisiae RM-17, which has a flocculating property with a DF value of 4, which requires adenine and histidine for growth, and which is spherical or oval in shape. Microtechnical Research Institute No. 7770).
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59230897A JPS61108384A (en) | 1984-10-31 | 1984-10-31 | Novel agglutinating yeast and alcohol fermentation |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59230897A JPS61108384A (en) | 1984-10-31 | 1984-10-31 | Novel agglutinating yeast and alcohol fermentation |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS61108384A JPS61108384A (en) | 1986-05-27 |
| JPH0121757B2 true JPH0121757B2 (en) | 1989-04-24 |
Family
ID=16915009
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP59230897A Granted JPS61108384A (en) | 1984-10-31 | 1984-10-31 | Novel agglutinating yeast and alcohol fermentation |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS61108384A (en) |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS63156597A (en) * | 1986-12-19 | 1988-06-29 | Tax Adm Agency | Waste water treatment |
| JP5127525B2 (en) * | 2007-03-30 | 2013-01-23 | 三井造船株式会社 | Alcohol continuous production method |
-
1984
- 1984-10-31 JP JP59230897A patent/JPS61108384A/en active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS61108384A (en) | 1986-05-27 |
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