JPH012594A - Ｄ−セリンの製造法 - Google Patents
Ｄ−セリンの製造法Info
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- JPH012594A JPH012594A JP62-154992A JP15499287A JPH012594A JP H012594 A JPH012594 A JP H012594A JP 15499287 A JP15499287 A JP 15499287A JP H012594 A JPH012594 A JP H012594A
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- serine
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- culture
- microorganisms
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〈産業上の利用分野〉
本発明は医薬中間体とし有用なり一セリンを選択前化法
によって工業的に製造する方法に関するものである。
によって工業的に製造する方法に関するものである。
〈従来の技術〉
ＤＬ−５−ヒドロキシメチルヒダントインを微生物によ
りＮ−カルバミル−Ｄ−セリンとしたのち、加水分解し
てＤ−セリンを得る方法はすでに知られている（特開昭
６１−１５２２９１号公報）。
りＮ−カルバミル−Ｄ−セリンとしたのち、加水分解し
てＤ−セリンを得る方法はすでに知られている（特開昭
６１−１５２２９１号公報）。
〈発明が解決しようとする問題点〉
前記方法はＤＬ−５−ヒドロキシメチルヒダントインか
らＤ−セリンを得る方法として優れている。
らＤ−セリンを得る方法として優れている。
しかしながら、ＤＬ−５−ヒドロキシメチルしダントイ
ンからＮ−カルバミル−Ｄ−セリンを得る反応が４０％
以下と低収率であること、また、酵素活性が低く、生菌
体を使用する場合には５０ ｔ ／ Ｊ！もの分離菌体
を必要とするなど、工業的な製造法として有利な方法と
はいえない。
ンからＮ−カルバミル−Ｄ−セリンを得る反応が４０％
以下と低収率であること、また、酵素活性が低く、生菌
体を使用する場合には５０ ｔ ／ Ｊ！もの分離菌体
を必要とするなど、工業的な製造法として有利な方法と
はいえない。
く問題点を解決するための手段および作用〉そこで、本
発明者らはＤＬ−セリンを含有する培地で微生物を培養
することにより、Ｌ−セリンのみを選択資化せしめ、Ｄ
−セリンをＨ造する方法を検討した。
発明者らはＤＬ−セリンを含有する培地で微生物を培養
することにより、Ｌ−セリンのみを選択資化せしめ、Ｄ
−セリンをＨ造する方法を検討した。
この方法によれば、し−セリンは微生物が生育するため
のエネルギーとして消費されるために、Ｌ−セリンを全
量資化した時点では培地中にはＤ−セリンのみが蓄積さ
れ、他に副生物はほとんど存在しないことになる。
のエネルギーとして消費されるために、Ｌ−セリンを全
量資化した時点では培地中にはＤ−セリンのみが蓄積さ
れ、他に副生物はほとんど存在しないことになる。
加えて、選ばれた微生物がラセマーゼを保有しないか、
あるいは保有したとしても不活性化される条件下で培養
することにより、ＤＬ−セリンに含まれるＤ−セリンは
実質的に理論量蓄積されることになる。
あるいは保有したとしても不活性化される条件下で培養
することにより、ＤＬ−セリンに含まれるＤ−セリンは
実質的に理論量蓄積されることになる。
本発明者らは、このような目的に合致する微生物を探究
した。
した。
すなわち、安価なりＬ−セリンを炭素源、窒素源として
含む培地中で、Ｌ−セリンのみを資化し、Ｄ−セリンを
実質的に資化しない、選択資化能を有する微生物につい
て探究したところ、特定の微生物をＤＬ−セリン培地で
培養することにより、数十ｇ／ｊ！以上の蓄積濃度でＤ
−セリンが得られることを見い出し、本発明を完成した
。
含む培地中で、Ｌ−セリンのみを資化し、Ｄ−セリンを
実質的に資化しない、選択資化能を有する微生物につい
て探究したところ、特定の微生物をＤＬ−セリン培地で
培養することにより、数十ｇ／ｊ！以上の蓄積濃度でＤ
−セリンが得られることを見い出し、本発明を完成した
。
すなわち、本発明はＤＬ−セリンを含有する培地中で、
キャンディダ属、トルロプシス属、クリプトコツカス属
、サツカロマイコブシス属、ハンゼヌラ属などの酵母類
またはエッシエリヒア属、クレブシェラ属、プロビデン
シア属、ミクロバクテリウム属、セラチア属などの細菌
類に属しかつＬ−セリンを資化し、Ｄ−セリンを実質的
に資化しない能力を有する微生物を培養し、培養液中か
らＤ−セリンを単離採取することを特徴とするＤ−セリ
ンの製造法である。
キャンディダ属、トルロプシス属、クリプトコツカス属
、サツカロマイコブシス属、ハンゼヌラ属などの酵母類
またはエッシエリヒア属、クレブシェラ属、プロビデン
シア属、ミクロバクテリウム属、セラチア属などの細菌
類に属しかつＬ−セリンを資化し、Ｄ−セリンを実質的
に資化しない能力を有する微生物を培養し、培養液中か
らＤ−セリンを単離採取することを特徴とするＤ−セリ
ンの製造法である。
以下、本発明の構成を詳述する。
本発明で使用する微生物としては、キャンディダ属、ト
ルロプシス属、クリプトコツカス属、サツカロマイコブ
シス属、ハンゼヌラ属などの酵母類、またはエッシェリ
ヒア属、クレブシェラ属、１０ビデ゛ンシア属、ミクロ
バクテリウム属、セラチア属などの細菌類に属する微生
物が挙げられる。
ルロプシス属、クリプトコツカス属、サツカロマイコブ
シス属、ハンゼヌラ属などの酵母類、またはエッシェリ
ヒア属、クレブシェラ属、１０ビデ゛ンシア属、ミクロ
バクテリウム属、セラチア属などの細菌類に属する微生
物が挙げられる。
これらの微生物のうち、実質的にＤＬ−セリンを炭素源
および窒素源として含有する培地中で生育可能であって
、かつＬ−セリン資化能を有し、Ｄ−セリンを実質的に
資化しない微生物が本発明では使用される。
および窒素源として含有する培地中で生育可能であって
、かつＬ−セリン資化能を有し、Ｄ−セリンを実質的に
資化しない微生物が本発明では使用される。
ここで、Ｄ−セリンを実質的に資化しない微生物とは、
本発明の効果を実質的に阻害しない範囲においてＤ−セ
リンを少量のみ資化する微生物、あるいは、Ｌ−セリン
資化後、Ｌ−セリンの不存在下ではＤ−セリンを資化す
る微生物も含まれる。
本発明の効果を実質的に阻害しない範囲においてＤ−セ
リンを少量のみ資化する微生物、あるいは、Ｌ−セリン
資化後、Ｌ−セリンの不存在下ではＤ−セリンを資化す
る微生物も含まれる。
たとえば、キャンディダ・ルゴーザ１ｃａｎｄ ｉｄａ
ｒｕｇｏｓａ）ＡＴＣＣ１０５７１、’？ヤンディダ・
リボリティカ（Ｃａｎｄｉｄａ ｌ １ｐｏｌｙｔｉｃ
ａ） ｌ Ｆ ００７１７、トルロプシス・キャンディ
ダ（Ｔｏｒｕｌｏｐｓｉｓ ｃａｎｄｉｄａ）Ｉ ＦＯ
Ｏ３８０、クリプトコツカス・ロウレンチ４ ｔｃｒｙ
ｐｔｏｃｏｃｃｕｓ Ｉａｕｒｅｎｔｉｉ）ＡＴＣＣ３
６８３２，サツカロマイコブシス・リボリティカ（Ｓａ
ｃｃｈａｒｏｎｙｃｏｐｓｉｓ ｌ１ｐｏｌｙｔｉｃａ
）ＡＴＣＣ２０３０６、ハンゼヌラ・アノマラ （Ｈａ
ｎｓｅｎｕｌａ ａｎｏｉａｌａ） Ｉ Ｆ ＯＯ１２
０、エツシエリヒア・コリ（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ
ｃｏｌｉ） Ｉ Ａ Ｍ １２６８、クレブシェラ・プ
ノイモニア（に１ｅｂｓｉｅｌｌａ ｐｎａｕｍｏｎｉ
ａｅ） ＡＴＣＣ２１３１６、プロビデンシア・レトゲ
リ（Ｐｒｏｖｉｄｅｎｃｉａ ｒａｔｔｇｅｒｉ）Ａ
Ｔ ＣＣ９８８６、ミクロバクテリウム・アンモニアフ
ィルム（Ｈｉｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｌａｉｌｏｎｉａ
ｐｈｉｌｕｎ）Ｆ ＥＲＭ−Ｐ２４０８、セラチア・マ
ルセセンス（Ｓｅｒｒａｔｉａ ｎａｒｃｅｓｃｅｎｓ
） Ｉ ＡＭ １２１４２などが挙げられる。
ｒｕｇｏｓａ）ＡＴＣＣ１０５７１、’？ヤンディダ・
リボリティカ（Ｃａｎｄｉｄａ ｌ １ｐｏｌｙｔｉｃ
ａ） ｌ Ｆ ００７１７、トルロプシス・キャンディ
ダ（Ｔｏｒｕｌｏｐｓｉｓ ｃａｎｄｉｄａ）Ｉ ＦＯ
Ｏ３８０、クリプトコツカス・ロウレンチ４ ｔｃｒｙ
ｐｔｏｃｏｃｃｕｓ Ｉａｕｒｅｎｔｉｉ）ＡＴＣＣ３
６８３２，サツカロマイコブシス・リボリティカ（Ｓａ
ｃｃｈａｒｏｎｙｃｏｐｓｉｓ ｌ１ｐｏｌｙｔｉｃａ
）ＡＴＣＣ２０３０６、ハンゼヌラ・アノマラ （Ｈａ
ｎｓｅｎｕｌａ ａｎｏｉａｌａ） Ｉ Ｆ ＯＯ１２
０、エツシエリヒア・コリ（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ
ｃｏｌｉ） Ｉ Ａ Ｍ １２６８、クレブシェラ・プ
ノイモニア（に１ｅｂｓｉｅｌｌａ ｐｎａｕｍｏｎｉ
ａｅ） ＡＴＣＣ２１３１６、プロビデンシア・レトゲ
リ（Ｐｒｏｖｉｄｅｎｃｉａ ｒａｔｔｇｅｒｉ）Ａ
Ｔ ＣＣ９８８６、ミクロバクテリウム・アンモニアフ
ィルム（Ｈｉｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｌａｉｌｏｎｉａ
ｐｈｉｌｕｎ）Ｆ ＥＲＭ−Ｐ２４０８、セラチア・マ
ルセセンス（Ｓｅｒｒａｔｉａ ｎａｒｃｅｓｃｅｎｓ
） Ｉ ＡＭ １２１４２などが挙げられる。
本発明では、ＤＬ−セリンを炭素源、窒素源として含有
する培地中で培養を行うが、他の炭素源および／または
窒素源を含有してもよい。
する培地中で培養を行うが、他の炭素源および／または
窒素源を含有してもよい。
好ましくは、ＤＬ−セリンを単一炭素源、窒素源として
含有する培地中で培養を行う。
含有する培地中で培養を行う。
培地中のＤＬ−セリン濃度は１（中に１〜１５０ｇ、好
ましくは１０〜１００ｇである。ＤＬ−セリン濃度が低
いと生産効率が悪くなり、逆に濃度が高いと培養時間が
長くなり、また、微生物の生育が阻害される傾向となる
。
ましくは１０〜１００ｇである。ＤＬ−セリン濃度が低
いと生産効率が悪くなり、逆に濃度が高いと培養時間が
長くなり、また、微生物の生育が阻害される傾向となる
。
ＤＬ−セリンは始めから培養液に全量仕込んでもよいが
、濃度が高くなると微生物の生育が遅くなったり、過飽
和のＤＬ＝セリンが析出してくるので初濃度を１〜４０
ｇ ／ ｉ！にして、残りのＤＬ−セリンを分割添加
する流加培養法が好ましい。
、濃度が高くなると微生物の生育が遅くなったり、過飽
和のＤＬ＝セリンが析出してくるので初濃度を１〜４０
ｇ ／ ｉ！にして、残りのＤＬ−セリンを分割添加
する流加培養法が好ましい。
培養は酸性で実施するのが好ましい。培養液は通常培養
開始時にｐ Ｈ５〜６に調整する。培養が進むにつれて
ｐ Ｈが上昇する。そのままで培養すると微生物の生育
速度が遅くなり、またＤ−セリンの回収率が低くなる傾
向となるのでｐ Ｈを酸性に：ｌント１プールする必要
がある。
開始時にｐ Ｈ５〜６に調整する。培養が進むにつれて
ｐ Ｈが上昇する。そのままで培養すると微生物の生育
速度が遅くなり、またＤ−セリンの回収率が低くなる傾
向となるのでｐ Ｈを酸性に：ｌント１プールする必要
がある。
培養時のｐＨは通常４〜７、好ましくは４．５〜６．５
に調整する。調整用の酸としては、たとえばリン酸、硫
酸、塩酸などの無機酸水溶液が好ましい。
に調整する。調整用の酸としては、たとえばリン酸、硫
酸、塩酸などの無機酸水溶液が好ましい。
培養温度は通常２０〜４０℃、好ましくは２５〜３５℃
である。
である。
培養は通気しながら撹拌する。通気量は通常０．５〜２
．Ｏｖｖｍ、好ましくは０．６〜１，２ｖｖｎである。
．Ｏｖｖｍ、好ましくは０．６〜１，２ｖｖｎである。
通気量が少なすぎると微生物の生育が阻害され、Ｌ−セ
リンの資化速度も遅くなる。
リンの資化速度も遅くなる。
また、多くても効果に変わりなく、むしろ培養液の蒸発
を促進するために培養液濃度が高くなったり、発泡が激
しくなり、好ましくない。
を促進するために培養液濃度が高くなったり、発泡が激
しくなり、好ましくない。
Ｌ−セリンがすべて資化された時点で培養を終了する。
Ｌ−セリンの全量資化はＤＯをモニターすることにより
、また、セリンのり、Ｌを分析するか、酸の添加量をモ
ニターすることにより知ることができる。
、また、セリンのり、Ｌを分析するか、酸の添加量をモ
ニターすることにより知ることができる。
し−セリンがすべて資化されたのち、さらに培養を続け
るとＤ−セリンも徐々に資化される場合もあるので、培
養の終点を明確に知ることが好ましい。
るとＤ−セリンも徐々に資化される場合もあるので、培
養の終点を明確に知ることが好ましい。
かくして得られた培養液を遠心分離により菌体を除去し
たのち、通常の方法によってＤ−セリーンを単離すれば
よい、たとえば、イオン交換樹脂５Ｋ−ＩＢ（三菱化成
製）に通液してセリンを樹脂に吸着させたのちよく洗浄
する０次いでアンモニア水溶液で溶出させたのち、溶出
液を濃縮すればよい。ここで得られた粗り−セリンを水
で再結晶すれば精製されたＤ−セリンが得られる。
たのち、通常の方法によってＤ−セリーンを単離すれば
よい、たとえば、イオン交換樹脂５Ｋ−ＩＢ（三菱化成
製）に通液してセリンを樹脂に吸着させたのちよく洗浄
する０次いでアンモニア水溶液で溶出させたのち、溶出
液を濃縮すればよい。ここで得られた粗り−セリンを水
で再結晶すれば精製されたＤ−セリンが得られる。
〈実施例〉
以下、実施例により本発明を具体的に説明する。
実施例においてセリンの光学純度分析は、濃縮乾燥した
Ｄ−セリン含有粉末をメタノール−塩酸によりメチルエ
ステル化したのち３，５−ジニトロフェニルイソシアネ
ートと反応させたのちこれを次の条件によりＨＰ Ｌ
Ｃで分析する方法によって行った。
Ｄ−セリン含有粉末をメタノール−塩酸によりメチルエ
ステル化したのち３，５−ジニトロフェニルイソシアネ
ートと反応させたのちこれを次の条件によりＨＰ Ｌ
Ｃで分析する方法によって行った。
カラム：０Ａ−１０００（注文化学）
移動ｌ：ｎ−ヘキサン：ジクロルメタン：エタノール（
４：２：１） 流 速： ０．７ ｍｌ ／ ＩＩ ｉ ｎ検 出：Ｕ
Ｖ２５４ｎｍ 実施例１ 乾燥ブイヨン３０ ｔ／ １．、 （ｐ Ｈ６，０＞を
含む培地５０ｍ１を１１三角フラスコに分注し、１２０
℃、２０分間滅菌し、種培養培地とした。これにキャン
ディダ・ルゴーザＡＴＣＣ１０５７１を一白金耳植菌し
、３０℃で一日振とう培養した。一方、ＤＬ−セリン８
０ ｇ ／ Ｉｔ、リン酸−カリウム２ ｇ ／ Ｊ！
、 Ｋ酸マグネシウム０６５ｇ／Ｊ２、粉末酵母エキ
ス１．０ｇ／ｌを含む培地（ｐＨ５，６）ＩＪを３４の
ミニジャーファーメンタ−に仕込み滅菌して主培養培地
とした。これに先の種培養液を接種し、３０℃、１．
Ｏｖ ｖ ｒａ通気撹拌培養をした。なお、培養中は４
Ｎ硫酸によりｐ Ｈ５，５±０．１に調整を行った。約
７０時間で培地中のし一セリンは全量資化され、Ｄ−セ
リン３７ｇ、硫酸アンモニウム２５ｇを含む培養液的１
．１１を得た。
４：２：１） 流 速： ０．７ ｍｌ ／ ＩＩ ｉ ｎ検 出：Ｕ
Ｖ２５４ｎｍ 実施例１ 乾燥ブイヨン３０ ｔ／ １．、 （ｐ Ｈ６，０＞を
含む培地５０ｍ１を１１三角フラスコに分注し、１２０
℃、２０分間滅菌し、種培養培地とした。これにキャン
ディダ・ルゴーザＡＴＣＣ１０５７１を一白金耳植菌し
、３０℃で一日振とう培養した。一方、ＤＬ−セリン８
０ ｇ ／ Ｉｔ、リン酸−カリウム２ ｇ ／ Ｊ！
、 Ｋ酸マグネシウム０６５ｇ／Ｊ２、粉末酵母エキ
ス１．０ｇ／ｌを含む培地（ｐＨ５，６）ＩＪを３４の
ミニジャーファーメンタ−に仕込み滅菌して主培養培地
とした。これに先の種培養液を接種し、３０℃、１．
Ｏｖ ｖ ｒａ通気撹拌培養をした。なお、培養中は４
Ｎ硫酸によりｐ Ｈ５，５±０．１に調整を行った。約
７０時間で培地中のし一セリンは全量資化され、Ｄ−セ
リン３７ｇ、硫酸アンモニウム２５ｇを含む培養液的１
．１１を得た。
この培養液を１０，０００ｒｐｎ＋１０分間遠心分離し
て菌体を除いたのち、イオン交換樹脂５Ｋ−ＩＢ（Ｈ型
）を充填したカラムにとおし、Ｄ−セリンを吸着させた
。このカラムを十分水洗したのち、４％アンモニア水で
Ｄ−セリンを溶出した。この溶出液を減圧濃縮し乾固し
てＤ−セリン３５ｇを得た。ＨＰ Ｌ Ｃにより分析し
たところ、光学純度はり９．６％ｅｅ以上であった。
て菌体を除いたのち、イオン交換樹脂５Ｋ−ＩＢ（Ｈ型
）を充填したカラムにとおし、Ｄ−セリンを吸着させた
。このカラムを十分水洗したのち、４％アンモニア水で
Ｄ−セリンを溶出した。この溶出液を減圧濃縮し乾固し
てＤ−セリン３５ｇを得た。ＨＰ Ｌ Ｃにより分析し
たところ、光学純度はり９．６％ｅｅ以上であった。
化学純度は９９．４％であった。
実施例２
ＤＬ−セリン１０ｇ／オ、グルコース５ｇ／′ｌ、リン
酸−カリウム２ｇ／ｌ、硫酸マグネシウム０．５ ｔ
／ Ｊ！ 、粉末酵母エキス０．５ｇ／Ｒを含む培地（
ｐＨ５，０）５０ｍｌを１ｊ！三角フラスコに分注し、
滅菌して種培養培地とした。これにキャンデイダ・ルゴ
ーザＡＴＣＣ１０５７１を一白金耳植菌し、３０℃で約
２０時間後どう培養した。
酸−カリウム２ｇ／ｌ、硫酸マグネシウム０．５ ｔ
／ Ｊ！ 、粉末酵母エキス０．５ｇ／Ｒを含む培地（
ｐＨ５，０）５０ｍｌを１ｊ！三角フラスコに分注し、
滅菌して種培養培地とした。これにキャンデイダ・ルゴ
ーザＡＴＣＣ１０５７１を一白金耳植菌し、３０℃で約
２０時間後どう培養した。
一方、上記培地組成のうち、ＤＬ−セリンを３０ ｇ
／ １とし、グルコ」スを除いた培地１１を３尤のミニ
ジャーファーメンタ−に仕込み滅菌し主培養培地とした
。これに先の種培養液を接種し、３０℃、１． Ｏｖ
ｖ ｔｓで通気撹拌培養をした。培養中は、２Ｎ硫酸に
よりｐ Ｈ５，６±０．１に調整を行った。約２０時間
後、培地中のＬ−セリンが資化されたところで、ＤＬ−
セリン３０Ｉｚを添加しさらに３０時間培養した。
／ １とし、グルコ」スを除いた培地１１を３尤のミニ
ジャーファーメンタ−に仕込み滅菌し主培養培地とした
。これに先の種培養液を接種し、３０℃、１． Ｏｖ
ｖ ｔｓで通気撹拌培養をした。培養中は、２Ｎ硫酸に
よりｐ Ｈ５，６±０．１に調整を行った。約２０時間
後、培地中のＬ−セリンが資化されたところで、ＤＬ−
セリン３０Ｉｚを添加しさらに３０時間培養した。
以下、実施例１と同様にしてＤ−セリン２３゜３「を得
た。光学純度、化学純度はほぼ実施例１と、同様であっ
た。
た。光学純度、化学純度はほぼ実施例１と、同様であっ
た。
実施例３〜１５
乾燥ブイヨン３０ ｇ ／ １からなる種培地（ＰＨ５
，０）５ｍｌを１８Ｘ１８０ｍｉｎの試験管に分注し、
滅菌した。これに表１に示した微生物を一白金耳植菌し
、３０℃で１〜２日振とう培養した。一方、ＤＬ−セリ
ン１０’ｓｒ／Ｊ！、リン酸−カリウム２ｇ／Ｊ！、硫
酸マグネシウム０．５ｇ／ｌ、粉末酵母エキス１．０ｇ
／ｌよりなる主培養培地（ｐＨ５，６）５ｍｌを１８Ｘ
１８０ｎｍφ試験管に分注して滅菌した。これに先の種
培ｆ！液を５％シードで接種し、３０°Ｃで振とう培養
した。
，０）５ｍｌを１８Ｘ１８０ｍｉｎの試験管に分注し、
滅菌した。これに表１に示した微生物を一白金耳植菌し
、３０℃で１〜２日振とう培養した。一方、ＤＬ−セリ
ン１０’ｓｒ／Ｊ！、リン酸−カリウム２ｇ／Ｊ！、硫
酸マグネシウム０．５ｇ／ｌ、粉末酵母エキス１．０ｇ
／ｌよりなる主培養培地（ｐＨ５，６）５ｍｌを１８Ｘ
１８０ｎｍφ試験管に分注して滅菌した。これに先の種
培ｆ！液を５％シードで接種し、３０°Ｃで振とう培養
した。
２４時間後、遠心分離して菌体を除いたのち減圧濃縮し
て乾固したのち乾燥した。得られた固形分についてＨＰ
ＬＣにより残存したセリンの１体、９体の残存率を求め
た。
て乾固したのち乾燥した。得られた固形分についてＨＰ
ＬＣにより残存したセリンの１体、９体の残存率を求め
た。
結果を表１に示す。
〈発明の効果〉
本発明は次の効果を発揮する。
（１）ＤＬ−セリンを炭素源および窒素源として微生物
を培養することにより、Ｌ−セリンを高選択的に資化す
ることができる。
を培養することにより、Ｌ−セリンを高選択的に資化す
ることができる。
（２）さらに蓄積濃度も高く、短時間でＤ−セリンが得
られる。
られる。
（３）加えて、消費されたし一セリンはほとんど炭酸ガ
スと水にまで変換されて、培養液中にはＤ−セリン以外
の副生物は実質的には存在しない。
スと水にまで変換されて、培養液中にはＤ−セリン以外
の副生物は実質的には存在しない。
（４）このためにＤ−セリンの単離精製が容易である。
Claims (1)
- ＤＬ−セリンを含有する培地中で、キャンディダ（Ｃａ
ｎｄｉｄａ）属、トルロプシス（Ｔｏｒｕｌｏｐｓｉｓ
）属、クリプトコッカス（Ｃｒｙｐｔｏｃｏｃｃｕｓ）
属、サッカロマイコプシス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｏ
ｐｓｉｓ）属、ハンゼヌラ（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ）属な
どの酵母類またはエッシェリヒア（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈ
ｉａ）属、クレブシェラ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ）属、
プロビデンシア（Ｐｒｏｖｉｄｅｎｃｉａ）属、ミクロ
バクテリウム（Ｍｉｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属、セ
ラチア（Ｓｅｒｒａｔｉａ）属などの細菌類に属しかつ
Ｌ−セリンを資化しＤ−セリンを実質的に資化しない能
力を有する微生物を培養し、培養液中からＤ−セリンを
単離採取することを特徴とするＤ−セリンの製造法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP15499287A JP2505466B2 (ja) | 1987-06-22 | 1987-06-22 | Ｄ−セリンの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP15499287A JP2505466B2 (ja) | 1987-06-22 | 1987-06-22 | Ｄ−セリンの製造法 |
Publications (3)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS642594A JPS642594A (en) | 1989-01-06 |
| JPH012594A true JPH012594A (ja) | 1989-01-06 |
| JP2505466B2 JP2505466B2 (ja) | 1996-06-12 |
Family
ID=15596347
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP15499287A Expired - Lifetime JP2505466B2 (ja) | 1987-06-22 | 1987-06-22 | Ｄ−セリンの製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2505466B2 (ja) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE102010025124A1 (de) | 2010-06-25 | 2011-12-29 | Forschungszentrum Jülich GmbH | Verfahren zur Herstellung von D-Aminosäuren, Mikroorganismus, sowie Vektor |
-
1987
- 1987-06-22 JP JP15499287A patent/JP2505466B2/ja not_active Expired - Lifetime
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