JPH01279841A - 肝炎ワクチン - Google Patents
肝炎ワクチンInfo
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- JPH01279841A JPH01279841A JP628788A JP628788A JPH01279841A JP H01279841 A JPH01279841 A JP H01279841A JP 628788 A JP628788 A JP 628788A JP 628788 A JP628788 A JP 628788A JP H01279841 A JPH01279841 A JP H01279841A
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- hepatitis
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- sulfuric acid
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は肝炎ワクチンに関する。
B型肝炎ウィルス(HBV)はヒトの血清肝炎を起すウ
ィルスとして知られ、輸血を要する患者や臨床検査、血
漿製剤に従事する者にしばしば感染し、誠にやっかいな
問題を引き起す。今日トIBVはコア抗原(H8CAC
J)と表面抗原(HBSAQ)及びe抗原とから成り立
ちコアの中にDNAポリメラーゼを持つ直径的40nm
の大型粒子であることが知られており((1110Te
chnical Report 5eries Ha
570、Viralhepatitis ) 1975
) 、またアンチートIBs(八nti−HBS)が
、このHBVの感染を予防しうろことも既に明らかにさ
れている。
ィルスとして知られ、輸血を要する患者や臨床検査、血
漿製剤に従事する者にしばしば感染し、誠にやっかいな
問題を引き起す。今日トIBVはコア抗原(H8CAC
J)と表面抗原(HBSAQ)及びe抗原とから成り立
ちコアの中にDNAポリメラーゼを持つ直径的40nm
の大型粒子であることが知られており((1110Te
chnical Report 5eries Ha
570、Viralhepatitis ) 1975
) 、またアンチートIBs(八nti−HBS)が
、このHBVの感染を予防しうろことも既に明らかにさ
れている。
従来l−I B s A aは、これを含む血漿または
血漿画分を密度勾配超遠心分離法によって、密度1.2
0−1.23の両分を得る方法((J、L。
血漿画分を密度勾配超遠心分離法によって、密度1.2
0−1.23の両分を得る方法((J、L。
Gerin、 P、 V、 Ho1landおよびR,
It、 Purcell ) :(Journal o
r Virology )第7巻、第569−576ペ
ージ(1971年)及び(N、 5ukeno、 R。
It、 Purcell ) :(Journal o
r Virology )第7巻、第569−576ペ
ージ(1971年)及び(N、 5ukeno、 R。
5hirachi、 R,5hirachi、 J、
YasaguchiおよびN、 l5hida ) :
同誌、第9巻、第182−183ページ(1972年)
〕によって比較的純粋に得られていた。
YasaguchiおよびN、 l5hida ) :
同誌、第9巻、第182−183ページ(1972年)
〕によって比較的純粋に得られていた。
更に新しくはアフィニティークロア1へグラフィー法が
提案されている〈白石広行、石田名香川、助野典a二日
本ウィルス学会抄録昭和48年11月4.5.6日発表
、東京において)。この方法の概要は次のとおりである
。
提案されている〈白石広行、石田名香川、助野典a二日
本ウィルス学会抄録昭和48年11月4.5.6日発表
、東京において)。この方法の概要は次のとおりである
。
精製H[3S A Qを動物、例えば山羊に免疫して得
た山羊抗HBs血清にI−I B s A aを含まな
いヒトの血清を加えて混在するヒト血清成分に対する抗
体を吸収沈殿させ、上清を硫酸アンモニウム沈殿分画性
によってγ−グロブリン抗HB 5(antiHBs)
を得る。臭化シアンで活性化したセファロース−48(
Sepharose −4B ) トコ(DantiH
88とをカップリングさせ、この生成物のカラムを準備
する。トlB5Agを含むヒト血漿、またはこれから常
法によって分画されたα−及びβ−グロブリン画分を0
.01Mリン酸緩!li液に懸濁し、遠心分離し、得ら
れる上清について上記のカラムを用いてクロマトグラフ
ィーを行う。カラムに結合したHBsAaを0.4M−
グリシン−)I(、J (11H2,5)!l衝液で溶
出し、溶出液を0.01Mリン!!21!li液に対し
て透析し、HBSAG溶液を得る。この溶液を、前記の
カラムと同様に、ただし、山羊抗HBS血清を用いる代
りに、動物、例えば馬に免疫して得た馬抗ヒト血漿血清
を用いる以外は同様にlfJしたカラムを用いてクロマ
トグラフィーにかけ、微量に混在する血漿成分をカラム
にとどめI[HBsAa溶液を通過部分として集める。
た山羊抗HBs血清にI−I B s A aを含まな
いヒトの血清を加えて混在するヒト血清成分に対する抗
体を吸収沈殿させ、上清を硫酸アンモニウム沈殿分画性
によってγ−グロブリン抗HB 5(antiHBs)
を得る。臭化シアンで活性化したセファロース−48(
Sepharose −4B ) トコ(DantiH
88とをカップリングさせ、この生成物のカラムを準備
する。トlB5Agを含むヒト血漿、またはこれから常
法によって分画されたα−及びβ−グロブリン画分を0
.01Mリン酸緩!li液に懸濁し、遠心分離し、得ら
れる上清について上記のカラムを用いてクロマトグラフ
ィーを行う。カラムに結合したHBsAaを0.4M−
グリシン−)I(、J (11H2,5)!l衝液で溶
出し、溶出液を0.01Mリン!!21!li液に対し
て透析し、HBSAG溶液を得る。この溶液を、前記の
カラムと同様に、ただし、山羊抗HBS血清を用いる代
りに、動物、例えば馬に免疫して得た馬抗ヒト血漿血清
を用いる以外は同様にlfJしたカラムを用いてクロマ
トグラフィーにかけ、微量に混在する血漿成分をカラム
にとどめI[HBsAa溶液を通過部分として集める。
HBsAqを構成するサブユニットについては、1−I
B S A Qを切断することによって見いだされる
ペプチドを検索し、勺ブユニットは種々の分子量のポリ
ペ1チドを含むことが多くの報告者によって報告されて
いる。すなわち、ゲリン(前出)はHBSAQは、分子
量26.000.32.000及び40,000のポリ
ペプチドからなることを報告している。その外、それが
、25.000及び32.000の分子量のポリペプチ
ド((G。
B S A Qを切断することによって見いだされる
ペプチドを検索し、勺ブユニットは種々の分子量のポリ
ペ1チドを含むことが多くの報告者によって報告されて
いる。すなわち、ゲリン(前出)はHBSAQは、分子
量26.000.32.000及び40,000のポリ
ペプチドからなることを報告している。その外、それが
、25.000及び32.000の分子量のポリペプチ
ド((G。
N、Vyas、 E、 H,Williams、 GG
B Klaus およびH,E、 Bond)
: (The Journal of Ig+
nunology )第108巻、第1114−11
18ページ(1972年’)) 、39,000.32
,000.27゜000及び22.000のポリペプチ
ド並びに微醋の16,000及び10.000のもの(
(G、 R,Dressmann、 F、 B、 tl
ollinger、 J、 R。
B Klaus およびH,E、 Bond)
: (The Journal of Ig+
nunology )第108巻、第1114−11
18ページ(1972年’)) 、39,000.32
,000.27゜000及び22.000のポリペプチ
ド並びに微醋の16,000及び10.000のもの(
(G、 R,Dressmann、 F、 B、 tl
ollinger、 J、 R。
5uriano、 R,S、 Fujioka、
J、 P、 8runschwigおよびJ、
L、 He1nik) : Journal of V
irology 、第10巻、第469−476ページ
(1972年)〕及び分子m1oo、oooのポリペプ
チドを主成分とし、65,000.36,000及び2
0゜OOOのもの(C,R,llowardおよびA、
J。
J、 P、 8runschwigおよびJ、
L、 He1nik) : Journal of V
irology 、第10巻、第469−476ページ
(1972年)〕及び分子m1oo、oooのポリペプ
チドを主成分とし、65,000.36,000及び2
0゜OOOのもの(C,R,llowardおよびA、
J。
Tuckerman ) : (l1cpatitis
Memoranda ) 、l−1−576,197
3年10月、U、S、A、) 17)++71ニットか
ら構成されることが報告されている。またN、 5uk
eno、 S、八ikawa′I3よびN、 l5hi
da :同誌、H−292,1972年4月、tl、s
、A、)Lt、HBSAQを尿素の存在においてドデシ
ル硫酸ナトリウムによって切断するドデシル硫酸ナトリ
ウム−ポリアクリルアミドゲル電気泳wJP!I易分子
聞分析法(Colowick−にaplan : Me
thod inEnzysology 第26巻、第
3ページ(1972年))によってそれが分子ff12
5,000.28゜000及び33.000のポリペプ
チドのナブユニットからなることを報告している。
Memoranda ) 、l−1−576,197
3年10月、U、S、A、) 17)++71ニットか
ら構成されることが報告されている。またN、 5uk
eno、 S、八ikawa′I3よびN、 l5hi
da :同誌、H−292,1972年4月、tl、s
、A、)Lt、HBSAQを尿素の存在においてドデシ
ル硫酸ナトリウムによって切断するドデシル硫酸ナトリ
ウム−ポリアクリルアミドゲル電気泳wJP!I易分子
聞分析法(Colowick−にaplan : Me
thod inEnzysology 第26巻、第
3ページ(1972年))によってそれが分子ff12
5,000.28゜000及び33.000のポリペプ
チドのナブユニットからなることを報告している。
このようなH[3S A Oのサブユニットの探索は、
そのサブユニットと抗原性との関係を明らかにし、より
抗原性の特異部位を取り出すことを目的としており、ひ
いては効率的なワクチン、試薬の原料としての利用、H
BSAQの抗原基の研究への利用を図ろうとするもので
ある。
そのサブユニットと抗原性との関係を明らかにし、より
抗原性の特異部位を取り出すことを目的としており、ひ
いては効率的なワクチン、試薬の原料としての利用、H
BSAQの抗原基の研究への利用を図ろうとするもので
ある。
本発明の共同研究者らも先に、このHBsAqの抗原性
を持つサブユニットの回収法として、HBSAGを脱す
ビド化(delipidation)すルコとのできる
ある種の界面活性剤の存在下で加熱処理することによっ
て、HBSA(7としての抗原性を保持した分子間約5
5.000の単一のポリペブタイドのみのサブユニット
からなる大きさが約18−20nlの均一な球形粒子(
1−IBAa55)に変換することができることを内示
している(特開昭50−160420号)。
を持つサブユニットの回収法として、HBSAGを脱す
ビド化(delipidation)すルコとのできる
ある種の界面活性剤の存在下で加熱処理することによっ
て、HBSA(7としての抗原性を保持した分子間約5
5.000の単一のポリペブタイドのみのサブユニット
からなる大きさが約18−20nlの均一な球形粒子(
1−IBAa55)に変換することができることを内示
している(特開昭50−160420号)。
本発明者らは、またHBSAQの抗原性を持つ粒子の回
収法として新たな方法を発明し、その方法によって新規
性状を有する、すなわち等電点pl+5.5−6.5、
分子R2−4百万、比重1.80〜1.24.直径18
0〜220人の球形粒子の高い抗原性を保持した均一な
変性HBSAG粒子を提供することにも成功している(
特開昭53−104724号)。
収法として新たな方法を発明し、その方法によって新規
性状を有する、すなわち等電点pl+5.5−6.5、
分子R2−4百万、比重1.80〜1.24.直径18
0〜220人の球形粒子の高い抗原性を保持した均一な
変性HBSAG粒子を提供することにも成功している(
特開昭53−104724号)。
本発明者らは、これらの成功に引き続き、実際にワクチ
ンとして用いつるベプタイドを得るための研究を続けて
きた。
ンとして用いつるベプタイドを得るための研究を続けて
きた。
ワクチンとしては精製して得たHBSAQ粒子をそのま
ま用いることもできるが、その場合感染性を有したHe
ウィルスを完全に除去することはほとんど不可能で、し
たがってホルマリンや加熱処理によって混入が予測され
るHeウィルスを不活性化させる方法が検討されている
。しかし、不活性化したかどうかを証明する方法として
、現在トIBウィルスに感染する動物として知られてい
るのはチンパンジーのみであることからチンパンジーを
用いたテストが必要である。しかし現状では世界中のチ
ンパンジーの数も限られ、経済的にも高価なテストで、
将来継続して不都合なくテストが行える保証もない、ま
たHBSAG粒子のままでは、ヒト血清タンパクの完全
な除去も極めて困難で、これらタンパクが不活性化処理
を通じて変性すれば副作用の原因にもなるおそれがある
。
ま用いることもできるが、その場合感染性を有したHe
ウィルスを完全に除去することはほとんど不可能で、し
たがってホルマリンや加熱処理によって混入が予測され
るHeウィルスを不活性化させる方法が検討されている
。しかし、不活性化したかどうかを証明する方法として
、現在トIBウィルスに感染する動物として知られてい
るのはチンパンジーのみであることからチンパンジーを
用いたテストが必要である。しかし現状では世界中のチ
ンパンジーの数も限られ、経済的にも高価なテストで、
将来継続して不都合なくテストが行える保証もない、ま
たHBSAG粒子のままでは、ヒト血清タンパクの完全
な除去も極めて困難で、これらタンパクが不活性化処理
を通じて変性すれば副作用の原因にもなるおそれがある
。
これに対し、精tJHBsAqより分子量の小さいリブ
ユニットと分離してベプタイドを得、これをワクチンと
することができれば、粒子の大きいHeウィルスの混入
してくるおそれもなく、HB S A 0粒子において
はなんらかの親和性でこれより分離が困難であった血清
タンパク成分も分離除去が容易である。
ユニットと分離してベプタイドを得、これをワクチンと
することができれば、粒子の大きいHeウィルスの混入
してくるおそれもなく、HB S A 0粒子において
はなんらかの親和性でこれより分離が困難であった血清
タンパク成分も分離除去が容易である。
HBワクチンとして用いられるベプタイドは、HB S
A CJの抗原性を有していることが必須である。既
に説明したように、H[3SAQ粒子はこれに対する化
学処理のわずかな相違によって各種分子量のサブユニッ
トに分離されるが、ワクチンとして用いる場合にはその
安全性と有効性が変動してはならず、またワクチン性剤
としての安定性が確保されなければならないから、一定
のポリペブタイドであることが最も望ましい。
A CJの抗原性を有していることが必須である。既
に説明したように、H[3SAQ粒子はこれに対する化
学処理のわずかな相違によって各種分子量のサブユニッ
トに分離されるが、ワクチンとして用いる場合にはその
安全性と有効性が変動してはならず、またワクチン性剤
としての安定性が確保されなければならないから、一定
のポリペブタイドであることが最も望ましい。
本発明は、このような事柄を背景としてなされれたもの
であり、HB S A にJの抗原性を有した、分子f
f124.000〜28,000からなる糖ベプタイド
を得る方法を発明し、安全、かつ有効で安定なるH B
ワクチンを提供することに成功した。
であり、HB S A にJの抗原性を有した、分子f
f124.000〜28,000からなる糖ベプタイド
を得る方法を発明し、安全、かつ有効で安定なるH B
ワクチンを提供することに成功した。
本発明はヒト血漿よりN製して得られる11[3sAQ
を用い、界面活性剤及び還元剤を存在させて加熱するこ
とによって、HBsAaを勺ブユニツ)・の糖ベブタイ
ドに切断し、これが再重合することのないように、界面
活性剤及び還元剤を存在させてゲル濾過法によって分画
し、分子fit 24.000〜28.000の糖ペブ
タイドから成る両分を分別し、用いた界面活性剤を除去
するための吸着補助剤と糖ペブタイドの溶解性を維持さ
せるための溶解補助剤とを用いながら透析して、生理的
に受入れられる中性付近の溶液として回収した糖ベプタ
イドからなるHBワクチン及びその製造方法である。
を用い、界面活性剤及び還元剤を存在させて加熱するこ
とによって、HBsAaを勺ブユニツ)・の糖ベブタイ
ドに切断し、これが再重合することのないように、界面
活性剤及び還元剤を存在させてゲル濾過法によって分画
し、分子fit 24.000〜28.000の糖ペブ
タイドから成る両分を分別し、用いた界面活性剤を除去
するための吸着補助剤と糖ペブタイドの溶解性を維持さ
せるための溶解補助剤とを用いながら透析して、生理的
に受入れられる中性付近の溶液として回収した糖ベプタ
イドからなるHBワクチン及びその製造方法である。
本発明において用いられるH B S A Qとして公
知の方法によって血漿または血清から純粋に得たものを
用いることができる。また血漿または血清の代りにα−
及びβ−グロブリンを含む血漿両分、例えばコーンのア
ルコール分画法におけるN−1画分もまた原料として好
ましい。
知の方法によって血漿または血清から純粋に得たものを
用いることができる。また血漿または血清の代りにα−
及びβ−グロブリンを含む血漿両分、例えばコーンのア
ルコール分画法におけるN−1画分もまた原料として好
ましい。
本発明に用いられる界面活性剤はドデシル硫酸ナトリウ
ムなどのアルキル硫酸エステル塩、あるいはアルキルリ
ン酸エステル塩などから選ばれるアニオン界面活性剤で
ある。界面活性剤の添加針は0.1〜10%、好ましく
は0.5〜2.0%である。アニオン界面活性剤の添加
植は多くても差し支えないが濃度が高いと固体化しやす
く、したがって、温度を高く保つ必要があるので好まし
くないことになる。
ムなどのアルキル硫酸エステル塩、あるいはアルキルリ
ン酸エステル塩などから選ばれるアニオン界面活性剤で
ある。界面活性剤の添加針は0.1〜10%、好ましく
は0.5〜2.0%である。アニオン界面活性剤の添加
植は多くても差し支えないが濃度が高いと固体化しやす
く、したがって、温度を高く保つ必要があるので好まし
くないことになる。
本発明に用いられる還元剤は、2−メルカプトエタノー
ル、ジチオスレイトール、グルタチオンなどから選ばれ
るチオール型還元剤である。還元剤の添加室は0.1〜
10%、好ましくは0.5〜2.0%である。
ル、ジチオスレイトール、グルタチオンなどから選ばれ
るチオール型還元剤である。還元剤の添加室は0.1〜
10%、好ましくは0.5〜2.0%である。
加熱は中性付近の!1衝液中、100〜40℃で2〜6
0分間、好ましくは100〜90℃で、1〜5分間ある
いは70〜50℃で20〜400〜40分 間の処理で生成した糖ベプタイドは、界面活性剤及び還
元剤の存在しない条件では再結合するので、アニオン界
面活性剤及びチオール基を有した還元剤の存在している
条件においてゲル濾過し、各種の生成されたベブタイド
及び糖ベブタイドを分子量の大ぎさによって分画する。
0分間、好ましくは100〜90℃で、1〜5分間ある
いは70〜50℃で20〜400〜40分 間の処理で生成した糖ベプタイドは、界面活性剤及び還
元剤の存在しない条件では再結合するので、アニオン界
面活性剤及びチオール基を有した還元剤の存在している
条件においてゲル濾過し、各種の生成されたベブタイド
及び糖ベブタイドを分子量の大ぎさによって分画する。
ゲル濾過は界面活性剤として、例えばドデシル硫酸ナト
リウムを0.05〜2%、好ましくは0.1〜0.5%
、及び還元剤として、例えば2−メルカプトエタノール
0.05〜2%、好ましくは0.1〜0.5%存在する
中性付近のvll液液用いて、15〜45℃、好ましく
は35〜40℃にて行う。
リウムを0.05〜2%、好ましくは0.1〜0.5%
、及び還元剤として、例えば2−メルカプトエタノール
0.05〜2%、好ましくは0.1〜0.5%存在する
中性付近のvll液液用いて、15〜45℃、好ましく
は35〜40℃にて行う。
ゲル濾過剤はセルロース、アガロース、交差結合デキス
トランなどの高分子多糖体顆粒あるいは交差結合ポリア
クリルアミドであり、商品とじてはセファクリルS1セ
フアデツクス、セファロース、パイオーゲル(Blo−
Get ) P、バイオ−ゲルAなどが例示されるが、
分子ふるい作用を有する担体であればこれらに限定され
ない。
トランなどの高分子多糖体顆粒あるいは交差結合ポリア
クリルアミドであり、商品とじてはセファクリルS1セ
フアデツクス、セファロース、パイオーゲル(Blo−
Get ) P、バイオ−ゲルAなどが例示されるが、
分子ふるい作用を有する担体であればこれらに限定され
ない。
ゲル濾過の結果、分子量が約68.000、約27.0
00及び約22.000その他から成る幾つかの画分が
得られるが、これらのうち分子量的24,000〜28
,000から成る両分を分取する。
00及び約22.000その他から成る幾つかの画分が
得られるが、これらのうち分子量的24,000〜28
,000から成る両分を分取する。
このようにして得られた両分は適当な濃度になるよう濃
縮し、両分に含まれていたアニオン界面活性剤及びチオ
ール基を有した還元剤を除去して、生理的に受は入れら
れる溶液とするのであるが、界面活性剤及び還元剤は共
に完全に除去されてしまうと糖ベプタイドの溶解性が砥
石し、その溶液を長期間保管したいような場合、沈殿を
析出するおそれがあるので、プルロニック(Pluro
nic)F1a、ツウイーン(Tween ) 80な
どの非イオン界1Iii活性剤から選ばれた溶解補助剤
を溶液中に保たせるようにするのがよい。
縮し、両分に含まれていたアニオン界面活性剤及びチオ
ール基を有した還元剤を除去して、生理的に受は入れら
れる溶液とするのであるが、界面活性剤及び還元剤は共
に完全に除去されてしまうと糖ベプタイドの溶解性が砥
石し、その溶液を長期間保管したいような場合、沈殿を
析出するおそれがあるので、プルロニック(Pluro
nic)F1a、ツウイーン(Tween ) 80な
どの非イオン界1Iii活性剤から選ばれた溶解補助剤
を溶液中に保たせるようにするのがよい。
濃縮した後の溶液は、中性付近のl!衝液に対して透析
することによって、加熱反応に用いた界面活性剤と還元
剤を除去するが、この際完全な除去はなかなか国璽であ
る。
することによって、加熱反応に用いた界面活性剤と還元
剤を除去するが、この際完全な除去はなかなか国璽であ
る。
そこで透析外液にプル0ニツクF68、ツウインーン8
0などの非イオン性界面活性剤から選ばれた溶解補助剤
を0.01〜0.1%含有し、アニオン界面活性剤及び
還元剤を吸着除去するための吸着剤としてパイオーラッ
ド(Bio−Rad ) A G−2(商品名)などの
塩基性貼イオン交換吸着剤を加えたものを用いる。
0などの非イオン性界面活性剤から選ばれた溶解補助剤
を0.01〜0.1%含有し、アニオン界面活性剤及び
還元剤を吸着除去するための吸着剤としてパイオーラッ
ド(Bio−Rad ) A G−2(商品名)などの
塩基性貼イオン交換吸着剤を加えたものを用いる。
このようにして得られた溶液は、中性付近の生理的に等
張で、一定量の糖ベブタイド濃度となるように調製し、
除菌濾過した後、官憲に分t↑してHeワクチンの製造
を完了する。
張で、一定量の糖ベブタイド濃度となるように調製し、
除菌濾過した後、官憲に分t↑してHeワクチンの製造
を完了する。
Heワクチンの有効性は、これのHBsAg抗原力価と
共にこれをウサギ、モルモットなどの実験動物に注射し
てHBsAqに対する抗体の産生をみることによって求
めることができる。
共にこれをウサギ、モルモットなどの実験動物に注射し
てHBsAqに対する抗体の産生をみることによって求
めることができる。
本発明の糖ベブタイドの理化学的特徴は、実施例1で得
られたものを用いて求めた。
られたものを用いて求めた。
(1) 分子量
本発明の糖ペプタイドを、ドデシル硫酸ナトリウム・ポ
リアクリルアミドゲル電気泳動法によって分子量を測定
したところ、約27.000であった。またセファデッ
クスG−100によるゲル濾過分析では分子124.0
00〜28.000であった。従って分子量を24,0
00〜28.000とすることが、最も信頼度の高い範
囲と思われる。
リアクリルアミドゲル電気泳動法によって分子量を測定
したところ、約27.000であった。またセファデッ
クスG−100によるゲル濾過分析では分子124.0
00〜28.000であった。従って分子量を24,0
00〜28.000とすることが、最も信頼度の高い範
囲と思われる。
(2) 溶解性
本発明の糖ベブタイドの水に対する溶解性は、中性付近
で約5%以Fであり、それ以上ではタンパク乳濁色を呈
するようになる。この溶解性は塩化す]−リウム溶液、
リン/i!2塩ms液、トリス−HCIMWR液におい
ても大差はないが、0.01〜0.1%程度のプルロニ
ックF68あるいはツウイーン80などの算イオン界面
活性剤から選ばれた溶解補助剤の存在で溶解性は高まる
。
で約5%以Fであり、それ以上ではタンパク乳濁色を呈
するようになる。この溶解性は塩化す]−リウム溶液、
リン/i!2塩ms液、トリス−HCIMWR液におい
ても大差はないが、0.01〜0.1%程度のプルロニ
ックF68あるいはツウイーン80などの算イオン界面
活性剤から選ばれた溶解補助剤の存在で溶解性は高まる
。
(3) 紫外線吸収
本発明のベプタイドの水溶液の28 On1mにおける
吸光度から求めた分子吸光係数F1%CM 280 nlは35であった。
吸光度から求めた分子吸光係数F1%CM 280 nlは35であった。
(4)温度安定性
本発明の糖ペブタイドの0.05%のプルロニックF6
8を含有するal17.2のりンN塩緩衝液を60℃±
0.5℃で1 vg間間熱熱ても、そのHBSAOの抗
原性は失われなかった。
8を含有するal17.2のりンN塩緩衝液を60℃±
0.5℃で1 vg間間熱熱ても、そのHBSAOの抗
原性は失われなかった。
(5) 呈色反応
本発明のベブタイドの水溶液について、ローリ−・フォ
リン法で試験した結果、ベブタイド特有の青色を呈した
。また6規定塩酸溶液中、110℃で22時間加水分解
した後ニンヒドリン反応で試験した結果、α−アミノ酸
にょる紫青色を呈した。糖類試験のためのα−ナフトー
ル硫酸反応(モリッシュ(Holish)反応)では紫
色を呈しフェノール硫酸反応でかっ色を♀して共に陽性
であった、 !6) II4成アミノ酸 本発明の糖ベプタイドを常法によって加水分解して、ア
ミノ酸自動分析装置を用いて、アミノ酸組成を求めた。
リン法で試験した結果、ベブタイド特有の青色を呈した
。また6規定塩酸溶液中、110℃で22時間加水分解
した後ニンヒドリン反応で試験した結果、α−アミノ酸
にょる紫青色を呈した。糖類試験のためのα−ナフトー
ル硫酸反応(モリッシュ(Holish)反応)では紫
色を呈しフェノール硫酸反応でかっ色を♀して共に陽性
であった、 !6) II4成アミノ酸 本発明の糖ベプタイドを常法によって加水分解して、ア
ミノ酸自動分析装置を用いて、アミノ酸組成を求めた。
結果は第1表のとおりである。
第1表
精製トIBsAQのアミノ酸組成に対する分析結果も第
1表に含めて示しであるが、この結果と本発明の糖ペブ
タイドの結果と比べるとき大きな差異は認められない。
1表に含めて示しであるが、この結果と本発明の糖ペブ
タイドの結果と比べるとき大きな差異は認められない。
このことからこの糖ベブタイドはHBsAoの主たる部
分を構成していることが推察される。
分を構成していることが推察される。
(7)糖質部分の構成糖
シアル酸はチオバルビッール酸法(デイ、アミツク(0
,八m1noff)法〕により、伯の糖は、試料をメタ
ノライシス後トリメチルシリル化し、ガスクロマド・マ
スフラグメントグラフィーによって、本発明の糖ベプタ
イドに含まれる糖の組成に関する分析を行った。結果は
第2表に示したとおりである。
,八m1noff)法〕により、伯の糖は、試料をメタ
ノライシス後トリメチルシリル化し、ガスクロマド・マ
スフラグメントグラフィーによって、本発明の糖ベプタ
イドに含まれる糖の組成に関する分析を行った。結果は
第2表に示したとおりである。
第2表
フコース 検出されず
マンノース 3.0% (2,4〜3.5%)
ガラクトース 2.3% (1,2〜3.2%
)グルコース 3.6% (2,8〜4.4
%)N−アヒチ/L/ 2.5% (2,2
〜2.7%)グルコ勺ミン N−アセチル 検出されず ガラクトサミン シアルM 0.2% 総糖含f1 11.6% (10〜12.
5%)(8) タンパク質と糖質の構成比率本発明の
糖ベブタイドのセミミクロケルブール法によるタンパク
質定量結果は87〜90%であった。残る13〜10%
の糖質は前記(9)記載の12.5〜10%とよく一致
する。
ガラクトース 2.3% (1,2〜3.2%
)グルコース 3.6% (2,8〜4.4
%)N−アヒチ/L/ 2.5% (2,2
〜2.7%)グルコ勺ミン N−アセチル 検出されず ガラクトサミン シアルM 0.2% 総糖含f1 11.6% (10〜12.
5%)(8) タンパク質と糖質の構成比率本発明の
糖ベブタイドのセミミクロケルブール法によるタンパク
質定量結果は87〜90%であった。残る13〜10%
の糖質は前記(9)記載の12.5〜10%とよく一致
する。
(9) 色及び形
本発明の糖ペブタイドは、乾燥させたときほぼ白色の不
定形粉末となった。
定形粉末となった。
本発明を更に具体的に説明するために以下実施例を掲げ
るが、実施例の記載は本発明をなんら限定するものでは
ない。
るが、実施例の記載は本発明をなんら限定するものでは
ない。
例1
HBSAQ陽性と判定されたヒト・プール血漿11を、
抗Has抗体グロブリン(ヤギ)結合セファロース4
B (anti−H8s alobulin coup
ledSepharose 4B)で作成したカラムを
通過さゼ、HBSACIをカラムに吸着させる。吸着カ
ラムは0.15M塩化塩化セシウム溶液して洗浄後、0
.4Mグリシン−HC1*衝液でH[3SAqを溶出さ
せる。
抗Has抗体グロブリン(ヤギ)結合セファロース4
B (anti−H8s alobulin coup
ledSepharose 4B)で作成したカラムを
通過さゼ、HBSACIをカラムに吸着させる。吸着カ
ラムは0.15M塩化塩化セシウム溶液して洗浄後、0
.4Mグリシン−HC1*衝液でH[3SAqを溶出さ
せる。
溶出液は0.15M塩化ナトリウム溶液で透析した後、
抗ヒト血漿抗体グロブリン(ヤギ)結合セファロース4
Bで作成したカラムを通過させ、ヒト血漿成分をカラム
に吸着させる。吸着せずに通過した溶液は濃縮した後、
塩化セシウムによりリニア・グレデイエント超遠心分離
を行い、密度1.19〜1.23の両分を集め、濃縮し
て2I!llと・した。
抗ヒト血漿抗体グロブリン(ヤギ)結合セファロース4
Bで作成したカラムを通過させ、ヒト血漿成分をカラム
に吸着させる。吸着せずに通過した溶液は濃縮した後、
塩化セシウムによりリニア・グレデイエント超遠心分離
を行い、密度1.19〜1.23の両分を集め、濃縮し
て2I!llと・した。
このものは抗ヒト血漿抗体グロブリン(ヤギ)に対して
免疫電気泳動を行った結果、ヒト血清成分の存在を認め
ず、電子顕微鏡観察で直径2201の均一なHBSAQ
の小型球形粒子から成り立っており、大型υ子の存在は
認めず、RP 1−1A法による測定で抗原価は1 :
1.280.000であつだ。回収率は52%であっ
た。この精製HBSAGをHB糖ベブタイドワクチン製
造の材料とした。
免疫電気泳動を行った結果、ヒト血清成分の存在を認め
ず、電子顕微鏡観察で直径2201の均一なHBSAQ
の小型球形粒子から成り立っており、大型υ子の存在は
認めず、RP 1−1A法による測定で抗原価は1 :
1.280.000であつだ。回収率は52%であっ
た。この精製HBSAGをHB糖ベブタイドワクチン製
造の材料とした。
N製HB S A Qの溶液に、ドデシル硫酸tトリウ
ム及び2−メルカプトエタノールをそれぞれ1W/V%
濃度となるように加え、100℃で2分間加熱処理した
後、別にあらかじめ0.1%ドデシル硫酸ナトリウム、
0.1%2−メルカプトエタノール及び0.15M塩化
ナトリウムを含有する1/100Mリンl!2塩緩衝液
、pl+7.2で平衡化したセファクリルS−200の
カラムを用いて37℃にてゲル濾過した。そのときの両
分像は第1図に示ずとおりである。
ム及び2−メルカプトエタノールをそれぞれ1W/V%
濃度となるように加え、100℃で2分間加熱処理した
後、別にあらかじめ0.1%ドデシル硫酸ナトリウム、
0.1%2−メルカプトエタノール及び0.15M塩化
ナトリウムを含有する1/100Mリンl!2塩緩衝液
、pl+7.2で平衡化したセファクリルS−200の
カラムを用いて37℃にてゲル濾過した。そのときの両
分像は第1図に示ずとおりである。
第1図のF3両分を集め、再ゲル濾過を行って混在して
いるF 画ヅ5成分(F3両分は主としてF 及びF4
両分成分から成り立っている)を完全に分離した侵、0
.5%のバイオ−ラッドAG−2と0.02%のプルロ
ニックF68を含有したリン酸緩衝液で透析する。透析
の終った液は0.02%プルロニックF68含有0.1
5M塩化犬トリウム溶液を加えて希釈して糖ベプタイド
が60μ9/dとなるように調製し、除菌濾過後1td
ずつ容器に小分けしたl−(F3ワクチン製剤510本
を得た。
いるF 画ヅ5成分(F3両分は主としてF 及びF4
両分成分から成り立っている)を完全に分離した侵、0
.5%のバイオ−ラッドAG−2と0.02%のプルロ
ニックF68を含有したリン酸緩衝液で透析する。透析
の終った液は0.02%プルロニックF68含有0.1
5M塩化犬トリウム溶液を加えて希釈して糖ベプタイド
が60μ9/dとなるように調製し、除菌濾過後1td
ずつ容器に小分けしたl−(F3ワクチン製剤510本
を得た。
このようにして得た)−IBワクチンを3匹のウサVに
注)1した。注射は1回0.5Mlを背部皮下及び皮肉
に行い、2′!A間間隔で3回注射した侵2週間接に採
血し、その血漿についてPHA法で11 B S抗体価
を測定したところ、それぞれ1:256.1 :8.0
00.1 :8,000の)−IBs抗体産生を認めた
。
注)1した。注射は1回0.5Mlを背部皮下及び皮肉
に行い、2′!A間間隔で3回注射した侵2週間接に採
血し、その血漿についてPHA法で11 B S抗体価
を測定したところ、それぞれ1:256.1 :8.0
00.1 :8,000の)−IBs抗体産生を認めた
。
例2
例1の粘製Hasへ〇を用い、実施例1で用いた2−メ
ルカプトエタノールの代りにジチオスレイトールを用い
て60℃、30分間加熱処理した後、別にあらかじめ0
.1%ドデシル1a酸ナトリウム、0.1%ジチオスレ
イトール及び0.15MI!化ナトリウムを含有する1
/100Mリン酸塩!1i液、pH7,2で平衡化した
セファデックスG200のカラムを用いて37℃にてゲ
ル線通した。
ルカプトエタノールの代りにジチオスレイトールを用い
て60℃、30分間加熱処理した後、別にあらかじめ0
.1%ドデシル1a酸ナトリウム、0.1%ジチオスレ
イトール及び0.15MI!化ナトリウムを含有する1
/100Mリン酸塩!1i液、pH7,2で平衡化した
セファデックスG200のカラムを用いて37℃にてゲ
ル線通した。
実施例1と同様にしてF3自分を集め、再ゲル濾過を行
って混在しているF4両分成分を完全に分離してから実
施例1とI[1様に操作して)−1[3ワクチン製剤1
20本を得た。
って混在しているF4両分成分を完全に分離してから実
施例1とI[1様に操作して)−1[3ワクチン製剤1
20本を得た。
このものの2匹のウサギに対するllBs抗体産(tは
、−1’Lぞれ1: 1.024及び4.096Fあっ
た。
、−1’Lぞれ1: 1.024及び4.096Fあっ
た。
例3
実施例1において、13画分を集め、再ゲル濾過して混
在しているF4両分成分を完全に分離したものにつき0
.02%のツウィーン8oを含有した0、15Mjm化
ナトリウム溶液で透析した後EiJじ液で希釈して糖ペ
プタイドが50μg/lII!となるように調製した。
在しているF4両分成分を完全に分離したものにつき0
.02%のツウィーン8oを含有した0、15Mjm化
ナトリウム溶液で透析した後EiJじ液で希釈して糖ペ
プタイドが50μg/lII!となるように調製した。
この液に0.1%の水酸化アルミニウムを加え、除菌濾
過後11Ieずつ容器に小分けしたH 8ワクチン製剤
590本を得た。
過後11Ieずつ容器に小分けしたH 8ワクチン製剤
590本を得た。
このようにして得たH Bワクチンを3四のモルモツ]
・に注射した。注射は実施例1と同様にして行った。結
果はそれぞれのモルモットに1:512.1 :32,
000,1 :32.000(7)HBS抗体産生を認
めた。
・に注射した。注射は実施例1と同様にして行った。結
果はそれぞれのモルモットに1:512.1 :32,
000,1 :32.000(7)HBS抗体産生を認
めた。
第1図は、実施例1においてゲル濾過して得たii!i
分の画分像グラフである。 図中、F、[、F 、F 及びF5それぞれの画分
e示す。
分の画分像グラフである。 図中、F、[、F 、F 及びF5それぞれの画分
e示す。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 次の理化学的性質を有するHB_sA_g由来の、糖ペ
プタイド:(a)分子量:SDS−ポリアクリルアミド
による電気泳動分析で24,000〜28,000、(
b)溶解性:水に対する溶解性は、中性付近において約
15%であり、それ以上ではタンパク乳濁色を呈する。 (c)紫外線吸収:280nmにおける分子吸光係数(
E^1^%_1_c_m)は35である。 (d)温度安定性:水溶液を60℃±0.5℃で1時間
加熱してもその抗原性は失われない。 (e)呈色反応:ローリー・フオリン反応によりペプタ
イドの、また加水分解後ニンヒドリン反応により、アミ
ノ酸の呈色反応を示し、またα−ナフトール硫酸反応(
モリシユ反応)及びフエノール硫酸反応で、それぞれ紫
色とかつ色の糖類の呈色反応を示す。 (f)構成アミノ酸:アスパラギン酸、スレオニン、セ
リン、グルタミン酸、プロリン、グリシン、アラニン、
システイン、バリン、メチオニン、イソロイシン、ロイ
シン、チロジン、フェニルアラニン、リジン、ヒスチジ
ン、アルギニン、(g)糖質部分の構成糖: マンノース(2.4〜3.5%)、ガラクトース(1.
2〜3.2%)、グルコース (2.8〜4.4%)、N−アセチルグルコサミン(2
.2〜2.7%)、シアル酸 (0.2%)で、フコースとN−アセチルガラクトサミ
ンは含有しない。 (h)タンパク質と糖質の構成比率: 重量比で糖質10〜13%、および (i)色及び形:ほぼ白色、不定形である、B型肝炎ワ
クチン。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP628788A JPH01279841A (ja) | 1988-01-14 | 1988-01-14 | 肝炎ワクチン |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP628788A JPH01279841A (ja) | 1988-01-14 | 1988-01-14 | 肝炎ワクチン |
Related Parent Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP4405979A Division JPS55136234A (en) | 1979-04-11 | 1979-04-11 | Hb glycopeptide vaccine |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01279841A true JPH01279841A (ja) | 1989-11-10 |
| JPH0349895B2 JPH0349895B2 (ja) | 1991-07-31 |
Family
ID=11634174
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP628788A Granted JPH01279841A (ja) | 1988-01-14 | 1988-01-14 | 肝炎ワクチン |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH01279841A (ja) |
-
1988
- 1988-01-14 JP JP628788A patent/JPH01279841A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0349895B2 (ja) | 1991-07-31 |
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