JPH01291162A - 免疫分析用固相抗体 - Google Patents
免疫分析用固相抗体Info
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- JPH01291162A JPH01291162A JP12112188A JP12112188A JPH01291162A JP H01291162 A JPH01291162 A JP H01291162A JP 12112188 A JP12112188 A JP 12112188A JP 12112188 A JP12112188 A JP 12112188A JP H01291162 A JPH01291162 A JP H01291162A
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Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
A、産業上の利用分野
本発明は、抗原抗体反応を利用した免疫学的測定法に用
いられる固相抗体に関するものである。
いられる固相抗体に関するものである。
B1発明の概要
本発明は、固相に抗体を吸着させて成り、抗原抗体反応
により抗体の濃度を測定するための固相抗体において、 固相表面の粗さを表面の最大高さで表示したときに0.
05μII〜300μmとなるように仕上げることによ
って、 抗体の固相への吸着量を増やして、免疫分析における検
出感度を高めるようにしたものである。
により抗体の濃度を測定するための固相抗体において、 固相表面の粗さを表面の最大高さで表示したときに0.
05μII〜300μmとなるように仕上げることによ
って、 抗体の固相への吸着量を増やして、免疫分析における検
出感度を高めるようにしたものである。
C1従来の技術
生化学の分野においては、近年、抗原抗体反応を利用し
て微量の抗原物質を精度良く分析測定する免疫分析法、
特に固相抗体を用いる免疫分析法が注目されている。こ
の固相抗体を用いる免疫分析法は固相に抗体を吸着不溶
化させて、これを用いて抗体の濃度を測定する方法であ
り、これには競合法と非競合法とがある。
て微量の抗原物質を精度良く分析測定する免疫分析法、
特に固相抗体を用いる免疫分析法が注目されている。こ
の固相抗体を用いる免疫分析法は固相に抗体を吸着不溶
化させて、これを用いて抗体の濃度を測定する方法であ
り、これには競合法と非競合法とがある。
競合法は一定量の標識抗原と測定すべき抗原とを一定量
の抗体に対して競争的に結合させ、抗体と結合した標識
抗原の量から測定すべき抗原の量を知る方法である。
の抗体に対して競争的に結合させ、抗体と結合した標識
抗原の量から測定すべき抗原の量を知る方法である。
非競合法の中には種々の測定系があるが、サンドイッチ
測定法がその代表的な方法である。このサンドイッチ測
定法は同相表面に吸着させた抗体に抗原をトラップさせ
、トラップされた抗原に更に酵素標識抗体を結合させ、
結合したこの酵素標識抗体の量から測定すべき抗原の量
を知る方法である。
測定法がその代表的な方法である。このサンドイッチ測
定法は同相表面に吸着させた抗体に抗原をトラップさせ
、トラップされた抗原に更に酵素標識抗体を結合させ、
結合したこの酵素標識抗体の量から測定すべき抗原の量
を知る方法である。
これらの方法において、今までの固相は表面あらさがほ
とんどないポリスチレン、ガラス、アクリルニトリル−
ブタジェン−スチレン共重合樹脂(ABS)などが多く
用いられていた。
とんどないポリスチレン、ガラス、アクリルニトリル−
ブタジェン−スチレン共重合樹脂(ABS)などが多く
用いられていた。
D1発明が解決しようとする課題
非競合法においては、固相への抗体吸着量を増加させる
と検出感度が向上すると考えられているが、上記のよう
な従来の固相抗体では、固相の材質によつて抗体の吸着
量に差はほとんどなく、固相浸漬液の組成、pH等を検
討しても、抗体の吸着量をこれ以上増大させることがで
きず、従って検出感度をこれ以上高めることができない
という問題点があった。こうした問題点を解決するため
に、同相材料として生体親和性が良いセラミックス、即
ちハイドロキシアパタイト、リン酸三カルシウム、バイ
オガラス、アルミナ単結晶及び多結晶、部分安定化ジル
コニアといった材料を用い、これらのボールを使用する
ことによって検出感度をある程度向上させることができ
た。
と検出感度が向上すると考えられているが、上記のよう
な従来の固相抗体では、固相の材質によつて抗体の吸着
量に差はほとんどなく、固相浸漬液の組成、pH等を検
討しても、抗体の吸着量をこれ以上増大させることがで
きず、従って検出感度をこれ以上高めることができない
という問題点があった。こうした問題点を解決するため
に、同相材料として生体親和性が良いセラミックス、即
ちハイドロキシアパタイト、リン酸三カルシウム、バイ
オガラス、アルミナ単結晶及び多結晶、部分安定化ジル
コニアといった材料を用い、これらのボールを使用する
ことによって検出感度をある程度向上させることができ
た。
しかしながら実用上はまだ不十分であり、本発明は更に
検出感度を向上させて免疫学的測定の実用価値を高める
ことを目的としている。
検出感度を向上させて免疫学的測定の実用価値を高める
ことを目的としている。
90課題を解決するための手段
本発明は同相への抗体吸着量を増加させるための手段と
して、固相の表面の粗さに着目し、その粗さを適当な大
きさにすることによって、抗体の物理的吸着力を強くし
ようとするものであり、具体的には、固相表面の粗さを
表面の最大高さで表示したときに0.05μm1〜30
0μ翼となるように仕上げたことを特徴とする。
して、固相の表面の粗さに着目し、その粗さを適当な大
きさにすることによって、抗体の物理的吸着力を強くし
ようとするものであり、具体的には、固相表面の粗さを
表面の最大高さで表示したときに0.05μm1〜30
0μ翼となるように仕上げたことを特徴とする。
F、実施例
以下の実施例においては、固相としてリン酸カルシウム
(Ca3(PO4)t)ボール (以下「TCPボール
」という。)を用い、ボール表面の粗さを第1表に示す
ように4つに分けて各ボールに割り当て、T−1〜T−
4の4種類のTCPボールを用意した。
(Ca3(PO4)t)ボール (以下「TCPボール
」という。)を用い、ボール表面の粗さを第1表に示す
ように4つに分けて各ボールに割り当て、T−1〜T−
4の4種類のTCPボールを用意した。
第1表
表面の粗さは万能表面形状測定機により測定し、JIS
B0659 に従って表面の最大高さRmaxで表示
した。ここで最大高さRtaaxとは、第1図に示すよ
うに断面曲線部から基準長さ分抜き取り、この抜き取り
部分の平均線に平行な2直線で当該抜き取り部分を挟み
、その2直線の間隔を断面曲線部の縦倍率の方向に測定
して、その値をミクロン単位で表わしたものである。ま
たT−1〜T−4ボールの各々の表面は、6.5xxφ
の大きさに焼結成形したリン酸カルシウムのボールを、
StCの研磨材と共にステンレス製の簡に入れ、これを
回転させることにより仕上げた。
B0659 に従って表面の最大高さRmaxで表示
した。ここで最大高さRtaaxとは、第1図に示すよ
うに断面曲線部から基準長さ分抜き取り、この抜き取り
部分の平均線に平行な2直線で当該抜き取り部分を挟み
、その2直線の間隔を断面曲線部の縦倍率の方向に測定
して、その値をミクロン単位で表わしたものである。ま
たT−1〜T−4ボールの各々の表面は、6.5xxφ
の大きさに焼結成形したリン酸カルシウムのボールを、
StCの研磨材と共にステンレス製の簡に入れ、これを
回転させることにより仕上げた。
実施例I TCPボールの抗体吸着量の比較同相に抗
体を被着させて固相抗体を得、これに標識抗原を付着さ
せて標識抗原の吸着mを測定することにより、間接的に
抗体の各固相(’l−1〜T−4)への吸着量を調べた
。
体を被着させて固相抗体を得、これに標識抗原を付着さ
せて標識抗原の吸着mを測定することにより、間接的に
抗体の各固相(’l−1〜T−4)への吸着量を調べた
。
■固相抗体の調製
先ずAFPを投入した動物の血清から免疫グロブリン(
以下r1gGJという。)を得、これをTCPボール(
T−1−T−4)に被着させて同相抗体を得た。ここで
AFPとは、α−フェトプロティンの略語であり、主に
肝癌の診断に用いられている抗原物質である。また同相
抗体は次のようにしテ調製した。即ち、0 、 1 m
97xQ(D I g Gを含む0.1mo12/(!
、pH7,5のリン酸緩衝液(以下「A液」という。)
にTCPボールを浸漬して温度4℃で1晩静置した。そ
の後TCPボールをA液で3回洗浄し、続いて0.Im
o&/CのNaC(!、0.1%BSA(0,1%ウシ
血清アルブミン)及び0.1%N a N 3を含む0
.01++o&/eリン酸緩衝液(pH7,0)(以下
「B液」という。)で3回洗浄した後、TCPボールを
当該混合液に浸漬して温度4℃で保存する。こうしてT
gGによりコーティングされたTCPボール、即ち固相
抗体が得られる。
以下r1gGJという。)を得、これをTCPボール(
T−1−T−4)に被着させて同相抗体を得た。ここで
AFPとは、α−フェトプロティンの略語であり、主に
肝癌の診断に用いられている抗原物質である。また同相
抗体は次のようにしテ調製した。即ち、0 、 1 m
97xQ(D I g Gを含む0.1mo12/(!
、pH7,5のリン酸緩衝液(以下「A液」という。)
にTCPボールを浸漬して温度4℃で1晩静置した。そ
の後TCPボールをA液で3回洗浄し、続いて0.Im
o&/CのNaC(!、0.1%BSA(0,1%ウシ
血清アルブミン)及び0.1%N a N 3を含む0
.01++o&/eリン酸緩衝液(pH7,0)(以下
「B液」という。)で3回洗浄した後、TCPボールを
当該混合液に浸漬して温度4℃で保存する。こうしてT
gGによりコーティングされたTCPボール、即ち固相
抗体が得られる。
■標識抗原吸着量の測定
抗原物質であるAFPの固相抗体への吸着量を測定する
ために、標識である1ffiJ をAFPに結合して
I″J−AFP を得、これを標識抗原として用いた。
ために、標識である1ffiJ をAFPに結合して
I″J−AFP を得、これを標識抗原として用いた。
モして固相抗体を、約2 X 10 ”’cpa+の”
5l−AFP 100μ12と0〜1000r+y/
jcの範囲から選ばれた濃度のAFP 100μQと上
記のB液100μgとの混合液中に1晩浸漬し、洗浄液
γ−ウェルカウンタで放射線量を計数した。API)6
度(n9/IIQ)と放射線1(ape)との関係は第
2図に示すようであった。第2図中実線(1)〜(4)
は夫々TCPボールT−1〜T−4を用いた実験に対応
している。
5l−AFP 100μ12と0〜1000r+y/
jcの範囲から選ばれた濃度のAFP 100μQと上
記のB液100μgとの混合液中に1晩浸漬し、洗浄液
γ−ウェルカウンタで放射線量を計数した。API)6
度(n9/IIQ)と放射線1(ape)との関係は第
2図に示すようであった。第2図中実線(1)〜(4)
は夫々TCPボールT−1〜T−4を用いた実験に対応
している。
■抗体吸着量の評価
第2図は評価抗原の同相抗体への吸着量を示した結果で
あるが、抗体(IgG)の固相(TCPボール)への吸
着量と標識抗原の同相抗体への吸着量とは対応関係にあ
ることから、第2図は抗体の固相への吸着量を示した結
果といえる。この結果から抗体吸着量は’r−2.T−
3の固相の方がT−1,1−4の固相よりも多いことが
わかる。
あるが、抗体(IgG)の固相(TCPボール)への吸
着量と標識抗原の同相抗体への吸着量とは対応関係にあ
ることから、第2図は抗体の固相への吸着量を示した結
果といえる。この結果から抗体吸着量は’r−2.T−
3の固相の方がT−1,1−4の固相よりも多いことが
わかる。
その理由については、T−2,T−3の表面の粗さが適
度であるため物理的な吸着力が強いことに起因している
と考えられる。
度であるため物理的な吸着力が強いことに起因している
と考えられる。
実施例2 標識抗体の非特異的吸着率の比較標識抗体と
して実施例1の(1)項で得たIKGにCOD (グル
コースオキシダーゼ)を結合したI gG−CODを用
い、これの同相抗体への非特異的吸着率を以下のように
して調べた。
して実施例1の(1)項で得たIKGにCOD (グル
コースオキシダーゼ)を結合したI gG−CODを用
い、これの同相抗体への非特異的吸着率を以下のように
して調べた。
■マレイミドCODの調製
0 、 1 rao(1/Qのリン酸緩衝液を0.3x
(lずつ入れた試験管を4本用意し、各々にCODを約
3119ずつ入れ、更にサクシニミジル−4−マレイミ
ドブチレイト(GMBS)を、CODとCMBSのモル
比が1=50となるように添加する。こうして得られた
溶液を、0 、 1 taoQ/Qのリン酸緩衝液で平
衡化した商品名セファデックスG25のカラム(1x3
0cm、ファルマシア製)にl 2 xff/hour
の速度で通して脱塩処理し、その溶出液を試験管に1x
Qずつ分取してマレイミドCODを得る。
(lずつ入れた試験管を4本用意し、各々にCODを約
3119ずつ入れ、更にサクシニミジル−4−マレイミ
ドブチレイト(GMBS)を、CODとCMBSのモル
比が1=50となるように添加する。こうして得られた
溶液を、0 、 1 taoQ/Qのリン酸緩衝液で平
衡化した商品名セファデックスG25のカラム(1x3
0cm、ファルマシア製)にl 2 xff/hour
の速度で通して脱塩処理し、その溶出液を試験管に1x
Qずつ分取してマレイミドCODを得る。
■SH−1gGの調製
実施例1の(1)項で得たIgGを0.005so(1
/(lのEDTAを含む0 、 15o12/ (lの
リン酸緩衝液(pH6,0)2xσに加え、この液とS
−アセチルメルカプトこはく酸とIgGとがモル比で3
00 : lとなるようにD M P (N −dim
etylformasiide)に添加して溶解し、室
温で30分間撹拌する。次いでこの溶液を0 、 I
moI2/(lのトリス−塩酸(pH7,0) 0.
1x(1,O,ItaoQ/Q)EDTA (p14
7.0)0.02xQ、及び1no(/?7)ヒドロキ
シアミン水溶液(pH7,0)0.1χQの混合液に添
加して温度30℃で4分間反応させ、ソノ後コノ反応液
を、0. O05no(!/(!EDTAを含む0 、
l moQ、/ (lのリン酸緩衝液(p H6、
0)で平衡化した商品名セファデックスG25のカラム
(I X 30cm、ファルマシア製)に12 z(1
/ hourの速度で通すことにより脱塩処理を行い、
溶出液を試験管にLx(lずつ分取することによりS
H基の結合したIKGを得、これを集めて水冷中のコロ
ジオンバックで濃縮し、こうしてSH−I gGを得る
。
/(lのEDTAを含む0 、 15o12/ (lの
リン酸緩衝液(pH6,0)2xσに加え、この液とS
−アセチルメルカプトこはく酸とIgGとがモル比で3
00 : lとなるようにD M P (N −dim
etylformasiide)に添加して溶解し、室
温で30分間撹拌する。次いでこの溶液を0 、 I
moI2/(lのトリス−塩酸(pH7,0) 0.
1x(1,O,ItaoQ/Q)EDTA (p14
7.0)0.02xQ、及び1no(/?7)ヒドロキ
シアミン水溶液(pH7,0)0.1χQの混合液に添
加して温度30℃で4分間反応させ、ソノ後コノ反応液
を、0. O05no(!/(!EDTAを含む0 、
l moQ、/ (lのリン酸緩衝液(p H6、
0)で平衡化した商品名セファデックスG25のカラム
(I X 30cm、ファルマシア製)に12 z(1
/ hourの速度で通すことにより脱塩処理を行い、
溶出液を試験管にLx(lずつ分取することによりS
H基の結合したIKGを得、これを集めて水冷中のコロ
ジオンバックで濃縮し、こうしてSH−I gGを得る
。
■I gG−CODの調製
上記の■、■項で夫々得られたマレイミドCODとSH
−I gGとを等モルずつ混合して、温度30℃で1時
間静置後、温度4℃で1晩放置する。
−I gGとを等モルずつ混合して、温度30℃で1時
間静置後、温度4℃で1晩放置する。
そしてこの溶液を、0 、005noQ/QのEDTA
を含む0 、 1 IaoQ/(lのリン酸緩衝液(p
f(6、5)で平衡化した商品名セファクリル300
のカラム(I X 90 ctss ファルマシア製)
に6 x(1/ hourの速度で通して溶出させ、そ
の溶出液を試験管に1峠ずつ分取してI gG−COD
標識抗体を集める。
を含む0 、 1 IaoQ/(lのリン酸緩衝液(p
f(6、5)で平衡化した商品名セファクリル300
のカラム(I X 90 ctss ファルマシア製)
に6 x(1/ hourの速度で通して溶出させ、そ
の溶出液を試験管に1峠ずつ分取してI gG−COD
標識抗体を集める。
そしてこの標識抗体に0.1%のN a N s、0.
1%のウシ血清アルブミン(BSA)となるように添加
し、温度4℃で保存する。
1%のウシ血清アルブミン(BSA)となるように添加
し、温度4℃で保存する。
■非特異的吸着率の判定
先ず標識抗体を上記のC液で100倍に希釈した液を0
.1xQ採取し、これにC液を0.2x(l加えた溶液
に固相抗体を浸漬して、室温で1晩静置する。その後固
相抗体を取り出して蒸留水により3回洗浄し、新しい試
験管に移し変える。次いでこの試験管に0.5noQ/
(lのグルコースを含む0 、 Of tao(1/(
lの酢酸緩衝液(pH5,1)を0.3xQ添加して温
度37℃で2時間静置する。
.1xQ採取し、これにC液を0.2x(l加えた溶液
に固相抗体を浸漬して、室温で1晩静置する。その後固
相抗体を取り出して蒸留水により3回洗浄し、新しい試
験管に移し変える。次いでこの試験管に0.5noQ/
(lのグルコースを含む0 、 Of tao(1/(
lの酢酸緩衝液(pH5,1)を0.3xQ添加して温
度37℃で2時間静置する。
しかる後にこの溶液の0.1xQをサンプリングし、’
l x l O−’a+of2/ 12のルミノールを
含む0.2mof2/ぐの炭酸緩衝液(p H9、8)
を0.5z12加え、更に6 x 10−”moQ/(
lのフェリシアン化カリ水溶液0.5xQを添加して1
5秒待った後30秒間の発光量を積算する。この発光量
は固相抗体に非特異的吸着された標識抗体の量XIに対
応する。−方標識抗体の総量X、は、標識抗体をC液で
100倍に希釈した液(0,1,n)について同様にし
て発光量を求めることにより知ることができる。
l x l O−’a+of2/ 12のルミノールを
含む0.2mof2/ぐの炭酸緩衝液(p H9、8)
を0.5z12加え、更に6 x 10−”moQ/(
lのフェリシアン化カリ水溶液0.5xQを添加して1
5秒待った後30秒間の発光量を積算する。この発光量
は固相抗体に非特異的吸着された標識抗体の量XIに対
応する。−方標識抗体の総量X、は、標識抗体をC液で
100倍に希釈した液(0,1,n)について同様にし
て発光量を求めることにより知ることができる。
従って非特異的吸着率は(x+/xt) X l 00
として算出され、その結果は第2表に示す通りであった
。
として算出され、その結果は第2表に示す通りであった
。
第2表
■非特異的吸着率の評価
非特異的吸着率はサンドイッチ測定法の感度を左右する
主な要因の1つであるが、第2表かられかるようにTC
Pボール(T−1−T−4)の間では差がない。これは
抗体が同相へ吸着した後、牛血清アルブミンによるブロ
ックが、各TCPボールの固相に対して同程度に有効で
あるためと考えられる。
主な要因の1つであるが、第2表かられかるようにTC
Pボール(T−1−T−4)の間では差がない。これは
抗体が同相へ吸着した後、牛血清アルブミンによるブロ
ックが、各TCPボールの固相に対して同程度に有効で
あるためと考えられる。
実施例3 標識抗体の非特異的吸着率
固相抗体としては、CEAを投入した動物の血清から得
たIgGをTCPボール(T−1−T−4)に被着させ
たものを用い、また標識抗体としては、CEAを投入し
た動物の血清から得たIgGにCODを結合したものを
用い、実施例2と同様にして非特異的吸着率を調べた。
たIgGをTCPボール(T−1−T−4)に被着させ
たものを用い、また標識抗体としては、CEAを投入し
た動物の血清から得たIgGにCODを結合したものを
用い、実施例2と同様にして非特異的吸着率を調べた。
結果は第3表に示す通りである。なおCEAは癌胎児性
抗原の略語であり、大腸癌の診断に用いられている物質
である。
抗原の略語であり、大腸癌の診断に用いられている物質
である。
第3表
第3表かられかるように抗原物質としてCEAを用いた
場合にも非特異的吸着率は固相表面の粗さに左右されな
いといえる。
場合にも非特異的吸着率は固相表面の粗さに左右されな
いといえる。
実施例4 測定範囲、検出限界の比較
■比較実験
固相抗体としては実施例1と同様のものを用い、標識抗
体としては実施例2と同様のものを用いて、AFP濃度
(ny/x(1)と化学発光強度(cpa+)との関係
を示す検量線を求める実験を次のようにして行った。
体としては実施例2と同様のものを用いて、AFP濃度
(ny/x(1)と化学発光強度(cpa+)との関係
を示す検量線を求める実験を次のようにして行った。
固相抗体(T−1−T−4)の各々を、上記のB液で希
釈したAFPの標準液0.1xQにB液0.2xQを添
加した溶液中に浸漬し、室温で6時間静置する。その後
固相抗体を取り出して蒸留水により3回洗浄し、標識抗
体をB液で最適希釈倍率に希釈した溶液0.1x(lと
B液0.2dとの混合液に、洗浄後の固相抗体を浸漬し
て室温で1晩静置する。そして固相抗体を蒸留水で3回
洗浄してから新しい試験管に移し変え、この試験管に0
.5i(!/12のグルコースを含む0 、01 ta
oQ、/(1の酢酸緩衝液(pH5,1)を0.31添
加して温度37℃で2時間静置する。しかる後にこの溶
液の0,1zQをサンプリングし、2 X 10−’+
of2/lのルミノールを含む0.2moN/ffの炭
酸緩衝液(pH9,8)を0 、5 ytQ加え、更に
6X10−’moQ/(lのフェリシアン化カリ水溶液
0.5x(lを添加して15秒待った後30秒間の発光
量をhtuし、化学発光強度(count/ 305e
c)を求めた。この化学発光強度とAFPとの関係は第
3図に示す通りである。
釈したAFPの標準液0.1xQにB液0.2xQを添
加した溶液中に浸漬し、室温で6時間静置する。その後
固相抗体を取り出して蒸留水により3回洗浄し、標識抗
体をB液で最適希釈倍率に希釈した溶液0.1x(lと
B液0.2dとの混合液に、洗浄後の固相抗体を浸漬し
て室温で1晩静置する。そして固相抗体を蒸留水で3回
洗浄してから新しい試験管に移し変え、この試験管に0
.5i(!/12のグルコースを含む0 、01 ta
oQ、/(1の酢酸緩衝液(pH5,1)を0.31添
加して温度37℃で2時間静置する。しかる後にこの溶
液の0,1zQをサンプリングし、2 X 10−’+
of2/lのルミノールを含む0.2moN/ffの炭
酸緩衝液(pH9,8)を0 、5 ytQ加え、更に
6X10−’moQ/(lのフェリシアン化カリ水溶液
0.5x(lを添加して15秒待った後30秒間の発光
量をhtuし、化学発光強度(count/ 305e
c)を求めた。この化学発光強度とAFPとの関係は第
3図に示す通りである。
■測定範囲、検出限界の評価
第3図のグラフかられかるように、低濃度域では、T−
2,T−3ボールを用いた測定の方がT−1,T−4ボ
ールを用いた測定よりも高い発光強度を示しており、従
って前者の方が後者よりも測定範囲、検出限界が広い。
2,T−3ボールを用いた測定の方がT−1,T−4ボ
ールを用いた測定よりも高い発光強度を示しており、従
って前者の方が後者よりも測定範囲、検出限界が広い。
この理由は実施例1の結果にて示されるように、’r−
2.T−3ボールの表面の粗さが抗体吸着に適している
ため、同相への抗体吸着量が多くなったことによるもの
である。
2.T−3ボールの表面の粗さが抗体吸着に適している
ため、同相への抗体吸着量が多くなったことによるもの
である。
実施例5 測定範囲、検出限界の比較
同相抗体としては、CEAを投入した動物の血清から得
たIgGをTCPボール(1−1−T−4)に被着させ
たものを用い、また標識抗体としては、CEAを投入し
た動物の血清から得たIgGにCODを結合したものを
用い、CEA濃度(r+9/xI2)と化学発光強度と
の関係を示す検量線を求める実験を実施例4と同様にし
て行った。結果は第4図に示す通りであり、実施例4と
同様にT−1,T−3ボールを用いた測定の方がT−1
゜T−4ボールを用いた測定よりも測定範囲、検出限界
が広い。
たIgGをTCPボール(1−1−T−4)に被着させ
たものを用い、また標識抗体としては、CEAを投入し
た動物の血清から得たIgGにCODを結合したものを
用い、CEA濃度(r+9/xI2)と化学発光強度と
の関係を示す検量線を求める実験を実施例4と同様にし
て行った。結果は第4図に示す通りであり、実施例4と
同様にT−1,T−3ボールを用いた測定の方がT−1
゜T−4ボールを用いた測定よりも測定範囲、検出限界
が広い。
ここで固相材料としてCa a(P O4):iを用い
る代わりに他の材料例えばハイドロキシアパタイト、ア
ルミナ、バイオガラス、部分安定化ジルコニアあるいは
アルミナ単結量を使用して上記実施例と同様な実験を行
ったところ同様な結果が得られた。
る代わりに他の材料例えばハイドロキシアパタイト、ア
ルミナ、バイオガラス、部分安定化ジルコニアあるいは
アルミナ単結量を使用して上記実施例と同様な実験を行
ったところ同様な結果が得られた。
G2発明の効果
本発明は固相抗体の固相材料表面の粗さを、表面の最大
高さが0.05μjI〜300μ真となるように仕上げ
ているため、実施例から裏付けられるように抗体の固相
への吸着量が多く、従って免疫分析における検出感度を
高めることができる。
高さが0.05μjI〜300μ真となるように仕上げ
ているため、実施例から裏付けられるように抗体の固相
への吸着量が多く、従って免疫分析における検出感度を
高めることができる。
第1図は固相表面の粗さを示す説明図、第2図は抗体吸
着量を比較して示すグラフ、第3図及び第4図は各々抗
原の濃度測定範囲を示すグラフである。 稼1年7□4B 昭和63年特許願第121121号 2、発明の名称 免疫分析用同相抗体 3 補正をする者 事件との関係 出願人 (610) 株式会社明 電 舎 4、代理人〒104 東京都中央区明石町1番29号 液済会ビル外2名 5、補正の対象 (1)明細書の特許請求の範囲の欄。 (2)明細書の発明の詳細な説明の欄。 6、補正の内容 (1)特許請求の範囲を別紙のとおり補正する。 (2)明細書第2頁第2行の「抗体の濃度」を「抗原の
濃度」と訂正する。 別 紙 特許請求の範囲 (1)固相に抗体を吸着させて成り、抗原抗体定するた
めの固相抗体において、 固相表面の粗さが表面の最大高さで表示したときに0.
05μII〜300μ肩であることを特徴とずろ免疫分
析用固相抗体。
着量を比較して示すグラフ、第3図及び第4図は各々抗
原の濃度測定範囲を示すグラフである。 稼1年7□4B 昭和63年特許願第121121号 2、発明の名称 免疫分析用同相抗体 3 補正をする者 事件との関係 出願人 (610) 株式会社明 電 舎 4、代理人〒104 東京都中央区明石町1番29号 液済会ビル外2名 5、補正の対象 (1)明細書の特許請求の範囲の欄。 (2)明細書の発明の詳細な説明の欄。 6、補正の内容 (1)特許請求の範囲を別紙のとおり補正する。 (2)明細書第2頁第2行の「抗体の濃度」を「抗原の
濃度」と訂正する。 別 紙 特許請求の範囲 (1)固相に抗体を吸着させて成り、抗原抗体定するた
めの固相抗体において、 固相表面の粗さが表面の最大高さで表示したときに0.
05μII〜300μ肩であることを特徴とずろ免疫分
析用固相抗体。
Claims (1)
- (1)固相に抗体を吸着させて成り、抗原抗体反応によ
り抗体の濃度を測定するための固相抗体において、 固相表面の粗さが表面の最大高さで表示したときに0.
05μm〜300μmであることを特徴とする免疫分析
用固相抗体。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP12112188A JPH01291162A (ja) | 1988-05-18 | 1988-05-18 | 免疫分析用固相抗体 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP12112188A JPH01291162A (ja) | 1988-05-18 | 1988-05-18 | 免疫分析用固相抗体 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01291162A true JPH01291162A (ja) | 1989-11-22 |
Family
ID=14803403
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP12112188A Pending JPH01291162A (ja) | 1988-05-18 | 1988-05-18 | 免疫分析用固相抗体 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH01291162A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB2307552A (en) * | 1995-11-21 | 1997-05-28 | Asahi Optical Co Ltd | Evaluating an immunoassay test sheet by immunoassay |
-
1988
- 1988-05-18 JP JP12112188A patent/JPH01291162A/ja active Pending
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB2307552A (en) * | 1995-11-21 | 1997-05-28 | Asahi Optical Co Ltd | Evaluating an immunoassay test sheet by immunoassay |
| GB2307552B (en) * | 1995-11-21 | 2000-02-23 | Asahi Optical Co Ltd | Method of evaluating a testing element for antigens or antibodies |
| US6040196A (en) * | 1995-11-21 | 2000-03-21 | Asahi Kogaku Kogyo Kabushiki Kaisha | Method of evaluating a testing element for antigens or antibodies |
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