JPH01309682A - 動物細胞培養用基体 - Google Patents
動物細胞培養用基体Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
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Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明は、動物細胞培養用基体に関する。−船釣に動物
細胞は付着依存性細胞であり大量培養する際、何等かの
基体に付着又は接着させる必要があるが、本発明は基体
への動物細胞接着性を改良した細胞培養用基体に関する
ものである。
細胞は付着依存性細胞であり大量培養する際、何等かの
基体に付着又は接着させる必要があるが、本発明は基体
への動物細胞接着性を改良した細胞培養用基体に関する
ものである。
[従来の技術]
従来、動物の生産する生理活性物質など有用成分を得る
ために、動物細胞の大量培養によって生産する方法が検
討されてきた。しかしながら動物細胞の培養には特殊な
細胞を除いて基体に接着していないと増殖できない接着
依存性細胞が一般的である。これらあ細胞は、多糖類や
合性高分子をポリマー基体とする場合、通常基体に対す
る接着性が充分でなく細胞の進展・増殖が順調に行われ
ないのが実状である。このため動物細胞の接着性改良の
ため基体の表面に正の荷電を持たせる方法(Cytod
ex 1 、ファルマシア製マイクロキャリアー)やコ
ラーゲンをコーティング処理する方法(Cyt。
ために、動物細胞の大量培養によって生産する方法が検
討されてきた。しかしながら動物細胞の培養には特殊な
細胞を除いて基体に接着していないと増殖できない接着
依存性細胞が一般的である。これらあ細胞は、多糖類や
合性高分子をポリマー基体とする場合、通常基体に対す
る接着性が充分でなく細胞の進展・増殖が順調に行われ
ないのが実状である。このため動物細胞の接着性改良の
ため基体の表面に正の荷電を持たせる方法(Cytod
ex 1 、ファルマシア製マイクロキャリアー)やコ
ラーゲンをコーティング処理する方法(Cyt。
dex3.ファルマシア製マイクロキャリアー)が用い
られてぎた。
られてぎた。
[発明が解決しようとする問題点]
しかしながら、従来用いられてきたこれらの動物細胞培
養用基体のうち表面に正の荷電を持たせた基体は、接着
性が充分でないのが実状であり、またコラーゲンをコー
ティング処理した基体は滅菌操作や大量培養操作におい
て、剥離や変性を受けることがしばしば見られる等の問
題があった。
養用基体のうち表面に正の荷電を持たせた基体は、接着
性が充分でないのが実状であり、またコラーゲンをコー
ティング処理した基体は滅菌操作や大量培養操作におい
て、剥離や変性を受けることがしばしば見られる等の問
題があった。
また基体の表面処理材料が生体内から得られた成分やそ
の誘導体を用いていることや、上記の動物細胞培養基体
を使用する条件として培地中に牛胎児血清(以下FC5
と記載)を必要とすることから・大量培養を行った後、
培養液から有用成分だけを精製するのは非常に困難であ
フた。
の誘導体を用いていることや、上記の動物細胞培養基体
を使用する条件として培地中に牛胎児血清(以下FC5
と記載)を必要とすることから・大量培養を行った後、
培養液から有用成分だけを精製するのは非常に困難であ
フた。
[問題点を解決するための手段]
本発明者らは、上記問題点に鑑みて動物細胞培養を行う
際、接着性付与良好で有用成分の精製が容易な動物細胞
培養用基体を見いだすべく鋭意検討した結果、本発明に
到達した。すなわち、本発明は動物細胞培養用のポリマ
ー基体に対してアルギニン−グリシン−アスパラギン酸
を必須構成単位として有する接着性ペプチドを共有結合
させてなる動物細胞の接着性を改良した動物細胞培養用
基体である。
際、接着性付与良好で有用成分の精製が容易な動物細胞
培養用基体を見いだすべく鋭意検討した結果、本発明に
到達した。すなわち、本発明は動物細胞培養用のポリマ
ー基体に対してアルギニン−グリシン−アスパラギン酸
を必須構成単位として有する接着性ペプチドを共有結合
させてなる動物細胞の接着性を改良した動物細胞培養用
基体である。
本発明に用いられる接着性ペプチドとしては、以下の3
つのアミノ酸すなわちアルギニン(以下Argと記載)
、グリシン(以下G1yと記載)、アスパラギン酸(以
下Aspと記載)を必須成分として結合した一般式 %式%( X、 、X2:Oまたは1〜30個のアミノ酸残基のペ
プチド鎖。アミノ酸の種類及び結合 の順序は特に限定しない。
つのアミノ酸すなわちアルギニン(以下Argと記載)
、グリシン(以下G1yと記載)、アスパラギン酸(以
下Aspと記載)を必須成分として結合した一般式 %式%( X、 、X2:Oまたは1〜30個のアミノ酸残基のペ
プチド鎖。アミノ酸の種類及び結合 の順序は特に限定しない。
を構成成分とする分子量3 、000以下のペプチドが
あげられる。好ましくは上記Ar5−Gly−Aspに
セリン(以下Serと記載)の結合した一般式 %式%(2) Y、、’/2:Oまたは1〜30個のアミノ酸残基のペ
プチド鎖。アミノ酸の種類及び結合 の順序は特に限定しない。
あげられる。好ましくは上記Ar5−Gly−Aspに
セリン(以下Serと記載)の結合した一般式 %式%(2) Y、、’/2:Oまたは1〜30個のアミノ酸残基のペ
プチド鎖。アミノ酸の種類及び結合 の順序は特に限定しない。
を構成成分とする分子量3 、000以下のペプチドで
あり、特に好ましくは疎水性のアミノ酸であるプロリン
(以下Proと記載)を含む一般式%式%(3) Z1$Z2:Proを1個以上含む1〜30個のアミノ
酸残基のペプチド鎖。アミノ酸の種類及び 結合の順序は特に限定しない。
あり、特に好ましくは疎水性のアミノ酸であるプロリン
(以下Proと記載)を含む一般式%式%(3) Z1$Z2:Proを1個以上含む1〜30個のアミノ
酸残基のペプチド鎖。アミノ酸の種類及び 結合の順序は特に限定しない。
を構成成分とする分子−m3,000以下のペプチドで
ある。一般式(1)、(2)、(3)におけるX4、×
2、Y4、Y2.2、.22のアミノ酸残基な構成する
アミノ酸としては特に限定されず、生化学データブック
I P29〜P59(日本生化学金線・東京化学同
人発行)に記載されているアミノ酸が挙げられる。
ある。一般式(1)、(2)、(3)におけるX4、×
2、Y4、Y2.2、.22のアミノ酸残基な構成する
アミノ酸としては特に限定されず、生化学データブック
I P29〜P59(日本生化学金線・東京化学同
人発行)に記載されているアミノ酸が挙げられる。
本発明に係わる接着性ペプチドに用いられるアミノ酸は
、L体、0体どちらでもよいが、好ましくはL体である
。また構成アミノ酸であるProは、接着性ペプチドに
疎水性の性質を与えることから、ポリマー基体に結合反
応させる際DMF (ジメチルホルムアミド)等の有機
溶媒を反応溶媒として用いることが出来ることから、従
来の水溶液中の反応と比較して反応効率の向上が図れる
。
、L体、0体どちらでもよいが、好ましくはL体である
。また構成アミノ酸であるProは、接着性ペプチドに
疎水性の性質を与えることから、ポリマー基体に結合反
応させる際DMF (ジメチルホルムアミド)等の有機
溶媒を反応溶媒として用いることが出来ることから、従
来の水溶液中の反応と比較して反応効率の向上が図れる
。
本発明に係わる接着性ペプチドの分子量は、通。
常3,000以下である。3 、000を越える場合、
抗原になる可能性があり、10,000以上では完全抗
原として作用することから本発明に使用するペプチドの
分子量を3,000以下とした。
抗原になる可能性があり、10,000以上では完全抗
原として作用することから本発明に使用するペプチドの
分子量を3,000以下とした。
ペプチドの合成方法としては特に限定しないが、液相法
、固相法および固相法を応用した自動合成装置による合
成方法などが挙げられる。これらの合成方法の詳細につ
いては、゛生化学実験講座・タンパク質の化学IV P
2O7〜P495 (日本生化学金線・東京化学同人発
行)、続生化学実験講座・タンパク質の化学(下) P
641−P694 (日本生化学金線・東京化学同人発
行)等に記載されている。
、固相法および固相法を応用した自動合成装置による合
成方法などが挙げられる。これらの合成方法の詳細につ
いては、゛生化学実験講座・タンパク質の化学IV P
2O7〜P495 (日本生化学金線・東京化学同人発
行)、続生化学実験講座・タンパク質の化学(下) P
641−P694 (日本生化学金線・東京化学同人発
行)等に記載されている。
動物培養用基体を作成するためのポリマー基体としては
、従来用いられているセルロース、デキストラン、キチ
ン等の多糖類:ナイロン、ガラス繊維、ポリビニルアル
コール、ポリエステル、ポリプロピレン、ポリカーボネ
ート、ウレタン樹脂、フッ素樹脂、シリコーン樹脂等の
合成高分子が挙げられる。これらポリマー基体は、ビー
ズ状、フオーム状、エラストマー状、フィルム状、多孔
膜、中空管、中空糸、繊維等成形品に加工された物が用
いられる。これらの中で好ましいものは、大量培養の効
率の面からビーズ状のポリマー基体である。
、従来用いられているセルロース、デキストラン、キチ
ン等の多糖類:ナイロン、ガラス繊維、ポリビニルアル
コール、ポリエステル、ポリプロピレン、ポリカーボネ
ート、ウレタン樹脂、フッ素樹脂、シリコーン樹脂等の
合成高分子が挙げられる。これらポリマー基体は、ビー
ズ状、フオーム状、エラストマー状、フィルム状、多孔
膜、中空管、中空糸、繊維等成形品に加工された物が用
いられる。これらの中で好ましいものは、大量培養の効
率の面からビーズ状のポリマー基体である。
本発明に用いる接着性ペプチドを動物培養用基体に用い
るには、本ペプチドを基体に共有結合させる必要がある
。結合させる方法としては特に限定しないが、基体表面
の水酸基、アミノ基、カルボン酸基等と接着性ペプチド
とを架橋剤を利用して結合させる合成法、基体表面に反
応性官能基がない場合反応性官能基を導入Lノで結合さ
せる合成法等が挙げられる。例えば、臭化シアン、酸ア
ジド、水溶性カルボジイミド等を利用したペプチド結合
合成法;基体に導入した芳香族アミノ基と亜硝酸ナトリ
ウムとを反応させて得たジアゾニウム化合物を利用する
ジアゾ合成法;ハロゲン化アセチル誘導体、トリアジニ
ル誘導体を利用するアルギル化法;グルタルアルデヒド
等のアルデヒド基と基体のアミノ基との反応を利用する
シップ塩基□形成合成法;カルボシル基、アミ7ノ基、
アルデヒド基及びイソニトリル基を共存させて縮合を行
うUgi反応合成法;トレシルエステルを利用するトレ
シルクロリド合成法;スペリン酸ジ−N−ヒドロキシス
クシンイミドエステル、酒石酸シート1−・ヒドロキシ
スクシンイミドエステ等ルの活性エステル基を用いる合
成法;ジメチルスベロイミデートニ塩基酸、メチル−4
−メルカプトブチルイミデート塩酸塩、メチル−4−ア
ジドベンゾイミデート塩酸塩等のイミドエステル基を用
いる合成法;p−フェニレンビスマレイミド等のマレイ
ミド基を用いる合成法;基体の水酸基をN、N’−カル
ボニルジイミダゾールで活性化する合成法が挙げられる
。上記合成法は、水溶液中やDMFやピリジンのような
極性有機溶媒中で行うことができる。好ましい溶媒は極
性有機溶媒である。
るには、本ペプチドを基体に共有結合させる必要がある
。結合させる方法としては特に限定しないが、基体表面
の水酸基、アミノ基、カルボン酸基等と接着性ペプチド
とを架橋剤を利用して結合させる合成法、基体表面に反
応性官能基がない場合反応性官能基を導入Lノで結合さ
せる合成法等が挙げられる。例えば、臭化シアン、酸ア
ジド、水溶性カルボジイミド等を利用したペプチド結合
合成法;基体に導入した芳香族アミノ基と亜硝酸ナトリ
ウムとを反応させて得たジアゾニウム化合物を利用する
ジアゾ合成法;ハロゲン化アセチル誘導体、トリアジニ
ル誘導体を利用するアルギル化法;グルタルアルデヒド
等のアルデヒド基と基体のアミノ基との反応を利用する
シップ塩基□形成合成法;カルボシル基、アミ7ノ基、
アルデヒド基及びイソニトリル基を共存させて縮合を行
うUgi反応合成法;トレシルエステルを利用するトレ
シルクロリド合成法;スペリン酸ジ−N−ヒドロキシス
クシンイミドエステル、酒石酸シート1−・ヒドロキシ
スクシンイミドエステ等ルの活性エステル基を用いる合
成法;ジメチルスベロイミデートニ塩基酸、メチル−4
−メルカプトブチルイミデート塩酸塩、メチル−4−ア
ジドベンゾイミデート塩酸塩等のイミドエステル基を用
いる合成法;p−フェニレンビスマレイミド等のマレイ
ミド基を用いる合成法;基体の水酸基をN、N’−カル
ボニルジイミダゾールで活性化する合成法が挙げられる
。上記合成法は、水溶液中やDMFやピリジンのような
極性有機溶媒中で行うことができる。好ましい溶媒は極
性有機溶媒である。
架橋剤をポリマー基体に架橋剤を利用して結合させる方
法としては、架橋剤をポリマー基体に直接結合させる方
法、ポリマー基体にポリエチレングリコールやポリプロ
ピレングリコール等をグラフトさせその末端に上記架橋
剤を結合させる方法が挙げられる。
法としては、架橋剤をポリマー基体に直接結合させる方
法、ポリマー基体にポリエチレングリコールやポリプロ
ピレングリコール等をグラフトさせその末端に上記架橋
剤を結合させる方法が挙げられる。
動物細胞の培養における細胞培養基体の使用方法につい
ては、通常の方法で行われ特に限定されない。例えば、
接着性ペプチドを共有結合処理1ノたビーズを培養液中
に浮遊させて低速度で撹拌を行うことで動物細胞をビー
ズ表面に接着させ培養する方法;接着性ペプチドを共有
結合処理したシャーレ、ルーびん、ローラーびん等の上
で動物細胞を培養する方法;接着性ペプチドを共有結合
処理した中空糸に培養液を還流させ動物細胞を中空糸内
面に接着させ培養する方法;接着性ペプチドを共有結合
処理したビーズを充填したカラムを用いる方法;接着性
ペプチドを共有結合処理したマルチディスク、マルチト
レーを用いる方法等が挙げられる。
ては、通常の方法で行われ特に限定されない。例えば、
接着性ペプチドを共有結合処理1ノたビーズを培養液中
に浮遊させて低速度で撹拌を行うことで動物細胞をビー
ズ表面に接着させ培養する方法;接着性ペプチドを共有
結合処理したシャーレ、ルーびん、ローラーびん等の上
で動物細胞を培養する方法;接着性ペプチドを共有結合
処理した中空糸に培養液を還流させ動物細胞を中空糸内
面に接着させ培養する方法;接着性ペプチドを共有結合
処理したビーズを充填したカラムを用いる方法;接着性
ペプチドを共有結合処理したマルチディスク、マルチト
レーを用いる方法等が挙げられる。
本発明に係わる動物細胞としては特に限定されないが、
生理活性物質など有用成分を産出する細胞が挙げられる
。例えば、インターフェロンを生産する羊膜または腎臓
に由来する上皮細胞など;ウロキナーゼを生産する腎細
胞;インシュリンを生産する膵臓起源の細胞等、動物の
各組織の細胞が挙げられる。また、ワクチン等の製造の
ため上記培養細胞を宿主として水痘ウィルスや肝炎ウィ
ルスを接種し培養することも可能である。
生理活性物質など有用成分を産出する細胞が挙げられる
。例えば、インターフェロンを生産する羊膜または腎臓
に由来する上皮細胞など;ウロキナーゼを生産する腎細
胞;インシュリンを生産する膵臓起源の細胞等、動物の
各組織の細胞が挙げられる。また、ワクチン等の製造の
ため上記培養細胞を宿主として水痘ウィルスや肝炎ウィ
ルスを接種し培養することも可能である。
[実施例]
以下、実施例により本発明を更に説明するが、本発明は
これに限定されるものではない。
これに限定されるものではない。
製造例1
接着性ポリペプチドの合成
Merrifield方式によるペプチド自動合成14
iを用いて合成を行った。αアミノ基の保護にはBoa
基を用い、セファデックスゲル、側−セルロースイオン
交換クロマトグラフィーおよび分配クロマトグラフィー
によって精製を行い、HPLC(高速液体クロマトグラ
フィー)上単一ピークを示す接着性合成ペプチド表−1
を得た。
iを用いて合成を行った。αアミノ基の保護にはBoa
基を用い、セファデックスゲル、側−セルロースイオン
交換クロマトグラフィーおよび分配クロマトグラフィー
によって精製を行い、HPLC(高速液体クロマトグラ
フィー)上単一ピークを示す接着性合成ペプチド表−1
を得た。
表−1接着性合成ペプチド
実施例1
架橋デキストランビーズにDMF溶媒中ジイソシアン酸
へキサメチレンを反応させた後、側鎖のイソシアネート
基を加水分解してアミノ化を行った。
へキサメチレンを反応させた後、側鎖のイソシアネート
基を加水分解してアミノ化を行った。
次いでスペリン酸ジ−N−ヒドロキシスクシンイミジル
(DSS)でアミノ基を活性化し緩衝溶液中にて上記の
接着性合成ペプチド−1と反応させて動物細胞培養用基
体を得た。
(DSS)でアミノ基を活性化し緩衝溶液中にて上記の
接着性合成ペプチド−1と反応させて動物細胞培養用基
体を得た。
実施例2.3
架橋デキストランビーズに接着性合成ペプチド−2,3
を実施例1に従って反応させ動物細胞培養用基体を得た
。
を実施例1に従って反応させ動物細胞培養用基体を得た
。
実施例4
架橋デキストランビーズの表面水酸基をN、N’−力ル
ボニルジイミダゾールで活性化しDMF溶媒中にて上記
の接着性合成ペプチド−3と反応させて動物細胞培養用
基体を得た。
ボニルジイミダゾールで活性化しDMF溶媒中にて上記
の接着性合成ペプチド−3と反応させて動物細胞培養用
基体を得た。
実施例5
架橋デキストランビーズに接着性合成ペプチド−4を実
施例4に従って反応させ動物細胞培養用基体を得た。
施例4に従って反応させ動物細胞培養用基体を得た。
比較例1
架橋デキストランビーズの表面をN、N−)+7メーf
)L−2−ヒト”ロ1シー1ミノフ0ロヒ0ル荷電基で
置換したCytodex 2 (7アルマシア製)
を動物細胞培養用基体とした。
)L−2−ヒト”ロ1シー1ミノフ0ロヒ0ル荷電基で
置換したCytodex 2 (7アルマシア製)
を動物細胞培養用基体とした。
比較例2
架橋デキストランビーズの表面をブタ表皮より得た変性
コラーゲン(MW 60,000〜200,000)で
処理したCytodex 3 (ファルマシア製)を動
物細胞培養用基体とした。
コラーゲン(MW 60,000〜200,000)で
処理したCytodex 3 (ファルマシア製)を動
物細胞培養用基体とした。
試験例1
(1)接着性合成ペプチドの固定化密度接着性合成ペプ
チド−3を固定化した実施例3.4の固定化密度を測定
し、反応条件による差を調べた。ポリマー基体表面にお
ける炭素原子、窒素原子の割合を測定したところ、DM
Fの溶媒で反応させた実施例4の方が固定化密度で70
%増加していた。
チド−3を固定化した実施例3.4の固定化密度を測定
し、反応条件による差を調べた。ポリマー基体表面にお
ける炭素原子、窒素原子の割合を測定したところ、DM
Fの溶媒で反応させた実施例4の方が固定化密度で70
%増加していた。
(2)動物細胞の接着性、増殖性の評価実施例1〜5及
び比較例1.2にて作成した動物細胞培養用基体を用い
細胞培養を行った。細胞は血管内皮細胞を用い、培養液
はDulbecco’s Modified Eagl
e’s Medium (以下DMEMと記載する)、
及びDMEMにFe2をlOχ加えた培養液を用いた。
び比較例1.2にて作成した動物細胞培養用基体を用い
細胞培養を行った。細胞は血管内皮細胞を用い、培養液
はDulbecco’s Modified Eagl
e’s Medium (以下DMEMと記載する)、
及びDMEMにFe2をlOχ加えた培養液を用いた。
培養後、位相差顕微鏡及び走査型電子顕微鏡にて接着性
及び増殖性の観察を行い、結果を表−2に示した。
及び増殖性の観察を行い、結果を表−2に示した。
表−2動物細胞の接着性、増殖性
○:良好、 △:やや不良、 ×:不良比較に用いたC
ytodex−2,3は、Fe2を含まぬDMEM培地
に於て細胞接着性及び増殖性は、実施例の基体に比べて
劣っていた。Fe2の添加によって改善されるものの、
培地中よりFC5成分を除くのはゲルろ過繰り返す必要
があり完全に除くのは困難であった。
ytodex−2,3は、Fe2を含まぬDMEM培地
に於て細胞接着性及び増殖性は、実施例の基体に比べて
劣っていた。Fe2の添加によって改善されるものの、
培地中よりFC5成分を除くのはゲルろ過繰り返す必要
があり完全に除くのは困難であった。
[発明の効果コ
本発明の動物細胞培養用基体は、ポリマー基体に対して
Arg−Gly−Aspe必須構成単位として有する接
着性ペプチドを共有結合させていることから、次のよう
な効果を奏する。■フィブロネクチン等細胞接着性ペプ
チドを含む牛胎児血清(以下FC5と記載)を加えなく
ても、ポリマー基体に対する生細胞の接着性は良好とな
る。■上記FCSを加えなくても細胞接着に伴う培養が
良好に行われることから、本発明の動物細胞培養用基体
による細胞大量培養によって生理活性を有する薬理成分
を得る場合、FC5中に含まれる抗原となりうる成分の
混入がなくなり患者にとって安全性が高まる。また本発
明で用いられる接着性ペプチドは低分子量であることか
ら、これ自体が抗原となる可能性が低減され、安全性は
さらに高まる。■本発明の接着性ペプチドは、共有結合
で基体に結合されていることから基体からの脱落もなく
、滅菌操作も安全に行うことが可能となる。■接着性ペ
プチド中にProを含有した物は、有機溶媒中にて反応
することが可能となり反応効率は格段に向上する。
Arg−Gly−Aspe必須構成単位として有する接
着性ペプチドを共有結合させていることから、次のよう
な効果を奏する。■フィブロネクチン等細胞接着性ペプ
チドを含む牛胎児血清(以下FC5と記載)を加えなく
ても、ポリマー基体に対する生細胞の接着性は良好とな
る。■上記FCSを加えなくても細胞接着に伴う培養が
良好に行われることから、本発明の動物細胞培養用基体
による細胞大量培養によって生理活性を有する薬理成分
を得る場合、FC5中に含まれる抗原となりうる成分の
混入がなくなり患者にとって安全性が高まる。また本発
明で用いられる接着性ペプチドは低分子量であることか
ら、これ自体が抗原となる可能性が低減され、安全性は
さらに高まる。■本発明の接着性ペプチドは、共有結合
で基体に結合されていることから基体からの脱落もなく
、滅菌操作も安全に行うことが可能となる。■接着性ペ
プチド中にProを含有した物は、有機溶媒中にて反応
することが可能となり反応効率は格段に向上する。
Claims (1)
- 1、ポリマー基体に対してアルギニン−グリシン−アス
パラギン酸を必須構成単位として有する接着性ペプチド
を共有結合させてなる動物細胞の接着性を改良した動物
細胞培養用基体。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63138178A JPH01309682A (ja) | 1988-06-03 | 1988-06-03 | 動物細胞培養用基体 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63138178A JPH01309682A (ja) | 1988-06-03 | 1988-06-03 | 動物細胞培養用基体 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01309682A true JPH01309682A (ja) | 1989-12-14 |
Family
ID=15215874
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP63138178A Pending JPH01309682A (ja) | 1988-06-03 | 1988-06-03 | 動物細胞培養用基体 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH01309682A (ja) |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH04173086A (ja) * | 1990-11-07 | 1992-06-19 | Sakai Eng Kk | 動物細胞培養用担体 |
| JPH04217700A (ja) * | 1990-10-26 | 1992-08-07 | Fuji Photo Film Co Ltd | Cm−キチン誘導体およびその用途 |
| WO2000049135A3 (en) * | 1999-01-21 | 2000-12-14 | Adv Med Solutions Ltd | Substrate for cell growth |
| US8168433B2 (en) | 2008-01-30 | 2012-05-01 | Corning Incorporated | Cell culture article and screening |
| US8329469B2 (en) | 2008-01-30 | 2012-12-11 | Geron Corporation | Swellable (meth)acrylate surfaces for culturing cells in chemically defined media |
-
1988
- 1988-06-03 JP JP63138178A patent/JPH01309682A/ja active Pending
Cited By (7)
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|---|---|---|---|---|
| JPH04217700A (ja) * | 1990-10-26 | 1992-08-07 | Fuji Photo Film Co Ltd | Cm−キチン誘導体およびその用途 |
| JPH04173086A (ja) * | 1990-11-07 | 1992-06-19 | Sakai Eng Kk | 動物細胞培養用担体 |
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