JPH0135640B2 - - Google Patents
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- JPH0135640B2 JPH0135640B2 JP25460784A JP25460784A JPH0135640B2 JP H0135640 B2 JPH0135640 B2 JP H0135640B2 JP 25460784 A JP25460784 A JP 25460784A JP 25460784 A JP25460784 A JP 25460784A JP H0135640 B2 JPH0135640 B2 JP H0135640B2
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
(産業上の利用分野)
本発明はラセミ体より微生物による光学活性な
S−(−)−2,3−ジクロロ−1−プロパノール
の分取法に関する。 (従来技術) 2,3−ジクロロ−1−プロパノール(以下、
本化合物をβ−DCHと略称する)は下記構造式
()にて表される物質であり、その構造異性体
である1,3−ジクロロ−2−プロパノール(下
記構造式())と共にエピクロルヒドリン(下
記構造式())の原料として知られている。ま
たエピクロルヒドリンと共に各種の医薬、農薬等
のの中間原料として重要なものである。
S−(−)−2,3−ジクロロ−1−プロパノール
の分取法に関する。 (従来技術) 2,3−ジクロロ−1−プロパノール(以下、
本化合物をβ−DCHと略称する)は下記構造式
()にて表される物質であり、その構造異性体
である1,3−ジクロロ−2−プロパノール(下
記構造式())と共にエピクロルヒドリン(下
記構造式())の原料として知られている。ま
たエピクロルヒドリンと共に各種の医薬、農薬等
のの中間原料として重要なものである。
【式】
【式】
しかしながら、このβ−DCHは合成法によつ
てつくられるために光学的に不活性なラセミ体で
ある。 さて、そのβ−DCHより、光学活性体を分離
する方法の1つとしては、β−DCHの水酸基を
無水酢酸によりアセチル化せしめ、1−アセトキ
シ−2,3−ジクロロプロパンとした後、リパー
ゼを作用させる方法が知られている。しかしこの
ような他の誘導体を経ずにラセミ体β−DCHよ
り直接光学活性なβ−DCHを製造する方法は知
られていない。 (発明の目的) 本発明はラセミ体β−DCHを他の誘導体を経
ずに直接微生物に資化させて、光学活性なβ−
DCHを分取することを目的とする。 (発明の構成) 本発明はすなわちR−(+)−2,3−ジクロロ
−1−プロパノール資化能を有するシユードモナ
ス属に属する細菌、又はその培養細菌体を、培地
でラセミ体2,3−ジクロロプロパノールと作用
せしめてS−(−)−2,3−ジクロロ−1−プロ
パノールを分取することを特徴とする微生物処理
による光学活性なジクロロプロパノールの製法で
ある。 本発明者らが土壌中より分離採取して本発明に
おいて用いた微生物の菌学的性質は表1に示すと
おりである。
てつくられるために光学的に不活性なラセミ体で
ある。 さて、そのβ−DCHより、光学活性体を分離
する方法の1つとしては、β−DCHの水酸基を
無水酢酸によりアセチル化せしめ、1−アセトキ
シ−2,3−ジクロロプロパンとした後、リパー
ゼを作用させる方法が知られている。しかしこの
ような他の誘導体を経ずにラセミ体β−DCHよ
り直接光学活性なβ−DCHを製造する方法は知
られていない。 (発明の目的) 本発明はラセミ体β−DCHを他の誘導体を経
ずに直接微生物に資化させて、光学活性なβ−
DCHを分取することを目的とする。 (発明の構成) 本発明はすなわちR−(+)−2,3−ジクロロ
−1−プロパノール資化能を有するシユードモナ
ス属に属する細菌、又はその培養細菌体を、培地
でラセミ体2,3−ジクロロプロパノールと作用
せしめてS−(−)−2,3−ジクロロ−1−プロ
パノールを分取することを特徴とする微生物処理
による光学活性なジクロロプロパノールの製法で
ある。 本発明者らが土壌中より分離採取して本発明に
おいて用いた微生物の菌学的性質は表1に示すと
おりである。
【表】
【表】
(5) デンプン − −
以上の結果をもとにバージエイズ・マニユア
ル・オブ・デターミネイテイブ・バクテリオロジ
イ(Bargey′s Manual of Determinative
Bacteriology)第8版の記載に基づき帰層同定
を行うと本菌はシユードモナス属の特徴を有す
る。 以下、本発明者らは本菌をシユードモナス
Psedomonas OS−K−29(微工研菌寄第7846
号;FERM P−7846)と命名した。 本発明ではラセミ体β−DCHに、この微生物
を接触させてS−(−)−β−DCHを分取するが、
体的にはラセミ体β−DCHを炭素源とし、無機
態窒素(各種のアンモニア塩、硝酸塩)を窒素と
しその無機塩類を含む合成培地中で上記細菌を培
養するか、又は上記細菌をブイヨン培地あるいは
加糖ブイヨン培地等、炭素源、窒素源、有機栄養
源、無機栄養源を含む通常よく用いられる栄養培
地中で培養せしめ、よく生育させておき、これか
ら得る菌体をラセミ体β−DCHを含有する培地
中で作用させた後、S−(−)−β−DCHを分取
すればよい。 炭素源としてはグルコース、シユクロース、グ
リセリン等の炭水化物、あるいはクエン酸、マレ
イン酸、リンゴ酸等の有機酸及びその塩類を、窒
素源としては硫酸アンモニウム、塩化アンモニウ
ム、硝酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の
無機態窒素、及び尿素、ペプトン、カゼイン、酵
母エキス、肉エキス等の有機態窒素を用いること
ができる。その他の無機塩類としてはリン酸塩、
マグネシウム塩、カリ塩、マンガン塩、鉄塩、亜
鉛塩、銅塩等が用いられる。 本菌の培養は、慣用の方法で行うことができ
る。通常、温度約20〜40℃、好ましくは25〜37
℃、PH約6〜9、好ましくはPH6.5〜7.5で振盪あ
るいは通気撹拌等の手段により好気的に行われ
る。 本発明で用いる微生物とラセミ体β−DCHを
触させるときのラセミ体β−DCHの濃度は培地
中約0.2容量%以下であればよく、その接触時間
は通常2日〜10日である。 培養了後、培養液をとり出し遠心分離して微生
物菌体と上清液とに分離し、上清液中のβ−
DCHを活性炭カラム処理、エーテル抽出、減圧
蒸留等の操作によつて分収する。 以下実施例により説明する。実施例中%は特に
記さない限り重量%を表わす。 実施例 1 ラセミ体β−DCHを唯一の炭素源とした培地、
すなわち ラセミ体β−DCH 0.2容量% 硫 安 0.05% 硝 安 0.05% りん酸水素第2カリウム 0.1% りん酸水素第2ナトリウム 0.1% りん酸水素第1ナトリウム 0.2% 硫酸マグネシウム 0.05% 硫酸鉄、硫酸銅、硫酸マンガン 微量 PH 6.5 を含む培地100mlを有する10個の坂口フラスコ
(500ml容)に本菌OS−K−29株の傾斜寒天培地
から1白金耳づつ植菌を行い、30℃で振盪培養を
3〜5日間実施する。次に上記組成の培地20を
入れた25容培養器(ジヤーフアメンター)に上
記前培養分を加え、以下の条件下で3〜5日間通
気撹拌培養した。 温度30℃ PH 初発6.5 通気量 20/min 回転数 300rpm 培養終了後、培養液を取り出し、遠心分離機を用
いて微生物菌体とその上清液とに分離し、この中
に残存するβ−DCHを活性炭カラム処理、エー
テル抽出、減圧蒸留によつて油状物質として6.6
g採取した。本物質の同定は次の方式で行つた。 (1) ガスクロマトグラフイーによる同定。カラム
担体PEG−20MP、5%、60〜80メツシユを用
いて市販β−DCHと比較した結果、その保持
時間は全く同じであつた。純度98.2%以上。 (2) IR(赤外吸収スペクトル)による同定。第1
図に示したチヤートのように、その吸収パター
ンは市販β−DCHと全く同一であつた。 以上から本物質は明らかにβ−DCHである事
が判明した。又本物質がS−(−)−β−DCHで
ある事の確認は以下の方法によつた。 (1) 旋光度の測定。 市販β−DCH及び本物質の旋光度は次の如
くである。 市販β−DCH 〔α〕20 D=0.0 C=1、アセト
ン 〔α〕20 D=0.0 C=1、ジクロロメタン 本物質 〔α〕20 D=+3.5 C=1、アセトン 〔α〕20 D=−12.0 C=1、ジクロロメタン (2) R−(+)−α−メトキシ−α−トリフルオロ
メチルフエニルアセテートエステルの調整なら
びに高速液体クロマトグラフイーによる分析。 R−(+)−α−メトキシ−α−トリフルオロ
メチルフエニルアセテートクロライドを市販β
−DCHならびに本物質に反応せしめ、そのエ
ステル誘導体を調整した後、液体クロマトグラ
フイーでの分析結果は次のようであつた。 分析条件 カラム担体 ZORBAXODS 4.6mm×25Cm
(Du Pont社製) 溶出液 メタノール:水=65:35(V/V) 溶出量 1ml/min 検出法 260nmにおける吸光度 分析結果 市販β−DCH 保持時間50.5分及び52.0分に同
一面積をもつ2つのピークを与えた。 本物質 保持時間50.5分にのみピークを与え
52.0分にはピークを与えなかつた。 (3) ジジクロロプロピル−N−フエニルカルバメ
ートの調整及びその旋光度。 市販β−DCH、及び本物質1gとフエニル
イソシアネート0.9gを乾燥アセトン30ml、ト
リエチルアミン0.3mlに加え、約3時間加熱還
流し、そのジクロロプロピル−N−フエニルカ
ルバメートを調整した後、その比旋光度を測定
した。 市販β−DCH 〔α〕25 D=0.0 C=1、メタノ
ール 本物質 〔α〕25 D=−16.4 C=1、メタノール 以上の結果から本物質は、S−(−)−β−
DCHであり、その光学純度は99%以上である
ことが判つた。 実施例 2 肉エキス1.0%、ポリペプトン1.0%、グルコー
ス0.5%、PH7なる培地100mlを有する5個の坂口
フラスコ(500ml容)を常法どおり、加熱蒸気減
菌後、本菌OS−K−29株の傾斜寒天培地から菌
株を1白金耳ずつ接種する。各々のフラスコは30
℃下で48時間往復振盪培養(200rpm)を行う。 次に上記組成の培地20を30容ジヤーフアメ
ンターに入れ、常法どおり加圧蒸気減菌後、各々
のフラスコで生育せしめた微生物菌体を無菌的に
接種せしめ、次の条件下で48時間培養する。 温度30℃ PH 初発PH7.0 通気量 20/min 回転数 300rpm 培養の終了した培養液は遠心分離機にて微生物
菌体と上清液とに分離し、上清液は廃棄する。残
つた微生物菌体は50mMりん酸緩衝液PH6.5にて
3回〜4回洗浄し洗浄菌体を得る。次にこの洗浄
菌体を実施例1で示したラセミ体β−DCHを含
有する培地20に懸濁させ、次の条件下に持す
る。 温度30℃ 通気量 20/min 回転数 300rpm PH 5.5(炭酸カルシウムを20g加えて保持する) 洗浄菌体を培地に加えてから48時間、上記の様
に通気撹拌培養し、再び遠心分離機にて微生物菌
体と上清液とに分離した。上清液からのβ−
DCHの分離は実施例1と同様にし、β−DCH7.0
gを得た。このβ−DCHは、実施例1に示した
ように各種の分析を行なつた結果、光学純度99%
以上のS−(−)−β−DCHであつた。 (発明の効果) 本発明にによれば土壌中より分離した新菌種を
利用して直接2,3−ジクロロ−1−プロパノー
ルの光学活性化を行うことができる。
以上の結果をもとにバージエイズ・マニユア
ル・オブ・デターミネイテイブ・バクテリオロジ
イ(Bargey′s Manual of Determinative
Bacteriology)第8版の記載に基づき帰層同定
を行うと本菌はシユードモナス属の特徴を有す
る。 以下、本発明者らは本菌をシユードモナス
Psedomonas OS−K−29(微工研菌寄第7846
号;FERM P−7846)と命名した。 本発明ではラセミ体β−DCHに、この微生物
を接触させてS−(−)−β−DCHを分取するが、
体的にはラセミ体β−DCHを炭素源とし、無機
態窒素(各種のアンモニア塩、硝酸塩)を窒素と
しその無機塩類を含む合成培地中で上記細菌を培
養するか、又は上記細菌をブイヨン培地あるいは
加糖ブイヨン培地等、炭素源、窒素源、有機栄養
源、無機栄養源を含む通常よく用いられる栄養培
地中で培養せしめ、よく生育させておき、これか
ら得る菌体をラセミ体β−DCHを含有する培地
中で作用させた後、S−(−)−β−DCHを分取
すればよい。 炭素源としてはグルコース、シユクロース、グ
リセリン等の炭水化物、あるいはクエン酸、マレ
イン酸、リンゴ酸等の有機酸及びその塩類を、窒
素源としては硫酸アンモニウム、塩化アンモニウ
ム、硝酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の
無機態窒素、及び尿素、ペプトン、カゼイン、酵
母エキス、肉エキス等の有機態窒素を用いること
ができる。その他の無機塩類としてはリン酸塩、
マグネシウム塩、カリ塩、マンガン塩、鉄塩、亜
鉛塩、銅塩等が用いられる。 本菌の培養は、慣用の方法で行うことができ
る。通常、温度約20〜40℃、好ましくは25〜37
℃、PH約6〜9、好ましくはPH6.5〜7.5で振盪あ
るいは通気撹拌等の手段により好気的に行われ
る。 本発明で用いる微生物とラセミ体β−DCHを
触させるときのラセミ体β−DCHの濃度は培地
中約0.2容量%以下であればよく、その接触時間
は通常2日〜10日である。 培養了後、培養液をとり出し遠心分離して微生
物菌体と上清液とに分離し、上清液中のβ−
DCHを活性炭カラム処理、エーテル抽出、減圧
蒸留等の操作によつて分収する。 以下実施例により説明する。実施例中%は特に
記さない限り重量%を表わす。 実施例 1 ラセミ体β−DCHを唯一の炭素源とした培地、
すなわち ラセミ体β−DCH 0.2容量% 硫 安 0.05% 硝 安 0.05% りん酸水素第2カリウム 0.1% りん酸水素第2ナトリウム 0.1% りん酸水素第1ナトリウム 0.2% 硫酸マグネシウム 0.05% 硫酸鉄、硫酸銅、硫酸マンガン 微量 PH 6.5 を含む培地100mlを有する10個の坂口フラスコ
(500ml容)に本菌OS−K−29株の傾斜寒天培地
から1白金耳づつ植菌を行い、30℃で振盪培養を
3〜5日間実施する。次に上記組成の培地20を
入れた25容培養器(ジヤーフアメンター)に上
記前培養分を加え、以下の条件下で3〜5日間通
気撹拌培養した。 温度30℃ PH 初発6.5 通気量 20/min 回転数 300rpm 培養終了後、培養液を取り出し、遠心分離機を用
いて微生物菌体とその上清液とに分離し、この中
に残存するβ−DCHを活性炭カラム処理、エー
テル抽出、減圧蒸留によつて油状物質として6.6
g採取した。本物質の同定は次の方式で行つた。 (1) ガスクロマトグラフイーによる同定。カラム
担体PEG−20MP、5%、60〜80メツシユを用
いて市販β−DCHと比較した結果、その保持
時間は全く同じであつた。純度98.2%以上。 (2) IR(赤外吸収スペクトル)による同定。第1
図に示したチヤートのように、その吸収パター
ンは市販β−DCHと全く同一であつた。 以上から本物質は明らかにβ−DCHである事
が判明した。又本物質がS−(−)−β−DCHで
ある事の確認は以下の方法によつた。 (1) 旋光度の測定。 市販β−DCH及び本物質の旋光度は次の如
くである。 市販β−DCH 〔α〕20 D=0.0 C=1、アセト
ン 〔α〕20 D=0.0 C=1、ジクロロメタン 本物質 〔α〕20 D=+3.5 C=1、アセトン 〔α〕20 D=−12.0 C=1、ジクロロメタン (2) R−(+)−α−メトキシ−α−トリフルオロ
メチルフエニルアセテートエステルの調整なら
びに高速液体クロマトグラフイーによる分析。 R−(+)−α−メトキシ−α−トリフルオロ
メチルフエニルアセテートクロライドを市販β
−DCHならびに本物質に反応せしめ、そのエ
ステル誘導体を調整した後、液体クロマトグラ
フイーでの分析結果は次のようであつた。 分析条件 カラム担体 ZORBAXODS 4.6mm×25Cm
(Du Pont社製) 溶出液 メタノール:水=65:35(V/V) 溶出量 1ml/min 検出法 260nmにおける吸光度 分析結果 市販β−DCH 保持時間50.5分及び52.0分に同
一面積をもつ2つのピークを与えた。 本物質 保持時間50.5分にのみピークを与え
52.0分にはピークを与えなかつた。 (3) ジジクロロプロピル−N−フエニルカルバメ
ートの調整及びその旋光度。 市販β−DCH、及び本物質1gとフエニル
イソシアネート0.9gを乾燥アセトン30ml、ト
リエチルアミン0.3mlに加え、約3時間加熱還
流し、そのジクロロプロピル−N−フエニルカ
ルバメートを調整した後、その比旋光度を測定
した。 市販β−DCH 〔α〕25 D=0.0 C=1、メタノ
ール 本物質 〔α〕25 D=−16.4 C=1、メタノール 以上の結果から本物質は、S−(−)−β−
DCHであり、その光学純度は99%以上である
ことが判つた。 実施例 2 肉エキス1.0%、ポリペプトン1.0%、グルコー
ス0.5%、PH7なる培地100mlを有する5個の坂口
フラスコ(500ml容)を常法どおり、加熱蒸気減
菌後、本菌OS−K−29株の傾斜寒天培地から菌
株を1白金耳ずつ接種する。各々のフラスコは30
℃下で48時間往復振盪培養(200rpm)を行う。 次に上記組成の培地20を30容ジヤーフアメ
ンターに入れ、常法どおり加圧蒸気減菌後、各々
のフラスコで生育せしめた微生物菌体を無菌的に
接種せしめ、次の条件下で48時間培養する。 温度30℃ PH 初発PH7.0 通気量 20/min 回転数 300rpm 培養の終了した培養液は遠心分離機にて微生物
菌体と上清液とに分離し、上清液は廃棄する。残
つた微生物菌体は50mMりん酸緩衝液PH6.5にて
3回〜4回洗浄し洗浄菌体を得る。次にこの洗浄
菌体を実施例1で示したラセミ体β−DCHを含
有する培地20に懸濁させ、次の条件下に持す
る。 温度30℃ 通気量 20/min 回転数 300rpm PH 5.5(炭酸カルシウムを20g加えて保持する) 洗浄菌体を培地に加えてから48時間、上記の様
に通気撹拌培養し、再び遠心分離機にて微生物菌
体と上清液とに分離した。上清液からのβ−
DCHの分離は実施例1と同様にし、β−DCH7.0
gを得た。このβ−DCHは、実施例1に示した
ように各種の分析を行なつた結果、光学純度99%
以上のS−(−)−β−DCHであつた。 (発明の効果) 本発明にによれば土壌中より分離した新菌種を
利用して直接2,3−ジクロロ−1−プロパノー
ルの光学活性化を行うことができる。
第1図は実施例1により得られたS−(−)−
2,3−ジクロロ−1−プロパノールおよび市販
品の同物質の赤外線吸収スペクトルである。 −・−市販β−DCH、−実施例1。
2,3−ジクロロ−1−プロパノールおよび市販
品の同物質の赤外線吸収スペクトルである。 −・−市販β−DCH、−実施例1。
Claims (1)
- 1 R−(+)−2,3−ジクロロ−1−プロパノ
ール資化能を有するシユードモナス属に属する細
菌、又はその培養菌体を、培地でラセミ体2,3
−ジクロル−1−プロパノールと作用せしめてS
−(−)−2,3−ジクロロ−1−プロパノールを
分取することを特徴とする微生物処理による光学
活性なジクロロプロパノールの製法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP25460784A JPS61132196A (ja) | 1984-11-30 | 1984-11-30 | 微生物処理による光学活性なジクロロプロパノ−ルの製法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP25460784A JPS61132196A (ja) | 1984-11-30 | 1984-11-30 | 微生物処理による光学活性なジクロロプロパノ−ルの製法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS61132196A JPS61132196A (ja) | 1986-06-19 |
| JPH0135640B2 true JPH0135640B2 (ja) | 1989-07-26 |
Family
ID=17267379
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP25460784A Granted JPS61132196A (ja) | 1984-11-30 | 1984-11-30 | 微生物処理による光学活性なジクロロプロパノ−ルの製法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS61132196A (ja) |
-
1984
- 1984-11-30 JP JP25460784A patent/JPS61132196A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS61132196A (ja) | 1986-06-19 |
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Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| EXPY | Cancellation because of completion of term |