JPS61132196A - 微生物処理による光学活性なジクロロプロパノ−ルの製法 - Google Patents
微生物処理による光学活性なジクロロプロパノ−ルの製法Info
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- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- AJPJDKMHJJGVTQ-UHFFFAOYSA-M sodium dihydrogen phosphate Chemical compound [Na+].OP(O)([O-])=O AJPJDKMHJJGVTQ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 239000001488 sodium phosphate Substances 0.000 description 1
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- 238000010189 synthetic method Methods 0.000 description 1
- VZCYOOQTPOCHFL-UHFFFAOYSA-N trans-butenedioic acid Natural products OC(=O)C=CC(O)=O VZCYOOQTPOCHFL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明はラセミ体より微生物による光学活性なS−(−
) −2,3−ジクロロ−1−プロパノールの分取法に
関する。
) −2,3−ジクロロ−1−プロパノールの分取法に
関する。
(従来技術)
2.3−ジクロロ−1−プロパノール(以下、本化合物
をβ−DCHと略称する)は下記構造式(1)、にて表
わされる物質であり、その構造異性体である1、3−ジ
クロO−2−プロパノ−゛ ル(下記構造式(■))と
共にエピクロルヒドリン(下記構造式(■))の原料と
して知られている。またエピクロルヒドリンと共に各種
の医薬、農薬等の中間原料として重要なものであCI
0H (I) (I) (II)し
かしながら、このβ−DCHは合成法によってつくられ
るために光学的に不活性なうセミ体である。
をβ−DCHと略称する)は下記構造式(1)、にて表
わされる物質であり、その構造異性体である1、3−ジ
クロO−2−プロパノ−゛ ル(下記構造式(■))と
共にエピクロルヒドリン(下記構造式(■))の原料と
して知られている。またエピクロルヒドリンと共に各種
の医薬、農薬等の中間原料として重要なものであCI
0H (I) (I) (II)し
かしながら、このβ−DCHは合成法によってつくられ
るために光学的に不活性なうセミ体である。
さて、そのβ−DCHより、光学活性体を分離する方法
の1つとしては、β−DCHの水酸基を無水酢酸により
アセチル化せしめ、1−アセトキシ−2,3−ジクロロ
プロパンとした後、リパーゼを作用させる方法が知られ
ている。しかしこのような他の誘導体を経ずにラセミ体
β−DCHより直接光学活性なβ−DCHを製造する方
法は知られていない。
の1つとしては、β−DCHの水酸基を無水酢酸により
アセチル化せしめ、1−アセトキシ−2,3−ジクロロ
プロパンとした後、リパーゼを作用させる方法が知られ
ている。しかしこのような他の誘導体を経ずにラセミ体
β−DCHより直接光学活性なβ−DCHを製造する方
法は知られていない。
(発明の目的)
本発明はラセミ体β−DCHを他の誘導体を経ずに直接
微生物に資化させて、光学活性なβ−DCHを分取する
ことを目的とする。
微生物に資化させて、光学活性なβ−DCHを分取する
ことを目的とする。
(発明の構成)
本発明はすなわちR−(+)−2,3−ジクロロ−1−
プロパノール資化能を有するシュードモナス属に属する
細菌、又はその培養菌体を、培地でラセミ体2.3−ジ
クロロプロパノールと作用せしめてS−(−) −2,
3−ジクロロ−1−プロパノールを分取することを特徴
とする微生物処理による光学活性なジクロロプロパノー
ルの製法である。
プロパノール資化能を有するシュードモナス属に属する
細菌、又はその培養菌体を、培地でラセミ体2.3−ジ
クロロプロパノールと作用せしめてS−(−) −2,
3−ジクロロ−1−プロパノールを分取することを特徴
とする微生物処理による光学活性なジクロロプロパノー
ルの製法である。
本発明者らが土壌中より分離採取して本発明において用
いた微生物の国学的性質は表1に示すとおりである。
いた微生物の国学的性質は表1に示すとおりである。
表 1
a、形態
■細胞の形及び大きさ 桿菌、0.4〜0,6
X 1,2〜1.8μm■μm性
無 す、各培地における生育状態 ■肉汁寒天平板培養(30℃、3日間培養)イ)コロニ
ー形状の遅速 普通 直径約3−4M口)コロニ
ーの形状 円形 ハ)コロニー表面の形状 平滑 二)コロニーの隆起状態 凸円状ホ)コロニーの
周縁 金縁 へ)コロニーの内容 均質 ト)コロニーの色調 乳白色チ)コロニーの
透明度 半透明り)コロニーの光沢
輝光 ヌ)可溶性色素の生成 無 ■肉汁寒天斜面培養(30℃、3日間培養)イ)生育の
良否 生育良好、糸状口)コロニーの形
平滑 ハ)コロニーの断面の隆起状態 扁平状二)コロニーの
光沢 鈍光 ホ)コロニー表面の形状 平滑 へ)コロニーの透明度 半透明ト)コロニーの
色 乳白色■肉汁液体培養(30℃、3日
間培養)イ)生育性状 膜状 口)濁度 わずかに濁る。
X 1,2〜1.8μm■μm性
無 す、各培地における生育状態 ■肉汁寒天平板培養(30℃、3日間培養)イ)コロニ
ー形状の遅速 普通 直径約3−4M口)コロニ
ーの形状 円形 ハ)コロニー表面の形状 平滑 二)コロニーの隆起状態 凸円状ホ)コロニーの
周縁 金縁 へ)コロニーの内容 均質 ト)コロニーの色調 乳白色チ)コロニーの
透明度 半透明り)コロニーの光沢
輝光 ヌ)可溶性色素の生成 無 ■肉汁寒天斜面培養(30℃、3日間培養)イ)生育の
良否 生育良好、糸状口)コロニーの形
平滑 ハ)コロニーの断面の隆起状態 扁平状二)コロニーの
光沢 鈍光 ホ)コロニー表面の形状 平滑 へ)コロニーの透明度 半透明ト)コロニーの
色 乳白色■肉汁液体培養(30℃、3日
間培養)イ)生育性状 膜状 口)濁度 わずかに濁る。
ハ)ガス発生 なし
ホ)培地の着色 なし
■肉汁ゼラチン穿刺培養
ゼラチンを液化せず。
■リドマス・ミルク
凝固せず、リドマスを淡青色あるいは無色にする。
C0生理学的試験
1 硝酸塩の還元 十
2 MRテスト −
3 VPテスト −
4 インドール生産 −
5硫化水素の生成 −
6デンプンの加水分解 −
7脱窒反応 −
8クエン酸の利用 十
11 ウレアーゼ +12 オキシ
ターゼ +13 カタラーゼ
+14 生育の範囲 pH5,
5〜9.0.温度20〜37℃15 酸素に対する態
度 好気性160−FTスト(Huoh Le
ifson法による) 017 糖類からの酸及びガ
スの生成の有無糖類 酸 ガス (1)D−グルコース + −(2)D−ガラ
クトース + −(3)ショ糖 十
− (4)トレハロース + −(5)デンプン
− −以上の結果をもとにパージエイ
ズ・マニュアル・オプ・デターミネイティブ・バクテリ
オロジイ(Beraey ’ S Mantlal o
f’ QetermrnatrveB acterio
looy )第8版の記載に基づき帰層同定を行うと本
国はシュードモナス属の特徴を有する。
ターゼ +13 カタラーゼ
+14 生育の範囲 pH5,
5〜9.0.温度20〜37℃15 酸素に対する態
度 好気性160−FTスト(Huoh Le
ifson法による) 017 糖類からの酸及びガ
スの生成の有無糖類 酸 ガス (1)D−グルコース + −(2)D−ガラ
クトース + −(3)ショ糖 十
− (4)トレハロース + −(5)デンプン
− −以上の結果をもとにパージエイ
ズ・マニュアル・オプ・デターミネイティブ・バクテリ
オロジイ(Beraey ’ S Mantlal o
f’ QetermrnatrveB acterio
looy )第8版の記載に基づき帰層同定を行うと本
国はシュードモナス属の特徴を有する。
以下、本発明者らは本国をシュードモナスP 5eud
osonas OS −K −29(微工研菌寄第1
846号;FERM P−7846)と命名した。
osonas OS −K −29(微工研菌寄第1
846号;FERM P−7846)と命名した。
本発明ではラセミ体β−DCHに、この微生物を接触さ
せてS−(−)−β−DCHを分取するが、具体的には
ラセミ体β−DCHを炭素源とし、無機態窒素(各種の
アンモニア塩、硝酸塩)を窒素源としその他無機塩類を
含む合成培地中で上記細菌を培養するか、又は上記細菌
をブイヨン培地、あるいは加糖ブイヨン培地等、炭素源
、窒素源、有機栄!源、無機栄!源を含む通常よく用い
られる栄養培地中で培養せしめ、よく生育させておき、
これから得られる菌体をラセミ体β−DCHを含有する
培地中で作用させた後、5−(−)−β−DCHを分取
すればよい。
せてS−(−)−β−DCHを分取するが、具体的には
ラセミ体β−DCHを炭素源とし、無機態窒素(各種の
アンモニア塩、硝酸塩)を窒素源としその他無機塩類を
含む合成培地中で上記細菌を培養するか、又は上記細菌
をブイヨン培地、あるいは加糖ブイヨン培地等、炭素源
、窒素源、有機栄!源、無機栄!源を含む通常よく用い
られる栄養培地中で培養せしめ、よく生育させておき、
これから得られる菌体をラセミ体β−DCHを含有する
培地中で作用させた後、5−(−)−β−DCHを分取
すればよい。
炭素源としてはグルコース、シュクロース。
グリセリン等の炭水化物、あるいはクエン酸。
マレイン酸、リンゴ酸等の有機酸及びその塩類を、窒素
源としては硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硝酸
アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機態窒素、及
び尿素、ペプトン。
源としては硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硝酸
アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機態窒素、及
び尿素、ペプトン。
カゼイン、酵母エキス、肉エキス等の有機態窒素を用い
ることができる。その他の無機塩類としてはリン酸塩、
マグネシウム塩、カリ塩、マンガン塩、鉄塩、亜鉛塩、
銅塩等が用いられる。
ることができる。その他の無機塩類としてはリン酸塩、
マグネシウム塩、カリ塩、マンガン塩、鉄塩、亜鉛塩、
銅塩等が用いられる。
本国の培養は、慣用の方法で行うことができる。通常、
温度約20〜40℃、好ましくは25〜31℃、I)H
約6〜9、好ましくは11H6,5〜1.5で振盪ある
いは通気攪拌等の手段により好気的に行われる。
温度約20〜40℃、好ましくは25〜31℃、I)H
約6〜9、好ましくは11H6,5〜1.5で振盪ある
いは通気攪拌等の手段により好気的に行われる。
本発明で用いる微生物とラセミ体β−DCHを接触させ
るときのうセミ体β−DCHの濃度は培地巾約O02容
」%以下であればよく、その接触時間は通常2日〜10
日である。
るときのうセミ体β−DCHの濃度は培地巾約O02容
」%以下であればよく、その接触時間は通常2日〜10
日である。
培養終了後、培養液をとり出し遠心分離して微生物菌体
と上清液とに分離し、上清液中のβ−DCHを活性炭カ
ラム処理、エーテル抽出。
と上清液とに分離し、上清液中のβ−DCHを活性炭カ
ラム処理、エーテル抽出。
減圧蒸留等の操作によって分取する。
以下実施例により説明する。実施例中%は特に記さない
限り重量%を表わす。
限り重量%を表わす。
実施例1
ラセミ体β−DCHを唯一の炭素源とした培地、すなわ
ち ラセミ体β−D CH0,2容量% 硫安 0.05%硝安
0.05%りん酸水素第2カリウ
ム 1.0%りん酸第2ナトリウム 1
.0%りん酸第1ナトリウム 2.0%硫酸マ
グネシウム 0.05%硫酸鉄、硫酸銅、
硫酸マンガン 微量 1)H6,5 を含む培地i o o 、1を有する10個の坂ロフラ
スコ(500mJ容)に本国O8−に一29株の傾斜寒
天培地から 1白金耳ずつ植菌を行い、30℃で振盪培
養を3〜5日間実施する。次に上記組成の培地20gを
入れた25!容培養器(ジャーファメンター)に上記前
培養分を加え、−以下の条件下で3〜5日間通気攪拌培
養した。
ち ラセミ体β−D CH0,2容量% 硫安 0.05%硝安
0.05%りん酸水素第2カリウ
ム 1.0%りん酸第2ナトリウム 1
.0%りん酸第1ナトリウム 2.0%硫酸マ
グネシウム 0.05%硫酸鉄、硫酸銅、
硫酸マンガン 微量 1)H6,5 を含む培地i o o 、1を有する10個の坂ロフラ
スコ(500mJ容)に本国O8−に一29株の傾斜寒
天培地から 1白金耳ずつ植菌を行い、30℃で振盪培
養を3〜5日間実施する。次に上記組成の培地20gを
入れた25!容培養器(ジャーファメンター)に上記前
培養分を加え、−以下の条件下で3〜5日間通気攪拌培
養した。
温度30℃
pH初発6.5
通気量 20β/1n
回転数 30Orpm
培養終了後、培養液を取り出し、遠心分離機を用いて微
生物菌体とその上溝液とに分離し、この中に残存するβ
−DCHを活性炭カラム処理。
生物菌体とその上溝液とに分離し、この中に残存するβ
−DCHを活性炭カラム処理。
エーテル抽出、減圧蒸留によって油状物質として6.6
9採取した。本物質の同定は次の方法で行った。
9採取した。本物質の同定は次の方法で行った。
1)ガスクロマトグラフィーによる同定。
カラム担体P E G −20M P 、 5%、6
0〜80メツシユを用いて市販β−DCHと比較した結
果、その保持時間は全く同じであった。純度98.2%
以上。
0〜80メツシユを用いて市販β−DCHと比較した結
果、その保持時間は全く同じであった。純度98.2%
以上。
2)IR(赤外吸収スペクトル)による同定。
第1図に示したチャートのように、その吸収パターンは
市販β−DCHと全く同一であった。
市販β−DCHと全く同一であった。
以上から本物質は明らかにβ−DCHである事が判明し
た。又本物質がS−(−)−β−DCHである事の確認
は以下の方法によった。
た。又本物質がS−(−)−β−DCHである事の確認
は以下の方法によった。
1)旋光度の測定。
市販β−DCH及び本物質の旋光度は次の如くである。
市販β−DCH(α〕管= 0.OC−1゜アセトン
(α)l’−0,OC−1゜
ジクロロメタン
本 物 質 〔α〕 管 =+ 3.
5 G= 1. ・アセトン 〔α〕管=−12.OC= 1゜ ジクロロメタン 2)R−(+)−α−メトキシ−α−トリフルオロメチ
ルフェニルアセテートエステルの調整ならびに高速液体
クロマトグラフィーによる分析。
5 G= 1. ・アセトン 〔α〕管=−12.OC= 1゜ ジクロロメタン 2)R−(+)−α−メトキシ−α−トリフルオロメチ
ルフェニルアセテートエステルの調整ならびに高速液体
クロマトグラフィーによる分析。
R−(+)−α−メトキシ−α−トリフルオOメチルフ
ェニルアセテートクOライドを市販β−DCHならびに
本物質に反応せしめ、そのエステル誘導体を調整した後
、液体クロマトグラフィーでの分析結果は次のようであ
った。
ェニルアセテートクOライドを市販β−DCHならびに
本物質に反応せしめ、そのエステル誘導体を調整した後
、液体クロマトグラフィーでの分析結果は次のようであ
った。
分析条件
カラム担体 ZORBAxODS
4.6vmX25CI (Du Pont社製)溶出
液 メタノール:水−65:35(V/V)溶出1
1w1/gin 検出法 260n−における吸光度分析結果 市販β−DCH保持時間50.5分及び52.0分に同
一面積をもつ2つのピーク を与えた。
液 メタノール:水−65:35(V/V)溶出1
1w1/gin 検出法 260n−における吸光度分析結果 市販β−DCH保持時間50.5分及び52.0分に同
一面積をもつ2つのピーク を与えた。
本 物 質 保持時間50.5分にのみピークを与
え52.0分にはピークを与 えなかった。
え52.0分にはピークを与 えなかった。
3)ジクロロプロピル−N−フェニルカルバメートの調
整及びその旋光度。
整及びその旋光度。
市販β−DCH1及び本物質1ワとフェニルイソシアネ
ート0.99を乾燥アセトン30wLトリエチルアミン
0.3*1に加え、約3時間加熱還流し、そのジクaO
プaビルーN−フェニルカルバメートを調整した後、そ
の比旋光度を測定した。
ート0.99を乾燥アセトン30wLトリエチルアミン
0.3*1に加え、約3時間加熱還流し、そのジクaO
プaビルーN−フェニルカルバメートを調整した後、そ
の比旋光度を測定した。
市販β−DCH(α〕管−0,0G−1゜メタノール
本 物 質 〔α〕 管 −−16,4
G−1゜メタノール 以上の結果から本物質は、S−(−)−β−DCHであ
り、その光学純度は99%以上であることが判った。
G−1゜メタノール 以上の結果から本物質は、S−(−)−β−DCHであ
り、その光学純度は99%以上であることが判った。
実施例2
肉エキス1.0%、ポリペプトン1.0%、グルコース
0.5%、1)H7なる培地100−を有する5個の坂
ロフラスコ(500mJ容)を常法どおり、加圧蒸気滅
菌後、菌株DCH−1株の傾斜寒天培地から菌株を1白
金耳ずつ接種する。各々のフラスコは30℃下で48時
間往復振盪培養(200rpm+ )を行う。
0.5%、1)H7なる培地100−を有する5個の坂
ロフラスコ(500mJ容)を常法どおり、加圧蒸気滅
菌後、菌株DCH−1株の傾斜寒天培地から菌株を1白
金耳ずつ接種する。各々のフラスコは30℃下で48時
間往復振盪培養(200rpm+ )を行う。
次に上記組成の培地201を301容ジャーフ?メンタ
−に入れ、常法どおり加圧蒸気滅菌後、各々のフラスコ
で生育せしめた微生物菌体を無菌的に接種せしめ、次の
条件下で48時間培養する。
−に入れ、常法どおり加圧蒸気滅菌後、各々のフラスコ
で生育せしめた微生物菌体を無菌的に接種せしめ、次の
条件下で48時間培養する。
温度30℃
DH初発pi−17,0
通気1 20# /sin
回転数 300rpm
培養の終了した培養液は遠心分離機にて微生物菌体と上
清液とに分離し、上清液は廃棄する。
清液とに分離し、上清液は廃棄する。
残った微生物菌体は501Mりん酸緩衝液pH6,5に
て3回〜4回洗浄し洗浄菌体を得る。次にこの洗浄国体
を実施例1で示したラセミ体DCHを含有する培地20
gに懸濁させ、次の条件下に保持する。
て3回〜4回洗浄し洗浄菌体を得る。次にこの洗浄国体
を実施例1で示したラセミ体DCHを含有する培地20
gに懸濁させ、次の条件下に保持する。
温度30℃
通気量 201 /Win
回転数 300rpm
OH5,5(炭酸カルシウムを209加えて保持する)
洗浄菌体を培地に加えてから48時間、上記の様に通気
攪拌培養し、再び遠心分離機にて微生物国体と上清液と
に分離した。上清液からのβ−DCHの分離は実施例1
と同様にし、β−DCH7,Qgを得た。このβ−DC
Hは、実施例1に示したように各種の分析を行った結果
、光学純度99%以上のS−(−)−β−DCHであっ
た。
攪拌培養し、再び遠心分離機にて微生物国体と上清液と
に分離した。上清液からのβ−DCHの分離は実施例1
と同様にし、β−DCH7,Qgを得た。このβ−DC
Hは、実施例1に示したように各種の分析を行った結果
、光学純度99%以上のS−(−)−β−DCHであっ
た。
(発明の効果)
本発明によれば土壌中より分離した新菌種を利用して直
接2,3−ジクロロ−1−プロパノールの光学活性化を
行うことができる。
接2,3−ジクロロ−1−プロパノールの光学活性化を
行うことができる。
第1図は実施例1により得られた5−(−)−2,3−
ジクロロ−1−プロパノールおよび市成品の同物質の赤
外線吸収スペクトルである。
ジクロロ−1−プロパノールおよび市成品の同物質の赤
外線吸収スペクトルである。
Claims (1)
- R−(+)−2,3−ジクロロ−1−プロパノール資化
能を有するシュードモナス属に属する細菌、又はその培
養菌体を、培地でラセミ体2,3−ジクロル−1−プロ
パノールと作用せしめて5−(−)−2,3−ジクロロ
−1−プロパノールを分取することを特徴とする微生物
処理による光学活性なジクロロプロパノールの製法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP25460784A JPS61132196A (ja) | 1984-11-30 | 1984-11-30 | 微生物処理による光学活性なジクロロプロパノ−ルの製法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP25460784A JPS61132196A (ja) | 1984-11-30 | 1984-11-30 | 微生物処理による光学活性なジクロロプロパノ−ルの製法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS61132196A true JPS61132196A (ja) | 1986-06-19 |
| JPH0135640B2 JPH0135640B2 (ja) | 1989-07-26 |
Family
ID=17267379
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP25460784A Granted JPS61132196A (ja) | 1984-11-30 | 1984-11-30 | 微生物処理による光学活性なジクロロプロパノ−ルの製法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS61132196A (ja) |
-
1984
- 1984-11-30 JP JP25460784A patent/JPS61132196A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0135640B2 (ja) | 1989-07-26 |
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