JPH0153039B2 - - Google Patents

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JPH0153039B2
JPH0153039B2 JP56146879A JP14687981A JPH0153039B2 JP H0153039 B2 JPH0153039 B2 JP H0153039B2 JP 56146879 A JP56146879 A JP 56146879A JP 14687981 A JP14687981 A JP 14687981A JP H0153039 B2 JPH0153039 B2 JP H0153039B2
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JP
Japan
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propynylcyclopentenolone
ester
optically active
culture
carboxylic acid
Prior art date
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JP56146879A
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Japanese (ja)
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JPS5847495A (en
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Masaru Mitsuta
Hideo Hirohara
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Sumitomo Chemical Co Ltd
Original Assignee
Sumitomo Chemical Co Ltd
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Publication date
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Publication of JPH0153039B2 publication Critical patent/JPH0153039B2/ja
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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明は下記式()でしめされる(±)−4
−ヒドロキシ−3−メチル−2−2′−プロピニル
−2−シクロペンテノンの生化学的光学分割法に
関する。さらに詳しくは、アルスロバクター属、
シユードモナス属、アクロモバクター属、アルカ
リゲネス属またはトリコデルマ属に属する微生物
が生産するエステラーゼを(±)−4−ヒドロキ
シ−3−メチル−2−2′−プロピニル−2−シク
ロペンテノンの有機カルボン酸(炭素数1〜18個
の飽和または不飽和のカルボン酸)エステルに作
用させて不斉加水分解して、光学純度の高い光学
活性4−ヒドロキシ−3−メチル−2−2′−プロ
ピニル−2−シクロペンテノンとその対掌体のエ
ステルを得る工業的に有利な4−ヒドロキシ−3
−メチル−2−2′−プロピニル−2−シクロペン
テノンの生化学的光学分割法に関する。 本発明の対象である4−ヒドロキシ−3−メチ
ル−2−2′−プロピニル−2−シクロペンテノン
(以後、これをプロピニルシクロペンテノロンと
略称する。)は、優れた殺虫活性を有するいわゆ
る合成ピレスロイドと呼ばれる一群のエステル化
合物の重要なアルコール成分の1つとして知られ
ている。 例えば該プロピニルシクロペンテノロンの2,
2,3,3−チトラメチルシクロプロパンカルボ
ン酸とのエステルである下記式()で示される
化合物は極めて強いノツクダウン効力および致死
効力を有する優れた殺虫剤である(特公昭50−
15843号公報)。 プロピニルシクロペンテノロンは4位に不斉炭
素を有するために2種の光学異性体が存在し通常
これらのエステルとしての活性は大きく異なる。
例えば上記式()で示されるエステルにおいて
は(+)−プロピニルシクロペンテノロンのエス
テルは対応する(−)−プロピニルシクロペンテ
ノロンのエステルに比し、その殺虫効力は数倍優
れている。従つて通常の製造法により得られる
(±)−プロピニルシクロペンテノロンを工業的に
も有利に光学分割する技術が望まれている。 光学活性プロピニルシクロペンテノロンを製造
する方法としては、(±)−プロピニルシクロペン
テノロンをフタル酸の半エステルとし、次いでこ
れを光学活性アミンを反応させ、光学活性プロピ
ニルシクロペンテノロンのジアステレオマー塩を
生成させ、これを分離し、使用したアミンと半エ
ステルとして回収し、得られた半エステルを加水
分解することにより光学活性プロピニルシクロペ
ンテノロンを得る方法が知られている(特開昭56
−2929号公報)。しかし、この方法は通算収率が
低いこと、複雑な工程を必要とすること、および
高価な光学活性試薬を必要とすることなどの点
で、必ずしも充分な方法とは言い難い。 本発明者らはこれらの諸問題点を克服し工業的
にもより有利な(±)−プロピニルシクロペンテ
ノロンの光学分割法を確立すべく研究を重ねた結
果、アルスロバクター属、シユードモナス属、ア
クロモバクター属、アルカリゲネス属またはトリ
コデルマ属に属する微生物が生産するエステラー
ゼを(±)−プロピニルシクロペンテノロンの有
機カルボン酸(炭素数1〜18個の飽和または不飽
和の有機カルボン酸)エステルに作用させること
により光学純度の高い光学活性プロピニルシクロ
ペンテノロンとその対掌体のエステルが得られる
ことを見い出し、これに種々の検討を加え本発明
を完成するに至つた。次に本発明を詳細に説明す
る。本発明方法において原料として使用される
(±)−プロピニルシクロペンテノロンの有機カル
ボン酸(炭素数1〜18個の飽和の有機カルボン
酸)エステルの製造は、エステル製造の常法、例
えば(±)−プロピニルシクロペンテノロンに有
機カルボン酸の無水物を反応させる方法あるいは
有機カルボン酸クロライドを有機塩基の存在下で
反応させることなどにより容易に製造することが
できる。 本発明で使用されるエステラーゼを生産する微
生物としては、アルスロバクター属、シユードモ
ナス属、アクロモバクター属、アルカリゲネス属
またはトリコデルマ属に属する微生物であつてリ
パーゼを含む広義のエステラーゼを生産する微生
物である。 これらの各属に属する代表的な菌株名を下記に
例示するが、本発明の微生物はこれらの例示限定
されるものではない。 (1) アルスロバクター・シンプレツクス
(Arthrobacter simplex) IFO 3530 (2) シユードモナス・フルオレツセンス
(Psecudomonas fluorescens) IFO 3081 (3) アルカリゲネス・フエーカリス
(Alcaligenes faecalis) IFO 12669 (4) トリコデルマ・ビリデ(Trichoderma
viride) IFO 4847 これらの菌株はいずれもAmerican Type
Culture Collection(ATCC)または大阪市の財
団法人醗酵研究所(IFO)に保存され、これらの
保存機関より入手することができる。 上記微生物の培養は、通常常法に従つて液体培
養を行なうことにより培養液を得る。例えば滅菌
した液体培地〔かび類、酵母類用には麦芽エキ
ス・酵母エキス培地(水1にペプトン5.0g、
グルコース10.0g、麦芽エキス3.0g、酵母エキ
ス3.0gを溶解し、PH6.5とする)、細菌類用には
加糖ブイヨン培地(水1にグルコース10.0g、
ペプトン5.0g、肉エキス5.0g、NaCl3.0gを溶
解しPH7.2とする)〕に微生物を接種し、通常20〜
40℃で1〜3日間往復振盪培養を行なう。また必
要に応じて固体培養を行つてもよい。 また、これらの微生物起源のエステラーゼのな
かには市販されているものがあり、容易に入手す
ることができる。市販エステラーゼの具体例とし
てはシユードモナス属のリパーゼ(天野製薬製)、
アルカリゲネス属のリパーゼ(リパーゼPL(各糖
産業製))、アクロモバクター属のリパーゼ(リパ
ーゼAL(各糖産業製))、アルスロバクター属のリ
パーゼ(リパーゼ合同BSL(合同酒精製))など
が挙げられる。 本発明方法を実施するに際し、(±)−プロピニ
ルシクロペンテノロンの有機カルボン酸(炭素数
1〜18個の飽和または不飽和のカルボン酸)エス
テルの不斉加水分解は、上記微生物を培養した培
養液、培養液から分離した菌体、エステラーゼを
含有する培養濾液、あるいは各種酵素分離法によ
つて菌体または培養濾液から分離した粗製エステ
ラーゼ、精製エステラーゼおよびエステラーゼ含
有抽出液または濃縮液と(±)−プロピニルシク
ロペンテノロンの有機カルボン酸エステルを混合
し、撹拌または振盪することにより行われる。ま
た、固定化菌体あるいは固定化エステラーゼも使
用することもできる。 (±)−プロピニルシクロペンテノロンの有機
カルボン酸エステルの不斉加水分解を行なう条件
としては、反応温度は10〜70℃が適当であり、好
熱菌の培養液または好熱菌の培養により得られた
耐熱性エステラーゼでは50〜65℃中温菌の培養液
または特に耐熱性を有しないエステラーゼでは20
〜50℃が好ましい。 反応時間は通常3〜48時間であるが、反応温度
を高めたり酵素量を増加させるなどにより反応時
間の短縮も可能である。 反応中のPHは好アルカリ性菌の培養液のアルカ
リ性エステラーゼではPH8〜11、好アルカリ性で
ない微生物の培養液や耐アルカリ性を有しないエ
ステラーゼではPH5〜8が好ましい。また、加水
分解によつて生成する有機カルボン酸を中和し、
反応中のPHを一定に保つために緩衝液の使用が好
ましく、リン酸ナトリウム、リン酸カリウムなど
の無機酸塩の緩衝液、酢酸ナトリウム、クエン酸
ナトリウムなどの有機酸塩の緩衝液を使用するこ
とができる。 基質である(±)−プロピニルシクロペンテノ
ロンの有機カルボン酸エステルの使用濃度は反応
液に対し1〜50wt%であり、好ましくは5〜
25wt%である。 次に、このようにして不斉加水分解反応を行つ
た後、遊離した光学活性プロピニルシクロペンテ
ノロンと未反応の対掌体エステルを分離回収す
る。この分離回収に際しては水蒸気蒸留、溶媒抽
出、分別蒸留、カラムクロマトグラフイーなどの
操作を適宜採用することができる。例えば反応液
を水蒸気蒸留し留生物をエーテル抽出するかある
いは直接反応液をエーテル、酢酸エチル、ベンゼ
ンなどの有機溶媒で抽出し、この抽出物を分別蒸
留し光学活性プロピニルシクロペンテノロンとそ
の対掌体のエステルを分離取得するか、または抽
出物をシリカゲルのカラムクロマトグラフイーに
かけ、例えばトルエン−酢酸エチル(5:1)溶
液で溶出することにより、先ず光学活性プロピニ
ルシクロペンテノロンの有機カルボン酸エステル
が分離され、次いでトルエン−酢酸エチル(2:
1)溶液で溶出を行なうことによりその対掌体の
遊離のプロピニルシクロペンテノロンが分離され
る。 また、以上のようにして分離された光学活性プ
ロピニルシクロペンテノロンのエステルは、さら
に脱アシル化することにより容易に光学活性プロ
ピニルシクロペンテノロンに導くことができる。
脱アシル化の方法としては例えばプロピニルシク
ロペンテノロンの有機カルボン酸エステルに水お
よび当量の炭酸水素ナトリウムを加え、次いで10
%HClを加え、PH5に調製した後、8時間攪拌下
に還流を行なうと容易にプロピニルシクロペンテ
ノロンが分離される。 以上、詳細に説明したように本発明方法による
(±)−プロピニルシクロペンテノロンの光学分割
は従来知られている有機合成化学的光学分割法に
比べ工程が簡略であり、また高価な光学活性試薬
を必要としないので経済的に有利である。 さらに得られる光学活性プロピニルシクロペン
テノロンの収率、光学純度が高く工業的に極めて
有利である。 次に、本発明を実施例によつてさらに詳細に説
明するが、本発明はこれによつて限定されるもの
ではない。 実施例 1〜4 (±)−プロピニルシクロペンテノロンの酢酸
エステル1.0gと表1に記載した各エステラーゼ
20mgを緩衝液(PH7.0、McIlvaine緩衝液またはPH
9.5、0.2M濃度のNa2CO3−NaHCO3緩衝液)10
mlに加え、30℃で攪拌子を用いて激しく撹拌しつ
つ反応させた。24時間反応を行なつた後、反応物
を酢酸エチルで抽出した。抽出液をガスクロマト
グラフイー(5%DEGS、1.1m、180℃)で分析
し、プロピニルシクロペンテノロンの酢酸エステ
ルとプロピニルシクロペンテノロンのピーク面積
比より加水分解率を算出し下記の結果を得た。抽
出液を濃縮し、シリカゲルカラムクロマトグラフ
イーにかけ、トルエン−酢酸エチル(5:1)溶
液で溶出を行ない未反応のプロピニルシクロペン
テノロンの酢酸エステルを分離取得し、さらにト
ルエン−酢酸エチル(2:1)溶液で溶出し、遊
離プロピニルシクロペンテノロンを取得した。 ここで得られた遊離プロピニルシクロペンテノ
ロンのうち10mgをトルエン1mlに溶解し、ピリジ
ン0.2ml、(−)−α−メトキシ−α−トリフルオ
ロメチルフエニル酢酸クロライド((−)−
MTPAクロライド)45mgを加え、一時間加熱還
留しプロピニルシクロペンテノロンの(−)−
MTPAジアステレオマーとし、ガスクロマトグ
ラフイー(シリコンDCQF−1、30mキヤピラリ
ーカラム、180℃)で光学異性体分析を行ない、
(+)−プロピニルシクロペンテノロンのジアステ
レオマーと(−)−プロピニルシクロペンテノロ
ンのジアステレオマーのピーク面積比より遊離プ
ロピニルシクロペンテノロンの光学異性体型およ
び光学純度を求めた。 一方、カラムクロマトグラフイーの操作により
得られた未反応エステルに水5ml、エステルと当
量の炭酸水素ナトリウムを加え、さらに10%HCl
水を加えPH5に調整した後、8時間攪拌下に還留
し脱アシル化を行なつた。反応液を冷却後酢酸エ
チル、水および食塩を加え抽出し、溶媒を留去後
得られた油状物をシリカゲルカラムクロマトグラ
フイーにかけトルエン−酢酸エチル(2:1)溶
液で溶出し、光学活性プロピニルシクロペンテノ
ロンを分離取得した。 このプロピニルシクロペンテノロンを上記と同
様にしてガスクロマトグラフイーにて光学異性体
比を分析し未反応エステルの光学異性体型および
光学純度を求めた。結果を表1に示す。
The present invention is represented by the following formula () (±)-4
This invention relates to a biochemical optical resolution method of -hydroxy-3-methyl-2-2'-propynyl-2-cyclopentenone. For more information, see Arthrobacter spp.
The organic carboxylic acid (±)-4-hydroxy-3-methyl-2-2'-propynyl-2-cyclopentenone (±)-4-hydroxy-3-methyl-2-2'-propynyl-2-cyclopentenone ( Asymmetrically hydrolyzing esters of saturated or unsaturated carboxylic acids having 1 to 18 carbon atoms to produce optically active 4-hydroxy-3-methyl-2-2'-propynyl-2- with high optical purity. Industrially advantageous 4-hydroxy-3 to obtain esters of cyclopentenone and its enantiomer
-Relates to a biochemical optical resolution method of methyl-2-2'-propynyl-2-cyclopentenone. 4-Hydroxy-3-methyl-2-2'-propynyl-2-cyclopentenone (hereinafter abbreviated as propynylcyclopentenolone), which is the subject of the present invention, is a so-called synthetic compound with excellent insecticidal activity. It is known as one of the important alcohol components of a group of ester compounds called pyrethroids. For example, 2 of the propynylcyclopentenolone,
The compound represented by the following formula (), which is an ester with 2,3,3-titramethylcyclopropanecarboxylic acid, is an excellent insecticide with extremely strong knock-down and lethal effects.
Publication No. 15843). Since propynylcyclopentenolone has an asymmetric carbon at the 4-position, there are two types of optical isomers, and the activities of these esters usually differ greatly.
For example, among the esters represented by the above formula (), the insecticidal efficacy of (+)-propynylcyclopentenolone ester is several times superior to that of the corresponding (-)-propynylcyclopentenolone ester. Therefore, there is a need for an industrially advantageous technique for optically resolving (±)-propynylcyclopentenolone obtained by conventional production methods. As a method for producing optically active propynylcyclopentenolone, (±)-propynylcyclopentenolone is made into a half ester of phthalic acid, and then this is reacted with an optically active amine to form a diastereomeric salt of optically active propynylcyclopentenolone. A known method is to produce optically active propynylcyclopentenolone by separating it, recovering it from the used amine as a half ester, and hydrolyzing the obtained half ester (Japanese Unexamined Patent Application Publication No. 1989-1999).
-2929 Publication). However, this method is not necessarily sufficient because it has a low total yield, requires complicated steps, and requires expensive optically active reagents. The present inventors have conducted extensive research to overcome these problems and establish an industrially more advantageous optical resolution method for (±)-propynylcyclopentenolone. Esterase produced by microorganisms belonging to the genus Achromobacter, Alcaligenes, or Trichoderma acts on organic carboxylic acid (saturated or unsaturated organic carboxylic acid having 1 to 18 carbon atoms) ester of (±)-propynylcyclopentenolone. The inventors have discovered that optically active propynylcyclopentenolone and its enantiomer ester with high optical purity can be obtained by this process, and have completed the present invention by conducting various studies on this. Next, the present invention will be explained in detail. The organic carboxylic acid (saturated organic carboxylic acid having 1 to 18 carbon atoms) ester of (±)-propynylcyclopentenolone used as a raw material in the method of the present invention can be produced by a conventional method for producing esters, such as (±)-propynylcyclopentenolone. -Propynyl It can be easily produced by reacting cyclopentenolone with an anhydride of an organic carboxylic acid or by reacting an organic carboxylic acid chloride in the presence of an organic base. The esterase-producing microorganism used in the present invention is a microorganism that belongs to the genus Arthrobacter, Pseudomonas, Achromobacter, Alcaligenes, or Trichoderma and that produces esterase in a broad sense including lipase. . Representative strain names belonging to each of these genera are illustrated below, but the microorganisms of the present invention are not limited to these examples. (1) Arthrobacter simplex IFO 3530 (2) Psecudomonas fluorescens IFO 3081 (3) Alcaligenes faecalis IFO 12669 (4) Trichoderma viride
viride) IFO 4847 All of these strains are American Type
It is preserved at the Culture Collection (ATCC) or the Institute of Fermentation (IFO) in Osaka City, and can be obtained from these institutions. For culturing the above-mentioned microorganisms, a culture solution is usually obtained by performing liquid culture according to a conventional method. For example, a sterilized liquid medium [for mold and yeast, malt extract/yeast extract medium (5.0 g of peptone in 1 part water,
Dissolve 10.0 g of glucose, 3.0 g of malt extract, and 3.0 g of yeast extract and adjust the pH to 6.5). For bacteria, use sweetened bouillon medium (10.0 g of glucose in 1 part water,
Dissolve 5.0 g of peptone, 5.0 g of meat extract, and 3.0 g of NaCl to give a pH of 7.2)] and inoculate it with microorganisms.
Carry out reciprocal shaking culture at 40°C for 1 to 3 days. Further, solid culture may be performed as necessary. Furthermore, some of these microbial-derived esterases are commercially available and can be easily obtained. Specific examples of commercially available esterases include Pseudomonas lipase (manufactured by Amano Pharmaceutical);
Lipase of the genus Alcaligenes (Lipase PL (manufactured by each sugar industry)), lipase of the genus Achromobacter (Lipase AL (manufactured by each sugar industry)), lipase of the genus Arthrobacter (Lipase Joint BSL (Joint Sake Refining)), etc. Can be mentioned. When carrying out the method of the present invention, the asymmetric hydrolysis of organic carboxylic acid (saturated or unsaturated carboxylic acid having 1 to 18 carbon atoms) ester of (±)-propynylcyclopentenolone is carried out using a culture of the above-mentioned microorganisms. liquid, bacterial cells isolated from culture liquid, culture filtrate containing esterase, crude esterase, purified esterase, and esterase-containing extract or concentrate separated from bacterial cells or culture filtrate by various enzyme separation methods (±) - by mixing the organic carboxylic acid ester of propynylcyclopentenolone and stirring or shaking. Furthermore, immobilized bacterial cells or immobilized esterase can also be used. The appropriate reaction temperature for asymmetric hydrolysis of the organic carboxylic acid ester of (±)-propynylcyclopentenolone is 10 to 70°C. 50-65℃ for thermostable esterases or 20℃ for esterases that are not particularly thermostable.
~50°C is preferred. The reaction time is usually 3 to 48 hours, but the reaction time can be shortened by raising the reaction temperature or increasing the amount of enzyme. The pH during the reaction is preferably PH8 to 11 for alkaline esterase from a culture of an alkalophilic microorganism, and PH5 to 8 for a culture of a microorganism that is not alkalophilic or an esterase that does not have alkali resistance. It also neutralizes organic carboxylic acids produced by hydrolysis,
In order to keep the pH constant during the reaction, it is preferable to use a buffer, and use an inorganic acid salt buffer such as sodium phosphate or potassium phosphate, or an organic acid salt buffer such as sodium acetate or sodium citrate. be able to. The concentration of the organic carboxylic acid ester of (±)-propynylcyclopentenolone, which is the substrate, is 1 to 50 wt%, preferably 5 to 50 wt%, based on the reaction solution.
It is 25wt%. Next, after carrying out the asymmetric hydrolysis reaction in this manner, the liberated optically active propynylcyclopentenolone and the unreacted enantiomer ester are separated and recovered. For this separation and recovery, operations such as steam distillation, solvent extraction, fractional distillation, column chromatography, etc. can be appropriately employed. For example, the reaction solution is steam-distilled and the distillate is extracted with ether, or the reaction solution is directly extracted with an organic solvent such as ether, ethyl acetate, or benzene, and this extract is fractionally distilled to produce optically active propynylcyclopentenolone and its opposite compound. The optically active organic carboxylic acid ester of propynylcyclopentenolone is first isolated by separating and obtaining the ester of the optically active propynylcyclopentenolone, or by subjecting the extract to column chromatography on silica gel and eluting with a toluene-ethyl acetate (5:1) solution. was separated and then toluene-ethyl acetate (2:
1) Free propynylcyclopentenolone, its enantiomer, is separated by elution with a solution. Furthermore, the ester of optically active propynylcyclopentenolone separated as described above can be easily led to optically active propynylcyclopentenolone by further deacylation.
For example, water and an equivalent amount of sodium hydrogen carbonate are added to the organic carboxylic acid ester of propynylcyclopentenolone, and then 10
After adjusting the pH to 5 by adding % HCl, propynylcyclopentenolone is easily separated by refluxing with stirring for 8 hours. As explained in detail above, the optical resolution of (±)-propynylcyclopentenolone by the method of the present invention is a simpler process than the conventionally known organic synthetic chemical optical resolution method, and also requires the use of expensive optically active reagents. It is economically advantageous because it does not require Furthermore, the optically active propynylcyclopentenolone obtained has a high yield and optical purity, and is extremely advantageous industrially. Next, the present invention will be explained in more detail with reference to Examples, but the present invention is not limited thereto. Examples 1 to 4 1.0 g of (±)-propynylcyclopentenolone acetate and each esterase listed in Table 1
20mg buffer (PH7.0, McIlvaine buffer or PH
9.5, 0.2M concentration of Na2CO3 NaHCO3 buffer) 10
ml and reacted at 30°C with vigorous stirring using a stirrer. After reacting for 24 hours, the reaction product was extracted with ethyl acetate. The extract was analyzed by gas chromatography (5% DEGS, 1.1m, 180°C), and the hydrolysis rate was calculated from the peak area ratio of propynylcyclopentenolone acetate and propynylcyclopentenolone, and the following results were obtained. . The extract was concentrated and subjected to silica gel column chromatography, eluted with a toluene-ethyl acetate (5:1) solution to separate and obtain unreacted propynylcyclopentenolone acetate, and then toluene-ethyl acetate (2:1). 1) Free propynylcyclopentenolone was obtained by elution with the solution. 10 mg of the free propynylcyclopentenolone obtained here was dissolved in 1 ml of toluene, 0.2 ml of pyridine, (-)-α-methoxy-α-trifluoromethylphenylacetic acid chloride ((-)-
Add 45 mg of MTPA chloride) and heat under reflux for 1 hour to obtain (-)- of propynylcyclopentenolone.
Optical isomer analysis was performed using gas chromatography (silicon DCQF-1, 30m capillary column, 180℃) as MTPA diastereomer.
The optical isomer type and optical purity of free propynylcyclopentenolone were determined from the peak area ratio of the diastereomer of (+)-propynylcyclopentenolone and the diastereomer of (-)-propynylcyclopentenolone. Meanwhile, 5 ml of water and an equivalent amount of sodium hydrogen carbonate to the ester were added to the unreacted ester obtained by column chromatography, and then 10% HCl was added.
After adjusting the pH to 5 by adding water, the mixture was refluxed under stirring for 8 hours to perform deacylation. After cooling the reaction solution, ethyl acetate, water and salt were added for extraction. After distilling off the solvent, the resulting oil was subjected to silica gel column chromatography and eluted with a toluene-ethyl acetate (2:1) solution to obtain optically active propynyl. Cyclopentenolone was isolated and obtained. The optical isomer ratio of this propynylcyclopentenolone was analyzed by gas chromatography in the same manner as above to determine the optical isomer type and optical purity of the unreacted ester. The results are shown in Table 1.

【表】 実施例 5〜7 (±)−プロピニルシクロペンテノロンのカプ
リン酸エステル0.65gと表2に記載した各エステ
ラーゼ10mgを緩衝液5mlに加え、30℃で攪拌子を
用いて激しく攪拌しつつ24時間反応させた。以
後、実施例1〜4と同様の操作を行ない表2の結
果を得た。
[Table] Examples 5 to 7 0.65 g of capric acid ester of (±)-propynylcyclopentenolone and 10 mg of each esterase listed in Table 2 were added to 5 ml of buffer solution, and the mixture was stirred vigorously using a stirrer at 30°C. The reaction was allowed to proceed for 24 hours. Thereafter, the same operations as in Examples 1 to 4 were performed to obtain the results shown in Table 2.

【表】 実施例 8〜9 500ml肩付フラスコに液体培地〔カビ類、酵母
類用(実施例9)には麦芽エキス、酵母エキス培
地(水1にペプトン5.0gグルコース10.0g麦
芽エキス3.0g、酵母エキス3.0gを溶解し、PH6.5
とする。)細菌類用(実施例8)には加糖ブイヨ
ン培地(水1にグルコース10.0g、ペプトン
5.0g、肉エキス5.0g、NaCl3.0gを溶解し、PH
7.2とする。)〕100mlを入れて殺菌した後、表4に
記載した各微生物を斜面培養から2白金耳接種
し、30℃で48時間往復振盪培養した。次いでこの
培養液に(±)−プロピニルシクロペンテノロン
の酢酸エステル7gを加え、30℃で24時間往復振
盪した後、反応液を水蒸気蒸留し、留出物をエー
テル抽出した。抽出物を濃縮し、実施例1〜4と
同様のカラムクロマトグラフイー操作により遊離
プロピニルシクロペンテノロンを取得した。この
遊離プロピニルシクロペンテノロンを実施例1〜
4と同様の操作により光学異性体分析した。その
結果を表3に示す。
[Table] Examples 8 to 9 Liquid medium in a 500ml shoulder flask [For molds and yeasts (Example 9), malt extract, yeast extract medium (1 part water to 5.0 g peptone, 10.0 g glucose, 3.0 g malt extract, Dissolve 3.0g of yeast extract, pH6.5
shall be. ) For bacteria (Example 8), sweetened bouillon medium (10.0 g glucose, peptone in 1 part water)
Dissolve 5.0g, meat extract 5.0g, NaCl 3.0g, pH
7.2. )] After sterilization, two platinum loops of each microorganism listed in Table 4 were inoculated from the slant culture, and cultured with reciprocating shaking at 30°C for 48 hours. Next, 7 g of (±)-propynylcyclopentenolone acetate was added to this culture solution, and after shaking the mixture reciprocally at 30° C. for 24 hours, the reaction solution was steam distilled, and the distillate was extracted with ether. The extract was concentrated, and free propynylcyclopentenolone was obtained by the same column chromatography operation as in Examples 1 to 4. This free propynylcyclopentenolone was prepared from Examples 1 to 2.
Optical isomer analysis was performed in the same manner as in 4. The results are shown in Table 3.

【表】 実施例 10 実施例9と同様の方法で調製したトリコデル
マ・ビリデIFO4847の培養液1を濾過して培養
濾液を得た。この培養濾液30mlを3倍に濃縮し、
(±)−プロピニルシクロペンテノロンのギ酸エス
テル1.5gを加え、30℃で攪拌子を用いて激しく
攪拌しつつ30時間反応させた。以後実施例1〜4
と同様の操作を行ない表4の結果を得た。
[Table] Example 10 Culture solution 1 of Trichoderma viride IFO4847 prepared in the same manner as in Example 9 was filtered to obtain a culture filtrate. Concentrate 30ml of this culture filtrate 3 times,
1.5 g of formic acid ester of (±)-propynylcyclopentenolone was added, and the mixture was reacted at 30° C. for 30 hours with vigorous stirring using a stirrer. Hereinafter Examples 1 to 4
The same operation as above was performed to obtain the results shown in Table 4.

【表】【table】

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 1 アルスロバクター属、シユードモナス属、ア
クロモバクター属、アルカリゲネス属またはトリ
コデルマ属に属する微生物が生産するエステラー
ゼを(±)−4−ヒドロキシ−3−メチル−2−
2′−プロピニル−2−シクロペンテノンの有機カ
ルボン酸(炭素数1〜18個の飽和または不飽和の
カルボン酸)エステルに作用させて、これを不斉
加水分解して、光学活性な4−ヒドロキシ−3−
メチル−2−2′−プロピニル−2−シクロペンテ
ノンとその対掌体のエステルに分割することを特
徴とする(±)−4−ヒドロキシ−3−メチル−
2−2′−プロピニル−2−シクロペンテノンの生
化学的光学分割法。
1 Esterase produced by a microorganism belonging to the genus Arthrobacter, Pseudomonas, Achromobacter, Alcaligenes or Trichoderma is (±)-4-hydroxy-3-methyl-2-
An optically active 4- Hydroxy-3-
(±)-4-hydroxy-3-methyl- characterized by splitting into esters of methyl-2-2'-propynyl-2-cyclopentenone and its enantiomer
Biochemical optical resolution method of 2-2'-propynyl-2-cyclopentenone.
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