JPH02169591A - アミノオキソジヒドロイソインドローキナゾリン - Google Patents
アミノオキソジヒドロイソインドローキナゾリンInfo
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はアミノオキソジヒドロインインドロキナゾリン
又はその生理学的に許容しうる塩並びにこれらを含む治
療学的組成物に関する。
又はその生理学的に許容しうる塩並びにこれらを含む治
療学的組成物に関する。
複素環族アミン上(アミノオキソジヒドロイソインドロ
−キナゾリン:略してAQ)は38匹のマウスの結腸に
おけるガンのモデルにおいて優秀な腫瘍抑制性を示すこ
とが発見された。このモデルは人間の結腸及び直腸のガ
ンに対する作用に関して典型的である。
−キナゾリン:略してAQ)は38匹のマウスの結腸に
おけるガンのモデルにおいて優秀な腫瘍抑制性を示すこ
とが発見された。このモデルは人間の結腸及び直腸のガ
ンに対する作用に関して典型的である。
しかしながら、土は水及び含水溶媒に貧弱にしか溶解し
ない。斯くして非経口的適用のための濃水溶液の組成物
は厳しく制限される。
ない。斯くして非経口的適用のための濃水溶液の組成物
は厳しく制限される。
lの経口的適用は並はずれの量の薬剤の吸収をもたらす
から、非経口用の組成物を得ることは非常に望ましい。
から、非経口用の組成物を得ることは非常に望ましい。
今回上は活性物質上の非経口用に適しj;水及び含水溶
媒に十分溶解する誘導体に転化しうろことが発見された
。
媒に十分溶解する誘導体に転化しうろことが発見された
。
土の新しい誘導体は血漿中及び他の器官中に存在する酵
素様ペプチダーゼの作用によって土に再転化される。
素様ペプチダーゼの作用によって土に再転化される。
今回アミド2
1式中、基R−Go−NH−はアミノ酸、ジペプチド又
はトリペプチドの基を表わす]は高められた水への溶解
性を示すことが発見された。化合物2は水性緩衝剤溶液
(pH4〜10)中で非常に安定であるが、人間の血漿
中に存在するペプチダーゼの作用によって迅速にAQ
(1)に開裂される。
はトリペプチドの基を表わす]は高められた水への溶解
性を示すことが発見された。化合物2は水性緩衝剤溶液
(pH4〜10)中で非常に安定であるが、人間の血漿
中に存在するペプチダーゼの作用によって迅速にAQ
(1)に開裂される。
好適な基R−Co−NH−は天然産のアミノ酸並びにこ
れらのアミノ酸に由来するジペプチド及びトリペプチド
のものである。
れらのアミノ酸に由来するジペプチド及びトリペプチド
のものである。
一般式又による化合物は新規である。Rが更なるアミノ
又はカルボキシル基を含むアミノ酸の基であるならば、
化合物又は中性化合物として或いはそれぞれ薬理学的に
許容しうる酸又は塩基との塩として使用しうる。
又はカルボキシル基を含むアミノ酸の基であるならば、
化合物又は中性化合物として或いはそれぞれ薬理学的に
許容しうる酸又は塩基との塩として使用しうる。
基R−Co−NH−は例えばN−グリシル−1N−アラ
ニルー、N−口イシル−1N−イソロイシル−1N−バ
リル−1N−セリル−1N−スレオニル−N−フェニル
アラニル−1N−チロシル−1N−トリプトファニル−
1N−プロリル−1N−リシル−1N−アルギニル−1
N−ヒスチジル−1N−アスバルチルー、N−グルタミ
ニルー、N−システイニル−1N−メチオニル−5N−
グリシル−アラニル−1N−シアラニルー、N−アラニ
ル−グリシル−1N−アラニル−フェニルアラニル−N
−トリアラニル−1N−アラニル−リシル−N−リシル
−アラニル−1N−グリシル−リシル−1N−グリシル
−プロリル−1N−グラシル−アラニル−リシル−1N
−トリアラニル−1N−リシル−アラニル−フェニルア
ラニル−又は他のヘフチド誘導体である。
ニルー、N−口イシル−1N−イソロイシル−1N−バ
リル−1N−セリル−1N−スレオニル−N−フェニル
アラニル−1N−チロシル−1N−トリプトファニル−
1N−プロリル−1N−リシル−1N−アルギニル−1
N−ヒスチジル−1N−アスバルチルー、N−グルタミ
ニルー、N−システイニル−1N−メチオニル−5N−
グリシル−アラニル−1N−シアラニルー、N−アラニ
ル−グリシル−1N−アラニル−フェニルアラニル−N
−トリアラニル−1N−アラニル−リシル−N−リシル
−アラニル−1N−グリシル−リシル−1N−グリシル
−プロリル−1N−グラシル−アラニル−リシル−1N
−トリアラニル−1N−リシル−アラニル−フェニルア
ラニル−又は他のヘフチド誘導体である。
ンプロフロキサシン(A)の関連する場合に、Aのアラ
ニンでの誘導体化は、それぞれペプチダーゼ又(才人間
の血漿の存在下に安定である化合物Bに至るから、上述
の結果は驚くべきことである。
ニンでの誘導体化は、それぞれペプチダーゼ又(才人間
の血漿の存在下に安定である化合物Bに至るから、上述
の結果は驚くべきことである。
BはAに開裂されない。
下記の実施例から明らかにように、Aは試験管内及び生
体内において大腸菌ノイマン(N eumann)に対
して有効である。Bが両実験において貧弱にしか有効で
ないということの対比において、Bが血漿の酵素の作用
により或いは化学的にAに開裂するならば、Bは動物の
モデルにおいてAと同様に有効であるはずである。
体内において大腸菌ノイマン(N eumann)に対
して有効である。Bが両実験において貧弱にしか有効で
ないということの対比において、Bが血漿の酵素の作用
により或いは化学的にAに開裂するならば、Bは動物の
モデルにおいてAと同様に有効であるはずである。
試験管内
最小禁止濃度(MICs)を寒天希釈法により決定しI
;。濃度を2倍ずつ増加させて試験物質を含有するイソ
ーセンシテスト(I so −S ensitest)
寒天(オフスフオード)を用いた一連の寒天板を準備し
た。この寒天板を多点接種器[デンリー(Denley
) ] を用いて接種した。この目的のために、バクテ
リヤ試験種の終夜の培養物を、各接種点が凡そ約10’
の細胞を含むように希釈した。この接種した寒天板を3
7°Cで培養し、そしてバクテリヤの生長を20時間後
に読んだ。
;。濃度を2倍ずつ増加させて試験物質を含有するイソ
ーセンシテスト(I so −S ensitest)
寒天(オフスフオード)を用いた一連の寒天板を準備し
た。この寒天板を多点接種器[デンリー(Denley
) ] を用いて接種した。この目的のために、バクテ
リヤ試験種の終夜の培養物を、各接種点が凡そ約10’
の細胞を含むように希釈した。この接種した寒天板を3
7°Cで培養し、そしてバクテリヤの生長を20時間後
に読んだ。
B
(M I C、mg/ f2) : 0.015
0.5生体内 治療学的効果を測定するために、各群10匹の雌のCF
、マウスに大腸菌ノイマンの3XlO’の細胞を腹腔内
注射することによって感染させt;。
0.5生体内 治療学的効果を測定するために、各群10匹の雌のCF
、マウスに大腸菌ノイマンの3XlO’の細胞を腹腔内
注射することによって感染させt;。
処置のために薬剤1回の投薬量を感染から30分後に静
脈内投与した。感染から6日目まで毎日動物の生存を記
録した。
脈内投与した。感染から6日目まで毎日動物の生存を記
録した。
mg/kg i、v、 A Bo、
06 2 0 0.25 8 1 0.5 10 1 実施例1 N−1−アラニル−AQ−モノ塩酸塩(4)の合成 3 : R−−NH−Go−0−C(CHs)s [
−NH−t−boa]4 : R−−NH,・HCI
4a : R−NH3”2 : R−−NHs ・
2CFsCOOHa)AQ(3)のt−boc−1−ア
ラニン誘導体の合成 無水塩化メチレン(アルドリッチ、無水99+%)30
0mQ中土の50Omgの溶液を、N−t−boc−1
−アラニン[シグマ(S igmaSS t、 L o
uis6s M O) 、840 mg14.4ミリモ
ルF、N+N′ジシクロへキシルカルボジイミド(De
c、シグマ、830 mgs 4ミリモル]及びジメチ
ルアミノピリジン(DMAP)30mgと共に窒素雰囲
気下に終夜撹拌した。反応を完結するまで(20時間)
TLC[シリカゲル、塩化メチレン:アセトン(lol
l);土及びユのRf値はそれぞれ0.22及び0.1
21で監視した。ジシクロヘキシル原素(D CU)の
得られる白色の沈澱を濾去した。
06 2 0 0.25 8 1 0.5 10 1 実施例1 N−1−アラニル−AQ−モノ塩酸塩(4)の合成 3 : R−−NH−Go−0−C(CHs)s [
−NH−t−boa]4 : R−−NH,・HCI
4a : R−NH3”2 : R−−NHs ・
2CFsCOOHa)AQ(3)のt−boc−1−ア
ラニン誘導体の合成 無水塩化メチレン(アルドリッチ、無水99+%)30
0mQ中土の50Omgの溶液を、N−t−boc−1
−アラニン[シグマ(S igmaSS t、 L o
uis6s M O) 、840 mg14.4ミリモ
ルF、N+N′ジシクロへキシルカルボジイミド(De
c、シグマ、830 mgs 4ミリモル]及びジメチ
ルアミノピリジン(DMAP)30mgと共に窒素雰囲
気下に終夜撹拌した。反応を完結するまで(20時間)
TLC[シリカゲル、塩化メチレン:アセトン(lol
l);土及びユのRf値はそれぞれ0.22及び0.1
21で監視した。ジシクロヘキシル原素(D CU)の
得られる白色の沈澱を濾去した。
溶媒を真空下に除去し、黄色の残液をシリカゲルのカラ
ムで精製した[シリカゲル70〜230メツシユ、塩化
メチレン:アセトン1o11]。AQ反応混合物をアセ
トン:塩化メチレンの50=50混合物に溶解し、得ら
れた溶液を、シリカゲルを溶液に添加しそしてその溶媒
を真空下に蒸発させることによってシリカゲル上に吸着
させ、得られるシリカゲルに吸着された反応混合物をシ
リカゲルのカラムの上部に置いた。化合物ユは92%の
収率で且つ黄色の非晶質の粉末として得られた。
ムで精製した[シリカゲル70〜230メツシユ、塩化
メチレン:アセトン1o11]。AQ反応混合物をアセ
トン:塩化メチレンの50=50混合物に溶解し、得ら
れた溶液を、シリカゲルを溶液に添加しそしてその溶媒
を真空下に蒸発させることによってシリカゲル上に吸着
させ、得られるシリカゲルに吸着された反応混合物をシ
リカゲルのカラムの上部に置いた。化合物ユは92%の
収率で且つ黄色の非晶質の粉末として得られた。
融点216〜218℃。ユに対する質量スペクトルはm
/e408の親イオンを示した。元素分析:計算値C1
65,70;N、I 3.32 ;H,5゜75、実験
値C,65,56;N、13.12 、H。
/e408の親イオンを示した。元素分析:計算値C1
65,70;N、I 3.32 ;H,5゜75、実験
値C,65,56;N、13.12 、H。
6.00゜
b)AQ(4)のN−1−アラニン誘導体の塩酸塩の合
成 方法1:)IJフルオル酢酸5−を含む無水塩化メチレ
ン10m(2中−3(100+ng、 0.24ミリモ
ル)の溶液を室温で撹拌した。反応を完結するまで(1
時間)HPLCで監視した。溶媒を真空下に蒸発させ、
HPLCを用いて分析した。このHPLCの分析は、生
成物N−1−アラニルAQ(5)のジトリフルオル酢酸
塩が純度95%であることを示しI;。このジトリフル
オル酢酸塩5100mgを水20mQに溶解し、そして
得られる溶液のpHを01lNNaOH溶液でpH9,
0に調節することによりモノ塩酸塩(4)に転化した。
成 方法1:)IJフルオル酢酸5−を含む無水塩化メチレ
ン10m(2中−3(100+ng、 0.24ミリモ
ル)の溶液を室温で撹拌した。反応を完結するまで(1
時間)HPLCで監視した。溶媒を真空下に蒸発させ、
HPLCを用いて分析した。このHPLCの分析は、生
成物N−1−アラニルAQ(5)のジトリフルオル酢酸
塩が純度95%であることを示しI;。このジトリフル
オル酢酸塩5100mgを水20mQに溶解し、そして
得られる溶液のpHを01lNNaOH溶液でpH9,
0に調節することによりモノ塩酸塩(4)に転化した。
得られるN −1−アラニル−AQの遊離の塩基4aを
、水性層のHPLC分析がbの完全な抽出を示すまで塩
化メチレン(25mnx3)で抽出した。
、水性層のHPLC分析がbの完全な抽出を示すまで塩
化メチレン(25mnx3)で抽出した。
溶媒を真空下に蒸発させ、水10m12中の得られる化
合物50mg(0−156ミリモル)を0.1NH(l
溶液1.5m2(0,15ミリモル)と混合した。
合物50mg(0−156ミリモル)を0.1NH(l
溶液1.5m2(0,15ミリモル)と混合した。
完全に溶解しt;後(2分間)、溶液を微孔性マイクロ
フィルターを通して濾過し、凍結乾燥した。
フィルターを通して濾過し、凍結乾燥した。
得られたモノ塩酸塩(4)の純度はHPLCにより99
%であることがわかった。土に対するIH及び”CN
M Hのデータを第1及び2表に、一方まに対するデー
タを第3及び4表に示す。
%であることがわかった。土に対するIH及び”CN
M Hのデータを第1及び2表に、一方まに対するデー
タを第3及び4表に示す。
互の融点は260°C(分解)であった。
分析: C+sH+5NaOz・HC(1・2tr、o
MW 392.85計算値: C55,03H5,
30N 14.26実験値: 55.10 5.
56 14.00水2モルはカール・フィッシャー滴
定法で確認した。
MW 392.85計算値: C55,03H5,
30N 14.26実験値: 55.10 5.
56 14.00水2モルはカール・フィッシャー滴
定法で確認した。
化合物3を(例えばN−t−boc基の脱保護のために
ぎ酸、次いでイオン交換クロマトグラフィー法を用いる
ことによって)iに転化する他の方法が存在するが、上
述した方法は筒車な経路であり、得られる生成物が非常
に純粋であることがわかっtこ 。
ぎ酸、次いでイオン交換クロマトグラフィー法を用いる
ことによって)iに転化する他の方法が存在するが、上
述した方法は筒車な経路であり、得られる生成物が非常
に純粋であることがわかっtこ 。
方法2:無水塩化メチレン10+n+2及びヨードトリ
メチルシラン(アルドリッチ)5ミリモル中3(100
mg10.24ミリモル)の溶液を、t−b。
メチルシラン(アルドリッチ)5ミリモル中3(100
mg10.24ミリモル)の溶液を、t−b。
C基の脱保護基が完結するまで窒素下に撹拌した。
溶媒及び過剰なヨードトリメチルシランを真空下に除去
し、得られる塩(ジH1塩)を、方法lで上述したもの
と同一の方法でモノ塩酸塩4に転化した。
し、得られる塩(ジH1塩)を、方法lで上述したもの
と同一の方法でモノ塩酸塩4に転化した。
上及びんのHPLC分析:
土及び互の分析に対して次のHPLC条件を用いた:
カラム (15X4.6内径) ; 5部7M M
OSハイパーシル(C1) 移動相 CH,CN 1 、5部:pH2,5の0.0
5M燐酸塩緩衝液8.5部;硫酸水素テトラブチルアン
モニウム(TBAS)5ミリモル 検出器 UV275nm、クラトス(Kratos)7
125型 流速 2 mQ1分 チャート速度 0 、5 cm/m 節分 0.04aufs 注入容量 20μa 保持容器 110++cd 4 5.36mff !土産:AQIJ:対する’HNMRSMDSO−d、
中化学シフト 積分 多重化学シフト J(Hz)
2 、516 DIJSO−d 6
4.820 2H−重線 C3 5,5672H二重線 NHx 2−46.4
77 1H二重線 C12,47,13018二重線
C1゜ 8.47.855−7.88 1H 二重線 7.943−7.97 LH 二重線 38.92−40.365 111.63 113.12 121.25 122.636 128.85 129.78 131.32 132.85 134.24 148.70 155.18 165.95 1.45 3.92 3.94 LH LH LH 二重線 (14)CH,7,8 −重線 (13)CH 巾広な (3)CH。
OSハイパーシル(C1) 移動相 CH,CN 1 、5部:pH2,5の0.0
5M燐酸塩緩衝液8.5部;硫酸水素テトラブチルアン
モニウム(TBAS)5ミリモル 検出器 UV275nm、クラトス(Kratos)7
125型 流速 2 mQ1分 チャート速度 0 、5 cm/m 節分 0.04aufs 注入容量 20μa 保持容器 110++cd 4 5.36mff !土産:AQIJ:対する’HNMRSMDSO−d、
中化学シフト 積分 多重化学シフト J(Hz)
2 、516 DIJSO−d 6
4.820 2H−重線 C3 5,5672H二重線 NHx 2−46.4
77 1H二重線 C12,47,13018二重線
C1゜ 8.47.855−7.88 1H 二重線 7.943−7.97 LH 二重線 38.92−40.365 111.63 113.12 121.25 122.636 128.85 129.78 131.32 132.85 134.24 148.70 155.18 165.95 1.45 3.92 3.94 LH LH LH 二重線 (14)CH,7,8 −重線 (13)CH 巾広な (3)CH。
一重線
6.31−6.28
6.42−6.39
6.576
7.11−7.08
7.21−7.26
7.28−7.3
7.35−7.325
二重線
二重線
一重線
二重線
三重線
二重線
二重線
DMS○−d6中
化学シフト(δppm)
17.99
40.84
50.799
118.83
120.54
121.97
122.77
124.096
127.635
129.54
132.91
133.91
134.85
149.00
168.83
169.31
帰属
実施例2
AQ (6)のN−1−ロイシン誘導体の合成6 :
R−−NHz・HCQ 7 : R=−NH−Co−0−C(CH3)38 :
R−−NH2・2CFzCOOH9: R−−NH。
R−−NHz・HCQ 7 : R=−NH−Co−0−C(CH3)38 :
R−−NH2・2CFzCOOH9: R−−NH。
AQ (7)のN −t −boa −1−ロイシン誘
導体の合成 無水塩化メチレン(アルドリッチ、無水99十%)30
0mf2中土の500mgの溶液を、N−t−bOc−
1−ロイシン[シグマ(S igmalS t、 L
ouise、MO)、l OOOmg、 4.0ミリ
モルコ、N。
導体の合成 無水塩化メチレン(アルドリッチ、無水99十%)30
0mf2中土の500mgの溶液を、N−t−bOc−
1−ロイシン[シグマ(S igmalS t、 L
ouise、MO)、l OOOmg、 4.0ミリ
モルコ、N。
N′−ジシクロへキシルカルボジイミド(Dec、シグ
マ、830mg、4ミリモル]及びジメチルアミノピリ
ジン(DMAP)30mgと共に窒素雰囲気下に終夜撹
拌した。反応をTLC分析において更なる変化が観察さ
れなくなるまで(48時間)TLC[シリカゲル、塩化
メチレン:アセトン(lO:2);1及び7のRf値は
それぞれ0.24及び0.401で監視した。ジシクロ
ヘキシル尿素(DCU)の得られる白色の沈澱を濾去し
た。溶媒を真空下に除去し、黄色の残渣をシリカゲルの
カラムで精製した[シリカゲル70〜230メツシユ、
塩化メチレン:アセトン10:11゜AQ反応混合物を
アセトン:塩化メチレンの50:50混合物に溶解し、
得られた溶液を、シリカゲルを溶液に添加しそしてその
溶媒を真空下に蒸発させることによってシリカゲル上に
吸着させ、得られるシリカゲルに吸着された反応混合物
をシリカゲルのカラムの上部に置いた。化合物ヱは80
%の収率で且つ黄色の非晶質の粉末として得られた。
マ、830mg、4ミリモル]及びジメチルアミノピリ
ジン(DMAP)30mgと共に窒素雰囲気下に終夜撹
拌した。反応をTLC分析において更なる変化が観察さ
れなくなるまで(48時間)TLC[シリカゲル、塩化
メチレン:アセトン(lO:2);1及び7のRf値は
それぞれ0.24及び0.401で監視した。ジシクロ
ヘキシル尿素(DCU)の得られる白色の沈澱を濾去し
た。溶媒を真空下に除去し、黄色の残渣をシリカゲルの
カラムで精製した[シリカゲル70〜230メツシユ、
塩化メチレン:アセトン10:11゜AQ反応混合物を
アセトン:塩化メチレンの50:50混合物に溶解し、
得られた溶液を、シリカゲルを溶液に添加しそしてその
溶媒を真空下に蒸発させることによってシリカゲル上に
吸着させ、得られるシリカゲルに吸着された反応混合物
をシリカゲルのカラムの上部に置いた。化合物ヱは80
%の収率で且つ黄色の非晶質の粉末として得られた。
質量スペクトルは462の親イオンを示した。
AQ (6)のN−1−ロイシン誘導体の塩酸塩の合成
方法lニトリフルオル酢酸5mQを含む無水塩化メチレ
ンlomQ中7 (l OOmg、 0.216ミリモ
ル)の溶液を室温で撹拌した。反応を完結するまで(1
時間)HPLCで或いはTLC[シリカゲノ呟塩化メチ
レン:アセトン(10:2):8に対するRf値0.0
]で監視した。溶媒を真空下に蒸発させ、HPLCを用
いて分析した。このHPLCの分析は、生成物N−1−
ロイシンAQ(8)のジトリフルオル酢酸塩が純度95
%であることを示した。このジトリフルオル酢酸塩81
00mgを水20mQに溶解し、そして得られる溶液の
pHをO,1NNaOH溶液でpH9,0に調節するこ
とによりモノ塩酸塩(6)に転化した。得られるN−1
−ロインンーAQを、塩化メチレン(25mO,X3)
で抽出した。溶媒を真空下に蒸発させ、水10m12中
の得られる化合物70mg(0゜193ミリモル)をO
,1NHCI2溶液1.9m12(0,19ミリモル)
と混合した。6が完全に溶解した後(約2分間)、溶液
を微孔性マイクロフィルターを通して濾過し、凍結乾燥
した。得られたモノ塩酸塩(6)の純度はHPLCによ
り99%であることがわかった。化合物9は362の親
イオンm/eを示した。9に対する元素分析、計算値:
C,69,59;H,6,12;N、15.46゜実験
値:C,69,46;H,6,18;N、15゜19゜ 化合物見に対する融点は197〜200°C(分解)で
あった。4に対する’HNMR及び13cNMRのデー
タをそれぞれ第5及び6表に示す。6(Cz+Hz*N
+Os ・HCQ・2HzO) に対する元素分析、計
算値:C,57,94;H,6,26;N、12.88
;実験値:C,57,95;H,6゜00;N、12.
48゜ 上及び旦のHP L C分析: 土及び旦の分析に対して次のHPLC条件を用いた: カラム (15X4.6内径);5部M MOSハイ
パーシル(C,) 移動相 CMsCN 1 、5部:pH2,5の0.0
5M燐酸塩緩衝液8.5部:硫酸水素テトラブチルアン
モニウム(TBAS)5ミリモノし 検出器 UV275nm、クラトス(Kratos)
7125型 流速 2mΩ/分 チャート速度 0 、5 cm/m 節分 0.04aufs 注入容量 20μQ 保持容器 1 8.0m(1 612,6mff 第5表:旦に対する’HNMRデータ、D、O中化学シ
フト 積分 多重度 J(Hz) 帰属1.10
1 6H二重線 6.0(CHs)* 1.837 31 多重線 CH,CH。
ンlomQ中7 (l OOmg、 0.216ミリモ
ル)の溶液を室温で撹拌した。反応を完結するまで(1
時間)HPLCで或いはTLC[シリカゲノ呟塩化メチ
レン:アセトン(10:2):8に対するRf値0.0
]で監視した。溶媒を真空下に蒸発させ、HPLCを用
いて分析した。このHPLCの分析は、生成物N−1−
ロイシンAQ(8)のジトリフルオル酢酸塩が純度95
%であることを示した。このジトリフルオル酢酸塩81
00mgを水20mQに溶解し、そして得られる溶液の
pHをO,1NNaOH溶液でpH9,0に調節するこ
とによりモノ塩酸塩(6)に転化した。得られるN−1
−ロインンーAQを、塩化メチレン(25mO,X3)
で抽出した。溶媒を真空下に蒸発させ、水10m12中
の得られる化合物70mg(0゜193ミリモル)をO
,1NHCI2溶液1.9m12(0,19ミリモル)
と混合した。6が完全に溶解した後(約2分間)、溶液
を微孔性マイクロフィルターを通して濾過し、凍結乾燥
した。得られたモノ塩酸塩(6)の純度はHPLCによ
り99%であることがわかった。化合物9は362の親
イオンm/eを示した。9に対する元素分析、計算値:
C,69,59;H,6,12;N、15.46゜実験
値:C,69,46;H,6,18;N、15゜19゜ 化合物見に対する融点は197〜200°C(分解)で
あった。4に対する’HNMR及び13cNMRのデー
タをそれぞれ第5及び6表に示す。6(Cz+Hz*N
+Os ・HCQ・2HzO) に対する元素分析、計
算値:C,57,94;H,6,26;N、12.88
;実験値:C,57,95;H,6゜00;N、12.
48゜ 上及び旦のHP L C分析: 土及び旦の分析に対して次のHPLC条件を用いた: カラム (15X4.6内径);5部M MOSハイ
パーシル(C,) 移動相 CMsCN 1 、5部:pH2,5の0.0
5M燐酸塩緩衝液8.5部:硫酸水素テトラブチルアン
モニウム(TBAS)5ミリモノし 検出器 UV275nm、クラトス(Kratos)
7125型 流速 2mΩ/分 チャート速度 0 、5 cm/m 節分 0.04aufs 注入容量 20μQ 保持容器 1 8.0m(1 612,6mff 第5表:旦に対する’HNMRデータ、D、O中化学シ
フト 積分 多重度 J(Hz) 帰属1.10
1 6H二重線 6.0(CHs)* 1.837 31 多重線 CH,CH。
4.069 1H−重線
H−NH2
6,431−6,459
6,610−6,638
6,803
7,218−7,239
7,392−7,433
7,464−7,488
二重線
二重線
一重線
二重線
三重線
二重線
8.4
8.4
6.9
5.7
7.2
答旦宍:旦に対する”CNMRデータ、D20中化学シ
フト(δ pm) 22.04 23.44 25.19 41.33 41.97 53.56 119.30 120.96 122.03 122.69 123.98 127.85 129.50 133.00 134.81 135.33 137.38 148.87 168.71 169.42 帰属 CHs CH8 CH Cコ CH。
フト(δ pm) 22.04 23.44 25.19 41.33 41.97 53.56 119.30 120.96 122.03 122.69 123.98 127.85 129.50 133.00 134.81 135.33 137.38 148.87 168.71 169.42 帰属 CHs CH8 CH Cコ CH。
CH−NH。
ll
l0
C8
C8
C6
I
−N
(4)C−0
アミドC−O
実施例3
AQ(12)のN−1−リシン2塩酸塩誘導体の合成
10 : R’ 、R”= −NH。
11:R’、R“−−NH−Co−0−C(CH3)3
12 : R’ 、R”−−NH,・HC(213:
R’ 、R”−−NH”・HCOOHAQ(11)のN
−a、t−ジーt−boc−1−リシン誘導体の合成: 無水塩化メチレン(アルドリッチ)300+nQ中上(
500mg、2ミリモル)の溶液を、N−a。
12 : R’ 、R”−−NH,・HC(213:
R’ 、R”−−NH”・HCOOHAQ(11)のN
−a、t−ジーt−boc−1−リシン誘導体の合成: 無水塩化メチレン(アルドリッチ)300+nQ中上(
500mg、2ミリモル)の溶液を、N−a。
ε−ジジーーboa−1−リシン(1384mg14゜
0ミリモル)、1.3−ジシクロヘキシルカルボジイミ
ド ジメチルアミノピリジン(DMAP)3 0mgと共に
窒素雰囲気下に終夜撹拌した。得られたシクロヘキシル
尿素(D C U)の沈澱を濾去した。溶媒を真空下に
濾去し、黄色の残渣をシリカゲルのカラム(シリカゲル
70〜230メツシユ、塩化メチレン:アセトン、5:
l)で2回精製した。化合物1土を、融点170〜17
3℃の黄色の非晶性粉末として90%の収率で得た。
0ミリモル)、1.3−ジシクロヘキシルカルボジイミ
ド ジメチルアミノピリジン(DMAP)3 0mgと共に
窒素雰囲気下に終夜撹拌した。得られたシクロヘキシル
尿素(D C U)の沈澱を濾去した。溶媒を真空下に
濾去し、黄色の残渣をシリカゲルのカラム(シリカゲル
70〜230メツシユ、塩化メチレン:アセトン、5:
l)で2回精製した。化合物1土を、融点170〜17
3℃の黄色の非晶性粉末として90%の収率で得た。
AQ (12)のN−1−リシン2塩酸塩誘導体の合成
ぎ#5m12中上土(100mg、 0.173 ミ
リモル)の溶液を室温で撹拌した。反応を完結するまで
(3時間)HPLCで監視した。HPLC分析は上lを
純度90%のジぎ酸塩として示した。これを酢酸エチル
から結晶化した。次いでジぎ酸塩を、準備したイオン交
換カラム(QAE−セファデックス、A−25、ファー
マシア社)に通すことによってジ塩酸塩に転化した。得
られた溶液を凍結乾燥して20 mg/ mQより大き
い水溶性の黄色のふわふわした物質を得た。上l:融点
195℃(分解)。上2 (C21H23N zH2・
2HCQ・3゜5HzO)に対する元素分析、計算値:
C149゜13 ;H,6,28;N、13.64、実
験値;C148,98;H,6,58;N% !3.9
9゜上lに対する1H及び”CNMRをそれぞれ第7及
び8表に示す。・ 上及び上スのHPLC分析: 上及び二の分析に対して次のHPLC条件を用いた: カラム 移動相 検出器 (15X4.6内径);5部M MOSハイパーシル
(C1) CH,CN 1 、5部:pH2,5の0.05M燐酸
塩緩衝液8.5部;硫酸水素テトラブチルアンモニウム
(TBAS)5ミリモル UV275nm、 クラトス(Kratos)7125
型 2mL/分 ト速度 0 、5 c、m/分 0.04aufs 20μQ 1、 io、omff 1又 4.Oi 流速 チャー 範囲 注入容量 保持容器 1.383 1.407 2.107 4.05 4.953 4.782 7.04−7.07 7.38−7.41 7.58−7.59 7.78−7.79 7.83−7.84 7.91−7.94 8.02〜8.04 pH pH pH −重線 εC(CHs)s −重線 (15)C(CH3)3 −重線 四重線 一重線 一重線 二重線 二重線 二重線 二重線 二重線 二重線 二重線 εNH 23,14 28,27 32,86 40,28 41,59 55,6 119,52 120,94 123,24 122,78 124,14 128,92 133,62 135,4 137,55 138,89 164,86 168,38 169,97 170,03 γCH。
リモル)の溶液を室温で撹拌した。反応を完結するまで
(3時間)HPLCで監視した。HPLC分析は上lを
純度90%のジぎ酸塩として示した。これを酢酸エチル
から結晶化した。次いでジぎ酸塩を、準備したイオン交
換カラム(QAE−セファデックス、A−25、ファー
マシア社)に通すことによってジ塩酸塩に転化した。得
られた溶液を凍結乾燥して20 mg/ mQより大き
い水溶性の黄色のふわふわした物質を得た。上l:融点
195℃(分解)。上2 (C21H23N zH2・
2HCQ・3゜5HzO)に対する元素分析、計算値:
C149゜13 ;H,6,28;N、13.64、実
験値;C148,98;H,6,58;N% !3.9
9゜上lに対する1H及び”CNMRをそれぞれ第7及
び8表に示す。・ 上及び上スのHPLC分析: 上及び二の分析に対して次のHPLC条件を用いた: カラム 移動相 検出器 (15X4.6内径);5部M MOSハイパーシル
(C1) CH,CN 1 、5部:pH2,5の0.05M燐酸
塩緩衝液8.5部;硫酸水素テトラブチルアンモニウム
(TBAS)5ミリモル UV275nm、 クラトス(Kratos)7125
型 2mL/分 ト速度 0 、5 c、m/分 0.04aufs 20μQ 1、 io、omff 1又 4.Oi 流速 チャー 範囲 注入容量 保持容器 1.383 1.407 2.107 4.05 4.953 4.782 7.04−7.07 7.38−7.41 7.58−7.59 7.78−7.79 7.83−7.84 7.91−7.94 8.02〜8.04 pH pH pH −重線 εC(CHs)s −重線 (15)C(CH3)3 −重線 四重線 一重線 一重線 二重線 二重線 二重線 二重線 二重線 二重線 二重線 εNH 23,14 28,27 32,86 40,28 41,59 55,6 119,52 120,94 123,24 122,78 124,14 128,92 133,62 135,4 137,55 138,89 164,86 168,38 169,97 170,03 γCH。
βCH。
δCH。
C1
cH1
(13)CH
I
C2
C畠
C1゜
I
−N
(4)C=0
(12)c−。
C−O
HC=0
実施例4:
AO(15)のN−t
b o c−L−G l y−A I a誘導体の合成
14:R藁H,N−CH,−CO−NH−CH−CH。
1 5 : R=(CHり3C−0−Co−NH−
CHICH。
CHICH。
−CO−NH−CH
無水塩化メチレン(アルドリッチ、99%N00m12
中AQの1−アラニル誘導体100mg(0,31ミリ
モル)の溶液を、N−t−boc−グリシン[シグマ、
160mg、 0.62ミリモル)、N、N’−ジシ
クロへキシルカルボジイミド(DDCl シグマ、13
0mg、 0.62ミリモル)及びジメチルアミノピ
リジン(DMAP)4.0mgと共に窒素雰囲気下に終
夜撹拌した。反応を、TLC分析で更なる変化が観察さ
れなくなるまで(48時間)TLC[シリカゲル、塩化
メチレン:アセトン:メタノール(8: 2 : 0.
5)で監視した。得られるジシクロヘキシル尿素(DC
U)の沈殿を濾去した。溶媒を真空下に除去し、黄色の
残渣をシリカゲルのカラム(シリカゲル70〜230メ
ツシユ、塩化メチレン:アセトン:メタノール8:10
.5)で精製した。[注:反応混合物を、透明な溶液が
得られるまでアセトン、塩化メチレン、及びメタノール
の混合物に溶解し、得られた溶液を、シリカゲルを溶液
に添加し且つこの溶媒を真空下に蒸発させることによっ
てシリカゲル上に吸着させ、そしてこれをシリカゲルの
カラムの上部に適用した1゜溶媒を蒸発させ、生成物を
塩化メチレン−酢酸エチル混合物から再結晶した。化合
物14を黄色の粉末として収率40%で得た。他の主な
副生物はlのトリ及びテトラペプチド誘導体であると特
徴づけられた。14の質量スペクトルは477の親イオ
ンm/eを示した。14に対する’HNMR及び13C
NMRデータをそれぞれ第9及び10表に示す。
中AQの1−アラニル誘導体100mg(0,31ミリ
モル)の溶液を、N−t−boc−グリシン[シグマ、
160mg、 0.62ミリモル)、N、N’−ジシ
クロへキシルカルボジイミド(DDCl シグマ、13
0mg、 0.62ミリモル)及びジメチルアミノピ
リジン(DMAP)4.0mgと共に窒素雰囲気下に終
夜撹拌した。反応を、TLC分析で更なる変化が観察さ
れなくなるまで(48時間)TLC[シリカゲル、塩化
メチレン:アセトン:メタノール(8: 2 : 0.
5)で監視した。得られるジシクロヘキシル尿素(DC
U)の沈殿を濾去した。溶媒を真空下に除去し、黄色の
残渣をシリカゲルのカラム(シリカゲル70〜230メ
ツシユ、塩化メチレン:アセトン:メタノール8:10
.5)で精製した。[注:反応混合物を、透明な溶液が
得られるまでアセトン、塩化メチレン、及びメタノール
の混合物に溶解し、得られた溶液を、シリカゲルを溶液
に添加し且つこの溶媒を真空下に蒸発させることによっ
てシリカゲル上に吸着させ、そしてこれをシリカゲルの
カラムの上部に適用した1゜溶媒を蒸発させ、生成物を
塩化メチレン−酢酸エチル混合物から再結晶した。化合
物14を黄色の粉末として収率40%で得た。他の主な
副生物はlのトリ及びテトラペプチド誘導体であると特
徴づけられた。14の質量スペクトルは477の親イオ
ンm/eを示した。14に対する’HNMR及び13C
NMRデータをそれぞれ第9及び10表に示す。
AQ(2)のL−G l y−A l a誘導体の合成
無水塩化メチレンlomQ中15(20mg、 0.0
4ミリモル)及びトリフルオル酢酸5m+2の溶液を室
温で撹拌した。反応をHPLC及びTLC(シリカゲル
70〜230メツンユ、塩化メチレン:アセトン:メタ
ノール8:2:0−5)で完結するまで監視した(30
分間)。溶媒を真空下に蒸発させ、残渣をHPLCで分
析した。このHPLCの分析は14を純度98%のジト
リフルオル酢酸塩として示した。化合物14は、14の
ジトリフルオル酢酸塩の水溶液のpHをO,IN水酸化
ナトリウム溶液でpH8,0に調節し、塩化メチレンで
抽出することによって精製した。溶液をN2下に除去し
た。化合物14は化学的イオン化質量スペクトルにおい
て378の分子イオンm / e (親イオン+l)を
示しtこ。
無水塩化メチレンlomQ中15(20mg、 0.0
4ミリモル)及びトリフルオル酢酸5m+2の溶液を室
温で撹拌した。反応をHPLC及びTLC(シリカゲル
70〜230メツンユ、塩化メチレン:アセトン:メタ
ノール8:2:0−5)で完結するまで監視した(30
分間)。溶媒を真空下に蒸発させ、残渣をHPLCで分
析した。このHPLCの分析は14を純度98%のジト
リフルオル酢酸塩として示した。化合物14は、14の
ジトリフルオル酢酸塩の水溶液のpHをO,IN水酸化
ナトリウム溶液でpH8,0に調節し、塩化メチレンで
抽出することによって精製した。溶液をN2下に除去し
た。化合物14は化学的イオン化質量スペクトルにおい
て378の分子イオンm / e (親イオン+l)を
示しtこ。
人間の血漿及び0.05M燐酸塩緩衝剤pH7,4中に
おける14の37.0°Cでの安定性の検討:14の人
間の血漿中における加水分解を検討した。水200μQ
中14の2.0mgを含有する溶液を、人間の血漿(ク
エン酸ナトリウムを凝血防止剤として使用)2m(2と
混合した。得られた混合物を37.0°C下に水浴中に
入れた。試料を適当な間隔で取り出し、蛋白質をアセト
ニトリル250μQで沈殿させ、30秒間かきまぜ、次
いで2200rpmで15分間遠心分離にかけた。上澄
み液の試料100μQをH2O250μαと混合し、得
られた溶液をHPLCで分析した。化合物14は14.
0±1.0分間の半減期で4aに、続いて1に加水分解
された。化合物4aは第1図に示すように本発明者の早
期の発見(注:14の血漿中の最終濃度がO、l mg
/ mQになった時に同様の結果か得られた)と一致し
て半減期20分で加水分解された。14(5,5XIO
″″8 M )の、0.05M燐酸塩緩衝剤pH7,4
及び0.15M(N a CQ )のイオン強度中での
化学的加水分解を37.0℃で検討した。試料を取り出
し、適当な時間間隔で分析した。HPLC分析は14か
ら1への加水分解の半減期が2.5日であることを示し
た。
おける14の37.0°Cでの安定性の検討:14の人
間の血漿中における加水分解を検討した。水200μQ
中14の2.0mgを含有する溶液を、人間の血漿(ク
エン酸ナトリウムを凝血防止剤として使用)2m(2と
混合した。得られた混合物を37.0°C下に水浴中に
入れた。試料を適当な間隔で取り出し、蛋白質をアセト
ニトリル250μQで沈殿させ、30秒間かきまぜ、次
いで2200rpmで15分間遠心分離にかけた。上澄
み液の試料100μQをH2O250μαと混合し、得
られた溶液をHPLCで分析した。化合物14は14.
0±1.0分間の半減期で4aに、続いて1に加水分解
された。化合物4aは第1図に示すように本発明者の早
期の発見(注:14の血漿中の最終濃度がO、l mg
/ mQになった時に同様の結果か得られた)と一致し
て半減期20分で加水分解された。14(5,5XIO
″″8 M )の、0.05M燐酸塩緩衝剤pH7,4
及び0.15M(N a CQ )のイオン強度中での
化学的加水分解を37.0℃で検討した。試料を取り出
し、適当な時間間隔で分析した。HPLC分析は14か
ら1への加水分解の半減期が2.5日であることを示し
た。
第9表:15に対する’HNMRデータ、化学シフト
積分 多重度 J(Hz)1.343−1.364
II 二重線 6.31.414
9H−重線 3.638−:1655 2H二重線 5.14.
037−4.063 1H四重線 7.84.45
7−4.506 1H三重線 7.54.894
2H−重線 7.061 1H三重線 5.17.334
−7.365 18 二重線 9.37.55
9−7.578 2H二重線 5.77.769
2H四重線 7.8ニ重線 7.853−7.880 1H二重線 8.17.
956−7.982 1H二重線 7.810.1
56 18 −重線 DMSO−d、中 帰属 CH。
積分 多重度 J(Hz)1.343−1.364
II 二重線 6.31.414
9H−重線 3.638−:1655 2H二重線 5.14.
037−4.063 1H四重線 7.84.45
7−4.506 1H三重線 7.54.894
2H−重線 7.061 1H三重線 5.17.334
−7.365 18 二重線 9.37.55
9−7.578 2H二重線 5.77.769
2H四重線 7.8ニ重線 7.853−7.880 1H二重線 8.17.
956−7.982 1H二重線 7.810.1
56 18 −重線 DMSO−d、中 帰属 CH。
C(CH3)5
CH,(gly)
CH−CH。
jiN(gly−t−boc)
C3
NH(g 1y−a Ia)
l0
C2+11
C7・6
0M
C6
HN(1)
第109+14i:対する”CNMRデータ、0中
化学シフト(δppm) 帰属
18.267 CH。
28 、24 (CH3) 349.0
87 CH−CHI59.796
CH,(GLY)78.197 C
(CHJ)3117.711 C。
87 CH−CHI59.796
CH,(GLY)78.197 C
(CHJ)3117.711 C。
119.045 C,。
121.797 c。
122.424 G。
122.811 G、。
127.912 C。
130.049 c。
132.212 C6
133、160C。
134.122 C。
135.711 c。
138.181 C。
147.582 C=N155.9
68 アミドC=O(t−boc)16
6.170 (4)C=0169.2
41 アミドC=0(パトラシン−Al
a)171.284 アミドC=O(A
la−Gly)実施例5ニ アシル誘導体2の溶解度: ■は殆んど水に不溶であるが、その塩酸基土は水1m1
2当り25mg以上の溶解度を示した。
68 アミドC=O(t−boc)16
6.170 (4)C=0169.2
41 アミドC=0(パトラシン−Al
a)171.284 アミドC=O(A
la−Gly)実施例5ニ アシル誘導体2の溶解度: ■は殆んど水に不溶であるが、その塩酸基土は水1m1
2当り25mg以上の溶解度を示した。
塩酸塩6及び12の水溶液は1m4当り化合物25mg
以上の濃度で得られた。
以上の濃度で得られた。
実施例6:
化合物上、ル及びユの、水性緩衝液中における溶解度の
検討: 化合物上、−〇−又はユの水性緩衝液中における種々の
pH及び0.15(NaCff)のイオン強度における
加水分解を、両分を適当な間隔でHPLCにより分析す
ることにより測定した。HPLC分析において、土、i
又はユの消失及び上p出現を監視した。土、■又は12
の経時的消失の1次プロットから速度定数を計算した。
検討: 化合物上、−〇−又はユの水性緩衝液中における種々の
pH及び0.15(NaCff)のイオン強度における
加水分解を、両分を適当な間隔でHPLCにより分析す
ることにより測定した。HPLC分析において、土、i
又はユの消失及び上p出現を監視した。土、■又は12
の経時的消失の1次プロットから速度定数を計算した。
これらの検討から得た結果を第11表に示す。
鮮度
溶媒、
温度
化合物
pH
初期
濃度 k、、。
mglma 時−1
を車72
時
酢酸塩
(0,05M)、 4 5.0 0.02425
°c 6 5.0 0.01812
5.0 0.024 1.60X l O−’ 427.01、lx 1
0−” 624.O*1.15x l 0−360
0.0* 水、25°C 4,5 5,9 4,31 5,46 4,54 6,1 +0.0 0.1 10.0 0.1 10.0 0.1 1.46X l O桐 6、lOX I O−’ 2.67X I O″″4 7.80X IO−’ 〉480本 〉480ネ 4746* 1128* 2592ネ 888* 燐酸塩 (0,05M)、 4 7.4 0.0225°
C67,40,02 127,40,02 >200* 4.11X I 0−3168.6 2.58X l 0−3268.8 燐酸塩 (0,05M)、 4 37°C6 7,40,02 7,40,02 4,40X I 0−3158.0 8.60x 10−’ 80.6 *恨疋1f!1 実施例7 ん、6−及び12の人間及びマウスの血漿中における溶
解度の検討 水100 pQQ101又は■の約2.0mgの溶液を
人間又はマウスの血gft2mQに添加した。得られI
;溶液を水浴中に37°C下に入れた。試料を適当な時
間間隔で取り出し、蛋白質をアセトニトリル250μQ
で沈殿させ、30秒間かきまぜ、次いで220Orpm
で10分間遠心分離した。上の消失を時間に対して半対
数プロットすることにより見かけの1久遠度定数を得た
。結果を第12表に示す。
°c 6 5.0 0.01812
5.0 0.024 1.60X l O−’ 427.01、lx 1
0−” 624.O*1.15x l 0−360
0.0* 水、25°C 4,5 5,9 4,31 5,46 4,54 6,1 +0.0 0.1 10.0 0.1 10.0 0.1 1.46X l O桐 6、lOX I O−’ 2.67X I O″″4 7.80X IO−’ 〉480本 〉480ネ 4746* 1128* 2592ネ 888* 燐酸塩 (0,05M)、 4 7.4 0.0225°
C67,40,02 127,40,02 >200* 4.11X I 0−3168.6 2.58X l 0−3268.8 燐酸塩 (0,05M)、 4 37°C6 7,40,02 7,40,02 4,40X I 0−3158.0 8.60x 10−’ 80.6 *恨疋1f!1 実施例7 ん、6−及び12の人間及びマウスの血漿中における溶
解度の検討 水100 pQQ101又は■の約2.0mgの溶液を
人間又はマウスの血gft2mQに添加した。得られI
;溶液を水浴中に37°C下に入れた。試料を適当な時
間間隔で取り出し、蛋白質をアセトニトリル250μQ
で沈殿させ、30秒間かきまぜ、次いで220Orpm
で10分間遠心分離した。上の消失を時間に対して半対
数プロットすることにより見かけの1久遠度定数を得た
。結果を第12表に示す。
Ml 2表:AQ4、旦及び1又の誘導体の、人間及び
マウスの血漿中への37°Cにおける溶解度 人間1 人間2 マウス 人間 マウス 人間 マウス クエン酸塩 クエン酸塩 ヘパリン クエン酸塩 ヘパリン クエン酸塩 ヘパリン 2.5X10−” 2.2X 10″″″ 3.3X10−! 5.7XlO−’ 1.85X 10−” 5.0xlO−’ 4.8X10−” 27.6 30.7 21.3 121.5 37.4 138.6 146.0 0.995 0.985 0.992 0.977 0.998 0.991 0.994 本発明の特徴及び態様は以下の通りである=1、一般式 [式中、基R−CO−N H−はアミノ酸、ジペプチド
又はトリペプチドの基を表わす]のアミノオキソジヒド
ロイソインドロ−キンゾリン或いはその生理学的に許容
しうる塩。
マウスの血漿中への37°Cにおける溶解度 人間1 人間2 マウス 人間 マウス 人間 マウス クエン酸塩 クエン酸塩 ヘパリン クエン酸塩 ヘパリン クエン酸塩 ヘパリン 2.5X10−” 2.2X 10″″″ 3.3X10−! 5.7XlO−’ 1.85X 10−” 5.0xlO−’ 4.8X10−” 27.6 30.7 21.3 121.5 37.4 138.6 146.0 0.995 0.985 0.992 0.977 0.998 0.991 0.994 本発明の特徴及び態様は以下の通りである=1、一般式 [式中、基R−CO−N H−はアミノ酸、ジペプチド
又はトリペプチドの基を表わす]のアミノオキソジヒド
ロイソインドロ−キンゾリン或いはその生理学的に許容
しうる塩。
2、アミノ酸の基が天然産のアミノ酸に由来する上記l
のアミノオキシジヒドロインインドロキナゾリン。
のアミノオキシジヒドロインインドロキナゾリン。
3、基R−Co−NH−がN−グリシル−1N−アラニ
ル−1N−口イシル−1N−インロイシル−1N−バリ
ル−1N−セリル−1N−スレオニル−N−フェニルア
ラニル−1N−チロシル−、N−トリプト7アニルー、
N−プロリル−1N−リシル−1N−アルギニル−1N
−ヒスチジル−1N−アスパルチル−1N−グルタミニ
ルー、N−システイニル−1N−メチオニル−1N−グ
リシル−アラニル−、N−ジアラニルー、N−アラニル
−グリシル−1N−アラニル−フェニルアラニル−N−
1−リアラニルー、N−アラニル−リシル−N−リシル
−アラニル−1N−グリシル−リシル−1N−グリシル
−プロリル−1N−グリシル−アラニル−リシル−1N
−トリアラニル−1N−リシル−アラニル−フェニルア
ラニル−又は他のペプ・チド誘導基を表わす上記1のア
ミノオキソジヒドロイソインドロキナゾリン。
ル−1N−口イシル−1N−インロイシル−1N−バリ
ル−1N−セリル−1N−スレオニル−N−フェニルア
ラニル−1N−チロシル−、N−トリプト7アニルー、
N−プロリル−1N−リシル−1N−アルギニル−1N
−ヒスチジル−1N−アスパルチル−1N−グルタミニ
ルー、N−システイニル−1N−メチオニル−1N−グ
リシル−アラニル−、N−ジアラニルー、N−アラニル
−グリシル−1N−アラニル−フェニルアラニル−N−
1−リアラニルー、N−アラニル−リシル−N−リシル
−アラニル−1N−グリシル−リシル−1N−グリシル
−プロリル−1N−グリシル−アラニル−リシル−1N
−トリアラニル−1N−リシル−アラニル−フェニルア
ラニル−又は他のペプ・チド誘導基を表わす上記1のア
ミノオキソジヒドロイソインドロキナゾリン。
4、結腸及び/又は直腸のガンを抑制するのに治療学的
に有効な量の上記1のアミノオキソジヒドロイソインド
ロ−キナゾリンを、結腸及び/又は直腸のバクテリアを
有する患者に投与することを含んでなる結腸及び/又は
直腸のガンの駆除又は抑制法。
に有効な量の上記1のアミノオキソジヒドロイソインド
ロ−キナゾリンを、結腸及び/又は直腸のバクテリアを
有する患者に投与することを含んでなる結腸及び/又は
直腸のガンの駆除又は抑制法。
5、水又は含水溶媒及び結腸及び/又は直腸のガンを抑
制するのに治療学的に有効な量の上記lのアミノオキシ
ジヒドロイソインドロ−キナゾリンを含んでなる結腸及
び/又は直腸のガンの処置に有用な非経口用溶液形の治
療学的組成物。
制するのに治療学的に有効な量の上記lのアミノオキシ
ジヒドロイソインドロ−キナゾリンを含んでなる結腸及
び/又は直腸のガンの処置に有用な非経口用溶液形の治
療学的組成物。
禁中での加水分解の結果を示す。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、一般式 ▲数式、化学式、表等があります▼ [式中、基R−CO−NH−はアミノ酸、ジペプチド又
はトリペプチドの基を表わす] のアミノオキソジヒドロイソインドロ−キンゾリン或い
はその生理学的に許容しうる塩。 2、水又は含水溶媒及び結腸及び/又は直腸のガンを抑
制するのに治療学的に有効な量の特許請求の範囲第1項
記載のアミノオキソジヒドロイソインドロ−キナゾリン
を含んでなる結腸及び/又は直腸のガンの処置に有用な
非経口用溶液形の治療学的組成物。
Applications Claiming Priority (4)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US26358188A | 1988-10-27 | 1988-10-27 | |
| US263581 | 1988-10-27 | ||
| US369437 | 1989-06-20 | ||
| US07/369,437 US4980343A (en) | 1988-10-27 | 1989-06-20 | Aminooxodihydroisoindoloquinazoline carcinostatic agents |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH02169591A true JPH02169591A (ja) | 1990-06-29 |
Family
ID=26949942
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1277341A Pending JPH02169591A (ja) | 1988-10-27 | 1989-10-26 | アミノオキソジヒドロイソインドローキナゾリン |
Country Status (5)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4980343A (ja) |
| EP (1) | EP0365956A3 (ja) |
| JP (1) | JPH02169591A (ja) |
| CA (1) | CA2001494A1 (ja) |
| IL (1) | IL92107A0 (ja) |
Families Citing this family (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE4106101A1 (de) * | 1991-02-27 | 1992-09-03 | Bayer Ag | Fucose-markierte cytostatika |
| DE19512484A1 (de) * | 1995-04-04 | 1996-10-17 | Bayer Ag | Kohlenhydratmodifizierte Cytostatika |
| AU2337599A (en) * | 1998-01-23 | 1999-08-09 | Microcide Pharmaceuticals, Inc. | Efflux pump inhibitors |
| US6204279B1 (en) * | 1998-06-03 | 2001-03-20 | Microcide Pharmaceuticals, Inc. | Peptidomimetic efflux pump inhibitors |
| US7220824B1 (en) | 2000-08-28 | 2007-05-22 | Bayer Aktiengesellschaft | Integrin-mediated drug targeting |
| EP1219634A1 (en) * | 2000-12-27 | 2002-07-03 | Bayer Aktiengesellschaft | Cytostatic-glycoconjugates having specifically cleavable peptidic linking units |
| EP1238678A1 (en) * | 2001-03-08 | 2002-09-11 | Bayer Aktiengesellschaft | Enzyme-activated cytostatic conjugates with integrin ligands |
Family Cites Families (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4639456A (en) * | 1980-06-10 | 1987-01-27 | Omnichem S.A. | Vinblastin-23-oyl amino acid derivatives |
| OA06421A (fr) * | 1980-06-10 | 1981-09-30 | Omnium Chimique Sa | Procédé de préparation de dérivés N-(vinblastinoyl-23) d'acides aminés et de peptides. |
| DE3611194A1 (de) * | 1986-04-04 | 1987-10-08 | Bayer Ag | Cancerostatisches mittel |
| US4732970A (en) * | 1986-06-13 | 1988-03-22 | American Cyanamid Company | Antitumor amino acid and peptide derivatives of 1,4-bis(aminoalkyl and hydroxy-aminoalkyl)amino)-5,8-dihydroxyanthraquinones |
-
1989
- 1989-06-20 US US07/369,437 patent/US4980343A/en not_active Expired - Fee Related
- 1989-10-14 EP EP19890119138 patent/EP0365956A3/en not_active Withdrawn
- 1989-10-24 IL IL92107A patent/IL92107A0/xx unknown
- 1989-10-25 CA CA002001494A patent/CA2001494A1/en not_active Abandoned
- 1989-10-26 JP JP1277341A patent/JPH02169591A/ja active Pending
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| US4980343A (en) | 1990-12-25 |
| EP0365956A3 (en) | 1991-08-21 |
| IL92107A0 (en) | 1990-07-12 |
| CA2001494A1 (en) | 1990-04-27 |
| EP0365956A2 (en) | 1990-05-02 |
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