JPH02182191A - 発現エンハンサーおよび組換え遺伝子発現時の収量を増大させる方法 - Google Patents
発現エンハンサーおよび組換え遺伝子発現時の収量を増大させる方法Info
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Abstract
め要約のデータは記録されません。
Description
る発現ベクターを含む適当な宿主細胞の形質転換によっ
て組換え遺伝子の発現時の収量を増大させる方法に関す
る。
時には、しばしば、所望の遺伝子生成物の発現が不十分
である、という難点が生じる。こf′Lは、当該分野に
おいて従事する研究者によって種々の原因に帰せら扛て
いるが、就中特定の組換え遺伝子で形質転換さ【たE、
coli細胞の極めて小さい発酵速度に原因があるとさ
牡ている。
て良好な発現を示すが、細胞成長は不良であって、その
ためにバイオマスが僅かしか得られず、その結果また所
望の遺伝子生成物の収量も極めて少なくなる。
望の遺伝子生成物の収量全増大させる方法および手段を
提供するという課題を基礎にしている。
にt RNAのクローバ−葉構造を形成する能力のある
DNA配列を有しかつ転写後にクロバー葉構造において
アンチコドンループを形成するDNA@域で、配列5’
−GACTTAGAAGGTCGTT−3’またはこの
配列と相、補的な配列 5’−AACGACCTTCTAAGTC−3’、好1
しくは5’ −CACGACTTAGAAGGTCGT
TG −3’または同配列と相補的なオリゴS5’−C
AACGACCTTCTAAGTCGTG−3’とノ1
イブリッドを形成していることによって解決さGる。
の特定領域の塩基対によって形成さね、すべてのtRN
A分子において特定の規則性が生じる。
ち所謂ジヒドロウリジンルーツ;第2番目のループ、す
なわち相補的なトリジレットを有するt RNA分子の
場合にはmRNAの塩基対ヲ弓受けることができ、七C
によってt RNAの特異性を決める所謂アンチコドン
ループおよび右に配置されたループ、すなわち所謂プソ
イドウリジンループが存在し、アンチコドンループとプ
ソイドウリジンループとの間にはしばしば可変のエキス
トラルーツがある。
なりローパー葉構造を形成することができるRNA ’
i与えるDNA構造を有する。従って本発明は、クロー
バ−葉構造を形成する能力のある天然および合成遺伝子
を包含しており、本発明の範囲内にはまた、クローバ−
葉構造を形成する能力のあるDNA配列の他に別の配列
を有しかつクローバ−葉構造を有するRNAの形成下に
プロセッシングさnうるDNA配列も入る。しかし本発
明による発現エンハンサ−は、アンチコドンループで前
記オリゴヌクレオチドとハイブリットを形成すること全
特徴としている。本発明の好ましい実施態様においては
、発現エンハンサは配列5’−CACGACTTAGA
AGGTCGTTG−3’またばこnと相補的な配列5
’−CAACGACCTTCTAAGTCGTG−3’
のオリゴヌクレオチドとハイブリッドを形成する。
、また例えばE、coli細胞から分離することもでき
る。本発明の好ましい実施態様においては、発現エンハ
ンサ−を製造するために、Pstlで部分的に消化さ扛
た染色体E、coli DNAから成る遺伝子パンク(
Gent)ank)を適当なベクターに導入し、この遺
伝子パンクベクターおよびその発現時にE、coli細
胞の成長を不良にする組換え遺伝子を有する発現シラス
ミド(ここで6成長を不良にする′″という表現は本発
明の範囲では、細胞の成長全組換え遺伝子のみの発現の
場合には、発現エンノーンサーの付加的発現の場合より
も不良にすること全意味する)を含むE、coli細胞
が共同形質転換さn、選択され、誘導さn、培養さ扛、
増殖して大きなコロニーになったクローンを分離し、こ
nらのクローンから遺伝子パンクベクターを分離する。
たはこ【と相補的な配列5’−AACGACCTTCT
AAGTC−3’のオリゴヌクレオチドとのハイブリッ
ド形成によって、発現エンハンサ−の存在を検ぺること
かできる。本発明の特に好ましい実施態様においては配
列5’ −CACGACTTAGAAGGTCGTTG
−3’のオリゴヌクレオチドまたはこれと相補的なオリ
ゴヌクレオチド5’−CAACGACCTTCTAAG
TCGTG−3’を使用する。
遺伝子が発現する際同細胞の成長を極めて不良にする組
換え遺伝子を有する発現シラスミドを用いて行なうこと
ができる。このために好ましくは藺導可能な発現シラス
ミドを使用すると、誘導までE、coli細胞の通常の
発酵が起こりうる。誘導後に、再び本発明による発現エ
ンハンサ−を有する遺伝子パンクベクターを含むような
りローンが増殖して大きなコロニーになる。これは、前
記配列のオリゴヌクレオチドとのハイブリッド形成によ
って検べることかできる。次に、発現エンハンサ−を有
する遺伝子バンクベクターを含むクローンから、遺伝子
パンクの製造のために使用した制限酵素による消化によ
って該エンハンサ−を分離することができる。
としてはt−PA発現プラスミドを使用し、特に好まし
くはプラスミドpUBS 98.stを使用する(例3
参照)。
好ましくはイソプロピル−β−D−チオガラクトピラノ
シドによって、極めて好ましくは5〜20 mmol/
7の量で誘導さ扛る。
くはベクターpACYC177(DSM3693P)を
使用する。
四組換え遺伝子を有する発現ベクターを含むE、col
i細胞の形質転換によって増大させる方法であり、この
際本発明による発現エンハンサ−を発現可能な形で同様
に宿主細胞に導入し、同エンハンサ−の発現を前記発現
ベクターの発現前にまたはこの発現と同時に生起させる
。
−を組換え遺伝子を有する発現ベクター中に導入する。
個のプロモーターに制御ざnるか、または組換え遺伝子
と一緒に同プロモーターに制御さするように行なわれる
。
ーを組換え遺伝子を有する発現ベクターに適合するベク
ターに導入する。適合するベクターとは、本発明の範囲
では、発現ベクターとは異なる複製源を有するベクター
のことである。こ扛によって両プラスミドの細胞におけ
る同時的複製および転写が可能になる。
は、シラスミドpUBs 100を使用し、組換え遺伝
子を有する発現ベクターとしてはこ扛に適合するベクタ
ー、例えばt−PA発現シラスミドpUB898.sA
k使用する。本発明の好ましい実施態様においては、
組換え遺伝子として、t−PAまたはt−FA誘導体、
ウロキナーゼまたはHIVタンパク質の遺伝子もしくは
eDNAf:使用する。
子を有する発現ベクターの発現前にまたはその発現と同
時に行なってよい。しかしこの発現エンハンサ−の発現
は、発現ベクターの発現前に発現エンハンサ−の遺伝子
生成物が宿主細胞でヌクレアーゼによって著しく分解さ
扛るように長時間で起ってはならない。従って本発明に
よ扛ば該発現を発現ベクターの発現と同時に、極めて好
ましくは構成性発現または誘導によって行なうのが有利
である。このために発現エン−・ンザ−は本発明によれ
ば誘導性プロモーター、好ましくは7acプロモーター
に制御さtでもよい。
P@tlで部分的に消化さn ft−E、 col 1
DNAの遺伝子パンクを、周知の分子生物学的手段(特
にWinnackev E、L、、Gene und
Klonp。
pACYC177゜DSM 3693p (Chanq
und Cohen、 J、Bacteriol。
入した。
77プラスミドDNA i、部分的にPstiで消化さ
れた染色体E、coli DNAと結合した。pACY
C’ 177のPst1位置に挿入断片を含むクローン
を、アンピシリン感受性によって、および挿入断片の長
さだけ増大された分子量によって固定することができる
。このようなりローンのプラスミドDNAは、ゲル電気
泳動法/rル溶離によって挿入断片を含まないプラスミ
ドDNAから分離し、単離することができる。この遺伝
子パンクから、遺伝子バンクプラスミドとt−PA発現
プラスミドpUBs98.st(この製造は例3に記載
する)との共同形質転換およびIPTG(イソプロピル
−β−D−チオガラクトピラノシド) 10 mmol
/lを含有するLB−カナマイシン/アンビシリン培地
での選択によって、シラスミドpUBs 100を分離
した。
長さを有する染色体E、coli DNAの部分を含む
。
5100および発現グラスミドpUBS 98. s
tk有しかつIPTGの藺導によってt−PAを産生す
るL co 11細胞(DSM 368Q )が、pU
Bs 93.stおよびTIACYC177を有するE
、coli細胞とは対照的に、藺導後に大きなコロニー
に増殖しうるという効果をもたらす。
換によるE、coliにおけるt−PAの発現: この例では、発現エンハンサ−を含むプラスミドとして
シラスミドpUBs 100 e使用した。
E、coli (DSM 3689 )の共同形質転換
を、プラスミドpUBs 9B、stのみによる形質転
換の際の宿主細胞における発現率と比較した。さらにこ
の発現率を同一菌株におけるプラスミドpe Pa98
.1 (DE 3613401)の発現率と比較した。
ンサ−およびt−PA遺伝子を含むプラスミド、つまり
プラスミドpUB898. sky (DAM 489
8)を使用したt−PAの発現も実験した。こ扛に関す
る結果も表1に記載する。
タンノ4り質% 生存能力 +pePa 98.1 3% 制限さ
牡ている+pUBS 98.sl 1
0% 極めて不良+pUBS 98.sl+pUB81
0030% 極めて良好+pUBS 98. aky
30% 極めて良好表1で示した結果か
ら、発現エンハンサ−を含むF、eoll細胞で発現さ
nるt−PAの発現率は、発現エンハンサ−を含まない
細胞の場合と比べると明らかに高くなったことがわかる
。これは得らt−Lfc、クローンの生存能力と相関し
ている。
発グラスミドとしてグラスミドpaPa 98.1(ヨ
ーロツノ臂特許出願公開第242836号)t−使用し
た。このプラスミドにおけるt−PAのcDNAの、約
400塩基対の長さの3′−未翻訳領域を、361塩基
対の長さのXho[断片の欠失によって約40塩基対に
短縮した。この結果生じるシラスミドはpePa 12
6−1命名した。
.1の場合には同プラスミドを制限エンドヌクレアーゼ
B amHIおよびHlnd Iで二重消化する際、2
234塩基対および4372塩基対の長さの2個の断片
を検出することができるが、プラスミドpePa 12
6.1の場合には1873塩基対お(]3) よび4372塩基対の長さを有する2個の断片が得らn
ることによって区別されうる。
u切断位置で線状化し、残っている両末端をフレノウ酵
素およびdNTPで充填する。また同様にプラスミドp
ePa 126.1から、472塩基対の長さのFJe
oRI断片を分離し、S1ヌクレアーゼで処理した。プ
ラスミドpePa 126−1から得らnた2つの断片
を結合することによってプラスミドpUB898、st
が得らnた。
26.1から区別さnうる:Ban1消化pePa 1
26.1 DNAは、1175塩基対、393塩基対、
165塩基対および4560塩基対の長さの断片によっ
て定義さ扛る: pUBs 98.5LDNAは、Ba
n1l断片が約1175塩基対、393塩基対、14塩
基対、165塩基対、470塩基対および4540塩基
対の長さを有することを特徴としている。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、発現エンハンサーが、転写後にt−RNAのクロー
バー葉構造を形成する能力のあるDNA配列を有しかつ
転写後にクローバー葉構造においてアンチコドンループ
を形成するDNAの領域で、配列5′−GACTTAG
AAGGTCGTT−3′またはこの配列と相補的な配
列5′−AACGACCTTCTAAGTC−3′を有
するオリゴヌクレオチドとハイブリッドを形成している
ことを特徴とする発現エンハンサー。 2、組換え遺伝子の発現時に同組換え遺伝子を有する発
現ベクターを含む適当な宿主細胞の形質転換によつて収
量を増大させるに当り、請求項1記載の発現エンハンサ
ーを発現可能な形で宿主細胞に導入して発現させること
を特徴とする組換え遺伝子の発現時の収量を増大させる
方法。
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