JPH02195900A - 糖化蛋白の測定法および測定試薬 - Google Patents
糖化蛋白の測定法および測定試薬Info
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- JPH02195900A JPH02195900A JP1565889A JP1565889A JPH02195900A JP H02195900 A JPH02195900 A JP H02195900A JP 1565889 A JP1565889 A JP 1565889A JP 1565889 A JP1565889 A JP 1565889A JP H02195900 A JPH02195900 A JP H02195900A
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Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明は糖化蛋白の測定法および測定試薬に関する。さ
らに詳しくは、たとえば糖尿病診断のための長期の平均
的血糖値を反映する指標等とじて有用な糖化蛋白の測定
法及び測定試薬に関する。
らに詳しくは、たとえば糖尿病診断のための長期の平均
的血糖値を反映する指標等とじて有用な糖化蛋白の測定
法及び測定試薬に関する。
[従来の技術]
従来、糖化蛋白の測定法としてはアルカリ条件下におけ
る糖化蛋白の還元力を利用する方法、アフイニテイクロ
マトグラフイー法、チオバルビッール酸法、高速液体ク
ロマトグラフィー法、ラジオイムノアッセイ法、酵素免
疫測定法などが知られている〔例えば、クリ二カ・シミ
力・アクタ(C1in、 Chim、 Acta)第1
27巻、第87〜95頁(1982年)、糖尿病第25
巻、第963〜968頁(1982年)、ダイアベトロ
シア(Diabetologia)第21巻、第94〜
98頁(1981年)、ジャーナル・オブ・クリニカル
・ケミストリー・アンド・クリニカル・バイオケミスト
リー(J、 Cl1n、 Chem、 Cl1n、Bi
o−chem、 )第19巻、第81〜87頁(198
1年)、糖尿病第29巻、第581〜590頁(198
6年)、糖尿病筒29巻補冊2、第340頁(1986
年)〕。
る糖化蛋白の還元力を利用する方法、アフイニテイクロ
マトグラフイー法、チオバルビッール酸法、高速液体ク
ロマトグラフィー法、ラジオイムノアッセイ法、酵素免
疫測定法などが知られている〔例えば、クリ二カ・シミ
力・アクタ(C1in、 Chim、 Acta)第1
27巻、第87〜95頁(1982年)、糖尿病第25
巻、第963〜968頁(1982年)、ダイアベトロ
シア(Diabetologia)第21巻、第94〜
98頁(1981年)、ジャーナル・オブ・クリニカル
・ケミストリー・アンド・クリニカル・バイオケミスト
リー(J、 Cl1n、 Chem、 Cl1n、Bi
o−chem、 )第19巻、第81〜87頁(198
1年)、糖尿病第29巻、第581〜590頁(198
6年)、糖尿病筒29巻補冊2、第340頁(1986
年)〕。
[発明が解決しようとする課題]
しかしながら従来の方法には干渉物質の影響を受ける、
操作が複雑で手間がかかるなどの問題点がある。
操作が複雑で手間がかかるなどの問題点がある。
[課題を解決するための手段]
本発明者らは、干渉物質の影響を受けず、かつ簡便な糖
化蛋白測定法および測定試薬を得るべく鋭意検討した結
果、本発明に到達した。すなわち本発明は、糖化蛋白に
ε−アルキルリジナーゼを作用させ、反応に伴う酸素の
消費量または過酸化水素の発生量を測定する糖化蛋白の
測定法;糖化蛋白の糖結合部位であるリジン残基を遊離
させて得られる混合物にε−アルキルリジナーゼを作用
させ、反応に伴う酸素の消費量または過酸化水素の発生
量を測定する糖化蛋白の測定法;およびε−アルキルリ
ジナーゼを含有してなる糖化蛋白測定試薬である。
化蛋白測定法および測定試薬を得るべく鋭意検討した結
果、本発明に到達した。すなわち本発明は、糖化蛋白に
ε−アルキルリジナーゼを作用させ、反応に伴う酸素の
消費量または過酸化水素の発生量を測定する糖化蛋白の
測定法;糖化蛋白の糖結合部位であるリジン残基を遊離
させて得られる混合物にε−アルキルリジナーゼを作用
させ、反応に伴う酸素の消費量または過酸化水素の発生
量を測定する糖化蛋白の測定法;およびε−アルキルリ
ジナーゼを含有してなる糖化蛋白測定試薬である。
ε−アルキルリジナーゼとしてはたとえばラットの腎臓
等からジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリ
ー(J、 Biol、 Chem、 )第239巻、第
3790〜3796頁(1964年)に記載の方法で抽
出・精製したものを用いることができる。
等からジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリ
ー(J、 Biol、 Chem、 )第239巻、第
3790〜3796頁(1964年)に記載の方法で抽
出・精製したものを用いることができる。
本発明の測定対象物である糖化蛋白としてはグルコース
等のアルドースが蛋白のりジン残基等のアミノ基に非酵
素的に結合し、さらにアマトリ転移して生じるものがあ
げられる。たとえばフルクトサミン(糖化血清蛋白)、
糖化アルブミン、ヘモグロビンA1.などがある。
等のアルドースが蛋白のりジン残基等のアミノ基に非酵
素的に結合し、さらにアマトリ転移して生じるものがあ
げられる。たとえばフルクトサミン(糖化血清蛋白)、
糖化アルブミン、ヘモグロビンA1.などがある。
本発明の測定を行なうためにε−アルキルリジナーゼを
作用させるための反応条件は通常用いられる条件でよい
。たとえばジャーナル・オブ・バイオロジカ/lz−ケ
ミストリー(J、 Biol、 Chem、 )第23
9巻、第3790〜3796頁(1964年)に記載の
条件を用いることができる。具体的には次の条件が用い
られる。
作用させるための反応条件は通常用いられる条件でよい
。たとえばジャーナル・オブ・バイオロジカ/lz−ケ
ミストリー(J、 Biol、 Chem、 )第23
9巻、第3790〜3796頁(1964年)に記載の
条件を用いることができる。具体的には次の条件が用い
られる。
ε−アルキルリジナーゼの添加量は通常0.01〜10
U /mQ、好ましくは0.1〜IU/Tn1である
。反応液のpHは通常5〜9、好ましくは6.5〜7.
5である。反応温度は通常10〜60℃、好ましくは3
0〜40℃である。反応時間は5〜90分、好ましくは
10〜30分である。反応には通常緩衝液が用いられる
が緩衝液としては酵素反応に通常用いられるものならば
特に制限されず、0.01〜0.1Mのリン酸緩衝液等
を用いることができる。
U /mQ、好ましくは0.1〜IU/Tn1である
。反応液のpHは通常5〜9、好ましくは6.5〜7.
5である。反応温度は通常10〜60℃、好ましくは3
0〜40℃である。反応時間は5〜90分、好ましくは
10〜30分である。反応には通常緩衝液が用いられる
が緩衝液としては酵素反応に通常用いられるものならば
特に制限されず、0.01〜0.1Mのリン酸緩衝液等
を用いることができる。
ε−アルキルリジナーゼは糖化蛋白に直接作用させても
よいが、あらかじめ糖の結合部位であるリジン残基等を
遊離させて得られる混合物に作用させることによりさら
に効率よく反応が進行し好ましい。糖が結合したりジン
残基等を遊離させる方法は通常の方法でよく酵素法、化
学法がある。
よいが、あらかじめ糖の結合部位であるリジン残基等を
遊離させて得られる混合物に作用させることによりさら
に効率よく反応が進行し好ましい。糖が結合したりジン
残基等を遊離させる方法は通常の方法でよく酵素法、化
学法がある。
酵素法では糖化蛋白に作用してリジン残基等を遊離させ
ることができる酵素ならばいずれでも使用することがで
きる。カルボキシペプチダーゼB、パパイン等のエンド
ペプチダーゼまたはアミノペプチダーゼ等のエキソペプ
チダーゼのいずれも使用することができる。化学法とし
ては塩酸等を用いる加水分解法がある。これらのうち好
ましいのは酵素法である。
ることができる酵素ならばいずれでも使用することがで
きる。カルボキシペプチダーゼB、パパイン等のエンド
ペプチダーゼまたはアミノペプチダーゼ等のエキソペプ
チダーゼのいずれも使用することができる。化学法とし
ては塩酸等を用いる加水分解法がある。これらのうち好
ましいのは酵素法である。
酵素法によりリジン残基等を遊離させる際の反応条件は
通常の反応条件でよく、エンドペプチダーゼを用いる場
合は、例えばジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミ
ストリー(J、 Biol、 Chem、 )第237
巻、第3094〜3099頁(1962年)、同第20
7巻、第515〜531頁(1954年)に記載の反応
条件を、またエキソペプチダーゼを用いる場合はたとえ
ばメソッズ・イン・エンザイモロジー(Meth、 E
nz−ymol、 )第19巻、第514〜521頁(
1970年)に記載の反応条件をそれぞれ用いることが
できる。
通常の反応条件でよく、エンドペプチダーゼを用いる場
合は、例えばジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミ
ストリー(J、 Biol、 Chem、 )第237
巻、第3094〜3099頁(1962年)、同第20
7巻、第515〜531頁(1954年)に記載の反応
条件を、またエキソペプチダーゼを用いる場合はたとえ
ばメソッズ・イン・エンザイモロジー(Meth、 E
nz−ymol、 )第19巻、第514〜521頁(
1970年)に記載の反応条件をそれぞれ用いることが
できる。
リジン残基等を遊離させる酵素と ε−アルキルリジナ
ーゼは逐次添加してもよく、同時に添加してもよい。
ーゼは逐次添加してもよく、同時に添加してもよい。
ε−アルキルリジナーゼによる反応は反応式:%式%(
20 (式中Rは蛋白分子またはリジンの残基を、R゛はアル
ドースの残基を表す) にしたがって進行し、酸素の消費および過酸化水素の発
生を伴う。酸素の消費量および過酸化水素の発生量は存
在する糖化蛋白の濃度に比例する。
20 (式中Rは蛋白分子またはリジンの残基を、R゛はアル
ドースの残基を表す) にしたがって進行し、酸素の消費および過酸化水素の発
生を伴う。酸素の消費量および過酸化水素の発生量は存
在する糖化蛋白の濃度に比例する。
したがって、酸素の消費量または過酸化水素の発生爪を
測定すれば糖化蛋白の濃度を知ることができる。酸素の
消費量および過酸化水素の発生量の測定は通常の方法で
行なうことができる。すなわち酸素の消費量は、たとえ
ば酸素電極によって、また過酸化水素の発生量はたとえ
ばパーオキシダーゼによる発色反応を用いて測定するこ
とができる。
測定すれば糖化蛋白の濃度を知ることができる。酸素の
消費量および過酸化水素の発生量の測定は通常の方法で
行なうことができる。すなわち酸素の消費量は、たとえ
ば酸素電極によって、また過酸化水素の発生量はたとえ
ばパーオキシダーゼによる発色反応を用いて測定するこ
とができる。
測定の際、通常標準物質が必要であるが標準物質として
はリジンのアミノ基に糖またはアルキル基(炭素数1〜
4)が結合したものならばいずれでも用いることができ
る。好ましいのは糖が結合したものである。
はリジンのアミノ基に糖またはアルキル基(炭素数1〜
4)が結合したものならばいずれでも用いることができ
る。好ましいのは糖が結合したものである。
本発明の測定法を糖尿病診断のための臨床検査に利用す
る場合、糖化蛋白を含有する検体は通常臨床検査に用い
られる全血、血しよう、血清のいずれでもよい。これら
はそのまま測定に供してもよいが、あらかじめ透析など
の前処理を行なったのち測定に供してもよい。検体量と
しては通常1〜1,000μQ1好ましくは10〜10
0μ2を用いる。
る場合、糖化蛋白を含有する検体は通常臨床検査に用い
られる全血、血しよう、血清のいずれでもよい。これら
はそのまま測定に供してもよいが、あらかじめ透析など
の前処理を行なったのち測定に供してもよい。検体量と
しては通常1〜1,000μQ1好ましくは10〜10
0μ2を用いる。
本発明の測定法で用いる ε−アルキルリジナーゼ、パ
ーオキシダーゼ等の酵素は溶液状態で用いてもよいが、
固定化して用いることもできる。固定化したε−アルキ
ルリジナーゼ、パーオキシダーゼ等はカラム型式、バッ
チ型式のいずれの型式でも用いることができる。
ーオキシダーゼ等の酵素は溶液状態で用いてもよいが、
固定化して用いることもできる。固定化したε−アルキ
ルリジナーゼ、パーオキシダーゼ等はカラム型式、バッ
チ型式のいずれの型式でも用いることができる。
本発明の測定法は用手法で実施することもできるが臨床
検査等で通常用いられる自動分析装置で実施すればさら
に効果的である。
検査等で通常用いられる自動分析装置で実施すればさら
に効果的である。
測定結果は糖化蛋白の濃度で表現してもよいが検体中に
含まれる全蛋白濃度を測定すれば全蛋白濃度に対する糖
化蛋白濃度の比率で表現することもできる。全蛋白濃度
の測定法としては通常の方法でよ(、たとえば280n
mにおける吸光度を測定する方法、ロウクー法(Low
ry法)をあげることができる。
含まれる全蛋白濃度を測定すれば全蛋白濃度に対する糖
化蛋白濃度の比率で表現することもできる。全蛋白濃度
の測定法としては通常の方法でよ(、たとえば280n
mにおける吸光度を測定する方法、ロウクー法(Low
ry法)をあげることができる。
[実施例コ
次に本発明を実施例により具体的に説明するが本発明は
以下の実施例によって限定されるものではない。
以下の実施例によって限定されるものではない。
実施例1
(1)糖化蛋白測定試薬
酵素試薬:ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミス
トリー(J、 Biol、 Chem、 )第239巻
、第3790〜3796頁(1964年)に記載の方法
で精製したε−アルキルリジナーゼ溶液ITn1を凍結
乾燥した。
トリー(J、 Biol、 Chem、 )第239巻
、第3790〜3796頁(1964年)に記載の方法
で精製したε−アルキルリジナーゼ溶液ITn1を凍結
乾燥した。
(2)リジン残基遊離試薬
パパイン溶液(シグマ社製、600U/mQ ) 40
0 μnカルボキシペブチダーセB溶′7rl(シグマ
社製、2300U/mQ) 200μQ、システィン2
0mgを0.05Mリン酸緩衝液(pH7,5)1mQ
に溶解し、凍結乾燥した。
0 μnカルボキシペブチダーセB溶′7rl(シグマ
社製、2300U/mQ) 200μQ、システィン2
0mgを0.05Mリン酸緩衝液(pH7,5)1mQ
に溶解し、凍結乾燥した。
(3)標準物質
リジンのアミノ基にグルコースを結合させて得た物質2
6■を0.05Mリン酸緩衝液(pH7,5)l蔵に溶
解し、凍結乾燥した。
6■を0.05Mリン酸緩衝液(pH7,5)l蔵に溶
解し、凍結乾燥した。
比較例1
糖尿病患者および正常者の血清を生理食塩水に対して透
析した。透析後の血清10011.Qに蒸留水を加え全
量を500μ2とした。1mole/R濃度の蓚酸50
0μ2を加え、100℃で5時間加熱した。次いで60
0 g / Q濃度のトリクロル酢酸を200μ℃加え
除蛋白した。除蛋白後の上清液に50mmol/ Q濃
度のチオバルビッール酸300μ2を加え、37℃で1
5分間インキュベーションした。室温に20分間放置し
たのち443nmにおける吸光度を測定した。なお標準
液には5−ハイドロキシメチルフルフラール溶液を用い
、除蛋白後の血清サンプルと同様に操作した。血清中の
糖化蛋白濃度(C)は次式により算出した。測定結果は
第1図に示す。
析した。透析後の血清10011.Qに蒸留水を加え全
量を500μ2とした。1mole/R濃度の蓚酸50
0μ2を加え、100℃で5時間加熱した。次いで60
0 g / Q濃度のトリクロル酢酸を200μ℃加え
除蛋白した。除蛋白後の上清液に50mmol/ Q濃
度のチオバルビッール酸300μ2を加え、37℃で1
5分間インキュベーションした。室温に20分間放置し
たのち443nmにおける吸光度を測定した。なお標準
液には5−ハイドロキシメチルフルフラール溶液を用い
、除蛋白後の血清サンプルと同様に操作した。血清中の
糖化蛋白濃度(C)は次式により算出した。測定結果は
第1図に示す。
A、:サンプルを測定したときの吸光度A1.:標準物
質を測定したときの吸光度C1,:標準物質濃度(nm
o l /ml )実施例2 糖化蛋白測定試薬、リジン残基遊離試薬、標準物質に蒸
留水を1mQずつ加えて溶液とし、比較例と同じ血清サ
ンプルについて以下の方法で糖化蛋白を測定した。
質を測定したときの吸光度C1,:標準物質濃度(nm
o l /ml )実施例2 糖化蛋白測定試薬、リジン残基遊離試薬、標準物質に蒸
留水を1mQずつ加えて溶液とし、比較例と同じ血清サ
ンプルについて以下の方法で糖化蛋白を測定した。
未透析の血清100μ℃に0.05Mリン酸緩衝液(p
H7,5) 1.2Tn!lおよびリジン残基遊離試
薬100μQを加え、37℃で15分間インキュベーシ
ョンした。次いで糖化蛋白測定試薬を100μQ加え、
37℃で15分間インキュベーションし、ε−アルキル
リジナーゼによる反応に伴う酸素消費量を酸素電極で測
定した。標準物質についても同様の操作を行なった。血
清中の糖化蛋白濃度は次式により算出した。測定結果は
第1図に示す。干渉物質を透析により除去して測定した
比較例の測定結果とよく相関している。すなわち、本測
定法はあらかじめ干渉物質を除去しなくてもその影響を
受けることなく正しい糖化蛋白濃度を測定できることを
示している。
H7,5) 1.2Tn!lおよびリジン残基遊離試
薬100μQを加え、37℃で15分間インキュベーシ
ョンした。次いで糖化蛋白測定試薬を100μQ加え、
37℃で15分間インキュベーションし、ε−アルキル
リジナーゼによる反応に伴う酸素消費量を酸素電極で測
定した。標準物質についても同様の操作を行なった。血
清中の糖化蛋白濃度は次式により算出した。測定結果は
第1図に示す。干渉物質を透析により除去して測定した
比較例の測定結果とよく相関している。すなわち、本測
定法はあらかじめ干渉物質を除去しなくてもその影響を
受けることなく正しい糖化蛋白濃度を測定できることを
示している。
OS:血清サンプルを測定したときの酸素消費量
Ol、:標準物質を測定したときの酸素消費量C2,:
標準物質濃度(nmol/d)[発明の効果] 本発明の測定法および測定試薬は特異性の高い酵素を用
いるため、従来の測定法では避けられなが−)だ干渉物
質(たとえばアスコルビン酸、尿酸、グルタチオン、E
DTA−2Naなど)の影響を受けない。また、糖化蛋
白を含有する検体からカラムグロマトグラフィー等の方
法によって糖化蛋白を分離するなどの複雑な操作を必要
としないなどの優れた効果を奏する。
標準物質濃度(nmol/d)[発明の効果] 本発明の測定法および測定試薬は特異性の高い酵素を用
いるため、従来の測定法では避けられなが−)だ干渉物
質(たとえばアスコルビン酸、尿酸、グルタチオン、E
DTA−2Naなど)の影響を受けない。また、糖化蛋
白を含有する検体からカラムグロマトグラフィー等の方
法によって糖化蛋白を分離するなどの複雑な操作を必要
としないなどの優れた効果を奏する。
糖尿病の診断あるいは糖尿病患者の血糖コントロールの
指標の一つに血糖値があるが、血糖値は食事等の影響で
短期間に激しく変動するためこれだけでは正確な診断あ
るいは血糖コントロールの把握ができない。そこで長期
(1週間〜数ケ月)の平均的血糖値を反映する指標が注
目され診断等に用いられている。本発明はこのような診
断等の目的に有効に利用し得る。
指標の一つに血糖値があるが、血糖値は食事等の影響で
短期間に激しく変動するためこれだけでは正確な診断あ
るいは血糖コントロールの把握ができない。そこで長期
(1週間〜数ケ月)の平均的血糖値を反映する指標が注
目され診断等に用いられている。本発明はこのような診
断等の目的に有効に利用し得る。
第1図は比較例1の測定結果と実施例2の測定結果の相
関図である。 (nmol/TnIl) 図面 第1図 実施例2による測定値
関図である。 (nmol/TnIl) 図面 第1図 実施例2による測定値
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、糖化蛋白にε−アルキルリジナーゼを作用させ、反
応に伴う酸素の消費量または過酸化水素の発生量を測定
する糖化蛋白の測定法。 2、糖化蛋白の糖結合部位であるリジン残基を遊離させ
て得られる混合物にε−アルキルリジナーゼを作用させ
、反応に伴う酸素の消費量または過酸化水素の発生量を
測定する糖化蛋白の測定法。 3、ε−アルキルリジナーゼを含有してなる糖化蛋白測
定試薬。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1565889A JPH02195900A (ja) | 1989-01-25 | 1989-01-25 | 糖化蛋白の測定法および測定試薬 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1565889A JPH02195900A (ja) | 1989-01-25 | 1989-01-25 | 糖化蛋白の測定法および測定試薬 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH02195900A true JPH02195900A (ja) | 1990-08-02 |
Family
ID=11894833
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1565889A Pending JPH02195900A (ja) | 1989-01-25 | 1989-01-25 | 糖化蛋白の測定法および測定試薬 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH02195900A (ja) |
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH05192193A (ja) * | 1991-07-29 | 1993-08-03 | Genzyme Ltd | 非酵素的グリコシル化タンパク質の検定法 |
| EP0709457A1 (en) | 1994-10-05 | 1996-05-01 | Kyoto Daiichi Kagaku Co., Ltd. | Fructosyl amino acid oxidase and process for producing the same |
| US6127138A (en) * | 1997-04-24 | 2000-10-03 | Kyoto Daiichi Kagaku Co., Ltd. | Method of enzymatically measuring glycated protein |
| US7235378B2 (en) * | 2000-07-14 | 2007-06-26 | Arkray, Inc. | Method of selectively determining glycated hemoglobin |
| US7250269B2 (en) | 2001-01-31 | 2007-07-31 | Asahi Kasei Pharma Corporation | Composition for assaying glycoprotein |
| WO2008059874A1 (en) | 2006-11-16 | 2008-05-22 | Amano Enzyme Inc. | Novel dipeptide-digesting enzyme, method of producing the same, method of assaying glycated protein by using the dipeptide-digesting enzyme and reagent composition to be used therein |
| WO2021002371A1 (ja) | 2019-07-01 | 2021-01-07 | 旭化成ファーマ株式会社 | フェロシアン化物の酸化還元電位を大きくするプロテアーゼの安定化剤を含む糖化タンパク質測定試薬、糖化タンパク質の測定方法、糖化タンパク質測定試薬の保存方法、及び糖化タンパク質測定試薬の安定化方法 |
-
1989
- 1989-01-25 JP JP1565889A patent/JPH02195900A/ja active Pending
Cited By (18)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5370990A (en) * | 1991-07-29 | 1994-12-06 | Genzyme Corporation | Diagnostic assay for fructosamines |
| JPH05192193A (ja) * | 1991-07-29 | 1993-08-03 | Genzyme Ltd | 非酵素的グリコシル化タンパク質の検定法 |
| EP0709457A1 (en) | 1994-10-05 | 1996-05-01 | Kyoto Daiichi Kagaku Co., Ltd. | Fructosyl amino acid oxidase and process for producing the same |
| US5712138A (en) * | 1994-10-05 | 1998-01-27 | Kyoto Daiichi Kagaku Co., Ltd. | Fructosyl amino acid oxidase |
| US6127138A (en) * | 1997-04-24 | 2000-10-03 | Kyoto Daiichi Kagaku Co., Ltd. | Method of enzymatically measuring glycated protein |
| USRE46105E1 (en) | 2000-07-14 | 2016-08-16 | Arkray, Inc. | Method of selectively determining glycated hemoglobin |
| US7235378B2 (en) * | 2000-07-14 | 2007-06-26 | Arkray, Inc. | Method of selectively determining glycated hemoglobin |
| USRE46130E1 (en) | 2000-07-14 | 2016-08-30 | Arkray, Inc. | Method of selectively determining glycated hemoglobin |
| USRE46118E1 (en) | 2000-07-14 | 2016-08-23 | Arkray, Inc. | Method of selectively determining glycated hemoglobin |
| EP2107376A2 (en) | 2001-01-31 | 2009-10-07 | Asahi Kasei Pharma Corporation | Composition for assaying glycated proteins |
| EP2236618A2 (en) | 2001-01-31 | 2010-10-06 | Asahi Kasei Pharma Corporation | Compositions for assaying glycoprotein |
| EP2248909A1 (en) | 2001-01-31 | 2010-11-10 | Asahi Kasei Pharma Corporation | Compositions for assaying glycoprotein |
| US8105800B2 (en) | 2001-01-31 | 2012-01-31 | Asahi Kasei Pharma Corporation | Composition for assaying glycated proteins |
| EP2107123A2 (en) | 2001-01-31 | 2009-10-07 | Asahi Kasei Pharma Corporation | Composition for assaying glycated proteins |
| US7250269B2 (en) | 2001-01-31 | 2007-07-31 | Asahi Kasei Pharma Corporation | Composition for assaying glycoprotein |
| WO2008059874A1 (en) | 2006-11-16 | 2008-05-22 | Amano Enzyme Inc. | Novel dipeptide-digesting enzyme, method of producing the same, method of assaying glycated protein by using the dipeptide-digesting enzyme and reagent composition to be used therein |
| WO2021002371A1 (ja) | 2019-07-01 | 2021-01-07 | 旭化成ファーマ株式会社 | フェロシアン化物の酸化還元電位を大きくするプロテアーゼの安定化剤を含む糖化タンパク質測定試薬、糖化タンパク質の測定方法、糖化タンパク質測定試薬の保存方法、及び糖化タンパク質測定試薬の安定化方法 |
| KR20220011699A (ko) | 2019-07-01 | 2022-01-28 | 아사히 가세이 파마 가부시키가이샤 | 페로시안화물의 산화 환원 전위를 크게 하는 프로테아제의 안정화제를 포함하는 당화 단백질 측정 시약, 당화 단백질의 측정 방법, 당화 단백질 측정 시약의 보존 방법, 및 당화 단백질 측정 시약의 안정화 방법 |
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