JPH02215397A - トチバ人参の組織培養によるチクセツサポニンの製造法 - Google Patents
トチバ人参の組織培養によるチクセツサポニンの製造法Info
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- JPH02215397A JPH02215397A JP3789689A JP3789689A JPH02215397A JP H02215397 A JPH02215397 A JP H02215397A JP 3789689 A JP3789689 A JP 3789689A JP 3789689 A JP3789689 A JP 3789689A JP H02215397 A JPH02215397 A JP H02215397A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、トチバ人参から得られるカルスを組織培養す
ることによりチクセツサポニンを効率よく製造する方法
に関する。
ることによりチクセツサポニンを効率よく製造する方法
に関する。
(従来の技術)
トチバ人参(Panax Japonicus C
,^0Meyer)は薬用人参の1種であり、その根お
よび茎を生薬「チクセツ人参」と称し、健胃、去痰、解
熱などの薬効があることが知られている。「チクセツ人
参」の薬効成分は主にサポニンであり、チクセツサポニ
ンIb、 TV、 rVa、 V、 mなどが知られて
いる。このうち、チクセツサポニン■には抗ストレス性
潰瘍の作用があることが報告されている(薬学雑誌10
7(2) 、 135−139(1987) )。
,^0Meyer)は薬用人参の1種であり、その根お
よび茎を生薬「チクセツ人参」と称し、健胃、去痰、解
熱などの薬効があることが知られている。「チクセツ人
参」の薬効成分は主にサポニンであり、チクセツサポニ
ンIb、 TV、 rVa、 V、 mなどが知られて
いる。このうち、チクセツサポニン■には抗ストレス性
潰瘍の作用があることが報告されている(薬学雑誌10
7(2) 、 135−139(1987) )。
チクセツサポニンは、現在はトチバ人参を栽培して得ら
れる「チクセツ人参」を原料として得られている。しか
し、トチバ人参は特定の地域(長野県、福島県、東北地
方など)でしか栽培されておらず9人手量に限りがある
。しかも、自然条件下の栽培であるため、季節、天候、
土壌の質などに左右され易い。さらに、根および茎を生
薬として使用できるようになるには、数年の栽培期間を
要する。このように、原料となるトチバ人参の栽培上の
制約のため、チクセツサポニンを安定して大量に得るこ
とができない。
れる「チクセツ人参」を原料として得られている。しか
し、トチバ人参は特定の地域(長野県、福島県、東北地
方など)でしか栽培されておらず9人手量に限りがある
。しかも、自然条件下の栽培であるため、季節、天候、
土壌の質などに左右され易い。さらに、根および茎を生
薬として使用できるようになるには、数年の栽培期間を
要する。このように、原料となるトチバ人参の栽培上の
制約のため、チクセツサポニンを安定して大量に得るこ
とができない。
(発明が解決しようとする課題)
本発明は上記従来の課題を解決するものであり。
その目的とするところは、トチバ人参からチクセツサポ
ニンを効率よく製造する方法を提供することにある。本
発明の他の目的は、季節、天候、土壌の質などの自然条
件に左右されずに、チクセツサポニンを安定して大量に
得る方法を提供することにある。本発明のさらに他の目
的は、トチバ人参の組織培養によりチクセツサポニンを
効率よく製造する方法を提供することにある。
ニンを効率よく製造する方法を提供することにある。本
発明の他の目的は、季節、天候、土壌の質などの自然条
件に左右されずに、チクセツサポニンを安定して大量に
得る方法を提供することにある。本発明のさらに他の目
的は、トチバ人参の組織培養によりチクセツサポニンを
効率よく製造する方法を提供することにある。
(課題を解決するための手段)
本発明のチクセツサポニンの製造法は・、 (a)
)チバ人参(Panax Japonicus C
,八0Meyer)の組織を培養してカルスを誘導する
工程;(b)得られたカルスを窒素源としてNH,+お
よびN0s−、そして炭素源としてシュークロースおよ
び/またはグルコースを含有する有機培地で培養する工
程;および(C)該カルスからチクセツサポニンを抽出
する工程;を包含し、そのことにより上記目的が達成さ
れる。
)チバ人参(Panax Japonicus C
,八0Meyer)の組織を培養してカルスを誘導する
工程;(b)得られたカルスを窒素源としてNH,+お
よびN0s−、そして炭素源としてシュークロースおよ
び/またはグルコースを含有する有機培地で培養する工
程;および(C)該カルスからチクセツサポニンを抽出
する工程;を包含し、そのことにより上記目的が達成さ
れる。
本発明方法によりチクセツサポニンを製造するには、ま
ず、トチバ人参の根、茎1葉1種子などの植物体を切り
とり、アルコールなどで滅菌して通常の植物の組織培養
法によりカルスを誘導する。
ず、トチバ人参の根、茎1葉1種子などの植物体を切り
とり、アルコールなどで滅菌して通常の植物の組織培養
法によりカルスを誘導する。
培養条件は何ら格別である必要はない。培地としては、
植物の組織培養に通常用いられるムラシゲ−スクーグの
培地、ホワイトの培地、リンスマイヤー−スクーグの培
地、ガウスレットの培地、ヘラ−の培地、ガンボーグの
培地およびこれらの改変培地などが用いられうる。特に
ムラシゲ−スクーグの培地が好適に用いられる。これに
、カルスの誘導をより促進させるために、必要に応じて
植物ホルモン(オーキシン類、サイトカイニン類など)
が添加される。オーキシン類には1例えば。
植物の組織培養に通常用いられるムラシゲ−スクーグの
培地、ホワイトの培地、リンスマイヤー−スクーグの培
地、ガウスレットの培地、ヘラ−の培地、ガンボーグの
培地およびこれらの改変培地などが用いられうる。特に
ムラシゲ−スクーグの培地が好適に用いられる。これに
、カルスの誘導をより促進させるために、必要に応じて
植物ホルモン(オーキシン類、サイトカイニン類など)
が添加される。オーキシン類には1例えば。
2.4−ジクロロフェノキシ酢酸(2,4−D ) 、
インドール酢酸(IAA) 、インドール3−酪酸(I
BA) 。
インドール酢酸(IAA) 、インドール3−酪酸(I
BA) 。
ナフタレン酢酸(NAA )などがある。サイトカイニ
ン類には2例えば、カイネチン、ベンジルアデニン(B
^)などがある。通常、オーキシン類は0.01〜5p
pmの割合で、サイトカイニン類は0.1〜10ppm
の割合で培地中に添加される。通常、暗所で15〜35
℃にて培養を行うと、10〜30日後には組織切断面に
カルスが形成される。このカルスを適当な寒天培地など
の固体培地に移して適当な量にまで増殖させる。さらに
必要に応じて、このカルスを固体培地または液体培地に
移し培養を続ける。この培地も上記と同様の培地が用い
られ得、特にムラシゲ−スクーグの培地が好適に用いら
れる。培養は暗所で行うのが好ましく、培養温度は20
〜25℃が利用されつる。
ン類には2例えば、カイネチン、ベンジルアデニン(B
^)などがある。通常、オーキシン類は0.01〜5p
pmの割合で、サイトカイニン類は0.1〜10ppm
の割合で培地中に添加される。通常、暗所で15〜35
℃にて培養を行うと、10〜30日後には組織切断面に
カルスが形成される。このカルスを適当な寒天培地など
の固体培地に移して適当な量にまで増殖させる。さらに
必要に応じて、このカルスを固体培地または液体培地に
移し培養を続ける。この培地も上記と同様の培地が用い
られ得、特にムラシゲ−スクーグの培地が好適に用いら
れる。培養は暗所で行うのが好ましく、培養温度は20
〜25℃が利用されつる。
このようにして得られるカルスを、特定の窒素源および
炭素源を含有する有機培地に移す。この培地には1次に
示す特定の窒素源および炭素源を含有する培地が用いら
れる。特定の窒素源および炭素源を含有すること以外は
9通常の組織培養に用いる培地で充分である。例えば、
上記カルスの誘導または増殖用の培地が用いられる。上
記窒素源としては、NH4NO3,(N)14)2SO
,などのアンモニウム塩(解離してNH,+を生じる)
、およびNaN口、。
炭素源を含有する有機培地に移す。この培地には1次に
示す特定の窒素源および炭素源を含有する培地が用いら
れる。特定の窒素源および炭素源を含有すること以外は
9通常の組織培養に用いる培地で充分である。例えば、
上記カルスの誘導または増殖用の培地が用いられる。上
記窒素源としては、NH4NO3,(N)14)2SO
,などのアンモニウム塩(解離してNH,+を生じる)
、およびNaN口、。
に803などの硝酸塩(解離してNO3−を生じる)が
用いられる。アンモニウム塩と硝酸塩とを組み合わせて
用いるのが好ましく、特にNH4NO3とKNO,との
組合せが好適である。KNO3は植物の生育に必要な金
属元素であるカリウム(に)を含有するため。
用いられる。アンモニウム塩と硝酸塩とを組み合わせて
用いるのが好ましく、特にNH4NO3とKNO,との
組合せが好適である。KNO3は植物の生育に必要な金
属元素であるカリウム(に)を含有するため。
カルスの増殖にも効果的であると考えられる。これらの
窒素源の培地中の濃度は、アンモニウム塩はアンモニウ
ムイオン(NH,+)として2.8〜55,6mM (
0,05〜1.0g/ l ) 、好ましくは5.0〜
41.1mM(0,09〜0.74g /1 ) 、そ
して硝酸塩は硝酸イオン(N(13−)として11.3
〜80.6mM (0,7〜5.0g/ 1) 。
窒素源の培地中の濃度は、アンモニウム塩はアンモニウ
ムイオン(NH,+)として2.8〜55,6mM (
0,05〜1.0g/ l ) 、好ましくは5.0〜
41.1mM(0,09〜0.74g /1 ) 、そ
して硝酸塩は硝酸イオン(N(13−)として11.3
〜80.6mM (0,7〜5.0g/ 1) 。
好ましくは14.5〜64.5mM (0,9〜4.0
g/ 1 )である。
g/ 1 )である。
上記特定の炭素源としては、シュークロース。
およびグルコースが単独でまたは組み合わされて用いら
れる。これらの炭素源の培地中の濃度は。
れる。これらの炭素源の培地中の濃度は。
シュークロースでは3〜7重量%、好ましくは3〜4重
量%であり、グルコースでは3〜5重量%である。上記
窒素源および炭素源の含有量が上記範囲を外れるとチク
セツサポニンの生産量が低下する。
量%であり、グルコースでは3〜5重量%である。上記
窒素源および炭素源の含有量が上記範囲を外れるとチク
セツサポニンの生産量が低下する。
上記培地には、カルスの増殖を目的として必要に応じて
オーキシン、サイトカイニンなどの植物ホルモンが添加
され得る。培養は、上記カルスの誘導および増殖と同様
に、20〜25℃の培養温度で暗所にて行うのが好まし
い。
オーキシン、サイトカイニンなどの植物ホルモンが添加
され得る。培養は、上記カルスの誘導および増殖と同様
に、20〜25℃の培養温度で暗所にて行うのが好まし
い。
このようにして培養されたカルスを通風乾燥など、適当
な条件下で乾燥させ、必要に応じて粉砕し、これに適当
な抽出溶媒を添加して抽出が行なわれる。例えば、50
%エタノールを加えて24時間。
な条件下で乾燥させ、必要に応じて粉砕し、これに適当
な抽出溶媒を添加して抽出が行なわれる。例えば、50
%エタノールを加えて24時間。
室温で静置することによりチクセツサポニンを含有する
抽出液が得られる。抽出液を比較的穏和な条件下で蒸発
乾固することによりチクセツサポニンを含有するエキス
が得られる。このエキスは必要に応じて当業者に公知の
各種クロマトグラフィーに供することにより、精製サポ
ニンとされる。
抽出液が得られる。抽出液を比較的穏和な条件下で蒸発
乾固することによりチクセツサポニンを含有するエキス
が得られる。このエキスは必要に応じて当業者に公知の
各種クロマトグラフィーに供することにより、精製サポ
ニンとされる。
エキス中のチクセツサポニンは1例えば、シリカゲル薄
層クロマトグラフィーにより確認され得る。
層クロマトグラフィーにより確認され得る。
(実施例)
本発明を以下の実施例につき説明する。
実施例1
ムラシゲ−スクーグの培地にオーキシンとして2.4−
Dおよびカイネチンをそれぞれtppm、ならびに寒天
を0.9%となるように添加したカルス誘導用の寒天培
地を調製し、 100m1容量のエルレンマイヤーフラ
スコに50m1ずつ分注し、オートクレーブ滅菌した。
Dおよびカイネチンをそれぞれtppm、ならびに寒天
を0.9%となるように添加したカルス誘導用の寒天培
地を調製し、 100m1容量のエルレンマイヤーフラ
スコに50m1ずつ分注し、オートクレーブ滅菌した。
この寒天培地上に1次亜塩素酸ナトリウムで殺菌したト
チバ人参の根の小切片を無菌的に置床し、25℃の暗所
にて4週間培養することによりカルスが誘導された。得
られたカルスを。
チバ人参の根の小切片を無菌的に置床し、25℃の暗所
にて4週間培養することによりカルスが誘導された。得
られたカルスを。
ムラシゲ−スクーグの培地にオーキシンとしてIBA2
ppmおよびBA O,lppm 、ならびに寒天0
.9%を添加した増殖用寒天培地に移植し、25℃にて
4週間培養した。このカルスをさらに、上記増殖用培地
と同様の組成であるが寒天を含まない増殖用液体培地に
移し、25℃にて21日間培養を続けて増殖させた。
ppmおよびBA O,lppm 、ならびに寒天0
.9%を添加した増殖用寒天培地に移植し、25℃にて
4週間培養した。このカルスをさらに、上記増殖用培地
と同様の組成であるが寒天を含まない増殖用液体培地に
移し、25℃にて21日間培養を続けて増殖させた。
次いで、カルスにチクセツサポニンを生産させるために
、ムラシゲ−スクーグの培地に炭素源としてシュークロ
ース3重量%、ならびに窒素源として5.OmM N8
4NO−(アンモニウムイオンとして5.0mM(0,
09g/ ]))およびにNO0[硝酸イオンとして1
4.5mM(0,9g / 1)]を添加した有機培地
を調製した。
、ムラシゲ−スクーグの培地に炭素源としてシュークロ
ース3重量%、ならびに窒素源として5.OmM N8
4NO−(アンモニウムイオンとして5.0mM(0,
09g/ ]))およびにNO0[硝酸イオンとして1
4.5mM(0,9g / 1)]を添加した有機培地
を調製した。
別に、 KNO3の濃度を、それぞれ硝酸イオンとして
21.0mM(1,3g/l)、 29.OmM(1,
8g/l)および60.0mM(3,7g/l)とした
3種類の培地を調製した。各培地を100m1ずつ入れ
たフラスコをオートクレーブ滅菌した後、上記カルスを
フラスコあたり生重量4、Ogずつ接種した。25℃の
暗所にて3週間培養することにより、それぞれ生重量1
4g、 17g、 16gおよび17gのカルスが得ら
れた。−このカルスを60℃にて24時間乾燥するとカ
ルス乾燥品が得られ、それぞれの乾燥重量は0.89g
、 0.10g、 0.98 gおよび0.1gであっ
た。これは上記有機培地11あたりに換算すると、それ
ぞれ乾燥重量8.9g/l 、 10.1g / 1.
9.88 / l右よび10. Og / 1となる。
21.0mM(1,3g/l)、 29.OmM(1,
8g/l)および60.0mM(3,7g/l)とした
3種類の培地を調製した。各培地を100m1ずつ入れ
たフラスコをオートクレーブ滅菌した後、上記カルスを
フラスコあたり生重量4、Ogずつ接種した。25℃の
暗所にて3週間培養することにより、それぞれ生重量1
4g、 17g、 16gおよび17gのカルスが得ら
れた。−このカルスを60℃にて24時間乾燥するとカ
ルス乾燥品が得られ、それぞれの乾燥重量は0.89g
、 0.10g、 0.98 gおよび0.1gであっ
た。これは上記有機培地11あたりに換算すると、それ
ぞれ乾燥重量8.9g/l 、 10.1g / 1.
9.88 / l右よび10. Og / 1となる。
培地のNO3−濃度とカルス乾燥重量[培地11当りの
乾燥重量(g/l)]との関係を第1図に黒丸印(・)
で示す。示す。第1図から9本発明の培地を用いて培養
を行うことによりカルスが良好に増殖することがわかる
。この乾燥カルスを50%エタノールで抽出し、抽出液
を蒸発乾固した。これをメタノールに溶かして溶液とし
、 Sep Pak (Waters社)で処理して
乾燥カルスIgあたりそれぞれ19.0mg、 21.
2mg、 20.4mg右よび22.1mgのサポニン
画分を得た。次いでこの画分を、 CHCl3 : M
eOH: H20=65 : 35 : 10の上層を
展開溶媒として用いたシリカゲル薄層クロマトグラフィ
ーに供した。展開後の薄層プレートに10%硫酸を噴霧
し、105℃にて10分間加熱後、クロマトスキャナー
を用いて波長520nmにおける吸収をスキャンするこ
とにより、チクセツサポニンが確認された(Chem、
Pharm、 Buli、。
乾燥重量(g/l)]との関係を第1図に黒丸印(・)
で示す。示す。第1図から9本発明の培地を用いて培養
を行うことによりカルスが良好に増殖することがわかる
。この乾燥カルスを50%エタノールで抽出し、抽出液
を蒸発乾固した。これをメタノールに溶かして溶液とし
、 Sep Pak (Waters社)で処理して
乾燥カルスIgあたりそれぞれ19.0mg、 21.
2mg、 20.4mg右よび22.1mgのサポニン
画分を得た。次いでこの画分を、 CHCl3 : M
eOH: H20=65 : 35 : 10の上層を
展開溶媒として用いたシリカゲル薄層クロマトグラフィ
ーに供した。展開後の薄層プレートに10%硫酸を噴霧
し、105℃にて10分間加熱後、クロマトスキャナー
を用いて波長520nmにおける吸収をスキャンするこ
とにより、チクセツサポニンが確認された(Chem、
Pharm、 Buli、。
11.1546(1963) )。
比較例1
有機培地中の硝酸イオン濃度を9.7mM (0,6
g/l )にしたことを除いては、実施例1に準じてカ
ルスの培養を行った。その結果を、実施例1の結果とと
もに第1図に黒画角印(■)で示す。第1図から、この
培地を用いるとカルスが乾燥物として4.18/I L
か得られず、硝酸イオンの濃度が低すぎるとカルスの増
殖が促進されないことがわかる。
g/l )にしたことを除いては、実施例1に準じてカ
ルスの培養を行った。その結果を、実施例1の結果とと
もに第1図に黒画角印(■)で示す。第1図から、この
培地を用いるとカルスが乾燥物として4.18/I L
か得られず、硝酸イオンの濃度が低すぎるとカルスの増
殖が促進されないことがわかる。
実施例2
実施例1のカルス誘導用寒天培地中のオーキシンのうち
2.4−DをNAAに、そして、増殖用培地中のBAを
カイネチンに変え、さらに有機培地中の窒素源としての
アンモニウムイオン1度を41.1mM(0,74g
/I )とし、硝酸イオンの濃度を16.1mR1(1
,0g/l) 、 40.3mM (2,5g/l)
、 50.0mM (3,Ig/l)または60.0m
M (3,7g/ 1)としたことを除イテハ。
2.4−DをNAAに、そして、増殖用培地中のBAを
カイネチンに変え、さらに有機培地中の窒素源としての
アンモニウムイオン1度を41.1mM(0,74g
/I )とし、硝酸イオンの濃度を16.1mR1(1
,0g/l) 、 40.3mM (2,5g/l)
、 50.0mM (3,Ig/l)または60.0m
M (3,7g/ 1)としたことを除イテハ。
実施例1と同様にしてトチバ人参のカルスを培養し、乾
燥カルスとした。この乾燥重量を測定した結果を、実施
例1の結果とともに第1図に白丸印(○)で示す。第1
図から、上記培地を用いて培養を行うことによりカルス
が良好に増殖することがわかる。これらのカルス乾燥物
1gあたりからそれぞれ15mg、 17Jmg、 2
1.7mgおよび22.7mgの粗サポニン画分が得ら
れ、実施例1と同様にしてチクセツサポニンの存在が確
認された。
燥カルスとした。この乾燥重量を測定した結果を、実施
例1の結果とともに第1図に白丸印(○)で示す。第1
図から、上記培地を用いて培養を行うことによりカルス
が良好に増殖することがわかる。これらのカルス乾燥物
1gあたりからそれぞれ15mg、 17Jmg、 2
1.7mgおよび22.7mgの粗サポニン画分が得ら
れ、実施例1と同様にしてチクセツサポニンの存在が確
認された。
比較例2
有機培地中のアンモニウムイオン1度ヲ72.2mM(
1,3g/l )に、そして硝酸イオン濃度をそれぞれ
16.1mM (1,0g/ 1 ) 、 40JmM
(2,5g/ I )または59.7mM (3,7
g/ 1 )にしたことを除いては、実施例2に準じて
カルスの培養を行った。その結果を、実施例1.比較例
1および実施例2の結果とともに第1図に白玉角印(△
)示す。第1図から。
1,3g/l )に、そして硝酸イオン濃度をそれぞれ
16.1mM (1,0g/ 1 ) 、 40JmM
(2,5g/ I )または59.7mM (3,7
g/ 1 )にしたことを除いては、実施例2に準じて
カルスの培養を行った。その結果を、実施例1.比較例
1および実施例2の結果とともに第1図に白玉角印(△
)示す。第1図から。
この培地を用いるとカルスが乾燥物として5.0g/
1しか得られず、アンモニウムイオンの濃度が高すぎる
とカルスの増殖が悪くなることがわかる。
1しか得られず、アンモニウムイオンの濃度が高すぎる
とカルスの増殖が悪くなることがわかる。
比較例3
有機培地中のアンモニウムイオンa度をOmM(Og/
l)に、そして硝酸イオン濃度をそれぞれ4゜68mM
(0,29g /1 ) 、 9.35mM (0,
58g /1 ) 。
l)に、そして硝酸イオン濃度をそれぞれ4゜68mM
(0,29g /1 ) 、 9.35mM (0,
58g /1 ) 。
19、4mM (1,20g / 1 )または37.
6mM (2,33g/ 1)にしたことを除いては、
実施例2に準じてカルスの培養を行った。その結果を、
実施例1.比較例1、実施例2および比較例2の結果と
ともに第1図に黒三角印(ム)で示す。第1図から、こ
の培地を用いるとカルスが乾燥物として4.0g/ 1
以下しか得られず、アンモニウムイオンの濃度が低すぎ
るとカルスの増殖が悪くなることがわかる。
6mM (2,33g/ 1)にしたことを除いては、
実施例2に準じてカルスの培養を行った。その結果を、
実施例1.比較例1、実施例2および比較例2の結果と
ともに第1図に黒三角印(ム)で示す。第1図から、こ
の培地を用いるとカルスが乾燥物として4.0g/ 1
以下しか得られず、アンモニウムイオンの濃度が低すぎ
るとカルスの増殖が悪くなることがわかる。
実施例3
実施例1と同様のカルス誘導用培地および増殖用培地を
用いて、トチバ人参のカルスを培養した。
用いて、トチバ人参のカルスを培養した。
このカルスを、実施例1と同様の窒素源[アンモニウム
イオン5 mM(0,09g / 1)および硝酸イオ
ン20.9mM (1,3g/ i) ]を含有し、炭
素源としては1%シュークロース、3%シュークロース
、5%シコークロース、7%シュークロース、1%グル
コース。
イオン5 mM(0,09g / 1)および硝酸イオ
ン20.9mM (1,3g/ i) ]を含有し、炭
素源としては1%シュークロース、3%シュークロース
、5%シコークロース、7%シュークロース、1%グル
コース。
3%グルコースまたは5%グルコースを含有する7種類
の有機培地で(ムラシゲ−スクーグの改変培地)で培養
した。これらの培地で得られたカルスを実施例1と同様
にして乾燥カルスとし、乾燥重量を測定した。その結果
を第2図に白丸印(Oニジコークロース)および白玉角
印(△ニゲルコース)で示す。
の有機培地で(ムラシゲ−スクーグの改変培地)で培養
した。これらの培地で得られたカルスを実施例1と同様
にして乾燥カルスとし、乾燥重量を測定した。その結果
を第2図に白丸印(Oニジコークロース)および白玉角
印(△ニゲルコース)で示す。
さらに、これらのカルス乾燥物1gから実施例1と同様
にして得られる粗サポニンの量を第3図に白丸印(○:
ニジコークロースおよび白玉角印(△ニゲルコース)で
示す。第2図および第3図から、特定の窒素溝を含有し
、かつ炭素源として3〜7%シュークロースまたは3〜
5%グルコースを含有する有機培地を用いて培養を行う
ことによりカルスが良好に増殖し、同時にチクセツサポ
ニンが高効率で生産されることがわかる。
にして得られる粗サポニンの量を第3図に白丸印(○:
ニジコークロースおよび白玉角印(△ニゲルコース)で
示す。第2図および第3図から、特定の窒素溝を含有し
、かつ炭素源として3〜7%シュークロースまたは3〜
5%グルコースを含有する有機培地を用いて培養を行う
ことによりカルスが良好に増殖し、同時にチクセツサポ
ニンが高効率で生産されることがわかる。
比較例4
有機培地中の炭素源として1,3または5%フルクトー
スを用いたことを除いては、実施例3と同様にしてトチ
バ人参〇カルスを培養し、乾燥カルスとした。この乾燥
カルスの重量(g/l)を。
スを用いたことを除いては、実施例3と同様にしてトチ
バ人参〇カルスを培養し、乾燥カルスとした。この乾燥
カルスの重量(g/l)を。
実施例3の結果とともに第2図に白画角印(ロ)で示す
。さらに、これらの乾燥カルス1gから実施例3と同様
にして得られる粗サポニンの量を。
。さらに、これらの乾燥カルス1gから実施例3と同様
にして得られる粗サポニンの量を。
実施例3の結果とともに第3図に白画角(ロ)で示す。
第2図および第3図から、有機培地中の炭素源としてフ
ルクトースを用いた場合には、シュークロースまたはグ
ルコースを用いた場合と比べてカルスおよびチクセツサ
ポニンの生産量が半分以下となり、生産性が悪くなるこ
とがわかる。
ルクトースを用いた場合には、シュークロースまたはグ
ルコースを用いた場合と比べてカルスおよびチクセツサ
ポニンの生産量が半分以下となり、生産性が悪くなるこ
とがわかる。
(発明の効果)
本発明によれば、このように、トチバ人参から得られる
カルスを特定の培地を用いて組織培養することにより、
チクセツサポニンを効率よく製造する方法が提供される
。本発明方法によれば、季節、天候、土壌の質などの自
然条件に左右されずにチクセツサポニンを安定して、し
かも比較的短期間に大量に得ることができる。このよう
にして得られるチクセツサポニンは、医薬品原料、健康
食品添加物など広い分野に利用されつる。
カルスを特定の培地を用いて組織培養することにより、
チクセツサポニンを効率よく製造する方法が提供される
。本発明方法によれば、季節、天候、土壌の質などの自
然条件に左右されずにチクセツサポニンを安定して、し
かも比較的短期間に大量に得ることができる。このよう
にして得られるチクセツサポニンは、医薬品原料、健康
食品添加物など広い分野に利用されつる。
第1図は1本発明方法で用いられる特定の有機培地のア
ンモニウムイオン濃度および硝酸イオン濃度を変化させ
たときの、トチバ人参のカルスの収量の変化を示すグラ
フ;第2図は、有機培地中の炭素源の種類および濃度を
変えたときのカルスの収量の変化を示すグラフ;そして
第3図は、有機培地中の炭素源の種類および濃度を変え
たときに得られるカルスから得られる粗サポニンの量の
変化を示すグラフである。 以上
ンモニウムイオン濃度および硝酸イオン濃度を変化させ
たときの、トチバ人参のカルスの収量の変化を示すグラ
フ;第2図は、有機培地中の炭素源の種類および濃度を
変えたときのカルスの収量の変化を示すグラフ;そして
第3図は、有機培地中の炭素源の種類および濃度を変え
たときに得られるカルスから得られる粗サポニンの量の
変化を示すグラフである。 以上
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、(a)トチバ人参(Panax Japonicu
s C.A.Meyer)の組織を培養してカルスを誘
導する工程;(b)得られたカルスを窒素源としてNH
_4^+およびNO_3^−、そして炭素源としてシュ
ークロースおよび/またはグルコースを含有する有機培
地で培養する工程;および (c)該カルスからチクセツサポニンを抽出する工程; を包含するチクセツサポニンの製造法。 2、前記培地のNH_4^+が2.8〜55.6mM(
0.05〜1.0g/l)の割合で、そしてNO_3^
−が11.3〜80.6mM(0.7〜5.0g/l)
の割合で含有される特許請求の範囲第1項に記載の製造
法。 3、前記培地にシュークロースが3〜7重量%の割合で
、および/またはグルコースが3〜5重量%の割合で含
有される特許請求の範囲第1項に記載の製造法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3789689A JPH02215397A (ja) | 1989-02-16 | 1989-02-16 | トチバ人参の組織培養によるチクセツサポニンの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3789689A JPH02215397A (ja) | 1989-02-16 | 1989-02-16 | トチバ人参の組織培養によるチクセツサポニンの製造法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH02215397A true JPH02215397A (ja) | 1990-08-28 |
Family
ID=12510305
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP3789689A Pending JPH02215397A (ja) | 1989-02-16 | 1989-02-16 | トチバ人参の組織培養によるチクセツサポニンの製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH02215397A (ja) |
-
1989
- 1989-02-16 JP JP3789689A patent/JPH02215397A/ja active Pending
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