JPH02234697A - 生体試料の測定法 - Google Patents
生体試料の測定法Info
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- JPH02234697A JPH02234697A JP5379689A JP5379689A JPH02234697A JP H02234697 A JPH02234697 A JP H02234697A JP 5379689 A JP5379689 A JP 5379689A JP 5379689 A JP5379689 A JP 5379689A JP H02234697 A JPH02234697 A JP H02234697A
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- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、生体試料のＩＩＩ定法に関し、さらに詳しく
は、生体試料中の脱水素酵素および脱水素酵素の基質の
含有率の測定法に係わる。
は、生体試料中の脱水素酵素および脱水素酵素の基質の
含有率の測定法に係わる。
生化学的検査や病理学的研究において血清や尿などの生
体試料中の脱水素酵素および脱水素酵素の基質のそれぞ
れの含有率の測定を行う際に、脱水素酵素の作用により
生成された還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチ
ト（以下Ｎ Ａ Ｄ Ｈと記す）または還元型ニコチン
アミドアデニンジヌクレオチドりん酸（以下ＮＡＤＰＨ
と記す）の量を測定することによる生体試料中の脱水素
酵素および脱水素酵素の基質のそれぞれの含有率の測定
が広く行われている。
体試料中の脱水素酵素および脱水素酵素の基質のそれぞ
れの含有率の測定を行う際に、脱水素酵素の作用により
生成された還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチ
ト（以下Ｎ Ａ Ｄ Ｈと記す）または還元型ニコチン
アミドアデニンジヌクレオチドりん酸（以下ＮＡＤＰＨ
と記す）の量を測定することによる生体試料中の脱水素
酵素および脱水素酵素の基質のそれぞれの含有率の測定
が広く行われている。
ＮＡＤＨまたはＮＡＩ）ＰＨ （以下両者のうちの一方
をＮＡＤ （Ｐ）Ｈと記す）の定量法としては、５−メ
チルフエナジニウムメチルサルフェ−１・（以下ＰＭＳ
と記す）または１−メトキシ−５メチルフェナジニウム
メチルサルフエ−１−（以下ｌ−メトキシＰＭＳと記す
）を、電子伝達体として作用させる方法が広く利用され
ている。
をＮＡＤ （Ｐ）Ｈと記す）の定量法としては、５−メ
チルフエナジニウムメチルサルフェ−１・（以下ＰＭＳ
と記す）または１−メトキシ−５メチルフェナジニウム
メチルサルフエ−１−（以下ｌ−メトキシＰＭＳと記す
）を、電子伝達体として作用させる方法が広く利用され
ている。
すなわち、ＮＡＤ （Ｐ）ＨにＰＭＳまたは１メトキシ
ＰＭＳを作用させ、酸化還元指示薬の呈色反応により測
定する方法、あるいは、ＮＡＤ （Ｐ）ＨにＰＭＳまた
は１〜メトキシＰＭＳを作用させて、生成された過酸化
水素を測定する方法などがある。しかし、これらの方法
で電子伝達体として用いられるＰＭＳまたは１−メトキ
シＰＭＳにはそれぞれ大きな問題がある。
ＰＭＳを作用させ、酸化還元指示薬の呈色反応により測
定する方法、あるいは、ＮＡＤ （Ｐ）ＨにＰＭＳまた
は１〜メトキシＰＭＳを作用させて、生成された過酸化
水素を測定する方法などがある。しかし、これらの方法
で電子伝達体として用いられるＰＭＳまたは１−メトキ
シＰＭＳにはそれぞれ大きな問題がある。
ＰＭＳは散乱光およびアルカリ性溶液中において極めて
不安定であり、水溶液を長期保存することはできない。
不安定であり、水溶液を長期保存することはできない。
したがって使用時毎に反応液を調製しなければならない
。一方、１−メトキシＰＭＳは、散乱光には安定である
がアルカリ性溶液中においては、依然として極めて不安
定である。
。一方、１−メトキシＰＭＳは、散乱光には安定である
がアルカリ性溶液中においては、依然として極めて不安
定である。
一般に、脱水素酵素の脱水素反応においては、その至適
ｐＨがアルカリ性側に偏っている場合が多く、さらに、
ＮＡＤ （Ｐ）Ｈがアルカリ性側で安定であるにもかか
わらず、ＰＭＳまたは１−メトヰシＰＭＳのアルカリ性
溶液中における極度の不安定性が測定操作上の制限とな
っている。
ｐＨがアルカリ性側に偏っている場合が多く、さらに、
ＮＡＤ （Ｐ）Ｈがアルカリ性側で安定であるにもかか
わらず、ＰＭＳまたは１−メトヰシＰＭＳのアルカリ性
溶液中における極度の不安定性が測定操作上の制限とな
っている。
本発明は、前記の従来の電子伝達体のもつ問題点を解決
するものであり、散乱光に対し安定でありアルカリ性に
おいては勿論のこと酸性または中性においてさえも安定
である電子伝達体を使用することにより脱水素酵素およ
び脱水素酵素の基質のそれぞれの含有率を知る方法を提
供することにある。
するものであり、散乱光に対し安定でありアルカリ性に
おいては勿論のこと酸性または中性においてさえも安定
である電子伝達体を使用することにより脱水素酵素およ
び脱水素酵素の基質のそれぞれの含有率を知る方法を提
供することにある。
Ｃ問題点を解決するための手段、作用〕本発明者らは、
前記の問題点を解決するために種々検討したところ、構
造式 で示される１−メトキシ−５−エチルフエナジニウムエ
チルサルフェート（以下１−メトキシＰＥＳと記す）が
優れた電子伝達体であることを見出し本発明に到達した
。
前記の問題点を解決するために種々検討したところ、構
造式 で示される１−メトキシ−５−エチルフエナジニウムエ
チルサルフェート（以下１−メトキシＰＥＳと記す）が
優れた電子伝達体であることを見出し本発明に到達した
。
すなわち、本発明は、生体試料中の脱水素酵素および脱
水素酵素の基質のそれぞれの含有率の測定に際して、脱
水素反応により生成された還元型ニコチンアミドアデニ
ンジヌクレオチドまたは還元型ニコチンアミドアデニン
ジヌクレオチドりん酸に１−メトキシ〜５−エチルフエ
ナジニウムエチルサルフェートを電子伝達体として作用
させることにより、生体試料中の脱水素酵素および脱水
素酵素の基質のそれぞれの含有率を知ることを特徴とす
る生体試料の測定法である。
水素酵素の基質のそれぞれの含有率の測定に際して、脱
水素反応により生成された還元型ニコチンアミドアデニ
ンジヌクレオチドまたは還元型ニコチンアミドアデニン
ジヌクレオチドりん酸に１−メトキシ〜５−エチルフエ
ナジニウムエチルサルフェートを電子伝達体として作用
させることにより、生体試料中の脱水素酵素および脱水
素酵素の基質のそれぞれの含有率を知ることを特徴とす
る生体試料の測定法である。
本発明において使用される生体試料としては、動物、植
物あるいは微生物などに由来する試料などがあり、代表
例として、血清および尿など、並びに各生物体の抽出物
、微生物及び細胞の培養液などがある。
物あるいは微生物などに由来する試料などがあり、代表
例として、血清および尿など、並びに各生物体の抽出物
、微生物及び細胞の培養液などがある。
本発明に用いられる脱水素酵素はＮＡＤ （Ｐ）Ｈを生
成させる反応を触媒する酵素であれば良い。
成させる反応を触媒する酵素であれば良い。
代表例として第１表に示す脱水素酵素およびその基質が
挙げられる。
挙げられる。
第１表
（第１表続き）
添加されるこれらの酵素、基質および酸化型ニコチンア
ミドアデニンジヌクレオチド（以下ＮＡＤ゛と記す）ま
たは酸化型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドりん
酸（以下ＮＡＤＰ” と記す）は、その由来、製法など
に特に制限はない。これらの酵素、基質およびＮＡＤ“
またはＮＡＤＰ”として市販品を使用することができる
。
ミドアデニンジヌクレオチド（以下ＮＡＤ゛と記す）ま
たは酸化型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドりん
酸（以下ＮＡＤＰ” と記す）は、その由来、製法など
に特に制限はない。これらの酵素、基質およびＮＡＤ“
またはＮＡＤＰ”として市販品を使用することができる
。
本発明において利用される１−メトキシＰＥＳは、１−
メトキシフェナジンをジエチル硫酸により５位をエチル
化することにより得た。１−メトキシＰＥＳは、赤紫色
の粉体であり、通常の使用濃度における水溶液は、中性
付近では、淡いピンク色から淡い赤紫色である。ｐＨ７
の水溶液中では２７７ｎｍ， ３ ８ ５ｎｍ、５０８
ｒ＋＋ｎ付近に吸収の極大値があり、２７８ｎｍにおけ
る分子吸光係数は４４ｍＭ−’ｃｍ−’テアル。
メトキシフェナジンをジエチル硫酸により５位をエチル
化することにより得た。１−メトキシＰＥＳは、赤紫色
の粉体であり、通常の使用濃度における水溶液は、中性
付近では、淡いピンク色から淡い赤紫色である。ｐＨ７
の水溶液中では２７７ｎｍ， ３ ８ ５ｎｍ、５０８
ｒ＋＋ｎ付近に吸収の極大値があり、２７８ｎｍにおけ
る分子吸光係数は４４ｍＭ−’ｃｍ−’テアル。
また１−メトキシＰＥＳは散乱光およびアルカリ性溶液
中において安定となった電子伝達体である。■一メトキ
シＰＥＳは、その安定性が比較的大きく、たとえば０．
２Ｍ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ４．０）中において室
温で１月間散乱光を照射しても電子伝達の活性およびス
ペクトルは全く変化しない。また、１−メトキシＰＥＳ
を２８μＨの濃度で、ｐＨ４から９までの緩衝溶液中、
３０゛Ｃ、３日間保存しても全く失活せず、また、ｐＨ
１０においては、ＰＭＳまたは１−メトキシＰＭＳが完
全に失活するのに対して、８０％もの残存活性があり、
ｐＨ４から１０の範囲で使用できる。
中において安定となった電子伝達体である。■一メトキ
シＰＥＳは、その安定性が比較的大きく、たとえば０．
２Ｍ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ４．０）中において室
温で１月間散乱光を照射しても電子伝達の活性およびス
ペクトルは全く変化しない。また、１−メトキシＰＥＳ
を２８μＨの濃度で、ｐＨ４から９までの緩衝溶液中、
３０゛Ｃ、３日間保存しても全く失活せず、また、ｐＨ
１０においては、ＰＭＳまたは１−メトキシＰＭＳが完
全に失活するのに対して、８０％もの残存活性があり、
ｐＨ４から１０の範囲で使用できる。
本発明の生体試料中の脱水素酵素および脱水素酵素の基
質のそれぞれの含有率の測定に際して、基質の脱水素反
応により、添加したＮＡＤ”またはＮＡＤＰ”よりＮＡ
Ｄ （Ｐ）Ｈが生成される。
質のそれぞれの含有率の測定に際して、基質の脱水素反
応により、添加したＮＡＤ”またはＮＡＤＰ”よりＮＡ
Ｄ （Ｐ）Ｈが生成される。
生成されるＮＡＤ （Ｐ）Ｈの定量法としては、前記の
方法の何れも利用することができる。
方法の何れも利用することができる。
すなわち、ＮＡＤ（Ｐ）Ｈに１−メトキシＰＥＳを作用
させ、酸化還元指示薬の呈色反応により測定する方法、
あるいは、ＮＡＤ（Ｐ）Ｈに１メトキシＰＥＳを作用さ
せて、生成された過酸化水素を測定する方法などである
。測定に用いられる酸化還元指示薬は特に制限はないが
、テトラゾリウム類が通常用いられる。例えば、テトラ
ゾリウム類としてニトロブルーテトラゾリウムを用いた
場合は、ニトロブルーテトラゾリウムからホルマザンを
生成させ、ホルマザンの吸収帯である５７０ｎｍ付近の
吸光度の増加を測定することにより定量ができる。過酸
化水素の定量法も、特に制限はないが、実用上、代表的
な方法としては電極法、発色法、発光法などがある。電
極法としては、過酸化水素電極を用いる方法がある。発
色法としては、ベルオキシダーゼを作用させて、フェノ
ールなどのフェノール類や０′−フエニレンジアミンな
どの芳香族アミン類による発色を測定する方法、あるい
はベルオキシダーゼを作用させて、４アミノアンチピリ
ン（以下１−ＡＡと記す）とアニリン頻の酸化縮合によ
る発色を測定する方法、あるいはカタラーゼを作用さセ
る方法がよく用いられる。発光法としては、ルミノール
と錯体類とを作用させて、発生する化学発光を検出する
方法があり、高感度測定が可能である。
させ、酸化還元指示薬の呈色反応により測定する方法、
あるいは、ＮＡＤ（Ｐ）Ｈに１メトキシＰＥＳを作用さ
せて、生成された過酸化水素を測定する方法などである
。測定に用いられる酸化還元指示薬は特に制限はないが
、テトラゾリウム類が通常用いられる。例えば、テトラ
ゾリウム類としてニトロブルーテトラゾリウムを用いた
場合は、ニトロブルーテトラゾリウムからホルマザンを
生成させ、ホルマザンの吸収帯である５７０ｎｍ付近の
吸光度の増加を測定することにより定量ができる。過酸
化水素の定量法も、特に制限はないが、実用上、代表的
な方法としては電極法、発色法、発光法などがある。電
極法としては、過酸化水素電極を用いる方法がある。発
色法としては、ベルオキシダーゼを作用させて、フェノ
ールなどのフェノール類や０′−フエニレンジアミンな
どの芳香族アミン類による発色を測定する方法、あるい
はベルオキシダーゼを作用させて、４アミノアンチピリ
ン（以下１−ＡＡと記す）とアニリン頻の酸化縮合によ
る発色を測定する方法、あるいはカタラーゼを作用さセ
る方法がよく用いられる。発光法としては、ルミノール
と錯体類とを作用させて、発生する化学発光を検出する
方法があり、高感度測定が可能である。
１−メトキシＰＥＳとＮＡＤ（Ｐ）Ｈとの反応は、通常
、りん酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液などの緩衝液中で行
われ、ｐＨは４がら１０の広い範囲とされる。従って、
生体試料中の脱水素酵素および脱水素酵素の基質のそれ
ぞれの含有率を測定する際に、脱水素反応の至適Ｐ Ｈ
であるアルカリ性においても効率よ＜ＮＡＤ （Ｐ）Ｈ
を生成させることができる。反応液中における１−メト
キシＰＥＳの濃度範囲は、特に制限されず、試料の種類
、反応条件や測定時間によって適宜設定され、通常は０
．０１〜１０＋ｎＭの濃度範囲が好ましい。
、りん酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液などの緩衝液中で行
われ、ｐＨは４がら１０の広い範囲とされる。従って、
生体試料中の脱水素酵素および脱水素酵素の基質のそれ
ぞれの含有率を測定する際に、脱水素反応の至適Ｐ Ｈ
であるアルカリ性においても効率よ＜ＮＡＤ （Ｐ）Ｈ
を生成させることができる。反応液中における１−メト
キシＰＥＳの濃度範囲は、特に制限されず、試料の種類
、反応条件や測定時間によって適宜設定され、通常は０
．０１〜１０＋ｎＭの濃度範囲が好ましい。
ＮＡＤ＋またはＮＡＤＰ”の濃度範囲も特に制限されず
、通常は０．０１〜１０ｍＭの濃度範囲で使用される。
、通常は０．０１〜１０ｍＭの濃度範囲で使用される。
反応温度も特に制限はないが、通常は２０〜４０゜Ｃの
範囲で行われ、この範囲にある限りにおいて加熱、冷却
する必要はないが、加熱、冷却することを妨げない。
範囲で行われ、この範囲にある限りにおいて加熱、冷却
する必要はないが、加熱、冷却することを妨げない。
以下、本発明を実施例によってさらに具体的に説明する
が、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない
。
が、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない
。
実施例 Ｉ
ＮＡＤ （Ｐ）Ｈと１−メトギシＰＥＳとの反応により
生成された過酸化水素を測定することによりＮＡＤ （
Ｐ）Ｈの定量を行った。
生成された過酸化水素を測定することによりＮＡＤ （
Ｐ）Ｈの定量を行った。
第１液
０．５ｍＭ １−メトヰンＰ Ｅ Ｓ
Ｏ．１３ｍｌ！２０ｍＭ グリシン・ＮａＯＨ！
ｌ衝冫１３ｊ （ｐｌｌ９．０ ） ０．８７ｍＩ！．
蒸留純水 １．００ｍｊ
２２．ＯＯｍｊ！ 第２２１１｛ １０ｍＭ４−ＡＡ０．２ｍｌ． １０ｍＭ Ｎ一エチルーＮ一（２−ハイドロキン−３
スルホプ口ピル）−ｍ一トルイジン（以下ＴＯＯＳと記
す） ０．２ｍｆｆｉ１
００１１／ｍ Ｑ ベルオキシダーゼ ０
．２＋ｎｉ！．ＩＭ Ｔｒｉｓ − １１ｃＩ緩衝液
（ｐＨ７．５ ） ０．４ ｍｊ２１．Ｏｎ／！ 反応は３７゜Ｃの恒温装置中で行った。第１液を３７“
Ｃにて予備加熱した。２０ｍＭグリシン・ＮａＯｌｌ緩
衝液（ｐＨ９．０）に溶解したＮＡＤ （Ｐ）Ｈ（０
〜２ｍＭ）を０．０５ｍＩ！．添加し５分間反応させた
。これに第２液を添加し、添加１分後の５５０ｎｍにお
ける吸光度を測定した。
Ｏ．１３ｍｌ！２０ｍＭ グリシン・ＮａＯＨ！
ｌ衝冫１３ｊ （ｐｌｌ９．０ ） ０．８７ｍＩ！．
蒸留純水 １．００ｍｊ
２２．ＯＯｍｊ！ 第２２１１｛ １０ｍＭ４−ＡＡ０．２ｍｌ． １０ｍＭ Ｎ一エチルーＮ一（２−ハイドロキン−３
スルホプ口ピル）−ｍ一トルイジン（以下ＴＯＯＳと記
す） ０．２ｍｆｆｉ１
００１１／ｍ Ｑ ベルオキシダーゼ ０
．２＋ｎｉ！．ＩＭ Ｔｒｉｓ − １１ｃＩ緩衝液
（ｐＨ７．５ ） ０．４ ｍｊ２１．Ｏｎ／！ 反応は３７゜Ｃの恒温装置中で行った。第１液を３７“
Ｃにて予備加熱した。２０ｍＭグリシン・ＮａＯｌｌ緩
衝液（ｐＨ９．０）に溶解したＮＡＤ （Ｐ）Ｈ（０
〜２ｍＭ）を０．０５ｍＩ！．添加し５分間反応させた
。これに第２液を添加し、添加１分後の５５０ｎｍにお
ける吸光度を測定した。
その結果を第１図に示す。
第１図は添加されたＮＡＤ （Ｐ）Ｈの濃度と吸光度と
の関係が直線関係でありＮＡＤ （Ｐ）Ｈを精度よく定
量できることを示している。この方法によりＮＡＤ （
Ｐ）Ｈの濃度は１５ｍＭまで定量が可能である。
の関係が直線関係でありＮＡＤ （Ｐ）Ｈを精度よく定
量できることを示している。この方法によりＮＡＤ （
Ｐ）Ｈの濃度は１５ｍＭまで定量が可能である。
実施例 ２
ＬＤＨの脱水素反応の基質である乳酸の定量性について
調べた。
調べた。
第１液
５０ Ｕ／ｍｊ２ ＬＤＨ Ｏ．１
＋＋１２．２ｍＭ ＮＡＤ’ ０．
２ ｍＩＶ．０．５ｍＭ １−メｌ−ニトシＰＥＳ
０．１ｍｊ２蒸留純水
０．６ｍｆｆ２０ｍＭグリシン・ＮａＯＨＭ衝
液（ｐｌ＋９．０） １．０ ｔｉ４２．０ｍｊ！ 第２液 １０ｍＭ ４ −ＡＡ ０．２ ｍ
ｊ！１０ｍＭ ＴＯＯＳ ０．２
ｍｊ！１０００／ｍ ｊ２ ベルオキシダーゼ
０．２ｍｊ２ＩＭ Ｔｒｉｓ − ＨＣＩ緩衝液 （
ｐＨ７．５ ） ０．４ ｍｌ１．０ ｍｌ 反応は３７゜Ｃの恒温装置中で行った。第１液を３７゜
Ｃにて予備加熱した。ＤＬ一乳酸リチウム水溶液（０〜
５０ｍＭ）を０．０５ｍｌ．添加し５分間反応させた。
＋＋１２．２ｍＭ ＮＡＤ’ ０．
２ ｍＩＶ．０．５ｍＭ １−メｌ−ニトシＰＥＳ
０．１ｍｊ２蒸留純水
０．６ｍｆｆ２０ｍＭグリシン・ＮａＯＨＭ衝
液（ｐｌ＋９．０） １．０ ｔｉ４２．０ｍｊ！ 第２液 １０ｍＭ ４ −ＡＡ ０．２ ｍ
ｊ！１０ｍＭ ＴＯＯＳ ０．２
ｍｊ！１０００／ｍ ｊ２ ベルオキシダーゼ
０．２ｍｊ２ＩＭ Ｔｒｉｓ − ＨＣＩ緩衝液 （
ｐＨ７．５ ） ０．４ ｍｌ１．０ ｍｌ 反応は３７゜Ｃの恒温装置中で行った。第１液を３７゜
Ｃにて予備加熱した。ＤＬ一乳酸リチウム水溶液（０〜
５０ｍＭ）を０．０５ｍｌ．添加し５分間反応させた。
これに第２液を添加し、添加１分後の５５Ｑｎｍにおけ
る吸光度を測定した。
る吸光度を測定した。
その結果を第２図に示す。
第２図は添加したＤＬ一乳酸リチウムの濃度を５５０ｎ
ｍにおける吸光度により定量できることを示している。
ｍにおける吸光度により定量できることを示している。
この方法によりＤＬ一乳酸リチウムの濃度は５０ｍＭま
で定量が可能である。
で定量が可能である。
このように、本発明によれば、生体試料中の脱水素酵素
の含有率または、脱水素酵素の基質の含有率を従来より
も安定に、かつ、再現性よく測定できるので、各種の臨
床検査に利用することができる。
の含有率または、脱水素酵素の基質の含有率を従来より
も安定に、かつ、再現性よく測定できるので、各種の臨
床検査に利用することができる。
第１図は添加したＮＡＤ （Ｐ）．Ｈの濃度と吸光度と
の関係を示している。第２図は添加したＤＬ乳酸リチウ
ムの濃度と吸光度との関係を示している。 ｌ４ 述 ３（｝μ’Ｘｈ９ｔＶｔ：＋”’ＯＣｒＳ手続補正書 平成１年乎月７日
の関係を示している。第２図は添加したＤＬ乳酸リチウ
ムの濃度と吸光度との関係を示している。 ｌ４ 述 ３（｝μ’Ｘｈ９ｔＶｔ：＋”’ＯＣｒＳ手続補正書 平成１年乎月７日
Claims (1)
- 生体試料中の脱水素酵素および脱水素酵素の基質のそれ
ぞれの含有率の測定に際して、脱水素反応により生成さ
れた還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまた
は還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドりん酸
に１−メトキシ−５−エチルフェナジニウムエチルサル
フェートを電子伝達体として作用させることにより、生
体試料中の脱水素酵素および脱水素酵素の基質のそれぞ
れの含有率を知ることを特徴とする生体試料の測定法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5379689A JPH02234697A (ja) | 1989-03-08 | 1989-03-08 | 生体試料の測定法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5379689A JPH02234697A (ja) | 1989-03-08 | 1989-03-08 | 生体試料の測定法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH02234697A true JPH02234697A (ja) | 1990-09-17 |
Family
ID=12952782
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP5379689A Pending JPH02234697A (ja) | 1989-03-08 | 1989-03-08 | 生体試料の測定法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH02234697A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2018054555A (ja) * | 2016-09-30 | 2018-04-05 | アークレイ株式会社 | バイオセンサ、その製造方法、グルコース又はラクテートの濃度測定方法及び濃度測定システム |
-
1989
- 1989-03-08 JP JP5379689A patent/JPH02234697A/ja active Pending
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2018054555A (ja) * | 2016-09-30 | 2018-04-05 | アークレイ株式会社 | バイオセンサ、その製造方法、グルコース又はラクテートの濃度測定方法及び濃度測定システム |
| US10697922B2 (en) | 2016-09-30 | 2020-06-30 | Arkray, Inc. | Biosensor, production method thereof, and method and system for measuring glucose or lactate |
| EP3301183B1 (en) * | 2016-09-30 | 2024-05-08 | ARKRAY, Inc. | Biosensor, production method thereof, and method and system for measuring glucose or lactate |
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