JPH022392A - タンパク質水解物の製法 - Google Patents

タンパク質水解物の製法

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JPH022392A
JPH022392A JP63316545A JP31654588A JPH022392A JP H022392 A JPH022392 A JP H022392A JP 63316545 A JP63316545 A JP 63316545A JP 31654588 A JP31654588 A JP 31654588A JP H022392 A JPH022392 A JP H022392A
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protein
enzyme
producing
protein hydrolyzate
hydrolysis
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JP63316545A
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Roberto Gianna
ロベルト・ジャンナ
Gregoriis Enrico De
エンリーコ・デグレゴリス
Renzo Boni
レンゾ・ボーニ
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Enichem Sintesi SpA
Eni Tecnologie SpA
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Enichem Sintesi SpA
Eniricerche SpA
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Publication date
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    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/06Preparation of peptides or proteins produced by the hydrolysis of a peptide bond, e.g. hydrolysate products

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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 よるタンパク質水解物の新規な製法、及びこのようにし
て得られたタンパク質水解物に係る。
詳述すれば、本発明の第1の目的は、発芽したソルガム
(sorghum)穀粒の抽出を介して得られた酵素系
を使用する植物源又は動物源から得たタンパク物質の酵
素加水分解法にある。
本発明の第2の目的は、上述の如くして得られたタンパ
ク質水解物(栄養の分野で使用される)にある。
タンパク質水解物は、一般に、天然のタンパク物質の酵
素的又は化学的な加水分解を介して得られた各種の分子
量を有するポリペプチドの混合物である。
かかる氷解物は、食品の分野において、低タンパク質食
品(これに添加される)の栄養価を高めるために使用さ
れる。
食品添加物としての使用に関しては、これらの氷解物は
いくつかの特殊な性質を有していなければならない。す
なわち、これらが添加される食品生成物のp旧こおいて
溶解性及び/又は分散性であって(たとえば、高タンパ
ク質飲料の調製に使用されるものである場合、該氷解物
は酸性piで溶解するものでなければならない)、許容
される味を有していなければならない。味に関しては、
一般に植物源又は動物源のいずれのタンパク質水解物も
特徴的な苦味(香味料又は甘味料の添加によってマスク
され得ない)を示すため、特別な問題を生ずる。
さらに、栄養の分野での特殊な応用面(衰弱した幼児又
は胃腸病の大人の栄養補給)に関しては、低分子量(代
表的には、平均分子m 700以下)のタンパク質水解
物が容易に吸収されるとの理由から特に好適である。
しかも、腸管壁からの吸収が遊離のアミノ酸自体よりも
むしろ、小ペブチド(アミノ酸2−5)(内生ペプチダ
ーゼによって遊離のアミノ酸に加水分解される)につい
てよく起るため、上述の低分子量タンパク質水解物は少
量(20%以下)の遊離アミノ酸を含有していなければ
ならない。
これに関連して、いくつかの特許明細書において、少量
の遊離アミノ酸を含有する低分子量タンパク質水解物を
生成するタンパク物質の酵素加水分解法が開示されてい
る(たとえば、EP−^0044032)。しかしなが
ら、公知の方法では、このような結果は、少なくとも2
種類の異ったプロテアーゼを使用することによって達成
される。
これに対し、本発明による酵素加水分解では、単一酵素
系の使用によって、苦味が完全に除去されたタンパク質
水解物を生成し、加水分解の条件(酵素系の濃度、反応
温度及び時間)を調節することによって少量の遊離アミ
ノ酸を含有する低分子量のタンパク質水解物を生成する
ことが可能となる。
詳しくは、本発明による酵素加水分解は、発芽したソル
ガム穀粒からのタンパク質抽出物を酵素系として使用し
て行われる。
事実、各種のソルガム殻拉を数日間(少なくとも2日)
発芽させることにより、これから得られた酵素抽出物は
高分子量タンパク質及び低分子量ポリペプチドの両方を
加水分解でき、加水分解の条件に応じて700以下の平
均分子量を何する完全に苦味が除去されたタンパク質水
解物を生成することが観察された。
発芽した穀粒から該酵素抽出物を得る方法は一般的なも
のであり、次のように要約される。
発芽したソルガム穀粒を均質化し、 有機溶媒(代表的にはアセトン)で洗浄することにより
、不用なa機物質[たとえば、タンニン(均質化物質に
苦味及び暗褐色の色を付与する)]を除去し、 ついで、ほぼ中性の緩衝剤(代表的にはリン酸塩緩衝剤
)によって、固状残渣から酵素フラクションを抽出し、
及び 不活性な塩(代表的には、硫酸アンモニウム)を飽和点
まで添加することによって、酵素フラクションを緩衝剤
溶液から塩析させる。
上記沈殿処理は有機溶媒の存在下でも行われ、塩析溶液
と有機溶媒との間に酵素フラクションが位置する。
発芽したソルガム殻粒からの酸プロテアーゼ均質化生成
物の単離及び精製は文献[G、に、 Garg及びT、
に、 Virupaksha rヨーロピアン・ジャー
ナル・オブ・バイオケミストリー(Eur、 J、 B
iochem、)J17、 (+970)、 P 4−
121に開示されており、このようにして精製された酵
素の特性はG、に、 Garg及びT、に、 Yiru
paksha rEur、 J、 Biochem、 
j 17(1970)、 P 13−18に記載されて
いる。
DEAE−セルロースクロマトグラフィーによって精製
した酵素(上記文献によれば、固有活性度600U/y
tg(タンパク質)/hを有することによって特徴づけ
られる)は、アスパラギン酸及びグルタミン酸のカルボ
キンル基を含むペプチド結合を特異的に開裂するエンド
ペプチダーゼと定義される。その限定された特異性から
、タンパク質の配列に関する研究の分野での該エンドペ
プチダーゼの利用が主として調査されてきた。つづいて
行われた研究(たとえば、T、に、Virupaksh
a及びに、Waller+4elsrFEBs Let
tersJ Vol、 40(2)、 (1974)、
[) 287−9参照)は、精製に関する簡単かつ迅速
な方法の開発を目的とするものであった。
発明者らは、単に抽出することによって発芽したソルガ
ム殻粒から得られる酵素フラクション(従って、何ら精
製を行っていないらの)が実質的に2種類の活性成分、
すなわち未処理のタンパク質及び大ペプチドに対して活
性なタンパク分解成分及び小ペプチドに対して活性なペ
プチダーゼ成分で構成されること、及び植物源及び動物
源から得たタンパク物質の酵素加水分解において該触媒
系を使用することにより、苦味が完全に除去されたタン
パク質水解物が得られることを見出した。
さらに、タンパク分解活性に関する最適pHは3.2−
4.2、好ましくは3.5−3.9であり、プロテアー
ゼ活性に関する最適pHはこれよりも高く、4.56.
5、好ましくは5.2−6.2であること、及び加水分
解のpHを調節して、2つの活性の一方を抑制して、他
方を促進できることを見出した。これにより、適宜選択
される範囲内の平均分子量を有するタンパク質水解物を
得ることができる。
特に、両方の種類の活性が存在することにより、低分子
量タンパク質水解物の製造において該酵素系を使用でき
る。
この場合、加水分解処理は、タンパク分解活性を発揮す
るに適するpH(3,5−3,9)で開始される。
これにより、タンパク分解活性の発現が初めに生じ、p
I(の上昇につれて、ペプチダーゼ活性の発現が生ずる
微生物源から得た他の酵素系(EP−A−004403
2)及び抽出処理によって得られた他の種類の酵素系と
は異なり、本発明の粗製酵素抽出物を使用する場合には
、該酵素系が多くの国において栄養の分野で使用されて
いる穀粒から得られたものであり、その安全性がすでに
確認されていることから、毒性に関する問題は全く生じ
ない。
本発明による酵素系は、動物源と共に植物源から得たタ
ンパク物質の加水分解に使用される。特に、本発明の方
法で使用される原料タンパク物質は、一般にタンパク賃
金ff150ないし95%の大豆、ひまわり、綿、ミル
ク、卵及び同様のタンパク質生成物である。
本発明による酵素加水分解は、実質的には、タンパク物
質を水に分散させ、分散液のpi(を3.0ないし65
の値に調節し、これに酵素系を添加することによって実
施される。
水中における基質濃度(%v/vで表される)は、主と
して、原料の種類及び加水分解の際のplにおける水へ
の溶解度及び/又は分散性に左右される。
最適濃度は2.5ないし20%の範囲であり、特に水に
溶解するタンパク質については、さらに高い濃度を利用
できる。
最適PHも原料のタンパク物質の種類及び所望の生成物
に左右される。すでに述べたように、本発明のソルガム
酵素抽出物によって発現される2種類の活性は異なる最
適pHを有し、初期pHの選択は原料タンパク質のサイ
ズ及び所望の最終タンパク質水解物の平均分子量に左右
される。
しかしながら、一般に、未処理のタンパク質又は大ペプ
チドを原料とする場合、初期の最適pHは3.5ないし
4.0であり、小ペプチドを原料とする場合には、最適
pHは好ましくは52口ないし6.0である。
無機酸又は有機酸(たとえば、塩酸、硫酸、クエン酸等
)を添加することにより、又は塩基(たとえば、NaO
H,KOH等)を添加することによってpHを所望の値
に調節する。
ついで、酵素系を濃度10ないし1000/lQ、好ま
しくは20ないし60U/MQでタンパク物質分散液に
添加する。
本発明の酵素系のタンパク分解活性の測定にあたっては
、G、に、 Garg及びT、に、 Yirupaks
haによってrEur、J、 Biochem、J 1
7. (1970)、 p 4−12に記載された方法
を利用できる。該方法は、0.05Mクエン酸ナトリウ
ム緩衝液(pH3,7X 2 x(1)に溶解した0、
125%アルブミン溶液に所定量の酵素系を添加し、混
合物を50℃で60分間インキュベートし、10%トリ
クロル酢酸(2RQ)を添加して加水分解を停止させ、
遠心分離して上澄液を分離し、Anson法[M、L、
Ansonら「ジャーナル・オブ・ジェネラル・フィジ
オロジー(J、 Gen、 Physiol、)j 1
6(1933)、 p59]によって加水分解されたタ
ンパク質の濃度を測定することからなる。酵素のタンパ
ク分解活性の10は、検定条件下においてチロシン10
μ9を放出する量として定義される。
酵素加水分解は、温度25ないし60℃、好ましくは3
5℃以上、さらに好ましくは37ないし55℃で行われ
る。所望生成物の種類に応じて、4ないし48時間加水
分解を続ける。
原料として水溶性に乏しい基質(たとえば、大豆、カゼ
イン、またはひまわりタンパク生成物)を使用して酵素
加水分解を行う場合には、タンパク分解酵素に対する該
基質のアクセシビリティ−が低いため、収率は一般に低
い。
より高い加水分解収率を得ろためには、この場合、中性
またはわずかにアルカリ性の条件下(これらの条件下で
は、基質が水に溶解し易くなる)でブレー加水分解を行
い、このようにして得られたブレー氷解物をソルガム酵
素抽出物によって加水分解することが好適である。実際
、該ブレー水解物は、ブレー加水分解の条件に応じて、
原料のタンパク物質よりも小さい平均分子mを有してお
り、従って、酸性の水性溶媒中に溶解し易くなる(すな
わち、酵素に対して、さらに自由にアクセスする)。
本発明の他の目的は、中性又はわずかにアルカリ性の条
件下で行った酵素的ブレー加水分解により得られたもの
を原料とするソルガム酵素抽出物による酵素加水分解法
にある。
以下の実施例は、本発明の好適な具体例を詳細に説明す
ることを目的とするものであり、本発明の精神を限定す
るものではない。
実施例1 ソルガム酵素抽出物 1stituto di Cerealicoltur
a (ローフ)から3種類(^ralba、 F27R
及びF30R)のソルガム殻粒(Sorghum vu
lgare)を人手し、それぞれ下記の如く処理した。
殺菌 スクリーニングした後、穀粒を次亜塩素酸ナトリウム溶
液(8%CL)2容で処理し、2−3分後、水で完全に
かつ繰返し洗浄した。ついて洗浄した穀粒3%HtOt
 4容で処理し、3−4分後、水で厳重に洗浄した。
魚も このように処理した穀粒を、底部に水を吸収したp紙を
収容するブレート(35×40CIIり上に播種し、交
互に30℃で8時間20℃で16時間維持して炉内にお
いて5日間インキュベートした。
粗製抽出物の調製 5日間インキュベートした後、発芽した穀粒を回収し、
冷アセトン(−10℃)2容で処理し、8000rpm
で3分間均質化させた。濾過し、冷アセトンで洗浄した
後、ピンク色を帯びた白色の粉末を得た。この粉末を0
.05Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH68)4容中に
懸濁化させ、温度を4℃に維持しながら、10000r
pI11で4分間均質化させた。混合物を遠心分離し、
酵素活性を有する上澄液を回収した。
該上澄液を一5℃においてアセトン(30%、v/v)
で処理し、さらに遠心分離する際に分離してくる沈殿物
を廃棄した。アセトン上澄液に、55%飽和となるまで
硫酸アンモニウムを添加した。このようにして、アセト
ン上層及び塩を含む下履と、これらの中間に存在するタ
ンパク質ディスクとを得た後、液状の両層を除去して該
タンパク質ディスクを回収した。
このタンパク質ディスクをリン酸塩緩衝液に溶解させ、
同じ緩衝液に対して透析し、ついで凍結乾燥させた。
次の第1表は、上述の各種のソルガム殻粒1809から
得られた酵素系の特性を示すものである。
第  1  表 穀粒の種類  得られrこ抽出物  固有活性度の全体
の単位   (U/u(タンバりF27R130502
5,7 実施例2−7 タンパク質水解物の調製 一般法 以下の実施例で利用する一般法は次のとおりである。
すなわち、基質を水中に濃度4%(v/ v)で分散さ
せ、0.1N HCQを添加してpHを所望の値に調節
し、このように1.て得られた分散液に、実施例1に記
載の如くして得られた酵素系を、固有活性度及び塩含量
に応じて基質に対して2−6重量%に相当する量で添加
する。@濁液を50℃で適宜選択した時間撹拌し、つい
で遠心分離し、上澄液を分離し、凍結乾燥する。
平均分子量及び分子量分布の測定を下記の方法で行う。
すなわち、氷解物の平均分子1jk (MDについては
、6vグアニジンで平衡化したBioGel(登録商[
)P2O(1,6X60cx)カラムを使用し、流速7
峠/hで操作し、1.9jlρずつでフラクションを集
め、280nmにおける吸光度を測定する。
既知の分子量(13800,6500,3450,14
50,1060及び451)を有する6種類のタンパク
質及びペプチドを使用して、カラムに予め目盛づけする
。ボイド容量及び全体容量については、それぞれ血清ア
ルブミン(MY 64000)及びトリプトファン(M
Y 204)を使用する。
各標準物の分布係数(Kav)を次式によって求める。
Kav= (Me −Vo)/ (ML−Vo)(ここ
で、Voはボイド容量であり、Vtは全体容量であり、
Veは各標準物の溶出容量である。)求められた分布係
数Kavは、分子量の大きい方から小さい方に、0(血
清アルブミン)、 0.255.0.377.0.44
9.0.658.0.694.0.877及び1(トリ
プトファン)である。
平均分子量は、Hjertenの等式[「ジャーナル・
オブ・クロマトグラフィー(J、 Chromat、)
J 50゜(1970)、 p 189−2081によ
って求められる。クロマトグラフィーに供するサンプル
を0.05Mリン酸塩緩衝液(p+17)に濃度40m
9/mlで溶解させ、100°Cに10分間維持してイ
ンキュベートし、酵素を除去する。遠心分離して上澄液
を回収し、6Mグアニジン4容で希釈し、カラムに負荷
する。ついで、280nmにおける吸光度を測定して、
分子量分布及び平均分子量を求める。
一方、遊離アミノ酸含量はBel linger法[「
J。
Chromat、J 87. (1973)、 p 5
13−22]によって測定されている。この方法では、
BioRadの如きラセミ形の樹脂カラム[中性及び塩
基性のアミノ酸は選択的に保持されるが、酸性のアミノ
酸はペプチドフラクションと共に溶出され、直接に又は
独立してBergmeyer法(H,U、 Bergm
eyer rメソッド・才プ・エンザイマティブク・ア
ナリシス(Method orenzymatic a
nalysis)J 1965年発行、第2版、381
97頁)によって定量されるコを使用する。ラセミ形樹
脂の調製は、樹脂を飽和硫酸第二銅溶液20容中に4℃
で12時時間開させることにより実施される。上澄液中
に銅が検出されなくなるまで水で厳重に洗浄した後、樹
脂を0.1M NH,OHで平衡化し、カラムに充填す
る。サンプル(10m9/ xQ)をH,0)1でpH
l0とし、カラムに負荷する。Q、IM !11(,0
1(で溶出する際、集められた第1のフラクションはペ
プチド及び遊離の酸性アミノ酸を含有する。ついで、溶
離剤の濃度を2Mに増大させることにより、保持されて
いた塩基性及び中性のアミノ酸が溶出される。この溶液
をアンモニウム形のBioRad様カラムを通過させる
ことによって、含まれる銅を除去する。集めたフラクシ
ョンを濃縮し、アルカリ性の水で厳重に洗浄する。つい
で、公知のニンヒドリン法によって遊離アミノ酸及びペ
プチドを定量する。
加水分解の収率(η:%)は、原料物質中及び回収され
た氷解物中の全窒素金型をケルクール法で算定すること
によって求められる。収率は次式%式% 下記の第2表は、各種基質を原料とし、本発明の触媒系
を使用して、上述の一般法に従ってpH3,7、反応時
間23時間、酵素(tk 5QU/ xQ”’Q 行−
) r: 酵素加水分解により得られたタンパク質水解
物の特性を示すものである。
第2表において、符号A、B、C,D、及びEは下記の
分子量によって特徴づけられるタンパク質水解物フラク
ノヨンを示す(他の表においても同じ)。
A    46800ないし5250 B    5250ないし2200 C2200ないし1000 D    1000ないし 750 E750以下 Fは:R離アミノ酸含量(%)であり、Gは加水分解の
収率η(%)である。
実施例3 未処理のタンパク質からのタンパク質水解物の調製 一〆′ 第  2  表 基質及び酵素 分子m  各フラクション(%)  F
の固有活性度 (S、、へ)(MW)ABCし DE  圓 Qσカ0
、イア注1 S、A、= 22 血清フル7゛ミン 500     0   0  6.8 32  90
  18SA、=22 435    0   Q、5 2.3 2.5  8
9 16注1  : BeLachem社製のEdib
le Ac1dic Ca5ein(90−110メツ
シユ) 注2  : Cargi1社製の大豆単離生成物Pro
ramQH3 第3表は、固有活性度22を有する本発明の酵素系を使
用し、アルブミンを原料として、50℃、pH3,7又
は58において6時間加水分解することによって得られ
たタンパク質水解物の特性を示すものである。
第  3  表 pHIll     各フラクション(%)    F
ABCD二 −旦一 Σ 3.7 1530  1.7 13.1 22.6 2
  60.6 6.55.8 5100  15.2 
12  12.5 6J  53.7 28実施例4 ブレー氷解物からの氷解物の調製 酸性溶媒に充分には溶解しないタンパク質(たとえば、
大豆、カゼイン、ひまわり等)を原料として加水分解を
行う場合には、酸性pHで働く本発明の酵素系の加水分
解活性を改善するため、中性又はわずかにアルカリ性の
溶媒中でブレー加水分解処理することが好ましく、これ
ら溶媒中では、原料が充分に溶解するようになり、適宜
選択された塩基性又は中性のプロテアーゼ(たとえば、
アルカラーゼ(^Icalase)又は枯草菌(B、 
5ubtilis)生産の天然プロテアーゼ)によって
容易に消化される。
このブレー加水分解工程で実際に利用される方法は4%
タンパク質溶液に300/z(!(1% :W/V)に
相当する量の塩基性又は中性のプロテアーゼを添加し、
0.5N NaOHを添加することによってプロテアー
ゼに最適な値にPHを調節しながら(塩基性プロテアー
ゼについてはpH8、中性のプロテアーゼについてはp
)17)、37℃で30−60分間インキュベートとす
るものである。ついで、0.5N )lcI2を添加し
てpllを4.0に調節し、100℃に10分間加熱す
ることによって酵素を不活性化する。一般に、得られた
ブレー氷解物は、ソルガム酵素抽出物に対して好適なp
i域においてほぼ完全に溶解する。
例として、下記第4表に、アルカラーゼ又は枯草菌から
得た中性プロテアーゼによって処理して得られた未処理
カゼイン及びカゼインブレー氷解物の特性を示す。
第  4  表 基質 II 各フラクション(%) 方セ゛イン71し 水解物(アルカ ラーセ゛処理) 23.8 22.6 19.1 9.7 カ七ゴンフ0レー 氷解物(中性 7600 24.9  +2.1 17
.0 27.0 217°口t1−「処理) 下記の第5表は、アルカラーゼによってブレー加水分解
したカゼインを原料とし、固有活性度8U#9(タンパ
ク質)/hを有するソルガム酵素抽出物を使用し、酵素
濃度30U/xi2.50℃、6又i;i23時間、p
[(3,7又は5.8で加水分解を行って得られたタン
パク質水解物の特性を示す。
第  5  表 pH 時間  Mf   各フラクション(%)FG(h) 
 −工 」二 −9−Jし一上−(%)  (5υL6
 1350 4.6 13.4 14.8 10  5
7  4  5223  860  G   ?、L 
 12.4  II   67 1(17761020
1,15,19,710,1?4  9  8423 
 500 0  0  1.5 5.4 93 18 
 92同様に、同じ条件下で、ただし中性のプロテアー
ゼによってブレー加水分解したカゼインを原料としてソ
ルガム酵素による酵素加水分解を行い、箪6表に示す特
性を有するタンパク質水解物を得た。
箪6表 pH 時間  Ml   各フラクション(%)     F
GゴΣし一ノー 」ヨ CD!辷−09−0吐6  [
3304,61214,36,562,6761237
6000,16,54,4891578610501,
514,713,95,763,9117223510
013,75,5901294実施例5 アルカラーゼでブレー加水分解したカゼインを原料とし
て得られる生成物の特性に対する酵素濃度の影響につい
て試験した。
固有活性度8U/jI9を有する酵素系を3種類の濃度
(20,30及び50U/112)で使用した。ソルガ
ム酵素による加水分解を50℃、pH3,7において2
3時間で実施した。
得られた結果を第7表に示す。
酵素濃度 MW 坦ηa−A 860G  23.8 20  1370 4.6 第  7  表 各フラクション(%)FG B  四二 」−一旦=(%)  Σ 22.6  +9.1 9.7 27 0.213□4
14.8i0  57  4  467.1 12.4
 13  67  6  741.0 5.9 5.5
 85 11  90実施例6 加水分解反応時間の影響 大豆単離生成物及びカゼイン(いずれらアルカラーゼに
よってブレー加水分解したもの)を原料とし、得られた
生成物に対する加水分解の反応時間の影響を試験した。
酵素系(固有活性度220/xlJ)濃度30U/x1
2.50℃、pH3,7において、加水分解を2.6又
は23時間実施した。
得られた結果を第8表に示す。
第  8  表 加水分解 ill    各フラクション(%)   
  FGの反応時 間(h)      Aエ 一旦−〇DEL−(%) 
 (91σ大豆単離生成物 15.1 2.2 17.9 14.4 16.7 15.1 13.8 26   0.2 B5.4 5.5 94  18.2 カゼイン 8600 23.8 22.6  +9.1 9.7 
 27  0.22   320G  14,7 18
.a  14.1 5.3 48   L、8 4g6
   1050  1.5 14.7 13.5 5.
2 65  5.4 6223   690 0  7
.0 8.8 3.7 80  Is   110一般
的に使用されている他の微生物生産のプロテアーゼと比
へて本発明の酵素系の利点を確認するため、上述の基質
の1つ(すなわち、アルカラーゼでブレー加水分解した
カゼイン)を、アスペルギルス・ニーチー(^sper
gillus niger)から得られた市販のプロテ
アーゼによって処理し、該プロテアーゼに関し文献に開
示されている最適条件下(pH3,0,50℃、3%(
w/ w)酵素/基質)、6及び23時間加水分解を行
い、第9表に示す結果を得た。
第  9  表 加水分解の   MY   フラクンヨンE反応時間(
h)(%) 6        >1500      6323 
       >1500      67実施例7 酵素固有活性度の影響 アルカラーゼでブレー加水分解したカゼイン(4%)を
原料とし、固有活性度8.22及び31を有する3種類
の調製物から得た酵素系サンプル(実施例1参照)3Q
tl/峠を使用し、50℃、pH3,7で23時間イン
キュベートして試験した。さらに、比較のため、[ジャ
ーナル・才ブ・アプライド・バイオケミストリー(J、
 Appl、 Biochem、)J 5 、 (19
83)。
420−28に開示されたようにしてバシトラシン上で
のアフィニティークロマトグラフィーによって精製した
固有活性度185を有しかつペプチダーゼ活性を持たな
いソルガムプロテアーゼを使用した。
得られた結果を第10表に示す。
第  10表 S、A 1ft     各フラクション(%)    FGA
BCユ」−」辷−(転)と(%)− 859002,12,8 2269007,0g、8 31    530  0   1.06.0+85 
  1330  0   19  133.7  80
   15   80 5、Q   +15   11   80これらのデー
タは、固有活性度は得られる氷解物の平均分子量に影響
を及ぼすことはないが、ただし、ペプチダーゼ成分を含
有しない固有活性度185の公知の精製酵素が低分子量
の氷解物を生成し得ないとの事実から示されるように、
2種類の活性成分(タンパク分解成分及びペプチダーゼ
)は分離されないことを示している。
予想したように、本発明の方法によって得られたタンパ
ク質水解物は全く苦味を有していない。
特に、下記タンパク質水解物について官能試験を行った
1、実施例6の方法に従い、加水分解を6時間行って得
られた平均分子11200の大豆氷解物2、実施例6の
方法に従い、加水分解を23時間行って得られた平均分
子量540の大豆水解物3、実施例6の方法に従い、加
水分解を6時間行って得られた平均分子ff11050
のカゼイン氷解物4、実施例6の方法に従い、加水分解
を23時間行って得られた平均分子量690のカゼイン
氷解物5、実施例2の方法に従って得られた平均分子量
730の血清アルブミン氷解物(第2表)上記氷解物l
を平均分子量1540及び1380を有する大豆氷解物
(それぞれ6及び7)でなる2種類の市販生成物と比較
した。
上記氷解物3を下記の3種類の氷解物と比較した 8 水解物3を原料とし、アルカラーゼによって酵素加
水分解して得られた分子量1140のカゼイン氷解物 9、氷解物3を原料とし、ニュートラーゼ(neutr
ase)によって酵素加水分解して得られた分子fi1
280のカゼイン氷解物 10、氷解物3を原料とし、アスペルギルス・ニガーか
ら得た中性のプロテアーゼによって酵素加水分解して得
られた分子ffi 1500のカゼイン氷解物 氷解物2.4及び5に関しては、異なる酵素系によって
得られた同等でないタンパク質水解物であるため、比較
官能試験を行うことができなかった。
官能試験は25才から50才までのテスター20人を1
グループとして実施した。
水解物1.2.6及び7では、3種類の処方で試験した
処方A :水道水の5%(v/ V)溶液処方B :天
然オレンジ香料(0,15%;v/v)を含有する10
%(w/ v)ショ糖溶液の5%(w/v)溶液 処方C;クエン酸(0,25%:W/V)及び天然オレ
ンジ香料(0,15%)を含有する10%(W/V)シ
ョ糖溶液の5%(w/v)溶液タンパク質水解物3.4
.5.8.9及び10については、処方Aとしてのみ試
験した。
得られた結果を第11表に示す。

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1 植物源又は動物源から得たタンパク物質の酸性pH
    での酵素加水分解によってタンパク質水解物を製造する
    方法において、発芽したソルガム殻粒から得た酵素抽出
    物を酵素系として使用することを特徴とする、タンパク
    質水解物の製法。 2 請求項1記載の製法において、前記酵素抽出物が、
    発芽したソルガム殻粒を均質化させ、有機溶媒で洗浄し
    、中性の水性溶媒で抽出し、塩を添加して水性溶液から
    沈殿させることによって得られたものである、タンパク
    質水解物の製法。 3 請求項1記載の製法において、pHが3.0ないし
    6.5である、タンパク質水解物の製法。 4 請求項3記載の製法において、pHが3.5ないし
    4.0である、タンパク質水解物の製法。 5 請求項1記載の製法において、酵素濃度が10ない
    し100U/mlである、タンパク質水解物の製法。 6 請求項5記載の製法において、酵素濃度が20ない
    し60U/mlである、タンパク質水解物の製法。 7 請求項1記載の製法において、前記酵素加水分解を
    反応時間4ないし48時間で行う、タンパク質水解物の
    製法。 8 請求項1記載の製法において、前記酵素加水分解を
    温度37ないし55℃で行う、タンパク質水解物の製法
    。 9 請求項1記載の製法において、ソルガム酵素抽出物
    による加水分解前に、原料タンパク物質について中性又
    はアルカリ性条件下で温和な酵素的ブレー加水分解を行
    う、タンパク質水解物の製法。 10 請求項1−9のいずれか1項記載の製法において
    、原料タンパク物質が、大豆、ひまわり、綿、ミルク及
    び卵から得られたタンパク質含量50ないし95%のタ
    ンパク生成物である、タンパク質水解物の製法。
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