JPH0242477B2 - - Google Patents

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JPH0242477B2
JPH0242477B2 JP1721481A JP1721481A JPH0242477B2 JP H0242477 B2 JPH0242477 B2 JP H0242477B2 JP 1721481 A JP1721481 A JP 1721481A JP 1721481 A JP1721481 A JP 1721481A JP H0242477 B2 JPH0242477 B2 JP H0242477B2
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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明は、光学活性なβ−(S)−アミノグルタ
ル酸モノアルキルエステルの製造法に関するもの
である。 光学活性なβ−(S)−アミノグルタル酸モノア
ルキルエステルは、チエナマイシン等の光学活性
を必要とするカルバペネムの合成原料として有用
な物質であり、この物質の容易かつ安価な製造法
の開発が待望されていた。大野等は、有機合成に
よつて容易に得られる光学不活性なβ−ベンジル
オキシカルボニルアミノグルタル酸ジメチルエス
テル()をブタ肝臓由来のエステラーゼを用
い、不斉的な加水分解によつて光学活性なβ−
(S)−ベンジルオキシカルボニルアミノグルタル
酸モノメチルエステル()を作り、更に触媒還
元によつてアミノ保護基としてのベンジルオキシ
カルボニル基を脱離させ、光学活性なβ−(S)−
アミノグルタル酸モノメチルエステル()を作
る方法を開発した。 但し、
The present invention relates to a method for producing optically active β-(S)-aminoglutaric acid monoalkyl ester. Optically active β-(S)-aminoglutarate monoalkyl ester is a substance useful as a raw material for the synthesis of carbapenems such as thienamycin that require optical activity, and the development of an easy and inexpensive manufacturing method for this substance is eagerly awaited. It had been. Ohno et al. used porcine liver-derived esterase to asymmetrically hydrolyze optically inactive β-benzyloxycarbonylaminoglutarate dimethyl ester (), which is easily obtained by organic synthesis. β-
(S)-benzyloxycarbonylaminoglutarate monomethyl ester () is prepared, and the benzyloxycarbonyl group as an amino protecting group is removed by catalytic reduction, resulting in optically active β-(S)-
We have developed a method to make aminoglutarate monomethyl ester (). however,

【式】Me=CH3である。 そして大野等は、動物酵素のみならず工業的規
模で行なう場合、有利と思われる微生物由来の酵
素の使用も示唆している。そこで、本発明者等
は、大量生産可能な微生物を用いて不斉的に加水
分解を行なう方法について研究を行なつた結果、
β−保護アミノグルタル酸ジアルキルエステルの
一方のエステル基のみを立体特異的に加水分解
し、β−(S)−保護アミノグルタル酸モノアルキ
ルエステルに交換しうる能力を有する微生物が多
く存在することを見い出し本発明を完成した。 すなわち本発明は次式 (式中、Rは炭素数1〜4のアルキル基であり、
Aは接触還元または温和な加水分解で脱離できる
アミノ保護基である。) のβ−保護アミノグルタル酸ジアルキルエステル
に、一方のエステル基(R)のみを選択的に加水
分解とする能力を有するトロピシス属、デバリオ
ミセス属、エンドミセス属、サツカロマイコプシ
ス属、クリプトコツカス属、パキゾレン属、スポ
ロボロミセス属、シリンゴスポラ属、コリネバク
テリウム属、シユウドモナス属、アースロバクタ
ー属、バチルス属、スタフイロコツカス属、スト
レプトコツカス属に属する微生物の培養液、菌体
または菌体処理物を作用せしめ、ついでアミノ保
護基(A)を常法で脱離することを特徴とする次式、 (式中、Rは前記と同じ意味をもつ) の光学活性β−(S)−アミノグルタル酸モノアル
キルエステルの製造法に関するものである。 本発明の出発化合物として用いられるβ−保護
アミノグルタル酸ジアルキルエステル〔〕にお
けるアミノ保護基(A)は接触還元で脱離できるもの
であり、ベンジル基、ベンツヒドリル基の如きア
ラルキル基、ベンジルオキシカルボニル基の如き
アラルキルオキシカルボニル基が好ましいが、温
和な加水分解で脱離できるt−ブトキシカルボニ
ル基等であることもできる。また、Rは1〜4の
炭素をもつアルキル基であればいずれでもよい
が、加水分解の容易さからするとメチル基が最も
好ましい。 本発明に使用されるβ−保護アミノグルタル酸
ジアルキルエステルの一方のエステル基のみを選
択的に加水分解し、β−(S)−保護アミノグルタ
ル酸モノアルキルエステルに変換せしめる能力を
もつ微生物として、例えばトルロプシス・キヤン
デイダ(Torulopsis candida)IFO00380、トル
ロプシス・インコンスピクア(Torulopsis
inconspicua)IFO0621、トルロプシス・ピヌス
(Torulopsis pinus)IFO0741、デバリオミセ
ス・マラマ(Debaryomyces marama)
IFO0668、デバリオミセス・ハンセニー
(Debaryomyces hansenii)IFO 0794、エンドミ
セス・テトラスパーマ
(Endomycestetrasperma)CBS 765、70、サツ
カロマイコピシス・リポリチカ(Saccharo−
mycopsis lipolmtica)IFO 0746、クリプトコツ
カス・アルビダス(Cryptococcus albidus)
IFO0378、パキゾレン・タンノフイラス
(Pachysolen tannophilus)IFO 1007、スポロボ
ロミセス・サルモニコル(Sporobolomyces
salmonicolor)IAM 12249、シリゴンスポラ、
クラウセニー(Syringospora claussenii)
IFO0759、コリネバクテリウム・セペドニクム
(Corynebacterium sepedonicum)IFO13763、
コリネバクテリウム・クセロシス
(Corynebacterium xerosis)IFO 12684、コリ
ネベクテリウム・スペニクム(Corynebacterium
spenicum)IFO3306、シユウドモナス・リボフ
ラビナ(Pseudomonas riboflavina)IFO13584、
シユウドモナス・ソラナセアルム
(Pseudomonas solanacearum)IFO3898、シユ
ウドモナス・アエルギノーサ(Pseudomonas
aeruginosa)IFO13130、アースロバクター・パ
ラフイネウス(Arthrobacter paraffineus)
ATCC21218、バチルス・メガテリウム
(Bacullus megaterium)ATCC10778、スタフ
イロコツカス・オウレウス(Staphylococcus
aureus)IFO3060、ストレプトコツカス・フアエ
カリス(Streptococcus faeca−lis)IFO12964を
挙げることができる。 IAM:東京大学応用微生物研究所 IFO:財団法人発酵研究所 CBS:Centraalbureau voor Schim−
melcultures Baarn これらの微生物の培養は通常液体培地で行なわ
れるが、固体表面培養によつても行なうことがで
きる。培地には、通常資化しうる有機及び無機の
炭素源、窒素源、およびビタミン、ミネラル等を
適宜配合したものを用い、培養温度は20〜50℃、
PHは3〜11の範囲が用いられる。また通気撹拌に
より微生物の生育を促進させることもできる。 反応基質であるβ−保護アミノグルタル酸ジア
ルキルエステルの加水分解反応においては、培養
の開始時に培地中に反応基質を添加し、培養と並
行して加水分解反応を行なう方法、あるいは前記
のようにして得た培養液、菌体、または菌体処理
物と反応基質を接触させ加水分解を行なう方法と
がある。望ましくは、菌体を遠心分離等で濃縮
後、高濃度菌体液とし、このものに反応基質を添
加する方法が反応後の生産物の回収に好ましい。 また、菌体は取り扱いの便宜から凍結乾燥菌体
としても用いることができ、更に菌体破砕物また
は菌体抽出物としても用いることができる。 反応基質であるβ−保護アミノグルタル酸ジア
ルキルエステルは、反応液中での濃度は0.01〜50
%程度の高濃度まで用いることができる。β−保
護アミノグルタル酸ジアルキルエステルの水に対
する溶解度は一般に低いが、撹拌を行なう事によ
つて菌体あるいは処理菌体との接触を充分保つよ
うにすれば本反応にとつては支障とはならない。
またアセトン等の親水性溶剤や界面活性剤等を反
応に支障とならない程度加えて行なえば更によ
い。 加水分解反応を行なう際のPHは3〜11の範囲が
用いられるが、好ましくは6〜8の範囲である。
高濃度で反応させる場合、生成物であるβ−保護
アミノグルタル酸モノアルキルエステルが次第に
反応液中に蓄積してくるとPHが低下してくるの
で、適当な中和剤で最適PHを保持するのが好まし
い。加水分解反応は、通常15〜50℃の範囲が用い
られるが、使用する菌株に適した温度が採用され
る。 加水分解反応によつて生成したβ−保護アミノ
グルタル酸モノアルキルエステルを反応液から単
離するには、一般的な方法を用いればよい。例え
ば、反応液より遠心分離によつて菌体等の不溶性
物質を除去した後、反応液のPHを1に調整し、酢
酸エチルで抽出する。次に、無水硫酸ナトリウム
で脱水後、濃縮すると油状のβ−(S)−保護アミ
ノグルタル酸モノアルキルエステルが得られる。
これをベンゼンで調製したシリカゲルでのカラム
クロマトグラフイーを行ない製精し、溶剤を除去
すると白色結晶としてβ−(S)−保護アミノグル
タル酸モノアルキルエステルが得られる。つい
で、例えばメタノールに溶解し、パラジウム炭素
触媒下水素で還元する方法等の公知の触媒還元方
法、あるいは保護基によつてはトリフルオロ酢酸
等による加水分解等で脱保護を行なうと旋光度
(−)を示すβ−(S)−アミノグルタル酸モノア
ルキルエステルが容易に得られる。 以下、実施例によつて本発明を具体的に説明す
るが、本発明はこれらの例のみに限定されるもの
ではない。 実施例 1 下記の組成からなる栄養液体培地を調製し、2
坂口フラスコに400mlずつ分注後、120℃20分殺
菌した。 (培地組成)グルコース4%、イーストエキス
0.3%、肉エキス0.3%、ペプトン0.3%、(NH4
PO40.2%、KH2PO40.1%、PH7.0これとは別に、
同じ組成の培地にて前培養をした表1に示す微生
物の種菌液10mlを前記培養培地に接種し、30℃で
24時間振とう培養を行つた。各菌株について夫々
10本づつ培養し、各菌培養液4づつ得、これか
ら遠心分離によつて菌体をM/15リン酸緩衝液
(PH7.0)1に懸濁し、30mlアセトンに溶解した
β−ベンジルオキシカルボニルアミノグルタル酸
ジメチルエステル3gを添加した。これを3容
ミニジヤーフアメンターに入れ撹拌下、30℃で6
時間反応させた。 反応後、遠心分離して得た上清液を硫酸でPH1
とし、酢酸エチル2で抽出した。その後、無水
硫酸ナトリウムで脱水し、減圧下溶剤を除去し
た。これをベンゼンで懸濁調製したシリカゲルに
負荷し、ベンゼン:アセトン(10:1)混液で溶
出した。β−ベンジルオキシカルボニルアミノグ
ルタル酸モノメチルエステル分画を集め、減圧下
溶剤を除去すると白結晶のβ−ベンジルオキシカ
ルボニルアミノグルタル酸モノメチルエステルが
得られた。MNRスペクトル、およびシリカゲル
薄層クロマトグラフイー(酢酸エチル:エタノー
ル:水=5:1:1)によるRf値は、大野等の
方法によりブタ肝臓エステラーゼを用いて調製し
た標準品と一致した。また、その旋光度を測定し
たところいずれも〔α〕D 25=+0.55〜0.71゜(C=
6、CHCl3)の範囲の値を示し、全て立体選択的
に加水分解を受けたβ−(S)−ベンジルオキシカ
ルボニルアミノグルタル酸モノメチルエステルで
あつた。 上記の如く各微生物反応によつて得たβ−(S)
−ベンジルオキシカルボニルアミノグルタル酸モ
ノメチルエステル各200mgをメタノール20mlを溶
解し、10%パラジウム炭素40mgを添加して水素気
流下30分撹拌する。反応液を過後、濃縮すると
β−(S)−アミノグルタル酸モノメチルエステル
の白色結晶として75〜97mgが得られ、このものの
NMRスペクトルは、全て標準品と一致した。ま
た、これらのβ−(S)−アミノグルタル酸モノメ
チルエステルは〔α〕D 25=−5.40〜−5.61゜(C=
3、H2O)を示した。
[Formula]Me= CH3 . Furthermore, Ohno et al. suggest the use of not only animal enzymes but also enzymes derived from microorganisms, which may be advantageous when carried out on an industrial scale. Therefore, the present inventors conducted research on a method for performing asymmetric hydrolysis using microorganisms that can be mass-produced.
It has been shown that there are many microorganisms that have the ability to stereospecifically hydrolyze only one ester group of β-protected aminoglutarate dialkyl ester and exchange it into β-(S)-protected aminoglutarate monoalkyl ester. Heading Completing the Invention. In other words, the present invention is expressed by the following formula (In the formula, R is an alkyl group having 1 to 4 carbon atoms,
A is an amino protecting group that can be removed by catalytic reduction or mild hydrolysis. ), which has the ability to selectively hydrolyze only one ester group (R) in the β-protected dialkyl aminoglutarate ester of genus Tropisis, genus Debaryomyces, genus Endomyces, genus Satucharomycopsis, and Cryptococcus. Culture solution, cells or bacteria of microorganisms belonging to the genera Pachyzolens, Sporobolomyces, Syringospora, Corynebacterium, Pseudomonas, Arthrobacter, Bacillus, Staphylococcus, Streptococcus The following formula, characterized in that the amino protecting group (A) is removed by a conventional method, (wherein R has the same meaning as above) The present invention relates to a method for producing an optically active β-(S)-aminoglutaric acid monoalkyl ester. The amino protecting group (A) in the β-protected aminoglutarate dialkyl ester used as the starting compound of the present invention can be removed by catalytic reduction, and can be a benzyl group, an aralkyl group such as a benzhydryl group, or a benzyloxycarbonyl group. Aralkyloxycarbonyl groups such as the following are preferred, but t-butoxycarbonyl groups and the like which can be eliminated by mild hydrolysis may also be used. Further, R may be any alkyl group having 1 to 4 carbon atoms, but a methyl group is most preferable in view of ease of hydrolysis. As a microorganism that has the ability to selectively hydrolyze only one ester group of the β-protected aminoglutarate dialkyl ester used in the present invention and convert it into β-(S)-protected aminoglutarate monoalkyl ester, For example, Torulopsis candida IFO00380, Torulopsis inconspica
inconspicua) IFO0621, Torulopsis pinus IFO0741, Debaryomyces marama
IFO0668, Debaryomyces hansenii IFO 0794, Endomycestetrasperma CBS 765, 70, Saccharo-
mycopsis lipolmtica) IFO 0746, Cryptococcus albidus
IFO0378, Pachysolen tannophilus IFO 1007, Sporobolomyces
salmonicolor) IAM 12249, Syrigonspora,
Syringospora claussenii
IFO0759, Corynebacterium sepedonicum IFO13763,
Corynebacterium xerosis IFO 12684, Corynebacterium spenicum
spenicum) IFO3306, Pseudomonas riboflavina (Pseudomonas riboflavina) IFO13584,
Pseudomonas solanacearum IFO3898, Pseudomonas aeruginosa
aeruginosa) IFO13130, Arthrobacter paraffineus
ATCC21218, Bacillus megaterium ATCC10778, Staphylococcus aureus
aureus) IFO3060, and Streptococcus faeca-lis (Streptococcus faeca-lis) IFO12964. IAM: Institute of Applied Microbiology, University of Tokyo IFO: Fermentation Research Institute CBS: Centraalbureau voor Schim−
melcultures Baarn These microorganisms are usually cultured in liquid media, but can also be cultured on solid surfaces. The culture medium contains organic and inorganic carbon sources, nitrogen sources, vitamins, minerals, etc. that can be normally assimilated, and the culture temperature is 20-50℃.
A pH range of 3 to 11 is used. Furthermore, the growth of microorganisms can be promoted by aeration and stirring. In the hydrolysis reaction of β-protected aminoglutarate dialkyl ester, which is a reaction substrate, the reaction substrate is added to the medium at the start of culture and the hydrolysis reaction is carried out in parallel with the culture, or as described above. There is a method in which the obtained culture solution, bacterial cells, or treated bacterial cells are brought into contact with a reaction substrate to perform hydrolysis. Desirably, a method of concentrating the bacterial cells by centrifugation or the like to obtain a highly concentrated bacterial body liquid and adding a reaction substrate to this liquid is preferable for recovering the product after the reaction. Furthermore, the cells can be used as freeze-dried cells for convenience of handling, and can also be used as crushed cells or cell extracts. The concentration of β-protected aminoglutarate dialkyl ester, which is a reaction substrate, in the reaction solution is 0.01 to 50.
It can be used up to concentrations as high as %. The solubility of β-protected aminoglutarate dialkyl ester in water is generally low, but this does not interfere with this reaction as long as sufficient contact with the bacterial cells or treated bacterial cells is maintained by stirring. .
It is even better if a hydrophilic solvent such as acetone or a surfactant is added to an extent that does not interfere with the reaction. The pH used for the hydrolysis reaction is in the range of 3 to 11, preferably in the range of 6 to 8.
When reacting at high concentrations, the product β-protected aminoglutaric acid monoalkyl ester gradually accumulates in the reaction solution and the pH decreases, so maintain the optimal pH with an appropriate neutralizing agent. is preferable. The hydrolysis reaction is usually carried out at a temperature in the range of 15 to 50°C, but a temperature suitable for the strain used is adopted. A common method may be used to isolate the β-protected aminoglutaric acid monoalkyl ester produced by the hydrolysis reaction from the reaction solution. For example, after removing insoluble substances such as bacterial cells from the reaction solution by centrifugation, the pH of the reaction solution is adjusted to 1 and extracted with ethyl acetate. Next, after dehydration with anhydrous sodium sulfate, the mixture is concentrated to obtain an oily β-(S)-protected aminoglutaric acid monoalkyl ester.
This is purified by column chromatography on silica gel prepared with benzene, and when the solvent is removed, β-(S)-protected aminoglutaric acid monoalkyl ester is obtained as white crystals. Then, deprotection is performed using a known catalytic reduction method such as dissolving in methanol and reducing with hydrogen under a palladium-carbon catalyst, or depending on the protecting group, hydrolysis with trifluoroacetic acid or the like. β-(S)-aminoglutaric acid monoalkyl ester having the following formula can be easily obtained. EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be specifically explained with reference to Examples, but the present invention is not limited only to these Examples. Example 1 A nutrient liquid medium consisting of the following composition was prepared, and 2
After dispensing 400 ml each into Sakaguchi flasks, the mixture was sterilized at 120°C for 20 minutes. (Medium composition) Glucose 4%, yeast extract
0.3%, meat extract 0.3%, peptone 0.3%, ( NH4 )
PO 4 0.2%, KH 2 PO 4 0.1%, PH7.0 Apart from this,
10 ml of the inoculum of the microorganism shown in Table 1 pre-cultured in a medium with the same composition was inoculated into the culture medium and incubated at 30°C.
A shaking culture was performed for 24 hours. For each strain
Cultivate 10 cells at a time to obtain 4 cultures of each bacteria, suspend the cells in 1 part M/15 phosphate buffer (PH7.0) by centrifugation, and add β-benzyloxycarbonyl dissolved in 30 ml acetone. 3 g of aminoglutarate dimethyl ester was added. Pour this into a 3-volume mini-jar fermenter and heat at 30℃ for 6 hours while stirring.
Allowed time to react. After the reaction, the supernatant obtained by centrifugation was adjusted to pH1 with sulfuric acid.
The mixture was extracted with 2 portions of ethyl acetate. Thereafter, it was dehydrated with anhydrous sodium sulfate, and the solvent was removed under reduced pressure. This was loaded onto silica gel prepared by suspending it in benzene, and eluted with a benzene:acetone (10:1) mixture. The β-benzyloxycarbonylaminoglutarate monomethyl ester fractions were collected and the solvent was removed under reduced pressure to obtain white crystals of β-benzyloxycarbonylaminoglutarate monomethyl ester. The MNR spectrum and the Rf value determined by silica gel thin layer chromatography (ethyl acetate: ethanol: water = 5:1:1) were consistent with the standard product prepared using pig liver esterase by the method of Ohno et al. In addition, when we measured the optical rotation angle, we found that [α] D 25 = +0.55 to 0.71° (C =
6, CHCl 3 ), all of which were stereoselectively hydrolyzed β-(S)-benzyloxycarbonylaminoglutarate monomethyl ester. β-(S) obtained by each microbial reaction as described above
-Dissolve 200 mg each of benzyloxycarbonylaminoglutarate monomethyl ester in 20 ml of methanol, add 40 mg of 10% palladium on carbon, and stir for 30 minutes under a hydrogen stream. After filtering and concentrating the reaction solution, 75 to 97 mg of white crystals of β-(S)-aminoglutaric acid monomethyl ester were obtained.
All NMR spectra were consistent with the standard product. In addition, these β-(S)-aminoglutarate monomethyl esters have [α] D 25 = −5.40 to −5.61° (C =
3, H 2 O).

【表】 −アミノグルタル酸モノメチルエステルの量を示し
た。
実施例 2 トルロピシス・ピヌスIFO0741、デバリオミセ
ス・マラマIFO0668、シヨウドモナス・リボフラ
ビナIFO13584を実施例1と同様に培養し、菌体
懸濁液を調製した。各々菌体懸濁液1にβ−t
−ブトキシカルボニルアミノグルタル酸ジメチル
エステルを3gずつ添加し、3容ミニジヤーフ
アメンター中で撹拌、30℃で6時間反応させた。
反応後、実施例1と同様な手順で抽出精製し、更
にトリフルオロ酢酸を用いて脱保護したのちイオ
ン交換クロマトグラフイーで単離精製を行ない、
表2に示すような量の各々β−(S)−アミノグル
タル酸モノメチルエステルが白色結晶として得ら
れた。これらのNMRスペクトルは全て標品と一
致し、更に旋光度は〔α〕D 25=−5.50〜−5.61゜(C
=3、H2O)を示し、生成物はβ−(S)−アミ
ノグルタル酸モノメチルエステルであることが確
認された。
[Table] -The amount of aminoglutarate monomethyl ester is shown.
Example 2 Torulopisis pinus IFO0741, Debaryomyces marama IFO0668, and S. riboflavina IFO13584 were cultured in the same manner as in Example 1 to prepare a bacterial cell suspension. β-t for each bacterial cell suspension 1
-Butoxycarbonylaminoglutarate dimethyl ester was added in 3 g portions, stirred in a 3-volume mini jar fermenter, and reacted at 30°C for 6 hours.
After the reaction, extraction and purification was performed in the same manner as in Example 1, and further deprotection was performed using trifluoroacetic acid, followed by isolation and purification using ion exchange chromatography.
Each β-(S)-aminoglutaric acid monomethyl ester was obtained as white crystals in the amounts shown in Table 2. All of these NMR spectra agree with the standard specimen, and the optical rotation is [α] D 25 = −5.50 to −5.61° (C
= 3, H 2 O), and the product was confirmed to be β-(S)-aminoglutarate monomethyl ester.

【表】 実施例 3 トルロプシス・ビヌスIFO0741、デバリオミセ
ス・マラマIFO0668、シユウドモナス・リブフラ
ビナIFO13584を実施例1と同様に培養し、菌体
懸濁液を各菌株につき2ずつ調製した。各々菌
体懸濁液を2等分し、一方にはβ−ベンジルオキ
シカルボニルグルタル酸ジエチルエステル3g、
他方にはβ−t−ブトキシカルボニルアミノグル
タル酸ジエチルエステル3gを添加し、PH7.0、
30℃、ミニジヤーフアメンター中で撹拌下24時間
反応させた。反応後、実施例1および2と同様な
手順で抽出精製して脱保護を行なつた結果、各々
反応液から油状の物質が得られた。このNMRス
ペクトルは標品のβ−アミノグルタル酸モノエチ
ルエステルと一致した。これらの施光度を測定し
た結果、〔α〕D 25=−3.80〜−3.85゜(C=4、H2O)
を示し、β−(S)−アミノグルタル酸モノエチル
エステルであることが確認された。
[Table] Example 3 Torulopsis binus IFO0741, Debaryomyces marama IFO0668, and Pseudomonas ribflavina IFO13584 were cultured in the same manner as in Example 1, and two cell suspensions were prepared for each strain. Divide each bacterial cell suspension into two equal parts, and one half contains 3 g of β-benzyloxycarbonylglutarate diethyl ester,
To the other side, 3 g of β-t-butoxycarbonylaminoglutarate diethyl ester was added, and the pH was adjusted to 7.0.
The reaction was carried out at 30° C. in a mini-jar fermenter for 24 hours with stirring. After the reaction, extraction and purification and deprotection were performed in the same manner as in Examples 1 and 2, and as a result, oily substances were obtained from each reaction solution. This NMR spectrum matched that of the standard β-aminoglutarate monoethyl ester. As a result of measuring these light exposure degrees, [α] D 25 = −3.80 to −3.85° (C = 4, H 2 O)
It was confirmed that it was β-(S)-aminoglutaric acid monoethyl ester.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 次式() (式中、Rは炭素数1〜4のアルキル基であり、
Aは接触還元で、又は温和な加水分解で脱離でき
るアミノ保護基である) のβ−保護アミノグルタル酸ジアルキルエステル
に一方のエステル基(R)のみを選択的に加水分
解する能力を有するトルロプシス属、デバリオミ
セス属、エンドミセス属、サツカロマイコプシス
属、クリプトコツカス属、パキゾレン属、スポロ
ボロミセス属、シリンゴスポラ属、コリネバクテ
リウム属、シユウドモナス属、アースロバクター
属、バチルス属、スタフイロコツカス属、ストレ
プトコツカス属に属する微生物の培養液、菌体ま
たは菌体処理物を作用せしめ、ついでアミノ保護
基(A)を常法で脱離することを特徴とする、次式
() (式中、Rは前記と同じ意味をもつ) の光学活性β−(S)−アミノグルタル酸モノアル
キルエステルの製造法。 2 式()におけるAがベンジルオキシカルボ
ニル基であり、式()におけるRがメチル基ま
たはエチル基である特許請求の範囲第1項記載の
製造法。 3 式()におけるAがt−ブトキシカルボニ
ル基であり、式()におけるRがメチル基また
はエチル基である特許請求の範囲第1項記載の製
造法。
[Claims] Linear formula () (In the formula, R is an alkyl group having 1 to 4 carbon atoms,
A is an amino-protecting group that can be removed by catalytic reduction or mild hydrolysis). Genus, Debaryomyces, Endomyces, Satucharomycopsis, Cryptococcus, Pachyzolens, Sporobolomyces, Syringospora, Corynebacterium, Pseudomonas, Arthrobacter, Bacillus, Staphylococcus The following formula (), characterized in that a culture solution, bacterial cells, or treated bacterial cells of a microorganism belonging to the genus Kass or Streptococcus is applied, and then the amino protecting group (A) is removed by a conventional method. (wherein R has the same meaning as above) A method for producing an optically active β-(S)-aminoglutaric acid monoalkyl ester. 2. The manufacturing method according to claim 1, wherein A in the formula () is a benzyloxycarbonyl group, and R in the formula () is a methyl group or an ethyl group. 3. The manufacturing method according to claim 1, wherein A in the formula () is a t-butoxycarbonyl group, and R in the formula () is a methyl group or an ethyl group.
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