JPH0262943A - 細胞内の物質測定方法 - Google Patents
細胞内の物質測定方法Info
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- JPH0262943A JPH0262943A JP21600388A JP21600388A JPH0262943A JP H0262943 A JPH0262943 A JP H0262943A JP 21600388 A JP21600388 A JP 21600388A JP 21600388 A JP21600388 A JP 21600388A JP H0262943 A JPH0262943 A JP H0262943A
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Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
A、産業上の利用分野
本発明は、体細胞や菌体内に存在する物質を測定する方
法に関するものである。
法に関するものである。
B2発明の概要
本発明は、細胞膜を破壊して細胞内の被測定物質を抽出
し、その後この物質を例えば光学的手法超音波を照射し
、細胞膜を破壊することによりて、 測定に要するる時間が短く、かつ簡単な操作で済むよう
にしたちのである。
し、その後この物質を例えば光学的手法超音波を照射し
、細胞膜を破壊することによりて、 測定に要するる時間が短く、かつ簡単な操作で済むよう
にしたちのである。
C1従来の技術
細胞内や菌体内に存在する物質を定性的あるいは定型的
に測定することにより何効な知見を得ることができる。
に測定することにより何効な知見を得ることができる。
例えば生体細胞中には、生体のリン酸代謝及びエネルギ
ー代謝の役割を果たしているアデノンン三リン酸(AT
P)が必ず存在し、死細胞中にはATPが存在しないこ
とが知られている。また1個の細胞中に存在するATP
ffiは、同一細胞では同一濃度のATPが存在する。
ー代謝の役割を果たしているアデノンン三リン酸(AT
P)が必ず存在し、死細胞中にはATPが存在しないこ
とが知られている。また1個の細胞中に存在するATP
ffiは、同一細胞では同一濃度のATPが存在する。
従ってA T Pが定量できれば、細胞の数及び生細胞
が死細胞かの判定や細胞の活性度が測定できることにな
る。
が死細胞かの判定や細胞の活性度が測定できることにな
る。
また水道原水中や大気浮遊粉塵中には、種々の発癌関連
物質が含まれており、これらのモニタリングや検出法に
A mes法またはその変法を用いた復帰突然変異試験
が広く使用されている。これらの短期間テストは方法が
簡便で、定量性も比較的高い。最近になって、化学物質
のDNA傷害を短時間に検出する有効な短期テストがい
くつか提出されている。これらの短期テストは、特定の
菌と化学物質を反応させた時に、菌体内で化学物質がD
NA傷害を誘起し、それに伴って生ずるSO8反応をβ
−D−ガラクトシダーゼ活性から求められる方法である
。従って菌体内に発生したβ−D−ガラクトシダーゼ活
性を測定することができれば、化学物質が発癌関連物質
であるか否かの判定ができることになる。
物質が含まれており、これらのモニタリングや検出法に
A mes法またはその変法を用いた復帰突然変異試験
が広く使用されている。これらの短期間テストは方法が
簡便で、定量性も比較的高い。最近になって、化学物質
のDNA傷害を短時間に検出する有効な短期テストがい
くつか提出されている。これらの短期テストは、特定の
菌と化学物質を反応させた時に、菌体内で化学物質がD
NA傷害を誘起し、それに伴って生ずるSO8反応をβ
−D−ガラクトシダーゼ活性から求められる方法である
。従って菌体内に発生したβ−D−ガラクトシダーゼ活
性を測定することができれば、化学物質が発癌関連物質
であるか否かの判定ができることになる。
このように細胞内に存在する物質または生成した物質を
測定するためには、多くの場合細胞に何らかの処理を施
し、細胞膜を破壊し、細胞外にその物質を放出させるこ
と、いわゆる抽出操作を行う必要がある。そこで細胞膜
を破壊する方法として、界面活性剤、有機酸、無機酸あ
るいは有機溶媒等の抽出剤を用いる方法を検討している
。例えば有機溶剤を用いる方法を簡単に説明すると、先
ず試料1m(2に有機溶剤であるエタノール(99゜5
%)5xQを混合し、この混合液を沸騰(78℃)させ
ながら1分間振盪して目的物質を抽出する。
測定するためには、多くの場合細胞に何らかの処理を施
し、細胞膜を破壊し、細胞外にその物質を放出させるこ
と、いわゆる抽出操作を行う必要がある。そこで細胞膜
を破壊する方法として、界面活性剤、有機酸、無機酸あ
るいは有機溶媒等の抽出剤を用いる方法を検討している
。例えば有機溶剤を用いる方法を簡単に説明すると、先
ず試料1m(2に有機溶剤であるエタノール(99゜5
%)5xQを混合し、この混合液を沸騰(78℃)させ
ながら1分間振盪して目的物質を抽出する。
次いで有機溶剤を除去するために10分間送風乾燥処理
を行い、5zCの蒸留水に溶解して抽出液を希釈し、試
料中の目的物質を測定する。
を行い、5zCの蒸留水に溶解して抽出液を希釈し、試
料中の目的物質を測定する。
D1発明が解決しようとする課題
しかしながら抽出剤を用いる方法は、試薬処理を伴うた
め次のような問題点がある。
め次のような問題点がある。
■これらの試薬が最終検出系に影響を及ぼし、検出感度
を低下させるために、その阻害を避ける方法として、処
理工程の中に中和、抽出、遠心分離、希釈などの操作が
必要であり、分析に時間がかかる。
を低下させるために、その阻害を避ける方法として、処
理工程の中に中和、抽出、遠心分離、希釈などの操作が
必要であり、分析に時間がかかる。
■使用する試薬濃度により膜破壊効率が大きく左右され
るので、試薬の調整作業が必要となり、労力と時間がか
かる。
るので、試薬の調整作業が必要となり、労力と時間がか
かる。
■分析工程に中和、抽出、遠心分離、希釈などのうちい
くつかの操作が必要であるため、その−連の操作を自動
化する場合に複雑な機構が必要となる。
くつかの操作が必要であるため、その−連の操作を自動
化する場合に複雑な機構が必要となる。
本発明の目的は、処理工程が簡単であり、分析に要する
時間が短く、しかも目的物質についての分析精度の高い
測定方法を提供することにある。
時間が短く、しかも目的物質についての分析精度の高い
測定方法を提供することにある。
E1課題を解決するための手段
超音波は従来から高分子の化学結合の切断などいろいろ
な応用面があることが知られている。ここに細胞などの
膜は主に蛋白質や脂質から構成されているので、高分子
の高次構造から成る膜の破壊にも適用できると考えた。
な応用面があることが知られている。ここに細胞などの
膜は主に蛋白質や脂質から構成されているので、高分子
の高次構造から成る膜の破壊にも適用できると考えた。
具体的には本発明は、細胞を含む溶液に超音波を照射す
ることにより細胞膜を破壊して細胞内の被測定物質を抽
出し、次いでこの被測定物質を測定することを特徴とす
る。
ることにより細胞膜を破壊して細胞内の被測定物質を抽
出し、次いでこの被測定物質を測定することを特徴とす
る。
F、実施例
(実施例1)
凍結保存された大腸菌を含む試料液を解凍し、試料液0
、6 mQを試験管にピペット等の手動式分注器を用
いて分取する。次いでこの試験管に0゜1i+!#!の
リン酸緩衝液(pH7,0)を5’ 、 7 mQ添加
した後30Wの超音波を1〜2分間照射し、これにより
大腸菌の細胞膜を破壊してATPを抽出する。続いてこ
の溶液0 、5 mQをピペットで測定装置専用のバイ
ヤルビンに分取し、発光試薬を含む反応試薬を0 、5
mQ自動的に分注して、分注直後から30秒間の発光
量を計測する。
、6 mQを試験管にピペット等の手動式分注器を用
いて分取する。次いでこの試験管に0゜1i+!#!の
リン酸緩衝液(pH7,0)を5’ 、 7 mQ添加
した後30Wの超音波を1〜2分間照射し、これにより
大腸菌の細胞膜を破壊してATPを抽出する。続いてこ
の溶液0 、5 mQをピペットで測定装置専用のバイ
ヤルビンに分取し、発光試薬を含む反応試薬を0 、5
mQ自動的に分注して、分注直後から30秒間の発光
量を計測する。
以上において上記の発光法は、生物発光法と呼ばれ、以
下に示すようにATPとルシフェリンとルシフェラーゼ
との反応により発生する光の量にもとずいてATPの量
を知る方法であり、簡便で高感度な測定法である。なお
ホタルの光はこれに相当する。
下に示すようにATPとルシフェリンとルシフェラーゼ
との反応により発生する光の量にもとずいてATPの量
を知る方法であり、簡便で高感度な測定法である。なお
ホタルの光はこれに相当する。
アデニルルシフェリン+O*
> 7デニルオNシルシフエリン+先このようにし
て種々の大腸菌濃度におけるATPffiを測定し、そ
れらの関係を表す検量線を第1図に示す。大腸菌濃度が
未知な試料液については、ATPfflを測定し、その
値と検量線とにもとすいて大腸菌濃度を知ることができ
る。
> 7デニルオNシルシフエリン+先このようにし
て種々の大腸菌濃度におけるATPffiを測定し、そ
れらの関係を表す検量線を第1図に示す。大腸菌濃度が
未知な試料液については、ATPfflを測定し、その
値と検量線とにもとすいて大腸菌濃度を知ることができ
る。
(実施例2)
サルモネラ菌をLB倍倍地各種の栄養分を備えた信地)
で−夜培養し、その培養液を波長600nmにおける吸
光度0.1になるようにLB倍倍地希釈調製する。こう
して得られた試験液3.0.vρにDNA損傷を引き起
こす化学物質(4−ニトロキノリン−N−オキシド(4
NOQ))0.051を加え、37℃で2時間培養する
。これにより大腸菌中にβ−D−ガラクトシダーゼが生
成する。
で−夜培養し、その培養液を波長600nmにおける吸
光度0.1になるようにLB倍倍地希釈調製する。こう
して得られた試験液3.0.vρにDNA損傷を引き起
こす化学物質(4−ニトロキノリン−N−オキシド(4
NOQ))0.051を加え、37℃で2時間培養する
。これにより大腸菌中にβ−D−ガラクトシダーゼが生
成する。
次いで培養した試験液0゜6mQにO、l mQ/Qの
リン酸緩衝液(pH7、0)を5.71添加した後30
Wの超音波を1〜2分間照射する。しかる後にこの反応
液0.25z12に0.1mQ/QのNa−PBS(リ
ン酸緩衝液) 2.25mf2.0 、 l肩Q/Qの
N a N30.5mQ、0.25iof2/12のラ
クトースl。
リン酸緩衝液(pH7、0)を5.71添加した後30
Wの超音波を1〜2分間照射する。しかる後にこの反応
液0.25z12に0.1mQ/QのNa−PBS(リ
ン酸緩衝液) 2.25mf2.0 、 l肩Q/Qの
N a N30.5mQ、0.25iof2/12のラ
クトースl。
OmQ及び6U/xQ(Uとは酵素活性を表す単位であ
る。)のグルコースオキシダーゼlIN、Qを加え、3
7℃で2時間酵素反応させた。なおNa−PBS2.2
5mQを加えた理由は、ラクトースとクシレコースオキ
ンダーゼと反応液との比率を一定にするためである。そ
の後この酵素反応液0 、2 m(1を化学発光測定装
置(明電舎製ルミノメータUPD−8000)専用バイ
ヤルビンに分取し、これに2 X I O−7no(1
/Qのルミノール0 、5 m(lと6×10−3no
(1/Qのフェリシアン化カリウム051を加え、1
秒後から30秒間の発光量を計測した。
る。)のグルコースオキシダーゼlIN、Qを加え、3
7℃で2時間酵素反応させた。なおNa−PBS2.2
5mQを加えた理由は、ラクトースとクシレコースオキ
ンダーゼと反応液との比率を一定にするためである。そ
の後この酵素反応液0 、2 m(1を化学発光測定装
置(明電舎製ルミノメータUPD−8000)専用バイ
ヤルビンに分取し、これに2 X I O−7no(1
/Qのルミノール0 、5 m(lと6×10−3no
(1/Qのフェリシアン化カリウム051を加え、1
秒後から30秒間の発光量を計測した。
ここで上記のプロセス中の酵素反応と化学発光反応とは
次の通りである。
次の通りである。
〈酵素反応〉
β−D−カラクトゾダーゼ
ラクトース十HzO> a−D−グルコ−人−十β−
D−力ンクトースa−D−グルコース 〈□〉 β−
D−グルコースグルコづオキシダーゼ β−D−グルコー人十〇t+HtO−> D−ゲルコ
ント11202く化学発光反応〉 7エリゾアン化カリウム N20.+ルミノール □〉 アミノフタル1N2+N
20+老第2図は既知量のβ−D−ガラクトシダーゼ活
性と発光量との関係を示す検量線であり、この検量線を
利用して4−ニトロキノリン−N−オキシトの定量を行
った結果を第3図に示す。なおβ−D−ガラクトシダー
ゼ活性濃度と4−ニトロキノリン−N−オキシド濃度は
比例関係にあり、その定数は酵素反応の種類及び反応時
間等により定まる。
D−力ンクトースa−D−グルコース 〈□〉 β−
D−グルコースグルコづオキシダーゼ β−D−グルコー人十〇t+HtO−> D−ゲルコ
ント11202く化学発光反応〉 7エリゾアン化カリウム N20.+ルミノール □〉 アミノフタル1N2+N
20+老第2図は既知量のβ−D−ガラクトシダーゼ活
性と発光量との関係を示す検量線であり、この検量線を
利用して4−ニトロキノリン−N−オキシトの定量を行
った結果を第3図に示す。なおβ−D−ガラクトシダー
ゼ活性濃度と4−ニトロキノリン−N−オキシド濃度は
比例関係にあり、その定数は酵素反応の種類及び反応時
間等により定まる。
(実施例3)
超音波を照射する工程までは実施例2と全く同槌の操作
を行い、その後は反応液2 、171(lに0ニトロフ
ェニル−β−D−ガラクトピラノシド(ONPC)0.
2mNを加え、37℃で10分間培養する。培養後反応
停止液として1λ0ρ/QのNa。
を行い、その後は反応液2 、171(lに0ニトロフ
ェニル−β−D−ガラクトピラノシド(ONPC)0.
2mNを加え、37℃で10分間培養する。培養後反応
停止液として1λ0ρ/QのNa。
CO3をlπg加え、420nmにおいて吸光度を計測
する。測定結果は第4図に示す通りであり、この図に示
す検量線と吸光度とを調べることにより4NQOの量が
求まる。
する。測定結果は第4図に示す通りであり、この図に示
す検量線と吸光度とを調べることにより4NQOの量が
求まる。
(実施例4)
サルモネラ閑をL B借地(各種の栄養分を備えた信地
)で−夜培養し、その培養液を波長600nmにおける
吸光度が0.1になるようにLB倍倍地希釈調製する。
)で−夜培養し、その培養液を波長600nmにおける
吸光度が0.1になるようにLB倍倍地希釈調製する。
こうして得られた試験液3゜0tttQにDNA損傷を
引き起こす化学物質(4−ニトロキノリン−N−オキシ
ド(4NQO))00511(!を加え、37℃で2時
間培養する。これにより菌中にβ−D−ガラクトシダー
ゼが生成する。
引き起こす化学物質(4−ニトロキノリン−N−オキシ
ド(4NQO))00511(!を加え、37℃で2時
間培養する。これにより菌中にβ−D−ガラクトシダー
ゼが生成する。
次いで培養した試験液0.61をバイヤルビンに分取し
、これに0.Imo(1/Qのリン酸緩衝液(pH7,
0)を1.9mg添加する。このようにして得られる試
料液の入ったバイヤルビンを12個用意し、そのうち6
個についてはIOWの超音波を照射すると共に残りの6
個については30Wの超音波を照射し、分tJられた6
個についての照射時間を0゜1.2,3.5.10分間
とした。次いで各バイヤルビンに0NPC0,2dを加
え、37℃で20分間培養する。その後反応停止液とし
てll/12のN a 2 CO3を1m(i加え、4
20nmにおいて吸光度を計測する。測定結果は第5図
に示す通りである。図中黒丸は超音波の出力が30Wの
場合であり、白丸はIOWの場合である。この図かられ
かるように超音波の出力が30Wであってかつその照射
時間が1〜2分間のときに吸光度が最も大きい。
、これに0.Imo(1/Qのリン酸緩衝液(pH7,
0)を1.9mg添加する。このようにして得られる試
料液の入ったバイヤルビンを12個用意し、そのうち6
個についてはIOWの超音波を照射すると共に残りの6
個については30Wの超音波を照射し、分tJられた6
個についての照射時間を0゜1.2,3.5.10分間
とした。次いで各バイヤルビンに0NPC0,2dを加
え、37℃で20分間培養する。その後反応停止液とし
てll/12のN a 2 CO3を1m(i加え、4
20nmにおいて吸光度を計測する。測定結果は第5図
に示す通りである。図中黒丸は超音波の出力が30Wの
場合であり、白丸はIOWの場合である。この図かられ
かるように超音波の出力が30Wであってかつその照射
時間が1〜2分間のときに吸光度が最も大きい。
以上において、本発明の対象となる細胞は、微生物ある
いは体細胞のいずれであってもよく、微生物としては大
腸菌やサルモネラ菌等の細菌、糸状菌、酵母、変形菌、
単細胞の藻類あるいは原生動物等が挙げられる。
いは体細胞のいずれであってもよく、微生物としては大
腸菌やサルモネラ菌等の細菌、糸状菌、酵母、変形菌、
単細胞の藻類あるいは原生動物等が挙げられる。
抽出すべき物質としては、元から細胞内に存在する物質
及び外部からの刺激により生成する物質のいずれをも含
む。前者の元から細胞内に存在する物質とは、代謝物質
、蛋白質、核酸あるいは脂質等であり、このうち代謝物
質とは、アデノシン三リン酸等のヌクレオチド、ヌクレ
オシド、アミノ酸あるいはホルモン等である。後者の物
質とは、β−D−ガラクトシダーゼ等の酵素である。
及び外部からの刺激により生成する物質のいずれをも含
む。前者の元から細胞内に存在する物質とは、代謝物質
、蛋白質、核酸あるいは脂質等であり、このうち代謝物
質とは、アデノシン三リン酸等のヌクレオチド、ヌクレ
オシド、アミノ酸あるいはホルモン等である。後者の物
質とは、β−D−ガラクトシダーゼ等の酵素である。
目的とする物質を定性あるいは定量するためには、吸光
光度法、蛍光光度法、生物発光法または化学発光法等を
利用することができる。
光度法、蛍光光度法、生物発光法または化学発光法等を
利用することができる。
I−I 、発明の効果
本発明によれば、超音波の照射により細胞膜を破壊して
細胞内の物質を抽出しているため、処理工程が簡単であ
り、従って自動化が容易であると共に複雑な処理機構を
必要としない。また試薬の調製や取り扱い等に要する時
間が短縮でき、しかも高い精度で目的とする物質を測定
することかできる。
細胞内の物質を抽出しているため、処理工程が簡単であ
り、従って自動化が容易であると共に複雑な処理機構を
必要としない。また試薬の調製や取り扱い等に要する時
間が短縮でき、しかも高い精度で目的とする物質を測定
することかできる。
第1図はATP濃度と菌体濃度との関係を示すグラフ、
第2図は発光量とβ−D−ガラクトシダーゼ活性との関
係を示すグラフ、第3図は発光量と4NQOitとの関
係を示すグラフ、第4図は吸光度と4NQOとの関係を
示すグラフ、第5図は吸光度と超音波照射時間との関係
を示すグラフである。 第1図 ATPa度と菌体濃度との関係図 菌体濃度(cells/lube) 発光量と4 N Q O備との関係図 4 N Q o m (r+g/ tube)第4図 吸光量と4NQO量との関係図 4NQO量(ng/cell)
第2図は発光量とβ−D−ガラクトシダーゼ活性との関
係を示すグラフ、第3図は発光量と4NQOitとの関
係を示すグラフ、第4図は吸光度と4NQOとの関係を
示すグラフ、第5図は吸光度と超音波照射時間との関係
を示すグラフである。 第1図 ATPa度と菌体濃度との関係図 菌体濃度(cells/lube) 発光量と4 N Q O備との関係図 4 N Q o m (r+g/ tube)第4図 吸光量と4NQO量との関係図 4NQO量(ng/cell)
Claims (1)
- (1)細胞を含む溶液に超音波を照射することにより細
胞膜を破壊して細胞内の被測定物質を抽出し、次いでこ
の被測定物質を測定することを特徴とする細胞内の物質
測定方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP21600388A JPH0262943A (ja) | 1988-08-30 | 1988-08-30 | 細胞内の物質測定方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP21600388A JPH0262943A (ja) | 1988-08-30 | 1988-08-30 | 細胞内の物質測定方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0262943A true JPH0262943A (ja) | 1990-03-02 |
Family
ID=16681784
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP21600388A Pending JPH0262943A (ja) | 1988-08-30 | 1988-08-30 | 細胞内の物質測定方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0262943A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN1089113C (zh) * | 1997-12-19 | 2002-08-14 | 大连理工大学 | 用微波破碎细胞及其胞内产物的分离 |
| JP2007182803A (ja) * | 2006-01-06 | 2007-07-19 | Hino Motors Ltd | 排気浄化装置 |
-
1988
- 1988-08-30 JP JP21600388A patent/JPH0262943A/ja active Pending
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN1089113C (zh) * | 1997-12-19 | 2002-08-14 | 大连理工大学 | 用微波破碎细胞及其胞内产物的分离 |
| JP2007182803A (ja) * | 2006-01-06 | 2007-07-19 | Hino Motors Ltd | 排気浄化装置 |
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