JPH0295261A - 解糖阻止剤 - Google Patents
解糖阻止剤Info
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- JPH0295261A JPH0295261A JP24759288A JP24759288A JPH0295261A JP H0295261 A JPH0295261 A JP H0295261A JP 24759288 A JP24759288 A JP 24759288A JP 24759288 A JP24759288 A JP 24759288A JP H0295261 A JPH0295261 A JP H0295261A
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- glucose
- glycolysis
- blood
- blood sugar
- sugar
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、血中の解糖による血糖の低下を速効的に阻止
し、かつその初期値を長時間維持し得、さらにグリコヘ
モグロビンAI、特にグリコヘモグロビンA+Cの測定
が可能な解糖阻止剤に関する。
し、かつその初期値を長時間維持し得、さらにグリコヘ
モグロビンAI、特にグリコヘモグロビンA+Cの測定
が可能な解糖阻止剤に関する。
(従来の技術)
血中のグルツース(血糖)の測定および赤血球中に存在
するグリコヘモグロビンAI、特にグリコヘモグロビン
A1c (健常人においては、総ヘモグロビン中に4.
5〜5.5%の割合で存在する)の測定は、糖尿病検査
において重要な測定項目である。
するグリコヘモグロビンAI、特にグリコヘモグロビン
A1c (健常人においては、総ヘモグロビン中に4.
5〜5.5%の割合で存在する)の測定は、糖尿病検査
において重要な測定項目である。
一般に、血液成分の検査を行う場合には、採血から測定
まである程度の時間を要する。特に、大病院や検査セン
ターなどでは、多数の検体を扱うため、検査業務の流れ
からいっても採血後少くとも室温下で数時間保存される
ことけ避けられないし、場合によっては集配されてきた
検体にいたっては、更に長時間保存されることがある。
まである程度の時間を要する。特に、大病院や検査セン
ターなどでは、多数の検体を扱うため、検査業務の流れ
からいっても採血後少くとも室温下で数時間保存される
ことけ避けられないし、場合によっては集配されてきた
検体にいたっては、更に長時間保存されることがある。
血糖検査の場合、採血後保存期間中に解糖により血糖値
が低下し易いので、その抑制を目的として解糖阻止剤が
加えられる。従来、解糖阻止剤としてフッ化塩、モノハ
ロゲン化酢酸金属塩、クエン酸およびD−マンノースな
どが知られている。しかし、これらの公知の解糖阻止剤
には以下のような問題点かあっ六。
が低下し易いので、その抑制を目的として解糖阻止剤が
加えられる。従来、解糖阻止剤としてフッ化塩、モノハ
ロゲン化酢酸金属塩、クエン酸およびD−マンノースな
どが知られている。しかし、これらの公知の解糖阻止剤
には以下のような問題点かあっ六。
フッ化塩とモノハロゲン化酢酸金属塩は、それぞれエノ
ラーゼ、グリセルアルデヒ)”−s−リン酸脱水素酵素
の作用を阻害することにより解糖阻止効果を有するが、
これらの酵素は解糖系の下位の酵素であるため、阻止効
果発現までに時間が力無かり、その間に血糖が少し低下
するので速効性に乏しいという問題点があった。しかし
、阻止効果が1度発現すると、それ以後は持続的に血糖
は維持される。
ラーゼ、グリセルアルデヒ)”−s−リン酸脱水素酵素
の作用を阻害することにより解糖阻止効果を有するが、
これらの酵素は解糖系の下位の酵素であるため、阻止効
果発現までに時間が力無かり、その間に血糖が少し低下
するので速効性に乏しいという問題点があった。しかし
、阻止効果が1度発現すると、それ以後は持続的に血糖
は維持される。
クエン酸は、ホスホフルクトキナーゼという解糖系の上
位の酵素を阻害するので、速効的な解糖阻止効果を示す
。しかし、クエン酸は、強酸性(pH1〜2)なので、
血液と混合されると血液のpHが酸性(pH4〜5)と
なり、赤血球が変性し溶血が激しくおこる。溶血すると
、検体を取扱う検査技師に不安感を与えるばかりでなく
、比色法を用いた血糖測定法では誤差を与えるという問
題点があった。また、グリコヘモグロビンA1cの測定
においては、このような低いpHにおいてヘモグロビン
が変性をおこし誤差を与えるとhう問題点があった。
位の酵素を阻害するので、速効的な解糖阻止効果を示す
。しかし、クエン酸は、強酸性(pH1〜2)なので、
血液と混合されると血液のpHが酸性(pH4〜5)と
なり、赤血球が変性し溶血が激しくおこる。溶血すると
、検体を取扱う検査技師に不安感を与えるばかりでなく
、比色法を用いた血糖測定法では誤差を与えるという問
題点があった。また、グリコヘモグロビンA1cの測定
においては、このような低いpHにおいてヘモグロビン
が変性をおこし誤差を与えるとhう問題点があった。
D−マンノースは、グルコースと同様にヘキソキナーゼ
の基質となるので、ヘキソキナーゼのグルコースの解糖
作用において、グルコースに競合する。このことにより
、解糖を阻止するため、速効性があるが%D−マンノー
スの全てが消費されてしまうと、それ以後は再び解糖に
よる血糖の低下がおこるので、長時間解糖阻止効果を維
持し得ないという問題点があった。この間M点の解決の
ため、D−マンノースに7フ化塩やモノハロダン化酢酸
金属塩を併用して持続性を得ることが、提案されている
(特開昭63−106563号公報)。しかし、この場
合においても、D−マンノース使用系には、次のような
問題点が戊っている。血糖測定法のうちで、最近多く使
用されているグルコース説水素酵素を用いる方法では、
基質特異性の低い酵素が使われている場合、グルコース
だけでなく、異性体のD−マンノースも分解される。そ
のため、正の誤差の原因となる。例えば、グルコースデ
ヒドロゲナーゼの基質特異性が低い場合、グルコース測
定値が500〜10001ng/d/という値となり、
正常値の5〜10倍の正の誤差となる。さらに、D−マ
ンノースは、ヘモグロビン、Ascの測定用検体に使用
されると、D−マンノ−ストへ−1−クロビンが結合し
走ヘキノヘ−11−り。
の基質となるので、ヘキソキナーゼのグルコースの解糖
作用において、グルコースに競合する。このことにより
、解糖を阻止するため、速効性があるが%D−マンノー
スの全てが消費されてしまうと、それ以後は再び解糖に
よる血糖の低下がおこるので、長時間解糖阻止効果を維
持し得ないという問題点があった。この間M点の解決の
ため、D−マンノースに7フ化塩やモノハロダン化酢酸
金属塩を併用して持続性を得ることが、提案されている
(特開昭63−106563号公報)。しかし、この場
合においても、D−マンノース使用系には、次のような
問題点が戊っている。血糖測定法のうちで、最近多く使
用されているグルコース説水素酵素を用いる方法では、
基質特異性の低い酵素が使われている場合、グルコース
だけでなく、異性体のD−マンノースも分解される。そ
のため、正の誤差の原因となる。例えば、グルコースデ
ヒドロゲナーゼの基質特異性が低い場合、グルコース測
定値が500〜10001ng/d/という値となり、
正常値の5〜10倍の正の誤差となる。さらに、D−マ
ンノースは、ヘモグロビン、Ascの測定用検体に使用
されると、D−マンノ−ストへ−1−クロビンが結合し
走ヘキノヘ−11−り。
ビンA1cが生成し、それがグリコヘモグロビンAIC
測定値に加算され、正の誤差を与えるという問題点もあ
った。
測定値に加算され、正の誤差を与えるという問題点もあ
った。
(発明が解決しようとする課題)
本発F!Aは、上記従来の問題点を解決するものであり
、その目的とするところは、血中の解糖による血糖の低
下を速効的に阻止し、かつその初期値を長時間維持し得
、さらにグリコヘモグロビンA1特にグリコヘモグロビ
ンAIcの測定が可能な解糖阻止剤を提供することにあ
る。
、その目的とするところは、血中の解糖による血糖の低
下を速効的に阻止し、かつその初期値を長時間維持し得
、さらにグリコヘモグロビンA1特にグリコヘモグロビ
ンAIcの測定が可能な解糖阻止剤を提供することにあ
る。
(課題を解決するための手段)
本発明の解糖阻止剤は、2−デオキシ−〇 −グルコー
スまたけその誘導体と、フッ化塩またはモノハロゲン化
酢酸金属塩とを含有することを特徴とし、そのことによ
り上記目的が達成される。
スまたけその誘導体と、フッ化塩またはモノハロゲン化
酢酸金属塩とを含有することを特徴とし、そのことによ
り上記目的が達成される。
本発明の2−デオキシ−D−グルコ−x JI 4体と
は、2−アミノ−2−デオキシ−D−グルコース(以下
、D−グルコサミン)、またけ2−アセトアミド−2−
ダオキシーD−グルコースなどを云う。
は、2−アミノ−2−デオキシ−D−グルコース(以下
、D−グルコサミン)、またけ2−アセトアミド−2−
ダオキシーD−グルコースなどを云う。
フッ化塩としては、フッ化水素のアルカリ金属塩または
アンモニクム塩などが好ましく、例えばフッ化ナトリク
ム、フッ化カリタム、フッ化すチクム、フッ化アンモニ
クム々どが用いられる。
アンモニクム塩などが好ましく、例えばフッ化ナトリク
ム、フッ化カリタム、フッ化すチクム、フッ化アンモニ
クム々どが用いられる。
モノハロゲン化酢酸金属塩としては、ハロゲンとしては
、塩素、臭素又はヨウ素が、金属としてはアルカリ金属
が好ましく、例えばモノクロル酢酸ナトリクム、モツプ
ロム酢酸ナトリクム、モツプロム酢酸カリタム、モノヨ
ード酢酸ナトリクム、モノヨード酢酸カリタムなどが用
かられる。
、塩素、臭素又はヨウ素が、金属としてはアルカリ金属
が好ましく、例えばモノクロル酢酸ナトリクム、モツプ
ロム酢酸ナトリクム、モツプロム酢酸カリタム、モノヨ
ード酢酸ナトリクム、モノヨード酢酸カリタムなどが用
かられる。
これらの薬剤の使用量は、全血1 mlあたり、2−デ
オキシ−D−グルコースまたはその誘導体が、2.5〜
151119、好ましくは5〜10 mgである。2.
5■より少ないときけ、速効的な解糖阻止効果が不完全
であり、15W1gより多すぎると血液の浸透圧に異常
をきたし溶血をおこすことがある。フッ化塩またはモノ
ハロゲン化酢酸金属塩の使用景は、血液1 dあたり各
成分単独又は両成分の和が1〜2mダである。11ng
より少ないときは、血糖の低下を長時間維持できず、2
■より多いときは、溶血などの副作用がおこり島くなる
。
オキシ−D−グルコースまたはその誘導体が、2.5〜
151119、好ましくは5〜10 mgである。2.
5■より少ないときけ、速効的な解糖阻止効果が不完全
であり、15W1gより多すぎると血液の浸透圧に異常
をきたし溶血をおこすことがある。フッ化塩またはモノ
ハロゲン化酢酸金属塩の使用景は、血液1 dあたり各
成分単独又は両成分の和が1〜2mダである。11ng
より少ないときは、血糖の低下を長時間維持できず、2
■より多いときは、溶血などの副作用がおこり島くなる
。
また、本発明の解糖阻止剤に、更にヘパリン塩、エチレ
ンジアミンテトラアセティツクアシッド(以下、EDT
A)の塩のような血液抗凝固剤、またけシリカ、トロン
ビンのような血液凝固促進剤を加えることは任意である
。
ンジアミンテトラアセティツクアシッド(以下、EDT
A)の塩のような血液抗凝固剤、またけシリカ、トロン
ビンのような血液凝固促進剤を加えることは任意である
。
この解糖阻止剤は、粉末、顆粒、錠剤または水溶液など
の形態で試料血液に直接加えてもよく、また、解糖阻止
剤の粉末、顆粒、錠剤または水溶液をガラスや合成樹脂
製の採血管に予め加えておき、これに試料血液を加えて
もよい。
の形態で試料血液に直接加えてもよく、また、解糖阻止
剤の粉末、顆粒、錠剤または水溶液をガラスや合成樹脂
製の採血管に予め加えておき、これに試料血液を加えて
もよい。
あるいは、解糖阻止剤の粉末または顆粒を適当な溶媒に
分散させたものを、ガラスや合成樹脂製のベレットやビ
ーズにコーティングし、このベレットやビーズを採血管
に加えておき、これに試料血液を加えてもよい。また上
記の溶媒に分散したものを採血管壁にコーティングして
おき、これに試料血液を加えてもよい。
分散させたものを、ガラスや合成樹脂製のベレットやビ
ーズにコーティングし、このベレットやビーズを採血管
に加えておき、これに試料血液を加えてもよい。また上
記の溶媒に分散したものを採血管壁にコーティングして
おき、これに試料血液を加えてもよい。
これらの場合に使用される採血管としては、常圧または
真空採血管のいずれでもよく、その内部に血IjItま
たは血清分離剤を収容しておくことは任意である。
真空採血管のいずれでもよく、その内部に血IjItま
たは血清分離剤を収容しておくことは任意である。
(作 用)
解糖阻止剤に含有される2−デオキシ−D−グルコース
またはその誘導体は解糖系のへキソキナーセにヨルクル
コース→グルコースー6−リン酸の反応において、D−
グルコースと競合する。そのため、グルコース−6−リ
ン酸の生成が阻害され、赤血球膜中へ入るグルコース−
6−リン酸の量が極端に減少する。つまり赤血球膜の糖
輸送機構が阻害される。このように、解糖系が初期の段
階で阻害されるため解糖阻止の速効性を有する。
またはその誘導体は解糖系のへキソキナーセにヨルクル
コース→グルコースー6−リン酸の反応において、D−
グルコースと競合する。そのため、グルコース−6−リ
ン酸の生成が阻害され、赤血球膜中へ入るグルコース−
6−リン酸の量が極端に減少する。つまり赤血球膜の糖
輸送機構が阻害される。このように、解糖系が初期の段
階で阻害されるため解糖阻止の速効性を有する。
解糖阻止剤中の2−デオキシ−D−グルコースまたけそ
の誘導体がヘキソキナーゼの基質として消費されると、
再び血糖が低下するおそれが生ずる。しかし、フッ化塩
またはモノハロゲン化酢酸金属塩が存在していることに
より、それぞれエノラーゼ、グリセルアルデヒド−3−
リン酸脱水素酵素という解糖系の下位の酵素の作用を阻
害するので、解糖阻止効果を持続させることができる。
の誘導体がヘキソキナーゼの基質として消費されると、
再び血糖が低下するおそれが生ずる。しかし、フッ化塩
またはモノハロゲン化酢酸金属塩が存在していることに
より、それぞれエノラーゼ、グリセルアルデヒド−3−
リン酸脱水素酵素という解糖系の下位の酵素の作用を阻
害するので、解糖阻止効果を持続させることができる。
異性の低いグルコース脱水素酵素の基質にならないので
、グルコース測定値に正の誤差を与えることがない。
、グルコース測定値に正の誤差を与えることがない。
また、2−デオキシ−〇−グルコースまたはその誘導体
は、デオキシヘキソースであるので、ヘモグロビンと反
応してヘキソヘモグロビンArcを生成しないので、グ
リコヘモグロビン、Ateの測定値に正の誤差を与える
ことがない。
は、デオキシヘキソースであるので、ヘモグロビンと反
応してヘキソヘモグロビンArcを生成しないので、グ
リコヘモグロビン、Ateの測定値に正の誤差を与える
ことがない。
(*施例)
以下に本発明の実施例につき説明する。
実施例1
p −9” tレフサミン10.OWIg、フッ化ナト
リタム3.0〜および血液凝固剤としてEDTA2カリ
クム塩4.0■を、市販の2 ml用ガラス採血管に収
容したものを複数本用意した。これらに、健常人の新鮮
面2 mlを採取し、転倒混和した。
リタム3.0〜および血液凝固剤としてEDTA2カリ
クム塩4.0■を、市販の2 ml用ガラス採血管に収
容したものを複数本用意した。これらに、健常人の新鮮
面2 mlを採取し、転倒混和した。
この混和したものをs 3000 rpmで5分間遠心
分離し、血漿分画を取り血糖を測定した。
分離し、血漿分画を取り血糖を測定した。
また前記の混和したものの全血を使用して、グリコヘモ
グロビンA+およびAlcを測定した。
グロビンA+およびAlcを測定した。
更に、前記の混和したものを、混和後36および24時
間室温下に放置したものつき、同様にして血糖を測定し
た。また、前記の混和したものを、混和後24および4
8時間室温下に放置したものの全血を使用してグリコヘ
モクロビンA+およびAlcを測定した。
間室温下に放置したものつき、同様にして血糖を測定し
た。また、前記の混和したものを、混和後24および4
8時間室温下に放置したものの全血を使用してグリコヘ
モクロビンA+およびAlcを測定した。
血糖は、協和メデックス社製のグルコース定量試薬「デ
タミナ−GL−RJを用いて、グルコースデヒドロゲナ
ーゼ法によって測定した。原理は以下の通りである。
タミナ−GL−RJを用いて、グルコースデヒドロゲナ
ーゼ法によって測定した。原理は以下の通りである。
β−D−グルコース
D−グルコノ−δ−ラクトン上記の酵素反応で生じ
るNADPl、を、反応速11 (L/ −トアッセイ
)法により340 nmで測定した。
D−グルコノ−δ−ラクトン上記の酵素反応で生じ
るNADPl、を、反応速11 (L/ −トアッセイ
)法により340 nmで測定した。
グリコヘモグロビンんおよびんCの測定は、■京都第−
科学製のHi−Auto A、c HA−8120を用
い適切条件を選択して測定した。このHA−8120は
高速液゛体りロマトグラフィーによるグリコヘモグロビ
ン測定専用装置であり陽イオン交換1こより各ヘモグロ
ビン成分を4分間で分離して溶出する。溶出用緩衝液は
専用の溶離液(リン酸緩衝液)が用いられる。
科学製のHi−Auto A、c HA−8120を用
い適切条件を選択して測定した。このHA−8120は
高速液゛体りロマトグラフィーによるグリコヘモグロビ
ン測定専用装置であり陽イオン交換1こより各ヘモグロ
ビン成分を4分間で分離して溶出する。溶出用緩衝液は
専用の溶離液(リン酸緩衝液)が用いられる。
この装置を用いたヘモグロビンの溶出ノ曵り−ンは一般
番と第1図に示される。第1図においてs PIおよび
hはグリコヘモグロビンA、aおよびA、b成分に起因
するピークでありs PIおよびP。
番と第1図に示される。第1図においてs PIおよび
hはグリコヘモグロビンA、aおよびA、b成分に起因
するピークでありs PIおよびP。
はグリコヘモグロビンんC成分に起因するピークである
。P6は他のヘモグロビンに起因するピークである。こ
こで、グリコヘモグロビンA、およびA、cは次式で算
出される。
。P6は他のヘモグロビンに起因するピークである。こ
こで、グリコヘモグロビンA、およびA、cは次式で算
出される。
なお、この液体クロマトグラフィー測定に供される試料
としては、前記の全血の3μtを、α005Mリン酸緩
衝液100W11とTr i t onx。
としては、前記の全血の3μtを、α005Mリン酸緩
衝液100W11とTr i t onx。
−100(和光紬薬製) 0.1 mlからなる溶血試
薬(pH6,3)の450μtと混合し、室温で110
分間放置して溶血させたものを使用した。
薬(pH6,3)の450μtと混合し、室温で110
分間放置して溶血させたものを使用した。
実施例2
D−グルコサミン15.01119.フッ化ナトリクム
L51n9、モノヨード酢酸ナトリタムLsIn?およ
びEDTA2カリクム塩4.0■を収容した採血管を使
用した以外は、実施例1と同様にして血糖を測定した。
L51n9、モノヨード酢酸ナトリタムLsIn?およ
びEDTA2カリクム塩4.0■を収容した採血管を使
用した以外は、実施例1と同様にして血糖を測定した。
実施例3
Dグルコサミン/20.0雫、モノヨード酸eす) ’
Jクタム、 Om9、およびEDTA2カリクム塩4.
0号を収容した採血管を使用した以外は、実施例1と同
時にして血糖を測定した。
Jクタム、 Om9、およびEDTA2カリクム塩4.
0号を収容した採血管を使用した以外は、実施例1と同
時にして血糖を測定した。
比較例I
D−グルコサミン4.0〜、フッ化ナトリクA 15
ml、モノヨード酢酸ナトリタム15〜およびEDTA
Zカリクム塩4タム■を収容した採血管を使用した以外
は、実施例1と同時1こして血糖を測定した。
ml、モノヨード酢酸ナトリタム15〜およびEDTA
Zカリクム塩4タム■を収容した採血管を使用した以外
は、実施例1と同時1こして血糖を測定した。
比較例2
D−グルコサミン4.01n9.フッ化ナトリクALG
”&、モノヨード酢酸ナトリクタムoダおよびEDTA
−2カリクム塩toqを収容した採血管を使用した以外
は、実施例1と同様にして血糖を測定した。
”&、モノヨード酢酸ナトリクタムoダおよびEDTA
−2カリクム塩toqを収容した採血管を使用した以外
は、実施例1と同様にして血糖を測定した。
比較例3
フッ化ナトリタム&0■およびEDTA2カリクム塩4
.0■を収容した採血管を使用した以外は、実施例1と
同様にして血糖とグリコヘモグロビンA、とグリコヘモ
グロビンA、Cを測定した。
.0■を収容した採血管を使用した以外は、実施例1と
同様にして血糖とグリコヘモグロビンA、とグリコヘモ
グロビンA、Cを測定した。
比較例4
D−マンノース1&orn9,フッ化ナトリクA3.0
1”fi’詔よびEDTA2カリクム塩4. Q rn
9を収容した採血管を使用した以外は、実施例1と同様
にして血糖とグリコヘモグロビンA1とグリコヘモグロ
ビンAtcを測定した。
1”fi’詔よびEDTA2カリクム塩4. Q rn
9を収容した採血管を使用した以外は、実施例1と同様
にして血糖とグリコヘモグロビンA1とグリコヘモグロ
ビンAtcを測定した。
比較例5
クエン酸15、OqおよびEDTA2カリクム塩4.0
1n9を収容した採血管を使用した以外は、実施例1と
同様にして、血糖とグリコへそグロビンAtとグリコへ
モグロビンんCを測定した。
1n9を収容した採血管を使用した以外は、実施例1と
同様にして、血糖とグリコへそグロビンAtとグリコへ
モグロビンんCを測定した。
比較例6
D−グルコサミン15.0〜およびEDTAzカリクム
塩4タム■を収容した採血管を使用した以外は、実施例
1と同様にして血糖を測定した。
塩4タム■を収容した採血管を使用した以外は、実施例
1と同様にして血糖を測定した。
斜上の各実施例および比較例における血糖測定値並び憂
ζグリコへモグロビンA1およびグリコヘモグロビンA
、cの測定値を第1表および第2表に示す。
ζグリコへモグロビンA1およびグリコヘモグロビンA
、cの測定値を第1表および第2表に示す。
(以下余白)
第1表より、実施例1〜3は室温下24時間放置しても
初期血糖値が維持されることが分かる。比較例1は、D
−グルコサミン員が少ないので、血糖値が放置時間と共
に、減少している。比較例2は、血糖値においては問題
ないが、D−グルコサミン量が多いので、溶血がおこっ
た。比較例3は、D−グルコサミンが含まれないので、
速効的な解糖阻止効果がみられない。比較例4は、基質
特異性の低いグルコースデヒドロゲナーゼが異性体であ
るD−マンノースをも脱水素する為、異常高値となった
。比較例5は血糖値については、問題はないが、クエン
酸の影響でだ血が激しかった。比較例6はD−グルコサ
ミンのみであるので、初期血糖値を長時間維持できない
ことがわかる。
初期血糖値が維持されることが分かる。比較例1は、D
−グルコサミン員が少ないので、血糖値が放置時間と共
に、減少している。比較例2は、血糖値においては問題
ないが、D−グルコサミン量が多いので、溶血がおこっ
た。比較例3は、D−グルコサミンが含まれないので、
速効的な解糖阻止効果がみられない。比較例4は、基質
特異性の低いグルコースデヒドロゲナーゼが異性体であ
るD−マンノースをも脱水素する為、異常高値となった
。比較例5は血糖値については、問題はないが、クエン
酸の影響でだ血が激しかった。比較例6はD−グルコサ
ミンのみであるので、初期血糖値を長時間維持できない
ことがわかる。
第2表より、実施例1および比較例3は、室温下48時
間放置でも、グリコヘモグロビンんおよびA、cの初期
値が維持されているのが分かる。比較例4は、D−マン
ノースにょうてヘキソヘモグロビンA、およびA、Cが
生成し、そのため測定値が高くなったことを示してl、
Nる。比較例5ばクエン酸の影響でPI(が低くなった
ため、ヘモグロビンが変性し、高値となった。
間放置でも、グリコヘモグロビンんおよびA、cの初期
値が維持されているのが分かる。比較例4は、D−マン
ノースにょうてヘキソヘモグロビンA、およびA、Cが
生成し、そのため測定値が高くなったことを示してl、
Nる。比較例5ばクエン酸の影響でPI(が低くなった
ため、ヘモグロビンが変性し、高値となった。
(発明の効果)
本発明は、2−デオキシ−D−グルコースまたはその誘
導体と7フ化塩またはモノノ・ロゲン化酢酸金属塩とを
含有した解糖阻止剤なので、解糖による血糖の低下を速
効的に阻止し、かつその初期値を長時間維持することが
できる。そのため、採血徒長時間室温下で保存されるお
それのある集配検体についても、正確な血糖値がの低い
グルコース脱水素酵素の基質にならな1+1ので、グル
コース脱水素酵素を使用する血糖測定法にも利用するこ
とができる。
導体と7フ化塩またはモノノ・ロゲン化酢酸金属塩とを
含有した解糖阻止剤なので、解糖による血糖の低下を速
効的に阻止し、かつその初期値を長時間維持することが
できる。そのため、採血徒長時間室温下で保存されるお
それのある集配検体についても、正確な血糖値がの低い
グルコース脱水素酵素の基質にならな1+1ので、グル
コース脱水素酵素を使用する血糖測定法にも利用するこ
とができる。
また、ヘモグロビンと反応してヘキソヘモグロビンA1
およびAsCを生成しないので、グリコへモグロビンん
およびA、cの測定値に誤差を与えることもなく、正確
に測定できる。
およびAsCを生成しないので、グリコへモグロビンん
およびA、cの測定値に誤差を与えることもなく、正確
に測定できる。
第1図は、血中のグリコヘモグロビンを液体クロマトグ
ラフィーで測定して得られる溶出ノ曵ターンである。 以 上
ラフィーで測定して得られる溶出ノ曵ターンである。 以 上
Claims (1)
- (1)2−デオキシ−D−グルコースまたはその誘導体
と、フッ化塩またはモノハロゲン化酢酸金属塩とを含有
することを特徴とする解糖阻止剤。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP24759288A JPH0743386B2 (ja) | 1988-09-30 | 1988-09-30 | 解糖阻止剤 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP24759288A JPH0743386B2 (ja) | 1988-09-30 | 1988-09-30 | 解糖阻止剤 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0295261A true JPH0295261A (ja) | 1990-04-06 |
| JPH0743386B2 JPH0743386B2 (ja) | 1995-05-15 |
Family
ID=17165800
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP24759288A Expired - Fee Related JPH0743386B2 (ja) | 1988-09-30 | 1988-09-30 | 解糖阻止剤 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0743386B2 (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2013529926A (ja) * | 2010-06-30 | 2013-07-25 | セントロ デ エストゥディオス シエンティフィコス デ ヴァルディヴィア | グルコースナノセンサーを用いて、高い空間時間分解能でもって細胞または組織の代謝速度またはグルコース消費速度を測定する方法 |
| WO2018230571A1 (ja) * | 2017-06-16 | 2018-12-20 | 国立大学法人東京大学 | 採血管 |
-
1988
- 1988-09-30 JP JP24759288A patent/JPH0743386B2/ja not_active Expired - Fee Related
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2013529926A (ja) * | 2010-06-30 | 2013-07-25 | セントロ デ エストゥディオス シエンティフィコス デ ヴァルディヴィア | グルコースナノセンサーを用いて、高い空間時間分解能でもって細胞または組織の代謝速度またはグルコース消費速度を測定する方法 |
| WO2018230571A1 (ja) * | 2017-06-16 | 2018-12-20 | 国立大学法人東京大学 | 採血管 |
| JP2019002821A (ja) * | 2017-06-16 | 2019-01-10 | 国立大学法人 東京大学 | 採血管 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0743386B2 (ja) | 1995-05-15 |
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Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |