JPH03108491A - ガラクトシル化糖タンパク質単位の酵素的合成方法 - Google Patents
ガラクトシル化糖タンパク質単位の酵素的合成方法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
糖タンパク質は、腫瘍発生、細菌およびウィルス感染、
細胞/細胞認識、細胞増殖および細胞分化など生物学的
認識過程において中心的役割を果している。それらは血
液型分類の基礎をなし、また様々な高分子物質および医
薬の内部化(internalization)を担っ
ている。すナワチ、糖タンパク質の重要な使用分野の一
つは、例えば、標的臓器への医薬の選択的配向およびタ
ンパク質加水分解からの医薬の保護である[N。
細胞/細胞認識、細胞増殖および細胞分化など生物学的
認識過程において中心的役割を果している。それらは血
液型分類の基礎をなし、また様々な高分子物質および医
薬の内部化(internalization)を担っ
ている。すナワチ、糖タンパク質の重要な使用分野の一
つは、例えば、標的臓器への医薬の選択的配向およびタ
ンパク質加水分解からの医薬の保護である[N。
5haron、 H,Lis、 Chem、 Eng、
News 59(13)(1981) 21 ;H,
5chachter、 C11nical Bioch
emisLry 17. (1984) 3]。
News 59(13)(1981) 21 ;H,
5chachter、 C11nical Bioch
emisLry 17. (1984) 3]。
糖タンパク質は、ペプチド部分と炭水化物部分の間の結
合の種類に応じてO−グリコシドおよびN−グリコシド
糖タンパク質に分類される。
合の種類に応じてO−グリコシドおよびN−グリコシド
糖タンパク質に分類される。
N−グリコシド糖タンパク質はほぼ専らに、中心結合単
位としてのアスパラギンに結合したN−アセチルグルコ
サミンを含有する。糖タンパク質の前記諸機能に関して
は、グリコジル化アスパルチル−N−アセチルグルコサ
ミンの合成が特に注目に値する。
位としてのアスパラギンに結合したN−アセチルグルコ
サミンを含有する。糖タンパク質の前記諸機能に関して
は、グリコジル化アスパルチル−N−アセチルグルコサ
ミンの合成が特に注目に値する。
これら物質の試験管内生合成経路に従う酵素を用いての
かかる糖タンパク質の合成は、立体選択性および領域選
択性(regioselect 1vity)が高く、
また保護基を伴う煩瑣な化学を回避できる長所を有して
おり、そのため多工程化学合成に比べ大抵の場合に好収
率が保証される。
かかる糖タンパク質の合成は、立体選択性および領域選
択性(regioselect 1vity)が高く、
また保護基を伴う煩瑣な化学を回避できる長所を有して
おり、そのため多工程化学合成に比べ大抵の場合に好収
率が保証される。
ガラクトシルトランスフェラーゼ(EC2,4,1,2
2)は領域特異的および立体特異的に、β(l→4)結
合形成を伴ってガラクトースをN−アセチルグルコサミ
ンを転移する。ガラクトシルトランスフェラーゼの天然
基質はグルコス(しかしこれはσ−ラクトアルブミンの
存在下でのみこの酵素により受容される)および末端に
N−アセチルグルコサミンを有するN−糖タンパク質で
ある。この酵素と非天然基質の反応は以下の刊行物に記
載されている。
2)は領域特異的および立体特異的に、β(l→4)結
合形成を伴ってガラクトースをN−アセチルグルコサミ
ンを転移する。ガラクトシルトランスフェラーゼの天然
基質はグルコス(しかしこれはσ−ラクトアルブミンの
存在下でのみこの酵素により受容される)および末端に
N−アセチルグルコサミンを有するN−糖タンパク質で
ある。この酵素と非天然基質の反応は以下の刊行物に記
載されている。
1、 H,A、 Nunez、 R,Barker;
Biochemistry 19゜489(1980
) 2、 J、 Thiem、 W、 Tredar、
T、 Wiemann;De−chema Biote
chnology Conferences、 Vol
、 2゜189 (1988)、 ed、 :D、 B
ehrens、 VCH−Ver−1agsgesel
lschaft、 Weinheim3、 C,Au
g6. S、 David、 C,Mathieu
、C。
Biochemistry 19゜489(1980
) 2、 J、 Thiem、 W、 Tredar、
T、 Wiemann;De−chema Biote
chnology Conferences、 Vol
、 2゜189 (1988)、 ed、 :D、 B
ehrens、 VCH−Ver−1agsgesel
lschaft、 Weinheim3、 C,Au
g6. S、 David、 C,Mathieu
、C。
Gautheron; TeLrahedron Le
tt、 25.1467(1984) 4、 U、 Zehavi、 M、 Herchma
n;Carbohydr、 Res。
tt、 25.1467(1984) 4、 U、 Zehavi、 M、 Herchma
n;Carbohydr、 Res。
■盈、 16(1(1984)
5、 口、 Zehavi、S、 5adeh、
M、 Herchman;Carbohydr、
Res、 124.23 (1983)6、 U、
Zehavi、 M、 Herchman; Car
bohydr、 Res。
M、 Herchman;Carbohydr、
Res、 124.23 (1983)6、 U、
Zehavi、 M、 Herchman; Car
bohydr、 Res。
す3.339 (1984)
7、 C,Aug6. C,Mathieu、 C,
Merienne;Carbohydr、 Res、
151. 147 (1986)3、 M、M、
Pa1cic、O,P、5rivastava、O。
Merienne;Carbohydr、 Res、
151. 147 (1986)3、 M、M、
Pa1cic、O,P、5rivastava、O。
Hindsgaul;Carbohydr、Res、
159,315(1987)。
159,315(1987)。
この場合に、末端にグルコースまたはN−アセチルグル
コサミンを有する糖類または低級オリゴ糖類はこの酵素
により転化される。グリココンジュゲートアミノ酸およ
び炭水化物、特に相当するアスパラギン誘導体は従来よ
り基質として用いられていない。
コサミンを有する糖類または低級オリゴ糖類はこの酵素
により転化される。グリココンジュゲートアミノ酸およ
び炭水化物、特に相当するアスパラギン誘導体は従来よ
り基質として用いられていない。
今般、ガラクトシルトランスフェラーゼは式Iおよび■
のグリコアスパラギン類の合成モ可能にし、既知の方法
の組合せにより非ガラクトンド部分を前もって化合的に
合成できることが見出された。
のグリコアスパラギン類の合成モ可能にし、既知の方法
の組合せにより非ガラクトンド部分を前もって化合的に
合成できることが見出された。
Ga1−β(1=4)−GlcNAc−β(1−4N)
−Asn(I )はアスパルチルグルコサミン尿症患者
の尿中に完全にすなわちアミノ酸部分を含めて、ブロッ
クされていない形で存在するER,J、 Po1liL
t。
−Asn(I )はアスパルチルグルコサミン尿症患者
の尿中に完全にすなわちアミノ酸部分を含めて、ブロッ
クされていない形で存在するER,J、 Po1liL
t。
K、M、 Pretty、 Biochem、 J、
141 (1974) 141]。
141 (1974) 141]。
Ga1−β(1→4)−GIcNAc−β(1→4)−
GlcNAc−β(1−N)−L−Asn(n)は、赤
血球膜+: 存在する。それはRobiniaレクチン
の受容体部位ではないかと考えられている[A、M、
Leseney、 R。
GlcNAc−β(1−N)−L−Asn(n)は、赤
血球膜+: 存在する。それはRobiniaレクチン
の受容体部位ではないかと考えられている[A、M、
Leseney、 R。
Bourrillon、 S、 Kornfeld、
Arch、 Biochem。
Arch、 Biochem。
Biophys、 153 (1972) 831]。
すなわち、・本発明は、弐■または■
で示される化合物をガラクトシル供与体の存在下にガラ
クトシルトランスフェラーゼと共にインキュベートする
ことより成る前記式1または前記式■の化合物の酵素的
製造方法に関するものである。
クトシルトランスフェラーゼと共にインキュベートする
ことより成る前記式1または前記式■の化合物の酵素的
製造方法に関するものである。
以下、本発明を詳述するが、本発明は特許請求の範囲に
定義されている。
定義されている。
ガラクトシルトランスフェラーゼ、例えばEC2,4,
1,22は弐■および■のグリフアスパラギン類を基質
として受容し、そしてそれらは、本方法においては末端
N−アセチルグルコサミン単位においてβ(l→4)位
にガラクトシル化される。この酵素はガラクトース供与
体としてウリジン−5′−ジホスフェート−ガラクトー
ス(UDP−Gal)を必要とする。しかしながら、こ
のヌクレオチド類は極めて高価であり、従って、酵素ウ
リジン−5′−ジホスフェート−ガラクトース4−エピ
メラーゼ(EC5,1,3,2) lこより触媒される
反応でウリジン−5′−ジホスフェート−グルコース(
UDP −Ga1)からそれを系内で製造した方がより
有利である。
1,22は弐■および■のグリフアスパラギン類を基質
として受容し、そしてそれらは、本方法においては末端
N−アセチルグルコサミン単位においてβ(l→4)位
にガラクトシル化される。この酵素はガラクトース供与
体としてウリジン−5′−ジホスフェート−ガラクトー
ス(UDP−Gal)を必要とする。しかしながら、こ
のヌクレオチド類は極めて高価であり、従って、酵素ウ
リジン−5′−ジホスフェート−ガラクトース4−エピ
メラーゼ(EC5,1,3,2) lこより触媒される
反応でウリジン−5′−ジホスフェート−グルコース(
UDP −Ga1)からそれを系内で製造した方がより
有利である。
化合物Iまたは■の製造にあたっては、前述のそれぞれ
の出発基質■または■をガラクトシル供与体、例えばU
DP−Galと共に水性溶液中でガラクトシルトランス
フェラーゼで処理する。
の出発基質■または■をガラクトシル供与体、例えばU
DP−Galと共に水性溶液中でガラクトシルトランス
フェラーゼで処理する。
それら出発基質およびガラクトース供与体はそれぞれ等
モル濃度、好ましくは10〜15mM量で用いられる。
モル濃度、好ましくは10〜15mM量で用いられる。
商業的に入手し得るガラクトシルトランスフェラーゼは
可溶形態または固定形態で用いることができる。固定を
行う場合には、特に経済的理由からシリカゲルが担体と
して好ましい。反応は有利には緩衝溶液中で行われる。
可溶形態または固定形態で用いることができる。固定を
行う場合には、特に経済的理由からシリカゲルが担体と
して好ましい。反応は有利には緩衝溶液中で行われる。
緩衝剤として特にカコジル酸ナトリウムが用いられる。
培養温度は酵素の温度/活性範囲に応じて広い範囲にわ
たって変えることができる。
たって変えることができる。
反応は好ましくは32〜37°Cで行われる。
本発明による反応は、前述の如く、いわゆる″ワンポッ
ト法(on−pot process)”により、ウリ
ジン−5′−ジホスフェート−ガラクトース4−エピメ
ラーゼを用いてUDP −Ga1f!:UDP −Gl
cから製造することから始まる。ワンポット法とは、す
べての関与基質およびすべての関与酵素を一つの反応混
合物に合体することを意味する。前述の諸反応、UDP
−GlcからのUDP−Galの製造および化合物Iま
たはHの製造を逐次的に行うこともできることはもちろ
んである。しかしながら、前記反応パラメータを混合物
全体についで維持する場合にはワンポット法の方がより
経済的である。
ト法(on−pot process)”により、ウリ
ジン−5′−ジホスフェート−ガラクトース4−エピメ
ラーゼを用いてUDP −Ga1f!:UDP −Gl
cから製造することから始まる。ワンポット法とは、す
べての関与基質およびすべての関与酵素を一つの反応混
合物に合体することを意味する。前述の諸反応、UDP
−GlcからのUDP−Galの製造および化合物Iま
たはHの製造を逐次的に行うこともできることはもちろ
んである。しかしながら、前記反応パラメータを混合物
全体についで維持する場合にはワンポット法の方がより
経済的である。
反応進行の検出は薄層クロマトグラフィによって行われ
る。ヌクレオチドホスフェートをイオン交換クロマトグ
ラフィ、例えばDowex 1−X8(対イオン: C
Q−)および例えばBlo−Ca1 P2を用いたゲル
クロマトグラフィにより除いた後で最終生成物を分離す
るがそれらは25〜35%の収率で得られる。
る。ヌクレオチドホスフェートをイオン交換クロマトグ
ラフィ、例えばDowex 1−X8(対イオン: C
Q−)および例えばBlo−Ca1 P2を用いたゲル
クロマトグラフィにより除いた後で最終生成物を分離す
るがそれらは25〜35%の収率で得られる。
ガラクトシル受容体■および■は様々な著者に係る論文
に由来する方法により化学合成できる[D、E、 Co
wley、 L、 Hough、 C,M、 Peac
h。
に由来する方法により化学合成できる[D、E、 Co
wley、 L、 Hough、 C,M、 Peac
h。
Carbohydr、 Res、 19 (1971)
231 ; M、 5pinola。
231 ; M、 5pinola。
R,W、 Jeanloz、 J、 Biol、 Ch
em、 245 (1970)4158;H,Kunz
、 H,Waldmann、 Angew、 Cbem
。
em、 245 (1970)4158;H,Kunz
、 H,Waldmann、 Angew、 Cbem
。
97 (1985)885]
アスパルチル−N−アセチルグルコサミ7I[1の場合
には、N−アセチルグルコサミンをアセチルクロライド
でベルアセチル化a−クロライドに変えた後それを水/
クロロホルム中で相間移動触媒によりβ−アジドに変え
る。パラジウム上で水素によりβ−アミンまで還元後、
エチル2−エトキシ−1,2−ジヒドロキノリン−1−
カルボキシレート(EEDQ)介助縮合によりα−メチ
ルN−アセチルアスパルテートに結合することができる
。ナトリウムメタル−トで脱0−アセチル化後、式■の
ガラクトシル受容体が得られるが、これは酵素ガラクト
シル化に先立ちゲルクロマトグラフィにより精製する必
要がある。
には、N−アセチルグルコサミンをアセチルクロライド
でベルアセチル化a−クロライドに変えた後それを水/
クロロホルム中で相間移動触媒によりβ−アジドに変え
る。パラジウム上で水素によりβ−アミンまで還元後、
エチル2−エトキシ−1,2−ジヒドロキノリン−1−
カルボキシレート(EEDQ)介助縮合によりα−メチ
ルN−アセチルアスパルテートに結合することができる
。ナトリウムメタル−トで脱0−アセチル化後、式■の
ガラクトシル受容体が得られるが、これは酵素ガラクト
シル化に先立ちゲルクロマトグラフィにより精製する必
要がある。
アスパルチルキトビオジルアミン■を合成するには、ま
ずキチンをアセトリシスによりオリゴマー混合物に分解
しそこからキトビオースオクタアセテートをフラッシュ
クロマトグラフィにより単離することができる。これを
アセチルクロライド中に懸濁させ、そして気体状塩化水
素を通じることによってベルアセチル化α−キトビオジ
ルクロライドに変える。弐■の化合物の合成と同様にし
て、そのσ−クロライドをナトリウムアジドを用いてβ
−アジドに変え、β−アミンに還元し、α−メチルN−
アセチルアスパルテートに結合し、そして最後に脱O−
アセチル化する。このようにして得られた式■のアスパ
ルチルキトビオジルアミン マトグラフィによる精製後前述の酵素ガラクトシル化に
用いることができる。
ずキチンをアセトリシスによりオリゴマー混合物に分解
しそこからキトビオースオクタアセテートをフラッシュ
クロマトグラフィにより単離することができる。これを
アセチルクロライド中に懸濁させ、そして気体状塩化水
素を通じることによってベルアセチル化α−キトビオジ
ルクロライドに変える。弐■の化合物の合成と同様にし
て、そのσ−クロライドをナトリウムアジドを用いてβ
−アジドに変え、β−アミンに還元し、α−メチルN−
アセチルアスパルテートに結合し、そして最後に脱O−
アセチル化する。このようにして得られた式■のアスパ
ルチルキトビオジルアミン マトグラフィによる精製後前述の酵素ガラクトシル化に
用いることができる。
以下、本発明を実施例により例示する。
実施例
1、グリコジルアスパラギン■および■のガラクトシル
化手順 a.反応を塩化マンガン( 5 mM)の存在下にカコ
ジル酸ナトリウム緩衝液(25mM, pH7.7)中
で行う。UDP−ガラクトース(13mM) 、グリコ
ジルアスパラギン(■またはIV,13mM)および牛
血清アルブミン( l my/ ranを添加し、そし
て窒素で脱酸素を行った後、ガラクトシルトランスフェ
ラーゼ(EC 2.4.1.22. lOU )を添加
する。37°Cで2日後、その混合物を陰イオン交換体
( Dowex l −X8 、クロライド型)を用い
て後処理し、対でBio−Gal P2でのゲルクロ
マトグラフィにより精製する。
化手順 a.反応を塩化マンガン( 5 mM)の存在下にカコ
ジル酸ナトリウム緩衝液(25mM, pH7.7)中
で行う。UDP−ガラクトース(13mM) 、グリコ
ジルアスパラギン(■またはIV,13mM)および牛
血清アルブミン( l my/ ranを添加し、そし
て窒素で脱酸素を行った後、ガラクトシルトランスフェ
ラーゼ(EC 2.4.1.22. lOU )を添加
する。37°Cで2日後、その混合物を陰イオン交換体
( Dowex l −X8 、クロライド型)を用い
て後処理し、対でBio−Gal P2でのゲルクロ
マトグラフィにより精製する。
b.反応を塩化マンガン( 5 mM)の存在下にカコ
ジル酸ナトリウム緩衝液(25mM, pH7.7)中
で行う。UDP−グルコース(13mM) 、グリコジ
ルアスパラギン(■またはIV 、 13mM)および
牛血清アルブミン( l rng/ mQ)を添加し、
そして窒素で脱酸素を行った後、ガラクトシルトランス
フェラーゼ(EC 2.4.1.22, ITJ)およ
びUDP−ガラクトース4−エピメラーゼ(EC 5。
ジル酸ナトリウム緩衝液(25mM, pH7.7)中
で行う。UDP−グルコース(13mM) 、グリコジ
ルアスパラギン(■またはIV 、 13mM)および
牛血清アルブミン( l rng/ mQ)を添加し、
そして窒素で脱酸素を行った後、ガラクトシルトランス
フェラーゼ(EC 2.4.1.22, ITJ)およ
びUDP−ガラクトース4−エピメラーゼ(EC 5。
1、2.2, IOU)を添加する。37°Cで2日後
、その混合物を陰イオン交換体( Dowex l −
X3 、りロライド型)を用いて後処理し、次いでBi
o −Gel R2でのゲルクロマトグラフィにより精
製する。
、その混合物を陰イオン交換体( Dowex l −
X3 、りロライド型)を用いて後処理し、次いでBi
o −Gel R2でのゲルクロマトグラフィにより精
製する。
1.1) 2−アセトアミド−4−0−(β−D−ガ
ラクトピラノシル)−1−N−(N−アセチル−1−メ
チル−4−L−アスパルチル)−2−デオキシ−β−D
−グルコピラノシルアミン(I) 混合物: 64.5mg(100μmof2)のUDP
−Ga 139 mg(100/l+o12)の化合
物■TLCチエツク:移動相n−グロバノール/酢酸/
水(85: 12: 3 ) R4値: GIcNAc−Asn(III )
0.22Gal −GlcNAc −Asn(1)
0.08収率: 20mg(35%) 選択された’H−NMRデータ(300MHz、 D、
O) :δ−s、o6(d、IH,+(−1)、 4.
40(c+、tH,u−1)、 2.9s(dd、IH
。
ラクトピラノシル)−1−N−(N−アセチル−1−メ
チル−4−L−アスパルチル)−2−デオキシ−β−D
−グルコピラノシルアミン(I) 混合物: 64.5mg(100μmof2)のUDP
−Ga 139 mg(100/l+o12)の化合
物■TLCチエツク:移動相n−グロバノール/酢酸/
水(85: 12: 3 ) R4値: GIcNAc−Asn(III )
0.22Gal −GlcNAc −Asn(1)
0.08収率: 20mg(35%) 選択された’H−NMRデータ(300MHz、 D、
O) :δ−s、o6(d、IH,+(−1)、 4.
40(c+、tH,u−1)、 2.9s(dd、IH
。
β−Asn)、 2.82(dd、It(、β””sn
) ; L 2=9.4J、 、2’=7.6.
J−、j−5,55,J、、1 =17.l、J、=
=7.63Hz0 12) 2−アセトアミド−4−〔2−アセトアミド−
2−デオキシ−4−(β−D−ガラクトピラノシル)−
β−D−グルコピラノシル)−1−N−(N−アセチル
−lメチル−4−L−アスパルチル)−2 −デオキシ−β−D−グルコピラノシルアミン(II) 混合物: 32.0mg(50μmoQ)のUDP−G
a 129.0mg(50μmof2)の化合物■TL
Cチエツク:移動相n−ブタノール/酢酸/水2:4:
I Rr値: GlcNAc −GIcNAc −Asn(
IV ) 0.31Gal−GlcNAc−G
lcNAc−Asn(II) 0.19収率: lo
mg(25%) 選択された’H−NMRデータ(330MHz、 D
20)δ=5.09(d、II(、H−1)、 4.6
2(d、IH,H−1’)、 4.47Cd、IH。
) ; L 2=9.4J、 、2’=7.6.
J−、j−5,55,J、、1 =17.l、J、=
=7.63Hz0 12) 2−アセトアミド−4−〔2−アセトアミド−
2−デオキシ−4−(β−D−ガラクトピラノシル)−
β−D−グルコピラノシル)−1−N−(N−アセチル
−lメチル−4−L−アスパルチル)−2 −デオキシ−β−D−グルコピラノシルアミン(II) 混合物: 32.0mg(50μmoQ)のUDP−G
a 129.0mg(50μmof2)の化合物■TL
Cチエツク:移動相n−ブタノール/酢酸/水2:4:
I Rr値: GlcNAc −GIcNAc −Asn(
IV ) 0.31Gal−GlcNAc−G
lcNAc−Asn(II) 0.19収率: lo
mg(25%) 選択された’H−NMRデータ(330MHz、 D
20)δ=5.09(d、II(、H−1)、 4.6
2(d、IH,H−1’)、 4.47Cd、IH。
H刊″)、 2.06.2.02.2.01(各々S、
各々3H,各々NAC): J+、2=9−6 Hz
、J+2’=8.1 Hz、J172 = 7.7Hz。
各々3H,各々NAC): J+、2=9−6 Hz
、J+2’=8.1 Hz、J172 = 7.7Hz。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1)式IIIまたはIV ▲数式、化学式、表等があります▼III ▲数式、化学式、表等があります▼IV で示される化合物をガラクトシル供与体の存在下にガラ
クトシルトランスフェラーゼと共にインキュベートする
ことより成る式 I またはII ▲数式、化学式、表等があります▼ I ▲数式、化学式、表等があります▼II で示される化合物の酵素的製造方法。 2)UDP−Galがガラクトシル供与体として用いら
れる請求項1記載の方法。 3)UDP−GalがUDP−ガラクトース4−エピメ
ラーゼによる触媒作用によりUDP−Glcから合成さ
れる請求項1または2記載の方法。 4)反応が緩衝溶液中で行われる請求項1〜3のいずれ
かに記載の方法。 5)反応が32〜37℃で行われる請求項1〜4のいず
れかに記載の方法。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE19893927801 DE3927801A1 (de) | 1989-08-23 | 1989-08-23 | Verfahren zur enzymatischen synthese galactosylierter glycoprotein-bausteine |
| DE3927801.8 | 1989-08-23 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH03108491A true JPH03108491A (ja) | 1991-05-08 |
Family
ID=6387681
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP21915190A Pending JPH03108491A (ja) | 1989-08-23 | 1990-08-22 | ガラクトシル化糖タンパク質単位の酵素的合成方法 |
Country Status (7)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP0414171B1 (ja) |
| JP (1) | JPH03108491A (ja) |
| DE (2) | DE3927801A1 (ja) |
| DK (1) | DK0414171T3 (ja) |
| ES (1) | ES2064563T3 (ja) |
| IE (1) | IE64951B1 (ja) |
| PT (1) | PT95065A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2023501310A (ja) * | 2019-11-05 | 2023-01-18 | マックス プランク ゲゼルシャフト ツゥアー フェデルゥン デル ヴィッセンシャフテン エー フォー | Udp-ガラクトースを調製するための酵素的方法 |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| TW213952B (ja) * | 1991-04-09 | 1993-10-01 | Hoechst Ag | |
| GB9117523D0 (en) * | 1991-08-14 | 1991-10-02 | Unilever Plc | Di and tri saccharides, methods of making them and hair growth compositions containing them |
Family Cites Families (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4569909A (en) * | 1982-06-03 | 1986-02-11 | Seitetsu Kagaku Co., Ltd. | Process for preparing uridine diphosphate-N-acetylgalactosamine |
| JPS63502716A (ja) * | 1986-03-07 | 1988-10-13 | マサチューセッツ・インステチュート・オブ・テクノロジー | 糖タンパク安定性の強化方法 |
-
1989
- 1989-08-23 DE DE19893927801 patent/DE3927801A1/de not_active Withdrawn
-
1990
- 1990-08-18 ES ES90115862T patent/ES2064563T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1990-08-18 DE DE59007748T patent/DE59007748D1/de not_active Expired - Fee Related
- 1990-08-18 DK DK90115862T patent/DK0414171T3/da active
- 1990-08-18 EP EP90115862A patent/EP0414171B1/de not_active Expired - Lifetime
- 1990-08-22 IE IE304290A patent/IE64951B1/en not_active IP Right Cessation
- 1990-08-22 PT PT9506590A patent/PT95065A/pt not_active Application Discontinuation
- 1990-08-22 JP JP21915190A patent/JPH03108491A/ja active Pending
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2023501310A (ja) * | 2019-11-05 | 2023-01-18 | マックス プランク ゲゼルシャフト ツゥアー フェデルゥン デル ヴィッセンシャフテン エー フォー | Udp-ガラクトースを調製するための酵素的方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
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| PT95065A (pt) | 1991-04-18 |
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| EP0414171A2 (de) | 1991-02-27 |
| DK0414171T3 (da) | 1995-05-01 |
| DE59007748D1 (de) | 1995-01-05 |
| EP0414171B1 (de) | 1994-11-23 |
| DE3927801A1 (de) | 1991-02-28 |
| EP0414171A3 (en) | 1991-09-04 |
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