JPH03112483A - バチルス・リケニホルミス - Google Patents
バチルス・リケニホルミスInfo
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- JPH03112483A JPH03112483A JP25161089A JP25161089A JPH03112483A JP H03112483 A JPH03112483 A JP H03112483A JP 25161089 A JP25161089 A JP 25161089A JP 25161089 A JP25161089 A JP 25161089A JP H03112483 A JPH03112483 A JP H03112483A
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- JP
- Japan
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- soybean protein
- enzyme
- bacillus licheniformis
- soybean
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
本発明は大豆蛋白凝固酵素を生産するバチルス・リケニ
ホルミスに関する。
ホルミスに関する。
牛乳からチーズを作るように、動物性蛋白質を凝固酵素
によって凝固させて食品を作ることは。 従来からよく知られている。一方、近年、健康上及び経
済的な理由から、大豆蛋白を凝固させることにより、安
価かつ豊富にある大豆を利用して大豆加工食品を製造す
ることが希望されていた。
によって凝固させて食品を作ることは。 従来からよく知られている。一方、近年、健康上及び経
済的な理由から、大豆蛋白を凝固させることにより、安
価かつ豊富にある大豆を利用して大豆加工食品を製造す
ることが希望されていた。
このような背景に鑑み、本発明者は、自然界に生存する
細菌の中から、大豆蛋白凝固酵素を菌体外に生産するバ
チルス・リケニホルミスを発見するとともに、これを単
離することに成功し、該菌株をrB−6−4JJと命名
して工業技術院微生物工業技術研究所に微工研菌寄第8
626号(FERMP−8626)として寄託するとと
もに、蒜菌株を利用して生産される大豆蛋白凝固酵素及
びその製造方法について特許出願している(特開昭62
−179386号公報参照)。なお、得られた大豆蛋白
凝固酵素は苦みがなくて食料素材に適している。
細菌の中から、大豆蛋白凝固酵素を菌体外に生産するバ
チルス・リケニホルミスを発見するとともに、これを単
離することに成功し、該菌株をrB−6−4JJと命名
して工業技術院微生物工業技術研究所に微工研菌寄第8
626号(FERMP−8626)として寄託するとと
もに、蒜菌株を利用して生産される大豆蛋白凝固酵素及
びその製造方法について特許出願している(特開昭62
−179386号公報参照)。なお、得られた大豆蛋白
凝固酵素は苦みがなくて食料素材に適している。
しかるに、上記バチルス・リケニホルミスB−6−4J
(微工研菌寄第8626号)にあっては、大豆蛋白凝
固酵素を生産するものの、その量はあまり多くなく、大
豆蛋白を凝固させることにより大豆加工食品を工業的に
大量に生産するためには、充分な量の大豆蛋白凝固酵素
を得ることが難しかった。また、このバチルス・リケニ
ホルミスB−6−4Jは胞子形成頻度が高く、生産され
た大豆蛋白凝固酵素を菌体と分離して抽出する際に胞子
が混入し易く、該胞子から生育した前記B−6−45が
前記酵素とともに大豆蛋白に作用して、でき上がった大
豆蛋白食品に意図しない味が付与されるという問題があ
る。 本発明は上記問題に対処するためになされたもので、そ
の目的は、大量の大豆蛋白凝固酵素を生産するとともに
、該酵素のみを菌体から容易に分離して抽出することが
可能な新規なバチルス・リケニホルミスを提供すること
にある。
(微工研菌寄第8626号)にあっては、大豆蛋白凝
固酵素を生産するものの、その量はあまり多くなく、大
豆蛋白を凝固させることにより大豆加工食品を工業的に
大量に生産するためには、充分な量の大豆蛋白凝固酵素
を得ることが難しかった。また、このバチルス・リケニ
ホルミスB−6−4Jは胞子形成頻度が高く、生産され
た大豆蛋白凝固酵素を菌体と分離して抽出する際に胞子
が混入し易く、該胞子から生育した前記B−6−45が
前記酵素とともに大豆蛋白に作用して、でき上がった大
豆蛋白食品に意図しない味が付与されるという問題があ
る。 本発明は上記問題に対処するためになされたもので、そ
の目的は、大量の大豆蛋白凝固酵素を生産するとともに
、該酵素のみを菌体から容易に分離して抽出することが
可能な新規なバチルス・リケニホルミスを提供すること
にある。
本発明はバチルス・リケニホルミスに関し、その第1の
発明は胞子形成能が低くかつ大豆蛋白凝固酵素の生産能
が高いバチルス・リケニホルミスにある。 また、本発明の第2の発明は大豆蛋白凝固酵素の生産能
が高いバチルス・リケニホルミス微工研条寄第1778
号にある。 しかして、本発明に係るバチルス・リケニホルミスはバ
チルス・リケニホルミスB−6−4Jを親株とする変異
株であり、本発明において胞子形成能が低いとは、後述
する規定された条件下で測定した胞子形成頻度が親株の
バチルス・リケニホルミスに比較して11500倍また
はそれ以下であることを意味し、かつ大豆蛋白凝固酵素
の生産能が高いとは同様に大豆蛋白凝固活性が親株のバ
チルス・リケニホルミスに比較して5倍またはそれ以上
であることを意味する。
発明は胞子形成能が低くかつ大豆蛋白凝固酵素の生産能
が高いバチルス・リケニホルミスにある。 また、本発明の第2の発明は大豆蛋白凝固酵素の生産能
が高いバチルス・リケニホルミス微工研条寄第1778
号にある。 しかして、本発明に係るバチルス・リケニホルミスはバ
チルス・リケニホルミスB−6−4Jを親株とする変異
株であり、本発明において胞子形成能が低いとは、後述
する規定された条件下で測定した胞子形成頻度が親株の
バチルス・リケニホルミスに比較して11500倍また
はそれ以下であることを意味し、かつ大豆蛋白凝固酵素
の生産能が高いとは同様に大豆蛋白凝固活性が親株のバ
チルス・リケニホルミスに比較して5倍またはそれ以上
であることを意味する。
本発明に係るバチルス・リケニホルミスにおいては、胞
子形成能がきわめて低くかつ大豆蛋白凝固酵素の生産能
が高いことから、大豆蛋白凝固酵素の生成系から該酵素
を菌体と分離して胞子を混入させることなく大量に抽出
することができ、かつ得られた酵素は苦みのない滑らか
な口当りの大豆蛋白凝固物を形成する。従って、本発明
に係るバチルス・リケニホルミスによれば、大豆蛋白加
工食品の製造に適した大豆蛋白凝固酵素を大量に得るこ
とができる。
子形成能がきわめて低くかつ大豆蛋白凝固酵素の生産能
が高いことから、大豆蛋白凝固酵素の生成系から該酵素
を菌体と分離して胞子を混入させることなく大量に抽出
することができ、かつ得られた酵素は苦みのない滑らか
な口当りの大豆蛋白凝固物を形成する。従って、本発明
に係るバチルス・リケニホルミスによれば、大豆蛋白加
工食品の製造に適した大豆蛋白凝固酵素を大量に得るこ
とができる。
本発明に係るバチルス・リケニホルミスは上記したバチ
リス・リケニホルミスB−6−4J (野生株)の中間
変異株を経て取得した変異株であり、これらの菌株につ
いて分離、m製、培養、突然変異の発生、有用性等の実
験を行うとともに、それらの特性を測定した。 a、大豆蛋白凝固酵素生産菌のスクリーニング(al)
分離源 静岡県三島市にある国立遺伝学研究所内及び箱根の山の
ふもとの植物、土壌及び豚、牛等家畜の排せつ物から試
料を広く採取した。 (al)分離方法(大豆蛋白凝固酵素)採取した各資料
(植物、土壌、排せつ物等をそれぞれ粉砕した耳かき一
杯程度の資料)を、滅菌した豆乳が各3m7ずつ分注さ
れている試験管にそれぞれ入れて、12〜16時間、3
7℃にて振とう培養する(1次スクリーニング)、これ
らの中でカードを形成している(凝固した物を含む)試
験管内の豆乳のp IIを測定し、P Hが5.5以上
の試験管内の資料について、前記と同様のスクリーニン
グを繰り返し行なった。なお、凝固した試料の中からp
H5,5未満のものを除く理由は、酸によりカード形成
された資料を除外するためである。 目的とする微生物の純化のために豆乳によるスクリーニ
ングを5次まで行った。かかる5次までのスクリーニン
グにより、豆乳凝固能を有する微生物を、カード形成し
た豆乳から滅菌した豆乳へ植え継ぎできることが確認さ
れた。その結果、■前記スクリーニングした資料中に、
大豆蛋白凝固能を有する微生物が存在すること、■この
微生物が豆乳の中で繁殖していることが確認できた。 その後、5次スクリーニングにより得た微生物を、下記
表1に示す組成でpH6,0に調製された増殖培地で、
12〜16時間、37℃にて振どう培養することによ
り、植え継いだ。 1 硫酸アンモニウム 0.1%リン酸塩
1.0%硫酸マグネシウム
0.01%クエン酸ナトリウム 0
.05%カザミノ酸 0.02%酵
母エキス 0.1%グルコース
0.5%b、大豆蛋白凝固酵素生産
菌の純化 5次スクリーニングを行ったサンプルから平板希釈法に
より、大豆蛋白凝固能が最も高い菌株を単一菌株として
得た。この菌株をrB−6−4JJと命名し、同菌株を
工業技術院微生物工業技術研究所に寄託した。寄託番号
は徹工研菌寄8626号(FERM P−8626)
である。この菌株は竹の葉および竹の根に集中して分布
していた。 次に、得られた菌株(B−6−4J)において、大豆蛋
白凝固能を有する物質が菌体内あるいは菌体外に存在す
るのかを確認した。まず、この菌株を上記表2に示す組
成でpH6,0に調製された生産培地で、 24時間、
37℃にて振とう培養した。 硫酸アンモニウム リン酸二水素カリウム 硫酸マグネシウム クエン酸ナトリウム カザミノ酸 酵母エキス グルコース 11.1%の塩化カルシウム溶液 地 0.1% 1.0% 0.01% 0.05% 0.02% 0.1% 0.5% 0.01% 豆乳(大豆蛋白濃度10%) 5% このようにして培養したものを、0℃、6000 rp
mで10分間遠心分離を行い、上澄液と菌体とに分離し
てそれぞれの活性を調べた。上澄液に関しては、該上澄
液を平均細孔径0.22μmのフィルタを通すことによ
って除菌し、同波に含まれるものの豆乳凝固活性を調べ
た。また、菌体に関しては、該菌体を乳ばちにおいて石
英砂と共によく磨砕し、そこにpH7,0のリン酸緩衝
液を加えて、上記と同様に0.22μmのフィルタを通
して得た菌体抽出液に含まれるものの豆乳凝固活性を調
べた。 なお、かかる場合に、 リン酸緩衝液を入れるのは、菌
体の粉砕によって変化したpHを元に戻して酸による豆
乳凝固の影響をなくすためであり、また。 フィルタを通すのは、不要な成分を除去するためである
。 その結果、上澄液には豆乳を凝固させる活性能が存在し
、菌体抽出液には豆乳を凝固させる活性は全く存在して
いないことが確認できた。 さらに、前記上澄液を80℃で30分間加熱して、該加
熱した上澄液に豆乳凝固活性能が存在するかを調べた結
果、前記活性能がなくなることから、加熱によって豆乳
凝固活性能が消失することが確認された。 これらの実験により、豆乳凝固活性能を有する物質は無
機物ではなく、前記微生物が生産する菌体外酵素である
ことを確認できた。 C0酵素生産性を増加させる培養条件の検討(cl)こ
の菌株(B−6−4J)を各種条件で培養を行うことに
より、大豆蛋白凝固酵素生産能を増加させる培養条件の
検討を行なった。かかる場合、基本的培地として、上記
表2の組成のものを用いた。なお、この培地組成は、資
化しうる(菌株が栄養素として培地に接種できるととも
に、その培地で増殖できる)炭素源、窒素源、栄養源等
を含有するものであり、かつ大豆蛋白凝固酵素を分泌す
るものであれば、いかなる培地でもかまわない。 前記実験の結果、大豆蛋白凝固酵素の生産を増加させる
菌株の培養条件に関し、次のことを知得した。なお、説
明の便宜上、上記表2の組成を有する培地を例に取り説
明する。 ■無機塩((Nl14hsOa、 KI12PO4,
Mg5Oa・7+120)、クエン酸ナトリウム、グル
コース、酵母エキス及びカザミノ酸は、菌体を増殖させ
るものであって、大豆蛋白凝固酵素の生産性を高める上
ではあまり関係ない。換言すれば、これらの化合物は大
豆蛋白凝固活性能を引き出す上ではあまり関係ない。 ■豆乳(蛋白質濃度=10%)を添加するかしないかは
、大豆蛋白凝固酵素生産能を引き出すことに大きく影響
する。第1図は表2に示す生産培地への豆乳添加量と大
豆蛋白凝固活性との関係を示すもので、温度45℃で2
4時間振とう培養シた場合の結果であり、凝固活性は後
述する定義に基づいて算出した。第1図によれば、豆乳
(大豆蛋白10%)を培地に2.5〜7.5%程度添加
すると、菌体の大豆蛋白凝固活性能を有効に引き出せる
こと、及び豆乳を培地に5%程度添加すると、菌体の大
豆蛋白凝固活性能を最も有効に引き出せることが解る。 また、この場合、豆乳がこの菌株に対して大豆蛋白凝
固酵素の生産能を高めるインデューサとして働いている
ものと考えられる。 ■第2図は45℃、pI(6,0で振とう培養した場合
の培養時間に対する菌数(colony formiB
unit/+j)及び大豆蛋白凝固活性の関係を示して
いる。この結果によれば、培養時間は20時間以上必要
であり、50時間までは前記凝固活性が残っていること
が解る。また、上記培養条件において最適時間で温度を
変化させ、かつ最適時間および最適温度でp Hを変化
させて振とう培養を行った結果、培養温度は45℃前後
が適当であり、かつ培養地のp Hは6〜7で安定であ
った。 (C2)大豆蛋白凝固活性SCAの定義豆乳(蛋白質濃
度:10%)に培養液を加え65℃でカードを形成する
基準時間を1時間とし、下記式にて算出する。 S CA = Soymilk Clotting
Activity(unit)= (S/E)x (
3600/l) S:基質(豆乳)のffi(m)) E:培養液を遠心し菌体を取り除いた上澄液の量(m)
) を二 カードの生じる時間(秒) d1分泌酵素量を増大させるための菌体の改良(突然変
異株の取得) 前記菌株(B−6−4J)の菌体外酵素の分泌量を増大
させるために、以下の方法で突然変異株を取得した。な
お、この菌株を、表3に示す市販の栄養増殖培地により
45℃、pH6,0で振とう培養した後、菌体だけを遠
心分離により採取し、採取した菌体を長く生存させるた
め壜こ、同菌体にリン酸緩衝液を入れることにより懸濁
して以下の実験に供した。 3゜ Antibiotic 肉エキス 酵母エキス ペプトン デキストローゼ 塩化ナトリウム リン酸水素二カリウム リン酸二水素カリウム 地 1 2(デイフコ社製商品名) 0615% 0.15% 0.5% 0.1% 0.35% 0.388% 0.132% Mediu園 (dl)紫外線(UV)処理 上記の処理で得られた懸濁状態にある菌体を100倍に
希釈して、表3の組成を培地とする栄養増殖平板プレー
トに塗抹し、紫外線を種々条件を変えて照射した。かか
る照射後、前記プレート上で37℃、1昼夜培養した。 該培養後、胞子形成能が低い変異株を取り出したところ
、9株の変異株が得られた。この得られた変異株の大豆
蛋白凝固活性能を調べたが、この中には大豆蛋白凝固活
性能を持つ菌株は見い出されなかった。 (d2)γ線照射処理 上記100倍に希釈したものと同じ菌株にγ線を20に
レントゲン照射後、菌体を表3の組成を培地とする栄養
増殖平板プレートにまき、45℃で3日間培養した。プ
レート上に増殖した菌株より、胞子形成能が低い株を捜
したが、一つも見い出されなかった。また、大豆蛋白凝
固活性能を有する菌株も見い出されなかった。 (d3)ニトロソグアニジン(NTG)処理NTG5m
zをリン酸II!IWJ液4.5dに溶解し、この溶液
の中に前記100倍に希釈した菌体液を0.5mt添加
して、 37℃で60分捏上うさせた。次に、この菌体
をリン酸緩衝液で3回洗浄を行なった後上記した栄養増
殖平板プレートにまき、45℃で1昼夜培養した。その
結果、胞子形成能が低いと思われる菌株は22株得られ
た。 この22株のうち、大豆蛋白凝固活性能を有する菌株が
3株見い出された。この中で、最も凝固活性が高いもの
を中間変異株26Dとし、以後の実験に供した。 この中間変異株26Dの野生株B−6−4Jに対する性
質を以下に記す。 ■胞子形成頻度 野性株B−6−4Jの1/1000 〜1/10000倍 ■大豆蛋白凝固活性の比較 野性株の約2倍 これらの性質は、野性株B−4−6Jを培養するときよ
り、エアレーション(通気量)が低い培養条件時に観察
される。なお、他の培養条件は上記(cl)で述べた菌
株B−6,−4Jの場合と同様である。また、胞子形成
頻度は下記の方法により菌株を処理し、測定して算出し
た。 a:菌株のコロニーを1つ1つプレートに移す。 この同じプレートを2枚作る。 b:底部にクロロホルムを1満々下したシャーレの
蓋に上記プレートの1枚を被せるとともに、他のプレー
トをクロロホルムの滴下してないシャーレの蓋に被せ(
コントロール)、これらのプレート上の菌株を45℃、
16時間培養する。胞子形成能が弱い菌株、胞子形成の
少ない菌株はクロロホルムの影響で生えない。 C:生えていない菌株(クロロホルム側)に対応するコ
ントロール側の菌株の凝固活性を調べ凝固活性を持つ菌
株を表3に示す栄養増殖培地で増殖する。 d:菌体を80℃で15分間熱処理し、熱処理前後の菌
数を測定して下記式により胞子形成頻度を算出する。 胞子形成頻度=(熱処理後の菌数)/ (熱処理前の菌数) 増殖した菌体が100%胞子を形成している場合胞子形
成頻度は1となる。 (d4)中間変異株26DのNTG処理中間変異株26
Dから、さらに変異株を取得するために次のような処理
を行なった。 ■中間変異株26Dを表3に示す栄養増殖培地3m[中
で、45℃にて1晩培養する。 ■前記■の培養液0.1mJ2を上記栄養増殖培地3m
g中に添加し、45℃で対数増殖期(ログフェーズ)ま
で振とう培養する。なお、対数増殖期まで培養する理由
は、該増殖期における菌株が最も突然変異する傾向が強
いためである。 ■前記■の培養液を0.5n+/ずつ5つの試験管に分
注し、それぞれにll1g/afのNTGを0.0.
2.5. 5.0゜10.0. 25.0μlずつ入れ
る。これにより、各試験管内のNTGm度は、それぞれ
0. 5. 10. 20.50μg/mノとなる。 ■前記■の各試験管を45℃で30分分間上うする。 ■前記■の処理後、各試験管内の菌体を1+neの上記
栄養増殖培地で3回ずつ洗浄する。 ■前記■の処理後、菌体にそれぞれ0.5mlの上記栄
養増殖培地を添加してJl!TI濁する。 ■前記■の懸濁液の、各30μノを3Illlの上記栄
養増殖培地に加えて、45℃で1晩振とう培養する。 前記■の処理後、各培養液を一80℃に保存して以後の
実験に供する。 次に、細菌は通常カナマイシン(抗生物′Ii”)に対
して感受性であるが(今回得た中間突然変異株26Dも
カナマイシンに対して感受性である)、突然変異によっ
て得られた細菌はカナマイシンに対して耐性となる場合
があることに鑑み、前記保存しである菌株を0.2μg
ノIII/!のカナマイシンを含む栄養増殖平板プレー
トにまき、ミューチージョン頻度の高いNTG1度群を
選別した。その結果、NTG21度が20Pg/mノで
ある場合に、 ミューテーシ目ン頻度が最も高く、その
頻度は3.52x 10−3であった。NTG濃度20
μg/mlの群を、上記表1の培地にプロテアーゼ活性
測定試薬(シグマ製のハイドパウダー 商品名)0.5
%と、寒天とを加えて平板培地としたものにまき、ハロ
ーを形成した菌株を採取する。菌数は1.3xlO5と
なり、その中から1株の目的とする菌株(蛋白凝固活性
能が最も高い菌株)が得られた。この菌株を変異株26
D=7と命名し、工業技術院微生物工業技術研究所に国
際寄託した。寄託番号は微工研条寄第1778号(FE
RM BP−1778)である。 野性株(B−6−4J)、 中間変異株(26D)お
よび変異株26D−7の胞子形成頻度及び大豆蛋白凝固
活性の比較を下記表4に示す。 (以下余白) 表4゜ び大豆 e、 B−6−4J、 26D−7の菌学的性質上
記表5に示したB−2培地を用いて、両菌株B−6−4
J、 26D−7を培養し、 rThe Genu
sBacillusJ及びrBergey’s Man
ual of Determinat。 ive Bact、eriologyJ に基づいて
、それらの菌学的性質を調べた。 (以下余白) 表5゜ 旦二二又」L墳」「威 なお、上記組成の培地をプレートにする場合は1.5%
の寒天粉末を加える。 下記表5に、B−6−4J、26D−7の菌学的性質を
示した。 (以下余白) 表6゜ 苗ご1葡1質 表6に示す菌学的性質から野生株B−6−4J及び変異
株26D−7は共にバチルス(Bacillus)属で
あると考えられ、さらにバチルス属の中では、寒天に固
く張り付いたコロニーを作ること、成育温度が高いこと
、嫌気下での成育が見られることなどから、前記両画は
バチルス・リケニホルミス(Bacillus lic
heniformis)種であると同定した。 また、こ九らの野生株B = 6−4 J、中間変異株
26D及び変異株26D−7の大豆蛋白凝固酵素生産能
及び胞子形成頻度に関しては表4に示したとおりである
。さらに、前記NTG処理の過程にて、野生株B−6−
4J及び中間変異株26Dは抗生物質としてのカナマシ
ンに感受性であるが、変異株26D−7は前記カナマイ
シンに耐性であることも確認された。 f、大豆蛋白凝固酵素の単離及び精製 2を容量のジャーファーメンタ−に1.51の培地(上
記式2の培地)を入れて殺菌を行った後、変異株26D
−7を植えて、45℃で48時間通気攪伴培養を行った
。培養液は、珪藻±(SSC)で濾過して菌体を除去し
た後、55%の飽和硫酸アンモニウムを用いて硫安分画
を行い、ゲル濾適用充填剤(ファーマシア社製5eph
adexG −100、商品名)を用いて脱塩した。 1’l Ii;X後の培養液をカルボキシメチルセルロ
ースカラム(CM−52カラム)に透し、塩化ナトリウ
ム直線濃度勾配法で経時的にフラクションを採取した。 この場合の培養液の溶出パターン(分光光度針による波
長280Iの吸光度)を第3図に破線で示すとともに、
大豆蛋白凝固酵素の凝固活性を実線で示した。 これらの各フラクションのうち、第3図に実線で示すビ
ーク■に対応する酵素とビークHに対応する酵素とに大
豆蛋白凝固活性が見られた。更に、酵素の溶出量が多か
ったビーク■を前記ゲル濾適用充填剤のカラムを用いて
、ビーク■を単一な物質に精製した。第4図にはかかる
精製物の上記した塩化ナトリウム直線濃度勾配法での溶
出パターンを示しであるが、かかる場合も、破線のよう
な溶出パターンのうちで、実線で示す部分の酵素に大豆
蛋白凝固活性能が認めら九た。 これにより、所望とする大豆蛋白凝固酵素が単離及び精
製される。 g、大豆蛋白111固酵素の性質 前記ビークI、 IIに対応する酵素(以下、単に酵
素ピークI、 IIという)の理化学的性質は、各種
実験の結果、次のとおりであることを確認した。 ■酵素ビークI、 IIは共に、豆乳に作用させると
大豆蛋白を凝固させる。 ■酵素ピークI、■は共に、苦みがなく、毒性もなく食
品加工用に適する。 ■酵素ビーク■は5DSt気泳動的に単一なバンドとな
り、分子量は30,000前後である。酵素ビーク■は
その生産量が少ないために、前記測定が不能である。 ■第5図のグラフは下記条件(1)により測定された酵
素の大豆蛋白凝固活性と温度との関係、第6図のグラ°
フは下記条件(II)により測定した酵素の熱安定性、
第7図のグラフは下記条件(III)により測定した酵
素の同凝固活性とpHとの関係、第8図のグラフは下記
条件(rV)により測定した酵素のpH安定性をそれぞ
れ示している。これらのグラフの結果から、凝固活性を
示す最適温度は酵素ピーク!では約80℃、酵素ピーク
■では約65℃であり、かつこれら両酵素共30〜40
℃の下では1時間安定である。また、これら両酵素は共
に酸性側で高い凝固活性を示し、p H> 7では凝固
活性をほとんど消失するが、4°Cの下では両酵素共に
pH4〜9ではほぼ安定であり、少なくとも70%の活
性が残存する。 条件(■):酵素ピーク■、■の各200μノを180
0μlの豆乳にそれぞれ添加するとと もにp Hを6.5に調整し、各温度での凝固活性を測
定。 条件(■):酵素ピークr、 rrを1時間各温度に
保持した後、酵素ピーク■は80℃ にて酵素ピーク■は65℃にて、か つ他の条件は条件(1)と同様にし て凝固活性を測定。 条件(■):豆乳を各p Hに調整するとともにこれら
の凝固活性測定温度を80°C1 65℃とした点を除き条件(1)と 同様にして凝固活性を測定。 条件(■):酵素ピーク!、■を各p Hに調整すると
ともに4℃で161I4J間冷蔵し、凝固活性測定温度
を80℃、65℃ とした点を除き条件(1)と同様に して凝固活性を測定。 ■表7は下記条件により測定した酵素の大豆蛋白凝固活
性に対する各化合物の影響を示しており、同表に示すよ
うに、酵素ピーク!、 ■は、共に金属イオンによる影
響が認められない。酵素ピーク■は、PMSF(フェニ
ルメチルスルフォニルフルオライド)及びTSF ()
ルエンスルフオニルフルオライド)によって100%阻
害され、酵素ピーク■はEDTA (エチレンジアミン
四#酸)によって100%阻害された。これらにより、
酵素ピーク■はセリンプロテアーゼの一種と考えられ、
酵素ピーク■は金属酵素の一種であると考えられる。 表7゜ 大豆蛋白凝固酵素に対する各化合物の影響り、酵素の有
用性 上記ピークIに対応する酵素を用いて豆乳を凝固させて
、大豆加工食品を¥A造できる。例えば、豆乳、乳糖、
油脂及び乳化剤の混合物に、乳酸菌及び前記酵素を添加
して発酵させ、該発酵物からホエー(乳しよう)を排除
してプレスすることにより離水すると、固形物が得られ
る。かかる場合、乳酸菌を添加するのは、大豆特有の臭
味を消すためである。この固形物に、水、安定剤、チー
ズ用の呈味、チーズ用フレーバ等を加えて殺菌を行うと
、乳製品としてのチーズに近いものが製造される。なお
、この場合、水及び安定剤の添加量を種々変えることに
より、ハードタイプ、クリームタイプ等のチーズが製造
される。また、前記チーズ用の呈味及びチーズ用フレー
バに変えて、他の食品に適した呈味及びフレーバを添加
すれば、チーズとは異なる大豆加工食品も製造できる。 このようにして製造された食品はコレステロールが少な
く、健康食品として優れている。また、原料としての大
豆は豊富にあり、安価に乳製品と類似した大豆加工食品
を提供できる。
リス・リケニホルミスB−6−4J (野生株)の中間
変異株を経て取得した変異株であり、これらの菌株につ
いて分離、m製、培養、突然変異の発生、有用性等の実
験を行うとともに、それらの特性を測定した。 a、大豆蛋白凝固酵素生産菌のスクリーニング(al)
分離源 静岡県三島市にある国立遺伝学研究所内及び箱根の山の
ふもとの植物、土壌及び豚、牛等家畜の排せつ物から試
料を広く採取した。 (al)分離方法(大豆蛋白凝固酵素)採取した各資料
(植物、土壌、排せつ物等をそれぞれ粉砕した耳かき一
杯程度の資料)を、滅菌した豆乳が各3m7ずつ分注さ
れている試験管にそれぞれ入れて、12〜16時間、3
7℃にて振とう培養する(1次スクリーニング)、これ
らの中でカードを形成している(凝固した物を含む)試
験管内の豆乳のp IIを測定し、P Hが5.5以上
の試験管内の資料について、前記と同様のスクリーニン
グを繰り返し行なった。なお、凝固した試料の中からp
H5,5未満のものを除く理由は、酸によりカード形成
された資料を除外するためである。 目的とする微生物の純化のために豆乳によるスクリーニ
ングを5次まで行った。かかる5次までのスクリーニン
グにより、豆乳凝固能を有する微生物を、カード形成し
た豆乳から滅菌した豆乳へ植え継ぎできることが確認さ
れた。その結果、■前記スクリーニングした資料中に、
大豆蛋白凝固能を有する微生物が存在すること、■この
微生物が豆乳の中で繁殖していることが確認できた。 その後、5次スクリーニングにより得た微生物を、下記
表1に示す組成でpH6,0に調製された増殖培地で、
12〜16時間、37℃にて振どう培養することによ
り、植え継いだ。 1 硫酸アンモニウム 0.1%リン酸塩
1.0%硫酸マグネシウム
0.01%クエン酸ナトリウム 0
.05%カザミノ酸 0.02%酵
母エキス 0.1%グルコース
0.5%b、大豆蛋白凝固酵素生産
菌の純化 5次スクリーニングを行ったサンプルから平板希釈法に
より、大豆蛋白凝固能が最も高い菌株を単一菌株として
得た。この菌株をrB−6−4JJと命名し、同菌株を
工業技術院微生物工業技術研究所に寄託した。寄託番号
は徹工研菌寄8626号(FERM P−8626)
である。この菌株は竹の葉および竹の根に集中して分布
していた。 次に、得られた菌株(B−6−4J)において、大豆蛋
白凝固能を有する物質が菌体内あるいは菌体外に存在す
るのかを確認した。まず、この菌株を上記表2に示す組
成でpH6,0に調製された生産培地で、 24時間、
37℃にて振とう培養した。 硫酸アンモニウム リン酸二水素カリウム 硫酸マグネシウム クエン酸ナトリウム カザミノ酸 酵母エキス グルコース 11.1%の塩化カルシウム溶液 地 0.1% 1.0% 0.01% 0.05% 0.02% 0.1% 0.5% 0.01% 豆乳(大豆蛋白濃度10%) 5% このようにして培養したものを、0℃、6000 rp
mで10分間遠心分離を行い、上澄液と菌体とに分離し
てそれぞれの活性を調べた。上澄液に関しては、該上澄
液を平均細孔径0.22μmのフィルタを通すことによ
って除菌し、同波に含まれるものの豆乳凝固活性を調べ
た。また、菌体に関しては、該菌体を乳ばちにおいて石
英砂と共によく磨砕し、そこにpH7,0のリン酸緩衝
液を加えて、上記と同様に0.22μmのフィルタを通
して得た菌体抽出液に含まれるものの豆乳凝固活性を調
べた。 なお、かかる場合に、 リン酸緩衝液を入れるのは、菌
体の粉砕によって変化したpHを元に戻して酸による豆
乳凝固の影響をなくすためであり、また。 フィルタを通すのは、不要な成分を除去するためである
。 その結果、上澄液には豆乳を凝固させる活性能が存在し
、菌体抽出液には豆乳を凝固させる活性は全く存在して
いないことが確認できた。 さらに、前記上澄液を80℃で30分間加熱して、該加
熱した上澄液に豆乳凝固活性能が存在するかを調べた結
果、前記活性能がなくなることから、加熱によって豆乳
凝固活性能が消失することが確認された。 これらの実験により、豆乳凝固活性能を有する物質は無
機物ではなく、前記微生物が生産する菌体外酵素である
ことを確認できた。 C0酵素生産性を増加させる培養条件の検討(cl)こ
の菌株(B−6−4J)を各種条件で培養を行うことに
より、大豆蛋白凝固酵素生産能を増加させる培養条件の
検討を行なった。かかる場合、基本的培地として、上記
表2の組成のものを用いた。なお、この培地組成は、資
化しうる(菌株が栄養素として培地に接種できるととも
に、その培地で増殖できる)炭素源、窒素源、栄養源等
を含有するものであり、かつ大豆蛋白凝固酵素を分泌す
るものであれば、いかなる培地でもかまわない。 前記実験の結果、大豆蛋白凝固酵素の生産を増加させる
菌株の培養条件に関し、次のことを知得した。なお、説
明の便宜上、上記表2の組成を有する培地を例に取り説
明する。 ■無機塩((Nl14hsOa、 KI12PO4,
Mg5Oa・7+120)、クエン酸ナトリウム、グル
コース、酵母エキス及びカザミノ酸は、菌体を増殖させ
るものであって、大豆蛋白凝固酵素の生産性を高める上
ではあまり関係ない。換言すれば、これらの化合物は大
豆蛋白凝固活性能を引き出す上ではあまり関係ない。 ■豆乳(蛋白質濃度=10%)を添加するかしないかは
、大豆蛋白凝固酵素生産能を引き出すことに大きく影響
する。第1図は表2に示す生産培地への豆乳添加量と大
豆蛋白凝固活性との関係を示すもので、温度45℃で2
4時間振とう培養シた場合の結果であり、凝固活性は後
述する定義に基づいて算出した。第1図によれば、豆乳
(大豆蛋白10%)を培地に2.5〜7.5%程度添加
すると、菌体の大豆蛋白凝固活性能を有効に引き出せる
こと、及び豆乳を培地に5%程度添加すると、菌体の大
豆蛋白凝固活性能を最も有効に引き出せることが解る。 また、この場合、豆乳がこの菌株に対して大豆蛋白凝
固酵素の生産能を高めるインデューサとして働いている
ものと考えられる。 ■第2図は45℃、pI(6,0で振とう培養した場合
の培養時間に対する菌数(colony formiB
unit/+j)及び大豆蛋白凝固活性の関係を示して
いる。この結果によれば、培養時間は20時間以上必要
であり、50時間までは前記凝固活性が残っていること
が解る。また、上記培養条件において最適時間で温度を
変化させ、かつ最適時間および最適温度でp Hを変化
させて振とう培養を行った結果、培養温度は45℃前後
が適当であり、かつ培養地のp Hは6〜7で安定であ
った。 (C2)大豆蛋白凝固活性SCAの定義豆乳(蛋白質濃
度:10%)に培養液を加え65℃でカードを形成する
基準時間を1時間とし、下記式にて算出する。 S CA = Soymilk Clotting
Activity(unit)= (S/E)x (
3600/l) S:基質(豆乳)のffi(m)) E:培養液を遠心し菌体を取り除いた上澄液の量(m)
) を二 カードの生じる時間(秒) d1分泌酵素量を増大させるための菌体の改良(突然変
異株の取得) 前記菌株(B−6−4J)の菌体外酵素の分泌量を増大
させるために、以下の方法で突然変異株を取得した。な
お、この菌株を、表3に示す市販の栄養増殖培地により
45℃、pH6,0で振とう培養した後、菌体だけを遠
心分離により採取し、採取した菌体を長く生存させるた
め壜こ、同菌体にリン酸緩衝液を入れることにより懸濁
して以下の実験に供した。 3゜ Antibiotic 肉エキス 酵母エキス ペプトン デキストローゼ 塩化ナトリウム リン酸水素二カリウム リン酸二水素カリウム 地 1 2(デイフコ社製商品名) 0615% 0.15% 0.5% 0.1% 0.35% 0.388% 0.132% Mediu園 (dl)紫外線(UV)処理 上記の処理で得られた懸濁状態にある菌体を100倍に
希釈して、表3の組成を培地とする栄養増殖平板プレー
トに塗抹し、紫外線を種々条件を変えて照射した。かか
る照射後、前記プレート上で37℃、1昼夜培養した。 該培養後、胞子形成能が低い変異株を取り出したところ
、9株の変異株が得られた。この得られた変異株の大豆
蛋白凝固活性能を調べたが、この中には大豆蛋白凝固活
性能を持つ菌株は見い出されなかった。 (d2)γ線照射処理 上記100倍に希釈したものと同じ菌株にγ線を20に
レントゲン照射後、菌体を表3の組成を培地とする栄養
増殖平板プレートにまき、45℃で3日間培養した。プ
レート上に増殖した菌株より、胞子形成能が低い株を捜
したが、一つも見い出されなかった。また、大豆蛋白凝
固活性能を有する菌株も見い出されなかった。 (d3)ニトロソグアニジン(NTG)処理NTG5m
zをリン酸II!IWJ液4.5dに溶解し、この溶液
の中に前記100倍に希釈した菌体液を0.5mt添加
して、 37℃で60分捏上うさせた。次に、この菌体
をリン酸緩衝液で3回洗浄を行なった後上記した栄養増
殖平板プレートにまき、45℃で1昼夜培養した。その
結果、胞子形成能が低いと思われる菌株は22株得られ
た。 この22株のうち、大豆蛋白凝固活性能を有する菌株が
3株見い出された。この中で、最も凝固活性が高いもの
を中間変異株26Dとし、以後の実験に供した。 この中間変異株26Dの野生株B−6−4Jに対する性
質を以下に記す。 ■胞子形成頻度 野性株B−6−4Jの1/1000 〜1/10000倍 ■大豆蛋白凝固活性の比較 野性株の約2倍 これらの性質は、野性株B−4−6Jを培養するときよ
り、エアレーション(通気量)が低い培養条件時に観察
される。なお、他の培養条件は上記(cl)で述べた菌
株B−6,−4Jの場合と同様である。また、胞子形成
頻度は下記の方法により菌株を処理し、測定して算出し
た。 a:菌株のコロニーを1つ1つプレートに移す。 この同じプレートを2枚作る。 b:底部にクロロホルムを1満々下したシャーレの
蓋に上記プレートの1枚を被せるとともに、他のプレー
トをクロロホルムの滴下してないシャーレの蓋に被せ(
コントロール)、これらのプレート上の菌株を45℃、
16時間培養する。胞子形成能が弱い菌株、胞子形成の
少ない菌株はクロロホルムの影響で生えない。 C:生えていない菌株(クロロホルム側)に対応するコ
ントロール側の菌株の凝固活性を調べ凝固活性を持つ菌
株を表3に示す栄養増殖培地で増殖する。 d:菌体を80℃で15分間熱処理し、熱処理前後の菌
数を測定して下記式により胞子形成頻度を算出する。 胞子形成頻度=(熱処理後の菌数)/ (熱処理前の菌数) 増殖した菌体が100%胞子を形成している場合胞子形
成頻度は1となる。 (d4)中間変異株26DのNTG処理中間変異株26
Dから、さらに変異株を取得するために次のような処理
を行なった。 ■中間変異株26Dを表3に示す栄養増殖培地3m[中
で、45℃にて1晩培養する。 ■前記■の培養液0.1mJ2を上記栄養増殖培地3m
g中に添加し、45℃で対数増殖期(ログフェーズ)ま
で振とう培養する。なお、対数増殖期まで培養する理由
は、該増殖期における菌株が最も突然変異する傾向が強
いためである。 ■前記■の培養液を0.5n+/ずつ5つの試験管に分
注し、それぞれにll1g/afのNTGを0.0.
2.5. 5.0゜10.0. 25.0μlずつ入れ
る。これにより、各試験管内のNTGm度は、それぞれ
0. 5. 10. 20.50μg/mノとなる。 ■前記■の各試験管を45℃で30分分間上うする。 ■前記■の処理後、各試験管内の菌体を1+neの上記
栄養増殖培地で3回ずつ洗浄する。 ■前記■の処理後、菌体にそれぞれ0.5mlの上記栄
養増殖培地を添加してJl!TI濁する。 ■前記■の懸濁液の、各30μノを3Illlの上記栄
養増殖培地に加えて、45℃で1晩振とう培養する。 前記■の処理後、各培養液を一80℃に保存して以後の
実験に供する。 次に、細菌は通常カナマイシン(抗生物′Ii”)に対
して感受性であるが(今回得た中間突然変異株26Dも
カナマイシンに対して感受性である)、突然変異によっ
て得られた細菌はカナマイシンに対して耐性となる場合
があることに鑑み、前記保存しである菌株を0.2μg
ノIII/!のカナマイシンを含む栄養増殖平板プレー
トにまき、ミューチージョン頻度の高いNTG1度群を
選別した。その結果、NTG21度が20Pg/mノで
ある場合に、 ミューテーシ目ン頻度が最も高く、その
頻度は3.52x 10−3であった。NTG濃度20
μg/mlの群を、上記表1の培地にプロテアーゼ活性
測定試薬(シグマ製のハイドパウダー 商品名)0.5
%と、寒天とを加えて平板培地としたものにまき、ハロ
ーを形成した菌株を採取する。菌数は1.3xlO5と
なり、その中から1株の目的とする菌株(蛋白凝固活性
能が最も高い菌株)が得られた。この菌株を変異株26
D=7と命名し、工業技術院微生物工業技術研究所に国
際寄託した。寄託番号は微工研条寄第1778号(FE
RM BP−1778)である。 野性株(B−6−4J)、 中間変異株(26D)お
よび変異株26D−7の胞子形成頻度及び大豆蛋白凝固
活性の比較を下記表4に示す。 (以下余白) 表4゜ び大豆 e、 B−6−4J、 26D−7の菌学的性質上
記表5に示したB−2培地を用いて、両菌株B−6−4
J、 26D−7を培養し、 rThe Genu
sBacillusJ及びrBergey’s Man
ual of Determinat。 ive Bact、eriologyJ に基づいて
、それらの菌学的性質を調べた。 (以下余白) 表5゜ 旦二二又」L墳」「威 なお、上記組成の培地をプレートにする場合は1.5%
の寒天粉末を加える。 下記表5に、B−6−4J、26D−7の菌学的性質を
示した。 (以下余白) 表6゜ 苗ご1葡1質 表6に示す菌学的性質から野生株B−6−4J及び変異
株26D−7は共にバチルス(Bacillus)属で
あると考えられ、さらにバチルス属の中では、寒天に固
く張り付いたコロニーを作ること、成育温度が高いこと
、嫌気下での成育が見られることなどから、前記両画は
バチルス・リケニホルミス(Bacillus lic
heniformis)種であると同定した。 また、こ九らの野生株B = 6−4 J、中間変異株
26D及び変異株26D−7の大豆蛋白凝固酵素生産能
及び胞子形成頻度に関しては表4に示したとおりである
。さらに、前記NTG処理の過程にて、野生株B−6−
4J及び中間変異株26Dは抗生物質としてのカナマシ
ンに感受性であるが、変異株26D−7は前記カナマイ
シンに耐性であることも確認された。 f、大豆蛋白凝固酵素の単離及び精製 2を容量のジャーファーメンタ−に1.51の培地(上
記式2の培地)を入れて殺菌を行った後、変異株26D
−7を植えて、45℃で48時間通気攪伴培養を行った
。培養液は、珪藻±(SSC)で濾過して菌体を除去し
た後、55%の飽和硫酸アンモニウムを用いて硫安分画
を行い、ゲル濾適用充填剤(ファーマシア社製5eph
adexG −100、商品名)を用いて脱塩した。 1’l Ii;X後の培養液をカルボキシメチルセルロ
ースカラム(CM−52カラム)に透し、塩化ナトリウ
ム直線濃度勾配法で経時的にフラクションを採取した。 この場合の培養液の溶出パターン(分光光度針による波
長280Iの吸光度)を第3図に破線で示すとともに、
大豆蛋白凝固酵素の凝固活性を実線で示した。 これらの各フラクションのうち、第3図に実線で示すビ
ーク■に対応する酵素とビークHに対応する酵素とに大
豆蛋白凝固活性が見られた。更に、酵素の溶出量が多か
ったビーク■を前記ゲル濾適用充填剤のカラムを用いて
、ビーク■を単一な物質に精製した。第4図にはかかる
精製物の上記した塩化ナトリウム直線濃度勾配法での溶
出パターンを示しであるが、かかる場合も、破線のよう
な溶出パターンのうちで、実線で示す部分の酵素に大豆
蛋白凝固活性能が認めら九た。 これにより、所望とする大豆蛋白凝固酵素が単離及び精
製される。 g、大豆蛋白111固酵素の性質 前記ビークI、 IIに対応する酵素(以下、単に酵
素ピークI、 IIという)の理化学的性質は、各種
実験の結果、次のとおりであることを確認した。 ■酵素ビークI、 IIは共に、豆乳に作用させると
大豆蛋白を凝固させる。 ■酵素ピークI、■は共に、苦みがなく、毒性もなく食
品加工用に適する。 ■酵素ビーク■は5DSt気泳動的に単一なバンドとな
り、分子量は30,000前後である。酵素ビーク■は
その生産量が少ないために、前記測定が不能である。 ■第5図のグラフは下記条件(1)により測定された酵
素の大豆蛋白凝固活性と温度との関係、第6図のグラ°
フは下記条件(II)により測定した酵素の熱安定性、
第7図のグラフは下記条件(III)により測定した酵
素の同凝固活性とpHとの関係、第8図のグラフは下記
条件(rV)により測定した酵素のpH安定性をそれぞ
れ示している。これらのグラフの結果から、凝固活性を
示す最適温度は酵素ピーク!では約80℃、酵素ピーク
■では約65℃であり、かつこれら両酵素共30〜40
℃の下では1時間安定である。また、これら両酵素は共
に酸性側で高い凝固活性を示し、p H> 7では凝固
活性をほとんど消失するが、4°Cの下では両酵素共に
pH4〜9ではほぼ安定であり、少なくとも70%の活
性が残存する。 条件(■):酵素ピーク■、■の各200μノを180
0μlの豆乳にそれぞれ添加するとと もにp Hを6.5に調整し、各温度での凝固活性を測
定。 条件(■):酵素ピークr、 rrを1時間各温度に
保持した後、酵素ピーク■は80℃ にて酵素ピーク■は65℃にて、か つ他の条件は条件(1)と同様にし て凝固活性を測定。 条件(■):豆乳を各p Hに調整するとともにこれら
の凝固活性測定温度を80°C1 65℃とした点を除き条件(1)と 同様にして凝固活性を測定。 条件(■):酵素ピーク!、■を各p Hに調整すると
ともに4℃で161I4J間冷蔵し、凝固活性測定温度
を80℃、65℃ とした点を除き条件(1)と同様に して凝固活性を測定。 ■表7は下記条件により測定した酵素の大豆蛋白凝固活
性に対する各化合物の影響を示しており、同表に示すよ
うに、酵素ピーク!、 ■は、共に金属イオンによる影
響が認められない。酵素ピーク■は、PMSF(フェニ
ルメチルスルフォニルフルオライド)及びTSF ()
ルエンスルフオニルフルオライド)によって100%阻
害され、酵素ピーク■はEDTA (エチレンジアミン
四#酸)によって100%阻害された。これらにより、
酵素ピーク■はセリンプロテアーゼの一種と考えられ、
酵素ピーク■は金属酵素の一種であると考えられる。 表7゜ 大豆蛋白凝固酵素に対する各化合物の影響り、酵素の有
用性 上記ピークIに対応する酵素を用いて豆乳を凝固させて
、大豆加工食品を¥A造できる。例えば、豆乳、乳糖、
油脂及び乳化剤の混合物に、乳酸菌及び前記酵素を添加
して発酵させ、該発酵物からホエー(乳しよう)を排除
してプレスすることにより離水すると、固形物が得られ
る。かかる場合、乳酸菌を添加するのは、大豆特有の臭
味を消すためである。この固形物に、水、安定剤、チー
ズ用の呈味、チーズ用フレーバ等を加えて殺菌を行うと
、乳製品としてのチーズに近いものが製造される。なお
、この場合、水及び安定剤の添加量を種々変えることに
より、ハードタイプ、クリームタイプ等のチーズが製造
される。また、前記チーズ用の呈味及びチーズ用フレー
バに変えて、他の食品に適した呈味及びフレーバを添加
すれば、チーズとは異なる大豆加工食品も製造できる。 このようにして製造された食品はコレステロールが少な
く、健康食品として優れている。また、原料としての大
豆は豊富にあり、安価に乳製品と類似した大豆加工食品
を提供できる。
第1図はバチルス・ケニホルミスの野生株が生産する酵
素の大豆蛋白凝固活性と豆乳添加量の関係を示すグラフ
、第2図は培養時間と菌数及び同凝固活性の関係を示す
グラフ、第3図は本発明に係るバチルス・リケニホルミ
スが生産する酵素の溶出パターン図、第4図は第3図の
ピークIに対応する酵素の再溶出パターン図、第5図は
第3図のピークI、 IIに対応する酵素の大豆蛋白
凝固活性と温度の関係を示すグラフ、第6図は同酵素の
温度に対する安定性を示すグラフ、第7図は同酵素の同
凝固活性とPHの関係を示すグラフ、第8図は同酵素の
p Hに対する安定性を示すグラフである。
素の大豆蛋白凝固活性と豆乳添加量の関係を示すグラフ
、第2図は培養時間と菌数及び同凝固活性の関係を示す
グラフ、第3図は本発明に係るバチルス・リケニホルミ
スが生産する酵素の溶出パターン図、第4図は第3図の
ピークIに対応する酵素の再溶出パターン図、第5図は
第3図のピークI、 IIに対応する酵素の大豆蛋白
凝固活性と温度の関係を示すグラフ、第6図は同酵素の
温度に対する安定性を示すグラフ、第7図は同酵素の同
凝固活性とPHの関係を示すグラフ、第8図は同酵素の
p Hに対する安定性を示すグラフである。
Claims (2)
- (1)胞子形成能が低くかつ大豆蛋白凝固酵素の生産能
が高いバチルス・リケニホルミス。 - (2)大豆蛋白凝固酵素の生産能が高いバチルス・リケ
ニホルミス微工研条寄第1778号。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP25161089A JPH03112483A (ja) | 1989-09-27 | 1989-09-27 | バチルス・リケニホルミス |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP25161089A JPH03112483A (ja) | 1989-09-27 | 1989-09-27 | バチルス・リケニホルミス |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH03112483A true JPH03112483A (ja) | 1991-05-14 |
Family
ID=17225379
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP25161089A Pending JPH03112483A (ja) | 1989-09-27 | 1989-09-27 | バチルス・リケニホルミス |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH03112483A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH077048U (ja) * | 1993-06-28 | 1995-01-31 | コーア株式会社 | 回路遮断用素子 |
| JPH077047U (ja) * | 1993-06-28 | 1995-01-31 | コーア株式会社 | 回路遮断用素子 |
-
1989
- 1989-09-27 JP JP25161089A patent/JPH03112483A/ja active Pending
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH077048U (ja) * | 1993-06-28 | 1995-01-31 | コーア株式会社 | 回路遮断用素子 |
| JPH077047U (ja) * | 1993-06-28 | 1995-01-31 | コーア株式会社 | 回路遮断用素子 |
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