JPH03135998A - ムラミルジペプチド誘導体 - Google Patents
ムラミルジペプチド誘導体Info
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- JPH03135998A JPH03135998A JP2172513A JP17251390A JPH03135998A JP H03135998 A JPH03135998 A JP H03135998A JP 2172513 A JP2172513 A JP 2172513A JP 17251390 A JP17251390 A JP 17251390A JP H03135998 A JPH03135998 A JP H03135998A
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Abstract
め要約のデータは記録されません。
Description
的に「C*」と称ず)は、RまたはS立体配置を有する
J また本発明化合物は、L−トレオニル−MDP−GDP
およびL−アロトレオニル−MDP−GDPとも呼ばれ
得る。
してヒドロキシ−保護基である] の対応する化合物の脱保護を含む、式(1)で示される
化合物の製造方法を含む。
により行なわれ得る。出発物質は、α−またはβ−グリ
コシYアノマーまたはその混合物であり得る。脱保護は
1つまたは幾つかの反応段階により行なわれ得る。式(
1)で示される化合物で示される3−0−[N−アセチ
ルムラミル−D−イソグルタミニル]−1,2−ジー0
−バルミトイル−5n−グリセリン誘導体の形態に関す
るムのである。以後、この誘導体を簡略的に「本発明化
合物」と称す。
はL−)レオニルである。S立体配置を有する場合、そ
れはL−アロトレオニルである。
しい。上式から明らかなように、この化合物は2種のア
ノマー形態を有する。
VAREP165123により公知である。その中の4
頁に記載された式は、本発明化合物を包含している。し
かしながら、本発明化合物については、上記文献におい
て具体的な開示も示唆も為されていない。本発明化合物
は、上記文献に記載された化合物よりも非常に有益な特
性を有する。
好ましくはパラジウム炭素触媒中水素により還元的に行
なわれ得る。水素化を被りやすい任意の慣用的ヒドロキ
シ保護基、例えばベンジルオキシカルボニルまたはベン
ジルが使用され得る。R1およびR2はまた、−緒にな
って共通の保護基、例えばベンジリデンを形成し得る。
条件下での脱保護に好ましい保護基は、t−ブトキシカ
ルボニル(BOC)である。
製造され得る。
−(ジメチルアミノ)ホスホニウム・ヘキサフルオロホ
スフェート基であり、 BOCは、t−ブトキシカルボニルである。
oは、好ましくはベンジルオキシカルボニルである。X
は、好ましくは−oc(=o)−。
)*である。
氏である。使用されている省略形は次の意味を有する。
ソグルタミン。
−イソグルタミニル]−1.2−ジー〇−バルミトイル
−5n−グリセリン。
−0−ベンジリデン−N−アセチルムラミル−〇−ベン
ジルーし一トレオニルーD−イソグルタミニル]−1,
2−ジー0−バルミトイル−Sローグリセリンを、20
1112の100%酢酸に溶かし、あらかじめ水素化し
た触媒[;00%酢酸20xj中、901910%Pd
/C,15ty塩化パラジウム(PdCL)、水素によ
り45分間水素化]と反応させる。混合物を水素気流下
で2時間位はんし、触媒をろ過し、溶液を濃縮し、トル
エンにより3回前発乾固する。溶離剤としてジクロロメ
タン/メタノール/ジイソプロピルエーテル(4:1:
1)を用いて、残留物をシリカゲル・クロマトグラフィ
ーにかける。生成物を、溶離剤としてジクロロメタン/
メタノール(1:1)を用いたセファデックスLH−2
0によるクロマトグラフィーにかける。
物(両アノマーの混合物)が得られる。
.22(d、J=7,3H)、1.25(s、48H)
、1゜41(d、J=7,3H)、1.64(a+、4
H)、2.00(−13H)、2.22(m、IH)、
2゜34(s、4H)、 2.48(m、2H)、 3
.40−3.98(s、6H)、4.12−4.60(
m、8H)、5.20(d、J=3.IH)、5.2
6(濡、IH)。
ルホルムアミド/テトラヒドロフラン(1:l)から成
る混合物6mQに溶かし、暗所で1.469のペンゾト
リアゾール−1−イルオキシトリス−(ジメチルアミノ
)ホスホニウム・ヘキサフルオロホスフェートおよび3
65μaのN−メチルモルホリンと反応させる。30分
後、1.149の1.2−ジパルミトイル−5n−グリ
セリンおよび270R9のイミダゾールを加え、反応混
合物をさらに暗所で4日間撹はんする。溶媒混合物を濃
縮後、残留物を、溶離剤としてジクロロメタン/メタノ
ール(201)を用いたシリカゲル・クロマトグラフィ
ーにかける。3−0−[ベンジルオキシカルボニル−D
−イソグルタミニル]−1,2−ジー0−バルミトイル
−5n−グリセリンが得られろ。
8(s、48H)、1.62(m、4 H)、1.95
(m。
H)、2.46(m、2H)、4.25(m、5H)、
5.12(s、2H)、5.27(a、IH)、7.3
5(s、51()。
12の100%酢酸に溶かし、40a+gPd/CI
0%と反応させる。水素雰囲気下で撹はんを2時間続行
し、触媒をろ過し、残留物をトルエンで3回濃縮乾固す
る。60μQのN−メチルモルポリン(=溶液A)を加
えながら残留物をBy(lのジクロロメタンに溶かす。
を、233μeのN−メチルモルホリンおよび73μQ
のクロロ蟻酸イソブチルエステルと一緒に8jII2の
ジクロロメタンに溶かし、混合物を室温で45分間撹は
んする(=溶液B)。
物を室温で18時間撹はんし、溶媒を濃縮し、溶離剤と
してジクロロメタン/メタノール(100:l−100
:3)を用いたシリカゲル・クロマトグラフィーにより
精製する。3−0−[Lブトキシカルボニル−O−ベン
ジル−17−トレオニルー〇−イソグルタミニル]−1
,2−ジーO−バルミトイルー5n−グリセリンが得ら
れる。
6(s、48H)、1.47(s、9H)、1.60(
IIl。
m、7H)、4.10−4.34(m、6H)、4.4
5(a+、2H)、4.60(d、2H)、 5.1
5(m、IH)、 5.2 3(m、 l H)
、5.40(m、IH)、6.35(IIl、 I H
)、7゜13((目I)、7 、30 (m、 5 L
l)。
゜で20mQのトリフルオロ酢酸と反応させ、混合物を
30分間撹はんする。溶液を濃縮し、トルエンにより2
回蒸発乾固する。残留物を1Oy12のジクロロメタン
および65μQのN−メチルモルホリンと反応させる(
−溶液A)。
−N−アセチルムラミン酸を、259μQのN−メチル
モルホリンおよび81μaのクロロ蟻酸イソブチルエス
テルと一緒にIO*(!のジクロロメタンに溶かし、混
合物を室温で35分間撹はんする(=溶液B)。
間放置する。溶媒濃縮後、溶離剤としてジクロロメタン
/メタノール(100:1−10:l)を用いて、残留
物をシリカゲル・クロマトグラフィーにかける。3−0
−[1−α−0−ベンジル−4,6−0−ベンジリデン
−N−アセチルムラミル−〇−ベンジルーL−トレオニ
ルーD−イソグルタミニル]−1,2−ジー0−バルミ
トイル−5n−グリセリンが得られる。
2(d、J=7,3I−1)、1.37(d、、I=7
,311)、 1 .6 0(m、4 H)、 1
.98(s、3tl)、2.0 2(m、 I H
)、 2.3 0(m、4 H)、 2 。
4H)、4.06−4.46(a、10H)、4゜90
(d、J=4.lH)、5.25(+n、IH)、5.
60(s、 I H)、6.78(d、IH)、7゜1
0(d、IH)、7.40(a、l0H)、7゜60(
d、IH)。
ー〇−イソグルタミニル]−1,2−ジ−O−バルミト
イル−5n−グリセリン。
出発して実施例iと似た方法で得られる。
5(s、48H)、1.40(d、J=7,3H)、!
。
+e、IH)、2.35(m、4H)、2゜48(m、
2 H)、3.40−3.98(Il、6l−1)、
4.10−4.60(層、8H)、5.23(d。
、次の要領で得られる。
ルタミニル]−1,2−ジー0−バルミトイル−5n−
グリセリンは、実施例1a)段階記載の方法と同様にし
て製造される。
ヂルジメヂルシリルーし一アロトレオニルー〇−イソグ
ルタミニル]−1,2−ジー0−バルミトイル−5n−
グリセリンは、BOC−Thr(Bzl)−OHの代わ
りにBzl−アoThr(tBDMS)−OHを用いる
ことにより、実施例1b)段階記載の方法と同様にして
製造される。
3)[)、 0.93(s、1 5H)、 1.1
6(d、J=7.3H)、1.25(a+、48H)、
1.67(+++、4H)、1.90(m、IH)、2
.07(m。
)、4.03−4.40(s、7H)、5.08(s、
2H)、 5.13(諷、I H)、 7.30(m、
5H)、7.46(d、IH)。
ベンジリデン−N−アセチルムラミル−〇−t−ブチル
ジメチルシリル−し一アロトレオニルー〇−イソグルタ
ミニル]−1,2−ジー0−バルミトイル−5n−グリ
セリンは、実施例1c)段階と同様にして製造される。
(s、3 夏り、 0.88(s、15H)、
1.17(d、J=7.3H)、1.25(m、48H
)、1.37(d、J=、3H)、1.64(s、4H
)、1゜95(s、IH)、1.97(s、31()、
2.13 (m、 I H)、 2.34(s
、4H)、 2.46(s+、 2 H)、3.65
(l4H)、3.98−4.40(m、l0H)、4.
66(dd、J=13.40.IH)、5.15(d、
J=3.IH)、5.25(m、IH)、5.60(s
、 l l−1)、7.25−7.53(鵬、10)1
)、 8.23(d、 l I−1)。
薬としての使用に適している。
された。この活性は、下記でさらに詳しく説明されてい
る様々な試験方法を用いて立証され得る。
ミン。
リンペット・ヘモシアニン。
ターロイキン−1β)。
−アラニルーD−イソグルタミニル]−!。
AREP165123における実施例1の化合物)。
−GDr’と比べて副作用がかなり少ないという特徴を
有することが見出された。従って、それは耐容性が優れ
ている。この特に有益な特性は、例えば下記の検定にお
いて証明され得る。
記載されているものである。得られた結果は次の通りで
ある(第1表)。
A 1000 5000B
20 50MDP−GDP
10 202)LPSとの毒性相乗作
用。
−GDPまたは物質Aを下記に示す用量で静脈内投与す
る(第1表−2)。
μ2A (300μf) + LP825μ
9全マウスに、25μ9のニス・ 718 17/18 3/18 エンテリディス(S 、enteridia)L P S (静脈内)を単独
またはMDP−GDPまたは物質Aと一緒に与えた。結
果は、6マウス/群を用いた3回の同一検定で得られた
ものである。
乗作用、第1表および第1表−2)は、MDP−GDP
との比較におけろ副作用の著しい改善を示す。
γによる前活性化は行わC)およびヒトp s I、に
おけるTNF−誘導。
ュノロジーJ(J、 lsmunol、)136(19
86)2935−2940において詳述されている。L
929細胞に対する溶菌活性からTNF活性を測定する
。結果を第2表に要約する。これらの結果は、本発明化
合物のAおよびB両形態が、TNPの非常に弱い誘発剤
であるため、基準化合物よりも著しく低い内奏性潜在能
力を有することを示す。これらの結果はまた、フィニル
により分離された末梢ヒトまたはウサギ単核血液細胞を
用いることにより物質Aに関して得られた結果と一致す
る(第3および4表)。
酎) INF−γ無 INF−γ(10010)A
l <5 1O<5 B l <5 10〈5 MDP−GDP 1 < 5IO<5 LPS O,01377 く5 5 9 0 05 76 2.245 abort、equi) 0.001 7 ! 9 溶媒単独 −<5〈5 第3表 ウサギ末梢単核血液細胞におけるTNF誘導(I NF
−γによる前活性化は行わず)MDP−GDP LPS MDP−GDP LPS 溶媒単独 −000 成長培地単独−000 溶媒単独 −<8 <8 14 20培地単独
−<8 <8 27 26第4表 末梢ひと単核血液細胞におけるTNF’誘導’l’ N
F (py/ 11り) 物質 濃度 第1実験 第2実験b)IL−1
の誘導: ゲリー等、「ジャーナル・オブ・エクスペリメンタル・
メディシンJCJ、 Exp、 Med、)、136(
f972)128−142頁およびオッペンハイム等、
[セルラー・イミュノロジーJ(Cellular I
mmunol、)50(1980)71−81頁の方法
に従い、IL−1βまたはLAFの活性を検定した。結
果(第5表)は、溶媒単独と比べた場合、50tt9/
ItQの最高濃度でのみ増殖が顕著に増加していること
を示す。
446 361 10 1014 1267 50 2338 2701 1 691 391 10 1220 380 50 4.191 110610 58
09 3096 エキ 1 成長培地単独− 上清単独 溶媒単独 10% 329 326 27 374 513 1546 1645 C)腫よう細111(P Q l f)にλ・1するマ
クロファージ毒性(マウスP!毫C)の誘導: マウスに対し、15m+2の2.9%チオグリコレート
・ブイヨン(メルクーダルムスタブト、西ドイツ)の腹
腔的投与により何処理を行う。4日後、マクロファージ
を腹腔内へしん出させ、洗浄により採取する。これらの
誘導され、付着したマウス・マクロファージを腫よう細
胞、LPSまたは免疫刺激物質と共培養すると、それら
はマクロファージを活性化し得、腫よう細胞の溶菌また
は成長阻害が行なわれる。さらに、IFN−γを加える
と、この活性化は促進され得る。培捉の24時間後に生
存している細胞の数を、[3H]−チミジン取り込みの
測定により測定する。陰性対照およびLPS陽性対照と
比較すると、所定濃度の試験物質に対する溶菌または細
胞毒性活性の尺度が%で得られる(第6表)。
けるLAF活性の誘導(胸腺細胞検定、PHAI:50
による共刺激): この検定(「ジャーナル・オブ・エクスペリメンタル・
メディシン(J、 Ext)、 Med、) 136
r 19721128−155)では、物質AおよびB
は、MDP−GDPの場合と似た活性プロフィールを呈
する。
れたネズミを用いて、本発明化合物が有することが見出
された腫よう治療における非常に重要なさらに別の活性
は、骨髄におけろ成熟リンパ球への骨髄芽球の増殖およ
び分化の用量依存刺激性である。
骨髄細胞の増殖性応答: MDP−GDPまたは物質Aによる処理の1日後、マウ
スに5myのシクロホスファミドを腹腔内投与した。シ
クロホスファミド処理の41−111に細胞を採取し、
C5F−1を含むi、929細胞(rl、J)[スタン
レーおよびギルバート、「ジャーナル・オブ、イミュノ
ロジカル・メソッズJ(j、 la+munol。
エリダンおよびメットカーフにより[ジャーナル・オブ
・セル・フィジオロジーJ(J、 Ce1l Phys
iology)81(+ 973)I 1貫に記載され
たLPS 処理マウスの肺(「肺JGM−CSI”)
から得られた様々な希釈率の条件培地の存在下でインキ
エベーシジンした。対照と比較した3H−チミジン取り
込みによりCSFまたはGM−CSFに対する細胞の応
答を測定する。結果は、MDP−GDPとは反対に、物
質AはC8F処理に対する細胞の増殖性応答を回復させ
得ることを示す(図面参照)。
0Hg)または物質A(300Hg)により処理したマ
ウスから得られた骨髄細胞の増殖性応答。
SF1 ◆:MD、P−GDP+CSF含有し細胞、またはMD
P−GDP十肺GM−CSF。
−C8F)。
の細菌感染モデルにおいて、感染に対するマウスの抵抗
力を増強する物質Aの能力を評価した。スイス・マウス
をMDP−GDPまたは物質Aにより静脈内処理する。
Klebsiella pneumoniae)の致死
的攻撃(8x10’微生物)を与える(第7表)。
GDP 30 14/24(p
<0.01)100 19/24(p
<0.01)A 30
10/24(p<0.01)100
14/24(p<0.01)第一18目、スイス・マウ
スに化合物を静脈内経路により投与する。8X10’細
菌により同じ経路でそれらに攻撃を行う。攻撃後3週間
死亡を記録する。
DP−CDI)および物質Aは、感染に対するマウスの
非特異的抵抗性を劇的に増加させる。
増強する物質Aの能力を評価した。対照および実験用ハ
ートレイ雄モルモット(体重300g)に対し、後足に
油中水エマルジョン0 、2 xQ中119の卵アルブ
ミン(フロインド不完全アジュバント、FIA)の合計
用量を投与した。実験群については、アジュバントを0
、 l zgの用量でエマルジョンに加えた。
日自社動物に対し、食塩水中0 、 I Oの卵アルブ
ミンの皮内注射による皮膚試験を行った。6.24およ
び48時間後皮膚反応をチエツクし、結果を48時間後
における硬化の直径として表した。
自社動物から心臓穿刺により採血した。標準条件下、E
L rSAにより抗弁アルブミン抗体力価を測定した。
よびH!の両持異的応答を刺激することが示されている
。
00−(6) 37000−65000−9
5000−(41250) MDP−GDP 8−14−15−17 247
000−295000−641000−(13,5)
325000(377000)A
15−15−18−20−100000−172000
−7130000−20−25 850000
−472000−330000−(18,5)
(450000)1)結果は、48時間後における硬
化の直径として表されている。個々の測定値および相加
平均値(括弧内)が与えられている。
力価を測定した。個々の力価および平均が与えられてい
る。
対する影Ill: 物質Aを100μ9の用量でウサギに静脈内注射した。
nAまたはPHAとインキュベーションした単核細胞を
用いて、リンパ芽球変換検定を行った。3H−チミジン
取り込みの増加によりミトゲンの作用を測定し、1分当
たりのカウント数(cps)として表す。結果を第9表
に示す。
て、物質Aによるインビボ処理は、最適下限用量のミト
ゲンに対するリンパ球のインビトロ応答能力を著しく増
加させる。
PMN)の応答: 酸化応答およびカンジダ殺菌効力を古典的方法に従い評
価した。ヒトまたはモルモット血液から得られた精製P
MNを、1時間以内におけるPMAまたはカンジダ・ア
ルビカンス(C、albicarui)細胞に応じた酸
化バーストまたは18時間のカンジダ・アルビカンス(
C、albicans)の成長の測定前に物質Aの存在
下で培養した。結果(第10表)は、供給源(ヒトまた
はモルモット)とは無関係である、これらの却1胞に対
4°ろ物質への刺激作用を示す。
1時間後におけるN 13 ’L’縮小細胞のパーセン
テージとして表現。
により測定されたカンジダ・アルビカンス成長の阻害パ
ーセント。
下経路(500μy/&y)により物質Aを与えられた
モルモットにおいてエクスビボ(生体外)検定を行った
。PMAまたは−カンジダ・アルビカンス細胞を加えた
後、精製血液PMNの応答をインビトロで直接測定した
。第11表に示されている通り、18時間前にモルモッ
トを前処理した場合、続いてPMAまたはカンジダ・ア
ルビカンス細胞に暴露すると、PMNのさらに強い応答
が誘発されるが、細胞を集める3時1m前に動物を前処
理した場合、効果は無かった。
/kw)による前処理の影響食塩水 55.8
33.3 1?、2 25.6物質A 6
1.1 35.2 15 17.2(3時間
前) 物質A 84゜9 62.7 60.1
82.1(18時間前) a)30 : 1 (PMN:酵母細胞)の割合でPM
Aまたはカンジダ・アルビカンス細胞を加えた1時間後
におけるビック等、「ジャーナル・オブ・レティキエロ
エンドシーリアル・ソサエティーJ(J、 Retic
uloendothelial Soc、)30 [1
981]581によるNBT縮小細胞のパーセンテージ
として表現。
により測定されたカンジダ・アルビカンス成長の阻害パ
ーセント。
明化合物は全て、構造が類似した化合物、例えばMDP
−GDPよりも非常に有益な薬理活性を有するという結
論に達し得る。
増強を特徴とする特異的抗微生物抵抗の調節剤としての
使用に適している。
状態、特に細胞性および体液免疫応答が低下した状態お
よび遅延型の過剰刺激反応性が低下した状態の治療的処
置または支持療法(すなわち、さらに別の特異的または
支持形態の療法と一緒に行う)、並びに一般的に免疫応
答の調節が望まれる状態の処置において適応性を示す。
患者または重症の火傷らしくは全身性化した感染症の患
者において見出されるタイプの免疫不全に関連した病的
状懇の治療または支持的処置における使用に適応性を示
す。
ルペスおよび散在性水痘感染症およびホジキン病および
さらjこ別のA!Ik性旺ようの治療的または支持的処
置における使用に適応性を示す。
病気の性質および重症度、投与方法および使用される化
合物形感により異なる。大型対象の場合、適当な非経口
用量は約0 、119〜約70J+9であり、例えば支
持療法においてアジュバント効果の達成用に1回または
毎日投与される。反復投与は、好都合には1日2〜4回
または持効性形態で実施され得る。指示単位用量形部は
、反復投与の状況では約0.025m9〜約35iyお
よびアジュバント処置用に1回投与が望まれる場合には
約70R9以下の本発明化合物を含む。
から、ワクチン中のアジュバントとしての使用に適して
いる。この使用方法の場合、支持1口用量として、約0
.119〜約50zg、好ましくは約0 、5 xg〜
約1019、特に約7mgの用量を接種当日に投与する
。好都合には、同用量での2次投与をその2〜4週間後
に行う。
特異的免疫グロブリン・アイソタイプ応答を調節ずろご
とが見出された。この活性は、ハプテン特異的抗体形成
細胞(ABC)の量を測定する検定により立証される。
に対し、0.21および42日目に0 、2 m(lの
水酸化アルミニウム・ゲル中10μyBPo−KL、H
の腹腔内注射を行う。次いで、マウスを2群に分ける。
本発明化合物(物質A)を経口投与し、第2(対照)群
には食塩水を与える。46.61および70日目に動物
を殺し、それらのバイエル・プラーク、腸間膜リンパ節
およびひ臓からリンパ球を抽出する。6マウスから得ら
れた細胞をプールし、BPO−BSAにより層をなした
プラークを用いたエリスポット検定においてエクスビボ
ABCの数を測定する。
P=ひ臓、Co=対照(生理食塩水)。
ての種類の1gアイソタイプのAt(Cが腸間膜リンパ
節およびひ臓から見出され得るごとを示す。IgM−お
上びrgG−形成細胞の数は、腸間膜リンパ節よりムひ
臓細胞の方が明らかに多かったが、IgAおよびIgE
ABCについては、両器官とも概ね似た数が見出された
。上記概要に従った本発明化合物(物質A)による処理
の結果、両器官ではIgG ABC含amは増加したが
、IgG−形成ABCの数は減少していた。この効果は
一時的なものであると思われる。
一切見出され得ず、51日目には含araはまだ非常に
低かった。70日目には、対照との差異は測定され得な
かった。
能の指標である。
70日目に動物を殺すことにより、上記検定を上記と同
じ要領で反復ずろと、次の結果が得られる(第13表)
。
考慮すると、さらに本発明化合物は、I型アレルギーお
よびアトピー性皮膚炎の処置を目的とするIgG形成抑
制剤としての使用に適応性を示4゛。
/に9〜約20μ9/に9であり、好都合には、−日2
〜4回または好ましくは2日もしくはそれ以上の間隔で
持効性形態として投与される。単位用量形態は、約21
9〜約15xgを含有する。総−日用量は、約4H〜約
60R9である。
るマウスにおけるC5F−誘発検定では、MDI’−G
r)r’とは対照的に、本発明化合物は、I、 I)S
とのある程度の相乗的活性を発揮することが見出された
。
A1すなわち式(1)(ただし、C*はR立体配置を有
する)で示される化合物、すなわち3−0− [N−ア
セチルムラミル−し−トレオニルーD−イソグルタミニ
ル]−1,2−ジー0−バルミトイル−5n−グリセリ
ンか好ましい。
と一緒に本発明化合物を含有する医薬組成物もまた、こ
の発明の一部である。それらは、慣用的方法、例えば前
述の本発明化合物、すなわち式(り(ただし、C*はR
またはS立体配置を有する)で示されろ化合物を医薬的
に許容し得ろ担体または希釈剤と混合することを含む方
法に従って製造され得る。
び例えばリソホスファチジルコリン、n−オクチルグル
コースまたはデオキシコーレートとの混合ミセル形態の
ものである。それらの組成物は、慣用的方法で製造され
得、例えば注射可能溶液形態であり得る。それらもまた
この発明の一部である。
物の治療有効量を投与することを含む、上記状態の治療
的または支持的処置方法を包含する。
に免疫調節剤、抗ウィルス剤および抗アレルギー剤とし
て使用される本発明化合物を包含する。
またはLPS処理マウスの「肺」条件培地の存在下にお
ける、CYおよびMDr’−GDPまたは物質A処理マ
ウス骨髄細胞の増殖性応答を示すグラフである。
Claims (10)
- (1)式( I ) [式中、アステリスク*を付した炭素原子は、Rまたは
S立体配置を有する] で示される化合物の種々の形態。 - (2)アステリスク*を付した炭素原子がR立体配置を
有するものである、請求項1記載の化合物。 - (3)アステリスク*を付した炭素原子がS立体配置を
有するものである、請求項1記載の化合物。 - (4)式(II) ▲数式、化学式、表等があります▼ [式中、アステリスク*を付した炭素原子は請求項1記
載の意味であり、R_1〜R_4は、独立してヒドロキ
シ−保護基である] の対応する化合物を脱保護することを含む、請求項1記
載の化合物の製造方法。 - (5)水素化による脱保護を含む、請求項4記載の方法
。 - (6)式(II)において、R_1およびR_2が一緒に
なってベンジリデンを形成し、R_3がベンジルであり
、R_4がベンジルまたはt−ブチルジメチルシリルで
ある、請求項4記載の方法。 - (7)少なくとも1種の医薬的に許容し得る担体または
希釈剤と一緒に請求項1〜3のいずれか1項記載の化合
物を含有する医薬組成物。 - (8)リボソーム形態である、請求項7記載の医薬組成
物。 - (9)混合ミセル形態である、請求項7記載の医薬組成
物。 - (10)請求項1記載の化合物がワクチン中アジュバン
ト形態である、請求項7記載の医薬組成物。
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