JPH0316926B2 - - Google Patents
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- JPH0316926B2 JPH0316926B2 JP58232723A JP23272383A JPH0316926B2 JP H0316926 B2 JPH0316926 B2 JP H0316926B2 JP 58232723 A JP58232723 A JP 58232723A JP 23272383 A JP23272383 A JP 23272383A JP H0316926 B2 JPH0316926 B2 JP H0316926B2
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- reductase
- ene
- olean
- acid
- testosterone
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- Steroid Compounds (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
Description
本発明はトリテルペン化合物、殊に天然物から
単離されたトリテルペン化合物、その誘導体又は
塩を有効成分とする抗男性ホルモン剤、殊にテス
トステロン−5α−リダクダーゼ阻害剤に係る。
古来から、種々の天然物が民間薬乃至和漢薬と
して用いられてきた。しかしながら、この種の、
所謂「生薬」等は東洋医学的な色彩が濃く、その
薬効を西洋医学的な方法論により評価することは
一般に困難であるとされている。
本発明者等は、種々の天然物について成分や薬
理作用の研究を行つてきたが、天然物から抽出単
離された或種のトリテルペン化合物、その誘導体
及び塩が、男性ホルモン作用の発現に関係の深い
酵素であるテストステロン−5α−リダクターゼ
(EC1.3.1.4)(以下、単に「5α−リダクターゼ」
と称することもある)の活性阻害作用を有するこ
と並びにその内の幾つかの化合物が著しく高い
5α−リダクターゼ阻害活性を示すことを見い出
して本発明を完成するに至つた。
本発明によるテストステロン−5α−リダクタ
ーゼ阻害剤は、トリテルペン化合物である3β−
ジヒドロキシホスホリルオキシ−オレアン−12−
エン−18β−30−オイツクアシツド、3β−ヒドロ
キシスルホニルオキシ−オレアン−12−エン−
18β−30−オイツクアシツド、3β−ヒドロキシ−
オレアン−12−エン−18β−30−オイツクアシツ
ド、3β−ヒドロキシ−オレアン−12−エン−18β
−28−オイツクアシツド(慣用名:オレアノール
酸)、3β−ヒドロキシスルホニルオキシ−11−オ
キソ−オレアン−12−エン−18α−29−オイツク
アシツド及びこれらの塩から選択された物質を有
効成分としていることを特徴としている。
従来、一般的には、テストステロンが活性型男
性ホルモンであると考えられ、その結果抗男性ホ
ルモン剤の主成分として女性モルモンやその誘導
体が提案され、現にこれらが主として臨床治療用
に供されているがステロイド系物質であるため
に、副作用としての女性ホルモン作用が問題とな
る場合が多い。
しかしながら、男性ホルモン関連領域における
研究の進歩により、最近では、真の活性型男性ホ
ルモンはテストステロン自体ではなく、当該物質
が5α−リダクターゼにより還元されて生成する
化合物である5α−ジヒドロテストステロンであ
ると考えられるようになつている。
上記の還元酵素である5α−リダクターゼは肝
臓等にも存在するが、例えば肝臓における当該酵
素の役割は代謝及び分解であり、従つて男性ホル
モンの標的組織である前立腺等における5α−リ
ダクターゼと肝臓等の他の組織における5α−リ
ダクターゼとは性質において異なつているものと
考えられている[J.D.Wilson et al.“J.Biol.
Chem.”,Vol.246,pages2584−2593(1971)及び
“J.Biol.Chem.”,Vol.247,pages958−967
(1972)]。
従つて、男性ホルモンの標的組織である性腺、
前立腺、皮脂腺等における5α−リダクターゼの
活性を阻害する物質は抗男性ホルモン剤の有効成
分になり得るものと推定され、従つて汎用のステ
ロイド系薬物の問題点である女性ホルモン作用を
有しない抗男性ホルモン剤を開発する途が開かれ
るようになつてきている。
翻つて、本発明による5α−リダクターゼ阻害
剤の有効成分は、既述のように、トリテルペン化
合物、その誘導体又は塩であり、ステロイド骨格
を有してあらず且つ天然物を原料として抽出単離
され得るものであり、従つてステロイド系物質の
ように女性ホルモン作用が問題になることはない
ものと考えられる。
尚、本発明による5α−リダクターゼ阻害剤の
有効成分である既述のトリテルペン化合物と構造
的に近似するグリチルレチン酸(3β−ヒドロキ
シ−11−オキソ−オレアン−12−エン−18β−30
−オイツクアシツド)及びその誘導体と5α−リ
ダクターゼ(但し、ラツトの肝臓由来のもの)と
の関係について、特開昭56−139416公報には「グ
リチルレチン酸及びその30位修飾体(オレアン−
12−エン−11−オキソ−3β,30−ジオール)が
当該還元酵素の活性を抑制する」旨開示されてお
り(当該公開公報の第2頁左欄下段の記載及び第
3頁左欄下段の実験結果参照)、又文献“Chem.
Abstr.”,91(11):83011g(1979)には「グリチ
ルレチン酸及びグリチルリチンがラツトの肝臓由
来の5α−リダクターゼにおける活性を増強した」
旨の報告が紹介されている。従つて、グリチルレ
チン酸及びその誘導体が5α−リダクターゼの阻
害活性を確実に有しているか否かは上記の両従来
技術文献から明らかなものとは去えず、況や既に
紹介したJ.D.Wilson等の報告に見られる通り肝臓
等に由来するものと男性ホルモンの標的組織であ
る前立腺等に由来するものとは、5α−リダクタ
ーゼであつても、性質が異なるものではないかと
考えられているので、抗男性ホルモン剤の有効成
分として上記のようなグリチルレチン酸及びその
誘導体が適当なものであるとは即断できない(因
みに、上記の特開昭56−139416公報に係る発明
は、5α−及び5β−リダクターゼの両者に対する
阻害活性がない又は著しく低い化合物であるオレ
アン−12−エン−3β,30−ジオールを有効成分
とし、これによりグリチルレチン酸製剤の副作用
である偽アルドステロン作用を抑制した抗潰瘍・
抗炎症・抗アレルギー剤を提供しようとするもの
であり、一方上記のケミカル・アブストラクツに
紹介されている報告はグリチルレチン酸及びグリ
チルリチンがラツトの肝臓由来の5β−リダクタ
ーゼに対する阻害活性を有していることを解明し
且つこの5β−リダクターゼがコルチゾールやア
ルデステロンの代謝に関与するものであることか
ら副腎ステロイド類のクリアランス(排出)遅延
及びこれに伴う生体内での生理活性作用の時間的
延長の可能性を論じているものである。尚、本発
明者等はグリチルレチン酸、殊に抗潰瘍・抗炎
症・抗アレルギー作用を有し、薬物の一つとして
認められている18β−グリチルレチン酸の5α−リ
ダクターゼ阻害活性は比較的低いものであること
を確認している−後記の薬効試験例参照)。
本発明によるテストステロン−5α−リダクタ
ーゼ阻害剤は、抗男性ホルモン剤として、例えば
脱毛症、座瘡及び前立腺肥大症の治療に用いるこ
とを目的としており、従つて、次にこれらに関連
して述べず。
脱毛症の原因については、種々の説があるが、
男性モルモンの作用によることが主因と考えられ
ている。例えば、高島等は、男性ホルモン作用の
強いテストステロンを長期間にわたりサルに投与
することにより、脱毛の誘発されたことを報告し
ており[“Arch.Derm.”,Vol.103.pages527−534
(1971)]、又高安等は休止期の皮膚においては5α
−リダクターゼの活性が高いことを報告している
[“J.Clin.Endocrinol.Metab.”,Vol.34,
pages1098−1101(1972)]。一方、稲葉等は毛の
発生と皮脂腺との関連についての研究において、
5α−リダクターゼの還元作用により生成した5α
−ジヒドロテストステロンが脱毛の原因であると
の仮説を発表している[“J.Dermatol.Surg.
Oncol.”,Vol.7,pages249−259(1981)]。
本発明による剤の有効成分は、後記の薬効試験
例から明らかなように、男性ホルモンの標的組織
である前立腺由来の5α−リダクターゼに対して
強い阻害活性を示すので、上記の観点から脱毛症
の治療に有用であると考えられる。
座瘡は、男性ホルモンの標的組織の一つである
皮脂腺が男性ホルモンにより刺激されて皮脂の分
泌が亢進する場合に発症するものと云われてお
り、従つて抗男性ホルモン作用を有する物質を有
効成分としている本発明による剤は、その治療に
有効なものと考えられる。
一方、前立腺も自明のことながら男性ホルモン
の標的組織の一つであり、前立腺が病的に肥大す
る前立腺肥大症も、男性ホルモンが関与すること
により発症したものであれば、本発明による剤は
その治療に有効であると考えられる。
本発明による剤の有効成分である既述のトリテ
ルペン化合物は、各種の天然物から得ることがで
きる。即ち、これらの化合物を含有している天然
物を採取して細切或は粉砕し、水又は適宜の有機
溶媒を用いて抽出し、得られた抽出物を自体周知
の手法で処理して、例えばシリカゲル等を用いる
クロマトグラフイー、再結晶等の手段で分離し精
製することにより所望の化合物を得ることができ
る。
単離精製された化合物は、必要であれば、その
3位における水酸基をエステル化して燐酸エステ
ル、硫酸エステル等の誘導体に変ずることができ
る。例えば燐酸エステルは、塩基触媒の存在下に
有機溶媒中で燐酸化剤と反応させることにより得
ることができる。この場合に、燐酸化剤として
は、ホスホリルクロライド、ホスホリルブロマイ
ド等を用いることができる。硫酸エステルは、有
機溶媒中で無水硫酸−ピリジン コンプレツクス
等のような硫酸化剤と反応させることにより得る
ことができる。
このようにして得られた誘導体は、必要に応じ
て、自体周知の主法により種々の塩に変ずること
ができる。
尚、本発明による剤の有効成分である既述のト
リテルペン化合物、その誘導体及び塩は、後記の
薬効試験例から明らかなように、5α−リダクタ
ーゼに対する強い阻害活性を示すが、その阻害効
果は、薬効試験例1におけるように、ラジオアイ
ソトープを用いて測定することにより、或は又採
択される基質にもよるが、薬効試験例2における
ように、ラジオアイソトープを用いることなし
に、蛍光標識化法を利用して測定することにより
確認することができる。
本発明による剤の製剤化に際して剤型に格別の
制限はなく、例えば錠剤、カプセル剤、散剤、細
粒剤、顆粒剤、内服液剤等の経口投与剤とするこ
とも、局皮用を含む注射剤とすることも、坐剤形
態のものであることも、更には外皮用剤であるこ
ともでき、外皮用剤の場合には液剤、軟膏、シヤ
ンプー、リンス等の形態になされることができ
る。
本発明による剤の投与量は、有効成分としての
トリテルペン化合物の種類、疾患の種類と程度、
投与経路乃至剤型、1日当りの投与回数等に依存
して異なるが、成人を対象とする場合に、一般的
には、有効成分の量基準で0.005−500mg/日程度
である。
次に、本発明による剤の有効成分であるトリテ
ルペン化合物に関する薬効試験例並びに製剤例に
より、本発明を更に詳細に且つ具体的に説明す
る。
薬効試験例 1
1 5α−リダクターゼ標品の調製
JCL−ウイスター系雄性ラツト(体重:250−
400g)の前立腺を摘出し、該前立腺の皮膜及び
脂肪組織を取り除くことにより、一匹当り約430
mgの前立腺を得た。この前立腺原料1g当り3.5
mlの割合で、0.88M蔗糖−1.5mM CaCl2溶液を
添加し、テフロンホモジエナイザー又は細胞破砕
器を用いてホモジエナイズした。得られたホモジ
エネートをガーゼにより濾過し、濾液を600xgで
10分間遠心した。上清を除いた沈渣に同量の上記
蔗糖−CaCl2溶液を添加して懸濁させ、この懸濁
液を600xgで10分間遠心した後に上清を取り除い
た。得られた沈渣に、更にもう一度上記の蔗糖−
CaCl2溶液を添加して懸濁させ、次いで遠心して
上清を取り除くことにより沈渣を洗浄した。この
沈渣を下記の組成を有する緩衝液Aに懸濁させ、
次いで超音波処理した。
緩衝液 A:
0.01Mトリス塩酸緩衝液(PH7.4)、
0.05mM EDTA、
5mM MgCl2及び
0.5mMメルカプトエタノール
上記の超音波処理後に、12000xgで10分間遠心
して沈渣を集めた。こ沈渣に、下記の組成を有す
る緩衝液Bを、前立腺1g当り1.3mlの割合で添加
し、再び超音波処理し、次いで12000xgで10分間
遠心した後に上清を集め、その上清を5α−リダ
クターゼ標品(以下、単に「酵素溶液」と称す
る)とした。
緩衝液 B:
0.01Mトリス塩酸緩衝液(PH7.4)、
0.05mM EDTA、
5mM MgCl2、
0.5mMメルカプトエタノール及び
0.5M NaCl
尚、上記の諸操作は、すべて0−4℃の温度条
件下(低温室内)で行われた。
上記の諸操作により、ラツト30匹から上記の酵
素溶液が16.3ml得られた。この酵素溶液の蛋白濃
度をLowry法により測定した処、2.7mg/mlであ
つた。
2 ラジオアイソトープを用いる5α−リダクタ
ーゼ阻害活性の測定
[4−14C]−テストステロン(NEN社製)
5nCi(lnmol)と、被験試料であつて本発明によ
る剤の有効成分となるべき下記のトリテルペン化
合物又は参考試料であるトリテルペン化合物
(18β−グリチルレチン酸)とを混合し、乾燥さ
せた。
被験試料A:
3β−ジヒドロキシホスホリルオキシ−オレア
ン−12−エン−18β−30−オイツクアシツド
IR(KBr):
ν=1715,1250
被験試料B:
3β−ヒドロキシスルホニルオキシ−オレアン
−12−エン−18β−30−オイツクアシツド
pmr(ピリジン,d−5):
δ=0.90,0.98,1.27,1.31,1.37,4.43,
5.45
IR(KBr):
ν=1720,1220
被験試料C:
3β−ヒドロキシ−オレアン−12−エン−18β−
30−オイツクアシツド
pmr(ピリジン,d−5):
δ=0.92,0.98,1.04,1.24,1.29,1.37,
3.40,5.48
IR(KBr):
ν=1710
被験試料D:
3β−ヒドロキシ−オレアン−12−エン−18β−
28−オイツクアシツド(オレアノール酸)
pmr(CDCl3):
δ=0.78,0.91,0.93,0.99,1.14,3.22,
5.26
cmr(CDCl3):
δ=183.0,143.7,122.8,79.1
IR(KBr):
ν=3450,2950,1695
被験試料E:
3β−ヒドロキシスルホニルオキシ−11−オキ
ソ−オレアン−12−エン−18α−29−オイツク
アシツド
cmr(DMSO,d−6):
δ=201.4,189.2,146.1,105.7,83.2
IR(KBr):
ν=1720,1225
参考試料:
3β−ヒドロキシ−11−オキソ−オレアン−12
−エン−18β−30−オイツクアシツド(18β−
グリチルレチン酸)
pmr(DMSO,d−6):
δ=0.84,1.06,1.17,1.24,1.34,1.42,
5.97
IR(KBr):
ν=1705,1665
上記の乾燥物に、既述の1)項において得た酵
素溶液200μl及び燐酸ナトリウム緩衝液(PH6.6、
最終濃度0.04M)並びにNADPH(最終濃度
0.1mM)を添加して総量を1.0mlとした。この溶
液を37℃で1時間インキユベーシヨンした後に、
担体としての非放射性テストステロン及び5α−
ジヒドロテストステロンを添加混和し、次いで酢
酸エチル抽出した。得られた抽出液を濃縮し、薄
層クロマトグラフイー(ベンゼン:アセトン=
4:1)によりテストステロンと5α−ジヒドロ
テストステロンとを分離し、薄層クロマトスキヤ
ナー又は液体シンチレーシヨンカウンターを用い
てテストステロンと5α−ジヒドロテストステロ
ン部分におけるラジオアイソトープによる放射能
を測定した。
一方、トリテルペン化合物を用いることなし
に、上記の諸操作を実施して放射能を測定し、対
照試料の放射能測定値とした。
この対照試料の放射能測定値と、既述の被験試
料及び参考試料に関する放射能測定値とから被験
試料及び参考試料の5α−リダクターゼ阻害率を
算出した。結果は下記の表1に示される通りであ
り、本発明による剤の有効成分となるべきトリテ
ルペン化合物は参考試料であるトリテルペン化合
物(18β−グリチルレチン酸)と比較する場合に
も2.5−5倍の5α−リダクターゼ阻害活性を有し
ていることが判明した(尚、表1中に与えられて
いる阻害率は1x10-4Mでのものである)。
The present invention relates to an anti-androgen agent, especially a testosterone-5α-reductase inhibitor, which contains a triterpene compound, particularly a triterpene compound isolated from a natural product, a derivative or a salt thereof, as an active ingredient. Since ancient times, various natural products have been used as folk medicines or Japanese and Chinese medicines. However, this kind of
So-called "herbal medicines" have a strong influence on Oriental medicine, and it is generally said that it is difficult to evaluate their medicinal efficacy using Western medical methodologies. The present inventors have conducted research on the components and pharmacological effects of various natural products, and have found that certain triterpene compounds extracted and isolated from natural products, their derivatives, and salts are related to the expression of androgen action. Testosterone-5α-reductase (EC1.3.1.4) (hereinafter referred to simply as “5α-reductase”) is a profound enzyme of
(sometimes referred to as
We have completed the present invention by discovering that it exhibits 5α-reductase inhibitory activity. The testosterone-5α-reductase inhibitor according to the present invention is a triterpene compound 3β-reductase.
dihydroxyphosphoryloxy-oleane-12-
ene-18β-30-eutschacide, 3β-hydroxysulfonyloxy-olean-12-ene-
18β-30-Eutsukaside, 3β-Hydroxy-
Olean-12-ene-18β-30-oisturic acid, 3β-hydroxy-olean-12-ene-18β
It is characterized by containing as an active ingredient a substance selected from -28-eutsuku acid (common name: oleanolic acid), 3β-hydroxysulfonyloxy-11-oxo-olean-12-ene-18α-29-eutsuku acid, and salts thereof. It is said that Conventionally, it has been generally believed that testosterone is the active male hormone, and as a result, female mormon and its derivatives have been proposed as the main ingredients of anti-androgen drugs, and these are currently mainly used for clinical treatment. Since it is a steroid-based substance, female hormone effects as a side effect are often a problem. However, due to advances in research in the field of androgen, it is now believed that the true active male hormone is not testosterone itself, but 5α-dihydrotestosterone, a compound produced when the substance is reduced by 5α-reductase. It's starting to become easier. The above-mentioned reductase, 5α-reductase, is also present in the liver, etc., but the role of the enzyme in the liver, for example, is metabolism and decomposition. It is thought that the properties of 5α-reductase are different from those in other tissues [JDWilson et al . “J.Biol.
Chem.”, Vol. 246, pages 2584-2593 (1971) and “J.Biol.Chem.”, Vol. 247, pages 958-967
(1972)]. Therefore, the gonads, which are the target tissues of male hormones,
Substances that inhibit the activity of 5α-reductase in the prostate, sebaceous glands, etc. are presumed to be active ingredients in anti-androgen drugs, and therefore, they are considered anti-androgen drugs that do not have female hormone effects, which is a problem with general-purpose steroid drugs. The path to developing hormonal drugs is beginning to open. On the other hand, the active ingredient of the 5α-reductase inhibitor according to the present invention, as mentioned above, is a triterpene compound, a derivative or a salt thereof, does not have a steroid skeleton, and is extracted and isolated from a natural product as a raw material. Therefore, unlike steroid-based substances, female hormone effects are not considered to be a problem. In addition, glycyrrhetinic acid (3β-hydroxy-11-oxo-olean-12-ene-18β-30
Regarding the relationship between 5α-reductase (derived from rat liver) and 5α-reductase (derived from rat liver), Japanese Patent Application Laid-open No. 139416/1983 states “Glycyrrhetinic acid and its 30-position modified product (olean-
12-ene-11-oxo-3β,30-diol) suppresses the activity of the reductase (description in the lower left column of page 2 and lower left column of page 3 of the publication). (see experimental results), and the literature “Chem.
Abstr.”, 91 (11): 83011g (1979), “Glycyrrhetinic acid and glycyrrhizin enhanced the activity of 5α-reductase derived from rat liver.”
A report is presented. Therefore, whether or not glycyrrhetinic acid and its derivatives definitely have 5α-reductase inhibitory activity is not clear from the above-mentioned prior art documents, and is based on the current situation and the previously introduced report by JD Wilson et al. As can be seen, it is thought that the properties of 5α-reductase derived from the liver and those derived from the target tissues of male hormones, such as the prostate, are different. It cannot be immediately determined that the above-mentioned glycyrrhetinic acid and its derivatives are suitable as the active ingredients of the drug. This anti-ulcer drug contains olean-12-ene-3β,30-diol, a compound with no or extremely low inhibitory activity, as an active ingredient and suppresses the pseudoaldosterone effect, which is a side effect of glycyrrhetinic acid preparations.
The aim is to provide an anti-inflammatory and anti-allergic agent, while the report introduced in the above Chemical Abstracts shows that glycyrrhetinic acid and glycyrrhizin have inhibitory activity against 5β-reductase derived from rat liver. In addition, since this 5β-reductase is involved in the metabolism of cortisol and aldesterone, there is a possibility that the clearance (excretion) of adrenal steroids may be delayed and the physiologically active effects in the body may be prolonged over time. This is what we are discussing. The present inventors have discovered that glycyrrhetinic acid, in particular 18β-glycyrrhetinic acid, which has anti-ulcer, anti-inflammatory, and anti-allergic effects and is recognized as a drug, has a relatively low 5α-reductase inhibitory activity. (See examples of drug efficacy tests below). The testosterone-5α-reductase inhibitor according to the invention is intended for use as an antiandrogenic agent, for example in the treatment of alopecia, acne and benign prostatic hyperplasia, and therefore will not be mentioned in this connection below. . There are various theories about the causes of alopecia, but
It is thought that the main cause is the effect of male Mormons. For example, Takashima et al. reported that long-term administration of testosterone, a strong androgenic hormone, to monkeys induced hair loss [“Arch.Derm.”, Vol.103.pages527-534
(1971)], and Takayasu et al.
-Reported that reductase activity is high [“J.Clin.Endocrinol.Metab.”, Vol.34,
pages 1098−1101 (1972)]. On the other hand, in their research on the relationship between hair development and sebaceous glands, Inaba et al.
5α produced by the reduction action of 5α-reductase
-Publishes the hypothesis that dihydrotestosterone is the cause of hair loss [“J.Dermatol.Surg.
Oncol.”, Vol. 7, pages 249-259 (1981)]. As is clear from the drug efficacy test examples described later, the active ingredient of the agent of the present invention is effective against 5α-reductase derived from the prostate, which is the target tissue of male hormones. From the above point of view, it is thought to be useful in the treatment of alopecia. It is said that the disease occurs when prostate cancer is promoted, and therefore, the agent of the present invention, which contains a substance with anti-androgen action as an active ingredient, is considered to be effective for the treatment of prostate cancer. In particular, the agent of the present invention is effective in treating benign prostatic hyperplasia, which is one of the target tissues of male hormones, and pathological enlargement of the prostate gland, if the disease is caused by the involvement of male hormones. The above-mentioned triterpene compounds, which are the active ingredients of the agent according to the present invention, can be obtained from various natural products.That is, natural products containing these compounds are collected and cut into pieces or Grinding, extracting with water or an appropriate organic solvent, treating the obtained extract using methods well known per se, and separating and purifying it by means such as chromatography using silica gel, recrystallization, etc. The desired compound can be obtained by the following steps. If necessary, the isolated and purified compound can be converted into a derivative such as a phosphoric acid ester or a sulfuric acid ester by esterifying the hydroxyl group at the 3-position.For example, a phosphoric acid ester can be can be obtained by reacting with a phosphorylating agent in an organic solvent in the presence of a base catalyst. In this case, phosphoryl chloride, phosphoryl bromide, etc. can be used as the phosphorylating agent. Sulfuric ester is It can be obtained by reacting it with a sulfating agent such as anhydrous sulfuric acid-pyridine complex in an organic solvent.The derivative thus obtained can be treated with various methods, if necessary, by methods well known per se. It should be noted that the above-mentioned triterpene compounds, derivatives and salts thereof, which are the active ingredients of the agent according to the present invention, exhibit strong inhibitory activity against 5α-reductase, as is clear from the drug efficacy test examples described later. However, the inhibitory effect can be determined by measuring using a radioisotope, as in Example 1 of the Drug Efficacy Test, or, depending on the substrate selected, by using a radioisotope, as in Example 2 of the Drug Efficacy Test. It can be confirmed by measuring using a fluorescent labeling method. When formulating the agent according to the present invention, there are no particular restrictions on the dosage form; for example, oral administration such as tablets, capsules, powders, fine granules, granules, or oral liquids, or injections including epidermal It can be in the form of a preparation, a suppository, or even a topical preparation, and in the case of a topical preparation, it can be in the form of a liquid, ointment, shampoo, rinse, etc. . The dosage of the agent according to the present invention depends on the type of triterpene compound as an active ingredient, the type and severity of the disease,
Although it varies depending on the route of administration, dosage form, number of administrations per day, etc., for adults, the amount of active ingredient is generally about 0.005-500 mg/day. Next, the present invention will be explained in more detail and concretely using drug efficacy test examples and formulation examples regarding the triterpene compound that is the active ingredient of the agent according to the present invention. Pharmaceutical efficacy test example 1 1 Preparation of 5α-reductase preparation JCL-Wistar male rats (body weight: 250-
By removing the prostate gland (400g) and removing the prostate membrane and adipose tissue, approximately 430 g
mg of prostate was obtained. 3.5 per gram of this prostate raw material
A 0.88M sucrose-1.5mM CaCl 2 solution was added at a ratio of 1.5ml and homogenized using a Teflon homogenizer or a cell disruptor. The resulting homogenate was filtered through gauze, and the filtrate was filtered at 600xg.
Centrifuged for 10 minutes. The same amount of the above sucrose-CaCl 2 solution was added to the precipitate from which the supernatant had been removed to suspend it, and the suspension was centrifuged at 600xg for 10 minutes, and then the supernatant was removed. Add the above sucrose to the resulting precipitate once more.
The precipitate was washed by adding CaCl 2 solution to suspend it, then centrifuging and removing the supernatant. This sediment is suspended in buffer A having the following composition,
It was then subjected to ultrasonication. Buffer A: 0.01M Tris-HCl buffer (PH7.4), 0.05mM EDTA, 5mM MgCl 2 and 0.5mM mercaptoethanol After the above sonication, the mixture was centrifuged at 12000xg for 10 minutes to collect the precipitate. Buffer B having the following composition was added to this sediment at a rate of 1.3 ml per 1 g of prostate, and the mixture was sonicated again. After centrifugation at 12,000 x g for 10 minutes, the supernatant was collected. This was used as a reductase preparation (hereinafter simply referred to as "enzyme solution"). Buffer B: 0.01M Tris-HCl buffer (PH7.4), 0.05mM EDTA, 5mM MgCl2 , 0.5mM mercaptoethanol, and 0.5M NaCl All the above operations were performed at a temperature of 0-4°C ( It was carried out in a low temperature room). Through the above operations, 16.3 ml of the above enzyme solution was obtained from 30 rats. The protein concentration of this enzyme solution was measured by the Lowry method and was found to be 2.7 mg/ml. 2 Measurement of 5α-reductase inhibitory activity using radioisotope [4- 14 C]-Testosterone (manufactured by NEN)
5nCi (lnmol) and the following triterpene compound which is a test sample and should be an active ingredient of the agent according to the present invention or a reference sample triterpene compound (18β-glycyrrhetinic acid) were mixed and dried. Test sample A: 3β-dihydroxyphosphoryloxy-olean-12-ene-18β-30-eutsuk acid IR (KBr): ν=1715,1250 Test sample B: 3β-hydroxysulfonyloxy-olean-12-ene-18β-30 -Eitschacid pmr (pyridine, d-5): δ=0.90, 0.98, 1.27, 1.31, 1.37, 4.43,
5.45 IR (KBr): ν=1720, 1220 Test sample C: 3β-hydroxy-olean-12-ene-18β-
30-Oitsuku acid pmr (pyridine, d-5): δ=0.92, 0.98, 1.04, 1.24, 1.29, 1.37,
3.40, 5.48 IR (KBr): ν=1710 Test sample D: 3β-hydroxy-olean-12-ene-18β-
28-Eutschacid (oleanolic acid) pmr ( CDCl3 ): δ=0.78, 0.91, 0.93, 0.99, 1.14, 3.22,
5.26 cmr (CDCl 3 ): δ = 183.0, 143.7, 122.8, 79.1 IR (KBr): ν = 3450, 2950, 1695 Test sample E: 3β-hydroxysulfonyloxy-11-oxo-olean-12-ene-18α- 29-Euctsacid cmr (DMSO, d-6): δ=201.4, 189.2, 146.1, 105.7, 83.2 IR (KBr): ν=1720, 1225 Reference sample: 3β-hydroxy-11-oxo-oleane-12
-en-18β-30-oic acid (18β-
Glycyrrhetinic acid) pmr (DMSO, d-6): δ = 0.84, 1.06, 1.17, 1.24, 1.34, 1.42,
5.97 IR (KBr): ν = 1705, 1665 To the above dried product, add 200 μl of the enzyme solution obtained in section 1) and sodium phosphate buffer (PH6.6,
(final concentration 0.04M) and NADPH (final concentration
0.1mM) was added to bring the total volume to 1.0ml. After incubating this solution at 37°C for 1 hour,
Non-radioactive testosterone and 5α- as carriers
Dihydrotestosterone was added and mixed, followed by extraction with ethyl acetate. The obtained extract was concentrated and subjected to thin layer chromatography (benzene:acetone=
Testosterone and 5α-dihydrotestosterone were separated using a 4:1 ratio, and the radioactivity of the radioisotopes in the testosterone and 5α-dihydrotestosterone moieties was measured using a thin layer chromatography scanner or a liquid scintillation counter. On the other hand, radioactivity was measured by carrying out the various operations described above without using the triterpene compound, and the radioactivity measurements were taken as the radioactivity measurements of a control sample. The 5α-reductase inhibition rate of the test sample and reference sample was calculated from the radioactivity measurement value of this control sample and the radioactivity measurement values of the test sample and reference sample described above. The results are shown in Table 1 below, and the triterpene compound to be the active ingredient of the agent according to the present invention has a 5α concentration of 2.5 to 5 times that of the reference sample triterpene compound (18β-glycyrrhetinic acid). - It was found to have reductase inhibitory activity (the inhibition rate given in Table 1 is at 1x10 -4 M).
【表】
薬効試験例 2
15α−リダクターゼ標品の調製
本例における標品の調製は、J.D.Wilson等の方
法であり“J.Biol.Chem.”,Vol.246,pages2584
−2593(1971)に開示されている方法に準拠して、
下記のように行われた。
ウイスター系雄性ラツト(体重:290−340g)
の前立腺を摘出し、該前立腺の皮膜及び脂肪組織
を取り除くことにより、一匹当り約740mgの前立
腺を得た。この前立腺試料1g当り3.3mlの割合
で0.88M蔗糖−1.5mM CaCl2溶液を添加し、ウ
ルトラ トラツク(Janke&Kunkel社製)及び
テフロンホモジエナイザーを用いて摩砕した。得
られたホモジエネートをガーゼにより濾過し、濾
液を550xgで10分間遠心した後に上清を除去し、
用いた前立腺1g当り4.1mlの割合で上記の蔗糖
−CaCl2溶液を沈渣に添加して該沈渣を懸濁さ
せ、この懸濁液を550xgで10分間遠心した後に上
清を除去した。この操作、即ち沈渣の懸濁−遠心
処理−上清除去による沈渣の洗浄操作を更に5回
繰り返した。このようにして得られた沈渣に、下
記の組成を有する緩衝液Aを、用いた前立腺1g
当り0.7mlの割合で添加して沈渣を懸濁させた後
に超音波処理した。
緩衝液A:
0.01Mトリス塩酸緩衝液(PH7.4)、
0.05mM EDTA、
5mM MgCl2及び
005mMメルカプトエタノール
上記の超音波処理後に、12000xgで10分間遠心
して沈渣を集めた。この沈渣に、下記の組成を有
する緩衝液Cを、前立腺1g当り0.4mlの割合で
添加し、再び超音波処理し、次いで、12000xgで
10分間遠心した後に上清(一次上清)を採取し
た。この遠心処理により分離された沈渣につき、
上記と同様に、緩衝液Cを添加し、超音波処理及
び遠心処理を行つて上清(二次上清)を採取し、
この上清と先に採取した一次上清とを合併し、こ
れを5α−リダクターゼ標品(以下、単に「酵素
溶液」と称する)とした。
緩衝液C:
0.3M NaCl及び
0.01M Na2HPO4−NaH2PO4(PH7.0)
尚、上記の諸操作は、すべて0−4℃の温度条
件(低温室内)で行われた。
上記の諸操作により、ラツト31匹から上記の酵
素溶液が18ml得られた。この酵素溶液の蛋白濃
度をLowry法により測定した処、10.2mg/mlで
あつた。
2 高速液体クロマトグラフイー−蛍光分析にに
よる5α−リダクターゼ阻害活性の測定
本試験におけるステロイド類の蛍光標識及び高
速液体クロマトグラフイーによる分析操作は後藤
等の方法(特開昭58−57356公報)に準じて行わ
れた。
5α−リダクターゼ活性を測定する場合には、
従来、一般的には、ラジオアイソトープで標識さ
れたテストステロンが基質として用いられてきた
が、本試験においては、前出のJ.D.Wilson等の方
法において用いられている4−プレグネン−
17α,21−ジオール−3,20−ジオンを基質とし
て用いた。
操作方法は下記の通りである。
4−プレグネン−17α,21−ジオール−3,20
−ジオン0.563μMと、下記の被験試料又は参考試
料20μlと、100μM NADPHと、0.04M燐酸ナト
リウム緩衝液(PH6.6)と、上記の1)項で得た
酵素溶液180μlとの混合溶液(全量:1ml)を35
℃において1時間インキユベーシヨンした。
被験試料F:
3β−ソデイオオキシスルホニルオキシ−オレ
アン−12−エン−18β−30−オイツクアシツド
被験試料G:
3β−ソデイオオキシスルホニルオキシ−オレ
アン−12−エン−18β−30−オイツクアシツド
ナトリウム塩
参考試料:
3β−ヒドロキシ−11−オキソ−オレアン−12
−エン−18β−30−オイツクアシツド(18β−
グリチルレチン酸)
次いで、酢酸エチルを添加して酵素反応を停止
させる共に、この酵素反応溶液から基質及びその
還元生成物である5α−プレグナン−17α,21−ジ
オール−3,20−ジオンを抽出した。この抽出液
を濃縮して乾固させ、残渣に1−アンスロイルニ
トリル0.87μmolと、キヌクリジン3.6μmolと、ア
セトニトリル200μlとを添加し、60℃において30
分間反応させた。窒素気流下で溶媒を除去し、残
渣をヘキサンに溶解させた後に、0.04N水酸化ナ
トリウム水溶液を含浸させたエキストレルート1
カラム(Merck社製)に通して過剰の標識試薬
及び夾雑物を除去した。次いで、ジクロロメタン
を用いて溶出させることにより、基質である4−
プレグネン−17α,21−ジオール−3,20ジオン
及びその還元生成物である5α−プレグナン−
17α,21−ジオール−3,20−ジオンにおけるそ
れぞれの21位の水酸基が1−アンスロイル化され
て蛍光を有する化合物を得た。
これらの化合物を下記に示される条件下で、高
速液体クロマトグラフイー(HPLC)に付して分
離定量することにより4−プレグネン−17α,21
−ジオール−3,2−ジオンが5α−プレグナン
−17α,21−ジオール−3,20−ジオンが5α−プ
レグナン−17α,21−ジオール−3,20ジオンに
還元される量を測定した。
HPLC条件
カラム:シリカゲルODS5μm(4.6x100mm),
移動相:水/メタノール(12:88)
流速:1.0ml/min.,
温度:35℃,
励起波長:EX379nm
蛍光波長:EM459nm,
上記の操作処理で得た測定データを次式に導入
することにより5α−リダクターゼの活性阻害率
を算出した。
阻害率(%)=(1−a/b)x100
a :被験又は参考試料を添加した場合の5α−
プレグナン−17α,21−ジオール3,20−ジオ
ンの生成量
b: 被験又は参考試料を添加しなかつた場合の
5α−プレグナン−17α,21−ジオール−3,20
−ジオンの生成量
3 結果
結果は下記の表2に示される通りであつた。[Table] Pharmaceutical efficacy test example 2 Preparation of 15α-reductase specimen The specimen in this example was prepared by the method of JD Wilson et al., “J.Biol.Chem.”, Vol. 246, pages 2584.
−2593 (1971),
It was done as follows. Wistar male rat (weight: 290-340g)
About 740 mg of prostate gland was obtained per animal by removing the prostate gland and removing the capsule and adipose tissue of the prostate gland. A 0.88M sucrose-1.5mM CaCl 2 solution was added at a rate of 3.3ml per gram of this prostate sample, and the mixture was ground using an Ultra Trac (manufactured by Janke & Kunkel) and a Teflon homogenizer. The obtained homogenate was filtered through gauze, the filtrate was centrifuged at 550xg for 10 minutes, and the supernatant was removed.
The above sucrose-CaCl 2 solution was added to the sediment at a rate of 4.1 ml per gram of prostate used to suspend the sediment, and the suspension was centrifuged at 550×g for 10 minutes, and then the supernatant was removed. This operation, that is, suspension of the sediment, centrifugation, and washing of the sediment by removing the supernatant, was repeated five more times. 1 g of prostate was added to the sediment thus obtained using buffer A having the following composition.
The precipitate was added at a rate of 0.7 ml per sample to suspend it, and then subjected to ultrasonication. Buffer A: 0.01M Tris-HCl buffer (PH7.4), 0.05mM EDTA, 5mM MgCl2 and 005mM mercaptoethanol After the above sonication, the mixture was centrifuged at 12000xg for 10 minutes to collect the precipitate. Buffer C having the following composition was added to this sediment at a rate of 0.4 ml per 1 g of prostate, and the mixture was sonicated again and then heated at 12000xg.
After centrifugation for 10 minutes, the supernatant (primary supernatant) was collected. Regarding the sediment separated by this centrifugal treatment,
In the same manner as above, add buffer C, perform ultrasonication and centrifugation, and collect the supernatant (secondary supernatant).
This supernatant and the primary supernatant collected earlier were combined to form a 5α-reductase preparation (hereinafter simply referred to as "enzyme solution"). Buffer C: 0.3M NaCl and 0.01M Na2HPO4 - NaH2PO4 (PH7.0) All of the above operations were performed at a temperature of 0-4C (in a low-temperature room). Through the above operations, 18 ml of the above enzyme solution was obtained from 31 rats. The protein concentration of this enzyme solution was measured by the Lowry method and was found to be 10.2 mg/ml. 2 Measurement of 5α-reductase inhibitory activity by high performance liquid chromatography-fluorescence analysis Fluorescent labeling of steroids in this test and analytical procedures using high performance liquid chromatography were performed according to the method of Goto et al. It was carried out accordingly. When measuring 5α-reductase activity,
Conventionally, radioisotope-labeled testosterone has generally been used as a substrate, but in this study, 4-pregnene-, which is used in the method of JD Wilson et al.
17α,21-diol-3,20-dione was used as a substrate. The operating method is as follows. 4-pregnene-17α,21-diol-3,20
- A mixed solution of 0.563 μM dione, 20 μl of the following test sample or reference sample, 100 μM NADPH, 0.04 M sodium phosphate buffer (PH6.6), and 180 μl of the enzyme solution obtained in section 1) above (total volume :1ml) to 35
Incubation was carried out for 1 hour at .degree. Test Sample F: 3β-Sodiooxysulfonyloxy-olean-12-ene-18β-30-Eutzuka Acid Test Sample G: 3β-Sodiooxysulfonyloxy-olean-12-ene-18β-30-Eutzuka Acide Sodium Salt reference sample: 3β-hydroxy-11-oxo-oleane-12
-en-18β-30-oic acid (18β-
Glycyrrhetinic acid) Next, ethyl acetate was added to stop the enzyme reaction, and the substrate and its reduction product, 5α-pregnane-17α,21-diol-3,20-dione, were extracted from the enzyme reaction solution. This extract was concentrated to dryness, and 0.87 μmol of 1-anthroylnitrile, 3.6 μmol of quinuclidine, and 200 μl of acetonitrile were added to the residue.
Allowed to react for minutes. After removing the solvent under a nitrogen stream and dissolving the residue in hexane, Extreroot 1 was impregnated with 0.04N aqueous sodium hydroxide solution.
Excess labeling reagent and impurities were removed by passing through a column (manufactured by Merck). The substrate 4- is then eluted with dichloromethane.
Pregnene-17α,21-diol-3,20 dione and its reduction product 5α-pregnane-
Each hydroxyl group at the 21st position in 17α,21-diol-3,20-dione was 1-anthroylated to obtain a fluorescent compound. By subjecting these compounds to high performance liquid chromatography (HPLC) under the conditions shown below to separate and quantify them, 4-pregnene-17α,21
The amount of -diol-3,2-dione and 5α-pregnane-17α,21-diol-3,20-dione reduced to 5α-pregnane-17α,21-diol-3,20 dione was measured. HPLC conditions Column: Silica gel ODS 5μm (4.6x100mm), Mobile phase: Water/methanol (12:88) Flow rate: 1.0ml/min., Temperature: 35℃, Excitation wavelength: EX379nm, Fluorescence wavelength: EM459nm, Obtained by the above procedure. The inhibition rate of 5α-reductase activity was calculated by introducing the measured data into the following equation. Inhibition rate (%) = (1-a/b) x100 a: 5α- when test or reference sample is added
Pregnane-17α,21-diol Amount of 3,20-dione produced b: When no test or reference sample was added
5α-pregnane-17α,21-diol-3,20
-Dione production amount 3 Results The results were as shown in Table 2 below.
【表】
毒性試験例 (急性毒性)
本発明によるテストステロン−5α−リダクタ
ーゼ阻害剤の有効成分であるトリテルペン化合物
及びその塩の毒性は極めて低く、例えば3β−ヒ
ドロキシ−オレアン−12−エン18β−28−オイツ
クアシツド(オレアノール酸)をマウスに経口投
与する場合に、投与量4000mg/Kg迄において、死
亡例は認められなかつた。
製剤例1 (塗布用液剤)
下記の諸成分を配合し、常法により塗布用液剤
を調製した。
オレアノール酸 0.1mg
ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油 1.0mg
エチルアルコール 0.5ml
精製水 残部
1.0ml
製剤例2 (軟膏)
下記の諸成分を配合し、常法により軟膏を調製
した。
オレアノール酸 0.5(mg)
ステアリン酸 80
セチルアルコール 25
パラフイン 25
鯨蝋 30
流動パラフイン 50
ミリスチン酸インプロピル 50
ポリオキシエチレンセチルエーテル 20
グリセリンモノステアレート 10
メチルパラベン 1
ブチルパラベン 1
プロピレングリコール 70
精製水 残部
1.0(g)
製剤例3(シヤンプー)
下記の諸成分を配合し、常法によりシヤンプー
を調製した。
オレアノール酸 0.5(mg)
ラウリル硫酸エタノールアミン 200
ラウリルジメチルアミノ酢酸ベタイン 50
アミゾール 50
メチルパラベン 1
プロピルパラベン 1
ラウリル硫酸ナトリウム 50
精製水 残部
1.0(ml)
製剤例4(リンス)
下記の諸成分を配合し、常法によりリンスを調
製した。
オレアノール酸 0.5(mg)
ポリオキシエチレンオレイルエーテル 70
ポリオキシエチレンラノリン 10
塩化ベンザルコニウム液 50
メチルパラベン 1
プロピルパラベン 1
精製水 残部
1.0(ml)
製剤例5 (局皮用注射剤)
下記の諸成分を配合し、常法により局皮用懸濁
性注射剤を調製した。
オレアノール酸 3mg
プロピレングリコール 0.4ml
塩化ナトリウム 5mg
精製水 残部
1.0(ml)
参考例 (製剤用組成物)
トリテルペン化合物(オレアノール酸)を40倍
量のエチルアルコールに溶解させ、これに5倍量
のデキストリンを添加し、充分に混合して均一物
となし、次いで乾燥せることにより所望の製剤用
組成物を得た。
尚、上記の製剤用組成物においては担体として
デキストリンを用いているが、これは自体周知の
他の製剤用担体例えば澱粉、乳糖、軽質無水硅
酸、メタ硅酸アルミン酸マグネシウム等に代替す
ることができる。
製剤例6 (錠剤、コーテイング錠及び糖衣錠)
下記の諸成分を配合し、常法により錠剤を調製
した。
製剤用製成物(参考例による) 40(mg)
結晶セルロース 40
乳糖 47.5
コーンスターチ 25
ステアリン酸マグネシウム 7.5
1錠当り160mg
一方、このようにして得た錠剤の一部につい
て、下記のコーテイング処方(重量比)で且つ常
法により処理して水溶性被膜の施されたコーテイ
ング錠を得た。
水溶性被膜コーテイング処方:
ヒドロキシプロピルセルロース 40
マクロゴール6000 10
酸化チタン 3
タルク 5
精製水 942
更に、このようにして得たコーテイング錠の一
部について、下記のサブコーテイング処方及びカ
ラーリング処方(重量比)で且つ常法により処理
して糖衣錠を得た。
サブコーテイング処方:
白糖 40
ゼラチン 0.5
アラビアゴム 1.4
沈降炭酸カルシウム 22
タルク 15.6
精製水 20
カラーリング処方:
白糖 10
酸化チタン 73
レーキ色素 56
精製水 5
製剤例7 (坐剤)
下記の諸成分を配合し、常法により坐剤を調製
した。
製剤用組成物(参考例による) 200(mg)
カカオ脂 1500
1個当り 1700mg[Table] Toxicity test example (acute toxicity) The toxicity of the triterpene compound and its salt, which are the active ingredients of the testosterone-5α-reductase inhibitor according to the present invention, is extremely low. For example, 3β-hydroxy-olean-12-ene 18β-28- When oetakuacid (oleanolic acid) was orally administered to mice, no deaths were observed at doses up to 4000 mg/Kg. Formulation Example 1 (Liquid for coating) The following components were blended to prepare a liquid for coating by a conventional method. Oleanolic acid 0.1 mg Polyoxyethylene hydrogenated castor oil 1.0 mg Ethyl alcohol 0.5 ml Remaining purified water 1.0 ml Formulation example 2 (Ointment) The following ingredients were blended and an ointment was prepared by a conventional method. Oleanolic acid 0.5 (mg) Stearic acid 80 Cetyl alcohol 25 Parafine 25 Sperm wax 30 Liquid paraffin 50 Impropyl myristate 50 Polyoxyethylene cetyl ether 20 Glycerin monostearate 10 Methylparaben 1 Butylparaben 1 Propylene glycol 70 Purified water remainder 1.0 (g) ) Formulation Example 3 (Shampoo) The following ingredients were blended and a shampoo was prepared by a conventional method. Oleanolic acid 0.5 (mg) Ethanolamine lauryl sulfate 200 Betaine lauryl dimethylaminoacetate 50 Amizole 50 Methyl paraben 1 Propyl paraben 1 Sodium lauryl sulfate 50 Remaining purified water 1.0 (ml) Formulation example 4 (rinse) Mix the following ingredients and use A rinse was prepared by the method. Oleanolic acid 0.5 (mg) Polyoxyethylene oleyl ether 70 Polyoxyethylene lanolin 10 Benzalkonium chloride solution 50 Methylparaben 1 Propylparaben 1 Purified water remaining 1.0 (ml) Formulation example 5 (topical injection) The following ingredients A suspension injection for topical use was prepared by a conventional method. Oleanolic acid 3 mg Propylene glycol 0.4 ml Sodium chloride 5 mg Remaining purified water 1.0 (ml) Reference example (composition for formulation) Triterpene compound (oleanolic acid) was dissolved in 40 times the amount of ethyl alcohol, and 5 times the amount of dextrin was added to this. The desired pharmaceutical composition was obtained by adding the ingredients, mixing thoroughly to form a homogeneous substance, and then drying. Although dextrin is used as a carrier in the above pharmaceutical composition, it may be replaced with other well-known pharmaceutical carriers such as starch, lactose, light silicic anhydride, magnesium metasilicate aluminate, etc. Can be done. Formulation Example 6 (Tablets, Coated Tablets and Sugar-Coated Tablets) The following ingredients were blended and tablets were prepared by a conventional method. Pharmaceutical composition (according to reference example) 40 (mg) Crystalline cellulose 40 Lactose 47.5 Corn starch 25 Magnesium stearate 7.5 160 mg per tablet ) and treated in a conventional manner to obtain coated tablets with a water-soluble coating. Water-soluble film coating formulation: Hydroxypropyl cellulose 40 Macrogol 6000 10 Titanium oxide 3 Talc 5 Purified water 942 Furthermore, for some of the coated tablets obtained in this way, the following sub-coating formulation and coloring formulation (weight ratio) Sugar-coated tablets were obtained by processing in a conventional manner. Sub-coating formula: White sugar 40 Gelatin 0.5 Gum arabic 1.4 Precipitated calcium carbonate 22 Talc 15.6 Purified water 20 Coloring formula: White sugar 10 Titanium oxide 73 Lake pigment 56 Purified water 5 Formulation example 7 (Suppositories) The following ingredients are blended, Suppositories were prepared by a conventional method. Pharmaceutical composition (according to reference example) 200 (mg) Cocoa butter 1500 1700mg per piece
Claims (1)
シホスホリルオキシ−オレアン−12−エン−18β
−30−オイツクアシツド、3β−ヒドロキシスル
ホニルオキシ−オレアン−12−エン−18β−30−
オイツクアシツド、3β−ヒドロキシ−オレアン
−12−エン−18β−30−オイツクアシツド、3β−
ヒドロキシ−オレアン−12−エン−18β−28−オ
イツクアシツド、3β−ヒドロキシスルホニルオ
キシ−11−オキソ−オレアン−12−エン−18α−
29−オイツクアシツド及びこれらの塩から選択さ
れた物質を有効成分としていることを特徴とす
る、テストステロン−5α−リダクターゼ阻害剤。 2 脱毛症、座瘡及び前立腺肥大症の治療用に供
されることを特徴とする、特許請求の範囲第1項
に記載のテストステロン−5α−リダクターゼ阻
害剤。[Claims] 1. 3β-dihydroxyphosphoryloxy-olean-12-ene-18β, which is a triterpene compound
-30-Eutschacid, 3β-hydroxysulfonyloxy-olean-12-ene-18β-30-
Eutschacid, 3β-hydroxy-olean-12-ene-18β-30-eutsukuacid, 3β-
Hydroxy-olean-12-ene-18β-28-oisturic acid, 3β-hydroxysulfonyloxy-11-oxo-olean-12-ene-18α-
1. A testosterone-5α-reductase inhibitor, characterized in that the active ingredient is a substance selected from 29-eutonic acid and salts thereof. 2. The testosterone-5α-reductase inhibitor according to claim 1, which is used for the treatment of alopecia, acne, and prostatic hypertrophy.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP23272383A JPS60126218A (en) | 1983-12-12 | 1983-12-12 | Testosterone-5alpha-reductase inhibitor containing triterpene compound or its salt as active ingredient |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP23272383A JPS60126218A (en) | 1983-12-12 | 1983-12-12 | Testosterone-5alpha-reductase inhibitor containing triterpene compound or its salt as active ingredient |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS60126218A JPS60126218A (en) | 1985-07-05 |
| JPH0316926B2 true JPH0316926B2 (en) | 1991-03-06 |
Family
ID=16943772
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP23272383A Granted JPS60126218A (en) | 1983-12-12 | 1983-12-12 | Testosterone-5alpha-reductase inhibitor containing triterpene compound or its salt as active ingredient |
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-
1983
- 1983-12-12 JP JP23272383A patent/JPS60126218A/en active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
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| JPS60126218A (en) | 1985-07-05 |
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