JPH03255959A - ポリマー - Google Patents
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- JPH03255959A JPH03255959A JP2315252A JP31525290A JPH03255959A JP H03255959 A JPH03255959 A JP H03255959A JP 2315252 A JP2315252 A JP 2315252A JP 31525290 A JP31525290 A JP 31525290A JP H03255959 A JPH03255959 A JP H03255959A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明は特定な結合対である被分析物の検定に特に好適
な新規ポリマーを提供するものである。
な新規ポリマーを提供するものである。
この種の検定はよく知られている上に、広く適用されて
いる。上記結合対の例には抗原(ハブテン)/抗体、糖
/レクチン、ビオチン/アジピン(ストレプトアジピン
) 、DNA (RNA)鎖/相補DNA (RNA)
鎖や酵素/基質がある。
いる。上記結合対の例には抗原(ハブテン)/抗体、糖
/レクチン、ビオチン/アジピン(ストレプトアジピン
) 、DNA (RNA)鎖/相補DNA (RNA)
鎖や酵素/基質がある。
[従来技術の説明及びその課題]
これら検定では、例えば標識試薬を使用するが、この試
薬は特定結合対である。試薬は放射線により標識化して
もよく、あるいは標識化は抗原性か、あるいは蛍光、化
学ルミネッセンス、色素原、又は酵素信号システム部分
を形成することがきる被検出性単位に結合することによ
り行ってもよい。通常、試薬は反応位置をひとつ以上も
ち、各反応位置に被検出性モノマー単位を結合する。
薬は特定結合対である。試薬は放射線により標識化して
もよく、あるいは標識化は抗原性か、あるいは蛍光、化
学ルミネッセンス、色素原、又は酵素信号システム部分
を形成することがきる被検出性単位に結合することによ
り行ってもよい。通常、試薬は反応位置をひとつ以上も
ち、各反応位置に被検出性モノマー単位を結合する。
試薬分子の各反応位置に多くの被検出性単位を結合でき
なら、検定の感度を向上できると考えられる。従って、
本発明の目的はこの考えにより検定感度を改善すること
にある。
なら、検定の感度を向上できると考えられる。従って、
本発明の目的はこの考えにより検定感度を改善すること
にある。
[課題を解決する手段]
すなわち、本発明は結合アームにより結合した被検出性
単位の鎖からなるポリマーを提供するものである。好ま
しくは、本ポリマーは鎖ababab・・・ (aは被
検出性単位、そしてbは結合アームである)からなる。
単位の鎖からなるポリマーを提供するものである。好ま
しくは、本ポリマーは鎖ababab・・・ (aは被
検出性単位、そしてbは結合アームである)からなる。
ポリマーの単位数に臨界的意味はない。原理的には、被
検出性単位を2つだけ含むポリマーを使用すれば、検定
感度を倍増できる。従って、本発明で使用する用語“ポ
リマー”には、オリゴマーと考えてもよいポリマーも含
まれる。
検出性単位を2つだけ含むポリマーを使用すれば、検定
感度を倍増できる。従って、本発明で使用する用語“ポ
リマー”には、オリゴマーと考えてもよいポリマーも含
まれる。
[発明の好適な実施態様の説明]
十分な注意を払えば、はぼすべての単位を検出できる。
簡単に検出できる単位、例えば上記の検定等に標識とし
て通常使用されている単位は本発明で使用することがで
きる。好適なのは、抗原性か、または蛍光、化学ルミネ
ッセンス、色素原又は酵素信号システム部分を形成する
被検出性単位である。特に好適なのはフルオレセインや
クマリン系の蛍光単位である。被検出性単位をポリマー
鎖に組込むには、ある化学的変性が必要である。
て通常使用されている単位は本発明で使用することがで
きる。好適なのは、抗原性か、または蛍光、化学ルミネ
ッセンス、色素原又は酵素信号システム部分を形成する
被検出性単位である。特に好適なのはフルオレセインや
クマリン系の蛍光単位である。被検出性単位をポリマー
鎖に組込むには、ある化学的変性が必要である。
いうまでもないことだが、重要なことは、この化学的変
性が単位を検出できる性質を妨害しないことである。例
えば、被検出性単位が蛍光種の場合に重要なことは、こ
れがポリマーに組込んだ後に蛍光を発生できることであ
る。各種の被検出性単位をその被検出性を阻害せずに化
学的に変性できる方法については、よく知られているの
で、ここでは説明しない。
性が単位を検出できる性質を妨害しないことである。例
えば、被検出性単位が蛍光種の場合に重要なことは、こ
れがポリマーに組込んだ後に蛍光を発生できることであ
る。各種の被検出性単位をその被検出性を阻害せずに化
学的に変性できる方法については、よく知られているの
で、ここでは説明しない。
上記結合アームが被検出性単位を結合する。芳香族基や
環式基、あるいはエチレン系不飽和基があると結合がさ
らに強くなるので好ましい。好適なのは長鎖、例えば少
なくとも3個以上の炭素原子を含むものである。これは
離れた立体配置形の被検出性単位についても5嵌まるの
で、鎖中のひとつの単位の反応が(検出過程で)隣接単
位に妨害されることはない。結合アームについては、よ
く知られている。
環式基、あるいはエチレン系不飽和基があると結合がさ
らに強くなるので好ましい。好適なのは長鎖、例えば少
なくとも3個以上の炭素原子を含むものである。これは
離れた立体配置形の被検出性単位についても5嵌まるの
で、鎖中のひとつの単位の反応が(検出過程で)隣接単
位に妨害されることはない。結合アームについては、よ
く知られている。
特に、被検出性単位が疎水性の場合には、ポリマーを水
溶性化するのに必要は範囲まで結合アームを親水性にす
るのが好適である。水溶性ポリマーは一部の目的には有
用であるが、大半の検定系については不適なものである
。好適な結合単位は1.4−ジ(アミノアルキル)ピペ
ラジン系のものであり、ここでアルキル基の炭素原子数
は例えば2〜12である。例えば炭素原子数が2〜12
のアルキル鎖の両末端にアミ7基が結合したジ(アミノ
アルカン)系の結合アームはそれ程好ましくない。
溶性化するのに必要は範囲まで結合アームを親水性にす
るのが好適である。水溶性ポリマーは一部の目的には有
用であるが、大半の検定系については不適なものである
。好適な結合単位は1.4−ジ(アミノアルキル)ピペ
ラジン系のものであり、ここでアルキル基の炭素原子数
は例えば2〜12である。例えば炭素原子数が2〜12
のアルキル鎖の両末端にアミ7基が結合したジ(アミノ
アルカン)系の結合アームはそれ程好ましくない。
本ポリマーは標準的な方法によって調製すればよい。例
えば、2つのカルボン酸基又は1つのカルボン酸基、あ
るいは1つのアミノ又はチオシアネート基を与えるよう
に被検出性単位を変性する場合には、公知な複合方法、
例えばペプチド綜合試薬やジアルデヒドによって、ある
いはアミノ酸からポリペプチドを調製するために蛋白質
化学で使用されている標準的な方法によって重合を行え
ばよい。非線形ポリマーを除外しつつ線形ポリマーを確
実に形成するためには、鎖の一端を固体支持体に結合す
ればよい。
えば、2つのカルボン酸基又は1つのカルボン酸基、あ
るいは1つのアミノ又はチオシアネート基を与えるよう
に被検出性単位を変性する場合には、公知な複合方法、
例えばペプチド綜合試薬やジアルデヒドによって、ある
いはアミノ酸からポリペプチドを調製するために蛋白質
化学で使用されている標準的な方法によって重合を行え
ばよい。非線形ポリマーを除外しつつ線形ポリマーを確
実に形成するためには、鎖の一端を固体支持体に結合す
ればよい。
また、本発明は標識試薬において、試薬が特定な結合対
で、標識が上記ポリマーである標識試薬を提供するもの
でもある。試薬をポリマーで標識化するさいの化学作用
はモノマー標識化におけるそれと本質的に同じである。
で、標識が上記ポリマーである標識試薬を提供するもの
でもある。試薬をポリマーで標識化するさいの化学作用
はモノマー標識化におけるそれと本質的に同じである。
この標識試薬は従来方法で特定結合対の検定に使用する
ことができる。また本発明には、この検定を行う、標識
試薬を含むを検定キットも含まれる。
ことができる。また本発明には、この検定を行う、標識
試薬を含むを検定キットも含まれる。
なお、本発明によれば、被検出性単位はポリマ−鎖部分
(すなわち、ポリマー鎖のパックホーン部分を構成する
。
(すなわち、ポリマー鎖のパックホーン部分を構成する
。
これは、被検出性単位がポリマー鎖に単に結合している
ポリマーとは対照的である。
ポリマーとは対照的である。
被検出性単位がポリマー“バックボーン”部分を形成す
るポリマーには幾つかの長所がある。
るポリマーには幾つかの長所がある。
例えば、被検出性単位の間隔を調節できる。また、例え
ば、ポリマー鎖の長さも調節できる。更に、例示として
だけであるが、ポリマー溶解度も調節できる(例えば、
程度に差はあるが、ポリマーを不溶性に、あるいは可溶
性にできる。例えば、このためには、極性導入を調節す
ればよい)。
ば、ポリマー鎖の長さも調節できる。更に、例示として
だけであるが、ポリマー溶解度も調節できる(例えば、
程度に差はあるが、ポリマーを不溶性に、あるいは可溶
性にできる。例えば、このためには、極性導入を調節す
ればよい)。
なお、被検出性単位の間隔を調節しないと、例えば“自
己冷却(self−quenching)”及び/又は
被検出性単位の疎水性“ポケット”への入り込みにより
問題が生じることがある。このような問題が生じると、
検定レスポンスは予測できず、また再現不可能である。
己冷却(self−quenching)”及び/又は
被検出性単位の疎水性“ポケット”への入り込みにより
問題が生じることがある。このような問題が生じると、
検定レスポンスは予測できず、また再現不可能である。
また、例えばポリマー鎖長を調節しないと、検定レスポ
ンスの再現性が悪くなる。
ンスの再現性が悪くなる。
さらに、例えば溶解度を調節すると、(例えば水又は水
性媒体に対して)依然として有効な溶解度もつ相当な鎖
長のポリマーの調製が容易になる。
性媒体に対して)依然として有効な溶解度もつ相当な鎖
長のポリマーの調製が容易になる。
以下、本発明を添付図面について説明する。
第1図は本発明による7−ヒドロキシクマリン系ポリマ
ーの構造を示す図であり、 第2図は第1図ポリマーの調製工程を示す図であり、 第3図はポリマー調製に使用することができるクマリン
構造の別な例を示す図であり、そして第4図はポリマー
調製に使用することができるフロオレセイン構造の別な
例を示す図である。
ーの構造を示す図であり、 第2図は第1図ポリマーの調製工程を示す図であり、 第3図はポリマー調製に使用することができるクマリン
構造の別な例を示す図であり、そして第4図はポリマー
調製に使用することができるフロオレセイン構造の別な
例を示す図である。
第1図に本発明による標識試薬を示す。この試薬は抗原
である。標識は、4つの結合アームにより結合した(及
び抗原に結合した)4つの被検出性単位からなるポリマ
ーである。被検出性単位Aは7−ヒドロキシ−8−カル
ボキシ−4−メチルクマリン−3=酢酸から誘導した。
である。標識は、4つの結合アームにより結合した(及
び抗原に結合した)4つの被検出性単位からなるポリマ
ーである。被検出性単位Aは7−ヒドロキシ−8−カル
ボキシ−4−メチルクマリン−3=酢酸から誘導した。
また、結合アームBは1,4−ビス(3−アミノプロピ
ル)ピペラジンから誘導した。
ル)ピペラジンから誘導した。
第2図にこの試薬の調製工程を示す。濃硫酸を存在させ
た状態で、2−6−ジヒドロキシ安息香酸Cとジエチル
アセチルスクシネートDとを反応させて、エチルエステ
ルを生成してから、これをKOHにより7−ヒドロキシ
−8−カルボキシ4−メチルクマリン−3−酢酸Fに転
化する。工程2では、FのエチルエステルGを生成する
。工程3では、pH8,6でGと1,4−ビス(3アミ
ノプロピル)ピペラジンHとを重合して、線形ポリマー
■を得る。工程4では、この線形ポリマーと抗原を反応
させて、第1図に示す試薬を得る。
た状態で、2−6−ジヒドロキシ安息香酸Cとジエチル
アセチルスクシネートDとを反応させて、エチルエステ
ルを生成してから、これをKOHにより7−ヒドロキシ
−8−カルボキシ4−メチルクマリン−3−酢酸Fに転
化する。工程2では、FのエチルエステルGを生成する
。工程3では、pH8,6でGと1,4−ビス(3アミ
ノプロピル)ピペラジンHとを重合して、線形ポリマー
■を得る。工程4では、この線形ポリマーと抗原を反応
させて、第1図に示す試薬を得る。
第3図に6種類のクマリン構造F、J、K、L、M、N
を示す。すべて2つのカルボン酸基をもつ。化合物M及
びNのカルボン酸基は6位又は8位に存在することがで
きる。これは矢印で示しである。別なりマリン構造も可
能である。
を示す。すべて2つのカルボン酸基をもつ。化合物M及
びNのカルボン酸基は6位又は8位に存在することがで
きる。これは矢印で示しである。別なりマリン構造も可
能である。
第4図に各種のフルオレセン系被検出性単位の調製法を
示す。2,6−ジヒドロキシ安息香酸Pと、芳香族環に
置換基Rがあるフタル酸誘導体Qとを反応させる。Rの
性質に応じて、各種の反応生成物が生成する。No、基
の場合には、NH,、従ってNSCに還元でき、ポリマ
ーへのフルオレセン誘導体の結合を容易にできる。
示す。2,6−ジヒドロキシ安息香酸Pと、芳香族環に
置換基Rがあるフタル酸誘導体Qとを反応させる。Rの
性質に応じて、各種の反応生成物が生成する。No、基
の場合には、NH,、従ってNSCに還元でき、ポリマ
ーへのフルオレセン誘導体の結合を容易にできる。
寒塵旦ユ
それぞれ等モル量の2.6−ジヒドロキシ安息香酸(第
2図のC)とジエチルスクン不一ト(第2図のD)を混
合し、濃硫酸を加え、混合物を一夜放置して、エチルエ
ステルを生成した。
2図のC)とジエチルスクン不一ト(第2図のD)を混
合し、濃硫酸を加え、混合物を一夜放置して、エチルエ
ステルを生成した。
混合物を低温の蒸留水に加えることにより混合物からエ
チルエステルを析出させた。析出したエチルエステルを
フィルターにより分離・洗浄シてから、精製した。(精
製は、例えば結晶化やシリカゲルカラムクロマトグラフ
ィーにより行えばよい)。
チルエステルを析出させた。析出したエチルエステルを
フィルターにより分離・洗浄シてから、精製した。(精
製は、例えば結晶化やシリカゲルカラムクロマトグラフ
ィーにより行えばよい)。
はぼ5■のエチルエステルを5%メタノール系KOHと
混合し、50℃で一夜放置した。次に、回転蒸発器によ
りメタノールを真空除去し、IMHCCを加えて析出し
、濾過し、洗浄して、化合物F(第2図参照)を得た。
混合し、50℃で一夜放置した。次に、回転蒸発器によ
りメタノールを真空除去し、IMHCCを加えて析出し
、濾過し、洗浄して、化合物F(第2図参照)を得た。
実施例2
化合物Fを処理して、FのN−ヒドロキシスクシニミジ
ルエステル(則ち、第2図の化合物G)を得た。
ルエステル(則ち、第2図の化合物G)を得た。
テトラホウ酸ナトリウムの存在下pH8,6で、化合物
Gを2時間かけて化合物Hに少しづつ加えて、重合を行
い、線形ポリマー(オリゴマー)を得た。
Gを2時間かけて化合物Hに少しづつ加えて、重合を行
い、線形ポリマー(オリゴマー)を得た。
実施例3
実施例1における化合物Fの調製方法と同様にして化合
物J (第3図)を調製した。
物J (第3図)を調製した。
実施例4
実施例2の化合物Fの処理と同様にして化合物Jを処理
して、線形ポリマーを生成した。
して、線形ポリマーを生成した。
実施例5
実施例2及び4のポリマー反応混合物を高分子量ポリマ
ーの存在について分析した。
ーの存在について分析した。
2つの方法を用いた。
(a)SephadexG50カラムによるゲル・フィ
ルトレージョン・クロマトグラフィーこの方法では、テ
トラホウ酸ナトリウムバッファー (pH9,0)で平
衡化した50×1゜5cmカラムを用いて、45−7時
間の流量で1.5−の反応混合物をクロマトグラフィー
して、1.8dの画分を得た。
ルトレージョン・クロマトグラフィーこの方法では、テ
トラホウ酸ナトリウムバッファー (pH9,0)で平
衡化した50×1゜5cmカラムを用いて、45−7時
間の流量で1.5−の反応混合物をクロマトグラフィー
して、1.8dの画分を得た。
(b)反応混合物を濃縮し、不溶物を除去し、5gの重
炭酸/炭酸ナトリウムバッファー(pH8,5)により
(ビイスキング・チューブを使用して)3〜7日間(透
析バッファーは毎日変更)透析した。得られたものを(
a)に記載したようにクロマトグラフィーした。
炭酸/炭酸ナトリウムバッファー(pH8,5)により
(ビイスキング・チューブを使用して)3〜7日間(透
析バッファーは毎日変更)透析した。得られたものを(
a)に記載したようにクロマトグラフィーした。
カラム画分の360nm吸収及び蛍光(370nm〜4
70nm)を測定した。試験例すべてにおいて、カラム
・ボイド・ボリュームにピークがあり、成分の分子量が
50000以上であることを示した。
70nm)を測定した。試験例すべてにおいて、カラム
・ボイド・ボリュームにピークがあり、成分の分子量が
50000以上であることを示した。
より低い分子量物質は、後の段階でカラムに生じた大き
なピークに溶離した。
なピークに溶離した。
なお、透析により低分子量置換基(例えば、10000
〜12000未満)を除去でき、透析膜には高分子量物
質が残り、これを回収する。
〜12000未満)を除去でき、透析膜には高分子量物
質が残り、これを回収する。
数回のカラム操作により得た高分子量ピークをプールし
、220〜700nmにおける走査により分析し、蛍光
レベルについて測定した(定量測定)。
、220〜700nmにおける走査により分析し、蛍光
レベルについて測定した(定量測定)。
これら物質は出発蛍光色素単位(360nmにピーク)
と同様な吸収プロフィルを示した。また、高レベルの特
徴的な明るい青色蛍光を呈した。
と同様な吸収プロフィルを示した。また、高レベルの特
徴的な明るい青色蛍光を呈した。
吸収レベル及び蛍光レベルはいずれもpH依存性で、p
H9,8〜10.3で最大吸収及び蛍光を示した。
H9,8〜10.3で最大吸収及び蛍光を示した。
実施例6
ステロイドハプテンに複合するために、実施例2で調製
したポリマー(則ち、化合物I)を使用した。
したポリマー(則ち、化合物I)を使用した。
すなわち、ステロイド誘導体17−t−ヒドロキシプロ
ゲストロン−3−カルボキシメチルオキシムをそのN−
ヒドロキシスフシミジル誘導体(活性エステル)に誘導
することにより活性化した。この誘導体(500μg)
を(100μeジオキサン中において)ポリマー■の溶
液(2−の重炭酸ナトリウムバッファー中20■、pH
8,6)に加え、周囲温度で2時間反応させた。
ゲストロン−3−カルボキシメチルオキシムをそのN−
ヒドロキシスフシミジル誘導体(活性エステル)に誘導
することにより活性化した。この誘導体(500μg)
を(100μeジオキサン中において)ポリマー■の溶
液(2−の重炭酸ナトリウムバッファー中20■、pH
8,6)に加え、周囲温度で2時間反応させた。
生成反応混合物を5ephadexG625カラムによ
りクロマトグラフィーした。高分子量物質を含むクロマ
トグラフィー操作からの初期ピークを集めた。
りクロマトグラフィーした。高分子量物質を含むクロマ
トグラフィー操作からの初期ピークを集めた。
実施例7
実施例6を繰り返したが、使用したステロイド誘導体は
17−β−エストラジオール−3−カルボキシメチルエ
ーテルであった。
17−β−エストラジオール−3−カルボキシメチルエ
ーテルであった。
実施例8
17−ff−ヒドロキシプロゲステロンに対する抗原(
I gG製剤)を羊の抗血清から単離し、文献に記載さ
れている実験記録に従い臭化シアノゲン活性化により市
販の磁化性ミクロセルロース粒子に結合した。
I gG製剤)を羊の抗血清から単離し、文献に記載さ
れている実験記録に従い臭化シアノゲン活性化により市
販の磁化性ミクロセルロース粒子に結合した。
実施例9
実施例8を反復したが、17−β−エスラジオールに対
する抗原(I gG製剤)を羊の抗血清から単離し、市
販の磁化性ミクロセルロース粒子に結合した。
する抗原(I gG製剤)を羊の抗血清から単離し、市
販の磁化性ミクロセルロース粒子に結合した。
実施例10
実施例8で調製した抗原結合粒子のアリコツト(10m
Mの燐酸バッファーに懸濁したほぼ20μ9粒子を含む
50μg;pHは0.1MNa(1!、0.2%ゼラチ
ンで7.2に調整)を実施例6で調製したポリマーハブ
テンのアリコツト(100μg)と30分間振とう混合
し、粒子をバッファーで3回洗浄し、20%アセトニト
リルを含む0゜1Mグリシン−NaOHバッフy−(p
H10゜4)500μgと共に15分間放置した。なお
、アセトニトリル含有高pHバッファーも抗原結合ハブ
テンを溶離することか知られている。
Mの燐酸バッファーに懸濁したほぼ20μ9粒子を含む
50μg;pHは0.1MNa(1!、0.2%ゼラチ
ンで7.2に調整)を実施例6で調製したポリマーハブ
テンのアリコツト(100μg)と30分間振とう混合
し、粒子をバッファーで3回洗浄し、20%アセトニト
リルを含む0゜1Mグリシン−NaOHバッフy−(p
H10゜4)500μgと共に15分間放置した。なお
、アセトニトリル含有高pHバッファーも抗原結合ハブ
テンを溶離することか知られている。
(磁気プレートを使用して、粒子を沈降させた後、溶離
した上澄みの蛍光を測定した。対照実験と比較した場合
、相当な蛍光レベルが認められた。
した上澄みの蛍光を測定した。対照実験と比較した場合
、相当な蛍光レベルが認められた。
これにより、ポリマー/)\ブテン製剤が共有結合した
、免疫学的に活性なノ・ブテンを含むことが判った。
、免疫学的に活性なノ・ブテンを含むことが判った。
実施例11
抗原結合粒子として実施例9で調製したものを、そして
ポリマー/ハブテン製剤として実施例7で調製したもの
を使用した以外は、実施例10に従った。
ポリマー/ハブテン製剤として実施例7で調製したもの
を使用した以外は、実施例10に従った。
蛍光測定により、ポリマー/ノ・ブテン製剤が共有結合
した、免疫学的に活性なノ\ブテンを含んでいることが
判った。
した、免疫学的に活性なノ\ブテンを含んでいることが
判った。
実施例12
検定における固相抗体として、抗原結合磁化性粒子を使
用した。検定は、蛍光トレーサーとして(実施例6で調
製した)ポリマー/ハブテン製剤を使用して蛍光免疫検
定法で実施した。
用した。検定は、蛍光トレーサーとして(実施例6で調
製した)ポリマー/ハブテン製剤を使用して蛍光免疫検
定法で実施した。
抗原及びポリマー/ノ・ブテン製剤を適当に希釈したと
ころ、拮抗ハブテン(17−σ−ヒドロキシプロゲスト
ロン)が10ng存在すると、トレーサーの80%以上
の結合を阻害することが判つた。
ころ、拮抗ハブテン(17−σ−ヒドロキシプロゲスト
ロン)が10ng存在すると、トレーサーの80%以上
の結合を阻害することが判つた。
拮抗ハプテンのレベルをOから10ng/検定試験管に
漸増させた実験から標準曲線を求めた。
漸増させた実験から標準曲線を求めた。
実施例13
ポリマー/ハブテン製剤として実施例7で調製したもの
を、そして拮抗ハプテンとして17−βエストラジオー
ルを使用した以外は、実施例12に従った。
を、そして拮抗ハプテンとして17−βエストラジオー
ルを使用した以外は、実施例12に従った。
第1図は本発明による7−ヒドロキシクマリン系ポリマ
ーの構造を示す図であり、 第2図は第1図ポリマーの調製工程を示す図であり、 第3図はポリマー調製に使用することができるクマリン
構造の別な例を示す図であり、そして第4図はポリマー
調製に使用することができるフロオレセイン構造の別な
例を示す図である。
ーの構造を示す図であり、 第2図は第1図ポリマーの調製工程を示す図であり、 第3図はポリマー調製に使用することができるクマリン
構造の別な例を示す図であり、そして第4図はポリマー
調製に使用することができるフロオレセイン構造の別な
例を示す図である。
Claims (9)
- (1)結合アームにより結合した被検出性単位の鎖から
なるポリマー。 - (2)結合アームを親水性にすることにより水溶性にじ
た請求項第1項に記載のポリマー。 - (3)結合アームが1,4−ジ(アミノアルキル)ピペ
ラジンからなる請求項第1項又は第2項に記載のポリマ
ー。 - (4)被検出性単位が抗原性か、あるいは蛍光、化学ル
ミネッセンス、色素原又は酵素信号システム部分を構成
する請求項第1〜3項のいずれか1項に記載のポリマー
。 - (5)被検出性単位が蛍光発光性である請求項第4項に
記載のポリマー。 - (6)被検出性単位がフルオレセイン又はクマリン系で
ある請求項第5項に記載のポリマー。 - (7)標識試薬において、試薬が特定な結合対で、標識
が請求項第1〜6項のいずれ1項に記載のポリマーであ
る標識試薬。 - (8)試薬が特定な結合対である標識試薬を使用する特
定な結合対を検定する方法において、標識試薬として請
求項第7項に記載の標識試薬を使用する検定方法。 - (9)請求項第7項に記載の標識試薬を含む、請求項第
8項に記載の検定方法を行うため検定キット。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| GB898926407A GB8926407D0 (en) | 1989-11-22 | 1989-11-22 | Polymers |
| GB8926407.1 | 1989-11-22 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH03255959A true JPH03255959A (ja) | 1991-11-14 |
Family
ID=10666728
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2315252A Pending JPH03255959A (ja) | 1989-11-22 | 1990-11-20 | ポリマー |
Country Status (4)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US5225516A (ja) |
| EP (1) | EP0430510A3 (ja) |
| JP (1) | JPH03255959A (ja) |
| GB (2) | GB8926407D0 (ja) |
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
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| JP3499568B2 (ja) * | 1995-01-23 | 2004-02-23 | ビオーラド・パストゥール | 免疫酵素的コンジュゲート、その製造方法およびその使用 |
| FR2734365B1 (fr) * | 1995-05-18 | 1999-04-09 | Pasteur Sanofi Diagnostics | Conjugue immunoenzymatique, son procede de preparation et ses applications |
| FR2729760B1 (fr) * | 1995-01-23 | 1997-08-14 | Pasteur Sanofi Diagnostics | Conjugue immunoenzymatique, son procede de preparation et ses applications |
| US5663054A (en) * | 1995-03-03 | 1997-09-02 | Abbott Laboratories | Determination of steroids by competitive immunoassay |
| US5534132A (en) * | 1995-05-04 | 1996-07-09 | Vreeke; Mark | Electrode and method for the detection of an affinity reaction |
| WO2002012251A1 (en) | 2000-08-04 | 2002-02-14 | Sensors For Medicine And Science, Inc. | Detection of analytes in aqueous environments |
Family Cites Families (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4326008A (en) * | 1976-08-27 | 1982-04-20 | California Institute Of Technology | Protein specific fluorescent microspheres for labelling a protein |
| US4267234A (en) * | 1978-03-17 | 1981-05-12 | California Institute Of Technology | Polyglutaraldehyde synthesis and protein bonding substrates |
| US4268663A (en) * | 1979-04-10 | 1981-05-19 | Syva Company | Macromolecular glycosidase substrates |
| US4325903A (en) * | 1980-07-15 | 1982-04-20 | Celanese Corporation | Processing of melt processible liquid crystal polymer by control of thermal history |
| US4434150A (en) * | 1981-10-19 | 1984-02-28 | Ortho Diagnostic Systems, Inc. | Immunological reagents employing polymeric backbone possessing reactive functional groups |
| US4687732A (en) * | 1983-06-10 | 1987-08-18 | Yale University | Visualization polymers and their application to diagnostic medicine |
| US4840977A (en) * | 1987-10-01 | 1989-06-20 | General Electric Company | Polymeric iodonium salts, method for making, and heat curable compositions |
| IT1217993B (it) * | 1988-02-01 | 1990-03-30 | Boehringer Biochemia Srl | Metodo analitico impiegante reagneti biospecifici marcati con macromolecole colorate |
-
1989
- 1989-11-22 GB GB898926407A patent/GB8926407D0/en active Pending
-
1990
- 1990-11-16 EP EP19900312496 patent/EP0430510A3/en not_active Withdrawn
- 1990-11-19 GB GB9025087A patent/GB2238384A/en not_active Withdrawn
- 1990-11-20 JP JP2315252A patent/JPH03255959A/ja active Pending
- 1990-11-21 US US07/617,019 patent/US5225516A/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| GB8926407D0 (en) | 1990-01-10 |
| GB9025087D0 (en) | 1991-01-02 |
| EP0430510A2 (en) | 1991-06-05 |
| EP0430510A3 (en) | 1992-03-04 |
| US5225516A (en) | 1993-07-06 |
| GB2238384A (en) | 1991-05-29 |
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