JPH03505670A - 細菌におけるポリペプチドの翻訳後修飾およびそのための遺伝子を誘導するリーダー配列 - Google Patents
細菌におけるポリペプチドの翻訳後修飾およびそのための遺伝子を誘導するリーダー配列Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
細菌におけるポリペプチドの翻訳後修飾およびそのための遺伝子を誘導するリー
ダー配列侠血公団
本発明は成熟形態に達する前に、アミノ酸配列の翻訳後修飾(Post−tra
nslational madification)を必要とする蛋白質の形質
発現に関する。この蛋白質は普通の核酸によるために暗号化された(coded
)20個の共通アミノ酸以外のアミノ酸を示している。
特に、前駆体ポリペプチドとの接合において発現した場合に、特異的アミノ酸の
翻訳後修飾を誘導することができるリーダーペプチド配列が確認されている。ま
た、このリーダー配列を用いて改良された組成物を形成する方法が提案されてい
る。
従来技術の背景
天然、抗生物質活性を有するポリペプチドを含むポリペプチドは、細菌および他
の生物の発現生成物(expression products)として、遺伝
暗号により特定された20個の共通酸以外のアミノ酸を含んでいることが確認さ
れている。2種の重要な物質、すなわち、ナイシンおよびスブチリンの構造を第
1図に示していこれらのポリペプチドおよび異常なアミノ酸の他の物質における
ランチオエン、β−メチルランチオニエンD−アラニン、デヒドロアラニンおよ
びデヒドロブチリンの存在は、遺伝暗号によって指示された普通の蛋白質生合成
以外のある物がこれらの自然に生ずるポリペプチドの成熟形態の形質発現に含ま
れていることを暗示している。それにもかかわらず、これらポリペプチドの出現
を蛋白質生合成阻害剤によって遮断できることが研究によって確められている(
ヒユースト氏らrCanadianJournal of Microbiol
ogy J 17.1379〜1384 (1971) ) oまた、成熟形態
の前駆ペプチドは成熟ペプチドに対する抗体により検出できることが知られてい
るにジオ氏らrBiochemistryBiophysics Re5ear
ch CommunityJ 116.751〜851 (1983))。
これらの観察、およびナイシン、スブチリンおよび関連蛋白質に関する他の観察
はリポソーム機構を介する前駆体の一次生合成、引き続く翻訳後修飾を含む機構
を暗示している。
これらの蛋白質およびその潜在的変異体の活性は、異質DNA断片を含有し、か
つ蛋白質の生成のために暗号化する(coding)誘導微生物の分野における
実質的な活性を生ずるのに一般的に興味がある。ゴンザレズ氏らの米国特許第4
,716,115号明細書はかかる誘導微生物に指向されている。しかしながら
、成熟蛋白質のために直接に暗号化する遺伝配列を含有する不可能性、および成
熟蛋白質において生ずるのに必要な翻訳後修飾の性質に関する情報の欠乏が、こ
れらの蛋白質について暗号化する特異的遺伝子に関する微生物のクローニングを
妨げ、およびおそらく達成できる高度の活性または他の高められた特性を有する
ランダム変異体および部位特異的突然変異蛋白質を生ずるという試みは失敗して
いる。
それ故、これらの異常なアミノ酸含有ポリペプチドを生ずる機構の包括的な知識
に達成し、およびこれらのペプチドの生成のために特別に暗号化し、かつ一般に
入手しうる細菌の形質転換に適当な遺伝子を移入する発現ベクターを発生する生
物工学分野の目的が残っている。
^咀Ω皿丞
本発明者は、ポリペプチドの前駆体を暗号化する(encod ing )遺伝
子と結合した場合に、成熟形態を得るために前駆体の翻訳後修飾において誘導し
または関与する遺伝子リーダー配列を確認した。可能なリポソーム結合部位を含
む全遺伝子の構造はこれらのペプチドの製造のための翻訳後修飾モードを確認す
ることができる。
前駆体の形質発現、最終的にスブチリンの成熟蛋白質についての遺伝子を第2図
に示す。ナイシンなどのような異常なアミノ酸を含む他の蛋白質の翻訳後修飾を
促進するのに用いることのできるリーダー配列を第3図に示す。また、スブチリ
ンと有意な相同性を有する別のリーダー配列を確認し、全遺伝子配列を第3図に
示している。
型皿Ω皿生友脱皿
第1図はグロス氏らrPratein Cross−1jnkjngj131〜
153ページ(1977)において決定されている僅かな抗生物質蛋白質ナイシ
ンおよびスブチリンについての高次構造を示している。
第2図は翻訳後修飾の誘導の原因となるリーダー断片を含む適当な前駆体ペプチ
ドについて暗号化する遺伝子を含有する完全消化断片(entire dige
sted fragment)についての遺伝子塩基対配列を示している。推定
リポソーム結合部位をR,B、 S、標識付けし、リーダー断片の上に星印を付
し、修飾を受ける前駆体のこれらのアミノ酸を肉太活字で示している。
第3図は、ナイシンに対する遺伝暗号についての配列、および同じタイプの標識
を付し、かつ第2図におけると同じ意味を有する相当する前駆体ポリペプチドに
ついての例を示している。
発明を実施する好適例
興味ある蛋白質についてのポリペプチド前駆体に対する、それ故、蛋白質の成熟
形態の最終的な形質発現に対する遺伝子に達すると、与えられた蛋白質の推定の
アミノ酸前駆体配列に基づく遺伝子プローブ(pene probe)を生じさ
せる必要がある。
説明しやすくするために、同じ方法学を後述するナイシンの前駆体についての全
遺伝子を定めるのに用いることができ、その上に、成熟形態の類似する異常なア
ミノ酸を含有する蛋白質を暗号化する付加遺伝子に適用できるけれども、先づス
ブチリンについての遺伝子および前駆体に関して記載する。
スブチリン生成菌株をアメリカン タイプ カルチャー コレクション(Ama
rican Type Cu1ture Co11ection)、ロックヴイ
ル、λIDから得た。この菌株をフィーネイ氏ら(1948)による初めに記載
したニシオ氏ら(1983)の高スクロース培地Aで培養した。この培地はリッ
トル当り 11.7gのくえん酸、4gのNat304.4.2gの(NH4)
2HPO4,5gの酵母エキス(シフ:)(Dirco))、100 mlの塩
混合物(7,62g KCL 4.18g MgCl、−6H20,0,54
3gMnCI2−4H20、0,49gのFeC1,・6H20および0.20
8gのZnCItを10100OH2Oに混合した)、およびpHを6.8〜6
.9にするのに十分なNH,OHを含有している。供給原料(stocks)は
1.5%寒天を含有するLB平板(LB plates)(リットル当り10g
トリプトン、5g酵母エキス、10g NaC1)上に維持した。
クローン 離およびハイブリッド形成手順 スブチリン遺伝子プローブはスブチ
リンの推定アミノ酸前駆体配列に基づいて設計した。成熟スブチリン分子は32
種のアミノ酸だけを含有し、低コドン縮重(low codon deyene
racy)のいかなる領域を含有しない。それ故、スブチリン前駆体におけるア
ミノ酸の短い伸びを暗号化するすべての可能な配列を含有するプローブ混合物を
調製する代りに、単一の長いプローブをラセ氏rJrurnal ofMole
cular Biology J 183.1〜12ページ(1985)の方法
に従って合成した。コドン内の不明瞭な部分は、α−アミラーゼについて暗号化
した既知のB、スブチリスから構成したコドン頻度慣習表に従い経験的推測によ
って選択した(ヤング氏らrNucleic Ac1ds Re5earchJ
11.237〜249ページ(1983)。
プローブと標的遺伝子配列との間の配列相同(sequencehomolog
y)は予言できないため、ハイブリッド形成および洗浄条件を経験的に最適にす
る必要がある。96−rnerrゲスマー(guessmer) Jはハンセン
氏ら(1982)により記載されたようにジスルフィド架橋BAC上で精製した
ポリヌクレオチド キナーゼを用いて末端標識付けし、6×標準食塩−くえん酸
(SSC)塩強さを用い37〜60℃の範囲において7℃温度間隔で全ATCC
6633ゲノムDNAのEcoRI消化物にハイブリッドした。次いで、別のス
トリップを2xSSCにおいて4℃の温度増加を用いて洗浄した。信号強さおよ
び特異性の最良の組合せを与えるハイブリッド形成および洗浄条件を、ラムダJ
l(lambda Jl)に構成したATCC6633の部分Mbo lライブ
ラリの後スクリーニングについて選定した。プローブおよび標的を著しく相同し
たハイブリッド形成を上述する同じハイブリッド形成緩衝液で行ったが、しかし
ハイブリッド温度を70℃にし、洗浄を0. I X SSCにおいて52℃で
行った。DNA配列分析をユナイテッド ステーブ バイオケミカル コーポレ
ーション(United 5tates BiockemicalCorp、
)より供給された修飾T7ポリメラーゼ「シークエナーゼ(Sequenase
) J システムを用いて行った。
RNA分離およびSl−マツピング 全RNAをウルマネン氏ら(1985)
の方法を用いて分離した。St−マツピングはダビス氏ら(1986)の方法に
よって行った。この方法では、合成オリゴヌクレオチドを、鋳型としてクローン
化遺伝子を含有する一本鎖M13 DNAを用いるプライム第二鎖(prime
5econd 5trand)に用いる。標識は〔α−32p−dATP]か
ら32pとして移入した。短い標識時間(labeling time)後、過
剰の非標識dATPを加え、第二鎖合成を完了するように継続した。適当な制限
酵素を用いて二重鎖生成物をカットし、標識鎖を変性アガロースゲルの電気泳動
、次いで断片を局在化するオートラジオグラフィー、ゲルの切除およびDNAの
電気泳動溶出によって得た。電気泳動溶出後、DNAをl:1クロロホルム対フ
エノールで抽出し、エタノールで沈殿させた。標識断片を全mRNAに二三の異
なる温度でハイブリッドし、非ハイブリッド一本鎖核酸をヌクレアーゼS1を用
いて分解した。生成物を同じ合成オリゴヌクレオチドをプライマーとして用いて
生成したジデオキシ配列反応(dideoxysequencing reac
tions)のセットに沿って変性配列ゲル上で電気泳動した。配列レーン(s
equencing 1anes)に関して保護標識DNA断片の位置はmRN
Aの端部を示した。
RNAおよび蛋白 析、 ノーザン分析をゼータ−プローブ ナイロン膜(
Bio−Rad)におけるRNA調製のエレクトロプロツテング(electr
obbotting)アクリルアミドゲルにより行った。蛋白質はスワングーム
ンカース(swankamd Munkres) (1971)のポリアクリル
アミドゲル システムにおける電気泳動により分析し、パイオーレッド(Bio
−Rad)試薬を用いて銀染色した。
スブチリン活性をモリス氏ら(1984)によりナイシンについて記載されてい
るようにして測定した。
上述する材料および方法を用いて、ゲスマーによりハイブリッドする配列を含む
断片をM13にクローン化し、配列した。配列をスブチリス遺伝子プローブに対
する相同性について調べ、また全読取り枠にコンピューター翻訳した。これらを
推定スブチリン前駆体配列について調べた。完全に一致し、32個の残基の正確
な配列を含有することを確かめた。配列を第3図に示す。
上述すように、この配列は、翻訳後、修飾して異常なアミノ酸を有する成熟蛋白
質を得るセリン、スレオニンおよびシスティンを含有する前駆体ポリペプチドを
暗号化する蛋白質を含んでいる。(−10)領域は他の細菌に観察されるように
共通(consensuo)原核プロモーター(TATAAT)に極めてよく一
致する(シエベンリスト氏らrceHJ 20.269〜281ページ(198
0)。
推定リポソーム結合部位をRBSとして標識し、JrDNA J 3.17〜2
1ページ(1984)に報告されているようにBニスブチリス において観察し
た12塩基対配列を包囲する。翻訳開始は本発明のリーダー配列が開始するMe
tコドンのすぐ下流で始まるように位置する必要がある。細胞の外側のスブチリ
ンの輸送に役割を演するスブチリン前駆体ペプチド リーダー領域は他の原核輸
出(prokaryotic exported)蛋白質の配列に比較して異常
であった。
ナイシン
上述する研究方法は抗生物質ナイシンについても当てはまり、前駆体について暗
号化する生成遺伝子配列を第3図に示す。
細菌株、クローニング ベクター、および培養条件、 ナイシン生成ストレプト
コッカス ラクチス(Streptococcus Iactis)ATCC1
1454をアメリカン タイプ カルチャー コレクション(ロックヴイル、M
D)から得た。菌株は25%グリセーロルを含有するATCC培地17 (10
0g脱脂乳粉末、100gトマト ジュース、5g酵母エキス、pt(7)に−
20℃で貯蔵した。試験供給材料を1.2%LB寒天平板(リットル当り 10
gバタトートリプトン、5gバクトー酵母エキス、10g NaC1)上に維持
した。リットル当り5gのバクトーペプトン(デフコ)、5gのバクト・ソイト
ン(Soytone (デフml) ) 、2.5gの酵母エキス(デフコ)、
5gとビーフ エキス(デフコ)、0.5gのアスコルビン酸、5gのラクトー
ス(またはグルコース) 、19gのβ−グリセロりん酸二ナトリウム(イース
トマン)および0.12gの無水MgSO4からなるK(17培地(8)を用い
て、ナイシン生成、ゲノム ライブラリー構造および全RNA分離についてS、
ラクチス(S、 1actis)を培養した。有機体を2%接種物を用い、通気
せずに32℃で適当量のN117培地に生長した。
ナイシン生成についての検定に用いるバチルス セリユースT(Bacillu
s cereus T)を調製し、当業技術において記載するように貯蔵した。
抗生物質活性検定をS、ラクチス培養上澄液のフラクションを用いて上述するよ
うに行った。
竺[分風土S、 S、ラクチスATCC1,1454を500m lのM17
培地において、通気せず32℃で30時間にわたって温置した。細胞を遠心分離
によって採収し、25mM PBS (リットル当り8g NaCl。
1、4g NaJPO4,1,2m11Nt(C1)で洗浄した。細胞を15m
1の50 mMTrjs−HCI(pH7,6)に懸濁し、次いで33マイクロ
グラム/mlのムッタノリシン(muta口oltsin) (シグマ)でゆる
やかに撹拌(12)Lながら37℃で15分間にわたり消化した。次いで、5m
lの5TEP溶液(13) (0,5%SO3,0,4M EDTAにおける5
0mM Tris−MCI、および1mg/mlプロテイナーゼK)を添加し、
随時撹拌しながら37℃で30分間にわたって温置した。混合物を1容量のCH
Cl、、 1容量の(50: 50)フェノール: CHCl、および最後に1
容量のCMCl3で順次抽出した。10分の一容量の3MNaアセテートおよび
2容量のエタノールを添加し、DNAをスポールしく5pooled) 、20
m1の50mM Tris−HCI 、および50マイクログラム/mlの膵臓
デキシリボヌクレアーゼ(RNase) (シグマ)を含有する4mλ4 ED
TAに再懸濁した。溶液を、50mM Tris−HCIおよび4 rnM E
DTAの緩衝液に対し1回緩衝液を替え(one buffer Change
)で、4℃で16時間にわたって透析した。DNAを2.5M酢酸アンモニウム
の存在で2回、エタノール沈殿し、最後に2mlの10mMTris−HCI(
pH7,6)に溶解した。
ナイシン遺伝子を調べるために用いた。/%イブリッド形成条件は上述するよう
に最適にした(2)。2つのオリゴマー プローブ(oligomeric p
robes)をバイオサーチ モデル(BiosearchModel)870
0 DNAシンセサイザーを用いる化学合成によって作った。1つのプローブと
しては推定ナイシン前駆体配列内の低コドン縮重の領域に対して設計した20−
mer混合プローブを用いた。
もう1つのプローブとしてはラセ(Lathe)法を用いて設計した単一配列1
03−merオリゴヌクレオチド プローブを用いた。また、バチルス スブチ
リスATCC6633(2)から予じめクローン化したスブチリン遺伝子を含有
する1、lkb制限断片とした天然DNAプローブを用いた。
ナイシン遺伝子のライブラリー構造および分離、 ラムダJ1におけるS、ラ
クチスATCC11454DNAの全ゲノム ライブラリーを構成し、上述する
ようにスクリーニングした。陽性クローンを制限分析によって地図を作り、他の
分析のためにpLIc9およびpTZ 19 Uプラスミド ベクターに、およ
び配列の決定(sequencing)のためのM13mp18およびM13m
p18にサブクローン化した。配列決定はユナイテッド ステーブ バイオケミ
カルカンパニーから得られたシークエナーゼ キットの修飾T7ポリメラーゼお
よびプロトコールを用いるジデオキシ ターミネーション法によって行った。
RNA分離およびノーザン プロット分析、 全RNA分離を立ルマネン氏らの
方法により行った。RNA分画化を変性アクリルアミド ゲル上で行い、ゼータ
プローブ(バイオレット(Biorad)ナイロン膜上でエレクトロブロッテ
ングしくelectro−blotted)、上述するようにハイブリッド形成
した。
■亘!分析、 蛋白質をスワングームンカースのポリアクリルアミドゲル上で電
気泳動により分析し、パイオーレッド試薬を用いて銀染色した。ナイロン膜上を
モリス氏らの方法によりかようにして、スブチリン、ナイシン、および異常アミ
ノ酸を含有する他の蛋白質を遺伝暗号により暗号化しないモードを確立した。第
2および3図に示すスブチリンおよびナイシンについての遺伝子内に暗号化した
特異的リーダー配列は、上述する異常アミノ酸に転化する前駆体残基Ser、
ThrおよびCysを含み、脱水、およびチオエーテル架橋およびD−アミノ酸
を生ずる位体転化(stereoinversion)を伴うポテンシアル求電
子付加反応を含む反応を受ける特異的アミノ酸の翻訳後修飾のために必要とされ
る。リーダーを含む前駆体ポリペプチドについての遺伝暗号化を、通常の科学技
術を介して、例えばナイシンの場合天然生産者(natural peoduc
er)としてストレプトコッカスラクチスおよび例えば米国特許第4.716.
115号明細書に記載する形質発現細菌を含む任意の発現ベクターに挿入するこ
とができる。同様の発現ベクターを他の蛋白質について確認することができる。
上述する本発明に伴って、エビデルミン(epidermin) 、他のランチ
オエン含有ポリペプチド抗生物質についての遺伝配列をシネル氏らrNatur
eJ 333.276〜278ページ(1988)に発表した。3種の抗生物質
についてのリーダー配列のアミノ酸残基が共通進化原点(common evo
lutionary origin)を示すのに十分な相同を反映するけれども
、この時に、各アミノ酸配列、およびそれらの相当する遺伝配列に有意な差違が
あることが明らかにされている。しかしながら、表1に示すように、3つのリー
ダーアミノ酸配列のバイトロバシック インデックス(hydropathic
1ndex)は驚くばかりに類似している。特に、構造領域に隣接して、高い
親水性の領域があり、引続いて平均して中性で、しかも構造領域から遠位の親水
性残基と疎水性基と間を交互する領域がある。実際に、同じグラフには、これら
の残基に関する驚くべき相互関係がある。これらの相互関係は、各リーダー領域
が親水性残基における中断をいずれの場合でも全く同じ位置において1つの疎水
性残基によりもたらされるまで続く。それ故、本発明は、構造領域における修飾
を達成するのに指向するまたは促進するリーダー領域を暗号化することにより修
飾を達するという認識のみならず、リーダー領域が親水および疎水性残基を完全
中性値にするように交替するより遠位部分によって補足される性質において親水
である構造領域に隣接する部分を有するように特徴を与えることができるという
認識に及ぶことを包含する。経験的に、ここに示す3つの例は、構造領域に隣接
する親水性部分に単一疎水残基が存在することを含んでいる。この出願の出願臼
において、かかる残基の存在が翻訳後修飾を達成するのに本質的に必要であるか
否かは知られていない。
しかしながら、当業技術者によれば、慣例の試験によって、かかる存在の必要性
と共に、修飾効率を完全できる種々の選択手段を定めることができる。
また、利用できる科学技術によって、多くの場合に比較的に簡単な手段、すなわ
ち、アミノ酸配列に基づく予言、引続くハイブリッド形成および配列分析により
定めることができる、構造領域のみによる遺伝子から、成熟蛋白質を暗号化する
ことができる。また、特異的アミノ酸における本発明のリーダー配列の効果はD
NA修飾にたよらず部位〜特異的突然変異誘発を達成する新規な手段を与える。
それ故、例えばシスティンのような種々の残基の欠失または置換が生物活性を改
善することができることが報告されている(例えば、米国特許第4.518.5
84号明細書参照)。更に、天然に存在するペプチドの新規な変異体はある生物
的機能について高い活性または良い特異性を示すことでかできる。これらは、天
然に存在するポリペプチドの形質発現を暗号化する遺伝子の前に本発明のリーダ
ー配列についての遺伝暗号を挿入し、次いでリーダー配列により与えられた残基
を脱離または修飾する翻訳後修飾を付与することによって作ることができる。
八イドalvンッグインヂソグス
前駆体の実質的な形質発現を安定にし、ペプチドそれ自体を安定にする必要がな
い場合には、ペプチド前駆体を暗号化する遺伝子からリーダー断片を特異的切除
することによって達成することができる。本発明のリーダー配列を存在しない場
合には、翻訳後修飾を与えず発現する前駆体である。
本発明の他の観点は、「標的蛋白質(targeted proteins)J
、または異常アミノ酸デヒドロアラニンおよびデヒドロブチリンの存在によって
、[標的(target)Jに共有的に付着することのできる蛋白質を設計する
能力にある。それ故、特異的標的について認識し、かつ選択することができる構
造変異型を用いる場合には、リーダー断片を、「結合部位」を誘導するのに、特
異的毒素を中和するのに、特異的材料を選定するのに用いることができる。すべ
ての、これらの変更は、通常の従業者技術者および広範囲にわたる生物工学技術
者により知ることができ、ここに開示したリーダー配列の発見を容易に適用する
ことができる。
本発明の適用は実在する蛋白質の変更に制限されるものでない。DNA配列を合
成する最近の能力を与えることにより、特異的ポリペフチドを人工クローンによ
り暗号化でき、特別使用に向けることができる。1例として、異常アミノ酸の架
橋能力を本発明を介して生成する場合には、共有連鎖を形成するように修飾する
ことにより生ずる異常アミノ酸の能力により基質にしっかりと結合できる与えら
れた基質、例えば炭素繊維について特性を、接着剤により生成することができる
。アミノ酸の有効性は任意所望量の疎水性、親水性などを接着剤として導入して
エポキシのような最近使用されている接着剤に遭遇する問題を克服することがで
きる。
勿論、特別の適用には本発明のリーダー配列の突然変異および他の特別の変異型
を生ずることができる。これらの変異型が翻訳後修飾において誘導または助けと
なる本質的な生物学的機能を保有するかぎり、これらの変異型は本発明の範囲内
に属するものである。
サルミア バネルジ(Sharmila Banerjee)に関連して、本出
願人のリーダー配列の確認についての詳細な発表は1988年7月5日発表日に
出したrJournal of Biological Chemistry
JVol、 263に記載している。
翻訳後修飾を誘導する正確な機構は明らかにされていない。
いかなる理論に制限されないが、スブチリン前駆体は疎水性が強い構造領域近く
で親水性が高くなるように親水性と疎水性との間で初めに交替するリーダー配列
に残基を示す。この事は、一般に疎水性領域を有し、塩基性残基を含み、本発明
の酸性残基を含まない原核生物の輸出蛋白質(exported protei
ns)についての通常のリーダー領域と著しく異なる。この事は、異常な、リー
ダー配列が前駆体に標的する(target ing)または向ける助けをする
細分化部位(compartmentalized 5ite)で、翻訳後修飾
を生ずることを暗示する。他の蛋白質が修飾機能に関与することは予想されてい
る。酵素は細胞膜においてまたはその近くに局在化する必須の科学反応を生じさ
せるのに必要とされる。
本発明を特別の蛋白質、材料および方法に関して特に詳細に記載した。操作につ
いて必要であることを除いて、これらの特別の材料に制限されるものでなく、ま
た後述する請求の範囲の制限を越えて理解するのに制限するものでない。特に、
実際上任意の原核発現ベクター、特に細菌に関連して本発明のリーダー配列の使
用をもくろむことができる。
〜 〜SerThrLysAspρh
eAsnLeuAs pLeuVa l5erVa I Se rLysLy
sAs pse rG 1@yAl aSe r
FIG、3
国際調査報告
la+++++4111゛11″””””” PCT/US89102820
Claims (14)
- 1.Cys,Ser,Thrからなる群から選択するアミノ酸およびその混合物 の翻訳後修飾を誘導する、配列:【配列があります】 を有する、ペプチド リーダー配列を暗号化する遺伝子リーダー断片。
- 2.翻訳後修飾を受ける蛋白質前駆体にリーダーとして付着した場合に、翻訳後 修飾の誘導を助ける、アミノ酸配列:【配列があります】 の生物学的機能を有するポリペプチドを含むポリペプチド配列。
- 3.配列: 【配列があります】 を有する細菌中のスブチリンのポリペプチド前駆体を暗号化する遺伝配列。
- 4.細菌において発現した場合に、蛋白質スブチリンに翻訳した後に転化する前 駆体ポリペプチドの調製。
- 5.前記ポリペプチドが残基配列: 【配列があります】 を有する請求の範囲4記載のポリペプチド。
- 6.Cys,Ser,Thrからなる群から選択するアミノ酸およびその混合物 の翻訳後修飾を誘導する配列: 【配列があります】 を有するペプチド リーダー配列を暗号化する遺伝子リーダー断片。
- 7.翻訳後修飾を受ける蛋白質にリーダーとして付着した場合に、前記修飾を誘 導する助けをする、アミノ酸配列:【配列があります】 の生物学的機能を有するポリペプチドを含むポリペプチド配列:
- 8.細菌において発現した場合に、蛋白質ナイシンに翻訳後に転化する前駆体ポ リペプチドの調製。
- 9.翻訳した際に、Cys,ThrおよびSerからなる群から選択する少なく とも1種のアミノ酸を有する所望ポリペプチドにおいて部位特異的突然変異を誘 導する方法において、前記所望ポリペプチドおよびこれに付着するリーダー断片 を含む前駆体ポリペプチドを暗号化するDNA断片を調製し、この場合前記リー ダー断片が主として親水性である前記所望ポリペプチドに隣接する残基領域、お よび全中性ハイドロパシック インデックスを有するが、しかし実質的にすべて の隣接残基が反対のハイドロパシック インデックスを存するより遠位の領域を 含み、および 前記断片を発現ベクターのDNAに挿入して前駆体ポリペプチドを発現および修 飾する ことを特徴とする所望ポリペプチドにおける部位特異的突然変異の誘導方法。
- 10.前記発現ベクターを原核生物とする請求の範囲9記載の方法。
- 11.前記発現ベクターを細菌とする請求の範囲10記載の方法。
- 12.DNAにより暗号化しない少なくとも1個の残基を含み、前記残基が予定 部位において構造領域近くに高い親水性残基の領域を有するリーダー断片を含み 、前記リーダー断片が実質的に交互のハイドロパシック インデックスの残基の 第2領域を有し、前記構造領域が前記予定部位に相当するこの部位にCys,S erまたはThr残基を保持し、および前記ポリペプチドがDNAゲノムを自然 に生ずる前記発現ベクターによって暗号化しないポリペプチドである発現ベクタ ーによって発現したポリペプチド。
- 13.修飾を成熟配列において行い、かつ成熟ペプチドの実質的に交互の生物学 的特性を生ずるナイシンおよびスプチリンまたは類似ペプチドの特定部位の突然 変異体の形質発現方法。
- 14.ここに与える全構造遺伝子を移入するプラスミドによる形質転換により生 成した組換え微生物によってナイシンおよびスブチリンを形質発現する方法。
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