JPH04183392A - 生理活性物質を固定化した膜の製造方法 - Google Patents

生理活性物質を固定化した膜の製造方法

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JPH04183392A
JPH04183392A JP31339890A JP31339890A JPH04183392A JP H04183392 A JPH04183392 A JP H04183392A JP 31339890 A JP31339890 A JP 31339890A JP 31339890 A JP31339890 A JP 31339890A JP H04183392 A JPH04183392 A JP H04183392A
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JP
Japan
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membrane
physiologically active
active substance
immobilized
cellulosic
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JP31339890A
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English (en)
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Yoshihisa Tsukada
芳久 塚田
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Fujifilm Holdings Corp
Original Assignee
Fuji Photo Film Co Ltd
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 (発明の技術分野) 本発明jよ、生理活性物質を固定化した膜の製造方法に
関する。
(従来の技術) 酵素、補酵素、ホルモン、レセプター、阻害剤等の生理
活性物質を不溶性担体に固定化して得た固定化生理活性
物質は、バイオリアクター、バイオセンサー、アフィニ
ティークロマトグラフィー用材料などとして化学薬品・
食品・医薬品の製造、臨床診断、治療等に広く用いるれ
ている。これろの場合に於て、用いられている固定化生
理活性物質の形態としては粒子状のものと膜状のものと
があり、両者とも種々のグループによって研究されてい
る。
多孔質の粒子状の担体を用いた固定化生理活性物質につ
いては最も良く研究されているが、粒子内および粒子周
囲の非撹拌層に基く拡散制限により固定化生理活性物質
の効率が低下し、場合によって;よ、潜在活性のごく一
部しか利用されないことが指摘されている(例えば特公
昭5g−3D6T3号)。
この問題点に対する対策として微孔性の膜jこ例えば酵
素を固定化し、基質水溶液を圧力を用□、)で膜中に透
過させる反応方法が開発されて−)る。
この1mな嘆固定住生理活性物質をバイオリアクター、
バイオセンサー、アフィニティー分離用材料、臨床診断
等に巾広く応用するためには、摸担体は蛋白質との非特
異的相互作用が極力小さ□、ハことが重要で、そのため
には親水性が高く、荷電を持たないセルロース等の多糖
類が材質として好ましい。
多孔質セルロース膜に酵素その他の生理活性物質を化学
結合により固定化する方法については既にいくつかの方
法が知られている。例えば特開昭56−97235号、
特公昭58−44357号、特公昭62−32919号
にはセルロース膜に酸化剤を作用させて活性化した後に
酵素を固定化する方法が開示されている。
又、英国特許第1.183.261)号にはセルロース
等の膜にトリアジン誘導体を作用させて活性化した後に
酵素を固定化する方法が開示されている。
これろの既知の方法jこよって生理1舌1生物質を固定
化したセルロース膜を得ることができるが、これるの方
法に:ままだ問題点があり、実用的jこ;よ満足できる
ものて;まな′、)。すなわち、酸化剤を用し)る活性
化法では、担体上に生成したアルデヒド基が生理活性物
質中の主にアミ7基と反応してンッフベースを形成する
ことにより固定化されると考えちれてtハるが、ンッフ
ベースは不安定であるため:二面定住生理活性物質O脱
離がと1つやす:18又、脱離を防くために\a3H,
恒NaBH郵\等て還元する方法を、用゛、)ると、そ
の処理j二より更j:主理后牛が低下する。生理−百性
物質を!定住したあとて還元のような二段階目の反応を
要し−一し1方法としてトリアジン誘導体による生理活
性物質の固定化法が開発されたが、この方法で:ま!走
化反応の速度が遅いた於に固定化に比較的長′71特開
を必要とし、不安定な生理活性物質の場合にはその開の
失活が問題となることがあるっ 又、英国特許第1.183.260号に;まトリアジン
誘導体による膜の活性化に際して膜(濾紙やコブトン布
)をアルカリに浸漬することが示されて□、)るが、セ
ルロース製の非対称膜(例えばミクロフィルター)の様
に細′、1繊維かみ成る非対称膜′こ二の方法を応用す
るとセルロースの加水分解OたYか膜がかなり変形し、
又強度も劣化すると′、1う問題点がある。
そこで、活性化によってセルロース非対称膜の膜物性を
悪くすることなしに、しかも蛋白質に対して高い反応性
を持つ活性化手段を用−)だ固定化方法の開発が望まれ
ていた。
〈発明が解決しようとする課題) 本発明の目的は、流体に対する特性の優れたセルロース
製の非対称膜に対し、生理活性を極力維持したままで安
定な化学結合により生理活性物質を固定化する方法を提
供することにある。
(課題を解決するための手段)          (
本発明の目的;まセルロース製非対称膜を下記−般式(
I)で表される化合物と反応させて活性化した後、生理
活性物質を化学結合により固定化することによって達成
された。
一般式(1) 本発明方法のプロセスは、次のスキームによりセルロー
ス> −[]H−R−c−R→(セルロース)−且−R
口 (セルロース> −0−口−R−112N −(生理活
性物質)□ (セルロース)−〇−ローNH−(生理活
性物質)本発明で用いられるセルロース膜;ま膜の一方
S側に緻密な表面層を持ち、反対側の表面に比較的粗な
多孔質層を持つ、平膜または中空糸の形状の非対称膜で
ある。孔径が0.1μ〜10μの範囲にある多孔質膜(
例えばミクロフィルター)や、更に孔径が小さく、分画
分子量で表わして1.000〜1、000.000であ
る一ハわゆる眼外濾過膜が好ましく使用できる。これる
の膜の製造法については例えば特公昭45−4633号
、特公昭62−15642号、特公昭62−34343
号に開示されている。、膵の草さ(中空糸の場合は壁部
分の厚さ)として;tioμ以上のものが好ましく使用
できるが、10μ〜300μが更に好ましい。
次に、セルロース膜を前記一般式(I>で表わされる化
合物と反応させて活性化する方法jこつし)で述べる。
粒子に対して同様な@構に基づく活性化反応を行うこと
は公知(St、 T、 W、 Heavn : !Je
thods inEnzymology vol、 1
35.102〜11−.(1987))であり、その内
容:ま微小なアガロースまた:まセルロース粒子に1,
1′ −カルボニルイミダソール、L+1′−カルボニ
ル−1,2,4−1−リアソール等を作用させて活性化
するものである。その標準的な活性化法1才、微小−;
アガロースまたはセルロース粒子0.3gに対して1,
1′−カルボニルイミダソールQ、 74mmolおよ
びジオキサン20m1を加え、室温で15分間程度反応
させるものである。
しかし、膜につし)での活性化法は知ろれてLハな―)
。
セルロース製非対称膜j=対して本発明者、1上記文献
jこ記載の反応条件で活性化を試みたがはAとど活性化
されなかった。そこで反応条件を種々探索した結果、次
の条件でセルロース膜を活性化できることを見出した。
すなわち、セルロース膜0.3gに対して前言己一般式
(I)で表される化合物を5〜80ITIITloβ、
好ましくは20〜4QmmoAおよび溶媒10〜100
−1好ましくは50mI!を加え、室温で5〜15分間
反応させることにより活性化が行われた。ここで用いる
溶媒としては、アセトン、ジオキサン、ピリジン、アセ
トニトリル、トルエン、酢酸エチル、クロロホルム等ヲ
挙げる二とができる。ユニで見出した反応方法:ま、一
般式(I)で表わされる化合物の1文が極めて高″、)
点て公知の方法と大きく異なる。
活性化反応により導入された活性基の量は、下a己のス
キーム::示したようjこエチレンジアミンを作用させ
ててミノ基を導入し、文B (、Anal、[him。
1へ:ta、58巻 248頁、1972年)に記載の
方法にしたがってピクリン酸とアミン基のイオン結合量
を測ることにより定量できる。
(セルo−ス)−0−[ニーR=lh[’LCLNL−
(セルD −ス) −0CNHCH2CH2NH2また
、セルロース膜を構成する全グルコースに対して、0.
1〜lQmoβ%、より好ましくは0.5〜3.5mo
f%導入されていることが生理活性物質の固定化には望
ましい。
次に活性化されたセルロース膜への生理活性物質の固定
化法につし)で述べる。まずpH7〜9.5の範囲のバ
ッファーに画定化されるべき生理活(fi:物質を溶解
する。この時用□、)るバッファーはリン酸バッファー
、ホウ酸ハンファ−、モルフォリノエタンスルホンil
(MES>バッファー、ヒト°ロキンエチルピペラジン
エタンスルポン ッファ−など1級アミン基を有しな一ハものが好ましヒ
1:又、必要により生理活性物質の安定化剤をさろに加
えてもよし1。圧力j二よってセルロース膜中に二の溶
液を送り込み、4〜40℃で1〜12時間循謹させ反応
させる。固定化反応終了後、膜中にバッファー液を通過
させ、膜を洗浄する。さらにアルカリ又はエタノールア
ミン等のアミンの水溶液を通過させる二とにより、膜に
残存する活性基と反応させて不活性化し、最後:=再び
バッファー液で洗浄する。
以上に述べた方法により、生理活性物質を非対称セルロ
ース膜に固定化することができる。
本発明によって固定化される生理活性物質は、酵素、補
酵素、抗体、ホルモン、レセプター、レクチン、阻害剤
等である。酵素としで;ま、例え;ビトリプンン、キモ
トリブンン、サーモライシン、パパイン、アスパラギナ
ーゼ、リバーセ、アミラーセ、セルラーセ、リソチーム
、ウレアーゼなとの加水分解酵素、アルコールデヒドロ
ゲナーゼ、乳酸デヒドロゲナーゼ、グルコース万キンダ
ーセ、アルデヒドデヒドロゲナーゼ、D−アミノ酸オキ
ンターセ、ベルオキシダーセ、カタラーゼ、スーパーオ
キントデイスムターゼなどの酸化還元酵素、ヘキソキナ
ーゼ、タレアチンキナーゼ、アラニントランスアミナー
ゼなどの転移酵素、フマラーゼ、アスパルテートアンモ
ニアリアーゼ、スレオニンアルドラーゼ、ピルビン酸デ
カルボキンラーゼなどのリアーゼ、グルコースリン酸イ
ソメラーセ、メチルマロニルCO^ムスターゼなどの異
性化酵素、グルタミンンンセターゼ、アセチルCoAカ
ルボキシラーゼ、D N 、A IJガーゼなどのりガ
ーゼ等をあげることができる。その他の生理活性物質と
してはNg−(6−アミノヘキシル)−A〜fpなどの
補酵S誘導体、免疫グロブリンおよびそのFabフラグ
メント、プロティンA等のハクテリアルFcレセプター
、コンカナバリンAや小麦胚芽アグルチニンなどのレク
チン、大豆トリブンン、インヒビターなとの阻害剤、フ
ェニルアラニン、トリアドファンなどのアミノ酸、フィ
ブロネクチン及びその部分配列などがあげられる。
(発明の効果) 活性化した担体に生理活性物質を固定化する段階て失活
が少なく、又、経時で生理活性物質が脱離しな□、)こ
と:ま固定化生理活性物質にとって極めて重要である。
この点:こ於てセルロース膜に関して公知の方法、即ち
、酸化剤による;活性化法およびトリアジン誘導体によ
る1活性化法にはまだ改良がなされなければなろなし)
。本発明に従って活性化されたセルロース膜:ま生理活
性物質との反応性が高く、又、ポンプを用いて生理活性
物質を膜内に送り込むため拡散に要する時間も必要な′
、)。その結果多くの生理活性物質の場合、4℃で1〜
数時間で固定化が完了し、安定な化学結合が構成される
。これ:ま前記の公知の方法での固定化が4℃で12時
間かろ40℃で一昼夜の条件で行なわれるの:二対して
、短時間で済むため生理活性の低下が少な′−)C また、セルロース膜および生理活性物質との結合部位が
親木的かつ非イオン性であるため、蛋白質等の非特異吸
着が無く、センサーやアフィニティ分離用材料への応用
にも適して5)る。
さる:=、セルロース膜はほとんどのを殿溶媒にも耐え
るため、有機溶媒系で本発明の固定化生理活性物質を使
用することもできる。
(実施例) 次に実施例をあげて本発明を更に詳細:=説胡するが、
本発駅はこれろに限定されるもので:よな−)。
実施例1.活性化膜の製造 セルロース製ミクロフィルターFR−4o (x±写真
フィルム■製、孔径0.4μ)0.3gに1゜1′−カ
ルボニルジイミダゾール4 g (25mmol)と無
水ジオキサン50−を加えた。室温で15分間振とうし
て活性化した後に、膜をメタノールおよびアセトンでよ
く洗浄した。これを乾燥して3.2mol %の活性基
を導入した活性化セルロース膜を得た。
同様?;方法でミクロフィルターFR−40(0,3g
)を室温で活性化したときの反応条件および活性化量を
表1:こ示す。また、粒子を活性化する場合の標準的−
一活性化法を膜に適用した比較例を表1に示す。
表1 実施例5 トリプシン固定化膜の製造 実施例1に示した活性化嘆を用′、1て、トリプシンの
固定化を行った。
トリプシン50mgを、50m〜ACaCR,を含む、
pH7,3のHEPESハソファ−50社に溶解した。
濾過用のフィルターホルダーにセットした;活性化セル
ロース膜にトリプシン溶液をポンプを用、)で4℃で透
過させ、5時間循環させることによ:つ固定化した。次
に、トリプシンと反応しなかった活性基を除くために0
. I Mエタノールアミン水溶液を4℃で5時間@環
させエタノールアミンと反応させた。最後;こへソファ
ー液を透過させて十分に膜を洗浄した。酵素の固定化量
は溶液中に残った酵素をニンヒドリン反応により定量し
た。
このトリプシン固定化膜の活性測定を行った。
基質としてはL−ベンゾイルアルギニン−パラニトロア
ニリド(L−BAPA)を10−’Mの濃度で、10m
MのCaCR2を含むpf18.2の0.05 N・丁
トリスハンファーに溶解したものを用−)だ。トリプシ
ン固定化膜を′a通用フィルターホルダーにセットL2
5℃で基質溶液を透過させて透過液出の生成物濃度を定
量した。結果を表2に示すっ比較例2. 酸化剤を用し
)だ活性化法によるトリプシン固定化膜の構造 FR40膜を0.5 Mのメタ過ヨウ素酸ナトリウムに
浸漬し40℃で5時間反応させた。この膜を純水で洗浄
した後、実施例1と同様のトリプシン溶液を4℃で5時
間循環させることにより固定化した。
次jこその酵素溶液に1■/mlの濃度の水素化ホウ素
す) IJウムを加え4℃で2時間@環した。その後、
実施例1と同様に活性測定を行った。結果を表2に示す
。
m−り

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 セルロース製非対称膜を下記一般式( I )で表される
    化合物と反応させて活性化した後、生理活性物質を化学
    結合により固定化することを特徴とする、生理活性物質
    を固定化した膜の製造方法。 一般式( I ) ▲数式、化学式、表等があります▼ 式中、Rは▲数式、化学式、表等があります▼、▲数式
    、化学式、表等があります▼、▲数式、化学式、表等が
    あります▼ または▲数式、化学式、表等があります▼を表す。
JP31339890A 1990-11-19 1990-11-19 生理活性物質を固定化した膜の製造方法 Pending JPH04183392A (ja)

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Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1998012246A1 (de) * 1996-09-18 1998-03-26 GESELLSCHAFT FüR BIOTECHNOLOGISCHE FORSCHUNG MBH (GBF) Formgegenstand mit reaktiven funktionen
WO1998002189A3 (en) * 1996-07-14 1998-05-07 Univ Bar Ilan Method for preparing bioactive polymers
CN1059354C (zh) * 1994-12-28 2000-12-13 中国科学院大连化学物理研究所 一种纤维素微孔滤膜及其制备和应用
CN1059355C (zh) * 1995-01-24 2000-12-13 中国科学院大连化学物理研究所 一种用于生物大分子纯化的微孔亲和膜分离器膜堆介质

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