JPH05261281A - 生理活性物質固定化担体とその製法 - Google Patents
生理活性物質固定化担体とその製法Info
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Landscapes
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)
- Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【目的】 生理活性を有する糖タンパク質あるいは糖
ペプチドにおける糖鎖部位を反応させることにより、活
性を失活させたり変性させたりすることのない水不溶性
担体への固定化方法および生理活性物質固定化担体を提
供する。 【構成】 糖鎖の結合した生理活性物質における糖鎖
のグリコール部位の開裂により形成されたアルデヒド基
を、重合度10から50である両末端にアミノ基を有す
るポリ(オキシエチレン)を親水性スペーサーとして結
合した水不溶性担体と、シッフ塩基を形成させた後これ
を還元することによる糖鎖の結合した生理活性物質の固
定化方法および生理活性物質固定化担体。
ペプチドにおける糖鎖部位を反応させることにより、活
性を失活させたり変性させたりすることのない水不溶性
担体への固定化方法および生理活性物質固定化担体を提
供する。 【構成】 糖鎖の結合した生理活性物質における糖鎖
のグリコール部位の開裂により形成されたアルデヒド基
を、重合度10から50である両末端にアミノ基を有す
るポリ(オキシエチレン)を親水性スペーサーとして結
合した水不溶性担体と、シッフ塩基を形成させた後これ
を還元することによる糖鎖の結合した生理活性物質の固
定化方法および生理活性物質固定化担体。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は生理活性を有する糖タン
パク質または糖ペプチドの水不溶性担体への固定化方法
および生理活性物質固定化担体に関するものであり、生
理活性物質における糖鎖のグリコール部位の酸化による
開裂により形成したアルデヒド基を、アミノ基を末端に
有する親水性スペーサーの結合した水不溶性担体とシッ
フ塩基を形成させ、さらにこれを還元することを特徴と
するものである。
パク質または糖ペプチドの水不溶性担体への固定化方法
および生理活性物質固定化担体に関するものであり、生
理活性物質における糖鎖のグリコール部位の酸化による
開裂により形成したアルデヒド基を、アミノ基を末端に
有する親水性スペーサーの結合した水不溶性担体とシッ
フ塩基を形成させ、さらにこれを還元することを特徴と
するものである。
【0002】この方法はその生理活性の失活あるいは変
性を生ずることなく、また活性部位をブロックすること
のない効果的な固定化方法である。特定の物質を吸着除
去することを目的とした吸着材、特定の化学反応を利用
したバイオセンサーやエンザイムイムノアッセイによる
物質の定量、あるいは連続的に特定の化学反応を行なわ
せるバイオリアクターなど実に広範囲な領域において応
用が可能なものである。
性を生ずることなく、また活性部位をブロックすること
のない効果的な固定化方法である。特定の物質を吸着除
去することを目的とした吸着材、特定の化学反応を利用
したバイオセンサーやエンザイムイムノアッセイによる
物質の定量、あるいは連続的に特定の化学反応を行なわ
せるバイオリアクターなど実に広範囲な領域において応
用が可能なものである。
【0003】
【従来の技術】酵素,抗体,ホルモン,レクチンなど生
理活性を有する種々の糖タンパク質や糖ペプチドを担体
に、場合によってはスペーサーを介して固定化を行なう
試みについては、特に酵素に関して古くから多くの報告
例がある。その大部分はタンパク質を構成しているアミ
ノ酸残基の官能基における反応に方法ものである。たと
えばリジンのεーアミノ基,N末端のアミノ基,システ
インのスルフヒドリル基,アスパラギン酸のβーカルボ
キシル基,グルタミン酸のγーカルボキシル基,C末端
のカルボキシル基,チロシンのフェノール性水酸基,セ
リンあるいはトレオニンの水酸基,アルギニンのグアニ
ジノ基,ヒスチジンのイミダゾリル基,トリプトファン
のインドリル基,メチオニンのメチルメルカプト基など
である。特に水酸基,カルボキシル基,アミノ基の含量
は多い。この場合、活性中心部位を形成しているアミノ
酸残基を修飾あるいは変性させる可能性があり、それに
伴い活性を低下あるいは失活させる場合が多い。
理活性を有する種々の糖タンパク質や糖ペプチドを担体
に、場合によってはスペーサーを介して固定化を行なう
試みについては、特に酵素に関して古くから多くの報告
例がある。その大部分はタンパク質を構成しているアミ
ノ酸残基の官能基における反応に方法ものである。たと
えばリジンのεーアミノ基,N末端のアミノ基,システ
インのスルフヒドリル基,アスパラギン酸のβーカルボ
キシル基,グルタミン酸のγーカルボキシル基,C末端
のカルボキシル基,チロシンのフェノール性水酸基,セ
リンあるいはトレオニンの水酸基,アルギニンのグアニ
ジノ基,ヒスチジンのイミダゾリル基,トリプトファン
のインドリル基,メチオニンのメチルメルカプト基など
である。特に水酸基,カルボキシル基,アミノ基の含量
は多い。この場合、活性中心部位を形成しているアミノ
酸残基を修飾あるいは変性させる可能性があり、それに
伴い活性を低下あるいは失活させる場合が多い。
【0004】また一般にこうしたタンパク質系の生理活
性物質は、通常の化学合成において頻繁に用いられる
熱,酸,アルカリ,有機溶媒などの作用により変性を受
けやすい。したがってリガンドである生理活性物質が固
定化前と同等にできる限り近い物理的あるいは化学的性
質を保持できるようにするには、固定化反応条件におい
て様々な面で制約が多くなる。
性物質は、通常の化学合成において頻繁に用いられる
熱,酸,アルカリ,有機溶媒などの作用により変性を受
けやすい。したがってリガンドである生理活性物質が固
定化前と同等にできる限り近い物理的あるいは化学的性
質を保持できるようにするには、固定化反応条件におい
て様々な面で制約が多くなる。
【0005】また固定化されたリガンドが種々の塩濃度
や広いpH範囲においてもしっかりと固定化されリガン
ドの漏出が起らないことや、固定化されたリガンドが目
的とする物質と強固に結合できることなどが条件とな
る。種々の生理活性物質の固定化方法を原理的に大別す
ると担体結合法,架橋法,包括法の3種類である。これ
らの方法はそれぞれ長所,短所を有しており、リガンド
の種類や目的に応じて使い分けられている。
や広いpH範囲においてもしっかりと固定化されリガン
ドの漏出が起らないことや、固定化されたリガンドが目
的とする物質と強固に結合できることなどが条件とな
る。種々の生理活性物質の固定化方法を原理的に大別す
ると担体結合法,架橋法,包括法の3種類である。これ
らの方法はそれぞれ長所,短所を有しており、リガンド
の種類や目的に応じて使い分けられている。
【0006】タンパク質には反応性の強いアミノ酸残基
やイオン性のアミノ酸残基、疎水的な部分を含んでい
る。これらのうちで生理活性の発現に可能な限り悪影響
を与えない部分の特に水酸基,カルボキシル基,アミノ
基を選択して、担体に共有結合,イオン結合,疎水結
合,生化学的特異結合などを介して固定化するものが担
体結合法である。共有結合による固定化には臭化シアン
による活性化、カルボン酸のアジド誘導体化、カルボジ
イミド試薬やWoodward試薬Kなどによる縮合反
応、ジアゾカップリング反応、グルタルアルデヒドのよ
うな2つ以上の反応性に富む官能基を有する化合物によ
り架橋する方法などがある。これらの方法は結合が強固
であり、安定性を増す場合があるなどの長所があるが、
タンパク質の変性の恐れや、目的物質との相互作用が起
りにくくなる場合があるなどの短所がある。
やイオン性のアミノ酸残基、疎水的な部分を含んでい
る。これらのうちで生理活性の発現に可能な限り悪影響
を与えない部分の特に水酸基,カルボキシル基,アミノ
基を選択して、担体に共有結合,イオン結合,疎水結
合,生化学的特異結合などを介して固定化するものが担
体結合法である。共有結合による固定化には臭化シアン
による活性化、カルボン酸のアジド誘導体化、カルボジ
イミド試薬やWoodward試薬Kなどによる縮合反
応、ジアゾカップリング反応、グルタルアルデヒドのよ
うな2つ以上の反応性に富む官能基を有する化合物によ
り架橋する方法などがある。これらの方法は結合が強固
であり、安定性を増す場合があるなどの長所があるが、
タンパク質の変性の恐れや、目的物質との相互作用が起
りにくくなる場合があるなどの短所がある。
【0007】特開昭58ー53757にはさらに炭水化
物部位を酸化切断し、アルデヒド基を有する抗体と側鎖
にアミノ基またはヒドラジド基を有する担体とが、−C
H2−NH−または−CH2−NH−NH−CO−の構造
を介して固定化する方法が記載されている。しかしこの
方法においても、担体と抗体の結合が直接的であるた
め、抗体の機能を十分に保持し固定化することが困難で
ある。また他のタンパク質の非特異的吸着を防止できな
い。
物部位を酸化切断し、アルデヒド基を有する抗体と側鎖
にアミノ基またはヒドラジド基を有する担体とが、−C
H2−NH−または−CH2−NH−NH−CO−の構造
を介して固定化する方法が記載されている。しかしこの
方法においても、担体と抗体の結合が直接的であるた
め、抗体の機能を十分に保持し固定化することが困難で
ある。また他のタンパク質の非特異的吸着を防止できな
い。
【0008】またイオン結合による固定化は操作の簡便
さや再生の可能な点が有利であるが、反応液に用いる緩
衝液の種類,pH,イオン強度,温度などの影響を受け
やすい。物理的吸着による固定化では結合が一般に弱い
ことが多い。
さや再生の可能な点が有利であるが、反応液に用いる緩
衝液の種類,pH,イオン強度,温度などの影響を受け
やすい。物理的吸着による固定化では結合が一般に弱い
ことが多い。
【0009】架橋法はグルタルアルデヒド,トルエンジ
イソシアナート,ヘキサメチレンジイソシアナート,シ
アヌルクロリドなどの2つ以上の官能基を有する試薬と
リガンドを反応させて分子間で架橋させて巨大分子とす
る方法である。この方法は微生物菌体の固定化にはしば
しば用いられるが、タンパク質系の生理活性物質の固定
化にはあまり有効なものではない。
イソシアナート,ヘキサメチレンジイソシアナート,シ
アヌルクロリドなどの2つ以上の官能基を有する試薬と
リガンドを反応させて分子間で架橋させて巨大分子とす
る方法である。この方法は微生物菌体の固定化にはしば
しば用いられるが、タンパク質系の生理活性物質の固定
化にはあまり有効なものではない。
【0010】包括法は高分子ゲル内にリガンドを閉じ込
める方法である。これにはタンパク質や多糖類のような
天然高分子あるいは種々の合成高分子のゲルの内部にリ
ガンドを閉じ込める格子型,半透膜性の高分子被膜によ
りリガンドを包み込むマイクロカプセル型,リン脂質の
ような液体膜にリガンドを包み込むリポソーム型などが
ある。また中空子膜内や限外濾過膜で仕切られた空間中
にリガンドを閉じ込める方法もある。これらの方法は固
定化によりリガンドの修飾が起りにくく、自然な状態を
保ったままで固定化が可能である長所があるが、高分子
量の物質の作用を受けにくいことや条件により失活が起
こるなどの欠点がある。
める方法である。これにはタンパク質や多糖類のような
天然高分子あるいは種々の合成高分子のゲルの内部にリ
ガンドを閉じ込める格子型,半透膜性の高分子被膜によ
りリガンドを包み込むマイクロカプセル型,リン脂質の
ような液体膜にリガンドを包み込むリポソーム型などが
ある。また中空子膜内や限外濾過膜で仕切られた空間中
にリガンドを閉じ込める方法もある。これらの方法は固
定化によりリガンドの修飾が起りにくく、自然な状態を
保ったままで固定化が可能である長所があるが、高分子
量の物質の作用を受けにくいことや条件により失活が起
こるなどの欠点がある。
【0011】
【発明が解決しようとする課題】本発明は上記の従来技
術における種々の欠点を解決し、生理活性を有する糖タ
ンパク質あるいは糖ペプチドを効率よく、しかもその生
理活性を低下させたり変性させたりする可能性をできる
限り小さくした生理活性物質の固定化方法を提供しよう
とするものである。また本発明における固定化技術は極
めて広範囲な分野において適用されうるものである。
術における種々の欠点を解決し、生理活性を有する糖タ
ンパク質あるいは糖ペプチドを効率よく、しかもその生
理活性を低下させたり変性させたりする可能性をできる
限り小さくした生理活性物質の固定化方法を提供しよう
とするものである。また本発明における固定化技術は極
めて広範囲な分野において適用されうるものである。
【0012】
【課題を解決するための手段】上記目的を達成した本発
明による固定化方法は生理活性を有する糖タンパク質あ
るいは糖ペプチドにおいてその糖鎖部分を修飾してアル
デヒド基を導入したものを、アミノ基を末端に有する親
水性スペーサーの結合した水不溶性担体とシッフ塩基を
形成させさらに還元することにより固定化反応を行なう
ことを要旨とするものである。本発明は結合している糖
鎖部分がその活性発現に強く関与しない糖タンパク質や
糖ペプチドであれば、酵素,抗体,ホルモンなどの種類
を問わずあらゆるタイプの物質への適用が可能である。
明による固定化方法は生理活性を有する糖タンパク質あ
るいは糖ペプチドにおいてその糖鎖部分を修飾してアル
デヒド基を導入したものを、アミノ基を末端に有する親
水性スペーサーの結合した水不溶性担体とシッフ塩基を
形成させさらに還元することにより固定化反応を行なう
ことを要旨とするものである。本発明は結合している糖
鎖部分がその活性発現に強く関与しない糖タンパク質や
糖ペプチドであれば、酵素,抗体,ホルモンなどの種類
を問わずあらゆるタイプの物質への適用が可能である。
【0013】本発明における生理活性を有する糖タンパ
ク質あるいは糖ペプチドとは特にその種類は限定されな
いが、糖鎖の結合部位を有している酵素,抗体,ホルモ
ン,レクチン,受容体をはじめ生体内に存在する免疫現
象,細胞接着などに関与している様々なタンパク質系の
生理活性物質を含んでいる。これらの糖タンパク質や糖
ペプチドにおける糖鎖部分の生化学的な意義や役割は詳
細には解明されていないがそれぞれに特有で様々である
と考えられており、一般的には熱,各種変性剤,分解酵
素(プロテアーゼ)などに対する安定性を高めたり防御
したりする作用や、あるいは高次構造の維持に関与する
場合が多いとされている。しかしその生理活性の発現に
関しては、大きく影響していると考えらる場合はほとん
どなく、糖鎖部分を修飾することによる生理活性の変化
に対する影響はタンパク質部分を構成しているアミノ酸
残基を修飾する場合と比較すれば小さいものである。
ク質あるいは糖ペプチドとは特にその種類は限定されな
いが、糖鎖の結合部位を有している酵素,抗体,ホルモ
ン,レクチン,受容体をはじめ生体内に存在する免疫現
象,細胞接着などに関与している様々なタンパク質系の
生理活性物質を含んでいる。これらの糖タンパク質や糖
ペプチドにおける糖鎖部分の生化学的な意義や役割は詳
細には解明されていないがそれぞれに特有で様々である
と考えられており、一般的には熱,各種変性剤,分解酵
素(プロテアーゼ)などに対する安定性を高めたり防御
したりする作用や、あるいは高次構造の維持に関与する
場合が多いとされている。しかしその生理活性の発現に
関しては、大きく影響していると考えらる場合はほとん
どなく、糖鎖部分を修飾することによる生理活性の変化
に対する影響はタンパク質部分を構成しているアミノ酸
残基を修飾する場合と比較すれば小さいものである。
【0014】また水不溶性担体としては、アミノ基と反
応性のあるたとえばアルデヒド基,エポキシ基のような
官能基を有しているか、あるいは修飾することによりこ
れらの官能基が導入されており、しかもその目的に応じ
たゲル強度,粒子径,細孔径などの特徴を有していれば
特に限定されるものではないが、たとえばセルロース,
架橋ポリアクリル酸,ポリビニルアルコール,ポリスチ
レンおよびその誘導体などが挙げられる。担体の形態に
関しても特に限定されるものではなく、その用途や目的
に応じてビーズ状,繊維状,膜状(中空糸膜を含む)な
どいずれにおいても適用できるものである。これらの担
体に親水性スペーサーとして後記の化1に示すような両
末端にアミノ基を有するポリ(オキシエチレン)(以下
PEOアミンと言う)を結合させたものに、さらに上記
のような生理活性物質をリガンドとして導入する。
応性のあるたとえばアルデヒド基,エポキシ基のような
官能基を有しているか、あるいは修飾することによりこ
れらの官能基が導入されており、しかもその目的に応じ
たゲル強度,粒子径,細孔径などの特徴を有していれば
特に限定されるものではないが、たとえばセルロース,
架橋ポリアクリル酸,ポリビニルアルコール,ポリスチ
レンおよびその誘導体などが挙げられる。担体の形態に
関しても特に限定されるものではなく、その用途や目的
に応じてビーズ状,繊維状,膜状(中空糸膜を含む)な
どいずれにおいても適用できるものである。これらの担
体に親水性スペーサーとして後記の化1に示すような両
末端にアミノ基を有するポリ(オキシエチレン)(以下
PEOアミンと言う)を結合させたものに、さらに上記
のような生理活性物質をリガンドとして導入する。
【0015】担体におけるアミノ基の含量はある程度多
い方がリガンド導入率の向上に結びつくが、あまり多過
ぎるとゲル強度が低下するので適当ではない。したがっ
て0.01ないし0.80meq/gの範囲になるよう
に導入するのが望ましく、リガンドや目的物質の大きさ
に応じてその値を調整する必要がある。親水性スペーサ
ーの鎖長(化1のnに相当する)についてもリガンドに
結合させる目的物質の大きさや性質に応じて適当に調整
する必要があるが、重合度が10ないし500の範囲、
好ましくは30ないし400、さらに好ましくは100
ないし300の両末端にアミノ基を有するポリ(オキシ
エチレン)を用いるのが適している。親水性スペーサー
を導入することにより立体障害が小さくなり、目的物質
との結合性を大きく向上させることができる。さらに親
水性スペーサーの排除体積効果および親水性の向上によ
り、非特異的な吸着を抑えることができる。
い方がリガンド導入率の向上に結びつくが、あまり多過
ぎるとゲル強度が低下するので適当ではない。したがっ
て0.01ないし0.80meq/gの範囲になるよう
に導入するのが望ましく、リガンドや目的物質の大きさ
に応じてその値を調整する必要がある。親水性スペーサ
ーの鎖長(化1のnに相当する)についてもリガンドに
結合させる目的物質の大きさや性質に応じて適当に調整
する必要があるが、重合度が10ないし500の範囲、
好ましくは30ないし400、さらに好ましくは100
ないし300の両末端にアミノ基を有するポリ(オキシ
エチレン)を用いるのが適している。親水性スペーサー
を導入することにより立体障害が小さくなり、目的物質
との結合性を大きく向上させることができる。さらに親
水性スペーサーの排除体積効果および親水性の向上によ
り、非特異的な吸着を抑えることができる。
【0016】
【化1】
【0017】一方リガンドである糖タンパク質や糖ペプ
チドにおける糖鎖部分へのアルデヒド基の導入は過ヨウ
素酸またはその塩で酸化して、グリコール部位を開裂し
てアルデヒド基を形成させることにより行なうのが好ま
しい。過ヨウ素酸による酸化反応はグリコール部位の隣
接する水酸基間で生ずるものであり、1モルのIO4-が
IO3-に還元されことにより2モルのアルデヒド基が形
成される。得られる反応物の構造はグルコシド結合の種
類により異なってくるが、化2に示すようなものが考え
られる。
チドにおける糖鎖部分へのアルデヒド基の導入は過ヨウ
素酸またはその塩で酸化して、グリコール部位を開裂し
てアルデヒド基を形成させることにより行なうのが好ま
しい。過ヨウ素酸による酸化反応はグリコール部位の隣
接する水酸基間で生ずるものであり、1モルのIO4-が
IO3-に還元されことにより2モルのアルデヒド基が形
成される。得られる反応物の構造はグルコシド結合の種
類により異なってくるが、化2に示すようなものが考え
られる。
【0018】
【化2】
【0019】過ヨウ素酸の量は酸化する物質と同モル以
上の過剰量を用いて反応させるのが望ましい。反応時の
pH値はリガンドとして導入する物質の安定性や副反応
の発生しやすさにより最適値は異なってくるが、pH3
ないし6で行なうのが好ましく、pH4ないし5で行な
うのがより好ましい。また反応液には0.1M程度の酢
酸あるいはクエン酸緩衝液を用いるのが適当である。反
応温度は室温あるいはそれ以下が好ましく、室温で不安
定な物質の場合は5℃で行なうのが理想的である。反応
時間は室温では1時間以内で十分であるが、5℃では1
2時間ないし24時間程度行なう必要がある。
上の過剰量を用いて反応させるのが望ましい。反応時の
pH値はリガンドとして導入する物質の安定性や副反応
の発生しやすさにより最適値は異なってくるが、pH3
ないし6で行なうのが好ましく、pH4ないし5で行な
うのがより好ましい。また反応液には0.1M程度の酢
酸あるいはクエン酸緩衝液を用いるのが適当である。反
応温度は室温あるいはそれ以下が好ましく、室温で不安
定な物質の場合は5℃で行なうのが理想的である。反応
時間は室温では1時間以内で十分であるが、5℃では1
2時間ないし24時間程度行なう必要がある。
【0020】また酸化反応終了後にはエチレングリコー
ル,グリセリン,亜硫酸ナトリウムなどの物質を添加し
て過剰の酸化剤を除去する必要がある。また酸化反応の
際に用いた緩衝液を外液として、透析処理を5℃で12
時間以上行なうことによりこれらの物質を除去するのが
より好ましい。
ル,グリセリン,亜硫酸ナトリウムなどの物質を添加し
て過剰の酸化剤を除去する必要がある。また酸化反応の
際に用いた緩衝液を外液として、透析処理を5℃で12
時間以上行なうことによりこれらの物質を除去するのが
より好ましい。
【0021】こうして得たアルデヒド基の導入されたリ
ガンドを、上記のようなPEOアミンの結合した担体と
シッフ塩基を形成させて結合する。この反応は室温また
は5℃で10時間ないし30時間、pHは6ないし10
の範囲で行ないpH8ないし9.5の範囲で行なうのが
より望ましい。反応液としては0.1M程度の炭酸緩衝
液を用いるのが好ましい。
ガンドを、上記のようなPEOアミンの結合した担体と
シッフ塩基を形成させて結合する。この反応は室温また
は5℃で10時間ないし30時間、pHは6ないし10
の範囲で行ないpH8ないし9.5の範囲で行なうのが
より望ましい。反応液としては0.1M程度の炭酸緩衝
液を用いるのが好ましい。
【0022】こうして得られたシッフ塩基は安定性に乏
しく、特に酸性あるいはアルカリ性の条件下では分解を
受けやすい。そこで次式に示すように(R1を担体,R2
をリガンドとする)、還元反応を行なうことにより安定
化させるのが適当である。 R1N=CHR2 → R1NH−CH2R2
しく、特に酸性あるいはアルカリ性の条件下では分解を
受けやすい。そこで次式に示すように(R1を担体,R2
をリガンドとする)、還元反応を行なうことにより安定
化させるのが適当である。 R1N=CHR2 → R1NH−CH2R2
【0023】シッフ塩基の還元反応は水素化ホウ素ナト
リウム(NaBH4)あるいはシアノ水素化ホウ素ナト
リウム(NaBH3CN)の添加により行なうのが好ま
しい。反応は室温または5℃において、pH8ないし9
の炭酸緩衝液中で3時間ないし30時間行なうのが望ま
しい。
リウム(NaBH4)あるいはシアノ水素化ホウ素ナト
リウム(NaBH3CN)の添加により行なうのが好ま
しい。反応は室温または5℃において、pH8ないし9
の炭酸緩衝液中で3時間ないし30時間行なうのが望ま
しい。
【0024】本発明におけるアミノ基を末端に有する親
水性スペーサーの結合した水不溶性担体に、糖鎖にアル
デヒド基を導入した糖タンパク質あるいは糖ペプチドを
リガンドとして導入するには、上記のような方法を基本
とすれば特に限定されるのもではないが、たとえばセル
ロースを担体として抗体を導入する場合には、以下の方
法が好ましい。
水性スペーサーの結合した水不溶性担体に、糖鎖にアル
デヒド基を導入した糖タンパク質あるいは糖ペプチドを
リガンドとして導入するには、上記のような方法を基本
とすれば特に限定されるのもではないが、たとえばセル
ロースを担体として抗体を導入する場合には、以下の方
法が好ましい。
【0025】(1)セルロースの改質 過ヨウ素酸ナトリウムを0.1ないし5.0規定、好ま
しくは0.5ないし1.5規定の硫酸に溶解した溶液に
平均粒子径が20ないし2000μm、平均細孔径が2
00ないし30000※の粒状多孔質セルロースを添加
し、10℃から50℃好ましくは20℃から30℃で5
時間から30時間好ましくは10時間から24時間反応
させる。上記過ヨウ素酸ナトリウムー硫酸溶液の過ヨウ
素酸ナトリウム濃度は2重量%から15重量%好ましく
は4重量%から10重量%である。また上記粒状多孔質
セルロースの過ヨウ素酸ナトリウム溶液への浴比は10
容量%から30容量%好ましくは15容量%から25容
量%である。
しくは0.5ないし1.5規定の硫酸に溶解した溶液に
平均粒子径が20ないし2000μm、平均細孔径が2
00ないし30000※の粒状多孔質セルロースを添加
し、10℃から50℃好ましくは20℃から30℃で5
時間から30時間好ましくは10時間から24時間反応
させる。上記過ヨウ素酸ナトリウムー硫酸溶液の過ヨウ
素酸ナトリウム濃度は2重量%から15重量%好ましく
は4重量%から10重量%である。また上記粒状多孔質
セルロースの過ヨウ素酸ナトリウム溶液への浴比は10
容量%から30容量%好ましくは15容量%から25容
量%である。
【0026】この反応混合物を濾過して生成物を回収
し、十分に洗浄して、膨潤状態でアルデヒド含量0.1
0ないし4.00meq/g好ましくは0.20ないし
1.00meq/gの[アルデヒド]ー[セルロース]
を得る。この[アルデヒド]ー[セルロース]は先に化
2に示したような一部のグルコースユニットが開環した
構造を有している。
し、十分に洗浄して、膨潤状態でアルデヒド含量0.1
0ないし4.00meq/g好ましくは0.20ないし
1.00meq/gの[アルデヒド]ー[セルロース]
を得る。この[アルデヒド]ー[セルロース]は先に化
2に示したような一部のグルコースユニットが開環した
構造を有している。
【0027】(2)親水性スペーサーの導入 化1に示したような重合度が10ないし500、好まし
くは30ないし400、さらに好ましくは100ないし
300のPEOアミンをpH9.5の炭酸緩衝液に溶解
しておく。これに上記(1)で得た[アルデヒド]ー
[セルロース]を添加して攪拌しながら10℃から50
℃好ましくは20℃から30℃で、5時間から30時間
好ましくは10時間から24時間反応させる。上記PE
Oアミンの濃度は0.2重量%から5.0重量%好まし
くは0.4重量%から3.0重量%で、この溶液への
[アルデヒド]ー[セルロース]の浴比は3容量%から
20容量%好ましくは5容量%から15容量%である。
この反応混合物を濾過して生成物を回収、水洗して[P
EOアミン]ー[セルロース]を得る。
くは30ないし400、さらに好ましくは100ないし
300のPEOアミンをpH9.5の炭酸緩衝液に溶解
しておく。これに上記(1)で得た[アルデヒド]ー
[セルロース]を添加して攪拌しながら10℃から50
℃好ましくは20℃から30℃で、5時間から30時間
好ましくは10時間から24時間反応させる。上記PE
Oアミンの濃度は0.2重量%から5.0重量%好まし
くは0.4重量%から3.0重量%で、この溶液への
[アルデヒド]ー[セルロース]の浴比は3容量%から
20容量%好ましくは5容量%から15容量%である。
この反応混合物を濾過して生成物を回収、水洗して[P
EOアミン]ー[セルロース]を得る。
【0028】(3)抗体における糖鎖の改質 ウサギにヒトアルブミン(以下hAlbと言う)を免疫
して得られた抗血清を硫安塩析により精製して得た抗h
Alb抗体10ないし20mgを、20ないし50ml
のpH4.0の酢酸緩衝液に溶解して、過ヨウ素酸ナト
リウム1ないし5mgを添加して室温で攪拌して30分
ないし1時間反応させる。さらにエチレングリコールを
0.1M濃度になるように添加して5℃で5時間ないし
10時間反応させ、この反応液を上記酢酸緩衝液を外液
として5℃で12時間ないし24時間透析を行なった。
こうして[アルデヒド]ー[抗体]溶液を得る。
して得られた抗血清を硫安塩析により精製して得た抗h
Alb抗体10ないし20mgを、20ないし50ml
のpH4.0の酢酸緩衝液に溶解して、過ヨウ素酸ナト
リウム1ないし5mgを添加して室温で攪拌して30分
ないし1時間反応させる。さらにエチレングリコールを
0.1M濃度になるように添加して5℃で5時間ないし
10時間反応させ、この反応液を上記酢酸緩衝液を外液
として5℃で12時間ないし24時間透析を行なった。
こうして[アルデヒド]ー[抗体]溶液を得る。
【0029】(4)抗体の導入 上記(3)で得た[アルデヒド]ー[抗体]溶液にpH
9.5の炭酸緩衝液を加えてpHを8.0ないし9.0
に調整した後に、上記(2)で得た[PEOアミン]ー
[セルロース]3g(膨潤状態)を添加し、5℃で20
時間ないし30時間反応させてシッフ塩基を形成させ
る。この反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に
洗浄して、膨潤状態でpH9.0の炭酸緩衝液を加え、
さらに水素化ホウ素ナトリウムを0.2ないし1g添加
して5℃で5時間ないし15時間攪拌により還元反応を
行なった。この反応混合物を濾過して生成物を回収し、
十分に洗浄することにより、抗hAlb抗体をPEOア
ミンをスペーサーとして介してセルロースに固定化した
ものを得る。
9.5の炭酸緩衝液を加えてpHを8.0ないし9.0
に調整した後に、上記(2)で得た[PEOアミン]ー
[セルロース]3g(膨潤状態)を添加し、5℃で20
時間ないし30時間反応させてシッフ塩基を形成させ
る。この反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に
洗浄して、膨潤状態でpH9.0の炭酸緩衝液を加え、
さらに水素化ホウ素ナトリウムを0.2ないし1g添加
して5℃で5時間ないし15時間攪拌により還元反応を
行なった。この反応混合物を濾過して生成物を回収し、
十分に洗浄することにより、抗hAlb抗体をPEOア
ミンをスペーサーとして介してセルロースに固定化した
ものを得る。
【0030】
【実施例】以下実施例を用いて本発明を説明する。 <実施例1> インベルターゼの固定化 酵母(Saccharomyces serevisi
e)由来であり、その培養液をゲル濾過、アニオンおよ
びカチオン交換カラムにより精製して凍結乾燥して得ら
れたインベルターゼ(βーDーフルクトフラノシダー
ゼ)のセルロースへの固定化を次のようにして実施し
た。
e)由来であり、その培養液をゲル濾過、アニオンおよ
びカチオン交換カラムにより精製して凍結乾燥して得ら
れたインベルターゼ(βーDーフルクトフラノシダー
ゼ)のセルロースへの固定化を次のようにして実施し
た。
【0031】過ヨウ素酸ナトリウム400mgを1N硫
酸50mlに溶解して、多孔質セルロース(チッソ製セ
ルロファインGCLー1000m)5gを添加し、攪拌
により20時間反応させた後、反応混合物を濾過して生
成物を回収し、十分に洗浄して[アルデヒド]ー[セル
ロース]を得た。アルデヒド含量はオキシム法により定
量を行ない0.97meq/gであった。
酸50mlに溶解して、多孔質セルロース(チッソ製セ
ルロファインGCLー1000m)5gを添加し、攪拌
により20時間反応させた後、反応混合物を濾過して生
成物を回収し、十分に洗浄して[アルデヒド]ー[セル
ロース]を得た。アルデヒド含量はオキシム法により定
量を行ない0.97meq/gであった。
【0032】分子量600のPEOアミン20gをpH
9.5の炭酸緩衝液50mlに溶解して、上記の[アル
デヒド]ー[セルロース]全量を加えて攪拌により反応
させて、反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に
洗浄して[PEOアミン]ー[セルロース]を得た。ア
ミノ基含量は塩酸による電位差滴定(平沼産業製COM
TITE101を使用)により定量を行ない、0.31
meq/gであった。
9.5の炭酸緩衝液50mlに溶解して、上記の[アル
デヒド]ー[セルロース]全量を加えて攪拌により反応
させて、反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に
洗浄して[PEOアミン]ー[セルロース]を得た。ア
ミノ基含量は塩酸による電位差滴定(平沼産業製COM
TITE101を使用)により定量を行ない、0.31
meq/gであった。
【0033】一方上記インベルターゼ30mgをpH
4.5のクエン酸緩衝液に50mlに溶解して、過ヨウ
素酸ナトリウム50mgを添加して、攪拌により室温で
45分反応させた。さらにグリセリンを0.1M濃度に
なるように添加して、5℃で7時間攪拌して反応させ、
反応液を上記緩衝液を外液として5℃で一晩透析を行な
い[アルデヒド]ー[酵素]溶液を得た。
4.5のクエン酸緩衝液に50mlに溶解して、過ヨウ
素酸ナトリウム50mgを添加して、攪拌により室温で
45分反応させた。さらにグリセリンを0.1M濃度に
なるように添加して、5℃で7時間攪拌して反応させ、
反応液を上記緩衝液を外液として5℃で一晩透析を行な
い[アルデヒド]ー[酵素]溶液を得た。
【0034】上記[アルデヒド]ー[酵素]液を炭酸緩
衝液を添加してpHを8.0に調整し、上記[PEOア
ミン]ー[セルロース]1gを加えて、5℃で30時間
攪拌してシッフ塩基を形成させた。反応混合物を濾過し
て生成物を回収し、十分に洗浄してpH8.0の炭酸緩
衝液50ml,水素化ホウ素ナトリウム200mgを加
えて5℃で7時間還元反応を行なった。反応混合物を濾
過して生成物を回収し、十分に洗浄して固定化インベル
ターゼを得た。インベルターゼ固定化量はシッフ塩基反
応の残液をトリクロロ酢酸溶液により沈殿させ、水酸化
ナトリウム水溶液に溶解したものをBCAタンパク質定
量用試薬(ピアス社製)により残存量を定量することに
より算出したところ(以下TCA−BCA法と言う)、
18.5mgが固定化されていた。
衝液を添加してpHを8.0に調整し、上記[PEOア
ミン]ー[セルロース]1gを加えて、5℃で30時間
攪拌してシッフ塩基を形成させた。反応混合物を濾過し
て生成物を回収し、十分に洗浄してpH8.0の炭酸緩
衝液50ml,水素化ホウ素ナトリウム200mgを加
えて5℃で7時間還元反応を行なった。反応混合物を濾
過して生成物を回収し、十分に洗浄して固定化インベル
ターゼを得た。インベルターゼ固定化量はシッフ塩基反
応の残液をトリクロロ酢酸溶液により沈殿させ、水酸化
ナトリウム水溶液に溶解したものをBCAタンパク質定
量用試薬(ピアス社製)により残存量を定量することに
より算出したところ(以下TCA−BCA法と言う)、
18.5mgが固定化されていた。
【0035】酵素活性の定量は0.1%濃度のスクロー
スークエン酸緩衝液(pH5.5)溶液中にて、上記固
定化インベルターゼを固定化量が1mgに相当するよう
に懸濁して30℃で30分間反応をさせることにより実
施した。反応液中の分解物であるグルコース,フルクト
ース濃度をアミノ基を有する順相系カラムを用いた高速
液体クロマトグラフィ(島津製作所製LCー6Aシステ
ム)により定量した。結果は表1に示す通りである。な
お固定化していない遊離状態のインベルターゼ1mgに
おける同様の実験結果におけるグルコースおよびフルク
トースの量を100として表示している。
スークエン酸緩衝液(pH5.5)溶液中にて、上記固
定化インベルターゼを固定化量が1mgに相当するよう
に懸濁して30℃で30分間反応をさせることにより実
施した。反応液中の分解物であるグルコース,フルクト
ース濃度をアミノ基を有する順相系カラムを用いた高速
液体クロマトグラフィ(島津製作所製LCー6Aシステ
ム)により定量した。結果は表1に示す通りである。な
お固定化していない遊離状態のインベルターゼ1mgに
おける同様の実験結果におけるグルコースおよびフルク
トースの量を100として表示している。
【0036】
【表1】
【0037】また本酵素の熱安定性に関する影響につい
て、上記固定化酵素懸濁液を55℃で処理した際の残存
活性を上記と同様にして定量することにより検討した。
結果は図1に示す通りである。残存活性は遊離状態でp
H5.5における30℃において反応させて生成したグ
ルコース量を100%として表示した。
て、上記固定化酵素懸濁液を55℃で処理した際の残存
活性を上記と同様にして定量することにより検討した。
結果は図1に示す通りである。残存活性は遊離状態でp
H5.5における30℃において反応させて生成したグ
ルコース量を100%として表示した。
【0038】<実施例2> 抗mIgG(マウス免疫グ
ロブリン)抗体の固定化 mIgG(カッペル社製)を免疫したウサギ抗血清を硫
安塩析により精製して得た抗mIgG抗体のセルロース
への固定化を次のようにして実施した。
ロブリン)抗体の固定化 mIgG(カッペル社製)を免疫したウサギ抗血清を硫
安塩析により精製して得た抗mIgG抗体のセルロース
への固定化を次のようにして実施した。
【0039】過ヨウ素酸ナトリウム200mgを1N硫
酸50mlに溶解して、多孔質セルロース(チッソ製セ
ルロファインGCLー1000m)5gを添加し、攪拌
により20時間反応させた後、反応混合物を濾過して生
成物を回収し、十分に洗浄して[アルデヒド]ー[セル
ロース]を得た。アルデヒド含量はオキシム法により定
量を行ない0.43meq/gであった。
酸50mlに溶解して、多孔質セルロース(チッソ製セ
ルロファインGCLー1000m)5gを添加し、攪拌
により20時間反応させた後、反応混合物を濾過して生
成物を回収し、十分に洗浄して[アルデヒド]ー[セル
ロース]を得た。アルデヒド含量はオキシム法により定
量を行ない0.43meq/gであった。
【0040】分子量1000のPEOアミン4gをpH
9.5の炭酸緩衝液50mlに溶解して、上記の[アル
デヒド]ー[セルロース]全量を加えて攪拌により反応
させて、反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に
洗浄して[PEOアミン]ー[セルロース]を得た。ア
ミノ基含量は塩酸による電位差滴定により定量を行な
い、0.22meq/gであった。
9.5の炭酸緩衝液50mlに溶解して、上記の[アル
デヒド]ー[セルロース]全量を加えて攪拌により反応
させて、反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に
洗浄して[PEOアミン]ー[セルロース]を得た。ア
ミノ基含量は塩酸による電位差滴定により定量を行な
い、0.22meq/gであった。
【0041】一方上記抗体20mgをpH3.8のクエ
ン酸緩衝液に50mlに溶解して、過ヨウ素酸ナトリウ
ム50mgを添加して、攪拌により室温で45分反応さ
せた。さらにエチレングリコールを0.1M濃度になる
ように添加して、5℃で7時間攪拌して反応させ、反応
液を上記緩衝液を外液として5℃で一晩透析を行ない
[アルデヒド]ー[抗体]溶液を得た。
ン酸緩衝液に50mlに溶解して、過ヨウ素酸ナトリウ
ム50mgを添加して、攪拌により室温で45分反応さ
せた。さらにエチレングリコールを0.1M濃度になる
ように添加して、5℃で7時間攪拌して反応させ、反応
液を上記緩衝液を外液として5℃で一晩透析を行ない
[アルデヒド]ー[抗体]溶液を得た。
【0042】上記[アルデヒド]ー[抗体]液を炭酸緩
衝液を添加してpHを9.0に調整し、上記[PEOア
ミン]ー[セルロース]1gを加えて、5℃で30時間
攪拌してシッフ塩基を形成させた。反応混合物を濾過し
て生成物を回収し、十分に洗浄してpH8.0の炭酸緩
衝液50ml,水素化ホウ素ナトリウム200mgを加
えて5℃で7時間還元反応を行なった。反応混合物を濾
過して生成物を回収し、十分に洗浄して固定化抗体を得
た。抗体の固定化量は実施例1と同様にして、BCAタ
ンパク質定量用試薬により残存量を定量することにより
算出し、17.1mgが固定化されていた。
衝液を添加してpHを9.0に調整し、上記[PEOア
ミン]ー[セルロース]1gを加えて、5℃で30時間
攪拌してシッフ塩基を形成させた。反応混合物を濾過し
て生成物を回収し、十分に洗浄してpH8.0の炭酸緩
衝液50ml,水素化ホウ素ナトリウム200mgを加
えて5℃で7時間還元反応を行なった。反応混合物を濾
過して生成物を回収し、十分に洗浄して固定化抗体を得
た。抗体の固定化量は実施例1と同様にして、BCAタ
ンパク質定量用試薬により残存量を定量することにより
算出し、17.1mgが固定化されていた。
【0043】上記抗体を固定化したセルロースゲル1m
lをオープンカラム管に充填して、抗原であるmIgG
をpH8.0の50mMリン酸緩衝液に0.2%濃度で
溶解して10mlをカラムに供した。カラム通過液の抗
体濃度をTCA−BCA法により定量して、吸着しなか
ったmIgG量からカラムへの吸着率を算出した。結果
は表2に示す通りである。
lをオープンカラム管に充填して、抗原であるmIgG
をpH8.0の50mMリン酸緩衝液に0.2%濃度で
溶解して10mlをカラムに供した。カラム通過液の抗
体濃度をTCA−BCA法により定量して、吸着しなか
ったmIgG量からカラムへの吸着率を算出した。結果
は表2に示す通りである。
【0044】
【表2】
【0045】<実施例3> 抗hLDL(ヒト低比重リ
ポタンパク質)抗体の固定化 hLDL(ケミコン社製)を免疫したウサギ抗血清を硫
安塩析により精製して得た抗hLDL抗体のセルロース
への固定化を次のようにして実施した。過ヨウ素酸ナト
リウム200mgを1N硫酸50mlに溶解して、多孔
質セルロース(チッソ製セルロファインCPCm)5g
を添加し、攪拌により20時間反応させた後、反応混合
物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄して[アルデ
ヒド]ー[セルロース]を得た。アルデヒド含量はオキ
シム法により定量を行ない0.55meq/gであっ
た。
ポタンパク質)抗体の固定化 hLDL(ケミコン社製)を免疫したウサギ抗血清を硫
安塩析により精製して得た抗hLDL抗体のセルロース
への固定化を次のようにして実施した。過ヨウ素酸ナト
リウム200mgを1N硫酸50mlに溶解して、多孔
質セルロース(チッソ製セルロファインCPCm)5g
を添加し、攪拌により20時間反応させた後、反応混合
物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄して[アルデ
ヒド]ー[セルロース]を得た。アルデヒド含量はオキ
シム法により定量を行ない0.55meq/gであっ
た。
【0046】分子量5000のPEOアミン2gをpH
9.5の炭酸緩衝液50mlに溶解して、上記の[アル
デヒド]ー[セルロース]全量を加えて攪拌により反応
させて、反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に
洗浄して[PEOアミン]ー[セルロース]を得た。ア
ミノ基含量は塩酸による電位差滴定により定量を行な
い、0.20meq/gであった。
9.5の炭酸緩衝液50mlに溶解して、上記の[アル
デヒド]ー[セルロース]全量を加えて攪拌により反応
させて、反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に
洗浄して[PEOアミン]ー[セルロース]を得た。ア
ミノ基含量は塩酸による電位差滴定により定量を行な
い、0.20meq/gであった。
【0047】一方上記抗体40mgをpH3.8のクエ
ン酸緩衝液に50mlに溶解して、過ヨウ素酸ナトリウ
ム50mgを添加して、攪拌により室温で45分反応さ
せた。さらにエチレングリコールを0.1M濃度になる
ように添加して、5℃で7時間攪拌して反応させ、反応
液を上記緩衝液を外液として5℃で一晩透析処理を行な
い[アルデヒド]ー[抗体]溶液を得た。
ン酸緩衝液に50mlに溶解して、過ヨウ素酸ナトリウ
ム50mgを添加して、攪拌により室温で45分反応さ
せた。さらにエチレングリコールを0.1M濃度になる
ように添加して、5℃で7時間攪拌して反応させ、反応
液を上記緩衝液を外液として5℃で一晩透析処理を行な
い[アルデヒド]ー[抗体]溶液を得た。
【0048】上記[アルデヒド]ー[抗体]液を炭酸緩
衝液を添加してpHを9.0に調整し、上記[PEOア
ミン]ー[セルロース]1gを加えて、5℃で30時間
攪拌してシッフ塩基を形成させた。反応混合物を濾過し
て生成物を回収し、十分に洗浄してpH8.0の炭酸緩
衝液50ml,水素化ホウ素ナトリウム200mgを加
えて5℃で7時間還元反応を行なった。反応混合物を濾
過して生成物を回収し、十分に洗浄して固定化抗体を得
た。抗体の固定化量は実施例1と同様にして、BCAタ
ンパク質定量用試薬により残存量を定量することにより
算出し、27.9mgが固定化されていた。
衝液を添加してpHを9.0に調整し、上記[PEOア
ミン]ー[セルロース]1gを加えて、5℃で30時間
攪拌してシッフ塩基を形成させた。反応混合物を濾過し
て生成物を回収し、十分に洗浄してpH8.0の炭酸緩
衝液50ml,水素化ホウ素ナトリウム200mgを加
えて5℃で7時間還元反応を行なった。反応混合物を濾
過して生成物を回収し、十分に洗浄して固定化抗体を得
た。抗体の固定化量は実施例1と同様にして、BCAタ
ンパク質定量用試薬により残存量を定量することにより
算出し、27.9mgが固定化されていた。
【0049】上記抗体を固定化したセルロースゲル1m
lをブタ血清(LDL値150.5mg/ml)3ml
と20mlのバイヤル中で混合して、30℃で30分間
振盪することによりインキュベートして、遠心上清のL
DL値をβリポ蛋白Cテストーワコー(和光純薬工業
製)により定量した。得られた残存LDL値からLDL
吸着率を算出した結果を表3に示す。
lをブタ血清(LDL値150.5mg/ml)3ml
と20mlのバイヤル中で混合して、30℃で30分間
振盪することによりインキュベートして、遠心上清のL
DL値をβリポ蛋白Cテストーワコー(和光純薬工業
製)により定量した。得られた残存LDL値からLDL
吸着率を算出した結果を表3に示す。
【0050】
【表3】
【0051】<実施例4> 小麦胚芽レクチン(WG
A)の固定化 WGA(ベクターラボラトリー社製)のセルロースへの
固定化を次のようにして実施した。過ヨウ素酸ナトリウ
ム100mgを1N硫酸50mlに溶解して、多孔質セ
ルロース(チッソ製セルロファインGCLー1000
m)5gを添加し、攪拌により20時間反応させた後、
反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄して
[アルデヒド]ー[セルロース]を得た。アルデヒド含
量はオキシム法により定量を行ない0.22meq/g
であった。
A)の固定化 WGA(ベクターラボラトリー社製)のセルロースへの
固定化を次のようにして実施した。過ヨウ素酸ナトリウ
ム100mgを1N硫酸50mlに溶解して、多孔質セ
ルロース(チッソ製セルロファインGCLー1000
m)5gを添加し、攪拌により20時間反応させた後、
反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄して
[アルデヒド]ー[セルロース]を得た。アルデヒド含
量はオキシム法により定量を行ない0.22meq/g
であった。
【0052】分子量1000のPEOアミン4gをpH
9.5の炭酸緩衝液50mlに溶解して、上記の[アル
デヒド]ー[セルロース]全量を加えて攪拌により反応
させて、反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に
洗浄して[PEOアミン]ー[セルロース]を得た。ア
ミノ基含量は塩酸による電位差滴定により定量を行な
い、0.15meq/gであった。
9.5の炭酸緩衝液50mlに溶解して、上記の[アル
デヒド]ー[セルロース]全量を加えて攪拌により反応
させて、反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に
洗浄して[PEOアミン]ー[セルロース]を得た。ア
ミノ基含量は塩酸による電位差滴定により定量を行な
い、0.15meq/gであった。
【0053】一方上記WGA20mgをpH4.5のク
エン酸緩衝液に50mlに溶解して、過ヨウ素酸ナトリ
ウム50mgを添加して、攪拌により室温で45分反応
させた。さらにエチレングリコールを0.1M濃度にな
るように添加して、5℃で7時間攪拌して反応させ、反
応液を上記緩衝液を外液として5℃で一晩透析処理を行
ない[アルデヒド]ー[レクチン]を得た。上記[アル
デヒド]ー[レクチン]液を炭酸緩衝液を添加してpH
を8.5に調整し、上記[PEOアミン]ー[セルロー
ス]1gを加えて、5℃で30時間攪拌してシッフ塩基
を形成させた。反応混合物を濾過して生成物を回収し、
十分に洗浄してpH8.0の炭酸緩衝液50ml,水素
化ホウ素ナトリウム200mgを加えて5℃で7時間還
元反応を行なった。反応混合物を濾過して生成物を回収
し、十分に洗浄して固定化レクチンを得た。レクチンの
固定化量は、BCAタンパク質定量用試薬により残存量
を定量することにより算出し、13.7mgが固定化さ
れていた。
エン酸緩衝液に50mlに溶解して、過ヨウ素酸ナトリ
ウム50mgを添加して、攪拌により室温で45分反応
させた。さらにエチレングリコールを0.1M濃度にな
るように添加して、5℃で7時間攪拌して反応させ、反
応液を上記緩衝液を外液として5℃で一晩透析処理を行
ない[アルデヒド]ー[レクチン]を得た。上記[アル
デヒド]ー[レクチン]液を炭酸緩衝液を添加してpH
を8.5に調整し、上記[PEOアミン]ー[セルロー
ス]1gを加えて、5℃で30時間攪拌してシッフ塩基
を形成させた。反応混合物を濾過して生成物を回収し、
十分に洗浄してpH8.0の炭酸緩衝液50ml,水素
化ホウ素ナトリウム200mgを加えて5℃で7時間還
元反応を行なった。反応混合物を濾過して生成物を回収
し、十分に洗浄して固定化レクチンを得た。レクチンの
固定化量は、BCAタンパク質定量用試薬により残存量
を定量することにより算出し、13.7mgが固定化さ
れていた。
【0054】上記WGAを固定化したセルロースゲル1
mlをオープンカラム管に充填して、mIgGをpH
8.0の50mMリン酸緩衝液に0.2%濃度で溶解し
て10mlをカラムに供した。カラム通過液の抗体濃度
をTCA−BCA法により定量して、吸着されなかった
mIgG量からカラムへの吸着率を算出した。結果は表
4に示す通りである。
mlをオープンカラム管に充填して、mIgGをpH
8.0の50mMリン酸緩衝液に0.2%濃度で溶解し
て10mlをカラムに供した。カラム通過液の抗体濃度
をTCA−BCA法により定量して、吸着されなかった
mIgG量からカラムへの吸着率を算出した。結果は表
4に示す通りである。
【0055】
【表4】
【0056】<比較例1> インベルターゼの固定化 実施例1におけるインベルターゼ30mgをpH8.0
の炭酸緩衝液50mlに溶解して、実施例1において調
整した[PEOアミン]ー[セルロース]1gを加えて
5℃で30時間攪拌してシッフ塩基を形成させた。反応
混合物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄してpH
8.0の炭酸緩衝液50ml,水素化ホウ素ナトリウム
200mgを加えて5℃で7時間還元反応を行なった。
反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄して
固定化インベルターゼを得た。インベルターゼ固定化量
は実施例1と同様にして求め、21.3mgが固定化さ
れていた。酵素活性およびその熱安定性について実施例
1と同様にして行なった。結果は表1および図1に示す
通りである。
の炭酸緩衝液50mlに溶解して、実施例1において調
整した[PEOアミン]ー[セルロース]1gを加えて
5℃で30時間攪拌してシッフ塩基を形成させた。反応
混合物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄してpH
8.0の炭酸緩衝液50ml,水素化ホウ素ナトリウム
200mgを加えて5℃で7時間還元反応を行なった。
反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄して
固定化インベルターゼを得た。インベルターゼ固定化量
は実施例1と同様にして求め、21.3mgが固定化さ
れていた。酵素活性およびその熱安定性について実施例
1と同様にして行なった。結果は表1および図1に示す
通りである。
【0057】<比較例2> 抗mIgG抗体の固定化 実施例2における抗mIgG抗体20mgをpH9.0
の炭酸緩衝液50mlに溶解して、実施例2において調
整した[PEOアミン]ー[セルロース]1gを加えて
5℃で30時間攪拌してシッフ塩基を形成させた。反応
混合物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄してpH
8.0の炭酸緩衝液50ml,水素化ホウ素ナトリウム
200mgを加えて5℃で7時間還元反応を行なった。
反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄して
固定化抗体を得た。抗体の固定化量は実施例2と同様に
して求め、18.3mgが固定化されていた。実施例2
と同様のカラムを作製して、mIgG吸着率を求めた。
結果は表2に示す通りである。
の炭酸緩衝液50mlに溶解して、実施例2において調
整した[PEOアミン]ー[セルロース]1gを加えて
5℃で30時間攪拌してシッフ塩基を形成させた。反応
混合物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄してpH
8.0の炭酸緩衝液50ml,水素化ホウ素ナトリウム
200mgを加えて5℃で7時間還元反応を行なった。
反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄して
固定化抗体を得た。抗体の固定化量は実施例2と同様に
して求め、18.3mgが固定化されていた。実施例2
と同様のカラムを作製して、mIgG吸着率を求めた。
結果は表2に示す通りである。
【0058】<比較例3> 抗hLDL抗体の固定化 実施例3における抗hLDL抗体40mgをpH9.0
の炭酸緩衝液50mlに溶解して、実施例3において調
整した[PEOアミン]ー[セルロース]1gを加えて
5℃で30時間攪拌してシッフ塩基を形成させた。反応
混合物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄してpH
8.0の炭酸緩衝液50ml,水素化ホウ素ナトリウム
200mgを加えて5℃で7時間還元反応を行なった。
反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄して
固定化抗体を得た。抗体の固定化量は実施例2と同様に
して求め、35.1mgが固定化されていた。実施例3
と同様にして、ブタ血清におけるLDL吸着率を求め
た。結果は表3に示す通りである。
の炭酸緩衝液50mlに溶解して、実施例3において調
整した[PEOアミン]ー[セルロース]1gを加えて
5℃で30時間攪拌してシッフ塩基を形成させた。反応
混合物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄してpH
8.0の炭酸緩衝液50ml,水素化ホウ素ナトリウム
200mgを加えて5℃で7時間還元反応を行なった。
反応混合物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄して
固定化抗体を得た。抗体の固定化量は実施例2と同様に
して求め、35.1mgが固定化されていた。実施例3
と同様にして、ブタ血清におけるLDL吸着率を求め
た。結果は表3に示す通りである。
【0059】<比較例4> 抗hLDL抗体の固定化 実施例3と同様にして、CPCm5gを酸化してアルデ
ヒド含量0.50meq/gの[アルデヒド]ー[セル
ロース]を調製した。さらにこれに28%アンモニア水
50mlを加えて室温で8時間反応させ、濾過して生成
物を回収し、十分に洗浄して[アミノ]ー[セルロー
ス]を得た。アミノ基含量は塩酸による電位差滴定によ
り定量を行ない、0.28meq/gであった。
ヒド含量0.50meq/gの[アルデヒド]ー[セル
ロース]を調製した。さらにこれに28%アンモニア水
50mlを加えて室温で8時間反応させ、濾過して生成
物を回収し、十分に洗浄して[アミノ]ー[セルロー
ス]を得た。アミノ基含量は塩酸による電位差滴定によ
り定量を行ない、0.28meq/gであった。
【0060】一方実施例3における抗hLDL抗体40
mgをpH9.0の炭酸緩衝液50mlに溶解して、上
記[アミノ]ー[セルロース]1gを加えて5℃で30
時間攪拌してシッフ塩基を形成させた。反応混合物を濾
過して生成物を回収し、十分に洗浄してpH8.0の炭
酸緩衝液50ml,水素化ホウ素ナトリウム200mg
を加えて5℃で7時間還元反応を行なった。反応混合物
を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄して固定化抗体
を得た。抗体の固定化量は実施例2と同様にして求め、
35.1mgが固定化されていた。実施例3と同様にし
て、ブタ血清におけるLDL吸着率を求めた。結果は表
3に示す通りである。
mgをpH9.0の炭酸緩衝液50mlに溶解して、上
記[アミノ]ー[セルロース]1gを加えて5℃で30
時間攪拌してシッフ塩基を形成させた。反応混合物を濾
過して生成物を回収し、十分に洗浄してpH8.0の炭
酸緩衝液50ml,水素化ホウ素ナトリウム200mg
を加えて5℃で7時間還元反応を行なった。反応混合物
を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄して固定化抗体
を得た。抗体の固定化量は実施例2と同様にして求め、
35.1mgが固定化されていた。実施例3と同様にし
て、ブタ血清におけるLDL吸着率を求めた。結果は表
3に示す通りである。
【0061】<比較例5> WGAの固定化 実施例4におけるWGA20mgをpH8.5の炭酸緩
衝液50mlに溶解して、実施例1において調整した
[PEOアミン]ー[セルロース]1gを加えて5℃で
30時間攪拌してシッフ塩基を形成させた。反応混合物
を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄してpH8.0
の炭酸緩衝液50ml,水素化ホウ素ナトリウム200
mgを加えて5℃で7時間還元反応を行なった。反応混
合物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄して固定化
レクチンを得た。レクチンの固定化量は実施例2と同様
にして求め、15.9mgが固定化されていた。実施例
4と同様のカラムを作製して、mIgG吸着率を求め
た。結果は表4に示す通りである。
衝液50mlに溶解して、実施例1において調整した
[PEOアミン]ー[セルロース]1gを加えて5℃で
30時間攪拌してシッフ塩基を形成させた。反応混合物
を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄してpH8.0
の炭酸緩衝液50ml,水素化ホウ素ナトリウム200
mgを加えて5℃で7時間還元反応を行なった。反応混
合物を濾過して生成物を回収し、十分に洗浄して固定化
レクチンを得た。レクチンの固定化量は実施例2と同様
にして求め、15.9mgが固定化されていた。実施例
4と同様のカラムを作製して、mIgG吸着率を求め
た。結果は表4に示す通りである。
【0062】
【発明の効果】本発明により、種々の糖鎖の結合した生
理活性物質をその活性を失活させたりあるいは変性させ
たりすることなく水不溶性担体に固定化することが可能
となり、固定化前に近い活性を維持した生理活性物質固
定化担体を提供することが可能となった。本発明は吸着
材,アフィニティクロマト用担体,バイオセンサー,エ
ンザイムイムノアッセイ,バイオリアクターなどをはじ
め広範囲な領域において有用なものである。
理活性物質をその活性を失活させたりあるいは変性させ
たりすることなく水不溶性担体に固定化することが可能
となり、固定化前に近い活性を維持した生理活性物質固
定化担体を提供することが可能となった。本発明は吸着
材,アフィニティクロマト用担体,バイオセンサー,エ
ンザイムイムノアッセイ,バイオリアクターなどをはじ
め広範囲な領域において有用なものである。
【図1】実施例1と比較例1の熱安定性を示す図であ
る。
る。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 田中 昌和 滋賀県大津市堅田二丁目1番1号 東洋紡 績株式会社総合研究所内
Claims (3)
- 【請求項1】 生理活性を有する糖タンパク質または糖
ペプチドが、水不溶性担体に親水性スペーサーを介し
て、糖鎖の部位において固定されていることを特徴とす
る生理活性物質固定化担体。 - 【請求項2】 生理活性を有する糖タンパク質または糖
ペプチドの糖鎖におけるグリコール部位の開裂により形
成されたアルデヒド基を、アミノ基を末端に有する親水
性スペーサーの結合した水不溶性担体とシッフ塩基を形
成させた後これを還元することを特徴とする生理活性物
質固定化担体の製法。 - 【請求項3】 親水性スペーサーが重合度10ないし5
00である両末端にアミノ基を有するポリ(オキシエチ
レン)である請求項第2項記載の生理活性物質固定化担
体の製法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4097109A JPH05261281A (ja) | 1992-03-23 | 1992-03-23 | 生理活性物質固定化担体とその製法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4097109A JPH05261281A (ja) | 1992-03-23 | 1992-03-23 | 生理活性物質固定化担体とその製法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH05261281A true JPH05261281A (ja) | 1993-10-12 |
Family
ID=14183426
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP4097109A Pending JPH05261281A (ja) | 1992-03-23 | 1992-03-23 | 生理活性物質固定化担体とその製法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH05261281A (ja) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP1577293A4 (en) * | 2002-12-26 | 2007-08-01 | Shionogi & Co | METHOD FOR CLEANING / CONCENTRATING SUGAR CHAINS WITH SUGAR CHAIN INCOMPATIBLE MOLECULE AND AN ASSAY PROCESS FOR SUGAR CHAIN STRUCTURE |
| WO2010013833A1 (en) * | 2008-07-31 | 2010-02-04 | Fujifilm Corporation | Hazardous substance removing material and method for removing hazardous substance |
| JP2015514766A (ja) * | 2012-04-18 | 2015-05-21 | シーメンス・ヘルスケア・ダイアグノスティックス・インコーポレーテッドSiemens Healthcare Diagnostics Inc. | コンジュゲート試薬を製造するための化合物および方法 |
| CN112978940A (zh) * | 2021-04-22 | 2021-06-18 | 广州市点滴生物科技有限公司 | 一种有机污水生物发酵处理剂及其制备方法 |
-
1992
- 1992-03-23 JP JP4097109A patent/JPH05261281A/ja active Pending
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP1577293A4 (en) * | 2002-12-26 | 2007-08-01 | Shionogi & Co | METHOD FOR CLEANING / CONCENTRATING SUGAR CHAINS WITH SUGAR CHAIN INCOMPATIBLE MOLECULE AND AN ASSAY PROCESS FOR SUGAR CHAIN STRUCTURE |
| US9139607B2 (en) | 2002-12-26 | 2015-09-22 | Sumitomo Bakelite Co., Ltd. | Method of purifying/concentrating sugar chain with sugar chain-trapping molecule and method of analyzing sugar chain structure |
| US9683006B2 (en) | 2002-12-26 | 2017-06-20 | Sumitomo Bakelite Co., Ltd. | Method of purifying/concentrating sugar chains with a sugar chain-trapping molecule and method of analyzing sugar chain structure |
| WO2010013833A1 (en) * | 2008-07-31 | 2010-02-04 | Fujifilm Corporation | Hazardous substance removing material and method for removing hazardous substance |
| JP2015514766A (ja) * | 2012-04-18 | 2015-05-21 | シーメンス・ヘルスケア・ダイアグノスティックス・インコーポレーテッドSiemens Healthcare Diagnostics Inc. | コンジュゲート試薬を製造するための化合物および方法 |
| CN112978940A (zh) * | 2021-04-22 | 2021-06-18 | 广州市点滴生物科技有限公司 | 一种有机污水生物发酵处理剂及其制备方法 |
| CN112978940B (zh) * | 2021-04-22 | 2021-07-16 | 广州市点滴生物科技有限公司 | 一种有机污水生物发酵处理剂及其制备方法 |
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