JPH04248988A - Production of l-proline by fermentation method - Google Patents
Production of l-proline by fermentation methodInfo
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。(57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.
Description
【0001】0001
【産業上の利用分野】本発明は発酵法によるL−プロリ
ンの製造法に関するものである。BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a method for producing L-proline by fermentation.
【0002】0002
【従来の技術】従来、発酵法によるL−プロリンの製造
法としては、たとえば、コリネバクテリウム属、クルチ
ア属などに属する微生物を用いる方法が知られている(
相田ら編「アミノ酸発酵」P218〜242学会出版セ
ンター(1986))。[Prior Art] Conventionally, as a method for producing L-proline by fermentation, a method using microorganisms belonging to the genus Corynebacterium, Curthia, etc. is known (
Amino acid fermentation, edited by Aida et al., pp. 218-242, Society Publishing Center (1986)).
【0003】0003
【発明が解決しようとする課題】しかしながら、従来法
においては、発酵法によるL−プロリン生産能を有する
微生物として限られたものしか見出されていなかった。[Problems to be Solved by the Invention] However, in the conventional method, only a limited number of microorganisms have been found that have the ability to produce L-proline by fermentation.
【0004】0004
【課題を解決するための手段】そこで本発明者らは従来
の微生物とは異なった微生物であって、かつL−プロリ
ン生産能を有する微生物を広く検索、研究した結果、プ
ロビデンシア属に属する微生物によって通常の炭素源を
含有する栄養培地にL−プロリンを著量蓄積せしめるこ
とができることを見出し、先に提案した。[Means for Solving the Problems] The present inventors have extensively searched and studied microorganisms that are different from conventional microorganisms and have the ability to produce L-proline. It has been found and previously proposed that L-proline can be accumulated in a significant amount in a nutrient medium containing a common carbon source.
【0005】しかし、これらの方法によるL−プロリン
の生成蓄積濃度または糖などの原料からのL−プロリン
生成収率は十分に満足できるものではなかった。However, the accumulated concentration of L-proline produced by these methods or the yield of L-proline produced from raw materials such as sugars were not fully satisfactory.
【0006】本発明者らはさらに生産性の高いL−プロ
リンの製造方法について鋭意研究した結果、プロビデン
シア属に属しL−プロリン生産能を有する微生物に、ア
スパラギン酸代謝拮抗物質に対する耐性を付与すること
により、L−プロリン蓄積濃度、生成収率が著しく向上
することを見出し本発明に到達した。[0006] As a result of intensive research into a highly productive method for producing L-proline, the present inventors have found that microorganisms belonging to the genus Providencia and capable of producing L-proline are given resistance to aspartate antimetabolites. The present invention was achieved by discovering that the L-proline accumulation concentration and production yield were significantly improved.
【0007】すなわち、本発明はプロビデンシア(Pr
ovidencia)属に属し、アスパラギン酸代謝拮
抗物質に耐性を有し、かつL−プロリン生産能を有する
微生物を培養して、培養液中にL−プロリンを蓄積せし
め、前記培養液よりL−プロリンを採取することを特徴
とする発酵法によるL−プロリンの製造法である。That is, the present invention provides Providencia (Pr
A microorganism belonging to the genus Ovidencia, resistant to aspartate antimetabolites, and capable of producing L-proline is cultured, L-proline is accumulated in the culture solution, and L-proline is extracted from the culture solution. This is a method for producing L-proline by a fermentation method, which is characterized by collecting L-proline.
【0008】ここでアスパラギン酸代謝拮抗物質とは、
プロビデンシア属に属する微生物の(1) 生育を阻害
し、その生育阻害がL−アスパラギン酸の添加により回
復する物質または(2) L−アスパラギン酸生合成系
に関与する酵素の抑制および阻害作用を示し、その抑制
あるいは阻害がL−アスパラギン酸の添加により回復す
る物質のことである。[0008] Here, the aspartate antimetabolite is
Substances that (1) inhibit the growth of microorganisms belonging to the genus Providencia and whose growth inhibition is recovered by the addition of L-aspartic acid, or (2) exhibit suppressive and inhibitory effects on enzymes involved in the L-aspartic acid biosynthesis system. , is a substance whose suppression or inhibition can be restored by adding L-aspartic acid.
【0009】アスパラギン酸代謝拮抗物質としては、た
とえばアスパラギン酸ヒドロキサメート、α−メチルア
スパラギン酸、β−メチルアスパラギン酸、システイン
スルフィン酸、ジフルオロコハク酸、ハダシジンなどが
挙げられる。本発明で用いられる微生物はプロビデンシ
ア属に属し(バージーのマニュアル・オブ・システマテ
ィク・バクテリオロジー第1巻(1984)、495お
よび496ページに従う)、アスパラギン酸代謝拮抗物
質に耐性を有する変異株である。かかる性質を有してい
れば、他の栄養要求性、他の薬剤抵抗性をもつものでも
本発明の範囲に含まれる。またL−イソロイシンに対す
る栄養要求性、3,4−デヒドロプロリンなどのプロリ
ン代謝拮抗物質に対する耐性は、L−プロリン生産能に
有効に作用するので、これらのいくつかの特性ないしは
すべての特性をあわせもつ微生物が親株として好ましく
用いられる。またこれらの特性は通常の変異誘導操作に
より付与することが可能である。ここでいう栄養要求性
とは広義の意味であり、不完全欠失型(いわゆるlea
ky型)も含むものである。さらにその要求物質の生合
成前駆物質で要求性が満足される場合も含むものである
。Examples of aspartate antimetabolites include aspartate hydroxamate, α-methylaspartic acid, β-methylaspartic acid, cysteine sulfinic acid, difluorosuccinic acid, and hadacidin. The microorganism used in the present invention belongs to the genus Providencia (according to Virsey's Manual of Systematic Bacteriology, Vol. 1 (1984), pages 495 and 496) and is a mutant strain that is resistant to aspartate antimetabolites. . As long as they have such properties, those with other nutritional requirements and drug resistance are also included within the scope of the present invention. In addition, auxotrophy for L-isoleucine and resistance to proline antimetabolites such as 3,4-dehydroproline effectively affect L-proline production ability, so some or all of these characteristics may be combined. Microorganisms are preferably used as parent strains. Moreover, these characteristics can be imparted by ordinary mutagenesis operations. Auxotrophy here has a broad meaning, and incomplete deletion type (so-called lea
ky type). Furthermore, it also includes cases where the requirement is satisfied by the biosynthetic precursor of the required substance.
【0010】本発明で用いられる変異株の代表的なもの
としてはたとえば以下のものがある。プロビデンシア・
レトゲリPX8.5−13(FERM P−1193
6)。[0010] Typical mutant strains used in the present invention include, for example, the following. Providencia
Retogeri PX8.5-13 (FERM P-1193
6).
【0011】この変異株はプロビデンシア・レトゲリA
TCC21118(L−イソロイシン要求性)より誘導
されたプロビデンシア・レトゲリPP2−704を親株
として、通常の変異処理方法によって得られたもので、
アスパラギン酸ヒドロキサメートに耐性な変異株である
。[0011] This mutant strain is Providencia retogeri A
It was obtained by a normal mutation treatment method using Providencia retogeri PP2-704 derived from TCC21118 (L-isoleucine auxotrophy) as the parent strain,
This is a mutant strain that is resistant to aspartate hydroxamate.
【0012】変異株の誘導は親株を紫外線照射するか、
あるいは変異誘発剤(たとえばN−メチル−N′−ニト
ロ−N−ニトロソグアニジン、エチルメタンスルホン酸
など)で処理した後、親株が生育できないような濃度の
アスパラギン酸代謝拮抗物質を含む固体培地で生育可能
な菌株を採取すればよい。[0012] Mutant strains can be induced by irradiating the parent strain with ultraviolet light or
Alternatively, after treatment with a mutagen (e.g., N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine, ethylmethanesulfonic acid, etc.), the parent strain is grown on a solid medium containing an aspartate antimetabolite at a concentration such that it cannot grow. All you have to do is collect the possible strains.
【0013】アスパラギン酸代謝拮抗物質耐性変異株は
親株よりアスパラギン酸代謝拮抗物質に強い耐性を有す
る株のことであり、好ましくしは親株の相対生育度が3
0%以下を示すアスパラギン酸代謝拮抗物質の濃度範囲
において60%以上の相対生育度を示す変異株のことで
ある。ここでの相対生育度は培養液の660nmにおけ
る吸光度を測定し、各菌株のアスパラギン酸代謝拮抗物
質を添加していない培養液の吸光度を100%とした時
の相対値で示す。耐性を検定する場合のアスパラギン酸
代謝拮抗物質は市販のものを用いればよい。[0013] The aspartate antimetabolite-resistant mutant strain is a strain that has stronger resistance to aspartate antimetabolites than the parent strain, and preferably has a relative growth rate of 3.
This is a mutant strain that exhibits a relative growth rate of 60% or more in a concentration range of aspartate antimetabolite that is 0% or less. The relative growth rate here is expressed as a relative value when the absorbance of the culture solution at 660 nm is measured and the absorbance of the culture solution to which the aspartate antimetabolite of each strain is not added is taken as 100%. A commercially available aspartate antimetabolite may be used for testing resistance.
【0014】本発明におけるL−プロリン生産用培地は
、炭素源、窒素源、無機イオンおよび必要に応じてその
他の有機微量成分を含有する通常の培地である。[0014] The medium for L-proline production in the present invention is a conventional medium containing a carbon source, a nitrogen source, inorganic ions, and other organic trace components as necessary.
【0015】炭素源としては、グルコース、フラクトー
ス、澱粉およびセルロースの加水分解物、糖蜜などの糖
類、フマール酸、クエン酸、コハク酸などの有機酸、グ
リセロールなどのアルコール類などを2〜15%、窒素
源として、酢酸アンモニウムなどの有機アンモニウム塩
、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモ
ニウム、硝酸アンモニウムなどの無機アンモニウム塩、
アンモニアガス、アンモニア水、尿素などを0.5〜4
.0%、有機微量栄養素としては、L−イソロイシンな
どの被要求物質が0.001〜0.4%、または必要に
応じてコーンスティープリカー、ペプトン、酵母エキス
など0〜4%をそれぞれ適当量含有する培地が好適に用
いられる。かかる培地にはこれらの他にリン酸カリウム
、硫酸マグネシウム、硫酸第1鉄7水和物、硫酸マンガ
ン4〜6水和物などが微量成分として少量添加されるの
が通常である。Carbon sources include glucose, fructose, starch and cellulose hydrolysates, sugars such as molasses, organic acids such as fumaric acid, citric acid, and succinic acid, alcohols such as glycerol, and the like. As a nitrogen source, organic ammonium salts such as ammonium acetate, inorganic ammonium salts such as ammonium sulfate, ammonium chloride, ammonium phosphate, ammonium nitrate,
Ammonia gas, ammonia water, urea, etc. from 0.5 to 4
.. 0%, organic micronutrients include 0.001 to 0.4% of required substances such as L-isoleucine, or 0 to 4% of corn steep liquor, peptone, yeast extract, etc. as required. A medium is preferably used. In addition to these, potassium phosphate, magnesium sulfate, ferrous sulfate heptahydrate, manganese sulfate tetra- to hexahydrate, and the like are usually added in small amounts as trace components to such a medium.
【0016】培養は好気的条件で行う。培養の間、培地
のpHは5から9に、温度は24〜37℃に調節し、4
8〜120時間振盪または通気培養すれば好ましい結果
が得られる。[0016] Cultivation is carried out under aerobic conditions. During cultivation, the pH of the medium was adjusted to 5 to 9, the temperature was adjusted to 24 to 37°C, and
Favorable results can be obtained by culturing with shaking or aeration for 8 to 120 hours.
【0017】培養液よりL−プロリンを採取するには、
常法で行うことができる。たとえば菌体を除去した培養
濾液をpH2に塩酸で調整した後、強酸性カチオン交換
樹脂に通液吸着後、希アンモニア水で吸着成分を溶出し
、脱アンモニア後、濃縮する。これにアルコールを添加
し、冷却保存下で生成した結晶を集め、L−プロリンを
得ることができる。[0017] To collect L-proline from the culture solution,
This can be done in a conventional manner. For example, a culture filtrate from which bacterial cells have been removed is adjusted to pH 2 with hydrochloric acid, and then passed through a strongly acidic cation exchange resin for adsorption, the adsorbed components are eluted with dilute aqueous ammonia, deammoniated, and concentrated. L-proline can be obtained by adding alcohol to this and collecting the generated crystals under refrigerated storage.
【0018】[0018]
【実施例】以下、実施例により本発明を具体的に説明す
る。[Examples] The present invention will be specifically explained below with reference to Examples.
【0019】[0019]
【実施例1】DL−アスパラギン酸ヒドロキサメート耐
性株の分離
プロビデンシア・レトゲリATCC21118から誘導
したプロビデンシア・レトゲリPP2−704(3,4
−デヒドロプロリン耐性、チアゾリジン−4−カルボン
酸耐性、L−イソロイシン要求性)の菌体に常法により
N−メチル−N′−ニトロ−N−ニトロソグアニジン処
理(300mg/l、30℃で10分)した後、この細
胞をDL−アスパラギン酸ヒドロキサメート0.5g/
lを添加した寒天培地(グルコース0.5%、硫安0.
1%、リン酸第1カリウム0.3%、リン酸第2カリウ
ム0.7%、硫酸マグネシウム7水和物0.01%、L
−イソロイシン0.005%を含む最少培地)に塗布し
た。次に30℃にて6〜8日培養し、生じた大きなコロ
ニーを釣菌分離して、DL−アスパラギン酸ヒドロキサ
メート耐性株(プロビデンシア・レトゲリPX8.5−
13)を取得した。[Example 1] Isolation of DL-aspartic acid hydroxamate resistant strain Providencia retgeli PP2-704 (3,4
-dehydroproline resistant, thiazolidine-4-carboxylic acid resistant, L-isoleucine auxotrophic) cells were treated with N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine (300 mg/l, 10 minutes at 30°C) using a conventional method. ), the cells were treated with 0.5 g/DL-aspartate hydroxamate.
Agar medium (glucose 0.5%, ammonium sulfate 0.1%) supplemented with
1%, potassium phosphate 0.3%, potassium phosphate 0.7%, magnesium sulfate heptahydrate 0.01%, L
- minimal medium containing 0.005% isoleucine). Next, it was cultured at 30°C for 6 to 8 days, and the resulting large colonies were isolated by fishing, and a DL-aspartate hydroxamate-resistant strain (Providencia retogeri PX8.5-
13) was obtained.
【0020】[0020]
【実施例2】DL−アスパラギン酸ヒドロキサメート耐
性変異株の耐性度
表1に示す各菌株を液体ブイヨン培地を用いて30℃で
16時間振盪培養し、生育した菌体を集菌し生理食塩水
で洗浄した。この菌体懸濁液をDL−アスパラギン酸ヒ
ドロキサメート0、0.25、0.5、1.0g/lの
濃度で含む最少培地(グルコース0.5%、硫安0.1
%、リン酸第1カリウム0.3%、リン酸第2カリウム
0.7%、硫酸マグネシウム7水和物0.01%、L−
イソロイシン0.005%)5mlに植菌して、30℃
にて培養し、各菌株の48時間後の生育度を調べた。そ
の結果は表1に示すとおりである。本発明で使用するD
L−アスパラギン酸ヒドロキサメートに耐性な変異株(
プロブデンシア・レトゲリPX8.5−13では、親株
のプロビデンシア・レトゲリPP2−704と比較して
、高濃度のDL−アスパラギン酸ヒドロキサメートによ
って生育が阻害されず、強いDL−アスパラギン酸ヒド
ロキサメート耐性を獲得していることを示している。[Example 2] Resistance of DL-aspartate hydroxamate resistant mutant strains Each strain shown in Table 1 was cultured with shaking at 30°C for 16 hours using a liquid broth medium, and the grown cells were collected and saline Washed with water. A minimal medium (glucose 0.5%, ammonium sulfate 0.1
%, potassium phosphate 0.3%, potassium phosphate 0.7%, magnesium sulfate heptahydrate 0.01%, L-
Inoculate 5 ml of isoleucine (0.005%) and incubate at 30°C.
The growth rate of each strain was examined after 48 hours. The results are shown in Table 1. D used in the present invention
Mutant strain resistant to L-aspartate hydroxamate (
Compared to the parent strain Providencia retgeli PP2-704, the growth of Probdensia retgeli PX8.5-13 was not inhibited by high concentrations of DL-aspartate hydroxamate, and it showed strong DL-aspartate hydroxamate resistance. It shows that you have earned it.
【0021】[0021]
【表1】[Table 1]
【0022】[0022]
【実施例3】L−プロリン生産菌の培養およびL−プロ
リン生産
表2に示す各菌株をそれぞれ液体ブイヨン培地50ml
で30℃、16時間振盪して前培養した後、あらかじめ
120℃、20分間蒸気滅菌した下記組成の主発酵培地
950mlを含む2リットル容ミニジャーファーメンタ
ーに植え継ぎ30℃、800rpm、通気量1vvmに
て通気撹拌培養を開始した。pH調節および窒素源の供
給は25%アンモニア水にて行い、pHは6.5〜8.
0に維持した。グルコース、KH2 PO4 、MgS
O4 ・7H2 O、L−イソロイシンを適宜添加しな
がら、65時間培養したところ表2に示すような結果を
得た。[Example 3] Culture of L-proline producing bacteria and production of L-proline Each strain shown in Table 2 was grown in 50 ml of liquid broth medium.
After pre-culturing at 30°C for 16 hours with shaking, transfer to a 2-liter mini-jar fermenter containing 950 ml of main fermentation medium with the following composition, which had been previously steam sterilized at 120°C for 20 minutes at 30°C, 800 rpm, aeration rate 1vvm. Aerated agitation culture was started. pH adjustment and nitrogen source supply were performed using 25% ammonia water, and the pH was 6.5 to 8.
It was maintained at 0. Glucose, KH2 PO4, MgS
When cultured for 65 hours while appropriately adding O4.7H2O, L-isoleucine, the results shown in Table 2 were obtained.
【0023】発酵用培地
グルコース(別滅菌) 4%(NH4
)2 SO4 0.5%KH2
PO4 0.1%M
gSO4 ・7H2 O 0.04%F
e++ 2p
pmMn++
2ppmL−イソロイシン
0.015%酵母エキス
0.05%pH7.0(KOHで中和)。Fermentation medium glucose (separately sterilized) 4% (NH4
)2 SO4 0.5%KH2
PO4 0.1%M
gSO4 ・7H2 O 0.04%F
e++ 2p
pmMn++
2ppmL-isoleucine
0.015% yeast extract
0.05% pH 7.0 (neutralized with KOH).
【0024】逐時添加培地(1リットルの培養に対する
添加量)
グルコース 180g(別
滅菌)KH2 PO4
1.125gMgSO4 ・7H2 O
0.45gL−イソロイシン
0.675g水道水
合計 240ml
。[0024] Sequential addition medium (amount added per 1 liter of culture) Glucose 180g (separately sterilized) KH2 PO4
1.125gMgSO4 ・7H2O
0.45gL-isoleucine
0.675g tap water total 240ml
.
【0025】[0025]
【表2】[Table 2]
【0026】プロビデンシア・レトゲリPX8.5−1
3の培養液より菌体を除き、その500mlを強カチオ
ン交換樹脂ダイヤイオンSK・1B(H型)のカラムに
通した。カラムを水洗後、2Nアンモニア水でカラムの
吸着成分を溶出し、脱色後減圧濃縮した。これにイソプ
ロピルアルコールを加え、冷却し、生成した結晶を集め
て乾燥した結果、純度98%のL−プロリンの結晶32
gが得られた。[0026] Providencia letgeri PX8.5-1
Bacterial cells were removed from the culture solution in step 3, and 500 ml thereof was passed through a column of strong cation exchange resin Diaion SK.1B (H type). After washing the column with water, the adsorbed components of the column were eluted with 2N aqueous ammonia, decolorized, and concentrated under reduced pressure. Isopropyl alcohol was added to this, the resulting crystals were collected and dried, resulting in 32 L-proline crystals with a purity of 98%.
g was obtained.
【0027】[0027]
【発明の効果】本発明法により、高い収率および高い蓄
積濃度でL−プロリンの生成が可能となり、より安価な
L−プロリン生産が可能となる。Effects of the Invention The method of the present invention makes it possible to produce L-proline at a high yield and at a high accumulated concentration, making it possible to produce L-proline at a lower cost.
Claims (2)
ia)属に属し、アスパラギン酸代謝拮抗物質に耐性を
有し、かつL−プロリン生産能を有する微生物を培養し
て、培養液中にL−プロリンを蓄積せしめ、前記培養液
よりL−プロリンを採取することを特徴とする発酵法に
よるL−プロリンの製造法。Claim 1: Providencia
ia) Cultivate a microorganism belonging to the genus genus that is resistant to aspartate antimetabolites and capable of producing L-proline, accumulate L-proline in the culture solution, and extract L-proline from the culture solution. A method for producing L-proline by a fermentation method, which comprises collecting L-proline.
ラギン酸ヒドロキサメートである請求項1記載の発酵法
によるL−プロリンの製造法。2. The method for producing L-proline by a fermentation method according to claim 1, wherein the aspartate antimetabolite is aspartate hydroxamate.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1343291A JPH04248988A (en) | 1991-02-04 | 1991-02-04 | Production of l-proline by fermentation method |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1343291A JPH04248988A (en) | 1991-02-04 | 1991-02-04 | Production of l-proline by fermentation method |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH04248988A true JPH04248988A (en) | 1992-09-04 |
Family
ID=11832975
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1343291A Pending JPH04248988A (en) | 1991-02-04 | 1991-02-04 | Production of l-proline by fermentation method |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH04248988A (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102675180A (en) * | 2012-05-31 | 2012-09-19 | 精晶药业有限公司 | Method for extracting proline |
-
1991
- 1991-02-04 JP JP1343291A patent/JPH04248988A/en active Pending
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN102675180A (en) * | 2012-05-31 | 2012-09-19 | 精晶药业有限公司 | Method for extracting proline |
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