JPH0436294A - 牛乳由来の新規なガングリオシド及びその製造法 - Google Patents
牛乳由来の新規なガングリオシド及びその製造法Info
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- LKOVPWSSZFDYPG-WUKNDPDISA-N trans-octadec-2-enoic acid Chemical compound CCCCCCCCCCCCCCC\C=C\C(O)=O LKOVPWSSZFDYPG-WUKNDPDISA-N 0.000 description 1
- 125000000026 trimethylsilyl group Chemical group [H]C([H])([H])[Si]([*])(C([H])([H])[H])C([H])([H])[H] 0.000 description 1
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
- C07H15/00—Compounds containing hydrocarbon or substituted hydrocarbon radicals directly attached to hetero atoms of saccharide radicals
- C07H15/02—Acyclic radicals, not substituted by cyclic structures
- C07H15/04—Acyclic radicals, not substituted by cyclic structures attached to an oxygen atom of the saccharide radical
- C07H15/10—Acyclic radicals, not substituted by cyclic structures attached to an oxygen atom of the saccharide radical containing unsaturated carbon-to-carbon bonds
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、牛乳及び乳製品中に含まれる新規な9−0−
アセチル−GD3あるいはその組成物及びその製造方法
に関する。
アセチル−GD3あるいはその組成物及びその製造方法
に関する。
ガングリオシドGD3の特殊な誘導体である90−アセ
チル−GD3は、ガングリオシドGD3の末端シアル酸
の9番目炭素の水酸基が酢酸エステルとなっているもの
である。人の黒色皮膚癌であるメラノーマやラットの神
経組織等に現れることが知られており、機能や代謝に関
する様々な研究が行われることが期待されている。
チル−GD3は、ガングリオシドGD3の末端シアル酸
の9番目炭素の水酸基が酢酸エステルとなっているもの
である。人の黒色皮膚癌であるメラノーマやラットの神
経組織等に現れることが知られており、機能や代謝に関
する様々な研究が行われることが期待されている。
ガングリオシドを含めてスフィンゴ糖脂質は、糖鎖部分
とセラミドと呼ばれる脂質部分によって構成され、さら
にセラミド部分は長鎖塩基と脂肪酸により構成されてい
る。一般にスフィンゴ糖脂質はその糖鎖部分により分類
されているが、同じ糖脂質に分類され同じ糖鎖を持ちな
がらセラミド部分は多様性を有していることが知られて
いる。
とセラミドと呼ばれる脂質部分によって構成され、さら
にセラミド部分は長鎖塩基と脂肪酸により構成されてい
る。一般にスフィンゴ糖脂質はその糖鎖部分により分類
されているが、同じ糖脂質に分類され同じ糖鎖を持ちな
がらセラミド部分は多様性を有していることが知られて
いる。
つまり、同じ組織由来の同じ糖脂質はI!鎖は同じであ
りながら種々の長鎖塩基と脂肪酸により構成されている
わけである。この多様性はスフィンゴ糖脂質の含まれる
臓器や組織によって特徴があることも知られている。
りながら種々の長鎖塩基と脂肪酸により構成されている
わけである。この多様性はスフィンゴ糖脂質の含まれる
臓器や組織によって特徴があることも知られている。
また、スフィンゴ糖脂質の生理機能がII鎖部分によっ
て担われていることが知られているが、方セラミドの部
分の構造が生理機能発現に大きく関わっていることも抗
ストレス潰瘍活性セレブロシド等の例により知られると
ころである。つまり、スフィンゴ糖脂質は糖鎖構造ばか
りではなくセラミドの部分の構造によっても生理機能の
発現が影響を受けるわけである。
て担われていることが知られているが、方セラミドの部
分の構造が生理機能発現に大きく関わっていることも抗
ストレス潰瘍活性セレブロシド等の例により知られると
ころである。つまり、スフィンゴ糖脂質は糖鎖構造ばか
りではなくセラミドの部分の構造によっても生理機能の
発現が影響を受けるわけである。
9−○−アセチルーGD3は、特に癌特異抗原として知
られ注目されているが、人メラノーマ細胞由来の9−O
−アセチル−G[13の分子量や構造にライては、長鎖
塩基はスフィンゴシン(sph ingos 1ned
18:1)、脂肪酸はパルミチン酸(C16:0)とテ
トラオセン酸(C24:1)が主要構成物質であること
のみが知られている[J、Bil、Chem。
られ注目されているが、人メラノーマ細胞由来の9−O
−アセチル−G[13の分子量や構造にライては、長鎖
塩基はスフィンゴシン(sph ingos 1ned
18:1)、脂肪酸はパルミチン酸(C16:0)とテ
トラオセン酸(C24:1)が主要構成物質であること
のみが知られている[J、Bil、Chem。
260(1985)、 14556−14563) 、
一方、牛の正常な生体成分である牛乳より調製されたバ
ターミルクに9−0−アセチル−GD3が存在すること
が最近知られた[Lipids 24 (1989)、
680−684) 、これは90−アセチル−GD3に
特異的なモノクローナル抗体により検出したもので、分
光学的もしくは化学的に物質の構造解析を行った結果に
よるものではない。この様に、大メラノーマ細胞由来の
9−0−アセチル−GD3は物質としての構造解析がな
されているものの十分であるとは言い難く、また牛乳よ
り調製されたバターミルクの9−0−アセチル−GD3
については構造解析が行われていない。
一方、牛の正常な生体成分である牛乳より調製されたバ
ターミルクに9−0−アセチル−GD3が存在すること
が最近知られた[Lipids 24 (1989)、
680−684) 、これは90−アセチル−GD3に
特異的なモノクローナル抗体により検出したもので、分
光学的もしくは化学的に物質の構造解析を行った結果に
よるものではない。この様に、大メラノーマ細胞由来の
9−0−アセチル−GD3は物質としての構造解析がな
されているものの十分であるとは言い難く、また牛乳よ
り調製されたバターミルクの9−0−アセチル−GD3
については構造解析が行われていない。
このことは、組織や体液中の9−〇−アセチルGD3の
含有量が極微量であり、そのため分離精製された9−0
−アセチル−GD3の量が非常に少量微量であるためで
ある。物質としての9−0−アセチル−GD3を化学的
に捉えるために、また生理機能を研究する上にも大量に
9−0−アセチル−GD3を分離精製する必要がある。
含有量が極微量であり、そのため分離精製された9−0
−アセチル−GD3の量が非常に少量微量であるためで
ある。物質としての9−0−アセチル−GD3を化学的
に捉えるために、また生理機能を研究する上にも大量に
9−0−アセチル−GD3を分離精製する必要がある。
本発明者は牛乳もしくは乳製品を出発物質として牛乳由
来の9−0−アセチル−G[13を、従来にない規模で
大量に単離精製し、ガングリオシドの構造をI!鎖、長
鎖塩基、脂肪酸の全てにわたって決定することにより、
人メラノーマ細胞由来の9−O−アセチル−GD3との
差異を明らかにし、物質として異なることを証明し、本
発明をなすに至ヮた。したがって、本発明の目的は種々
の医学や住化学の研究、特にヒトメラノーマの研究に利
用可能な牛乳由来の9−0−アセチル−GD3をff1
(J4すること及びそのための1−0−アセチル−G[
13の製造方法を提供することにある。
来の9−0−アセチル−G[13を、従来にない規模で
大量に単離精製し、ガングリオシドの構造をI!鎖、長
鎖塩基、脂肪酸の全てにわたって決定することにより、
人メラノーマ細胞由来の9−O−アセチル−GD3との
差異を明らかにし、物質として異なることを証明し、本
発明をなすに至ヮた。したがって、本発明の目的は種々
の医学や住化学の研究、特にヒトメラノーマの研究に利
用可能な牛乳由来の9−0−アセチル−GD3をff1
(J4すること及びそのための1−0−アセチル−G[
13の製造方法を提供することにある。
本発明の特徴は、牛乳もしくは乳製品を原料として得ら
れる次の一般式(1)を表される9−0アセチル−GD
3ガングリオシドにある。
れる次の一般式(1)を表される9−0アセチル−GD
3ガングリオシドにある。
Neu5 、 9Ac2a2 → 8Neu5八c
cy2 −+3Ga2β1−+ 4G2cβ1−ICe
r (1)(ただし、式中、Neuはノイラミン酸残
基を、Acはアセチル基を、Ga2はガラクトース残基
を、G2cはグルコース残基を、Cerはセラミド残基
をそれぞれ示す。) さらに、具体的には、次の一般式(U)で表される9−
0−アセチル−GD3ガングリオシドに関する。
cy2 −+3Ga2β1−+ 4G2cβ1−ICe
r (1)(ただし、式中、Neuはノイラミン酸残
基を、Acはアセチル基を、Ga2はガラクトース残基
を、G2cはグルコース残基を、Cerはセラミド残基
をそれぞれ示す。) さらに、具体的には、次の一般式(U)で表される9−
0−アセチル−GD3ガングリオシドに関する。
COH
C0H
(II ) HzCOCOCH3(た!
し、式中、R,はCH3(CH2)L−基またはCHs
(CHz)−CH=CH−基を、またR2はCH3(C
H2) −基、またはCHi(CHz)pCH=CH−
(CHz)を−基をそれぞれ示す。これらの基中のlは
13〜15の整数を、mは11〜13の整数を、nは1
6〜22の整数を、pは7〜13の整数をそれぞれ示す
。)また、本発明では上記式(II)の−〇〇〇〇Mは
塩を形成することもある。このような塩としてナトリウ
ム、カリウム等のアルカリ金属塩、アンモニウム塩等を
例示することができる。さらに塩はアルギニン、リジン
等の塩基性アミノ酸、アミン類等塩基性物質との付加塩
になることもある。
し、式中、R,はCH3(CH2)L−基またはCHs
(CHz)−CH=CH−基を、またR2はCH3(C
H2) −基、またはCHi(CHz)pCH=CH−
(CHz)を−基をそれぞれ示す。これらの基中のlは
13〜15の整数を、mは11〜13の整数を、nは1
6〜22の整数を、pは7〜13の整数をそれぞれ示す
。)また、本発明では上記式(II)の−〇〇〇〇Mは
塩を形成することもある。このような塩としてナトリウ
ム、カリウム等のアルカリ金属塩、アンモニウム塩等を
例示することができる。さらに塩はアルギニン、リジン
等の塩基性アミノ酸、アミン類等塩基性物質との付加塩
になることもある。
本発明の9−O−アセチル−GD3ガングリオシドには
このような塩をも包含する。
このような塩をも包含する。
これらのガングリオシドとして次の化合物を具体的に挙
げることができる。
げることができる。
化合物 RI R2(m
) CH3(CHz) (K112=13〜1
5 CH3(CHz) − n = 16.20.21または22 (IV) CH3(CI(、)(ロ)2−13〜
15 CH:+(CHz)p CH=CH(CHz)。
) CH3(CHz) (K112=13〜1
5 CH3(CHz) − n = 16.20.21または22 (IV) CH3(CI(、)(ロ)2−13〜
15 CH:+(CHz)p CH=CH(CHz)。
p=7.lL12または13
(V) CI(3(CH2)、 −CFI=CF
Im−11〜13 CH3(CIり。
Im−11〜13 CH3(CIり。
n = 16.20.21または22
(VI) CI(z(CHz)−−CH=CH−一
−11〜13 CHx(CHz)−CH=CFl(CH2)?p=7.
11.12または13 すなわちセラミドの主要構成成分が、長鎖塩素d16:
O)、ヘクサデカスフィンゲニル(hexsadeca
sphingenine+d 16 : 1 )、ス
フィンガニン(sphinganine、 d 18
: O) 、スフィンゴシン(sphingosin
e、 d 18 : 1 )であり、脂肪酸はオクタ
デカツイン酸(octadecanoic acid、
C18:0)、オクタデカツイン酸(octadec
enoic acid C18:1)、トコサン酸(
docosanoic acid、 C22:0)、ト
リコサン酸(tricosanoic acid、 C
23:0)、テトラコサン酸(tetracosano
ic acid、C24:0)であることを特徴とする
9−〇−アセチルGD3で化合物(II[)、 (TV
)、 (V)、 (Vl)で示される化合物あるいはそ
れらの組成物である。
−11〜13 CHx(CHz)−CH=CFl(CH2)?p=7.
11.12または13 すなわちセラミドの主要構成成分が、長鎖塩素d16:
O)、ヘクサデカスフィンゲニル(hexsadeca
sphingenine+d 16 : 1 )、ス
フィンガニン(sphinganine、 d 18
: O) 、スフィンゴシン(sphingosin
e、 d 18 : 1 )であり、脂肪酸はオクタ
デカツイン酸(octadecanoic acid、
C18:0)、オクタデカツイン酸(octadec
enoic acid C18:1)、トコサン酸(
docosanoic acid、 C22:0)、ト
リコサン酸(tricosanoic acid、 C
23:0)、テトラコサン酸(tetracosano
ic acid、C24:0)であることを特徴とする
9−〇−アセチルGD3で化合物(II[)、 (TV
)、 (V)、 (Vl)で示される化合物あるいはそ
れらの組成物である。
はヘクサデカスフィンガニン(hexsadecasp
hinganineOHN)l C=0 (CHI)。
hinganineOHN)l C=0 (CHI)。
CHl
m =1,11+ 12.13
n=13.15
(TV)
m=16.2021.22
n=1315
(II[)
COH
C0II
HzCOCOCHz
OHNH
C=0
(CHz)−
OH3
m=16.20,21.22
n=11.13
(V)
CI(s(CHz)、1C1(ミCH−CH−CH−O
OHNH C二〇 上記糖鎖 (CHz)。
OHNH C二〇 上記糖鎖 (CHz)。
本発明の9−O−アセチル−GD3は、−a的には次の
方法で製造される。
方法で製造される。
出発物質としては、牛乳または牛乳から得られるバター
ミルク、ホエー、脱脂乳等の乳製品が用いられる。これ
らの出発物質は、種々の成分、例えば蛋白質、乳糖、脂
肪や中性糖脂質、9−0アセチル−GD3以外のガング
リオシド等を含有している。本発明者らは先に牛乳ガン
グリオシドを効率的に濃縮する方法(vf開昭63−2
69992号公報)を擢案したが、この方法によるガン
グリオシド濃縮物中には9−0−アセチル−GD3も当
然のことなから高度に濃縮されている。本発明では、こ
のような方法を適用し、得られる濃縮物をさらに濃縮乾
固し、クロロホルム−メタノール混液でガングリオシド
を含む脂質を抽出したのち、アセトンで乾固物を洗浄す
ることにより脂肪やコレステロールを除く。またクロロ
ホルム−メタノール−水温液もガングリオシドを含む脂
質の抽出に同様に用いられる。この残香は糖脂質やリン
脂質が主な複合脂質画分であるが、これをさらにイオン
交換クロマトグラフィ、続いてシリカゲルクロマトグラ
フィを行うこと番こより9−O−アセチル−GD3を得
る。この様にすると9−0−アセチル−GD3は白色粉
末で化合物(II[)ない(VI)の組成物が純度90
%以上で得ることができる。
ミルク、ホエー、脱脂乳等の乳製品が用いられる。これ
らの出発物質は、種々の成分、例えば蛋白質、乳糖、脂
肪や中性糖脂質、9−0アセチル−GD3以外のガング
リオシド等を含有している。本発明者らは先に牛乳ガン
グリオシドを効率的に濃縮する方法(vf開昭63−2
69992号公報)を擢案したが、この方法によるガン
グリオシド濃縮物中には9−0−アセチル−GD3も当
然のことなから高度に濃縮されている。本発明では、こ
のような方法を適用し、得られる濃縮物をさらに濃縮乾
固し、クロロホルム−メタノール混液でガングリオシド
を含む脂質を抽出したのち、アセトンで乾固物を洗浄す
ることにより脂肪やコレステロールを除く。またクロロ
ホルム−メタノール−水温液もガングリオシドを含む脂
質の抽出に同様に用いられる。この残香は糖脂質やリン
脂質が主な複合脂質画分であるが、これをさらにイオン
交換クロマトグラフィ、続いてシリカゲルクロマトグラ
フィを行うこと番こより9−O−アセチル−GD3を得
る。この様にすると9−0−アセチル−GD3は白色粉
末で化合物(II[)ない(VI)の組成物が純度90
%以上で得ることができる。
さらに、本発明では逆相カラムクロマトグラフィー等を
用いてこれらの化合物を単離することもできる。
用いてこれらの化合物を単離することもできる。
次に、本発明の上記の方法によって得られたガングリオ
シドの構造解析について説明する。
シドの構造解析について説明する。
■ 弱アルカリ氷解法
単離した9−0−アセチル−GD3に0.2Nメタノー
ル性水酸化ナトリウムを加え、室温で2時間反応させた
後濃縮脱塩を行い、薄層クロマトグラフィに供した。氷
解を行わない9−0−アセチルGD3は薄層クロマトグ
ラフ上の移動度がアセチル基のないGD3より大きいが
、氷解を行うことによりGD3と完全に一致した。この
ことは、精製したガングリオシドがアルカリに不安定な
ことと、GD3の誘導体であることを意味している。
ル性水酸化ナトリウムを加え、室温で2時間反応させた
後濃縮脱塩を行い、薄層クロマトグラフィに供した。氷
解を行わない9−0−アセチルGD3は薄層クロマトグ
ラフ上の移動度がアセチル基のないGD3より大きいが
、氷解を行うことによりGD3と完全に一致した。この
ことは、精製したガングリオシドがアルカリに不安定な
ことと、GD3の誘導体であることを意味している。
■ プロトン核磁気共鳴スペクトル
既知の方法に従って、約3■の牛乳由来の90−アセチ
ル−GD3を重水置換した後、ジメチルスルフオキシド
−重水(981、容量比)に溶かし、90″Cでプロト
ン核磁気共鳴スペクトルを測定した。その結果を第1図
に示す。このスペクトルをヒトメラノーマ細胞より精製
された9−0アセチル−GD3のスペクトル(第2図)
と比較すると、糖鎖部分のスペクトルはほぼ一致し、分
光学的に本発明のガングリオシドの糖鎖構造が式(I)
の通りであることが確認された。
ル−GD3を重水置換した後、ジメチルスルフオキシド
−重水(981、容量比)に溶かし、90″Cでプロト
ン核磁気共鳴スペクトルを測定した。その結果を第1図
に示す。このスペクトルをヒトメラノーマ細胞より精製
された9−0アセチル−GD3のスペクトル(第2図)
と比較すると、糖鎖部分のスペクトルはほぼ一致し、分
光学的に本発明のガングリオシドの糖鎖構造が式(I)
の通りであることが確認された。
■ アセチル化GD3のアセチル基の結合位の決定賀佐
らの方法(複合糖脂質研究法■、87ページ)によりア
セタール化、メチル化、メタツリシス、トリメチルシリ
ル(TMS)化を行い、アセチル基の結合している水酸
基にはメチル基を、遊離の水酸基にはトリメチルシリル
基を導入し、GLC/MSで分析した(GLCOカラム
はDB−1、MSのイオン化電圧は70eV)。その結
果、第3図に示すように、N−メチル−N−アセチル−
9−0−メチル−4,7,8−トリー〇−T門S−ノイ
ラミニルメチルケトシドメチルエステル(N−Meth
yl−N−acetyl−9−Omethyl−4+
7+ 8+ −tri−0−TMS−neuramin
ylmethylketoside methyl e
ster)の質量スペクトルを確認した。これは、GD
3の末端シアル酸の9番目炭素の水酸基にアセチル基が
結合していることを意味している。
らの方法(複合糖脂質研究法■、87ページ)によりア
セタール化、メチル化、メタツリシス、トリメチルシリ
ル(TMS)化を行い、アセチル基の結合している水酸
基にはメチル基を、遊離の水酸基にはトリメチルシリル
基を導入し、GLC/MSで分析した(GLCOカラム
はDB−1、MSのイオン化電圧は70eV)。その結
果、第3図に示すように、N−メチル−N−アセチル−
9−0−メチル−4,7,8−トリー〇−T門S−ノイ
ラミニルメチルケトシドメチルエステル(N−Meth
yl−N−acetyl−9−Omethyl−4+
7+ 8+ −tri−0−TMS−neuramin
ylmethylketoside methyl e
ster)の質量スペクトルを確認した。これは、GD
3の末端シアル酸の9番目炭素の水酸基にアセチル基が
結合していることを意味している。
■ メチル化分析によるシアル酸の結合位の決定約1■
の9−0−アセチル−GD3を箱守の方法で完全メチル
化しその半量を、0.5dの0.3N塩酸メタノールで
75°C1B時間メタツリシスする。
の9−0−アセチル−GD3を箱守の方法で完全メチル
化しその半量を、0.5dの0.3N塩酸メタノールで
75°C1B時間メタツリシスする。
溶媒を留去後乾燥して60℃20分でトリメチルシリル
化した。このTMS誘導体をGLC/MSで分析した(
GLCOカラムはDB−1、MSのイオン化電圧は70
eV)。その結果、第4図及び第5図に示すように、8
−0−T8−0−Tメチル−4,7,9−)リー〇−メ
チルーN−アセチルーノイラミニルメチルケトシドメチ
ルエステル(8−0−TMS−N−Methyl−4゜
7+ 9− tri−0−sethyl−N−acet
yl−neuraminyl+gethylketos
ide methyl ester)とN−メチル−4
,7,8,9テトラ−O−メチル−N−アセチルーノイ
ラミニルメチルケトシドメチルエステル(N−Meth
yl−4,7,8,9te tra−0−se thy
l−N−acety l−neuraa+1nylse
thylketos ide■eLhyl ester
)の質量スペクトルを確認した。
化した。このTMS誘導体をGLC/MSで分析した(
GLCOカラムはDB−1、MSのイオン化電圧は70
eV)。その結果、第4図及び第5図に示すように、8
−0−T8−0−Tメチル−4,7,9−)リー〇−メ
チルーN−アセチルーノイラミニルメチルケトシドメチ
ルエステル(8−0−TMS−N−Methyl−4゜
7+ 9− tri−0−sethyl−N−acet
yl−neuraminyl+gethylketos
ide methyl ester)とN−メチル−4
,7,8,9テトラ−O−メチル−N−アセチルーノイ
ラミニルメチルケトシドメチルエステル(N−Meth
yl−4,7,8,9te tra−0−se thy
l−N−acety l−neuraa+1nylse
thylketos ide■eLhyl ester
)の質量スペクトルを確認した。
■ メチル化分析による糖鎖の結合位の決定■の完全メ
チル化9−0−アセチル−GD3の半量用い、既報に従
い、部分メチル化アルジトールアセテート誘導体を調製
した。GLC/MS分析(GLCOカラムはDB−1、
MSのイオン化電圧は70eV)した結果、1,3.5
− トリーアセチル−2,4,6−トリーメチル−ガラ
クチトール(1+3+5−tri−acety12+
4+ 6− tri−methly−garacti
tol)と14.5− )リアセチル−2,3,6−ト
リーメチル−グルクチトール(L4.5−tri−ac
etyl−2+3.6−trl−methly−glu
ctitol)を確認した。
チル化9−0−アセチル−GD3の半量用い、既報に従
い、部分メチル化アルジトールアセテート誘導体を調製
した。GLC/MS分析(GLCOカラムはDB−1、
MSのイオン化電圧は70eV)した結果、1,3.5
− トリーアセチル−2,4,6−トリーメチル−ガラ
クチトール(1+3+5−tri−acety12+
4+ 6− tri−methly−garacti
tol)と14.5− )リアセチル−2,3,6−ト
リーメチル−グルクチトール(L4.5−tri−ac
etyl−2+3.6−trl−methly−glu
ctitol)を確認した。
■ 構成脂肪酸
約1■のガングリオシドをテフロンシール付ネジロ試験
管にとり、1mの含水メタノール性IN塩酸を加え、7
5°C18時間加熱する。放冷後、2dのヘキサンで3
回抽出して脂肪酸メチルニスチルを得る。さらにハイド
ロキシ酸をアセチル化するため、溶媒を窒素エバポレー
ターで除き、よく乾燥させて、0.1 dのピリジン−
無水酢酸(1:1、容量比)を加え80°C30分加熱
する。得られた誘導体をGLC/MS(DB −1)で
分析した。結果は、第1表の通りである。
管にとり、1mの含水メタノール性IN塩酸を加え、7
5°C18時間加熱する。放冷後、2dのヘキサンで3
回抽出して脂肪酸メチルニスチルを得る。さらにハイド
ロキシ酸をアセチル化するため、溶媒を窒素エバポレー
ターで除き、よく乾燥させて、0.1 dのピリジン−
無水酢酸(1:1、容量比)を加え80°C30分加熱
する。得られた誘導体をGLC/MS(DB −1)で
分析した。結果は、第1表の通りである。
第1表
3Ga2β1 −+4G2cβ1→ICerであると同
定された。
定された。
第2表
”構成比は%で表示。
■ 構成長鎖塩素
■のヘキサン抽出後のメタノール溶液を窒素エバポレー
ターで乾燥させ、トリメチルシリル化剤を加え60°C
20分加熱する。得られた誘導体をGLC/MSで分析
した(GLCOカラムはDB−1、MSのイオン化電圧
は70eV)、結果は、第2表の通りである。
ターで乾燥させ、トリメチルシリル化剤を加え60°C
20分加熱する。得られた誘導体をGLC/MSで分析
した(GLCOカラムはDB−1、MSのイオン化電圧
は70eV)、結果は、第2表の通りである。
上記■ないし■に示した性質から、本発明に係わるガン
グリオシドは式(III)、 (IV)、 (V)、
(Vl)を有する Neu5,9Ac2α2−* 8Neu5Acα2 →
一般にガングリオシドが生理的に重要な意義を有するの
で、本発明の9−0−アセチル−GD3ガングリオシド
も生理的に重要な意義をもち、医学もしくは生化学の研
究、特にメラノーマの研究における試薬として有用に利
用することができる。
グリオシドは式(III)、 (IV)、 (V)、
(Vl)を有する Neu5,9Ac2α2−* 8Neu5Acα2 →
一般にガングリオシドが生理的に重要な意義を有するの
で、本発明の9−0−アセチル−GD3ガングリオシド
も生理的に重要な意義をもち、医学もしくは生化学の研
究、特にメラノーマの研究における試薬として有用に利
用することができる。
次に、実施例を示して、本発明のガングリオシドの製造
法を具体的に説明する。
法を具体的に説明する。
実施例1
ホエー粉3kgを温湯302に溶解し、そこにメタノー
ル801を加え室温で30分間撹拌し、さらにクロロホ
ルム40fを加え同様に室温で30分間撹拌して、ガン
グリオシドを抽出した。
ル801を加え室温で30分間撹拌し、さらにクロロホ
ルム40fを加え同様に室温で30分間撹拌して、ガン
グリオシドを抽出した。
次に、抽出液を濾過し濃縮乾固した後、クロロホルム−
メタノール混液(2:l、容量比)を500d加え、室
温で30分間撹拌して濾過した。
メタノール混液(2:l、容量比)を500d加え、室
温で30分間撹拌して濾過した。
濾液にアセトン20ffiを加え4°Cで一晩静置し、
濾過して白色沈澱を得た。
濾過して白色沈澱を得た。
白色沈澱をクロロホルム−メタノール−水温液(30:
60:8、容量比)に溶解し、イオン交換樹脂(口EA
E−sephadexA−25)カラム(3,0X40
C!l)に流し、ガングリオシドを吸着させた。さらに
クロロホルム−メタノール−水混液(30:60:8、
容量比) 1500d、jり)−)L、3001dT:
中性糖脂質を溶出し、ついで0.2 M酢酸ナトリウム
メタノール溶液300mでガングリオシドを溶出させた
。
60:8、容量比)に溶解し、イオン交換樹脂(口EA
E−sephadexA−25)カラム(3,0X40
C!l)に流し、ガングリオシドを吸着させた。さらに
クロロホルム−メタノール−水混液(30:60:8、
容量比) 1500d、jり)−)L、3001dT:
中性糖脂質を溶出し、ついで0.2 M酢酸ナトリウム
メタノール溶液300mでガングリオシドを溶出させた
。
ガングリオシド溶出液を透析し酢酸ナトリウムを除いた
後、エバポレーターで蒸発乾固し、1.2gの白色粉末
ガングリオシドを得た。この粉末は1.2g中ニ24m
g(7)9−0−7セチルーGO3を含んでいる9−0
−アセチル−GD3の組成物であった。
後、エバポレーターで蒸発乾固し、1.2gの白色粉末
ガングリオシドを得た。この粉末は1.2g中ニ24m
g(7)9−0−7セチルーGO3を含んでいる9−0
−アセチル−GD3の組成物であった。
この粉末をクロロホルム−メタノールへ水温液(70:
30:3、容量比)で溶解し、シリカゲルカラム(3,
OX 100cm)に流し、ガングリオシドを吸着させ
た後、クロロホルム−メタノール水混液(70:30:
3、容量比)1.5ffで非ガングリオシドを溶出した
。ついで、クロロホルム−メタノール−水混液C65:
35:3.5、容量比)5I!、で分画しながら9〜0
−アセチル−GD3を溶出させた。薄層クロマトグラフ
ィーで90−アセチル−GD3を含む画分を確認し、9
−0アセチル−GD3を集め、エバポレーターで蒸発乾
固し、薄層クロマトグラフィーで95%以上の純度を持
つ9−0−アセチル−GD3を7.5■得た。
30:3、容量比)で溶解し、シリカゲルカラム(3,
OX 100cm)に流し、ガングリオシドを吸着させ
た後、クロロホルム−メタノール水混液(70:30:
3、容量比)1.5ffで非ガングリオシドを溶出した
。ついで、クロロホルム−メタノール−水混液C65:
35:3.5、容量比)5I!、で分画しながら9〜0
−アセチル−GD3を溶出させた。薄層クロマトグラフ
ィーで90−アセチル−GD3を含む画分を確認し、9
−0アセチル−GD3を集め、エバポレーターで蒸発乾
固し、薄層クロマトグラフィーで95%以上の純度を持
つ9−0−アセチル−GD3を7.5■得た。
実施例2
バターミルク粉40kgを水400!に熔解した溶液に
1kgの枯草菌プロテアーゼを添加し、ptl 7.6
、温度40℃で15時間反応させ、蛋白質を分解した後
、90℃で10分間加熱し、酵素を失活させた。
1kgの枯草菌プロテアーゼを添加し、ptl 7.6
、温度40℃で15時間反応させ、蛋白質を分解した後
、90℃で10分間加熱し、酵素を失活させた。
次いで、この溶液を、GR−51(DDS社製)の膜面
積0.36 ryfの濾過膜を装着した限外濾過装置(
LAB−20型モジユール、DDS社製)にて、温度4
0°C1流量151/分、平均圧力0.6 MPaで濾
過し、ガングリオシドを濃縮した。濃縮終了後、濃縮槽
より濃縮液を回収し、凍結乾燥を行って、粉末3000
gを得た。
積0.36 ryfの濾過膜を装着した限外濾過装置(
LAB−20型モジユール、DDS社製)にて、温度4
0°C1流量151/分、平均圧力0.6 MPaで濾
過し、ガングリオシドを濃縮した。濃縮終了後、濃縮槽
より濃縮液を回収し、凍結乾燥を行って、粉末3000
gを得た。
さらにこの粉末にクロロホルム−メタノール混液(2:
1、容量比)を51加え、室温で30分間撹拌して濾過
した。濾液を濃縮した後アセトン40!を加え4°Cで
一晩静置し、濾過して白色沈澱を得た。
1、容量比)を51加え、室温で30分間撹拌して濾過
した。濾液を濃縮した後アセトン40!を加え4°Cで
一晩静置し、濾過して白色沈澱を得た。
白色沈澱をクロロホルム−メタノール−水混液(30:
60:8、容量比)に溶解し、イオン交換樹脂(DEA
E−sephadexA −25)カラム(10X60
cm)に流し、ガングリオシドを吸着させた。
60:8、容量比)に溶解し、イオン交換樹脂(DEA
E−sephadexA −25)カラム(10X60
cm)に流し、ガングリオシドを吸着させた。
さらにクロロホルム−メタノール−水混液(30:60
:8、容量比) 1542、メタノール51で中性糖脂
質を溶出し、ついで0.2 M酢酸ナトリウムメタノー
ル溶液251でガングリオシドを溶出させた。
:8、容量比) 1542、メタノール51で中性糖脂
質を溶出し、ついで0.2 M酢酸ナトリウムメタノー
ル溶液251でガングリオシドを溶出させた。
ガングリオシド溶出液を透析し酢酸ナトリウムヲ除いた
後、エバポレーターで蒸発乾固し、1.2gの白色粉末
ガングリオシドを得た。この粉末は5.4g中に100
■の9−0−アセチル−GD3を含んでいる9−0−ア
セチル−GD3の組成物である。
後、エバポレーターで蒸発乾固し、1.2gの白色粉末
ガングリオシドを得た。この粉末は5.4g中に100
■の9−0−アセチル−GD3を含んでいる9−0−ア
セチル−GD3の組成物である。
この粉末をクロロホルム−メタノール−水混液(70:
30:3、容量比)で溶解し、シリカゲルカラム(3,
3X120cm)に流し、ガングリオシドを吸着させた
後、クロロホルム−メタノール水温液(70:30:3
、容量比)2.5jl!で非ガングリオシドを溶出した
。ついで、クロロホルム−メタノール−水混液(65:
35:3.5、容量比)5fで分画しなから9−0−ア
セチル−GD3を溶出させた。薄層クロマトグラフィー
で9−〇アセチルーGD3を含む百分を確認し、9−0
アセチル−GD3を集め、エバポレーターで萎発乾固し
、薄層クロマトグラフィーで95%以上の純度を持つ9
−0−アセチル−GD3を100■得た。
30:3、容量比)で溶解し、シリカゲルカラム(3,
3X120cm)に流し、ガングリオシドを吸着させた
後、クロロホルム−メタノール水温液(70:30:3
、容量比)2.5jl!で非ガングリオシドを溶出した
。ついで、クロロホルム−メタノール−水混液(65:
35:3.5、容量比)5fで分画しなから9−0−ア
セチル−GD3を溶出させた。薄層クロマトグラフィー
で9−〇アセチルーGD3を含む百分を確認し、9−0
アセチル−GD3を集め、エバポレーターで萎発乾固し
、薄層クロマトグラフィーで95%以上の純度を持つ9
−0−アセチル−GD3を100■得た。
本発明のガングリオシドは、牛乳由来の9−0アセチル
−GD3であり、セラミドの部分が人メラノーマ由来の
9−0−アセチル−GD3とは構造が異なる新規なガン
グリオシドである。本発明により医学及び生化学の研究
、特にメラノーマの研究に有用な試験の提供が可能とな
り、更には多くの医学や診断薬の開発が可能となる。
−GD3であり、セラミドの部分が人メラノーマ由来の
9−0−アセチル−GD3とは構造が異なる新規なガン
グリオシドである。本発明により医学及び生化学の研究
、特にメラノーマの研究に有用な試験の提供が可能とな
り、更には多くの医学や診断薬の開発が可能となる。
第1図は、本発明の9−0−アセチル−G[13のプロ
トン核磁気共鳴スペクトルを、第2図はヒトメラノーマ
細胞より得られた9−0−アセチルGD3の核磁気共鳴
スペクトルをそれぞれ示す。 第3図は、本発明のN−メチル−N−アセチル9−0−
メチル−4,7,8−)ジー0−フペクトルを、第4図
は、8−08−0−T N−メチル−4.7.9−トリ
ーOーメチルーNーアセチルノイラミニルメチルケトシ
ドメチルエステルの質量スペクトルを、また第5図は、
N−メチル−4、7,8.9−テトラ−0−メチル−N
−アセチルノイラミニルメチルケトシドメチルエステル
の質量スペクトルをそれぞれ示す。
トン核磁気共鳴スペクトルを、第2図はヒトメラノーマ
細胞より得られた9−0−アセチルGD3の核磁気共鳴
スペクトルをそれぞれ示す。 第3図は、本発明のN−メチル−N−アセチル9−0−
メチル−4,7,8−)ジー0−フペクトルを、第4図
は、8−08−0−T N−メチル−4.7.9−トリ
ーOーメチルーNーアセチルノイラミニルメチルケトシ
ドメチルエステルの質量スペクトルを、また第5図は、
N−メチル−4、7,8.9−テトラ−0−メチル−N
−アセチルノイラミニルメチルケトシドメチルエステル
の質量スペクトルをそれぞれ示す。
Claims (3)
- (1)牛乳もしくは乳製品に由来し、次の一般式(1)
で表される9−O−アセチル−GD3ガングリオシド Neu5,9Ac2α2→8Neu5Acα2→3Ga
2β1→4G2cβ1→1Cer( I )(たゞし、式
中、Neuはノイラミン酸残基を、Acはアセチル基を
、Ga2はガラクトース残基を、Glcはグルコース残
基を、Cerはセラミド残基をそれぞれ示す。) - (2)ガングリオシドが次の一般式(II)で表される化
合物あるいはその組成物である請求項(1)記載の9−
O−アセチル−GD3ガングリオシド▲数式、化学式、
表等があります▼(II) (たゞし、式中、R_1はCH_3(CH_2)(iv
)−基またはCH_3(CH_2)_m−CH=CH−
基を、またR_2はCH_3(CH_2)_n−基、ま
たはCH_3(CH_2)_pCH=CH−(CH_2
)_7−基をそれぞれ示す。これらの基中のlは13〜
15の整数を、mは11〜13の整数を、nは16〜2
2の整数を、pは7〜13の整数をそれぞれ示す。) - (3)牛乳もしくは乳製品を、クロロホルム−メタノー
ル混液またはクロロホルム−メタノール−水混液によっ
てガングリオシドを抽出し、抽出液をアセトンで洗滌し
、イオン交換クロマトグラフィー、シリカゲルクロマト
グラフィー処理することによって請求項(1)または(
2)記載の9−O−アセチル−GD3を得ることを特徴
とするガングリオシドの製造法
Priority Applications (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2143468A JPH0436294A (ja) | 1990-06-01 | 1990-06-01 | 牛乳由来の新規なガングリオシド及びその製造法 |
| FR9106582A FR2662697B1 (fr) | 1990-06-01 | 1991-05-31 | Nouveau ganglioside provenant du lait et son procede d'obtention. |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2143468A JPH0436294A (ja) | 1990-06-01 | 1990-06-01 | 牛乳由来の新規なガングリオシド及びその製造法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0436294A true JPH0436294A (ja) | 1992-02-06 |
Family
ID=15339411
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2143468A Pending JPH0436294A (ja) | 1990-06-01 | 1990-06-01 | 牛乳由来の新規なガングリオシド及びその製造法 |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0436294A (ja) |
| FR (1) | FR2662697B1 (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN109721632A (zh) * | 2017-10-27 | 2019-05-07 | 齐鲁制药有限公司 | 一种高纯度神经节苷脂gm1及其制备方法 |
Families Citing this family (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP3179108B2 (ja) * | 1994-03-02 | 2001-06-25 | ネオーズ テクノロジーズ,インコーポレーテッド | 胃潰瘍及び十二指腸潰瘍を治療及び阻止する方法 |
| US5795980A (en) * | 1994-09-30 | 1998-08-18 | Snow Brand Milk Products Co., Ltd. | Method of preparing ganglioside |
| JP3845121B2 (ja) * | 1994-09-30 | 2006-11-15 | 雪印乳業株式会社 | ガングリオシドの製造法 |
| JP3615798B2 (ja) * | 1994-09-30 | 2005-02-02 | 雪印乳業株式会社 | ガングリオシドの製造法 |
| ES2380864B1 (es) * | 2010-10-22 | 2013-04-15 | Consejo Superior De Investigaciones Científicas (Csic) | Inhibidores de la división de células tumorales. |
-
1990
- 1990-06-01 JP JP2143468A patent/JPH0436294A/ja active Pending
-
1991
- 1991-05-31 FR FR9106582A patent/FR2662697B1/fr not_active Expired - Lifetime
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN109721632A (zh) * | 2017-10-27 | 2019-05-07 | 齐鲁制药有限公司 | 一种高纯度神经节苷脂gm1及其制备方法 |
| CN109721632B (zh) * | 2017-10-27 | 2023-10-31 | 齐鲁制药有限公司 | 一种高纯度神经节苷脂gm1及其制备方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| FR2662697A1 (fr) | 1991-12-06 |
| FR2662697B1 (fr) | 1995-05-24 |
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