JPH04365500A - 胆汁酸の一斉分析法 - Google Patents
胆汁酸の一斉分析法Info
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- JPH04365500A JPH04365500A JP23674291A JP23674291A JPH04365500A JP H04365500 A JPH04365500 A JP H04365500A JP 23674291 A JP23674291 A JP 23674291A JP 23674291 A JP23674291 A JP 23674291A JP H04365500 A JPH04365500 A JP H04365500A
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Abstract
め要約のデータは記録されません。
Description
る。詳しくは3α−ヒドロキシステロイドデヒドロゲナ
ーゼ(以下、3α−HSDと略す。)固定化酵素カラム
を用いた高速液体クロマトグラフィー(以下、HPLC
と略す。)による実験動物等の生体内多成分胆汁酸の一
斉分析法である。
コール酸、ケノデオキシコール酸、デオキシコール酸、
ウルソデオキシコール酸及びリトコール酸がそれぞれ遊
離型、グリシン抱合型並びにタウリン抱合型の計15種
の形で存在する(以下、これらの15種の胆汁酸を「ヒ
ト胆汁酸」という。)。これらの各胆汁酸成分を分離定
量することは、臨床検査の分野において特に肝胆道系疾
患の診断等に有用であり、従来より種々の分析法が検討
され実用化されている。
試験に入る前に、主としてヒト以外の動物を用いてその
有効性や安全性の確認が行われる。実験動物の生体中の
各胆汁酸成分の分析は、肝胆道系疾患治療薬等の開発に
おける種々多様な前臨床試験において、極めて重要な役
割を担っている。
胆汁酸には含まれない胆汁酸成分を含有するものがある
。例えば、ラットやブタの胆汁中では、前記15種のヒ
ト胆汁酸以外にα−ムリコール酸、β−ムリコール酸、
ヒオデオキシコール酸及びヒオコール酸並びにこれらの
抱合型胆汁酸が加わり計27種の胆汁酸が存在する(以
下、これらの27種の胆汁酸を「ラット胆汁酸」という
。)。
は、多成分であるためヒト胆汁酸の分析法に比べ高い分
離能を必要とし、ヒト胆汁酸分析法をそのまま応用する
ことはできない。
LCによる方法が主流となりつつあるが、ラット胆汁酸
に用いた場合、分離能が不足し満足した結果が得られて
いない。特公昭56−38200号公報には、遊離型及
び抱合型胆汁酸を含有する試料をHPLCにより各胆汁
酸成分に分離し、次いで3α−HSD固定化酵素カラム
を用いて各胆汁酸成分を検出する胆汁酸の分析法が示さ
れている。しかし、同公報には、ヒト胆汁酸15成分中
13成分の分析結果しか開示されておらず、実際後述す
るように、同公報に記載の方法ではラット胆汁酸27成
分の分離定量はできない(比較例8)。
、抱合型をすべて遊離型に加水分解した後、固定化酵素
カラムを用いてHPLCにより遊離型胆汁酸(9成分)
の総量として定量する方法が報告されている(「医学の
あゆみ」第130巻、第3号、昭和59年7月21日)
。しかし、同分析法では、ラット胆汁酸を遊離型、グリ
シン抱合型及びタウリン抱合型に分離して定量すること
ができず、前臨床試験における分析法としては実用性が
低い。
疎水性ゲルで処理して遊離型、グリシン抱合型及びタウ
リン抱合型の各胆汁酸群に分画し(以下、「抱合分画」
という。)、固定化酵素カラムを用いたHPLCにより
各フラクションごとに定量する方法が知られている(特
公昭62−30588号公報等)。この方法をそのまま
用いたのではラット胆汁酸の定量はできないが、この方
法と上述のアルカリ処理の方法を組み合わせることによ
り、すなわち、ラット胆汁酸を抱合分画し、抱合型のフ
ラクションについてはさらに上述のアルカリ処理の方法
により脱抱合した後、各フラクションごとにそれぞれ固
定化酵素カラムを用いたHPLCにより定量する方法が
考えられる。しかし、この方法では、抱合分画や脱抱合
等の前処理に4〜5日を要し、各フラクションごとに測
定しなければならないため、煩雑で汎用に耐えない。
いたガスクロマトグラフィーやガスクロマトグラフィー
マススペクトロメトリー等による方法でも、遊離型胆汁
酸としてしか分析できず、トリメチルシリル化等の煩雑
な前処理が必要である等の多くの問題があり、有効な方
法とはいえない。
の生体内胆汁酸に関する情報を得ることは前臨床試験に
おいて極めて重要であり、これらの胆汁酸を遊離型及び
抱合型の各胆汁酸成分ごとに定量できる分析法の確立が
要望されているにもかかわらず、定量性に優れかつ汎用
性の高い分析法はいまだ見出されていない。
理を必要とせず、簡便かつ短時間にラット胆汁酸等の多
成分胆汁酸を高感度で各胆汁酸成分に分離定量する方法
を提供することにある。
の結果、3α−HSD固定化酵素カラムを用いたHPL
Cによるラット胆汁酸等の多成分胆汁酸の一斉分析法を
完成させた。
合型及びタウリン抱合型胆汁酸を含有する試料液を溶離
液とともに分離用カラム内に導入してHPLCにより各
胆汁酸成分に分離した後、固定化された3α−HSDを
有する固定化酵素カラムに通してニコチン酸アミドアデ
ニンジヌクレオチド(以下、NAD+と略す。)と反応
させ、生成した還元型NAD(以下、NADHと略す。 )を紫外線吸収測定及び/又は蛍光測定を行って各胆汁
酸成分を検出することにより胆汁酸を分析する方法にお
いて、二液以上の勾配溶離により、(イ)少なくとも低
級脂肪族ニトリル、塩を含有するpH7〜12の水溶液
及び低級アルコールが混合されてなり、低級脂肪族ニト
リル1.5〜6M、塩0.5〜250mM及び低級アル
コール5M以下を含有する初期組成Aから、(ロ)少な
くとも低級脂肪族ニトリル、塩を含有するpH4〜12
の水溶液及び低級アルコールが混合されてなり、低級脂
肪族ニトリル0.9〜8M、塩0.5〜120mM及び
低級アルコール2〜12Mを含有する最終組成Bへ、移
動相の組成を連続的及び/又は段階的に変化させること
により各胆汁酸成分に分離定量することを特徴とする胆
汁酸の一斉分析法である。
に含まれるコール酸、ケノデオキシコール酸、デオキシ
コール酸、ウルソデオキシコール酸、リトコール酸、α
−ムリコール酸、β−ムリコール酸、ヒオデオキシコー
ル酸及びヒオコール酸のそれぞれ遊離型、グリシン抱合
型並びにタウリン抱合型の計27種の胆汁酸を、抱合分
画等の前処理なしに簡便かつ短時間に分離定量すること
ができる。
に説明する。本発明は、HPLCにおいて、二液以上の
勾配溶離(グラジエント)により、移動相の組成を特定
の初期組成Aから最終組成Bまで連続的及び/又は段階
的に変化させることにより達成される。
低級脂肪族ニトリル、塩を含有するpH7〜12の水溶
液及び低級アルコールが混合されてなる。低級脂肪族ニ
トリルとしては、アセトニトリル、プロピオニトリル等
が用いられる。塩としては、リン酸、炭酸、酢酸等のア
ンモニウム、ナトリウム、カリウム塩等の無機塩又は有
機塩が用いられる。また、塩水溶液のpHは7〜12で
あることが必要である。pHが7未満では各成分の分離
が不十分となり、pHが12を越えるとカラムの劣化が
早く実用的でない。水溶液のpHは直接これらの塩の水
溶液として、または塩の水溶液に適当なアルカリを加え
ることにより調整される。低級アルコールとしては、メ
タノール、エタノール、n−プロパノール等が用いられ
る。
級脂肪族ニトリル1.5〜6M、塩0.5〜250mM
及び低級アルコール5M以下であることが必要である。 移動相の初期組成において、低級脂肪族ニトリル又は低
級アルコールの含有量がかかる範囲の上限を越えると、
移動相の溶出力が過剰となり胆汁酸は分離することなく
一斉に溶出してしまう。一方、低級脂肪族ニトリルの含
有量がかかる範囲の下限を下回ると、移動相の溶出力が
低下し胆汁酸の保持力が強まるため、溶出に長時間を要
することとなる。また、移動相の初期組成における塩の
含有量が0.5mM以下では、最初に溶出するα,β−
ムリコール酸群の分離が不可能となり、250mM以上
では移動相中に塩の析出が生じ、装置やカラムの故障に
つながる。
低級脂肪族ニトリル、塩を含有するpH4〜12の水溶
液及び低級アルコールが混合されてなり、低級脂肪族ニ
トリル0.9〜8M、塩0.5〜120mM及び低級ア
ルコール2〜12Mを含有するものであることが必要で
ある。最終組成Bにおける低級脂肪族ニトリル、塩及び
低級アルコールは、初期組成Aで用いたものと同一また
は異なるものであってもよく、初期組成Aで列記したも
のが用いられる。初期組成においてと同様、移動相の最
終組成がかかる範囲外のものでは良好な分離成績は得ら
れない。
連続的及び/又は段階的組成変化は、グラジエント装置
等により、所定の組成勾配になるよう2液以上の溶離液
の混合割合を調製することにより達成される。グラジエ
ントの方法は、例えば組成Aに調製された溶離液100
%から組成Bに調製された溶離液100%への2液グラ
ジエントであっても良く、異なった組成を有する溶離液
を組み合わせた3液以上のグラジエントであっても良い
。
填剤の種類や移動相の組成、混合比等によって適宜選択
される。
の胆汁、血液、尿、肝臓等の生体試料が該当する。これ
らの生体試料は、必要に応じて脱塩、除蛋白、抽出、濃
縮、洗浄等の前処理に付され、遊離型及び抱合型の胆汁
酸がメタノール溶液等として回収、精製される。また、
内標準法による場合は、試料液に内標準物質が加えられ
る。内標準物質としては、3α,7β−ジヒドロキシ−
12−オキソ−5β−コラン酸、3α−ヒドロキシ−7
,12−ジオキソ−5β−コラン酸、3α,7β,12
α−トリヒドロキシ−5β−コラン酸、3α−ヒドロキ
シ−7−オキソ−5β−コラン酸、3α−ヒドロキシ−
12−オキソ−5β−コラン酸、3α,12α−ジヒド
ロキシ−7−オキソ−5β−コラン酸及びこれらのグリ
シン抱合型並びにタウリン抱合型胆汁酸、5β−プレグ
ナン−3α,12α,20α−トリオール、5β−アン
ドロスタン−3α,11α,17β−トリオール、5β
−アンドロスタン−3α,17β−ジオール等が用いら
れる。
1に示した。1a及び1bは溶離液槽、2a及び2bは
溶離液用ポンプである。試料注入器4より注入された試
料液は、グラジエント装置3により所望の混合割合に調
製された移動相とともに分離用カラム5に導入される。
シル基、オクチル基、ブチル基、メチル基、フェニル基
、フェニルエチル基、シアノプロピル基、アミノプロピ
ル基等の官能基で修飾されたシリカゲルやポーラスポリ
マー等の逆相系の化学結合型充填剤が用いられる。充填
剤の粒子径は3〜10μmが好ましく、細孔径は50〜
300Åが好ましい。また、分離用カラムの大きさは、
直径4〜6mm、長さ10〜30cmが好ましい。
により各胆汁酸成分に分離され、分離用カラムから流出
した分離液にNAD+を含む反応液が反応液槽6から供
給される。
Dを有する固定化酵素カラム8に導入される。固定化酵
素カラムは、3α−HSDを化学的に球状セルロースや
アミノアルキル化シリカ担体等に固定化させ、ステンレ
スカラム等に充填したものが用いられる。
Dの触媒作用により、胆汁酸とNAD+とが特異的に反
応して3α−ヒドロキシ胆汁酸は3−オキソ体に変り、
同時に等量のNADHが生成する。生成したNADHは
340nmの波長の光で励起されることにより、460
nmに極大値を持つ蛍光を発する。これを検出器9によ
り蛍光測定することにより間接的に胆汁酸が検出され、
その結果が記録計10により記録される。
抱合分画等の前処理なしにラット胆汁酸等の多成分胆汁
酸を簡便かつ短時間に各胆汁酸成分に分離定量すること
ができる。
ル酸、ケノデオキシコール酸、デオキシコール酸、ウル
ソデオキシコール酸、リトコール酸、α−ムリコール酸
、β−ムリコール酸、ヒオデオキシコール酸及びヒオコ
ール酸のそれぞれ遊離型、グリシン抱合型並びにタウリ
ン抱合型の計27種の胆汁酸の分離定量が可能であり、
ヒト、サル、ラット、モルモット、ブタ、ウシ、クマ、
イヌ、ネコ、ヒツジ、ヤギ、ウサギ、ニワトリ、ガチョ
ウ、フグ、コイ等の種々の動物の生体内胆汁酸の分析に
利用することができる。
明する。 実施例1 1.分離分析 (1)試料液 ラット胆汁酸成分である下記の遊離型、グリシン抱合型
及びタウリン抱合型の計27種類の胆汁酸をそれぞれ1
0mgずつ11のメタノールに溶解して試料液とし、注
入量としては、その20μlを用いた。なお、各胆汁酸
名の後の括弧書は、本明細書における各胆汁酸の略称を
表す。 ■ 遊離型 コール酸(CA)、ケノデオキシコール酸(CDCA)
、デオキシコール酸(DCA)、ウルソデオキシコール
酸(UDCA)、リトコール酸(LCA)、α−ムリコ
ール酸(α−MCA)、β−ムリコール酸(β−MCA
)、ヒオデオキシコール酸(HDCA)、ヒオコール酸
(HCA) ■ グリシン抱合型 グリココール酸(GCA)、グリコケノデオキシコール
酸(GCDCA)、グリコデオキシコール酸(GDCA
)、グリコウルソデオキシコール酸(GUDCA)、グ
リコリトコール酸(GLCA)、グリコ−α−ムリコー
ル酸(G−α−MCA)、グリコ−β−ムリコール酸(
G−β−MCA)、グリコヒオデオキシコール酸(GH
DCA)、グリコヒオコール酸(GHCA)■ タウ
リン抱合型 タウロコール酸(TCA)、タウロケノデオキシコール
酸(TCDCA)、タウロデオキシコール酸(TDCA
)、タウロウルソデオキシコール酸(TUDCA)、タ
ウロリトコール酸(TLCA)、タウロ−α−ムリコー
ル酸(T−α−MCA)、タウロ−β−ムリコール酸(
T−β−MCA)、タウロヒオデオキシコール酸(TH
DCA)、タウロヒオコール酸(THCA)(2)HP
LC装置 TRI ROTAR−VI (日本分光工業(株)製) (3)検出器 JASCO FP−210 (日本分光工業(株)製) (4)分離用カラム イナートシル ODS−2(5μm)、4.6mmφ
×15cm (GLサイエンス社製) (5)固定化酵素カラム セキスイ−E−3α−HSD固定化酵素カラム、4mm
φ×2cm (積水化学工業社製) (6)カラム温度 30℃ (7)反応液 0.3mMのNAD+を含むリン
酸緩衝液(pH7.8) (8)流量 移動相、反応液とも1ml/分(9
)移動相 10mMのリン酸三アンモニウム水溶液(73vol%
)、アセトニトリル(19vol%)及びメタノール(
8vol%)の混合液(A液)と、20mMのリン酸三
アンモニウム水溶液(40vol%)、アセトニトリル
(20vol%)及びメタノール(40vol%)の混
合液(B液)の2種の溶離液を用いた。 (10)グラジエント条件 まず、A液100%で50分間流し、その後60分間で
A液100%からB液100%まで直線的に変化させた
。実施例1で得られたクロマトグラムを図2に示した。 各胆汁酸成分の分離は、極めて良好であった。
高さ比の再現性を検討した。結果を表1に示した。
01〜0.29%と良好な再現性を示した。また、内標
準物質のピーク高さに対する胆汁酸のピーク高さ比も相
対偏差0.3〜1.3%と良好な再現性を示した。
汁酸を測定し、検量線を作成した。 結果を図3に示す。遊離型、グリシン抱合型及びタウリ
ン抱合型の各胆汁酸とも、相関係数0.999で原点を
通る良好な直線性を示した。
定し、S/N=2での各胆汁酸の検出限界を求めた。 結果を表2に示す。
入量として1〜5ngであり、高い検出感度を有するこ
とがわかった。
B液の塩水溶液として、種々のpH値を持つ塩水溶液を
用いて分離分析を行った。実験は、実施例1において、
リン酸三アンモニウム水溶液の代わりに表3に記載した
塩水溶液を用いた以外はほぼ同様に操作して行った。分
離成績を表3に示す。
のクロマトグラムをそれぞれ図4及び5に示す。
CA、UDCA、LCA、GCA、GCDCA、GDC
A、GUDCA、GLCA、TCA、TCDCA、TD
CA、TUDCA、TLCA)及びラット胆汁酸27成
分を従来法(特公昭56−38200号公報)により分
析した。 (1)分離用カラム μBONDAPAK/Phenyl、 3.9mmφ
×30cm (ウォーターズ社製) (2)反応液 0.3mMのNAD+を含むリン
酸緩衝液(pH7.0) (3)流量 移動相1ml/分、反応液0.5m
l/分 (4)移動相 0.3%の炭酸アンモニウム水溶液(A液)と、アセト
ニトリル(B液)の2種の溶離液を用いた。 (5)グラジエント条件 64分間でA液:B液(5:1)からA液:B液(25
:11)まで直線的に変化させた。 その他の条件については、実施例1と同様に行った。
のクロマトグラムを図6に、ラット胆汁酸27成分のク
ロマトグラムを図7に示した。ラット胆汁酸成分の分離
は不完全であり、定量はできなかった。
を示す説明図である。
マトグラムである。
マトグラムである。
マトグラムである。
トグラムである。
マトグラムである。
Claims (1)
- 【請求項1】 3α−ヒドロキシステロイドデヒドロ
ゲナーゼ固定化酵素カラムを用いた高速液体クロマトグ
ラフィーによる胆汁酸分析法において、二液以上の勾配
溶離により、(イ)少なくとも低級脂肪族ニトリル、塩
を含有するpH7〜12の水溶液及び低級アルコールが
混合されてなり、低級脂肪族ニトリル1.5〜6M、塩
0.5〜250mM及び低級アルコール5M以下を含有
する初期組成Aから、(ロ)少なくとも低級脂肪族ニト
リル、塩を含有するpH4〜12の水溶液及び低級アル
コールが混合されてなり、低級脂肪族ニトリル0.9〜
8M、塩0.5〜120mM及び低級アルコール2〜1
2Mを含有する最終組成Bへ、移動相の組成を連続的及
び/又は段階的に変化させることにより各胆汁酸成分に
分離定量することを特徴とする胆汁酸の一斉分析法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3236742A JP2570021B2 (ja) | 1991-06-12 | 1991-06-12 | 胆汁酸の一斉分析法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3236742A JP2570021B2 (ja) | 1991-06-12 | 1991-06-12 | 胆汁酸の一斉分析法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH04365500A true JPH04365500A (ja) | 1992-12-17 |
| JP2570021B2 JP2570021B2 (ja) | 1997-01-08 |
Family
ID=17005120
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP3236742A Expired - Lifetime JP2570021B2 (ja) | 1991-06-12 | 1991-06-12 | 胆汁酸の一斉分析法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2570021B2 (ja) |
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2003139753A (ja) * | 2001-11-02 | 2003-05-14 | Mitsubishi Pharma Corp | 胆汁酸18成分の一斉分析法 |
| JP2015031541A (ja) * | 2013-07-31 | 2015-02-16 | 株式会社Lsiメディエンス | 胆汁酸同時分析方法 |
| CN107064348A (zh) * | 2017-03-30 | 2017-08-18 | 杭州佰辰医学检验所有限公司 | 高效液相色谱串联质谱检测血清中五种甘氨结合型胆汁酸的方法 |
| JP6806948B1 (ja) * | 2020-09-04 | 2021-01-06 | 株式会社アデランス | 胆汁酸類、ステロール類、及びホルモン類の分析方法及び分析システム |
| WO2022049726A1 (ja) * | 2020-09-04 | 2022-03-10 | 株式会社アデランス | 胆汁酸類、ステロール類、及びホルモン類の分析方法及び分析システム |
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-
1991
- 1991-06-12 JP JP3236742A patent/JP2570021B2/ja not_active Expired - Lifetime
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| CN114235995A (zh) * | 2021-12-03 | 2022-03-25 | 天津国科医工科技发展有限公司 | 检测血清中15种胆汁酸的方法 |
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| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2570021B2 (ja) | 1997-01-08 |
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