JPH04502469A - ヒンダードカップリング剤および方法 - Google Patents
ヒンダードカップリング剤および方法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
ヒン −′ −言ン 1 ゛
本出願は、1988年12月22日に出願の第07/288.586号(これは
参考として本明細書に組み込まれる)の一部継続出願である。
発明の背景
本発明は接合体の形成に関し、特に結合の一部としてジスルフィド結合を使って
アミノまたは炭水化物成分の所で成る種を別の種に結合せしめることに関する。
更に詳しくは、本発明は、置換2−イミノチオランハロゲン化水素塩および架橋
剤としてのそれらの化合物の利用に関する。
アミノまたは炭水化物成分への様々な結合が幾つかの理由で望ましい、免疫グロ
ブリンを含む接合体の形成では、例えば、抗原結合部位または補体結合のための
Fc1i上の部位への近づきやすさを維持するために、免疫グロブリン上の特定
の領域における結合がしばしば望ましい、アミノまたは炭水化物成分への結合を
所望する種は、しばしばそれらの成分と直接反応できる能力を欠いている。よっ
て、反応成分を含む化合物に所望の種を連結するためには、幾つかの準備をしな
ければならない。
免疫毒素は細胞毒性物質に化学的に結合した免疫グロブリンである。一般に免疫
毒素は、細胞特異的抗原結合剤を細胞毒性物質に共有結合せしめることにより合
成される0例えば、免疫毒素は、植物または細菌の毒素、例えばりシンA鎖また
はアブリンA鎖に結合した免疫グロブリン抗体であることができる。それらの免
疫毒素が標的細胞表面上の抗原に結合し、次いで細胞毒性物質が細胞に入り、細
胞を殺す、抗体と毒素との接合は、通常は2つのタンパク質問にジスルフィド結
合を導入する架橋剤によるものである。汎用されている2つのジスシフ。イドカ
ップリング剤は、N−スクシンイミジル−3−(2−ピリジルジチオ)プロピオ
ネート(SPDP)(Carlssonら、 Biochem、 J、 ■ドア
23−737.1978 )および2−イミノチオラン(21T) (King
ら、 Biochemistry ll:1499−1506.1978)であ
る、しかしながら、それらの試薬により形成されるジスルフィド結合は生体内で
不安定であることが報告されている(Thorpeら、 Cancer Res
、 47:5924−5931゜1987) 。
遊離抗体の放出を結果として伴うこのジスルフィド結合の崩壊は、標的細胞を殺
すために利用可能である免疫毒素を減少させると同時に、放出された抗体が標的
抗原を目当てに免疫毒素と競争し得るので問題である。 Thorpeら(前掲
)は、生体内でより安定なジスルフィド結合を存すると思われる2つのカップリ
ング剤、574−スクシンイミジルオキシカルボニル−α−メチルベンジルチオ
スルフェー) (SMBT)と4−スクシンイミジルオキシカルボニル−α−メ
チル−α−(2−ピリジルジチオ)トルエン(SMPT)を合成している。しか
しながら、5PDPと同様にSMBTおよびSMFTは低い水溶解度を有し、修
飾されるリジン残基の正電荷を中和し、そして21Tよりも効果的でない接合を
示す、更に、SMBT、SMPTまたは5PDPとアミノまたは炭水化物基との
反応は、本発明の架橋剤と異なり、修飾の最中にモニタリングすることができな
い。
発明の要約
本発明は、ジスルフィド結合の形成のための新規化合物および方法を提供する。
より詳しくは、新規化合物は、下式(1)の置換2−イミノチオランハロゲン化
水素塩カッブリ上式中、 (1)
Xはハロゲンであり;
R,はCOOR5;ハロゲン;ニトロ;非置換のまたはハロゲン化C1−、アル
キル;非置換のまたはハロゲン化C1,。
アルコキシ;非置換のまたはハロゲン化C!−、アルケニル;非置換のまたはハ
ロゲン化C2−1アルキニル;非置換のC1−暑シクロアルキル;非置換のアリ
ール;ハロゲン、アミノ、非置換のもしくはハロゲン化C7−1アルキル、また
は非置換のもしくはハロゲン化C0−、アルコキシから選択された1〜3個の置
換基により置換されたアリール;非置換の複素環;アミノ、ハロゲン、非置換の
もしくはハロゲン化Cl−1アルキル、または非置換のもしくはハロゲン化C1
−、アルコキシから選択された1〜3個の置換基により置換された複素環であり
;
R1,R3およびR4は各々独立して水素であるかまたはR,の意義から選択さ
れ;または
R1およびR2は一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アルキル基
により置換されたC1−5アルキレン橋を形成し;または
R6およびR2はR3と一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC+−aアル
キル基により置換されたCI−Sアルキレン橋を形成し;そして
R3は水素またはC,、アルキルである。
2つの種を共有結合せしめる方法も本発明に包含され、該方法は、2つの種の一
方または両方を上式(1)の架橋剤と反応させ、次いで2つの種を一緒に反応さ
せることを含んで成る。結合基を含む得られた接合種もまた本発明に包含される
。
更に、置換2−イミノチオランと核基との反応の直接測定を可能にしそして反応
をより効率的にする失活剤の使用も本発明に含まれる。
図面の説明
図1は、様々な架橋剤およびTNBと接合されたモノクローナル抗体791から
のチオニトロ安息香酸(TNB)のグルタチオン誘導性放出の相対速度を示す。
図2は、Ixsl放射!!議実験により測定した4A215−メチル−21T/
RTAs。および4A2/5PDP/RTA3゜接合体のラット中での相対安定
性を示す。
発明の詳細な説明
本発明の置換2−イミノチオランハロゲン化水素塩は、制御された安定性を存す
るジスルフィド結合により2つのタンパク質を共有結合せしめるための架橋剤と
して有用である。
式(1)の本発明の化合物の幾つか、特にR3が低級アルキルでありそしてR2
−R4が水素または低級アルキルであるものは、除草剤および殺虫剤の中間体と
して有用な既知化合物である。それらの化合物は米国特許第3,318,910
号および第3,348,940号において開示されている0本発明に含まれる他
の化合物は新規である。その上、架橋剤としての式(1)の化合物の用途は新規
である。
置換基R1〜R4またはXのいずれかがハロゲンであるかまたはハロゲンを含む
場合、そのようなハロゲンは便利にはブロモ、クロロまたはフルオロから選択さ
れる。
「ハロゲン化C+−sアルキル」、rハロゲン化C+−aアルコキシ」、「ハロ
ゲン化C!−1アルケニルJおよび「ハロゲン化C!−,アルキニルJなる用語
は、1〜8個、好ましくは1〜6個、より好ましくは1〜3個のハロゲンにより
置換されたC t−Sアルキル、CI−アルコキシ、Cz−aアルケニルおよび
CI−6フルキニルをそれぞれ言い、そのようなハロゲンは好ましくはブロモ
もしくはフルオロまたはその2つの組合せである。
「複素環」または「複素環式化合物」なる用語は1〜3個のへテロ環原子を有す
る環含有化合物を言い、ペテロ原子は酸素、硫黄または窒素から選択される。複
素環は1または複数の環を含むことができ、そして環は融合していてもいなくて
もよい、最も好ましくは、複素環は唯一の環を含み、そしてフラニル、ピラニル
、チオフェニルまたはピリジルであろう。
本発明のプラクナス上、Xは好ましくはブロモまたはクロロであり、最も好まし
くはクロロである。
R8は、好ましくは、所望によりブロモで置換されることがあるC 1−4アル
キル、もしくはアリールであり、またはR2と一緒になってC1−5アルキレン
橋を形成し、またはR2と一緒になってCI−Sアルキレン橋を形成する。
R2は、好ましくは水素、もしくは所望によりブロモで置換されることがあるC
1−4アルキルであり、またはR7と一緒になって08−、アルキレン橋を形成
する。
R1は、好ましくは水素、C1−4アルキルもしくはアリールであり、またはR
,もしくはR2と一緒になって、所望により1〜4個のCI−Zアルキル基によ
り置換されることがあるCl−5アルキレン橋を形成する。
R4は、好ましくは水素またはC7−4アルキルである。
Rsは、好ましくは水素またはC1−4アルキルである。
上式(1)の範囲内の代表的化合物を表Aに与える。
l八
ム R
I CHI )I HHC1
、2C1Hi Hl(HC1
3C(CHs)s ’HHHC1
4C1(s CHs HHC1
5(−CHt(C)It)*C)!、−I HHC16H(−CHI(CH,)
、CHI−) HC17CHICHt )l HHOr
8 C)1.cH,C)!、 HHC110CHI 11 C)1. HCI
If HHC1(、C)l、 CH
I 2 CaH* CHx HHC1
134−CIC@H4HHHC1
143−フラニル HH)I C1
15CH(CHI)t)l HHC1
+6 CHs CH,(& CH,C目17 CJt+ HHHC1
18CHt[]r HHHC1
19CF、 HHH,C1
20CH=CH* I(HHC1
212−NH,C,)1. l(HHC122)1 t−C(C1l−)z−(
CH−)*−CH−I HC1本発明の化合物は、所望の置換基に従って選択さ
れる当業者にとって周知の常用技術により調製される。より詳しくは、本発明の
化合物は、米国特許第3.318.910号および第3.348゜940号に記
載の方法によって調製され、該特許の開示は参考として本明細書中に組み込まれ
る。一般に、水性またはアルコール性媒質中で式(I[)のニトリル(ここでZ
はHまたは−C(0)R,であ’)、’F: L/ ”’CR& ハC1−67
)Lt+)Lt’7:する)をハロゲン化水素H−X、例えば塩酸または塩化水
素ガスと反応させ、式(1)の環化2−イミノチオランハロゲン化水素塩を得る
。
式(I)の化合物は、確立された方法により形成される反応混合物から回収する
ことができる。
式(1)の化合物を合成する方法において使用する出発物質および試薬は、既知
であるか、またはそれらが新規である場合には当業界で既知の方法もしくはその
ような方法に類似した方法により製造することができる。
本発明の置換2−イミノチオランが少なくとも1つの不斉中心を有することに気
づくだろう0本明細書中で開示される特定の化合物は、他に指摘しない限り、エ
ナンチオマーの混合物を意味する0個々のエナンチオマーまたはそれらの混合物
が本発明の範囲内に含まれる。
本発明の化合物は、別の化合物上のアミノまたは炭水化物基の部位においてジス
ルフィド官能基を配置させる上で有用であり、同様に特定の官能基、即ち一方が
アミノ基そして他方がチオールまたは核成分において結合させるのに有用である
。
それらのカップリング剤の実用性は、少なくとも1つの種に関して部位特異的方
式で、そしてしばしば両方の種において部位特異的に、種間に結合を提供するこ
とにある。それらの剤は、従って例えばタンパク質または他の分子を別のタンパ
ク質上のアミノ基または炭水化物に結合する際に使用することができる。それら
は、別の種の核成分との反応への部位特異性のためにスルフヒドリル成分を導入
するのに用いることもできる。
本発明の置換2−イミノチオランはUV吸収を示し1.その吸収は核性化合物に
よる攻撃後に環が開環されると失われる。よって、反応が起こっている時に低分
子量化合物(例えばアミノ酸または水)による加水分解の速度または程度を観察
することができ、モニタリングしそして制御することを可能にするので、それら
のカップリング剤は有用である。248nsの波長での吸光度CAt、a )の
変化を分光光度計で観察することにより、反応をモニタリングすることができる
。
本発明の置換2−イミノチオランは、248 nsの波長での吸光度が高すぎて
読めない時、それらとタンパク質との反応の直接測定を可能にするユニークな特
性を有する。2−イミノチオランの硫黄原子は環構造内に環化されるので、スル
フヒドリル基と反応する試薬(例えば芳香族ジスルフィド)との反応には利用す
ることができない、一度開環が起こりそしてスルフヒドリル基が暴露されるよう
になれば、芳香族ジスルフィド(例えばジチオニトロ安息香酸、 DTNB)は
スルフヒドリル基と反応することができる。そのような反応は別の波長(例えば
DTNBについては412 nmの波長、 A4+t )においてモニタリング
することができる。これは、速度論の直接定量と制御および修飾の程度、並びに
スルフヒドリル形の活性化を可能にする。
本発明の架橋剤は、5PDP、SMPTおよびSMBTと対照的に水溶性である
。これは、それらを使用しやすくし且つより良好な接合収率を与える。また、接
合を水性条件下で行うことができることによって、有機溶剤によりタンパク質が
損傷を受ける可能性が回避される。
本発明の架橋剤を用いて形成された結合は、非置換2−イミノチオランを用いて
形成された結合を上回る幾つかの利点を有する。図1に示されるように、置換2
−イミノチオランを用いて形成された結合は、試験管内において還元に対する安
定性の増加を示す、その上、本発明の結合は、基R8〜R4の少なくとも1つの
存在が、分子を血清中のグルタチオンもしくは他のチオールによるジスルフィド
交換に対してまたはジスルフィド結合を尚早に開裂し得る酵素攻撃に対して立体
障害のあるものにするであろう。
それらのカップリング剤は、特に免疫毒素の合成において有用である。病気の治
療において有用である免疫毒素は2つの成分により特徴づけられる。1成分は、
吸収されると細胞にとって致命的である細胞毒性物質である。第二成分である抗
原反応性物質は、特定の細胞タイプ、例えばTリンパ球またはBリンパ球に毒性
物質を供給するための手段を提供する。
前記2成分は、様々な公知の化学的方法のいずれかによって複合体化されるかま
たは一緒に結合される。最も一般的で且つ好ましい方法の1つは、ジスルフィド
結合を有する架橋剤を使用することによるものである0本発明のカシプリング剤
は、免疫グロブリン(Ig)抗原−反応性物質を、該1gに生来ある利用可能な
アミノ基のところでスルフヒドリル含有細胞毒性物質(tox)に共有結合せし
め、免疫毒素を形成させるそのようなジスルフィド結合を提供する。そのような
結合は次の構造を有するだろう:
細胞毒性物質がチオール基を含まない場合、本発明の方法に従って置換2−イミ
ノチオランを使って、そのような基を毒素に付加することができる。
本発明では、芳香族ジスルフィド化合物を、毒素との反応の前に、免疫グロブリ
ンおよび置換2−イミノチオランハロゲン化水素塩と反応させることができる。
本発明において有用な芳香族ジスルフィド化合物の例は、ジチオニトロ安息香酸
(DTNB)、2.2′−および4.4′−ジ−ピリジルジスルフィド(DPD
S)、並びに2,2′−ジチオビス(ピリジン−N−オキシド〕である。免疫グ
ロブリン/21T反応混合物中の芳香族ジスルフィド化合物の存在は、(i)反
応の進行および程度のリアルタイムのモニタリングを可能にし、(i i)暴露
されたスルフヒドリルを活性化し、そして(tii)免疫グロブリン中の反応性
スルフヒドリルをブロックして、毒素との次なる反応の前または最中の抗体三量
化を防ぐ。
更に、非置換または置換2−イミノチオランは両方とも結合反応中に重合し、そ
のためイミノチオラン由来の2〜5またはそれ以上の基の鎖がしばしば生成する
ことがわかっている。イミノチオラン結合のスルフヒドリルの所での芳香族ジス
ルフィド化合物のような失活剤の存在は、そのような重合が起こるのを防ぎ、各
反応部位のところに単一のイミノチオラン誘導基を生成せしめ、より効率的な反
応をもたらす。
本発明の一態様は、2つの種を共有結合せしめる方法であって、a)一方または
両方の種を、芳香族ジスルフィド化合物のような失活剤と共に、非置換または置
換2−イミノチオラン架橋剤と反応せしめ、b)脱塩して試薬を除去し、そして
C)上記2つの種を混合する、ことを含んで成る方法である。
様々な細胞毒性物質が免疫毒素における使用に適当である。
本発明により期待される細胞毒性物質としては、放射性核種、例えばヨウ素−1
31、インドリウム−90、レニウム−188およびビスマス−212;多数の
化学療法剤、例えばビンデシン、メトトレキセート、アドリアマイシンおよびシ
スプラチン:並びに細胞毒性タンパク質、例えばリポソーム不活性化タンパク質
、例えばアブリンおよびリシン(またはそれらのA鎖)、アメリカヤマゴボウ抗
ウイルスタンパク質、ジフテリア毒素、シュードモナス外毒素A等、またはそれ
らの組換え誘導体が挙げられる。(一般的には、加himeric Toxin
s″、 01snesand Pfhl、 PharIlac、 Ther、、
25:355−381(1982)、および”Monoclonal Ant
ibodies for Cancer Detection andTher
apyどBa1dvinおよびByers 1m、 pp、159−179.2
24−266゜Acadewtc Press (1985)を参照のこと、こ
れは共に参考として本明細書中に組み込まれる。)
毒素レクチンは本発明において特に着目されるものである。
毒性レクチンの細胞障害作用、特にリシンとアブリンの細胞障害作用はよく研究
されている。毒性レクチンがジスルフィド結合により連結した2つのポリペプチ
ド鎖AとBから成ることはよく知られている。細胞障害作用はA鎖と関係があり
、有核細胞中のタンパク質合成の阻害に関係づけられている。
B鎖は本質的にA鎖のための輸送ビヒクルであると考えられている。B鎖は細胞
表面の多糖単位を認識し、そしてそのような単位との高親和性相互作用をつくり
出す、一端B鎖が細胞表面の多糖単位と結合すれば、A鎮が細胞内に取り込まれ
、リポソームのタンパク質合成を阻止し、最終的には細胞致死をもたらす0本発
明の一態様においては、リポソーム不活性化タンパク質(RIP)が毒性レクチ
ンA鎖である。更なる態様では、毒性レクチンA鎖がリシン毒素A鎖(RTA)
である、RTAは天然のものでもよく、それの組換え誘導体でもよく、または化
学的に修飾されてもよく、例えば脱グリコRTAであることができる0本発明で
はりシンAlの使用が好ましい。
リシンに類似した構造および機能のタイプの毒性レクチンとしては、アブリン、
モデッシンおよびヤドリギ毒素が挙げられる。別のカテゴリーのRIPは、リシ
ンAMに類似したI!P、特性を有する1つのサブユニットのみを有する毒素で
ある。このタイプのRIPは、リシンB鎖に類似した結合性断片を生来持たない
ので、完全な細胞に対する毒性を欠(、この後者のタイプのRIPの例としては
ゲロニンおよびアメリカヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質が挙げられる。
本発明によれば、AおよびBポリペプチド鎖にスプライスすることができる任意
の毒性レクチン、特にアブリン、モデッシンおよびヤドリギ毒素を、好ましいB
様においてリシンを使用するのと同様な方法で使用す多ことができる。加えて、
任意のRIP、特にゲロニンおよびアメリカヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質を
リシンA頓と同様にして使用することができる。そのような物質は、本発明の目
的上毒性レクチンへ鎖と等価である。
本発明において実質的にレクチンBtX不純物を含まない毒性A鎖を使用するこ
とにより、細胞特異的細胞毒性を達成することが好ましい、実質的に純粋なレク
チンA鎖を獲得するための好ましい方法は、米国特許第4,590,071号に
記載されている(これは参考として本明細書中に組み込まれる)。
免疫毒素の抗原反応性成分は、好ましくは、多数の源から得ることができ且つ細
胞特異抗原と反応性である免疫グロブリンである。r免疫グロブリン」なる用語
には、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、反応性断片、例えばFv。
Fab、 F (ab) t 、合成免疫グロブリンおよび組換え免疫グロブリ
ン、例えばキメラ免疫グロブリンまたはそれらの誘導体が含まれる。好ましくは
、免疫グロブリンは、はとんどのT細胞またはT細胞とB細胞のサブセットの両
方と反応性である、マウス、ヒトまたは他の哺乳類起源のTgMまたは■gGイ
ソタイプのモノクローナル抗体(aAb) 、より好ましくはT細胞とB細胞の
両方に見い出されるCD5抗原と反応性のmAbである。
本発明のカップリング剤により共有結合された免疫毒素は水溶性であり、5PD
PまたはSMPTに比べて大きい接合効率を有し、そして5PDPまたは21T
で架橋された免疫毒素よりも大きく増加されたジスルフィド結合安定性を示す。
本発明の免疫毒素は病気の治療においてを用である。
そのような免疫毒素は、当業界で周知の方法に従って、試験管内では細胞もしく
は組織にまたは生体内では患者に投与することができる。免疫毒素は療法的有効
量、即ち病的状態がより正常な状態の方に変えられるように免疫毒素が標的細胞
、例えばT細胞またはB細胞の除去を引き起こす用量、で投与すべきである。免
疫毒素製剤の用量は、標的細胞、投与が試験管内もしくは生体内のいずれである
か、投与が他の免疫毒素もしくは治療薬と接合されているかどうか、または他の
そのような要因に依存して広範囲に異なるであろう。
一般に、本発明の免疫毒素を含有する医薬組成物は、「−同量」形態で患者に投
与されるであろう、「−同量」なる用語は、ヒト被検者および動物にとって一回
の投薬として適当である物理的に別々の単位を意味し、各単位は、必要とされる
医薬希釈剤、担体、賦形剤またはビヒクルと共に、所望の医薬効果を生じるよう
に設計された予め決められた量の活性物質を含有する。それらの薬剤の適当な賦
形剤または担体としては無菌の非発熱性水溶液が挙げられる。それらの溶液は、
好ましくは生理的領域に緩衝化された等張溶液、例えばリン酸塩緩衝化塩溶液(
0,1Mリン酸Na ; 0.15M NaC1,pll 6.8〜7.2)で
ある、これらの医薬組成物は、所望により保存剤を含んでもよい、保存剤の例と
しては、界面活性剤、特にポリソルベート80等が挙げられる。加えて、該製剤
は長期保存のため所望により凍結乾燥することができる。
投与は、腹腔内注射または静脈内注射により達成することができる。静脈内注射
が好ましい、投与量は患者の大きさおよび状態に従って異なるだろう、典型的な
一回量は約5〜20tag/kg体重である。最も好ましい一回量は約10〜1
5 mg/kgである。
本明細書中で使用される「種」なる用語は、結合の一部としてジスルフィド結合
を使ってアミノまたは炭水化物成分のところで第二の化合物に結合させることが
できる任意の化合物を包含する0本発明の架橋剤を用いて修飾することができる
化合物は、通常、例えばペプチド、オリゴペプチドまたはポリペプチド;タンパ
ク質;核酸;多糖;非タンパク質化学療法剤;カルボン酸イオノホア、例えばモ
ネンシン;炭水化物含有分子または樹脂;組織化学的または免疫化学的検出酵素
、例えば西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクト
シダーゼ、ウレアーゼ等;および特異的なレセプターまたは細胞を認識するポリ
ペプチドまたはタンパク質、例えば成長因子またはペプチドホルモンが挙げられ
る。そのような化合物は、互いとまたは別のタンパク質、例えば細胞毒性物質も
しくは免疫プロプリンと結合することができる0例えば、組織化学的または免疫
化学的検出試薬を、置換2−イミノチオランで修飾されたモノクローナル抗体と
接合させることができる。同様に、成長因子またはペプチドホルモンを、例えば
カップリング剤により修飾し、そして細胞毒性物質に接合させることができる。
実施例
次の実施例は、本発明の実施を示すために与えられ、そして決して本発明を限定
するつもりではない。
次の略号をここで使用する
RT:室温。
THF :テトラヒドロフラン。
PBS ニリン酸塩緩衝化塩溶液。
DTNB ニジチオニトロ安息香酸。
TNB :チオニトロ安息香酸。
IgG:免疫グロブリン。
mAb:モノクローナル抗体。
BP二ベースピーク。
b、 P、:摂氏度における沸点。
m、p、:摂氏度における融点。
NMR:60 MHzでの核磁気共鳴;全での化学シフトはテトラメチルシラン
(TMS)に関するδppm値において与えられる。
LRM−3二低分解能質量分析。
■R:赤外スペクトル;a11−’で与えられる値、S−強い、br−ブロード
、v、s、−非常に強い、v、br、ミ非常にブロード。
IL2:インターロイキン2゜
INDIは、ATCC受入番号HB 8759で寄託された細胞系Xi聞E−0
01により生産されるイソタイプI gG2aのモノクローナル抗体である。こ
の謡^bは米国特許第4,590,071号において記載されている。
IND2は、ATCC受入番号)IB 8760 テ寄託された細胞系XMMM
E−002により生産されるイソタイプIgG2aのモノクローナル抗体である
。この+sAbは米国特許第4,590.071号において記載されている。
791は、^TCC受入番号HB 9173で寄託された細胞系XMMCO−7
91により生産されるイソタイプIgG2bのモノクローナル抗体である。この
−Abは米国特許第4,708,862号において記載されている。
4A2(4Aとしても知られる)は、イソタイプTgG2aのモノクローナル抗
体である。4^2を生産するハイブリドーマ細胞系は、ATCC受入番号HB
8350で寄託されている。このmAbは米国特許第4.677.056号にお
いて記載されている。
H65はイソタイプIgG1のモノクローナル抗体であり、ATCCに寄託され
そして受入番号HB 9286を与えられたハイプリドーマ細胞系XMMLY−
)165により生産される。この抗体はKernanら、 J、lm5uno1
. 」:137(1984)に記載されたようにして調製される。
RTAs−は、約30kDの分子量を有するリシン毒素A鎖(RTA)の一種で
あり、例えばFu I tonら、 J、 Biol、 Chess。
%■:5314−5319(1986)およびVidalら、Int、 J、
Cancer 3f1ニア05−711(1985)に記載されたようなもので
ある。
A、2−イミノチオーンハロ゛ン の゛ :皇施皿上ニ
ー ルー2−イミノチオーンa メ ルー21T4−チオアセチルペンタンニト
リル(7,2g)を乾燥メタノール(5kl)に溶解させ、そして塩化水素ガス
を溶液中にRTで5分間バブリングさせた0反応混合物をRTで20時間攪拌し
、次いで固体が晶出し始めるまで減圧濃縮した。エーテルを添加し、少量の固体
生成物を濾過した。濾液を濃縮して橙色オイルを得、これを酢酸エチルでスラリ
ー状にした0次いで溶液が得られるまで50℃においてエタノールを添加した後
、混合物を一20°Cに冷却し、そしてエーテルを添加した。更に冷却すると、
淡桃色の針状晶として4.16 、 (60%)の5−メチル−2−イミノチオ
ラン塩酸塩、 +a、p、 122−123°C(化合物1゜表A)を得た。生
成物の分子構造は、下記のように目的の化合物のものと確認された。
NMR(DMSO) : 4.10(s、 IH,メチン)、 3.23(ρs
、t、 2H)、 1.60−2.67(m、 28)、 1.38(d、 2
H,J−7,0,5−Me)。
IR(KBr) : 2810(v、s、、 v、br、)、 1615(s、
、 br、、 C==N)。
1530、1450.1415.1240.1030.990.890(s、、
br、)。
685(s、、 C−5)、 425 。
1隻■lニ
ーフェニルー2−イミノ オーフ ユニルー2r工L
4−フェニル−4−チオアセチルブタンニトリル(2,82g)を乾燥メタノー
ル(30s+1)に溶解させ、そして塩化水素ガスを溶液中にRTで5分間バブ
リングさせ、次いでRTで4時間攪拌した0反応混合物を減圧濃縮し、50″C
でエタノール/酢酸エチルの混合物中に溶解させた。−20℃に数時間冷却した
後、エーテルを添加して白色固体を沈澱させ、これを濾過し、真空乾燥すると1
.22 g (44%)の5−フェニル−2−イミノチオラン塩酸塩、 m、p
、 142−144°C(化合物29表A)を得た。
生成物の分子構造は、下記のように目的の化合物のものと確認された。
NMR(DMSO) : 7.50(br、s、、 5H,フェニル)+ 5.
40(dd、 IH。
メチン)、 3.25−3.75(m、 2)1)、 2.20−2.84(m
、 2H) 。
IR(KBr) : 3360.2B70(v、s、、 v、br、)、 16
15(s、、 br、。
C電N)、 1515.1495.1450.1405.1325.1020.
985.830゜770、760.700(s、)、 675(s、) 。
ス】111ニ
ーt−゛ ルー −々 オーフ L−ブチル−1土工L
5.5−ジメチル−4−メルカプトヘキサンニトリル(1゜55g)を乾燥メタ
ノール(15■■)に溶解させ、そして1(CIガスを溶液中にRTで5分間バ
ブリングさせた後、溶液をRTで2時間攪拌した。追加のHCIガスを溶液にバ
ブリングさせ、更に撹拌を続けた0反応混合物を減圧濃縮し、得られたオイルを
温酢酸エチルで粉砕し、次いで溶液が得られるまで温エタノールを添加した。混
合物を一20℃に冷却した後、エーテルを添加した。これを−晩冷却し、次いで
濾過すると、白色固体として0.42 g (22%)の5−t−ブチル−2−
イミノチオラン塩酸塩、 +*、p、 226−228“C(化合物31表A)
を得た。生成物の分子構造は、下記のように目的の化合物のものと確認された。
NMR(DMSO) : 4.10(dd、ILメチンン、 3.25(m、2
)1)、1.86−2.70(+m、 2)1)、 1.03(s、 9)1.
t−Bu)。
IR(KBr) : 2890(v、s、、 v、br、)、 1620(s、
、 br、、 C−N)。
1400(s、)、 1370.1255.1175.995.690(s、、
C−5)。
爽胤阻土:
55−ジメチル−2−イミノチオーン a ジメチル−1上工Y
実施例1と2の方法に従って、乾燥メタノール中の4−メルカプト−4−メチル
ペンタニトリル(3,6g)の溶液にHCIガスをバブリングさせた。粗生成物
を処理すると、白色固体として3.0 g (65%)の5,5−ジメチル−2
−イミノチオラン塩酸塩、 m、p、 156−159°C(化合物41表A)
を得た。生成物の分子構造は、下記のようなNMRとIRにより目的の化合物の
ものとi認された。
NMR(口MSO) 7 3.45(t、28. J−7,0)、2.18(t
、28. J、7.0)。
1.60(s、 6H,2−Me) 。
IR(KBr) : 2900(v、s、、 v、br、)、 1610(s、
、 br、、 C=N)。
1510、1325.1240.1215.1120.990.875.845
.690(s。
C−5) 。
!施■l:
2−イミノ−1−チアスピロ 45−゛カン スピュ:」二LLと
アルゴン下で〜78℃においてT HF (10■■)中のn−ブチルリチウム
(ヘキサン中10M溶液0.67m1)の溶液にア七ト二トリル(0,35m1
.0.ロアミリモル)を添加した。混合物を10分間攪拌した後、乾燥T HF
(2ml)中の1−チアスピロ(2,5)オクタン(0,86g、 0.ロア
ミリモル)を中細した。冷却浴を除去し、そして反応液を2時間攪拌した。濃H
CI (1,5+al)と水(3゜5−1)の混合物でクエンチングした後、層
を分離し、水相を酢酸エチル(2X25 a+1)で抽出した0合わせた有機相
を硫酸ナトリウム上で乾燥し、減圧濃縮してオイルを得た。このオイルをメタノ
ール(10mυに溶解し、HCIガスを5分間激しくバブリングさせた0次いで
RTで一晩攪拌した。溶媒を減圧留去し、そして固体が得られるまで油状残渣を
エーテルで粉砕すると、0.17gの2−イミノ−1−チアスピロ(4,5)デ
カン塩酸塩、 va、p、 130−135℃(化合物57表A)が得られた。
生成物の分子構造は、下記のようなNMRとIHにより目的の化合物のものと確
認された。
NMR(DMSO) : 8.23.7.38.6.53(3br s、各々約
0.5Hに積分。
全てが完全に0.0と交換する。 NH)、 3.36(t、 J−7,0,2
B。
3−CHz)、 2.18(t、 J−7,0,211,4−CHt)、 1.
00−2.00(br II、 IOH。
シクロヘキシル)。
IR(KBr) : 3500−2500(v、s、、 v、br、)、 16
10(s、、 br、)+1525、1445(s、)、 1405(s、)、
1250.1205.1130.1100゜1020、990.875(s、
)、 690(s、)、 445 。
ス差1電
2−イミノ−−チアビシクロ 340 ンユ1:」ニビLル
アルゴン下で、T HF (30ml)を−78°Cに冷却し、その後n−ブチ
ルリチウム(ヘキサン中10M、3.59+wl)を滴下添加し、次にア七ト二
トリル(1,88m+1.35.9ミリモル)を滴下添加した0反応混合物を一
78°Cにて10分間攪拌し、次いでシクロヘキサンスルフィド(3,90g、
34.2ミリモル)を滴下添加した。
添加が完了した後、冷却浴を除去し、混合物を室温まで温めた。2時間後、反応
液を再び冷却し、濃HCI(6ml)と水(15ml)の混合物の添加によりク
エンチングした0層を分離し、水相を酢酸エチル(2X25+al)で抽出した
0合わせた有機相をNaSO4上で乾燥し、減圧濃縮して粗褐色液体(5,08
g)を得た。
この粗生成物を減圧蒸留すると、次のようなNMR,[RおよびLRMSを有す
る2、26gの無色液体、 b、p、 85−’89°C(()、3 mm)を
得た。
NMR(CDC1z) : 2.68(d、2H,CHzCN)、2.32(s
、IH)、1.0−2゜30(m、 108.シクロヘキシル)。
IR(NaC1上でのニート) : 2930(s、)、 2860(s、)、
2530(w、。
SR)、 2250(m、、 CM)、 1730.1450(s、)、 14
25.1195.965 。
LRMS(++/e、 XBP) : 155 (M” 、 29.9) 。
上記液体を乾燥メタノール(30ml)に溶解し、HCIガスを5分間激しくバ
ブリングさせた後、反応混合物をRTで一晩攪拌した。溶媒を減圧留去して白色
固体を得、これを酢酸エチルでスラリーにし、そして溶液が得られるまで熱エタ
ノールで処理した。−20°Cへの冷却により白色結晶質固体を得、これを濾過
し、そして真空乾燥すると、3.13g (59%)の2−イミノ−1−チアビ
シクロ(3,4,0)ノナン塩酸塩+ m−p。
249℃(分解)(化合物61表A)が得られた。生成物の分子構造は下記のよ
うなNMRとIRにより目的の化合物のものと確認された。
NMR(400dz、 DMSO) : 3.57(dt、 J−11,5,3
,4,LH,H−8)。
3.24(dd、 J−17,5,7,LH,H−3)、 2.91(dd、
J−17,LH,H−3°)。
2.22(dd、 IH,H−9)、 1.94−2.03(+*、 28)、
1.75−1.84(m、 2B)。
1.45−1.54(a+、 18)、 1.28−1.39(s、 3H)
。
IR(KBr) : 2840(v、s、、 v、br、)、 1624(s、
、 C−N)、 152B。
1450、998.895.880.694(s、)。
B、Aの
IIIIL:
■ND 5−メ ルー2IT RTA
PBS(pH7,0)中のINDI +mAb(20,0mM、 3.0mg/
ml)、DTNB(0,5wM)および5−・メチル−2−イミノチオラン塩酸
塩(3,4mM)の混合物をA4゜=0.51 (約1.8581モル)まで2
5°Cでインキュベートした。次いでこの混合物を、PBSで平衡化された5e
phadex G25Fine(G25F)樹脂のカラム上で脱塩した。TNB
:タンパク譬比を測定すると2.071を示した。
上記のINDI/ 5−メチル−217/TNB複合体(6,4μM)をRTI
h。(33゜0u?I)と混合し、混合物を4℃で16時間インキュベートした
。
反応混合物を精製し、免疫毒素INDI/ 5−メチル−217/RTIh。を
得た。
!lLiニ
ア9 5−メチル−2rT RTA
PBS(pH7,0)中の791 +1Ab(30,0HM、 4.5mg/m
l)、DTNB(2,0mM)および5−メチル−2−イミノチオラン塩酸塩(
3,0mM)の混合物をA、、、 −0,60(約1.2581モル)まで25
℃でインキュベートした0次いでこの反応混合物をG25F上で脱塩し、TNB
:タンパク譬比を測定すると1.1 : 1を示した。
上記の79115−メチル−2rT/TNB複合体(11,0HM)をRTA
y。(44゜0HM)と混合した。混合物をRTで15分間インキュベートし、
次いで4°Cで16時間インキュベートした0反応混合物を精製し、免疫毒素7
9115−メチル−2TT/RT^、。を得た。
1隻斑エニ
ー エニルー ■T RTA
PBS(pH7,0)中の791 mAb(47,0H台、7.抛g/ml)、
DTNB(3,0−M)および5−フェニル−2−イミノチオラン塩酸塩(2゜
0mM)の混合物をA4゜−1,10(約1.6581モル)まで25℃でイン
キュベートした。次いでこの反応混合物をG25F上で脱塩し、そしてTNB
:タンパク譬比を測定すると1.7 : 1を示した。
上記79115−フェニル−217/TNB複合体(7,3μM)をRTIh。
(44,0HM)と混合した。混合物を肘で15分間インキュベートし、次いで
4°Cで16時間インキュベートした0反応混合物を精製し、免疫毒素?911
5−フェニル−217/RTA3゜を得た。
裏施炎上立:
H655−メチル−2rT RTA
上記方法に従って、H65mAbを5−メチル−2−イミノチオラン塩酸塩およ
びDTNBと反応させ、そして得られた複合体をRTA311と反応させ、免疫
毒素86515−メチル−21T/RTA、。を得た。
実m上:
IL25−メチル−217PTA。
IL2、DTNBおよび5−メチル−2−イミノチオラン塩酸塩の混合物を氷上
で4時間インキュベートした9次に25tsMホウ酸塩、5kM NaC++
pH8,5で平衡化されたG25F上で脱塩し、そしてTNB :タンパク雪止
を測定すると1.0 : 1を示した。
上記のIL215−メチル−217/TNB複合体をPTA3゜と混合し、混合
物を4℃で16時間インキュベートし、IL215−メチルー21T/RTAs
。を得た。
!1LLi:
A −ルー IT RTA −’
太1金
実施例7〜10の方法に従うて、4A2を5−メチル−2−イミノチオラン塩酸
塩およびDTNBと反応させ、次いで脱塩し、そして4.7 : 1のTNB
: s+Ab比を有する4A215−メチル−2!T/τNB複合体を得た。
上記複合体(1,1gg/*1.7.3yM>をRTAse(1,4mg/s+
1.47.0μH)と混合し、そしてA4.、をモニタリングしながら混合物を
2丁でインキュベートした。A41!が0.185(約1.8117A/■^b
)になった時、2−メルカプトエチルアミン(50μH)を添加した。
A a ltを再びモニタリングし、読みが最大に達した時(0,47゜33
μと・96χ) 、 PBS(pH7,5)で平衡化されたアガロースとアクリ
ルアミドの混合樹脂(Ac^44 ; LKB Pharmacia)のカラム
で生成物をクロマトグラフィー精製し、1.9 RTA/麟Abの分析値(ゲル
上で)を有する4A215−メチル−21T/RTAs。を得た。
裏腹斑上主:
END −メチル−2’lT RTA −’並亙捜金
実施例7の方法に従って、5.1 : 1のTNB : mAb比を有するIN
DI/ 5−メチル−217/TNB複合体を調製した。
上記複合体(6,7u M)をRTAse(1,4+sg/m1.47.Ou
M)と混合し、そしてA 4 Izをモニタリングしながら混合物をRTでイン
キュベートした。A41!が0.105(約1.I RTA/+Ab)になった
時、シは、1.4 : 1のチオピリジン−N−オキシド: mAb比を有しス
ティン(265#M、 5XRTA)を添加した。Aattを再びモニタリング
し、読みがプラトーに達した時(0,48,98χ最大TNB)、生成物を精製
し、1.14 RT^/mAbの分析値(ゲル上で)を有するINDI/ 5−
メチル−21T/RTA!。を得た。
皇嵐五上互ニ
ア 1 5(−ブチル−21T RTAO,1Mリン酸ナトリウム、0.1月塩
化ナトリウム、pi 7.S中の791蒙Ab(20μM、 3mg/ml)、
DTNB(2,5mM)および5−t−ブチル−2IT(0,5mM)の混合物
を、412n*での吸光度が0.4(約1.4SR1モルーAb)に達するまで
26°Cでインキュベートした0次いでEDTAを含むPBS(pH7,0)中
に平衡化された5ephadex G25Fineカラム上でのクロマトグラフ
ィーにより、反応混合物を脱塩した。 DTTとの反応により測定すると、TN
B : mAb比は1.3 : 1であった。
上記79115− t−ブチル−2[T/TNa複合体(1,0mg/m1.6
.7.it)とRTAse(2,0mg/ml、 67 (t M、 5倍モル
過剰)とを混合し、4℃で16時間インキュベートした0反応混合物を精製し、
0.8RTA/mAbを含む免疫毒素79115− t−ブチル−21T/RT
As*を得た。
皇旌班上lニ
ア915−t−ブチル−21T RTA実施例14の方法に従って、芳香族ジス
ルフィドであるジチオビス(ピリジン−N−オキシド)の存在下で?91 mA
bを5−t−ブチル−21Tと反応させた0反応を332nmでモニタリングし
、As5z −0,125(約1.5 S+(1モル+mAb)になった時停止
させた。
得られた79115−t−ブチル−21T/チオピリジン−N−オキシド施例7
〜lOと同様にして接合を進行させた。接合が完了したた、5倍モル過剰のRT
As。との反応により、1.3 : 1のRTA/■Ab比を有する79115
− t−ブチル−2IT/RTIh。を得た。
災胤■上l:
H2IT RTA
011Mリン酸ナトリウム、0.1M塩化ナトリウム、p[I 7.S中のH6
5mAb(3mg/m1.20tIM)および2−イミノチオラン塩酸塩の混合
物を37°Cで2時間インキュベートした。 50+*Mへのグリシンの添加に
より反応をクエンチングし、そしてHDTAを含むPBS(p)I 7.2)で
平衡化された5ephadex G25Fineカラム上でのクロマトグラフィ
ーにより、誘導化されたmAbを精製した。
DTNBの添加により測定すると、遊離581蒙Ab比は15 : 1であった
。
上記で調製したH65/2− JT−5)!複合体を、各試薬の最終濃度が2.
0mg/+1 (それぞれ13μiと67μM)になるように、DTNBで予め
誘導化されているIITA 3゜(RTIh。−TNBが生成)と混合した。混
合物を25°Cで2時間インキュベートし、次いで4℃で更に35時間インキュ
ベートした後、)+65/21丁/PTA3゜接合体を精製した。 PTA/I
IAb比は0.6 : lであった。
C9止較ヱニL
!1外上工:
2−IT いた ムt の
79115−メチル−2rT/TNB複合体(実施例8から)および79115
−フェニル−2!丁/TNB複合体(実施例9から)の試料を、それぞれ4.0
倍および6.3倍モル過剰のPTA と混合した。実後、アリコートを5O3−
PAGEおよび色素結合のデンシトメトリーにより分析した。生成物のR丁A/
mAb比を修飾抗体のTNB/mAb比で割ることにより、置換率を決定した。
結果を表11」LLl:
の ジスルフ ゛ いた fiji の実施例14および15からのデータの比
較は、ジチオビス(ピリジン−N−オキシド)で誘導化された?91 s+Ab
が、DTNBで誘導化された?91 sAbよりも効率的な脱離基を生成したこ
とを例証する。修飾率(活性化されたS)I/−^b)は非常に小さい(1,3
〜1.4)けれども、同じ条件下で、791/チオピリジン−N−オキシド上に
存在する脱離基の93%に比べて、791/TNB上に存在する脱離基の62%
が置換された。従って、芳香族ジスルフィドの適当な選択により、接合効率を更
に増加させることができる。
スJ!fill:
2−イミノチオーンおよび5PDPと した 2−イミノチオーンの および
表CとDは、代表的な置換2−イミノチオラン並びに非置換2−イミノチオラン
および5PDPについての性質を示す。
表Cは、種々の化合物の反応速度を与える0次の反応速度を測定した。
8.248n−でモニタリングした、PBS(pH7,2)中での2−イミノチ
オラン環の加水分解の速度。
b8反応液を0.5a+M 0TNBと混合しそして412nsでの吸光度の変
化を追跡することによる、PBS(pH7,2)中での2−イミノチオランと1
60 mMグリシンとの反応の速度。
C0反応液を0.IM NaPO,、0,1門NaC1,pH7,5中の2.5
mM口TNBと混合しそして412n+sでの吸光度の変化をモニタリングする
ことによる、2−イミノチオラン(0,5sM)と791 mAb(20μH)
との反応の速度。
d、グルタチオンにより誘導される791/イミノチオラン/TNBからのTN
B放出の初速度、試料は0.5sM ETD^を含むPBS(pH7,25)中
に約10μNのタンパク質−5−5−rNBおよび200μiのグルタチオンを
含み、412n驕でモニタリングした0図1はその結果をグラフに示したもので
ある。
表旦
E 応 (25℃
1mM 加水分解 グリシン 791 TNB化合物A、、、248n* (!
/ 19間) kX10’ k XIO’ kX10’(5−1) (s−重)
(a−’)
環−2IT 250 9.07 13.4 3.4 5.6 82.1(実施例
6)
メチル−21T 247 9.27 5.4 4.8 4.0 ?5.3(実施
例1)
フェニル−21? 246 9.00 1.5 5.2 B、8 45.8(実
施例2)
t−ブチル−21724B 11.7 6.1 4.4 7.4 、 16.4
(実施例3)
ジメチル−21T 247 10.8 6.9 3.5 4.6 0.13(実
施例4)
スピロ−21? 24B 10.7 5.6 3.0 4.6 0.11(実施
例5)
SPDP −−−−−262,00
非置換2−イミノチオランおよび5PDPと比較した置換2−イミノチオランの
ジスルフィド結合安定性の相対増加量(または相対速度減少量)を表りに与える
。それは、非置換2−イミノチオランの速度定数(9,42xlO−3)を各々
の置換2−イミノチオランの速度定数で割ることにより算出した。
ジスルフィド結合安定性の相対増加量を791/5PDP/TNBとも比較し、
21Tについてと同様にして決定した。
常法に従って791 mAbを5popで誘導化し、ゲル濾過により副生成物を
除去し、1mM DTTを用いてFDP基を遊離せしめ、次いで遊離ジスルフィ
ド基をDTNBと反応せしめることにより、791/5PDP/TNBを調製し
た。ゲル濾過後、TNBの放出速度を上記の実施例19dと同様にして測定した
。
下 に比 したジスルフィド 性の
化合物 21T 5PDP
環−21? 11.5 3.2
(実施例6)
メチル−21712,53,5
(実施例1)
フェニル−2IT 20.6 5.8
(実施例2)
t−ブチル−21T 57.4 16.2(実j1例3)
ジメチル−2177246,02046,0(実施例4)
スピロ−21T 8564.0 2418.0(実施例5)
SPDP 3.6 1.00
1m止:
人 の量 11および゛ 一
実施例8.9.14および15に記載したようにして、RTでの3時間に次いで
4°Cでの16時間のPTA 3゜との反応により、活性化791/イミノチオ
ラン/丁NB誘導体から免疫接合体を調製した(スピロ−2ITまたはジメチル
−217では接合体は全く形成されなかった) 、 0.1M NaPO4,0
,1M NaC1,pH7,5で平衡化されたAcA44樹脂上での4℃でのサ
イズ排除クロマトグラフィーにより、残った遊離RTA s。を除去した。増加
していく濃度のグルタチオンとのインキュベーション後に放出されるPTA 3
゜の量を定量することにより、それらと別の接合体の相対安定性を評価した。
PTA3゜の50%放出を生ずるグルタチオンの濃度(10d 2−メルカプト
エタノールとインキュベートした試料に関して)をRC,。と称し、種々の接合
体の安定性を比較する手段を提供した0表Eはそのような比較の結果を示す。
ここで各接合体の相対安定性は791/5poP/RTAs。のものに対して標
準化されている。メチル−217免疫接合体は、フェニル−21T (5,2倍
)および環−21? (3,7倍)よりも安定であった。
同様な結果が4M2抗体でも得られた。
U直性−各接合体を標準アッセイにおいて抗原担持標的細胞中のタンパク質合成
を阻害する能力についても試験した。791/M細胞を2〜2000 +ag/
mlの範囲の濃度の791免疫接合体と共にインキュベートした 2H−ロイシ
ンで4時間短期標識した後、細胞に結合した放射能を定量した。タンパク質合成
を50%阻害した免疫接合体の濃度をICs。と称する0表Eはその結果を示す
、これは、イミノチオラン連結接合体の安定性の増加が細胞毒性に不利に影響を
与えなかったことを示す、参考のため、SMCC連結接合体(非還元性チオール
結合を生じる)の活性も示す。
裏旌且l上:
人の晋おび
4A2/メチル−21T/RTAコ・および4A2/SP[]P/RTlh。免
疫毒素の安定性を更に動物実験した。4A2抗体を用いて各接合体試料を調製し
く実施例12の方法に従って)、次いでBio h s、 Res。
Comm、(1978) fJJ :849−857に記載のヨードジエン(i
odogen)法により、Ill lで約1μCi/μgに放射能標識した(米
国特許第4.708,862号を参照のこと)、免疫接合体を含む溶液のアリコ
ートをラットに腹腔内注射した。ラットから血液試料を定期的に採取し、そして
血清中の放射能の量を測定した。
血清計数は完全な接合体だけでなく、解離によりRTA 3゜部分を失った接合
体の部分も表す、(遊離のRTA2゜は迅速に浄化され、全血清放射能に寄与し
ない、)従って、各時点における完全抗体との比率を決定するために、血清のア
リコートを5O5−PAGEとオートラジオグラフィーによっても分析した6次
いでそれらのデータを用いて補正した接合体クリアランス曲線を作成した0図2
に与えた結果は、平均残留時間により測定すると、メチル−211接合体が5p
op接合体よりもラット内でほぼ3倍安定であることを示す(それぞれ41.3
時間と14.3時間)。
盈旦
79 毒 の および
791/5PDP/RTAユ。 IC5o’拭粧 拉塩校旦ム宏定性二 頽dm
lと791/5PDP/RT^、。 1.0 11.4791/21T/RTA
ff@ 0.6 9.6791ノ環−2IT/RT^、。 3.7 9.879
1// f k−21T/RTAffo 8.3 10.8791/フェニル−
2IT/RTA1゜ 5.2 16.2791/l−ブチル−21T/RTxi
。 3.0 ?、2791/SMCC/RTA3゜(チオエーテル) 測定せず
1412.0” 791/5PDP/RTA3+のRC,、に対する接合RT
A 3゜の50χを放出するグルタチオン濃度(RC5゜)の比。
b標準72時間アッセイにおいて抗原担持細胞中のタンパク質合成を50χ阻害
する各免疫毒素の濃度。
グルタチオンにより誘導される活性化791 MAbからのTNBの放出300
IJM GSH,28度 、 pH7,25時間(秒)
FIG、−J。
時間(時)
FIG、−2゜
国際調査報告
Claims (18)
- 1.次の式(I)の化合物: ▲数式、化学式、表等があります▼(I)(上式中、 Xはハロゲンであり; R1はCOOR5;ハロゲン;ニトロ;ハロゲン化C1−3アルキル;非置換C 1−3アルコキシ;ハロゲン化C1−3アルコキシ;非置換C2−5アルケニル :ハロゲン化C2−5アルケニル;非置換C2−5アルキニル;ハロゲン化C2 −5アルキニル;非置換C3−5シクロアルキル;非置換アリール;ハロゲン、 アミノ、非置換もしくはハロゲン化C1−3アルキル、または非置換もしくはハ ロゲン化C1−3アルコキシから選択された1〜3個の置換基により置換された アリール;非置換複素環;またはハロゲン、アミノ、非置換もしくはハロゲン化 C1−3アルキル、または非置換もしくはハロゲン化C1−5アルコキシから選 択された1〜3個の置換基により置換された複素環であり; R2,R3およびR4は各々独立して、水素であるかまたはR1の意義から選択 され;または R1とR2は一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アルキル基によ り置換されたC2−5アルキレン橋を形成し;または R1またはR2はR3と一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アル キル基により置換されたC2−5アルキレン橋を形成し;そして R5は水素またはC1−3アルキルである)。
- 2.R1がC3−6シクロアルキルまたはフェニルである、請求項1に記載の化 合物。
- 3.R3およびR4の各々が水素である、請求項2に記載の化合物。
- 4.R2,R3およびR4の各々が水素である、請求項2に記載の化合物。
- 5.R1とR2が一緒になってC2−5アルキレン橋を形成し、そしてR3およ びR4の各々が水素である、請求項1に記載の化合物。
- 6.R1とR3が一緒になってC2−5アルキレン橋を形成し、そしてR2およ びR4の各々が水素である、請求項1に記載の化合物。
- 7.2つの種を共有結合せしめる方法であって、a)一方または両方の種を次の 式の架橋剤:▲数式、化学式、表等があります▼ (上式中、 Xはハロゲンであり; R1はCOOR5;ハロゲン;ニトロ;非置換C1−3アルキル;ハロゲン化C 1−3アルキル;非置換C1−3アルコキシ;ハロゲン化C1−3アルコキシ; 非置換C2−5アルケニル;ハロゲン化C2−5アルケニル;非置換C2−5ア ルキニル;ハロゲン化C2−5アルキニル;非置換C3−5シクロアルキル;非 置換アリール;ハロゲン、アミノ、非置換もしくはハロゲン化C1−3アルキル 、または非置換もしくはハロゲン化C1−3アルコキシから選択された1〜3個 の置換基により置換されたアリール;非置換複素環;またはハロゲン、アミノ、 非置換もしくはハロゲン化C1−3アルキル、または非置換もしくはハロゲン化 C1−3アルコキシから選択された1〜3個の置換基により置換された複素環で あり;R2.R3およびR4は各々独立して、水素であるかまたはR1の意義か ら選択され;または R1とR2は一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アルキル基によ り置換されたC2−5アルキレン橋を形成し;または R1またはR2はR3と一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アル キル基により置換されたC2−5アルキレン橋を形成し;そして R5は水素またはC1−3アルキルである)と反応させ;b)脱塩して試薬を除 去し;そして c)前記2つの種を一緒に混合する、 ことを含んで成る方法。
- 8.前記架橋剤と一方または両方の前記種を芳香族ジスルフィドと共に反応させ ることを更に含んで成る、請求項7に記載の方法。
- 9.細胞毒性物質を抗原反応性物質に共有結合せしめる方法であって、 a)前記細胞毒性物質および抗原反応性物質の一方または両方を、次の式の架橋 剤: ▲数式、化学式、表等があります▼ (上式中、 Xはハロゲンであり; R1はCOOR5;ハロゲン;ニトロ;非置換C1−3アルキル;ハロゲン化C 1−3アルキル;非置換C1−3アルコキシ;ハロゲン化C1−3アルコキシ; 非置換C2−5アルケニル;ハロゲン化C2−5アルケニル;非置換C2−5ア ルキニル;ハロゲン化C2−5アルキニル;非置換C3−5シクロアルキル;非 置換アリール;ハロゲン、アミノ、非置換もしくはハロゲン化C1−3アルキル 、または非置換もしくはハロゲン化C1−3アルコキシから選択された1〜3個 の置換基により置換されたアリール;非置換複素環;またはハロゲン、アミノ、 非置換もしくはハロゲン化C1−3アルキル、または非置換もしくはハロゲン化 C1−3アルコキシから選択された1〜3個の置換基により置換された複素環で あり;R2,R3およびR4は各々独立して、水素であるかまたはR1の意義か ら選択され;または R1とR2は一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アルキル基によ り置換されたC2−5アルキレン橋を形成し;または R1またはR2はR3と一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アル キル基により置換されたC2−5アルキレン橋を形成し;そして R5は水素またはC1−3アルキルである)と反応させ;b)脱塩して試薬を除 去し;そして c)前記細胞毒性物質と抗原反応性物質を一緒に混合する、ことを含んで成る方 法。
- 10.前記架橋剤および前記細胞毒性物質と抗原反応性物質の一方または両方を 芳香族ジスルフィドと共に反応させることを更に含んで成る、請求項9に記載の 方法。
- 11.前記細胞毒性物質がリボソーム不活性化タンパク質であり、そして前記抗 原反応性物質が免疫グロブリンである、請求項9に記載の方法。
- 12.第二の種に生来存在する利用可能なアミノまたは炭水化物基のところで第 二の種に接合された第一の種を含んで成る接合体であって、少なくとも1つの次 の式の結合を有する接合体: ▲数式、化学式、表等があります▼ (上式中、 R1はCOOR5;ハロゲン;ニトロ;非置換C1−3アルキル;ハロゲン化C 1−3アルキル;非置換C1−3アルコキシ;ハロゲン化C1−3アルコキシ; 非置換C2−5アルケニル;ハロゲン化C2−5アルケニル;非置換C2−5ア ルキニル;ハロゲン化C2−5アルキニル;非置換C3−5シクロアルキル;非 置換アリール;ハロゲン、アミノ、非置換もしくはハロゲン化C1−3アルキル 、または非置換もしくはハロゲン化C1−3アルコキシから選択された1〜3個 の置換基により置換されたアリール;非置換複素環;またはハロゲン、アミノ、 非置換もしくはハロゲン化C1−3アルキル、または非置換もしくはハロゲン化 C1−3アルコキシから選択された1〜3個の置換基により置換された複素環で あり;R2,R3およびR4は各々独立して、水素であるかまたはR1の意義か ら選択され;または R1とR2は一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アルキル基によ り置換されたC2−5アルキレン橋を形成し;または R1またはR2はR3と一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アル キル基により置換されたC2−5アルキレン橋を形成し;そして R5は水素またはC1−3アルキルである)。
- 13.抗原反応性物質に生来存在する利用可能なアミノ基のところで抗原反応性 物質に接合された細胞毒性物質を含んで成る免疫毒素であって、少なくとも1つ の次の式の結合を有する免疫毒素: ▲数式、化学式、表等があります▼ (上式中、 R1はCOO0R5;ハロゲン;ニトロ;非置換C1−3アルキル;ハロゲン化 C1−3アルキル;非置換C1−3アルコキシ;ハロゲン化C1−3アルコキシ ;非置換C2−5アルケニル;ハロゲン化C2−5アルケニル;非置換C2−5 アルキニル;ハロゲン化C2−5アルキニル;非置換C3−5シクロアルキル; 非置換アリール;ハロゲン、アミノ、非置換もしくはハロゲン化C1−3アルキ ル、または非置換もしくはハロゲン化C1−3アルコキシから選択された1〜3 個の置換基により置換されたアリール;非置換複素環;またはハロゲン、アミノ 、非置換もしくはハロゲン化C1−3アルキル、または非置換もしくはハロゲン 化C1−3アルコキシから選択された1〜3個の置換基により置換された複素環 であり;R2,R3およびR4は各々独立して、水素であるかまたはR1の意義 から選択され;または R1とR2は一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アルキル基によ り置換されたC2−5アルキレン橋を形成し;または R1またはR2はR3と一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アル キル基により置換されたC2−5アルキレン橋を形成し;そして R5は水素またはC1−3アルキルである)。
- 14.前記細胞毒性物質がリボソーム不活性化タンパク質であり、そして前記抗 原反応性物質が免疫グロブリンである、請求項13に記載の免疫毒素。
- 15.2つの種を共有結合せしめる方法であって、a)芳香族ジスルフィドの存 在下において一方または両方の種を次の式の架橋剤: ▲数式、化学式、表等があります▼ (上式中、 Xはハロゲンであり; R1,R2,R3およびR4は各々独立して、水素:COOR5;ハロゲン;ニ トロ;非置換1−3アルキル;ハロゲン化C1−3アルキル;非置換C1−3ア ルコキシ;ハロゲン化C1−3アルコキシ;非置換C2−5アルケニル;ハロゲ ン化C2−5アルケニル;非置換C2−5アルキニル;ハロゲン化C2−5アル キニル;非置換C3−5シクロアルキル;非置換アリール;ハロゲン、アミノ、 非置換もしくはハロゲン化C1−3アルキル、または非置換もしくはハロゲン化 C1−3アルコキシから選択された1〜3個の置換基により置換されたアリール ;非置換複素環;またはハロゲン、アミノ、非置換もしくはハロゲン化C1−3 アルキル、または非置換もしくはハロゲン化C1−3アルコキシから選択された 1〜3個の置換基により置換された複素環であり;または R1とR2は一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アルキル基によ り置換されたC2−5アルキレン橋を形成し;または R1またはR2はR3と一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アル キル基により置換されたC2−5アルキレン橋を形成し;そして R5は水素またはC1−3アルキルである)と反応させ;b)脱塩して試薬を除 去し;そして c)前記2つの種を一緒に混合する、 ことを含んで成る方法。
- 16.前記芳香族ジスルフィドがジチオニトロ安息香酸、2,2′−ジピリジル ジスルフィド、4,4′−ジピリジルジスルフィドおよび2,2′−ジチオビス (ピリジン−N−オキシド)から選択される、請求項15に記載の方法。
- 17.病気の治療方法であって、療法的有効量の免疫毒素を標的細胞に投与する ことを含んで成り、前記免疫毒素が抗原反応性物質に生来存在する利用可能なア ミノ基のところで抗原反応性物質に接合された細胞毒性物質から成り、ここで前 記免疫毒素が少なくとも1つの次の式の結合を有することを特徴とする方法: ▲数式、化学式、表等があります▼ (上式中、 R1はCOOR5;ハロゲン;ニトロ;非置換C1−3アルキル;ハロゲン化C 1−3アルキル;非置換C1−3アルコキシ;ハロゲン化C1−3アルコキシ; 非置換C2−5アルケニル;ハロゲン化C2−5アルケニル;非置換C2−5ア ルキニル;ハロゲン化C2−5アルキニル;非置換C3−5シクロアルキル;非 置換アリール;ハロゲン、アミノ、非置換もしくはハロゲン化C1−3アルキル 、または非置換もしくはハロゲン化C1−3アルコキシから選択された1〜3個 の置換基により置換されたアリール;非置換複素環;またはハロゲン、アミノ、 非置換もしくはハロゲン化C1−3アルキル、または非置換もしくはハロゲン化 C1−3アルコキシから選択された1〜3個の置換基により置換された複素環で あり;R2,R3およびR4は各々独立して、水素であるかまたはR1の意義か ら選択され;または R1とR2は一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アルキル基によ り置換されたC2−5アルキレン橋を形成し;または R1またはR2はR3と一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アル キル基により置換されたC2−5アルキレン橋を形成し;そして R5は水素またはC1−3アルキルである)。
- 18.細胞中のタンパク質合成の阻害方法であって、抗原反応性物質に生来存在 する利用可能なアミノ基のところで抗原反応性物質に接合された細胞毒性物質か ら成る免疫毒素の有効量を細胞に投与することを含んで成り、前記免疫毒素が少 なくとも1つの次の式の結合を有することを特徴とする方法: ▲数式、化学式、表等があります▼ (上式中、 R1はCOOR5;ハロゲン;ニトロ;非置換C1−3アルキル;ハロゲン化C 1−3アルキル;非置換C1−3アルコキシ;ハロゲン化C1−3アルコキシ; 非置換C2−5アルケニル;ハロゲン化C2−5アルケニル;非置換C2−5ア ルキニル;ハロゲン化C2−5アルキニル;非置換C3−5シクロアルキル;非 置換アリール;ハロゲン、アミノ、非置換もしくはハロゲン化C1−3アルキル 、または非置換もしくはハロゲン化C1−3アルコキシから選択された1〜3個 の置換基により置換されたアリール;非置換複素環;またはハロゲン、アミノ、 非置換もしくはハロゲン化C1−3アルキル、または非置換もしくはハロゲン化 C1−3アルコキシから選択された1〜3個の置換基により置換された複素環で あり;R2,R3およびR4は各々独立して、水素であるかまたはR1の意義か ら選択され;または R1とR2は一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アルキル基によ り置換されたC2−5アルキレン橋を形成し;または R1またはR2はR3と一緒になって、非置換のまたは1〜5個のC1−4アル キル基により置換されたC2−5アルキレン橋を形成し;そして R5は水素またはC1−3アルキルである)。
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