JPH04635B2

JPH04635B2 -

Info

Publication number: JPH04635B2
Application number: JP1605190A
Authority: JP
Inventors: Takashi Sasaki; Takafumi Harumi; Keiji Kainuma; Hiroaki Ishizuka; Katsuo Wakao; Takeshi Kawaguchi; Tsunero Oda
Original assignee: NITSUKEN KAGAKU KK; NORINSUISANSHO SHOKUHIN SOGO KENKYUSHOCHO
Current assignee: NITSUKEN KAGAKU KK; NORINSUISANSHO SHOKUHIN SOGO KENKYUSHOCHO
Priority date: 1990-01-29
Filing date: 1990-01-29
Publication date: 1992-01-08
Also published as: JPH0343091A

Description

【発明の詳細な説明】

［産業上の利用分野］本発明は新規微生物を用いる発酵によるエリス
リトールの製造方法に関し、更に詳細には、オー
レオバシデイウム属に属する新規な人工変異株で
あるオーレオバシデイウムsp.SN−G42菌株及び
当該変異株を用いて発酵性糖類をエリスリトール
に変換することを特徴とする、新規微生物を用い
る発酵によるエリスリトールの製造方法に関す
る。［従来の技術及び発明が解決しようとする課題］従来から、キヤンジダ属、デバリオミセス属、
トリゴノプシス属、トルロプシス属、ハンゼヌラ
属、モニリエラ属、オーレオバシデイウム属など
に属する微生物を利用して、発酵法によりグルコ
ース、グリセリンなどの糖類からエルスリトール
を製造する方法は既に公知となつている。例えば、特公昭47−41549号公報には、キヤン
ジダ属、トリゴノプシス属に属する微生物を用い
てグリセリンなどの発酵性糖類をエリスリトール
に変換する方法が記載されている。しかし、この
方法では微生物の耐糖性が低いために、主炭素源
として使用される糖質濃度（基質濃度）に限界が
あり、比較的低濃度で発酵を行う必要があつた。また、特開昭60−110295号公報などには、モニ
リエラ属に属する微生物を用いるエリスリトール
の改良製法が開示されている。この方法はエリス
リトールへの変換率が高く、微生物の耐糖性も高
いという点で優れているが、この微生物は泡の発
生が著しく、通常使用される消泡剤では役に立た
ないため、高価なキサンタンガムなどを多量に添
加する必要があり、そのために製造コストが高く
なるという欠点がある。更に、特開昭61−31091号公報には、本発明者
らによりオーレオバシデイウム属に属するオーレ
オバシデイウムsp.SN−45菌株（微工研菌寄第
7594号）を用いてグルコースなどの発酵性糖類か
らエリスリトールを製造する方法が開示されてい
る。この方法は、比較的高濃度の糖質を用いてエ
リスリトールを製造することを可能にするもので
あるが、培養液中の菌体生成量に比べてエリスリ
トール収率が充分でなく、また製造条件であるPH
の至適範囲が狭いなど、必ずしも満足のいく方法
とは言い難い。［課題を解決するための手段］本発明者らは、上記したような従来方法の欠点
を改良するために、オーレオバシデイウム属に属
する微生物の耐糖性を高めるべく、微生物の改良
について種々検討した結果、沖縄県の澱粉工場内
の土壌から分離された不完全菌類のオーレオバシ
デイウム属に属するオーレオバシデイウムsp.SN
−124A菌株（微工研菌寄第8745号）を親株とし、
これより得られた変異株であるオーレオバシデイ
ウムsp.SN−G42菌株が高いエリスリトール生産
能を有すると共に、高い耐糖性を獲得しているこ
と並びに培養の際に泡を生成しないことを見出
し、本発明に到達したものである。即ち、本発明はエリスリトール生産能を有し、
菌体（細胞）が親水性、非凝集性であり、且つ液
体培地中で好気的に培養するとき実質的に泡を生
成しないことを特徴とするオーレオバシデイウム
sp.SN−G42菌株を用いて発酵性糖類を主炭素源
として含む培地に接種し、好気的に培養して培養
液中にエリスリトールを生成蓄積せしめ、これを
採取することを特徴とする発酵によるエリスリト
ールの製造方法に関する。本発明に関わるオーレオバシデイウムsp.SN−
G42菌株は、親株であるオーレオバシデイウム
sp.SN−124A菌株に、紫外線を照射した後、引
き続きＮ−メチル−N′−ニトロ−N″−ニトロソ
グアニジンなどの突然変異誘起剤を使用して処理
することにより誘発された新規変異株である。以下に、本変異株の菌学的性質を示す。１培地上の生育状況 (1) 顕微鏡的所見栄養細胞の大きさ（※１）４〜７×４〜
15μ 栄養細胞の形状（※１）菌系および酵母様
の単胞、卵形等の形状を示す。栄養細胞の増殖法（※１）菌糸及び酵母様
細胞の多極出芽菌糸体（※２）真性菌糸を形成し、先端及
び側面に全分芽型分生子を多数生ずる。（註） ※１ YM寒天培地27℃、５日間培養 ※２ポテトグルコース寒天によるスライ
ド培養 (2) 寒天斜面（※３）生育良好形態表面は平滑状光沢無し色調日数の経過に伴い白色からうすい黄黒
色のコロニーに変化する。（註） ※３ YM寒天培地 (3) 液体培養（※４）表面生育厚い皮膜形成濁度透明沈査大（註） ※４ YM液体培地２子のう胞子の形成ポテトグルコース寒天培地形成せずコーンミール寒天培地形成せず YM寒天培地形成せずニンジンエキス寒天培地形成せず V₈寒天培地形成せず３生理学的性質酸素要求性好気的生育温度約40℃まで最適生育温度 35〜37℃ 生育PH 2.5〜10.0 最適生育PH 4.0〜7.0 KNO₃資化性（※５）有り（NH₄）₂SO₄資化性（※５）有り尿素の分解無しゼラチンの液化無しカロチノイドの生成無しフアーストブルーＢ発色試験無し有機酸の生成無しデンプン様物質の生成無しビタミンの要求性（※５）有りグルコース濃度（※６） 50％生育 60％育成食塩濃度（※７）２％育成＋ 10％生育 − （註） ※５ ickerhamの合成培地を用いたJ.
Lodderらの方法により判定 ※６寒天培地 ※７液体培地４糖の発酵性（※５）グルコース＋ラクトース − ガラクトース − メリビオース − シユクロース＋ラフイノース − マルトース＋Ｄ−アラビノース − キシロース − トレハロース − イヌリン − ５糖、有機酸等の資化性グルコース＋Ｄ−キシロース − ガラクトース − エリスリトール＋Ｄ−アラビノース − Ｌ−アラビノース − Ｄ−リボース＋シユクロース＋Ｌ−ラムノース − マルトース＋エタノール＋メタノール ± セロビオース＋サリシン − Ｌ−ソルボース＋リビトール − ガラクチトール − グリセロール＋トレハロース − ラクトース − メリビオース − Ｄ−マンニトール − ラフイノース＋メレヂトース＋ α−メチル−Ｄ−グルコシド − イヌリン＋イノシトール − 可溶性デンプン − DL−乳酸 − コハク酸 − クエン酸 − Ｄ−クルシトール＋グルクロン酸 − アルブチン＋Ｄ−グルコサミン（HCl） − ２−ケトグルコン酸＋５−ケトグルコン酸＋上記の如き菌学的性質を有する本菌株は、オー
レオバシデイウムsp.SN−124A菌株を親株とし
て変異したものであり、且つ親株に近似した性質
を有していることから、オーレオバシデイウム属
に属する新規な変異株であると判断し、オーレオ
バシデイウムsp.SN−G42菌株とし命名した。本菌株は、工業技術院微生物工業技術研究所に
「微生物受託番号微工研菌寄第8940号」として
寄託されている。このように、本発明に係わるオーレオバシデイ
ウムsp.SN−G42菌株は、親株であるオーレオバ
シデイウムsp.SN−124A菌株の菌学的性質（特
願昭61−210669号参照）に近似しているが、硝酸
塩の資化性が弱く、尿素非分解性及び炭素源の資
化性などで若干異なる性質を有しており、また親
株に比較して耐糖性が高い点（後記試験例１参
照）、液体培地で好気的に培養したとき実質的に
泡を生成しない点並びに菌体（細胞）が親水性で
あり、且つ非凝集性である点（後記試験例２参
照）及び平板寒天培地で静置培養したときのコロ
ニーの形態（後記試験例３参照）においても相違
を有している。以下に、本発明に係わるエリスリトールの製造
方法について述べるが、本発明の中で用いる％は
特にことわりのない限り容量（Ｗ／Ｖ）％で示し
た。本発明における培養は、通常液体培地を用いて
好気的条件下に撹拌培養により実施されることが
望ましい。当該液体培地の主炭素源としてはグルコース、
フルクトース、シユクロースなどの糖質が使用さ
れるが、これらの糖質の培地中における量的割合
としては10〜55％、好ましくは20〜50％の範囲で
添加使用される。窒素源としては微生物により利
用可能な窒素化合物、例えば酵母エキス、ペプト
ン、麦芽エキス、カザミノ酸、コーンスチープリ
カーなどが使用される。また、培地に加える無機
塩類としては、例えば硫酸第一鉄、塩化カリウ
ム、塩化ナトリウム、リン酸二水素カリウム、水
酸化カルシウムなどの塩類が使用される。更に、
必要に応じて酵母の生育に必要な各種の有機物、
無機物あるいは通常用いられる消泡剤などを添加
することができる。培養は、前記組成からなる液体培地に微生物菌
体を直接接種するか、又は別に前培養によつて得
られる種培養液を接種して行われる。この種培養
液の調製は、例えば常法により斜面培養した菌を
グルコース33.5％、コーンスチープリカー4.5％
を含むPH４〜６の液体培地に１白金耳接種して34
〜36℃の温度で２〜４日間培養することにより行
われる。培養温度は微生物が生育しうる範囲内、即ち30
〜38℃で行われるが、好ましくは35〜37℃の範囲
である。また、培地のPHは４〜９、好ましくは４〜７の
範囲で調節される。培養期間は使用する培地の種類及び主炭素源で
ある糖質の濃度により異なるが、通常４〜８日間
程度である。本発明における培養は、培地の栄養源が最大限
に利用され、且つ培養液中のエリスリトールの生
成量が最高に達した時点で培養を終了させること
が望ましい。なお、培養液中のエリスリトール生成量はガス
クロマトグラフイー、高速液体クロマトグラフイ
ーなどの周知の方法を用いて速やかに測定するこ
とができる。かくして、培養液中に蓄積されたエリスリトー
ルは、常法に従つて培養液中から分離される。即
ち、斯かる場合に当該分野において通常使用され
ている周知の手段、例えばろ過、遠心分離、イオ
ン交換又は吸着クロマトグラフイー、溶媒抽出、
蒸留、結晶化などの操作が必要に応じて適宜組み
合わせて用いられる。一例を挙げれば、培養液か
らろ過、遠心分離などによつて菌体を除去し、次
いでこの液を活性炭で処理して着色物質などを除
き、更にイオン交換樹脂により脱イオンした後、
液を濃縮してシロツプとする。次に、このシロツ
プからエリスリトール結晶化して分離する。エリ
スリトールを分離した後の母液中にグリセリンが
含まれている場合には、これを更に減圧蒸留によ
つて精製してグリセリンを得ることができる。［実施例］次に、本発明は試験例及び実施例により詳しく
説明する。以下に、本発明に係わるオーレオバシデイウム
sp.SN−G42菌株の特性を、親株であるオーレオ
バシデイウムsp.SN−124A菌株と比較した。試験例１（耐糖静試験） ●方法酵母エキス（Difco社製）1.0％（Ｗ／Ｖ％を
示す。以下、同じである。）、グルコース22.0〜
45.0％を含む培地を500ml容の三角フラスコに
それぞれ入れ、120℃で15分間蒸気減菌を行つ
た。冷後、培地PHを5.5に調整し、これに種培
養液６％を接種した後、30℃、180rpmで７日
間回転培養を行つた。 ●結果次頁に対消費グルコース当たりのエリスリト
ール収率を示した。

【表】表から明らかなように、親株であるオーレオ
バシデイウムsp.SN−124A菌株は、培地のグ
ルコース濃度が33.5％以下ではエリスリトール
への変換率が36.5〜38.3％で良好な変換率を示
すが、グルコース濃度が39.5％以上になると、
グルコース濃度の上昇に伴つて急激な変換率の
低下が認められた。これに対し、本発明の変異株であるオーレオ
バシデイウムsp.SN−G42菌株は、培地のグル
コース濃度が39.5％を越えてもエリスリトール
への変換率の低下が認められず、グルコース濃
度が45.0％になると親株に比べ約2.3倍のエリ
スリトール収率が認められた。試験例２（発泡性、凝集性及び親水性試験） ●方法酵母エキス1.0％、グルコース33.5％を含む
倍地を試験管に入れ、120℃で15分間蒸気減菌
を行つた。冷後、倍地PHを5.5に調整し、これ
に種培養液６％を接種した後、30℃、５日間振
盪培養を行つた。培養終了後、10〜15分間静置
して泡の生成状態及び菌体（細胞）の凝集状態
を観察した（発泡性、凝集性）。引き続き、培養液と同量のベンゼンを加えて
強く撹拌した後、約30分間静置して菌体（細
胞）のベンゼン層への移行状態を観察した（親
水性）。 ●結果親株であるオーレオバシデイウムsp.SN−
124A菌株は、液体培地で好気的に培養したと
き著しい発泡を示し、撹拌（振盪）を停止した
後も泡は長時間消失しなかつた。また、培養液
中の菌体（細胞）は、撹拌を停止すると速やか
に凝集して沈澱を生じた。これに対し、本発明の変異株であるオーレオ
バシデイウムsp.SN−G42菌株は上記と同一の
条件で培養しても発泡が全く認められず、撹拌
（振盪）を停止しても菌体の凝集は生じなかつ
た。また、上記と同一条件で培養した親株と本発
明の変異株の各培養液に、適量のベンゼンを加
えてベンゼン−水２層系としたとき、親株の菌
体はベンゼン層に移行し、水層には何も残らな
いが、本発明の変異株の菌体は全て水層にとど
まり、ベンゼン層には全く移行しなかつた。試験例３（形態観察） ●方法酵母エキス1.0％、グルコース、33.5％、寒
天1.5％から成る平板寒天培地に、白金線を用
いて菌体を接種した後、30℃、５日間静置培養
し、コロニーの形態を観察した。 ●結果親株であるオーレオバシデイウムsp.SN−
124A菌株は、平板寒天培地上で表面がシワ状
のコロニーを生ずるが、本発明の変異株である
オーレオバシデイウムsp.SN−G42菌株は表面
が平滑状のコロニーを生じ、外観上著しく相違
している。実施例１（変異株の造成）オーレオバシデイウムsp.SN−124A菌株を酵
母エキス0.5％、グルコース22％の培地で２日間
前培養したものを100倍稀釈し、30cmの距離から
15Wの紫外線ランプ（東芝殺菌灯「GL15」）を40
分間照射する。これを稀釈後、寒天培地（酵母エ
キス1.0％、グルコース33.5％、寒天1.5％）に塗
布し、生育してくるものを選抜した。次に、上記処理で選抜した菌株を再び20分間紫
外線照射し、同様にして生育してくるものを選抜
した。更に、上記処理で選抜した菌株を１mg／ml濃度
のＮ−メチル−N′−ニトロ−N″−ニトロソグア
ニジンで30分間処理し、同様にして生育してくる
ものを選抜して、変異株であるオーレオバシデイ
ウムsp.SN−G42菌株（FERM Ｐ−8940）を得
た。実施例２種培養液の調製グルコース33.5％、酵母エキス1.0％、寒天1.5
％から成る斜面培地にオーレオバシデイウムsp.
SN−G42菌株（FERM Ｐ−8940）の菌体を塗布
し、35℃で２〜３日間静置培養する。次に、グルコース20％、コーンスチープリカー
（王子コーンスターチ(株)製）1.6％を含む液体培地
（PH4.0）150mlを入れた500ml容の三角フラスコに
上記培養菌体を１白金耳植菌し、35℃で３日間培
養を行い、更に、この培養液９mlを同様の液体培
地150mlを入れた500ml容の三角フラスコに接種し
35℃で３日間振盪培養することにより調製した。本培養グルコース20.0％およびコーンスチープリカー
1.6％を含む培地15を30容の発酵槽に入れ、
消泡剤（「シリコーンKS−66」信越化学(株)製）
300ppmを加えたのち、120℃で20分間蒸気減菌す
る。冷却後、カセイソーダを用いて培地のPHを
4.0に調整したのち、これにオーレオバシデイウ
ムsp.SN−G42菌株（FERM Ｐ−8940）の種培
養液６％を加え、温度35℃、通気量0.25vvm、回
転数230rpmの条件で７日間培養を行つた。培養終了後、培養液の分析を行つた結果、グル
コースは完全に消費されており、培養液中のエリ
スリトール収率は49.3％、グリセリン収率は2.2
％であつた。次に、この培養液の一部をとり、遠心分離によ
り菌体を除去し、更に活性炭による脱色およびイ
オン交換樹脂（IRA−410：IR−120B＝２：１）
による脱塩を行つた。溶出液を糖濃度50％以上に
濃縮し、徐冷することによつて結晶を得、更に、
この結晶を水に溶解した後、同様の方法によつて
再結晶を行つた。得られた多面体様の白色結晶はさわやかな甘味
を有し、その融点は121℃であつた。更に、液体
クロマトグラフイー、ガスクロマトグラフイー、
旋光度及び核磁気共鳴スペクトル等の測定を行つ
た結果、上記結晶はエリスリトールと同定され
た。実施例３グルコース20.0％およびコーンスチープリカー
1.6％を含む培地15を30容の発酵槽に入れ、
消泡剤300ppmを加えたのち、120℃で20分間蒸気
減菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地の
PHを4.0に調整したのち、上記培地と同一組成の
培地を用いて実施例２の方法に従い調製したオー
レオバシデイウムsp.SN−G42菌株（FERM Ｐ
−8940）の種培養液６％を加え、温度35℃、通気
量0.50vvm、回転数230rpmの条件で７日間培養
を行つた。培養終了後、培養液の分析を行つた結果、グル
コースは完全に消費されており、培養液中のエリ
スリトール収率は49.2％、グリセリン収率は1.2
％であつた。実施例４グルコース20.0％およびコーンスチープリカー
1.6％を含む培地15を30容の発酵槽に入れ、
消泡剤300ppmを加えたのち、120℃で20分間蒸気
減菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地の
PHを4.0に調整したのち、上記培地と同一組成の
培地を用いて実施例２の方法に従い調製したオー
レオバシデイウムsp.SN−G42菌株（FERM Ｐ
−8940）の種培養液６％を加え、温度35℃、通気
量0.75vvm、回転数230rpmの条件で７日間培養
を行つた。培養終了後、培養液の分析を行つた結果、グル
コースは完全に消費されており、培養液中のエリ
スリトール収率は46.5％、グルセリン収率は2.7
％であつた。実施例５グルコース20.0％およびコーンスチープリカー
1.6％を含む培地15を30容の発酵槽に入れ、
消泡剤300ppmを加えたのち、120℃で20分間蒸気
減菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地の
PHを4.0に調整したのち、上記培地と同一組成の
培地を用いて実施例２の方法に従い調製したオー
レオバシデイウムsp.SN−G42菌株（FERM Ｐ
−8940）の種培養液６％を加え、温度35℃、通気
量1.00vvm、回転数230rpmの条件で７日間培養
を行つた。培養終了後、培養液の分析を行つた結果、グル
コースは完全に消費されており、培養液中のエリ
スリトール収率は41.8％、グリセリン収率は1.4
％であつた。実施例６グるコース33.5％およびコーンスチープリカー
4.47％を含む培地５を７容の発酵槽に入れ、
消泡剤300ppmを加えたのち、120℃で20分間蒸気
減菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地の
PHを4.2に調整したのち、上記培地と同一組成の
培地を用いて実施例２の方法に従い調製したオー
レオバシデイウムsp.SN−G42菌株（FERM Ｐ
−8940）の種培養液６％を加え、温度35℃、通気
量0.25vvm、回転数500rpmの条件で５日間培養
を行つた。培養終了後、培養液の分析を行つた結果、グル
コースは完全に消費されており、培養液中のエリ
スリトール収率は39.7％、グルセリン収率は7.9
％であつた。実施例７グルコース39.5％およびコーンスチープリカー
4.0％を含む培地５を７容の発酵槽に入れ、
消泡剤300ppmを加えたのち、120℃で20分間蒸気
減菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地の
PHを4.2に調整したのち、上記培地と同一組成の
培地を用いて実施例２の方法に従い調製したオー
レオバシデイウムsp.SN−G42菌株（FERM Ｐ
−8940）の種培養液６％を加え、温度35℃、通気
量0.25vvm、回転数500rpmの条件で６日間培養
を行つた。培養終了後、培養液の分析を行つた結果、グル
コースは完全に消費されており、培養液中のエリ
スリトール収率は38.6％、グルセリン収率は9.5
％であつた。実施例８グルコース39.5％およびコーンスチープリカー
5.3％を含む培地５を７容の発酵槽に入れ、
消泡剤300ppmを加えたのち、120℃で20分間蒸気
減菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地の
PHを4.2に調整したのち、上記培地と同一組成の
培地を用いて実施例２の方法に従い調製したオー
レオバシデイウムsp.SN−G42菌株（FERM Ｐ
−8940）の種培養液６％を加え、温度35℃、通気
量0.25vvm、回転数500rpmの条件で５日間培養
を行つた。培養終了後、培養液の分析を行つた結果、グル
コースは完全に消費されており、培養液中のエリ
スリトール収率は37.5％、グリセリン収率は7.2
％であつた。実施例９グルコース39.5％およびコーンスチープリカー
6.6％を含む培地５を７容の発酵槽に入れ、
消泡剤300ppmを加えたのち、120℃で20分間蒸気
減菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地の
PHを4.2に調整したのち、上記培地と同一組成の
培地を用いて実施例２の方法に従い調製したオー
レオバシデイウムsp.SN−G42菌株（FERM Ｐ
−8940）の種培養液６％を加え、温度35℃、通気
量0.25vvm、回転数500rpmの条件で４日間培養
を行つた。培養終了後、培養液の分析を行つた結果、グル
コースは完全に消費されており、培養液中のエリ
スリトール収率は37.1％、グリセリン収率は4.8
％であつた。実施例 10 グルコース45.0％およびコーンスチープリカー
6.0％を含む培地15を30容の発酵槽に入れ、
消泡剤300ppmを加えたのち、120℃で20分間蒸気
減菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地の
PHを4.0に調整したのち、上記培地と同一組成の
培地を用いて実施例２の方法に従い調製したオー
レオバシデイウムsp.SN−G42菌株（FERM Ｐ
−8940）の種培養液６％を加え、温度35℃、通気
量0.25vvm、回転数230rpmの条件で８日間培養
を行つた。培養終了後、培養液の分析を行つた結果、グル
コースは完全に消費されており、培養液中のエリ
スリトール収率は37.3％、グリセリン収率は4.5
％であつた。実施例 11 シユクロース33.5％およびコーンスチープリカ
ー4.5％を含む培地５を７容の発酵槽に入れ、
消泡剤300ppmを加えたのち、120℃で20分間蒸気
減菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地の
PHを4.1に調整したのち、上記培地と同一組成の
培地を用いて実施例２の方法に従い調製したオー
レオバシデイウムsp.SN−G42菌株の種培養液６
％を加え、温度35℃、通気量0.25vvm、回転数
500rpmの条件で６日間培養を行つた。培養終了後、培養液の分析を行つた結果、シユ
クロースは完全に消費されており、培養液中のエ
リスリトール収率は41.9％、グリセリン収率は
7.4％であつた。実施例 12 シユクロース39.5％およびコーンスチープリカ
ー5.3％を含む培地５を７容の発酵槽に入れ、
消泡剤300ppmを加えたのち、120℃で20分間蒸気
減菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地の
PHを4.1に調整したのち、上記培地と同一組成の
培地を用いて実施例２の方法に従い調製したオー
レオバシデイウムsp.SN−G42菌株（FERM Ｐ
−8940）の種培養液６％を加え、温度35℃、通気
量0.25vvm、回転数500rpmの条件で６日間培養
を行つた。培養終了後、培養液の分析を行つた結果、シユ
クロースは完全に消費されており、培養液中のエ
リスリトール収率は42.4％、グリセリン収率は
5.8％であつた。実施例 13 シユクロース45.0％およびコーンスチープリカ
ー6.0％を含む培地５を７容の発酵槽に入れ、
消泡剤300ppmを加えたのち、120℃で20分間蒸気
減菌する。冷却後、カセイソーダを用いて培地の
PHを4.1に調整したのち、上記培地と同一組成の
培地を用いて実施例２の方法に従い調製したオー
レオバシデイウムsp.SN−G42菌株（FERM Ｐ
−8940）の種培養液６％を加え、温度35℃、通気
量0.25vvm、回転数500rpmの条件で６日間培養
を行つた。培養終了後、培養液の分析を行つた結果、シユ
クロースは完全に消費されており、培養液中のエ
リスリトール収率は41.7％、グリセリン収率は
3.8％であつた。［発明の効果］本発明の新規微生物であるオーレオバシデイウ
ムsp.SN−G42菌株は、耐糖性、耐熱性に優れ、
エリスリトール生産能が高く、しかも発酵培養時
に泡の発生が極めて少ないので、工業的に利用す
る上で大変都合の良いものである。

Claims

【特許請求の範囲】

１オーレオバシデイウムsp.SN−G42菌株を、
発酵性糖類を主炭素源として含む培地に接種し、
好気的に培養して培養液中にエリスリトールを生
成蓄積せしめ、これを採取することを特徴とする
発酵によるエリスリトールの製造方法。