JPH0480652B2 - - Google Patents
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- Publication number
- JPH0480652B2 JPH0480652B2 JP58189802A JP18980283A JPH0480652B2 JP H0480652 B2 JPH0480652 B2 JP H0480652B2 JP 58189802 A JP58189802 A JP 58189802A JP 18980283 A JP18980283 A JP 18980283A JP H0480652 B2 JPH0480652 B2 JP H0480652B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- gel
- tissue
- encapsulated
- meristem
- plant
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01H—NEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
- A01H4/00—Plant reproduction by tissue culture techniques ; Tissue culture techniques therefor
- A01H4/005—Methods for micropropagation; Vegetative plant propagation using cell or tissue culture techniques
- A01H4/006—Encapsulated embryos for plant reproduction, e.g. artificial seeds
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Botany (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
- Pretreatment Of Seeds And Plants (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】
発明の背景
本発明は遺伝子型が親の系統と同一の植物種子
の類似物の製造に関する。
の類似物の製造に関する。
農業における農作物を改良する従来の技術に
は、新しく有用な特徴を示すか、又は現存する特
徴を改良する植物系統の探索が含まれる。この研
究はより望ましい親植物の単なる選抜から、望ま
しい特徴を示す親植物系統間の交配を経て、最終
的には同一のF1子孫が次の異種交雑で生れるよ
うなホモ接合体系統間の異種交雑にまで進歩し
た。
は、新しく有用な特徴を示すか、又は現存する特
徴を改良する植物系統の探索が含まれる。この研
究はより望ましい親植物の単なる選抜から、望ま
しい特徴を示す親植物系統間の交配を経て、最終
的には同一のF1子孫が次の異種交雑で生れるよ
うなホモ接合体系統間の異種交雑にまで進歩し
た。
遺伝的同一性を維持する従来の種々の方法は公
知であり文献に記載されている。例えば、文献と
してはアール・ダブリユー・アラード（R.W.
Allard）による“プリンシプルズ・オブ・プラ
ント・ブリーデイング（Principes of Plant
Breeding）”［ジヨン・ワイリー・アンド・サン
ズ・インク（John Wiley and Sons，Inc.）
（1960年）］がある。純粋系統の維持及びF1子孫
を得るための繰返し異種交雑は多くの時間を消費
し、非常に労力も要する。
知であり文献に記載されている。例えば、文献と
してはアール・ダブリユー・アラード（R.W.
Allard）による“プリンシプルズ・オブ・プラ
ント・ブリーデイング（Principes of Plant
Breeding）”［ジヨン・ワイリー・アンド・サン
ズ・インク（John Wiley and Sons，Inc.）
（1960年）］がある。純粋系統の維持及びF1子孫
を得るための繰返し異種交雑は多くの時間を消費
し、非常に労力も要する。
親の品種の有性生殖のもう一つの制約は種子の
生産性が低いことである。このことは、しばしば
たびかさなる自殖系統に見られる弱勢から生じ
る。最終的には、比較的限られた数の純粋品種だ
けが生じ、この結果、選抜に利用できる遺伝子源
が減少する。
生産性が低いことである。このことは、しばしば
たびかさなる自殖系統に見られる弱勢から生じ
る。最終的には、比較的限られた数の純粋品種だ
けが生じ、この結果、選抜に利用できる遺伝子源
が減少する。
これらの難点のうちいくつかは、親の系統の栄
養繁殖により克服し得ることが認められている。
ダブリユー・シー・アンダーソン（W.C.
Anderson）及びジエイ・ビー・カーステンズ
（J.B.Carstens）による“テイシユー・カルチヤ
ー・プロパゲーシヨン・オブ・ブロツコリ、ブラ
シカ・オレラシア（イタリカ・グループ）、フエ
ア・ユース・イン・F1・ハイブリド・シード・
プロダクシヨン［Tissue Culture Propagation
of Brocoli、Brassica oleracea（Italica
Group）、for use in F1 Hybrid Seed
Production］”［ジヤーナル・オブ・ジ・アメリ
カン・ソサイエテイ・オブ・ホーテイカルチユラ
リ・サイエンス（J.Amer.Soc.Hort.Sci.）第102
巻第１号第69乃至73頁（1977年）］を参照。親系
統内に形質分離がある場合には、F1種子生産の
ための有性交雑では、子孫が均一になるとは限ら
ない。しかし、この技術は、親系統の遺伝的特質
が有性生殖によつて変化するのを防ぐ。
養繁殖により克服し得ることが認められている。
ダブリユー・シー・アンダーソン（W.C.
Anderson）及びジエイ・ビー・カーステンズ
（J.B.Carstens）による“テイシユー・カルチヤ
ー・プロパゲーシヨン・オブ・ブロツコリ、ブラ
シカ・オレラシア（イタリカ・グループ）、フエ
ア・ユース・イン・F1・ハイブリド・シード・
プロダクシヨン［Tissue Culture Propagation
of Brocoli、Brassica oleracea（Italica
Group）、for use in F1 Hybrid Seed
Production］”［ジヤーナル・オブ・ジ・アメリ
カン・ソサイエテイ・オブ・ホーテイカルチユラ
リ・サイエンス（J.Amer.Soc.Hort.Sci.）第102
巻第１号第69乃至73頁（1977年）］を参照。親系
統内に形質分離がある場合には、F1種子生産の
ための有性交雑では、子孫が均一になるとは限ら
ない。しかし、この技術は、親系統の遺伝的特質
が有性生殖によつて変化するのを防ぐ。
望ましい植物種が栄養的に増殖させ、それによ
つて得られた不安胚、又は根づいた小植物体を田
畑に移植することが示唆されている。しかしなが
ら、この技術は組織培養実験室中の熱練作業、温
室又は育苗室への移動、及び十分に順化したうえ
で田畑へ植え換えることが必要である。この方法
は伝統的な播種法に比べて価格も高く時間も多く
必要とする。
つて得られた不安胚、又は根づいた小植物体を田
畑に移植することが示唆されている。しかしなが
ら、この技術は組織培養実験室中の熱練作業、温
室又は育苗室への移動、及び十分に順化したうえ
で田畑へ植え換えることが必要である。この方法
は伝統的な播種法に比べて価格も高く時間も多く
必要とする。
これらの難点のいくつかを克服するために、流
体播種技術が開発された。流体播種法では予じめ
発芽させた種子が使用される。この方法は例えば
デイー・グレイ（D.Gray）による“コンパリス
ン・オブ・フルーイド・ドリリング・アンド・コ
ンベンシヨナル・エスタブリツシユメント・テク
ニークス・オン・シードリング・イマージエン
ス・アンド・クロプ・ユニフオーミテイ・イン・
レタス（Comparison of Fluid Drilling and
Conventional Establishment Techniques on
Seedling Emergence and Crop Uniformity in
Lettuce）”と題するジヤーナル・オブ・ホーテイ
カルチユラル・サイエンス（J.Hort.Science）第
53巻第23乃至30頁（1978年）の報文に記載されて
いる。又、流体播種法は不安胚を田畑に直接移す
のに適することが示唆されている。文献としては
デイー・エイ・エバンス（D.A.Evance）及びダ
ブリユー・アール・シヤープ（W.R.Sharp）に
よる“アプリケーシヨン・オブ・テイシユー・カ
ルチヤー・テクノロジー・イン・ザ・アグリカル
チユラル・インダストリー（Application of
Tissue Culture Technology in the
Agricultural Industry）”と題するデイー・テイ
ー・トームズ（D.T.Tomes）ら編の“アプリケ
ーシヨン・オブ・プラント・セル・アンド・テイ
シユー・カルチヤー・ツー・アグリカルチヤー・
アンド・インダストリー”（Application of
Plant Call and Tissue Culture to Agriculture
and Industry）［コニバーシテイ・オブ・ゲル
フ・プレス（University of Guelph Press）第
212乃至213頁（1982年）］がある。しかしながら、
流体播種技術は資本集約的技術であり、機械の購
入及び農業共同体における新しい技術の発展を必
要とするが、農業共同体は歴史上かかる変化に抵
抗してきた。
体播種技術が開発された。流体播種法では予じめ
発芽させた種子が使用される。この方法は例えば
デイー・グレイ（D.Gray）による“コンパリス
ン・オブ・フルーイド・ドリリング・アンド・コ
ンベンシヨナル・エスタブリツシユメント・テク
ニークス・オン・シードリング・イマージエン
ス・アンド・クロプ・ユニフオーミテイ・イン・
レタス（Comparison of Fluid Drilling and
Conventional Establishment Techniques on
Seedling Emergence and Crop Uniformity in
Lettuce）”と題するジヤーナル・オブ・ホーテイ
カルチユラル・サイエンス（J.Hort.Science）第
53巻第23乃至30頁（1978年）の報文に記載されて
いる。又、流体播種法は不安胚を田畑に直接移す
のに適することが示唆されている。文献としては
デイー・エイ・エバンス（D.A.Evance）及びダ
ブリユー・アール・シヤープ（W.R.Sharp）に
よる“アプリケーシヨン・オブ・テイシユー・カ
ルチヤー・テクノロジー・イン・ザ・アグリカル
チユラル・インダストリー（Application of
Tissue Culture Technology in the
Agricultural Industry）”と題するデイー・テイ
ー・トームズ（D.T.Tomes）ら編の“アプリケ
ーシヨン・オブ・プラント・セル・アンド・テイ
シユー・カルチヤー・ツー・アグリカルチヤー・
アンド・インダストリー”（Application of
Plant Call and Tissue Culture to Agriculture
and Industry）［コニバーシテイ・オブ・ゲル
フ・プレス（University of Guelph Press）第
212乃至213頁（1982年）］がある。しかしながら、
流体播種技術は資本集約的技術であり、機械の購
入及び農業共同体における新しい技術の発展を必
要とするが、農業共同体は歴史上かかる変化に抵
抗してきた。
かくして、本発明の目的は培養した植物組織を
有害な条件から隔離しうる技術を提供することで
ある。
有害な条件から隔離しうる技術を提供することで
ある。
本発明の別の目的は分裂組織又は組織培養した
植物を、成熟した又は生長力旺盛な苗にするのに
要する時間を減少させることである。
植物を、成熟した又は生長力旺盛な苗にするのに
要する時間を減少させることである。
本発明のさらに別の目的は培養した植物組織の
苗化を容易にする補助剤とともに供給する手段を
提供することである。
苗化を容易にする補助剤とともに供給する手段を
提供することである。
本発明のさらに別の目的は培養した植物組織を
生育させてから田畑に植えるまでの間の手間を減
じることである。
生育させてから田畑に植えるまでの間の手間を減
じることである。
本発明のさらに別の目的は、培養した植物組織
が生育及び生長する間の特別な取扱い技術及び特
別な技術の必要性を減じること、及びかくして播
種技術の現存の方法に適合させることにより、新
しい技術の導入に対する抵抗を克服することであ
る。
が生育及び生長する間の特別な取扱い技術及び特
別な技術の必要性を減じること、及びかくして播
種技術の現存の方法に適合させることにより、新
しい技術の導入に対する抵抗を克服することであ
る。
本発明の最終的な目的は、すぐれた植物又は雑
種植物をクローン化する大規模で経済的な方法を
提供することである。
種植物をクローン化する大規模で経済的な方法を
提供することである。
本発明の開示
簡単に言えば、本発明により、発芽及び生育を
許容するゲル中に全性能の分裂組織を包封するこ
とにより植物種子の類似物が創造される。
許容するゲル中に全性能の分裂組織を包封するこ
とにより植物種子の類似物が創造される。
本発明は、植物種子が分化して完全な植物体を
創造する能力を有する分裂組織を含むという認識
に一部基づいている。この認識には、種子が植物
の生育及び生存を促進する種々の付属的な構造物
を有していることも含まれている。
創造する能力を有する分裂組織を含むという認識
に一部基づいている。この認識には、種子が植物
の生育及び生存を促進する種々の付属的な構造物
を有していることも含まれている。
本発明はまた全能性の分裂組織が多くの供給源
から分離可能であり、付属的な構造物を、包封さ
れた分裂組織中に選択的に含ませることができ、
又は改良でき得るという認識を含む。
から分離可能であり、付属的な構造物を、包封さ
れた分裂組織中に選択的に含ませることができ、
又は改良でき得るという認識を含む。
さらに、分裂組織を包封するのに使用するゲル
により種皮及び付属的な構造物の多くの有利な性
質が再構成される。ゲルは分裂組織の機械的応力
に対するクツシヨンとなることができる。ゲルは
栄養を与えるか又は生育を増大させる種々の補助
剤を受容したり保存したりし得る。ゲルは発芽抑
制物質を制御された速度で拡散させることができ
るので、予め発芽時期を選択することができる。
ゲルを強化したりゲルの透過性を変えたりするた
めに、ゲルの外部表面を処理することも可能であ
る。
により種皮及び付属的な構造物の多くの有利な性
質が再構成される。ゲルは分裂組織の機械的応力
に対するクツシヨンとなることができる。ゲルは
栄養を与えるか又は生育を増大させる種々の補助
剤を受容したり保存したりし得る。ゲルは発芽抑
制物質を制御された速度で拡散させることができ
るので、予め発芽時期を選択することができる。
ゲルを強化したりゲルの透過性を変えたりするた
めに、ゲルの外部表面を処理することも可能であ
る。
本発明の一面によれば、不定胚形成を誘導する
ことにより分裂組織が分離される。次いで、これ
らの胚は、その生育を許容するゲル中に包封され
る。
ことにより分裂組織が分離される。次いで、これ
らの胚は、その生育を許容するゲル中に包封され
る。
本発明の別の面によれば、分化して完全な植物
体を創造する能力を有する分裂組織は体細胞源か
ら分離され、不定胚形成が誘導されることなく包
封される。
体を創造する能力を有する分裂組織は体細胞源か
ら分離され、不定胚形成が誘導されることなく包
封される。
本発明の別の面によれば、分裂組織は接合体又
は生殖系列源から分離され、その生育を許容する
ゲル中に包封される。
は生殖系列源から分離され、その生育を許容する
ゲル中に包封される。
本発明は、伝統的な植付け法を用いて優れたク
ローン又はハイブリツドの田畑への供給を促進す
る植物種子の類似物を創造するのに特に有利であ
る。
ローン又はハイブリツドの田畑への供給を促進す
る植物種子の類似物を創造するのに特に有利であ
る。
本発明を実施するための最良の態様
分裂組織の選択
植物種子は、生育及び生長に適する場所に植物
の子孫を運ぶために進化した手段である。植物の
種子の本質的な要素は、分化して完全な植物体を
形成する分裂組織である。又、種子には生育する
胚に栄養を供給したり保護したりする種々の他の
付属構造物も含まれている。
の子孫を運ぶために進化した手段である。植物の
種子の本質的な要素は、分化して完全な植物体を
形成する分裂組織である。又、種子には生育する
胚に栄養を供給したり保護したりする種々の他の
付属構造物も含まれている。
培養された植物組織は、体細胞組織、接合体組
織、又は生殖系列組織を含む多くの供給源から誘
導し得る。器官を形成して再生植物体に発達する
ためには、その供給源には関係なく、組織は分裂
段階を経なければならない。
織、又は生殖系列組織を含む多くの供給源から誘
導し得る。器官を形成して再生植物体に発達する
ためには、その供給源には関係なく、組織は分裂
段階を経なければならない。
植物分裂組織は植物構造体の単位である。完全
な植物体を創造し得る分裂組織もあるし、特定の
組織のみを生ずる分裂組織もある。完全な植物体
を生ずるものは全能性があると呼ばれる。
な植物体を創造し得る分裂組織もあるし、特定の
組織のみを生ずる分裂組織もある。完全な植物体
を生ずるものは全能性があると呼ばれる。
個体発生を反復することは胚の固有の特質であ
る。この能力は分裂組織にあり、種子又は胚中の
他の組織はこの分裂組織の付属物である。
る。この能力は分裂組織にあり、種子又は胚中の
他の組織はこの分裂組織の付属物である。
通常は繁殖に関与しない組織源でも、適当な環
境下又は誘導により分裂組織を形成し得る。
境下又は誘導により分裂組織を形成し得る。
包封する不安胚を製造する第一工程として、不
定胚形成が可能な農作物の種類を選択しなければ
ならない。かかる植物種の代表的なリストは、デ
イー・テイー・トームズら編のアプリケーシヨ
ン・オブ・プラント・セル・アンド・テイシユ
ー・カルチヤー・ツー・アグリカルチヤー・アン
ド・インダストリー［ユニバーシテイ・オブ・ゲ
ルフ・プレス、第214頁（1982年）］中のデイー・
エイ・エバンス及びダブリユー・アール・シヤー
プによる“アプリケーシヨン・オブ・テイシユ
ー・カルチヤー・テクノロジー・イン・ザ・アグ
リカルチユラル・インダストリー”と題する論文
を参照するとよい。この論文を文明細書中で援用
する。さらに、実験及び技術の改善を行なうこと
により不定胚形成が可能な植物種がさらに示され
るであろう。
定胚形成が可能な農作物の種類を選択しなければ
ならない。かかる植物種の代表的なリストは、デ
イー・テイー・トームズら編のアプリケーシヨ
ン・オブ・プラント・セル・アンド・テイシユ
ー・カルチヤー・ツー・アグリカルチヤー・アン
ド・インダストリー［ユニバーシテイ・オブ・ゲ
ルフ・プレス、第214頁（1982年）］中のデイー・
エイ・エバンス及びダブリユー・アール・シヤー
プによる“アプリケーシヨン・オブ・テイシユ
ー・カルチヤー・テクノロジー・イン・ザ・アグ
リカルチユラル・インダストリー”と題する論文
を参照するとよい。この論文を文明細書中で援用
する。さらに、実験及び技術の改善を行なうこと
により不定胚形成が可能な植物種がさらに示され
るであろう。
適当な植物種が選択されたら、多くの公知の技
術のいずれかにより不定胚の調整がすすめられ
る。例えば、アルフアルフアの場合、プラント・
セル・テイシユー・アンド・オーガン・カルチヤ
ー（Plant Cell Tiss.Org.Cult.）第１巻第109乃
至121頁（1981年）のケイ・エイ・ウオーカー
（K.A.Walker）及びエス・ジエイ・サトウ（S.J.
Sato）による“モルフオジエネシス・イン・カ
ルス・テイシユー・オブ・メガイカゴ・サテイ
バ：ザ・ロール・オブ・アンモニウム・イオン・
イン・ソマテイツク・エンブリオジエネシス
（Morphogenesis in Callus Tissue of
Medicago sativa：The Role of Ammonium
Ion in Somatic Embryogenesis）”と題する論
文を参照するとよい。この論文も本明細書におい
て援用する。当業者に公知のその他の技術はエイ
チ・イー・ストリート（H.E.Street）編のユニバ
ーシテイ・オブ・カリフオルニア・プレス
（Univ.of Calif.Press）（1977年）の“プラント・
テイシユー・アンド・セル・カルチヤー（Plant
Tissue and Cell Calture）”と題する論文を参
照するとよい。
術のいずれかにより不定胚の調整がすすめられ
る。例えば、アルフアルフアの場合、プラント・
セル・テイシユー・アンド・オーガン・カルチヤ
ー（Plant Cell Tiss.Org.Cult.）第１巻第109乃
至121頁（1981年）のケイ・エイ・ウオーカー
（K.A.Walker）及びエス・ジエイ・サトウ（S.J.
Sato）による“モルフオジエネシス・イン・カ
ルス・テイシユー・オブ・メガイカゴ・サテイ
バ：ザ・ロール・オブ・アンモニウム・イオン・
イン・ソマテイツク・エンブリオジエネシス
（Morphogenesis in Callus Tissue of
Medicago sativa：The Role of Ammonium
Ion in Somatic Embryogenesis）”と題する論
文を参照するとよい。この論文も本明細書におい
て援用する。当業者に公知のその他の技術はエイ
チ・イー・ストリート（H.E.Street）編のユニバ
ーシテイ・オブ・カリフオルニア・プレス
（Univ.of Calif.Press）（1977年）の“プラント・
テイシユー・アンド・セル・カルチヤー（Plant
Tissue and Cell Calture）”と題する論文を参
照するとよい。
その他のある種の体細胞組織は、不定胚を中間
に形成することなく器官形成により苗条の形成が
開始され得る。これは、アニユアル・レビユー・
オブ・プラント・フイジオロジー（Ann.Rev.
Plant Physiol.）第25巻第135乃至166頁（1974
年）のテイー・ムラシゲ（T.Murashige）によ
る“プラント・プロパゲーシヨン・スルー・テイ
シユー・カルチヤー（Plant Propagation
Through Tissue Culture）”と題する論文を参
照するとよい。かかる植物からの組織は、予備的
な胚形成工程なしに包封することができ、それか
ら成熟植物を生育させ得る。
に形成することなく器官形成により苗条の形成が
開始され得る。これは、アニユアル・レビユー・
オブ・プラント・フイジオロジー（Ann.Rev.
Plant Physiol.）第25巻第135乃至166頁（1974
年）のテイー・ムラシゲ（T.Murashige）によ
る“プラント・プロパゲーシヨン・スルー・テイ
シユー・カルチヤー（Plant Propagation
Through Tissue Culture）”と題する論文を参
照するとよい。かかる植物からの組織は、予備的
な胚形成工程なしに包封することができ、それか
ら成熟植物を生育させ得る。
他のとり得る方法としては、例えば、不安胚形
成が不可能な植物種の場合には接合胚を使用し得
る。これらの接合胚は個体、又は液体倍地で生長
し、それを種皮及びその他の金属構造物ととも
に、又はこれらを伴なわずに、包封し得る。
成が不可能な植物種の場合には接合胚を使用し得
る。これらの接合胚は個体、又は液体倍地で生長
し、それを種皮及びその他の金属構造物ととも
に、又はこれらを伴なわずに、包封し得る。
ある種の遠縁交雑の場合には、可稔の胚が形成
されるが、胚乳が発育せず胚が死んでしまう。か
くして、かかる交配は不稔と思われるが、未熟な
胚珠から胚を分離することにより、生育し得る子
孫が得られる。接合胚はそれらの種皮から分離
し、次いで生長及び生育能力を増大させる補助剤
と共に包封し得る。これについては、例えば、テ
イー・エイ・ソープ（T.A.Thorpe）編のフロン
テイアーズ・オブ・プラント・テイシユー・カル
チヤー（Frontiers of Plant Tissue Culture）
［ザ・インターナシヨナル・アソーソエイシヨ
ン・フオア・プラント・テイシユー・カルチヤ
ー、ユニバーシテイ・オブ・カルガリー、アルバ
ータ、カナダ（The International Association
for Plant Tissue Culture，University of
Calgary，Alberta，Canada）第277乃至280頁
（1978年）］のエム・モニアー（M.Monnier）に
よる“カルチヤー・オブ・ザイゴテイツク・エン
ブリオズ（Culture of Zygotic Embryos）”と題
する論文を参照するとよい。
されるが、胚乳が発育せず胚が死んでしまう。か
くして、かかる交配は不稔と思われるが、未熟な
胚珠から胚を分離することにより、生育し得る子
孫が得られる。接合胚はそれらの種皮から分離
し、次いで生長及び生育能力を増大させる補助剤
と共に包封し得る。これについては、例えば、テ
イー・エイ・ソープ（T.A.Thorpe）編のフロン
テイアーズ・オブ・プラント・テイシユー・カル
チヤー（Frontiers of Plant Tissue Culture）
［ザ・インターナシヨナル・アソーソエイシヨ
ン・フオア・プラント・テイシユー・カルチヤ
ー、ユニバーシテイ・オブ・カルガリー、アルバ
ータ、カナダ（The International Association
for Plant Tissue Culture，University of
Calgary，Alberta，Canada）第277乃至280頁
（1978年）］のエム・モニアー（M.Monnier）に
よる“カルチヤー・オブ・ザイゴテイツク・エン
ブリオズ（Culture of Zygotic Embryos）”と題
する論文を参照するとよい。
包封用媒体
種子の発芽及び生育は、種子を種々の物質で被
覆することにより増大し得ることが認められてい
る。例えば、スーパースラーパー（Super
Slurper）［商標名：ヘンケル（Henkel）コーポ
レーシヨン］で被覆された種子は乾燥条件下にお
ける発芽率を改良する水−吸収保持体となること
が報告されている。
覆することにより増大し得ることが認められてい
る。例えば、スーパースラーパー（Super
Slurper）［商標名：ヘンケル（Henkel）コーポ
レーシヨン］で被覆された種子は乾燥条件下にお
ける発芽率を改良する水−吸収保持体となること
が報告されている。
不定胚を包封することが成就されうることも示
唆された。
唆された。
又、アール（Earle）による米国特許第3395024
号によれば、腐敗しやすい植物を複合化炭水化物
で被覆することにより保存可能であることが示さ
れた。
号によれば、腐敗しやすい植物を複合化炭水化物
で被覆することにより保存可能であることが示さ
れた。
分裂組織は、適当な包封マトリツクスを供給す
る多くの媒体（以後“ゲル”と呼ぶ）のうちいず
れかの中に封入され得る。一般に、ゲルは気体の
拡散を許容することにより分裂組織の呼吸を許さ
なければならない。ゲルは外部からの摩擦、及び
抗力（adverse forces）に耐えるのに十分強い環
境を与えなければならないが、適当な時期に胚の
生長、及び発芽を許容するのに十分柔軟でなけれ
ばならない。所望の結果を得るためには、種々の
ゲルを混合物又は層状に組合せて使用するのが望
ましい。
る多くの媒体（以後“ゲル”と呼ぶ）のうちいず
れかの中に封入され得る。一般に、ゲルは気体の
拡散を許容することにより分裂組織の呼吸を許さ
なければならない。ゲルは外部からの摩擦、及び
抗力（adverse forces）に耐えるのに十分強い環
境を与えなければならないが、適当な時期に胚の
生長、及び発芽を許容するのに十分柔軟でなけれ
ばならない。所望の結果を得るためには、種々の
ゲルを混合物又は層状に組合せて使用するのが望
ましい。
分裂組織を包封するのに有用であることが見出
されているゲルには、アルギン酸ナトリウム、グ
アーガム、カラギーナンとロウカストビーンガム
の混合物、及びアルギン酸ナトリウムとゼラチン
の混合物が含まれる。その他の適するゲルには、
以下の表のものが含まれるが、これらに限定され
るものではない。
されているゲルには、アルギン酸ナトリウム、グ
アーガム、カラギーナンとロウカストビーンガム
の混合物、及びアルギン酸ナトリウムとゼラチン
の混合物が含まれる。その他の適するゲルには、
以下の表のものが含まれるが、これらに限定され
るものではない。
第１表 ゲル剤
Ｉ 天然高分子
Ａ イオン結合（複合化剤を必要とする）
フアーセララン（Furcellaran）
ペクチン
ヒプニーン（Hypnean）
デキストラン
タマリンド
グアーガム
Ｂ 疎水性相互作用
アミロース
寒 天
アガロース
ゼラチンと寒天
ゼラチン
でんぷん
アミロペクチン
コーンハル（Cornhull）ガム
でんぷんアラボガラクタン
ガツチガム
カラガン（Karagan）ガム
センネンボク（Ti）ガム
トラガカントガム
小麦ガム
キチン
デキストリン
化学修飾した天然高分子
Ａ イオン結合（複合化剤を必要とする）
エチルサクシニル化セルロース
サクシニル化ゼイン（Zein）
Ｂ 疎水性相互作用
メチルセルロース
ヒドロキシエチルセルロース
Ｃ 共有結合
グルタルアルデヒド＋ゼラチン
合成高分子
Ａ 共有結合
ポリアクリルアミド
Ｂ 疎水性相互作用
ポリエチレングリコール
ポリビニルピロリドン
ポリオキシエチレン
親水性ウレタン
ポリ酢酸ビニル
ビニル樹脂
ヒドロン（ヒドロキシエチルメタクリレー
ト） ２−メチル−５−ビニルピリジン−メチルア
クリルート−メタクリル酸 Ｃ イオン結合 ポリ（ビニルメチルピリジニウム）クロライ
ド＋ポリ（スチレンスルホン酸）ナトリウム ポリ（ビニルベンジルトリメチルアンモニウ
ム）クロライド＋ポリ（スチレンスルホン
酸）ナトリウム 強塩基性ポリカチオン＋強酸性ポリアニオン その他 １ 商標名 スーパースラーパー（ヘンケルコーポレーシ
ヨン） ビテラ（Viterra）（ユニオンカーバイド） ラポナイト（Laponite）〔ラポルト
（Laporte）・ユナイテツド・ステーツ・イン
ク〕 ゲルライト（Gelrite）［ケルコ（Kelco）］ シーケム（Sea Kem）（FMCコーポレーシ
ヨン） シープラーク（Sea Plaque）（FMC コー
ポレーシヨン） シープレプ（Sea Prep）（FMC コーポレ
ーシヨン） アイソジエル（Iso Gel）（FMC コーポレ
ーシヨン） ２ 有機化合物 メチランクリアーウオールペーパーペースト
（Methylan Clear Wallpaper Paste） 乳 糖 ワツクス たんぱく質コロイド ３ 無機化合物 ａ 粘土 ｂ メチルセルロースのような水溶性プラス
チツクを用いて付着する化合物： フライアツシユ 長 石 セルライト（Celrite） ベントナイト バーミキユライト 珪藻土 石 灰 炭酸カルシウム 最良のゲル選択 包封するために選択するゲルは、理想的には以
下の特性を含む（もちろん他の態様でも本発明を
実施し得る）。
ト） ２−メチル−５−ビニルピリジン−メチルア
クリルート−メタクリル酸 Ｃ イオン結合 ポリ（ビニルメチルピリジニウム）クロライ
ド＋ポリ（スチレンスルホン酸）ナトリウム ポリ（ビニルベンジルトリメチルアンモニウ
ム）クロライド＋ポリ（スチレンスルホン
酸）ナトリウム 強塩基性ポリカチオン＋強酸性ポリアニオン その他 １ 商標名 スーパースラーパー（ヘンケルコーポレーシ
ヨン） ビテラ（Viterra）（ユニオンカーバイド） ラポナイト（Laponite）〔ラポルト
（Laporte）・ユナイテツド・ステーツ・イン
ク〕 ゲルライト（Gelrite）［ケルコ（Kelco）］ シーケム（Sea Kem）（FMCコーポレーシ
ヨン） シープラーク（Sea Plaque）（FMC コー
ポレーシヨン） シープレプ（Sea Prep）（FMC コーポレ
ーシヨン） アイソジエル（Iso Gel）（FMC コーポレ
ーシヨン） ２ 有機化合物 メチランクリアーウオールペーパーペースト
（Methylan Clear Wallpaper Paste） 乳 糖 ワツクス たんぱく質コロイド ３ 無機化合物 ａ 粘土 ｂ メチルセルロースのような水溶性プラス
チツクを用いて付着する化合物： フライアツシユ 長 石 セルライト（Celrite） ベントナイト バーミキユライト 珪藻土 石 灰 炭酸カルシウム 最良のゲル選択 包封するために選択するゲルは、理想的には以
下の特性を含む（もちろん他の態様でも本発明を
実施し得る）。
１ 分裂組織を保護したりクツシヨンの作用をす
る十分なコンプライアンス。
る十分なコンプライアンス。
２ 内部物質は補助剤を受容したり含んだりし得
るような溶解特性を有し、水性又は疎水性物質
に限定されない。
るような溶解特性を有し、水性又は疎水性物質
に限定されない。
３ 機械的応力に対して保護壁を提供し、取扱い
を容易にし、かつ分裂組織の生育能力を保持す
る外部表面。
を容易にし、かつ分裂組織の生育能力を保持す
る外部表面。
４ カプセルの本来の形状を保持するのに十分で
あるが、発芽中には分裂組織がカプセルを破り
外に出られることを可能にする程度のゲルの強
度。
あるが、発芽中には分裂組織がカプセルを破り
外に出られることを可能にする程度のゲルの強
度。
選択したゲルによる包封
ゲルを選択すると、前述のような特性に影響を
及ぼす多くのパラメータが存在する。
及ぼす多くのパラメータが存在する。
例えば、アルギン酸ナトリウム溶液は複合化剤
を添加するとゲルを形成する。一般には塩化カル
シウム（CaCl2）が使用されるが、塩化ランタ
ン、塩化第二鉄、塩化コバルト、硝酸カルシウム
及び水酸化カルシウムも一般に多価カチオンを有
するその他の化合物と同様に使用し得る。
を添加するとゲルを形成する。一般には塩化カル
シウム（CaCl2）が使用されるが、塩化ランタ
ン、塩化第二鉄、塩化コバルト、硝酸カルシウム
及び水酸化カルシウムも一般に多価カチオンを有
するその他の化合物と同様に使用し得る。
選択したゲルには本発明を実施するのに有用な
濃度範囲がある。濃度は処理の容易さ、ゲル化時
間、ゲルの強度及び分裂組織を囲む被膜の厚さが
最適となるように選択すべきである。ゲル濃度が
稀薄すぎる場合には、ゲルの形成中に分裂組織が
沈澱してゲル中での分裂組織の位置がかたよつて
しまう。
濃度範囲がある。濃度は処理の容易さ、ゲル化時
間、ゲルの強度及び分裂組織を囲む被膜の厚さが
最適となるように選択すべきである。ゲル濃度が
稀薄すぎる場合には、ゲルの形成中に分裂組織が
沈澱してゲル中での分裂組織の位置がかたよつて
しまう。
アルギン酸ナトリウムは、水に対して１乃至10
％Ｗ（ｇ）／Ｖ（ml）、通常２乃至10％、理想的に
は３乃至５％の濃度に調整する。
％Ｗ（ｇ）／Ｖ（ml）、通常２乃至10％、理想的に
は３乃至５％の濃度に調整する。
次いで、包封すべき分裂組織をアルギン酸ナト
リウム溶液に１乃至50個／ml、通常５乃至20個／
mlの密度で添加する。この密度は、分裂組織の大
きさが植物種、供給源、及び発達の段階に伴つて
変化するに従つて変わる。
リウム溶液に１乃至50個／ml、通常５乃至20個／
mlの密度で添加する。この密度は、分裂組織の大
きさが植物種、供給源、及び発達の段階に伴つて
変化するに従つて変わる。
次いで、ゲル溶液中に分散させた分裂組織を複
合化剤中に滴下する。あるいは、ゲル溶液と複合
化剤を数多くの公知の技術のいずれかにより混合
する。これらの中には、一方からゲル小滴を押出
し、他方からの複合化剤で小滴を被覆する振動ノ
ズルにより一工程で小滴を形成し、かつ複合化剤
を添加する方法がある。
合化剤中に滴下する。あるいは、ゲル溶液と複合
化剤を数多くの公知の技術のいずれかにより混合
する。これらの中には、一方からゲル小滴を押出
し、他方からの複合化剤で小滴を被覆する振動ノ
ズルにより一工程で小滴を形成し、かつ複合化剤
を添加する方法がある。
塩化カルシウム（又は他の複合化剤）は１乃至
1000ミリモル濃度、通常20乃至500ミリモル濃度、
理想的には50乃至100ミリモル濃度の溶液とする。
他の複合化剤の場合は好ましい濃度範囲が異なる
であろう。
1000ミリモル濃度、通常20乃至500ミリモル濃度、
理想的には50乃至100ミリモル濃度の溶液とする。
他の複合化剤の場合は好ましい濃度範囲が異なる
であろう。
ゲル形成時間、及びゲル化溶液の温度は、選択
したゲル及び複合化剤の濃度に関して相関関係の
あるパラメーターである。温度は分裂組織の損傷
を回避するように選択すべきであり、通常１乃至
50℃、特に10乃至40℃、好ましくは20乃至40℃に
すべきである。
したゲル及び複合化剤の濃度に関して相関関係の
あるパラメーターである。温度は分裂組織の損傷
を回避するように選択すべきであり、通常１乃至
50℃、特に10乃至40℃、好ましくは20乃至40℃に
すべきである。
許容される温度範囲内では、ゲルの形成が完全
であると共にゲル化時間が最も短くなるように特
定の値を選択し得る。典型的には、ゲルはただち
に形成するが、複合化はずつと長くかかる。水
100ml当り3.2ｇの濃度のアルギン酸ナトリウム溶
液、50ミリモル濃度の塩化カルシウム溶液、及び
25℃の反応温度の場合には、５乃至120分、しば
しば10乃至90分以内に十分なゲル化がおこり、通
常30乃至60分以内に完了する。
であると共にゲル化時間が最も短くなるように特
定の値を選択し得る。典型的には、ゲルはただち
に形成するが、複合化はずつと長くかかる。水
100ml当り3.2ｇの濃度のアルギン酸ナトリウム溶
液、50ミリモル濃度の塩化カルシウム溶液、及び
25℃の反応温度の場合には、５乃至120分、しば
しば10乃至90分以内に十分なゲル化がおこり、通
常30乃至60分以内に完了する。
前述のゲル特性は、各々のゲルに関して変わる
が、一般的にはゲルの濃度パラメーター及び化学
的性質により決定される。
が、一般的にはゲルの濃度パラメーター及び化学
的性質により決定される。
カプセルの強化
包封後は、数多くの公知の技術によりゲルマト
リツクスの外部表面の硬度を増大させることが望
ましい。かくして、比較的柔らかいゲルを、包封
及び適当な補助剤の包含に使用し、分裂組織の生
育能力を損うことなく外部表面において摩擦及び
浸透に対する耐性を増大させ得る。
リツクスの外部表面の硬度を増大させることが望
ましい。かくして、比較的柔らかいゲルを、包封
及び適当な補助剤の包含に使用し、分裂組織の生
育能力を損うことなく外部表面において摩擦及び
浸透に対する耐性を増大させ得る。
分裂組織を包封したゲルはある程度乾燥保存し
得る。その結果外部表面は一層硬くなる。
得る。その結果外部表面は一層硬くなる。
あるいは、選択したゲルで包封した分裂組織は
さらに硬いゲルの薄層で被覆してもよいし、市販
のゼラチンカプセル中に入れてもよい。
さらに硬いゲルの薄層で被覆してもよいし、市販
のゼラチンカプセル中に入れてもよい。
ゲル表面の耐破損性を増大させる公知の種々の
化学薬剤で処理することにより表面を硬化しても
よい。
化学薬剤で処理することにより表面を硬化しても
よい。
かかる技術には以下の表の化合物が含まれる。
第２表 カプセル被覆用化合物
コアセルベーシヨン
ゼラチン＋アラビアガム
レシチン＋（ケフアリン＋硝酸セルロース）
パラフイン油＋硝酸セルロース
界面重合
塩化セバコイル＋ヘキサンジアミン
タンニン酸
柿渋タンニン
五倍子タンニン
ポリアミノ酸
ポリオルニチン
ポリリジン
ポリシトルリン
ポリアルギニン
ポリヒスチジン
ポリアスパラギン
ポリグルタミン
ポリ−Ｌ−アミノ酸の組合せ
グルタルアミデヒド
グルタルアルデヒド＋ゼラチン
ゼラチンカプセル
ゲルカプセルの外部表面を硬化する手段を用い
る際には、分裂組織の損傷を回避すように注意し
なければならない。たとえば、グルタルアルデヒ
ドを用いてゲルマトリツクスを架橋すると表面の
強度は増大するが、グルタルアルデヒドを長時間
使用するとグルタルアルデヒドがゲルに完全に浸
透し、分裂組織を損傷してしまう。この処理時間
はゲル物質、ゲル被膜の厚さ及びゲル溶液の温度
に伴つて変化する。
る際には、分裂組織の損傷を回避すように注意し
なければならない。たとえば、グルタルアルデヒ
ドを用いてゲルマトリツクスを架橋すると表面の
強度は増大するが、グルタルアルデヒドを長時間
使用するとグルタルアルデヒドがゲルに完全に浸
透し、分裂組織を損傷してしまう。この処理時間
はゲル物質、ゲル被膜の厚さ及びゲル溶液の温度
に伴つて変化する。
前述の処理のうちある種のもの、たとえばポリ
リジンによる処理ではゲルの保水性は変化するが
破壊強度は変化しない。かくして大部分のゲル特
性は処理の適当な組合せにより所望の値に調整し
得る。
リジンによる処理ではゲルの保水性は変化するが
破壊強度は変化しない。かくして大部分のゲル特
性は処理の適当な組合せにより所望の値に調整し
得る。
その他の改変
農業的用途においては、適当な季節に収穫作業
が短時間で完了することが一般的に好ましい。そ
れ故、ゲル化工程の前又は最中に、包封された分
裂組織がほぼ同時に発芽するように分裂阻害剤又
は篩による種子の分粒のような公知の技術により
分裂組織の発芽を同調させることが望ましい。
が短時間で完了することが一般的に好ましい。そ
れ故、ゲル化工程の前又は最中に、包封された分
裂組織がほぼ同時に発芽するように分裂阻害剤又
は篩による種子の分粒のような公知の技術により
分裂組織の発芽を同調させることが望ましい。
ゲル溶液の調整の際には、ゲルの形成には干渉
しないが、発芽の制御、栄養、疾病抵抗、害虫抵
抗、窒素固定能、除草剤の能力を増大する補助
剤、又は胚発生又は器官形成を増大する化合物を
含めることが望ましく適当である。たとえば、ア
ブシジン酸又は高濃度の庶糖は発芽を抑制する。
これらの補助剤を分裂組織と共に包封すると、拡
散又は別の方法で補助剤を除去した場合のみ発芽
がおこる。
しないが、発芽の制御、栄養、疾病抵抗、害虫抵
抗、窒素固定能、除草剤の能力を増大する補助
剤、又は胚発生又は器官形成を増大する化合物を
含めることが望ましく適当である。たとえば、ア
ブシジン酸又は高濃度の庶糖は発芽を抑制する。
これらの補助剤を分裂組織と共に包封すると、拡
散又は別の方法で補助剤を除去した場合のみ発芽
がおこる。
包封後は、包封した分裂組織を貯蔵し、田畑、
温室、又は育苗室に移動し、植物種子と同様にし
て取扱うことができるのが望ましい。
温室、又は育苗室に移動し、植物種子と同様にし
て取扱うことができるのが望ましい。
順化期間なしでは周囲の気候条件に耐えられな
い植物種については、これらの包封された分裂組
織は苗床又は温室中に植えられる。一方、耐性の
ある植物種については、植物種子に関する数多く
の公知の技術により、包封された分裂組織を田畑
に直接植え付けることができる。
い植物種については、これらの包封された分裂組
織は苗床又は温室中に植えられる。一方、耐性の
ある植物種については、植物種子に関する数多く
の公知の技術により、包封された分裂組織を田畑
に直接植え付けることができる。
実施例
本発明を実例によつて示すために、種々の分裂
組織材料及びゲル媒体を用いて以下の実験を実施
した。ことわりがなければ％で示した量はすべて
100ml当りのグラム数である。
組織材料及びゲル媒体を用いて以下の実験を実施
した。ことわりがなければ％で示した量はすべて
100ml当りのグラム数である。
実施例 Ａ
（アルフアルフアの不定胚）
１ アルギン酸ナトリウムによる包封
アルフアルフア［メデイカゴ・サテイバ・エ
ル（Medicago sativa L.）］系統RA−３から
のカルスを50ミクロンモル濃度の２，４−ジク
ロロフエノキシ酢酸（２，４−Ｄ）及び５ミク
ロモル濃度のカイネチンを添加したシエンク・
アンド・ヒルデブラント（Schenk and
Hildebrandt）（SH）培地［カナデイアン・ジ
ヤーナル・オブ・ボタニー（Can.J.Bot.）第50
巻第199乃至204頁（1972年）］３〜４日置床す
ることにより不定胚形成を誘導した。次いで組
織を２，４−Ｄ及びカイネチンの存在しない
SH再分化培地に移した。この方法は、アメリ
カン・ジヤーナル・オブ・ボタニー（Am.J.
Bo.）第65巻第654乃至659頁（1978年）のケ
イ・エイ・ウオーカー（K.A.Walker）らによ
る“ザ・ホーモナル・コントロール・オブ・オ
ーガン・フオーメイシヨン・イン・カルス・オ
ブ・メデイカゴ・サテイバ・エル・カルチヤー
ド・イン・ヒドロ（The Hormonal Control
of Organ Formatin in Callus of Medicago
sativa L.Cultured in Vitro）”と題する論文、
プラント・サイエンス・レターズ（Plant Sci.
Lett.）第16巻第23乃至30頁（1979年）のケ
イ・エイ・ウオーカーらによる“オーガノジエ
ネシス・イン・カルス・テイシユー・オブ・メ
デイカゴ・サテイバ、ザ・テンポラル・セパレ
ーシヨン・オブ・インダクシヨン・プロセス・
フロム・デイフアレンシエイシヨン・プロセシ
ズ（Organogenesis in Callus Tissue of
Medicago sativa，The Temporal
Separation of Induction Process from
Differentiation Processes）”と題する論文、
及びケイ・エイ・ウオーカー及びエス・ジエ
イ・サトウによる前述の引用文献（1981年）に
詳細に説明されている。これらの文献を本明細
書において援用する。
ル（Medicago sativa L.）］系統RA−３から
のカルスを50ミクロンモル濃度の２，４−ジク
ロロフエノキシ酢酸（２，４−Ｄ）及び５ミク
ロモル濃度のカイネチンを添加したシエンク・
アンド・ヒルデブラント（Schenk and
Hildebrandt）（SH）培地［カナデイアン・ジ
ヤーナル・オブ・ボタニー（Can.J.Bot.）第50
巻第199乃至204頁（1972年）］３〜４日置床す
ることにより不定胚形成を誘導した。次いで組
織を２，４−Ｄ及びカイネチンの存在しない
SH再分化培地に移した。この方法は、アメリ
カン・ジヤーナル・オブ・ボタニー（Am.J.
Bo.）第65巻第654乃至659頁（1978年）のケ
イ・エイ・ウオーカー（K.A.Walker）らによ
る“ザ・ホーモナル・コントロール・オブ・オ
ーガン・フオーメイシヨン・イン・カルス・オ
ブ・メデイカゴ・サテイバ・エル・カルチヤー
ド・イン・ヒドロ（The Hormonal Control
of Organ Formatin in Callus of Medicago
sativa L.Cultured in Vitro）”と題する論文、
プラント・サイエンス・レターズ（Plant Sci.
Lett.）第16巻第23乃至30頁（1979年）のケ
イ・エイ・ウオーカーらによる“オーガノジエ
ネシス・イン・カルス・テイシユー・オブ・メ
デイカゴ・サテイバ、ザ・テンポラル・セパレ
ーシヨン・オブ・インダクシヨン・プロセス・
フロム・デイフアレンシエイシヨン・プロセシ
ズ（Organogenesis in Callus Tissue of
Medicago sativa，The Temporal
Separation of Induction Process from
Differentiation Processes）”と題する論文、
及びケイ・エイ・ウオーカー及びエス・ジエ
イ・サトウによる前述の引用文献（1981年）に
詳細に説明されている。これらの文献を本明細
書において援用する。
不定胚は１乃至３週間で形成される。この時
に、培養された不定胚は同調化されるか又は同
調化せず直接包封される。
に、培養された不定胚は同調化されるか又は同
調化せず直接包封される。
不定胚を25℃において無菌の3.2％のアルギ
ン酸ナトリウム１ml当り10個の密度に調整し
た。混合物を撹拌してスラリーとし、次いでこ
れを25℃において50ミリモル濃度の塩化カルシ
ウム500ml中に、先端を殺菌した５mlのピペツ
トマンピペツトを用いて滴下した。かかる濃度
においてはカプセルがただちに形成されるが、
完全に複合化するには30乃至60分かかる。この
時塩化カルシウム溶液を注ぎ出し、SH液体培
地中でカプセルを２回洗浄した。この技術を用
いれば、カプセルの50％が胚を含む。次いで発
芽を促進するためにカプセルを室中のSH培地
上で１日当り16時間照明下で培養した。
ン酸ナトリウム１ml当り10個の密度に調整し
た。混合物を撹拌してスラリーとし、次いでこ
れを25℃において50ミリモル濃度の塩化カルシ
ウム500ml中に、先端を殺菌した５mlのピペツ
トマンピペツトを用いて滴下した。かかる濃度
においてはカプセルがただちに形成されるが、
完全に複合化するには30乃至60分かかる。この
時塩化カルシウム溶液を注ぎ出し、SH液体培
地中でカプセルを２回洗浄した。この技術を用
いれば、カプセルの50％が胚を含む。次いで発
芽を促進するためにカプセルを室中のSH培地
上で１日当り16時間照明下で培養した。
前述の手順を用いると、発芽率は56乃至70％
であつた。次いでこれらの植物のうち一部は温
度条件下で培養した。
であつた。次いでこれらの植物のうち一部は温
度条件下で培養した。
1.a 他の複合化剤として８乃至80ミリモル濃度
の塩化第二鉄（FeCl3）をA.1.の手順におい
て塩化カルシウムと置き換えうる。
の塩化第二鉄（FeCl3）をA.1.の手順におい
て塩化カルシウムと置き換えうる。
1.b 他の複合化剤として10乃至100ミリモル濃度
の塩化ランタンをA.1の手順において塩化カ
ルシウムと置き換えうる。
の塩化ランタンをA.1の手順において塩化カ
ルシウムと置き換えうる。
1.c 他の発芽方法として、包封した不定胚を直
接ピートプラグ［水及び泥炭と結合したイ
ソシアナート及びポリアルコールプレポリ
マー。キヤツスル・アンド・クツク・テク
ニカルチヤー・インク（Castle＆Cook
Techniculture，Inc.）から入手しうる］
に挿入しうる。
接ピートプラグ［水及び泥炭と結合したイ
ソシアナート及びポリアルコールプレポリ
マー。キヤツスル・アンド・クツク・テク
ニカルチヤー・インク（Castle＆Cook
Techniculture，Inc.）から入手しうる］
に挿入しうる。
２ アルギン酸ナトリウム＋ゼラチンによる包封
3.2％のアルギン酸ナトリウムを２％のアル
ギン酸ナトリウムと５％のゼラチンとの混合物
で置き換えて、実験手順A.1を繰り返し、同様
の結果を得た。
ギン酸ナトリウムと５％のゼラチンとの混合物
で置き換えて、実験手順A.1を繰り返し、同様
の結果を得た。
３ カラギーナン＋ロウカストビーンガムによる
包封 アルギン酸ナトリウムの代わりに0.25乃至
0.8％のカラギーナンと0.4乃至1.0％のロウカス
トビーンガムとの混合物を用い、塩化カルシウ
ムの代わりに50乃至500ミリモル濃度の塩化ア
ンモニウム（NH4Cl）を用いて実験手順A.1を
繰返し、同様の結果を得た。
包封 アルギン酸ナトリウムの代わりに0.25乃至
0.8％のカラギーナンと0.4乃至1.0％のロウカス
トビーンガムとの混合物を用い、塩化カルシウ
ムの代わりに50乃至500ミリモル濃度の塩化ア
ンモニウム（NH4Cl）を用いて実験手順A.1を
繰返し、同様の結果を得た。
3.a 他の方法として、100乃至500ミリモル濃度
の塩化カリウム（KCl）を塩化アンモニウム
と置き換えうる。
の塩化カリウム（KCl）を塩化アンモニウム
と置き換えうる。
４ グアーガムによる包封
アルギン酸ナトリウムを２％のグアーガムで
置き換え、塩化カルシウムを10乃至120ミリモ
ル濃度の四硼酸ナトリウムで置き換えて実験手
順A.1を繰返し、同様の結果を得た。
置き換え、塩化カルシウムを10乃至120ミリモ
ル濃度の四硼酸ナトリウムで置き換えて実験手
順A.1を繰返し、同様の結果を得た。
実施例 Ｂ
（セロリの不定胚）
0.5乃至25ミクロモル濃度の２，４−Ｄと３ミ
クロモル濃度のカイネチンを含むSH培地上で播
種後２週間のセロリ［アピウム・グラベオレン
ス・エル（Apium graveolens L.）系統ユタ
ー・トール（Utah Tall）5270、5275、カルマリ
オ（Calmario）、及びゴールデン・セルフ・ブラ
ンチング（Golden Self Branching）］の子葉及
び胚軸からカルスを誘導した。25ミリモル濃度の
硝酸アンモニウムを含むSH培地に移したあと１
乃至３ケ月で不定胚が形成された。ついで取順
A.1のようにして不定胚を包封した。包封された
不定胚は25ミクロモル濃度のジベレリン酸（GA
３）及び0.25ミクロモル濃度のナフタレン酢酸
（NAA）を含むSH培地（1/2の強度）上で発芽
し、植物体が得られた。
クロモル濃度のカイネチンを含むSH培地上で播
種後２週間のセロリ［アピウム・グラベオレン
ス・エル（Apium graveolens L.）系統ユタ
ー・トール（Utah Tall）5270、5275、カルマリ
オ（Calmario）、及びゴールデン・セルフ・ブラ
ンチング（Golden Self Branching）］の子葉及
び胚軸からカルスを誘導した。25ミリモル濃度の
硝酸アンモニウムを含むSH培地に移したあと１
乃至３ケ月で不定胚が形成された。ついで取順
A.1のようにして不定胚を包封した。包封された
不定胚は25ミクロモル濃度のジベレリン酸（GA
３）及び0.25ミクロモル濃度のナフタレン酢酸
（NAA）を含むSH培地（1/2の強度）上で発芽
し、植物体が得られた。
実施例 Ｃ
［ブラシカ・オレラシア・エル（Brassica
oleracea L.）］ １ 不定胚（器官形成苗条） カリフラワー種子（ブラシカ・オレラシア・
エル、系統Monarch73M）を無菌条件下の寒
天培地上で発芽させた。カルスを誘導するため
発芽後８日目に胚軸部分を１ミクロモル濃度の
ｐ−クロロフエノキシ酢酸（pCPA）と10ミク
ロモル濃度のカイネチンを含むSH培地上に置
床した。３乃至４週間後に、10ミクロモル濃度
のインドール酢酸（IAA）と３ミクロモル濃
度のカイネチンを含むSH培地上にカルスを移
すと分裂組織が形成された。その分裂組織のい
くつかは不定芽を形成した。その不定芽を手順
A.1.に記載したように包封し、20ミリモル濃度
の硝酸アンモニウムと３％ｗ／ｖの蔗糖を含む
SH培地上に置いた。カプセルから苗条が出芽
し、根が形成されて完全な植物体が得られた。
oleracea L.）］ １ 不定胚（器官形成苗条） カリフラワー種子（ブラシカ・オレラシア・
エル、系統Monarch73M）を無菌条件下の寒
天培地上で発芽させた。カルスを誘導するため
発芽後８日目に胚軸部分を１ミクロモル濃度の
ｐ−クロロフエノキシ酢酸（pCPA）と10ミク
ロモル濃度のカイネチンを含むSH培地上に置
床した。３乃至４週間後に、10ミクロモル濃度
のインドール酢酸（IAA）と３ミクロモル濃
度のカイネチンを含むSH培地上にカルスを移
すと分裂組織が形成された。その分裂組織のい
くつかは不定芽を形成した。その不定芽を手順
A.1.に記載したように包封し、20ミリモル濃度
の硝酸アンモニウムと３％ｗ／ｖの蔗糖を含む
SH培地上に置いた。カプセルから苗条が出芽
し、根が形成されて完全な植物体が得られた。
２ 不定胚
C.lにおいて不定芽に関して記載した方法と
同様にして、カルスからの分裂組織から明白な
幼根と明白な頂端を有する不定胚を得た。これ
らの胚を手順A.1.のようにして包封し、植物体
を得た。
同様にして、カルスからの分裂組織から明白な
幼根と明白な頂端を有する不定胚を得た。これ
らの胚を手順A.1.のようにして包封し、植物体
を得た。
実施例 Ｄ
（レタス）
１ 不定芽（器官形成苗条）
レタス品種［ラクトウカ・サテイバ・エル
（Lactuca sativa L.）品種Arctic King］を寒
天培地上で発芽させた。カルスを得るために
0.5ミリモル濃度のNAA、2.5ミクロモル濃度
のカイネチン、及び10ミリモル濃度の硝酸アン
モニウムを含むSH培地上に胚軸部分を置床し
た。継代培養後、カルスから組織が分化誘導さ
れ不定芽が得られた。これらの不定芽を手順
A.1.のようにして包封した。0.5ミクロモル濃
度のNAA及び2.5ミクロモル濃度のカイネチン
を含むSH培地上にカプセルを置くと、苗条が
出芽し、根が形成されて、完全な植物体が得ら
れた。
（Lactuca sativa L.）品種Arctic King］を寒
天培地上で発芽させた。カルスを得るために
0.5ミリモル濃度のNAA、2.5ミクロモル濃度
のカイネチン、及び10ミリモル濃度の硝酸アン
モニウムを含むSH培地上に胚軸部分を置床し
た。継代培養後、カルスから組織が分化誘導さ
れ不定芽が得られた。これらの不定芽を手順
A.1.のようにして包封した。0.5ミクロモル濃
度のNAA及び2.5ミクロモル濃度のカイネチン
を含むSH培地上にカプセルを置くと、苗条が
出芽し、根が形成されて、完全な植物体が得ら
れた。
２ レタスの不定胚
D.1において不定芽に関して記載した方法と
同様にして、カルスからの分裂組織から明白な
幼根と明白な頂端を有する不定胚を得た。これ
らの胚を手順A.1と同様に包封し、植物体を得
た。
同様にして、カルスからの分裂組織から明白な
幼根と明白な頂端を有する不定胚を得た。これ
らの胚を手順A.1と同様に包封し、植物体を得
た。
実施例 Ｅ
［ホルトソウ植物の不定芽（器官形成苗条）］
葉の葉肉プロトプラストをホルトソウ、ユーホ
ルビア・ラチリス・エル（Euphorbia lathyris
L.）から分離し、公知の技術に従つてカルスを得
た。イノシトール（100mg／）、燐酸ナトリウム
（170mg／）、ニコチン酸（１mg／）、ピリドキ
シン・HCl（１mg／）、チアミン・HCl（10mg／
）及び蔗糖（20000mg／）、及び0.4ナノモル
濃度のピクロラム（picloram）及び20ミクロモ
ル濃度の６−（γ、γ−ジメチルアリルアミノ）−
プリンを含むムラシゲ・アンド・スクーグ
（Murashige and Skoog）培地［Physiol.Plant.
第15巻第473乃至497頁（1962年）の“ア・リバイ
ズド・ミーデイアム・フオア・ラピツド・グロウ
ス・アンド・バイオアセイズ・ウイズ・トバコ・
テイシユー・カルチヤーズ（Ａ Revised
Medium for Rapid Growth and Bioassays
with Tobacco Tissue Cultures）”という論文
参照］上にカルスを置くことにより不定芽が得ら
れた。
ルビア・ラチリス・エル（Euphorbia lathyris
L.）から分離し、公知の技術に従つてカルスを得
た。イノシトール（100mg／）、燐酸ナトリウム
（170mg／）、ニコチン酸（１mg／）、ピリドキ
シン・HCl（１mg／）、チアミン・HCl（10mg／
）及び蔗糖（20000mg／）、及び0.4ナノモル
濃度のピクロラム（picloram）及び20ミクロモ
ル濃度の６−（γ、γ−ジメチルアリルアミノ）−
プリンを含むムラシゲ・アンド・スクーグ
（Murashige and Skoog）培地［Physiol.Plant.
第15巻第473乃至497頁（1962年）の“ア・リバイ
ズド・ミーデイアム・フオア・ラピツド・グロウ
ス・アンド・バイオアセイズ・ウイズ・トバコ・
テイシユー・カルチヤーズ（Ａ Revised
Medium for Rapid Growth and Bioassays
with Tobacco Tissue Cultures）”という論文
参照］上にカルスを置くことにより不定芽が得ら
れた。
その不定芽を手順A.1に記載したようにして包
封した。
封した。
実施例 Ｆ
（野生のカラシナの接合胚）
受粉後２乃至４週間の野生のブラシカ・キヤン
ペストリス・エル（Brassica campestris L.）か
らさく果を採取した。さく果の中に含まれる胚珠
から接合胚を取出し、手順A.1のようにして包封
した、適当な培地［前述のエム・モニールの文献
（1978年）参照］上に置くと胚が発芽した。胚を
12％の蔗糖を含むゲルで包封し、12％（ｗ／ｖ）
の蔗糖を含む培地上に置くと少なくとも１ケ月発
芽が抑制された。包封された胚を２％（ｗ／ｖ）
の蔗糖を含む培地上に置くことにより胚芽の抑制
が解除され、植物に得られた。アブシジン酸
（10-3M）もまた発芽の抑制及び制御に使用され
た。
ペストリス・エル（Brassica campestris L.）か
らさく果を採取した。さく果の中に含まれる胚珠
から接合胚を取出し、手順A.1のようにして包封
した、適当な培地［前述のエム・モニールの文献
（1978年）参照］上に置くと胚が発芽した。胚を
12％の蔗糖を含むゲルで包封し、12％（ｗ／ｖ）
の蔗糖を含む培地上に置くと少なくとも１ケ月発
芽が抑制された。包封された胚を２％（ｗ／ｖ）
の蔗糖を含む培地上に置くことにより胚芽の抑制
が解除され、植物に得られた。アブシジン酸
（10-3M）もまた発芽の抑制及び制御に使用され
た。
実施例 Ｇ
（ブラシカ・オレラシア・エル接合胚芽）
ブラシカ・オレラシア・エル（品種PHW、
Ccc−１）の花から接合胚を取出し、手順A.1の
ようにして包封した。２％（ｗ／ｖ）の蔗糖を含
む培地上で植物体が得られた。
Ccc−１）の花から接合胚を取出し、手順A.1の
ようにして包封した。２％（ｗ／ｖ）の蔗糖を含
む培地上で植物体が得られた。
実施例 Ｈ
（硬い外部被膜）
１ ブラシカ・キヤンペストリス・エルの接合胚
を手順Ｆのようにして包封した。カプセルを一
週間硫酸の溶液上で乾燥させた。そうすると胚
のまわりのアルギン酸塩が乾燥し、破壊強度は
60Kg／cm2より大きくなった（胚を包封したての
カプセルの破壊強度は７乃至15Kg／cm2であつ
た）。乾燥したカプセルを２（ｗ／ｖ）の蔗糖を
含む培地上に置いた（手順Ｆを参照）。胚は発
芽し、植物体が得られた。
を手順Ｆのようにして包封した。カプセルを一
週間硫酸の溶液上で乾燥させた。そうすると胚
のまわりのアルギン酸塩が乾燥し、破壊強度は
60Kg／cm2より大きくなった（胚を包封したての
カプセルの破壊強度は７乃至15Kg／cm2であつ
た）。乾燥したカプセルを２（ｗ／ｖ）の蔗糖を
含む培地上に置いた（手順Ｆを参照）。胚は発
芽し、植物体が得られた。
２ アルフアルフアの不定胚を手順A.1のように
して包封した。特定の孔寸法を有する外部被膜
を得るためカプセルを１時間ポリ−Ｌ−アミノ
酸で被覆した。使用したポリアミノ酸は、ポリ
−Ｌ−リジン（分子量4000、60000、及び
150000）及びポリ−Ｌ−プロリン（分子量
30000）であり、各分子量のものとも0.1％ｗ／
ｖ及び0.02％ｗ／ｖであつた。発芽率は44％で
あつた。
して包封した。特定の孔寸法を有する外部被膜
を得るためカプセルを１時間ポリ−Ｌ−アミノ
酸で被覆した。使用したポリアミノ酸は、ポリ
−Ｌ−リジン（分子量4000、60000、及び
150000）及びポリ−Ｌ−プロリン（分子量
30000）であり、各分子量のものとも0.1％ｗ／
ｖ及び0.02％ｗ／ｖであつた。発芽率は44％で
あつた。
前述の発明は、明瞭に理解するために例により
詳細に記載したが、本発明の範囲内で種々の変更
を実施しうることは当業者には明らかであろう。
詳細に記載したが、本発明の範囲内で種々の変更
を実施しうることは当業者には明らかであろう。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 １ 天然の植物種子の類似物を製造する方法にし
て、 分化して完全な植物体を創造できる能力を有す
る分裂組織を、その生育を許容するゲル中に包封
して包封体を得ることを包含する方法。 ２ 特許請求の範囲第１項記載の方法において、
前記分裂組織が体細胞組織である方法。 ３ 特許請求の範囲第２項記載の方法において、
前記体細胞組織が不定胚である方法。 ４ 特許請求の範囲第２項記載の方法において、
前記体細胞組織がメデイカゴ・サテイバ・エル、
アピウム・グラベオレンス・エル、ブラシカ・オ
レラシア・エル及びラクトウカ・サテイバ・エル
から成る群から選択された植物から分離されたも
のである方法。 ５ 特許請求の範囲第１項記載の方法において、
前記分裂組織が接合体組織である方法。 ６ 特許請求の範囲第１項記載の方法において、
前記分裂組織が生殖系列組織である方法。 ７ 特許請求の範囲第１項記載の方法において、
前記分裂組織が苗条を形成する分裂組織である方
法。 ８ 特許請求の範囲第１項記載の方法において、
前記ゲルが２種以上の異なるゲル剤を包含する方
法。 ９ 特許請求の範囲第１項記載の方法において、
前記ゲルがアルギン酸ナトリウム、グアーガム、
カラギーナンとロウカストビーンガムの混合物、
及びアルギン酸ナトリウムとゼラチンの混合物か
ら成る群から選択されたものである方法。 １０ 天然の植物種子の類似物を製造する方法に
して、 分化して完全な植物体を創造できる能力を有す
る分裂組織を、その生育を許容し、かつ生物に影
響する濃度の生物学上活性な補助剤を含有するゲ
ル中に包封して包封体を得ることを包含する方
法。 １１ 天然の植物種子の類似物を製造する方法に
して、 分化して完全な植物体を創造できる能力を有す
る分裂組織を、その生育を許容するゲル中に包封
して包封体を得、 さらに前記包封体の外部表面を変性処理するこ
とを包含する方法。 １２ 完全な植物体に分化する能力を有する分裂
組織が、その生育を許容するゲルに包封されて包
封体となつている天然の植物種子の類似物。 １３ 特許請求の範囲第１２項記載の類似物にお
いて、前記分裂組織が体細胞組織、接合体組織及
び生殖系列組織から成る群から選択された組織で
ある類似物。 １４ 特許請求の範囲第１２項記載の類似物にお
いて、前記ゲルが２種以上の異なるゲル剤を包含
する類似物。 １５ 特許請求の範囲第１２項記載の類似物にお
いて、前記ゲルがアルギン酸ナトリウム、グアー
ガム、カラギーナンとロウカストビーンガムの混
合物、及びアルギン酸ナトリウムとゼラチンの混
合物から成る群から選択されたものである類似
物。 １６ 完全な植物体に分化する能力を有する分裂
組織が、その生育を許容し、かつ生物に影響する
濃度の生物学上活性な補助剤を含有するゲル中に
包封されて包封体となつている天然の植物種子の
類似物。 １７ 完全な植物体に分化する能力を有する分裂
組織がその生育を許容するゲル中に包封されてい
る包封体であり、さらに前記包封体の外部表面が
変性処理されている天然の植物種子の類似物。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US06/433,688 US4562663A (en) | 1982-10-12 | 1982-10-12 | Analogs of botanic seed |
| US433688 | 1982-10-12 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS59102308A JPS59102308A (ja) | 1984-06-13 |
| JPH0480652B2 true JPH0480652B2 (ja) | 1992-12-21 |
Family
ID=23721167
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP58189802A Granted JPS59102308A (ja) | 1982-10-12 | 1983-10-11 | 植物種子の類似物及び前記類似物を製造する方法 |
Country Status (7)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4562663A (ja) |
| EP (1) | EP0107141B2 (ja) |
| JP (1) | JPS59102308A (ja) |
| AT (1) | ATE32487T1 (ja) |
| AU (1) | AU558835B2 (ja) |
| CA (1) | CA1223443A (ja) |
| DE (1) | DE3375684D1 (ja) |
Families Citing this family (66)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| NL8101680A (nl) * | 1981-04-03 | 1982-11-01 | Royal Sluis Koninkl Zaaizaadbe | Werkwijze voor het in verzaaibare en gedurende enige tijd houdbare vorm brengen van voorgekiemd zaad. |
| US4583320A (en) * | 1982-10-12 | 1986-04-22 | Plant Genetics, Inc. | Delivery system for meristematic tissue |
| CS244812B2 (en) * | 1983-04-29 | 1986-08-14 | Ciba Geigy | Production method of propiferating plant cell agglomerates |
| US4779376A (en) * | 1983-10-25 | 1988-10-25 | Plant Genetics, Inc. | Delivery system for seeds |
| US4780987A (en) * | 1983-10-25 | 1988-11-01 | Plant Genetics, Inc. | Method for the preparation of hydrated, pregerminated seeds in gel capsules |
| JPS6140708A (ja) * | 1984-07-31 | 1986-02-27 | ライオン株式会社 | 人工種子 |
| US4615141A (en) * | 1984-08-14 | 1986-10-07 | Purdue Research Foundation | Process for encapsulating asexual plant embryos |
| JPS61227717A (ja) * | 1985-04-03 | 1986-10-09 | 松下電器産業株式会社 | 雑種第１代植物の製造方法 |
| US4612725A (en) * | 1985-06-03 | 1986-09-23 | Plant Research Laboratories | Method for acclimatizing and propagating plant tissue culture shoots |
| US4777762A (en) * | 1986-01-07 | 1988-10-18 | Plant Genetics, Inc. | Desiccated analogs of botanic seed |
| US4812159A (en) * | 1986-03-31 | 1989-03-14 | Freepons Donald E | Plant growth regulators derived from chitin |
| US4964894A (en) * | 1986-03-31 | 1990-10-23 | Freepons Donald E | Plant growth regulators derived from chitin |
| JPH07110182B2 (ja) * | 1986-11-26 | 1995-11-29 | ぺんてる株式会社 | 菌根菌の菌根形成法 |
| US4753035A (en) * | 1987-02-04 | 1988-06-28 | Dow Corning Corporation | Crosslinked silicone coatings for botanical seeds |
| US5171683A (en) * | 1987-03-04 | 1992-12-15 | Agristar, Inc. | Integument and method for micropropagation and tissue culturing |
| US4908315A (en) * | 1987-03-04 | 1990-03-13 | Agristar, Inc. | Integument and method for micropropagation and tissue culturing |
| WO1989005575A1 (en) * | 1987-12-18 | 1989-06-29 | University Of Florida | Quiescent plant somatic embryos and method for their production |
| JP2553147B2 (ja) * | 1988-05-02 | 1996-11-13 | 麒麟麦酒株式会社 | 糖類の徐放性粒子、その製造法および利用 |
| DE68916407T2 (de) * | 1988-07-27 | 1995-02-16 | Tadashi Matsunaga | Zuchtverfahren für pflanzliche gewebe. |
| US5300128A (en) * | 1988-07-27 | 1994-04-05 | Pentel Kabushiki Kaisha | Method of plant tissue culture |
| US5217892A (en) * | 1988-07-27 | 1993-06-08 | Pentel Kabushiki Kaisha | Method of plant tissue culture |
| US4880646A (en) * | 1988-11-29 | 1989-11-14 | Southwest Research Institute | Encapsulated corn kernels and method of forming the same |
| US5132125A (en) * | 1988-11-29 | 1992-07-21 | Southwest Research Institute | Encapsulated corn kernels and method of forming the same |
| US5113619A (en) * | 1989-01-30 | 1992-05-19 | Leps Walter T | Method of adhering bacteria to seed and composition therefor |
| JPH03218303A (ja) * | 1989-09-26 | 1991-09-25 | Kirin Brewery Co Ltd | 改良アルギン酸塩ゲルビーズ |
| US5127186A (en) * | 1990-07-02 | 1992-07-07 | Advanced Biotechnology, Inc. | Encapsulated earthworm cocoons |
| US5236469A (en) * | 1990-10-26 | 1993-08-17 | Weyerhaeuser Company | Oxygenated analogs of botanic seed |
| US5427593A (en) * | 1990-10-26 | 1995-06-27 | Weyerhaeuser Company | Analogs of botanic seed |
| EP0605721A4 (en) * | 1991-08-20 | 1994-08-10 | Kirin Brewery | Self-dehiscent artificial seed. |
| ATE202261T1 (de) | 1991-12-19 | 2001-07-15 | Univ Saskatchewan | Desikkation von gymnosperm somatischen embryonen |
| US6340594B1 (en) | 1991-12-19 | 2002-01-22 | Cellfor, Inc. | Production of desiccation-tolerant gymnosperm embryos |
| NZ255823A (en) * | 1992-04-08 | 1996-08-27 | Weyerhaeuser Co | Method of orienting plant embryos such that a specified end is always oriented in a specific direction; separation of conifer somatic embryos |
| CA2180826A1 (en) | 1994-01-13 | 1995-07-20 | Richard J. Ii Stoner | Organic disease control system |
| CA2150489C (en) * | 1994-06-10 | 2000-12-12 | Takeo Tsujimoto | Method of improving seed germination |
| US5572827A (en) * | 1995-05-05 | 1996-11-12 | Ball Horticultural Company | Method for applying hydrogel coatings to embryonic plants |
| DE19631320A1 (de) * | 1996-08-02 | 1998-02-05 | Bayer Ag | In Hydrogelen eingebettetes biologisches Material, ein Verfahren zu dessen Einbettung sowie dessen Verwendung als künstliches Saatgut |
| US5737872A (en) * | 1996-08-07 | 1998-04-14 | National Research Council Of Canada | Formulation for synthetic seed |
| US6119395A (en) | 1997-02-03 | 2000-09-19 | Weyerhaeuser Company | End seals for manufacturing seed |
| US7229828B2 (en) | 1997-02-21 | 2007-06-12 | Layla Zakaria Abdelrahman | Sugar cane production |
| US6521452B1 (en) * | 1997-02-21 | 2003-02-18 | Layla Zakaria Abdelrahman | Sugar cane production |
| DE19741648A1 (de) * | 1997-09-22 | 1999-03-25 | Bayer Ag | Verfahren zur Umhüllung von Pflanzenmaterial mit biologisch abbaubaren Polyurethan-Kunststoffen sowie dessen Verwendung als künstliches Saatgut |
| EP1036492A1 (en) * | 1999-03-13 | 2000-09-20 | Aventis Research & Technologies GmbH & Co. KG | Seed treatment composition |
| US6230438B1 (en) | 1999-09-20 | 2001-05-15 | Grow Tec Inc. | Water insoluble, freeze sensitive seed coatings |
| JP4476442B2 (ja) * | 2000-06-20 | 2010-06-09 | アグリテクノ矢崎株式会社 | トルコギキョウのロゼット化による発育不良防止方法 |
| WO2002045513A2 (en) * | 2000-12-04 | 2002-06-13 | Wisconsin Alumni Research Foundation | Bacterial inoculants for enhancing plant growth |
| EP1247436A1 (en) * | 2001-04-02 | 2002-10-09 | Incotec International B.V. | Polymeric coatings for seeds or embryos |
| KR100814625B1 (ko) * | 2001-06-28 | 2008-03-18 | 모리시타 진탄 가부시키가이샤 | 살아 있는 세포 또는 조직을 포함하는 캡슐 |
| US7168205B2 (en) | 2001-12-05 | 2007-01-30 | Weyerhaeuser Co. | Seed coat for manufactured seeds |
| US7228658B2 (en) * | 2003-08-27 | 2007-06-12 | Weyerhaeuser Company | Method of attaching an end seal to manufactured seeds |
| CA2484533C (en) * | 2003-11-25 | 2008-12-02 | Weyerhaeuser Company | Systems and method of embryo delivery for manufactured seeds |
| US20050108929A1 (en) * | 2003-11-25 | 2005-05-26 | Edwin Hirahara | Method and system for creating manufactured seeds |
| US7555865B2 (en) * | 2003-11-25 | 2009-07-07 | Weyerhaeuser Nr Company | Method and system of manufacturing artificial seed coats |
| CA2486289C (en) * | 2003-11-25 | 2008-01-08 | Weyerhaeuser Company | Combination end seal and restraint |
| US20050108935A1 (en) * | 2003-11-25 | 2005-05-26 | Edwin Hirahara | Method and system of manufacturing artificial seed coats |
| CA2486311C (en) | 2003-11-26 | 2008-08-12 | Weyerhaeuser Company | Vacuum pick-up device with mechanically assisted release |
| US7795029B2 (en) * | 2003-12-04 | 2010-09-14 | Cellfor Inc. | Method of ex vitro sowing, germination, growth and conversion of plant somatic embryos or germinants |
| US7356965B2 (en) * | 2003-12-11 | 2008-04-15 | Weyerhaeuser Co. | Multi-embryo manufactured seed |
| US7591287B2 (en) * | 2003-12-18 | 2009-09-22 | Weyerhaeuser Nr Company | System and method for filling a seedcoat with a liquid to a selected level |
| US7568309B2 (en) * | 2004-06-30 | 2009-08-04 | Weyerhaeuser Nr Company | Method and system for producing manufactured seeds |
| CA2518166C (en) * | 2004-09-27 | 2012-02-21 | Weyerhaeuser Company | Manufactured seed having a live end seal |
| CA2518279A1 (en) * | 2004-09-27 | 2006-03-27 | Weyerhaeuser Company | Manufactured seed having a live end seal coating |
| US7547488B2 (en) * | 2004-12-15 | 2009-06-16 | Weyerhaeuser Nr Company | Oriented strand board panel having improved strand alignment and a method for making the same |
| WO2006094400A1 (en) * | 2005-03-10 | 2006-09-14 | Cellfor Inc. | Aerated liquid priming of conifer somatic germinants |
| US7654037B2 (en) * | 2005-06-30 | 2010-02-02 | Weyerhaeuser Nr Company | Method to improve plant somatic embryo germination from manufactured seed |
| AU2013203273B2 (en) * | 2012-06-01 | 2015-09-17 | Agriculture Victoria Services Pty Ltd | Method for large scale generation of symbiota |
| DE102023109524A1 (de) | 2023-04-16 | 2024-10-17 | Lite+Fog GmbH | Vertikale Pflanzsäule, zugehöriges aeroponisches Pflanzenanbausystem und Verfahren zum Aufbringen oder Verankern von Hydrogel |
Family Cites Families (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3545129A (en) * | 1967-06-28 | 1970-12-08 | Canadian Patents Dev | Manufacture of dormant pelleted seeds |
| CA901310A (en) * | 1970-02-05 | 1972-05-30 | Canadian Patents And Development Limited | Manufacture of dormant pelleted seed |
| US3683550A (en) * | 1970-04-01 | 1972-08-15 | Del Monte Corp | Plant culture method and product |
| FR2127389A5 (en) * | 1971-03-05 | 1972-10-13 | Anvar | Vegetative propagation of plants - from isolated portions of the flowers |
| US3973355A (en) * | 1974-01-18 | 1976-08-10 | Agritec Co. | Self-contained hydrophilic plant growth matrix and method |
| US4352883A (en) * | 1979-03-28 | 1982-10-05 | Damon Corporation | Encapsulation of biological material |
| US4241537A (en) * | 1979-05-10 | 1980-12-30 | W. R. Grace & Co. | Plant growth media utilizing polyurethane hydrogel |
| US4245432A (en) * | 1979-07-25 | 1981-01-20 | Eastman Kodak Company | Seed coatings |
| US4249343A (en) * | 1979-07-25 | 1981-02-10 | Eastman Kodak Company | Seed coatings |
-
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- 1982-10-12 US US06/433,688 patent/US4562663A/en not_active Expired - Lifetime
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