JPH05239099A - 新規タンパク質及び抗腫瘍免疫細胞誘導刺激材 - Google Patents
新規タンパク質及び抗腫瘍免疫細胞誘導刺激材Info
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- JPH05239099A JPH05239099A JP4223540A JP22354092A JPH05239099A JP H05239099 A JPH05239099 A JP H05239099A JP 4223540 A JP4223540 A JP 4223540A JP 22354092 A JP22354092 A JP 22354092A JP H05239099 A JPH05239099 A JP H05239099A
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- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 従来の方法よりもより安全に強力な抗腫瘍免
疫細胞を誘導できる誘導物質及び誘導刺激材を提供す
る。 【構成】 ポークウィードマイトージェンより得られ
る、分子量が35,000±5,000、かつ等電点が
4±1の純化されたタンパク質、またはこれよりなる抗
腫瘍免疫細胞誘導物質。さらに、特定のアミノ酸配列を
持つ純化されたタンパク質、またはこれよりなる抗腫瘍
免疫細胞誘導物質。及び、水不溶性担体の表面に上記よ
りなる物質を有することを特徴とする抗腫瘍免疫細胞誘
導刺激材。 【効果】 この物質及び誘導材は、全血液あるいは体液
細胞成分中の白血球を活性化して抗腫瘍免疫細胞を誘導
し悪性腫瘍を治療するのに有用なものである。
疫細胞を誘導できる誘導物質及び誘導刺激材を提供す
る。 【構成】 ポークウィードマイトージェンより得られ
る、分子量が35,000±5,000、かつ等電点が
4±1の純化されたタンパク質、またはこれよりなる抗
腫瘍免疫細胞誘導物質。さらに、特定のアミノ酸配列を
持つ純化されたタンパク質、またはこれよりなる抗腫瘍
免疫細胞誘導物質。及び、水不溶性担体の表面に上記よ
りなる物質を有することを特徴とする抗腫瘍免疫細胞誘
導刺激材。 【効果】 この物質及び誘導材は、全血液あるいは体液
細胞成分中の白血球を活性化して抗腫瘍免疫細胞を誘導
し悪性腫瘍を治療するのに有用なものである。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、全血液あるいは体液細
胞成分中の白血球を活性化して抗腫瘍免疫細胞を誘導す
る機能を持つ、悪性腫瘍治療用の新規タンパク質及び抗
腫瘍免疫細胞誘導刺激材に関する。
胞成分中の白血球を活性化して抗腫瘍免疫細胞を誘導す
る機能を持つ、悪性腫瘍治療用の新規タンパク質及び抗
腫瘍免疫細胞誘導刺激材に関する。
【0002】
【従来の技術】近年、癌患者の治療法として、患者から
取り出した白血球をインターロイキン2(IL−2、以
下IL−2と呼ぶ)と共に培養することにより活性化さ
せた細胞を、あるいはIL−2の存在下で培養した腫瘍
内浸潤白血球を癌患者の体内に戻すことにより治療を行
う免疫療法が試みられている(N.Engl.J.Me
d.,316,889〜897,1987),(N.E
ngl.J.Med.,319,1676〜1680,
1988)。
取り出した白血球をインターロイキン2(IL−2、以
下IL−2と呼ぶ)と共に培養することにより活性化さ
せた細胞を、あるいはIL−2の存在下で培養した腫瘍
内浸潤白血球を癌患者の体内に戻すことにより治療を行
う免疫療法が試みられている(N.Engl.J.Me
d.,316,889〜897,1987),(N.E
ngl.J.Med.,319,1676〜1680,
1988)。
【0003】この治療法は、癌患者から大量の白血球、
さらには、腫瘍細胞を取り出し、無菌的に長期間IL−
2の存在下で培養した後に、癌患者に輸液注入するとい
う操作面で非常に煩雑であること、また、時間的にも1
回の操作あたり3〜4日の時間を要すること、さらに
は、一人の患者あたり医師の相当な手間が必要なことか
ら、莫大な治療費がかかる等の問題がある。
さらには、腫瘍細胞を取り出し、無菌的に長期間IL−
2の存在下で培養した後に、癌患者に輸液注入するとい
う操作面で非常に煩雑であること、また、時間的にも1
回の操作あたり3〜4日の時間を要すること、さらに
は、一人の患者あたり医師の相当な手間が必要なことか
ら、莫大な治療費がかかる等の問題がある。
【0004】本発明者らは、これらの問題点を解決する
ため、従来の方法よりも操作性よく、さらに強力な抗腫
瘍免疫細胞を誘導できる刺激材及び刺激方法を提供して
きた(特開昭60−120821号公報)。すなわち、
レクチンの一種であるポークウィードマイトージェン
(以下、PWMと呼ぶ)に抗腫瘍免疫細胞を誘導する活
性があることを見い出し、このタンパクを水不溶性担体
に固定化し、体内に入らないようなものにした。
ため、従来の方法よりも操作性よく、さらに強力な抗腫
瘍免疫細胞を誘導できる刺激材及び刺激方法を提供して
きた(特開昭60−120821号公報)。すなわち、
レクチンの一種であるポークウィードマイトージェン
(以下、PWMと呼ぶ)に抗腫瘍免疫細胞を誘導する活
性があることを見い出し、このタンパクを水不溶性担体
に固定化し、体内に入らないようなものにした。
【0005】
【発明が解決しようとする課題】しかし、ここで使用し
てきた刺激材に結合させた抗腫瘍免疫細胞の誘導物質
は、レクチンとしてのPWMであり、抗腫瘍免疫細胞誘
導能を持たない不純物も含まれている。癌の治療に使用
する場合、不純物が含まれていては十分な効果が得られ
ないだけではなく、副作用を引き起こすことが懸念され
る。したがって、単一物質でより強い抗腫瘍免疫細胞の
誘導できる物質が望まれている。
てきた刺激材に結合させた抗腫瘍免疫細胞の誘導物質
は、レクチンとしてのPWMであり、抗腫瘍免疫細胞誘
導能を持たない不純物も含まれている。癌の治療に使用
する場合、不純物が含まれていては十分な効果が得られ
ないだけではなく、副作用を引き起こすことが懸念され
る。したがって、単一物質でより強い抗腫瘍免疫細胞の
誘導できる物質が望まれている。
【0006】本発明の目的は、上記のごとき従来技術に
基づく抗腫瘍免疫細胞の誘導の問題点に鑑み、従来の方
法よりもより安全に強力な抗腫瘍免疫細胞を誘導できる
誘導物質及び誘導刺激材を提供することにある。
基づく抗腫瘍免疫細胞の誘導の問題点に鑑み、従来の方
法よりもより安全に強力な抗腫瘍免疫細胞を誘導できる
誘導物質及び誘導刺激材を提供することにある。
【0007】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、上記目的
に沿って鋭意研究した結果、特許請求の範囲第1項から
第4項記載の物質に、強力な抗腫瘍免疫細胞の誘導能が
あることを見出した。さらに、水不溶性担体の表面に、
特許請求の範囲第1項から第4項記載の物質の中の一つ
を有することを特徴とする抗腫瘍免疫細胞誘導刺激材で
白血球を刺激することにより、強力な抗腫瘍免疫細胞が
誘導されることを見出し、本発明を完成するに至った。
に沿って鋭意研究した結果、特許請求の範囲第1項から
第4項記載の物質に、強力な抗腫瘍免疫細胞の誘導能が
あることを見出した。さらに、水不溶性担体の表面に、
特許請求の範囲第1項から第4項記載の物質の中の一つ
を有することを特徴とする抗腫瘍免疫細胞誘導刺激材で
白血球を刺激することにより、強力な抗腫瘍免疫細胞が
誘導されることを見出し、本発明を完成するに至った。
【0008】すなわち、本発明は、特許請求の範囲第1
項から第4項記載の物質及び水不溶性担体の表面に、特
許請求の範囲第1項から第4項記載の物質の中の一つを
有することを特徴とする抗腫瘍免疫細胞誘導刺激材に関
わる。
項から第4項記載の物質及び水不溶性担体の表面に、特
許請求の範囲第1項から第4項記載の物質の中の一つを
有することを特徴とする抗腫瘍免疫細胞誘導刺激材に関
わる。
【0009】本発明でいうPWMとは、アメリカヤマゴ
ボウ(フィトラッカ・アメリカーナPhytolacc
a americana)の根より抽出したレクチンで
ある。従来用いられているPWMは、たとえば以下の文
献に例示する方法で調製された粗精製品であり、数種類
のタンパク質が混入している(J.Exp.Med.,
124,859〜872,1966),(Biochi
mica et Biophysica Acta,4
27,443〜452,1976)。PWMに含まれて
いるタンパク質としては5種類が明らかになっており、
それぞれのイソレクチンの構成アミノ酸残基も明らかに
なっているが、それぞれが示す生理活性としては、T細
胞あるいはB細胞に対するマイトジェン活性のみである
(Biochemistry,13,3671〜367
7,1974),(Methods in Enzym
ology,50,354〜361,1978)。
ボウ(フィトラッカ・アメリカーナPhytolacc
a americana)の根より抽出したレクチンで
ある。従来用いられているPWMは、たとえば以下の文
献に例示する方法で調製された粗精製品であり、数種類
のタンパク質が混入している(J.Exp.Med.,
124,859〜872,1966),(Biochi
mica et Biophysica Acta,4
27,443〜452,1976)。PWMに含まれて
いるタンパク質としては5種類が明らかになっており、
それぞれのイソレクチンの構成アミノ酸残基も明らかに
なっているが、それぞれが示す生理活性としては、T細
胞あるいはB細胞に対するマイトジェン活性のみである
(Biochemistry,13,3671〜367
7,1974),(Methods in Enzym
ology,50,354〜361,1978)。
【0010】抗腫瘍免疫細胞の誘導にPWMが作用する
ことは、IL−2の存在下で知られているのみならず
(日本輸血学会雑誌,36,309,1990、第2回
JBRM学会学術集会総会プログラム・抄録集,p3
3,1989)、PWM単独でも作用することが調べら
れている(人工臓器,18,1401〜1405,19
89)。しかし、いずれも粗精製のPWMを用いた結果
である。本発明の新規タンパク質は、粗精製のPWMよ
り抗腫瘍免疫細胞を誘導する物質として分離精製するこ
とができる。
ことは、IL−2の存在下で知られているのみならず
(日本輸血学会雑誌,36,309,1990、第2回
JBRM学会学術集会総会プログラム・抄録集,p3
3,1989)、PWM単独でも作用することが調べら
れている(人工臓器,18,1401〜1405,19
89)。しかし、いずれも粗精製のPWMを用いた結果
である。本発明の新規タンパク質は、粗精製のPWMよ
り抗腫瘍免疫細胞を誘導する物質として分離精製するこ
とができる。
【0011】粗精製PWMからの分離精製方法として
は、タンパク質化学において通常使用される方法、例え
ば、担体による吸着法、イオン交換法、分別沈澱法、ゲ
ルろ過法、電気泳動法、各種アフィニティークロマトグ
ラフィー、これらを単独あるいは組み合わせて使用でき
る。かくして得られた特許請求の範囲第1項あるいは第
2項記載のタンパク質は、電気泳動上で単一のものであ
ることが確認できる。抗腫瘍免疫細胞誘導能は粗精製P
WMよりはるかに強く、その用途としては、癌患者に直
接投与し、腫瘍を縮小させ癌を治療する医薬として、さ
らには、癌患者から取り出した白血球に作用させ、洗い
流した後に活性化した白血球のみを患者の体内に戻すこ
とによって、異種蛋白であるが故に生じる毒性を回避す
ることができ、より望ましい癌の治療をするための医薬
として用いることができる。さらには、リンパ球の機能
を測定する、レクチンに対するリンパ球の幼若化能測定
においてマイトージェンとして用いれば、従来PWMの
ロットが異なると同一検体であっても測定値にばらつき
が見られていたのが、安定した測定結果が得られるよう
になる。
は、タンパク質化学において通常使用される方法、例え
ば、担体による吸着法、イオン交換法、分別沈澱法、ゲ
ルろ過法、電気泳動法、各種アフィニティークロマトグ
ラフィー、これらを単独あるいは組み合わせて使用でき
る。かくして得られた特許請求の範囲第1項あるいは第
2項記載のタンパク質は、電気泳動上で単一のものであ
ることが確認できる。抗腫瘍免疫細胞誘導能は粗精製P
WMよりはるかに強く、その用途としては、癌患者に直
接投与し、腫瘍を縮小させ癌を治療する医薬として、さ
らには、癌患者から取り出した白血球に作用させ、洗い
流した後に活性化した白血球のみを患者の体内に戻すこ
とによって、異種蛋白であるが故に生じる毒性を回避す
ることができ、より望ましい癌の治療をするための医薬
として用いることができる。さらには、リンパ球の機能
を測定する、レクチンに対するリンパ球の幼若化能測定
においてマイトージェンとして用いれば、従来PWMの
ロットが異なると同一検体であっても測定値にばらつき
が見られていたのが、安定した測定結果が得られるよう
になる。
【0012】本発明の、特許請求の範囲第1項から第4
項記載の物質の具体的な分離精製法の一例を挙げる。本
発明で言うタンパク質とは、特許請求の範囲第1項から
第4項記載の物質であればよく、精製法は下記の方法に
限定されるものではない。
項記載の物質の具体的な分離精製法の一例を挙げる。本
発明で言うタンパク質とは、特許請求の範囲第1項から
第4項記載の物質であればよく、精製法は下記の方法に
限定されるものではない。
【0013】粗精製PWMをリン酸緩衝液(Ca,Mg
不含)(以下、PBS(−)と呼ぶ)に溶解し、PBS
(−)で平衡化したゲルろ過カラムに通し、分子量約3
0,000から40,000の画分を回収する。回収し
た液に硫酸アンモニウムを添加し最終濃度を1Mにし、
1M硫酸アンモニウム/PBS(−)で平衡化したオク
チルセファロース(ファルマシア(株)製)カラムを通
し、吸着成分をPBS(−)で回収する。回収した成分
を限外ろ過システム等で濃縮した後、生理食塩水で平衡
化したゲルろ過カラムに通し、分子量35,000±
5,000の画分を回収する。
不含)(以下、PBS(−)と呼ぶ)に溶解し、PBS
(−)で平衡化したゲルろ過カラムに通し、分子量約3
0,000から40,000の画分を回収する。回収し
た液に硫酸アンモニウムを添加し最終濃度を1Mにし、
1M硫酸アンモニウム/PBS(−)で平衡化したオク
チルセファロース(ファルマシア(株)製)カラムを通
し、吸着成分をPBS(−)で回収する。回収した成分
を限外ろ過システム等で濃縮した後、生理食塩水で平衡
化したゲルろ過カラムに通し、分子量35,000±
5,000の画分を回収する。
【0014】この物質に抗腫瘍免疫細胞誘導能があるこ
とは、例えば、新リンパ球機能検索法,p187〜19
8,中外医学社,1987年発行、臨床免疫,19,2
50〜256,1987の方法により確認することがで
きる。かくして得られる新規タンパク質の物理化学的性
質について以下に説明する。
とは、例えば、新リンパ球機能検索法,p187〜19
8,中外医学社,1987年発行、臨床免疫,19,2
50〜256,1987の方法により確認することがで
きる。かくして得られる新規タンパク質の物理化学的性
質について以下に説明する。
【0015】1)分子量:35,000±5,000 SDSで変性及び2−メルカプトエタノールで還元した
条件での、SDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動に
より測定した。 2)等電点:4±1 Ampholineを用いた等電点電気泳動法により測
定した。 3)アミノ酸分析:(表1) 加水分解の後にアミノ酸分析を行ったが、文献に記載さ
れているイソレクチンPa−1〜Pa−5のいずれとも
異なる値であった(Biochemistry,13,
3671〜3677,1974)。
条件での、SDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動に
より測定した。 2)等電点:4±1 Ampholineを用いた等電点電気泳動法により測
定した。 3)アミノ酸分析:(表1) 加水分解の後にアミノ酸分析を行ったが、文献に記載さ
れているイソレクチンPa−1〜Pa−5のいずれとも
異なる値であった(Biochemistry,13,
3671〜3677,1974)。
【0016】
【表1】
【0017】本発明の抗腫瘍免疫細胞誘導刺激材は、水
不溶性担体の表面に、特許請求の範囲第1項から第4項
記載の物質の中の一つを結合させることにより得ること
ができる。誘導刺激材としては、白血球と接触できるも
のであればよく、担体あるいは結合方法は特に規定しな
い。この誘導刺激材は表面に、特許請求の範囲第1項か
ら第4項記載の物質の中の一つのみを結合しているた
め、白血球と接触させたとき強い抗腫瘍免疫細胞を誘導
でき、その他の生体に悪影響を及ぼす細胞の誘導はなく
なる。この誘導刺激材の用途としては、癌患者から取り
出した白血球をこの誘導刺激材と接触させることによ
り、強力な抗腫瘍免疫細胞を誘導し、癌患者の体内に戻
すことにより腫瘍を縮小させ、癌を治療する治療器とし
て用いることができる。
不溶性担体の表面に、特許請求の範囲第1項から第4項
記載の物質の中の一つを結合させることにより得ること
ができる。誘導刺激材としては、白血球と接触できるも
のであればよく、担体あるいは結合方法は特に規定しな
い。この誘導刺激材は表面に、特許請求の範囲第1項か
ら第4項記載の物質の中の一つのみを結合しているた
め、白血球と接触させたとき強い抗腫瘍免疫細胞を誘導
でき、その他の生体に悪影響を及ぼす細胞の誘導はなく
なる。この誘導刺激材の用途としては、癌患者から取り
出した白血球をこの誘導刺激材と接触させることによ
り、強力な抗腫瘍免疫細胞を誘導し、癌患者の体内に戻
すことにより腫瘍を縮小させ、癌を治療する治療器とし
て用いることができる。
【0018】本発明でいう分子量とは、SDS−ポリア
クリルアミドゲル電気泳動法(例えば、生化学実験講座
1,タンパク質の化学I,p469〜492,日本生化
学会編,東京化学同人発行,1976年3月22日発
行)により測定した、SDS変性状態及び2−メルカプ
トエタノール還元状態での分子量である。
クリルアミドゲル電気泳動法(例えば、生化学実験講座
1,タンパク質の化学I,p469〜492,日本生化
学会編,東京化学同人発行,1976年3月22日発
行)により測定した、SDS変性状態及び2−メルカプ
トエタノール還元状態での分子量である。
【0019】本発明でいう等電点とは、等電点電気泳動
の原理(例えば2117 Multiphor II
Electrophoresis System Sy
stem Handbook,p48〜95,1989
年,Pharmacia LKB Biotechno
logy)により測定した等電点である。
の原理(例えば2117 Multiphor II
Electrophoresis System Sy
stem Handbook,p48〜95,1989
年,Pharmacia LKB Biotechno
logy)により測定した等電点である。
【0020】本発明で用いられる水不溶性担体は、親水
性担体,疎水性担体いずれも使用できる。水不溶性担体
の形状は、粒子状,繊維状,中空糸状,膜状等いずれの
公知の形状も用いることができる。粒状もしくは球状の
水不溶性担体としては、粒径1〜3000ミクロンのも
のが使用できる。粒径1ミクロン以下では、活性化白血
球との分離が困難である。とくに粒径50ミクロン以上
であれば、活性化白血球との分離が容易に可能である。
粒径3000ミクロン以上では、白血球との担体単位重
量あたりの接触面積が低下するため好ましくない。特に
好ましくは、粒径80〜2000ミクロンのものであ
る。また、粒状もしくは球状の水不溶性担体の比重が
1.07以上であれば、遠心もしくは静置による活性化
白血球との分離が容易に可能である。平膜状あるいは中
空糸状の多孔性担体を使用する場合、その孔径が細胞は
通過できないが培地成分は自由に通過できる0.05〜
10ミクロンのものを使用すれば、膜の一方の面に結合
した白血球に膜の他方の面より栄養を補給でき、高濃度
の抗腫瘍免疫細胞を誘導することが可能である。特に
0.1〜5ミクロンの孔径の平膜状あるいは中空糸状の
多孔性担体が良好に使用できる。
性担体,疎水性担体いずれも使用できる。水不溶性担体
の形状は、粒子状,繊維状,中空糸状,膜状等いずれの
公知の形状も用いることができる。粒状もしくは球状の
水不溶性担体としては、粒径1〜3000ミクロンのも
のが使用できる。粒径1ミクロン以下では、活性化白血
球との分離が困難である。とくに粒径50ミクロン以上
であれば、活性化白血球との分離が容易に可能である。
粒径3000ミクロン以上では、白血球との担体単位重
量あたりの接触面積が低下するため好ましくない。特に
好ましくは、粒径80〜2000ミクロンのものであ
る。また、粒状もしくは球状の水不溶性担体の比重が
1.07以上であれば、遠心もしくは静置による活性化
白血球との分離が容易に可能である。平膜状あるいは中
空糸状の多孔性担体を使用する場合、その孔径が細胞は
通過できないが培地成分は自由に通過できる0.05〜
10ミクロンのものを使用すれば、膜の一方の面に結合
した白血球に膜の他方の面より栄養を補給でき、高濃度
の抗腫瘍免疫細胞を誘導することが可能である。特に
0.1〜5ミクロンの孔径の平膜状あるいは中空糸状の
多孔性担体が良好に使用できる。
【0021】水不溶性担体の材質としては、無機ベース
のものにあっては活性炭,ガラス等及びその誘導体があ
り、天然高分子由来担体にはセルロース,セファロー
ス,デキストラン,デンプン等の多糖類及びその誘導体
がある。
のものにあっては活性炭,ガラス等及びその誘導体があ
り、天然高分子由来担体にはセルロース,セファロー
ス,デキストラン,デンプン等の多糖類及びその誘導体
がある。
【0022】また、合成高分子にあっては、ビニル系高
分子にはスチレン,酢酸ビニル,メタクリル酸エステ
ル,アクリル酸エステル,ハロゲン化ビニル,ハロゲン
化ビニリデン,アクリロニトリル,アクリルアミド,メ
チルビニルケトン,ビニルピロリドン,2−ビニルピリ
ジン,エチレン,プロピレン,ブタジエン,イソプレン
等及びその誘導体の重合体及び共重合体がある。環状化
合物の開環重合体にはジメチルシクロプロパン,スピロ
−ジ−o−キシリレン,ノルボルネン,シクロブテン,
トリオキサン,ラクチド,シクロポリシロキサン,塩化
ホスホニトリル,N−カルボキシ−α−アミノ酸無水物
等及びその誘導体の重合体及び共重合体がある。ポリホ
ルムアルデヒド,ポリエチレンオキシド,ポリプロピレ
ングリコール,ポリ−3,3−ビス(クロルメチル)オ
キサシクロブタン,ポリテトラヒドロフラン,ポリカプ
ロラクタム等及びその誘導体がある。
分子にはスチレン,酢酸ビニル,メタクリル酸エステ
ル,アクリル酸エステル,ハロゲン化ビニル,ハロゲン
化ビニリデン,アクリロニトリル,アクリルアミド,メ
チルビニルケトン,ビニルピロリドン,2−ビニルピリ
ジン,エチレン,プロピレン,ブタジエン,イソプレン
等及びその誘導体の重合体及び共重合体がある。環状化
合物の開環重合体にはジメチルシクロプロパン,スピロ
−ジ−o−キシリレン,ノルボルネン,シクロブテン,
トリオキサン,ラクチド,シクロポリシロキサン,塩化
ホスホニトリル,N−カルボキシ−α−アミノ酸無水物
等及びその誘導体の重合体及び共重合体がある。ポリホ
ルムアルデヒド,ポリエチレンオキシド,ポリプロピレ
ングリコール,ポリ−3,3−ビス(クロルメチル)オ
キサシクロブタン,ポリテトラヒドロフラン,ポリカプ
ロラクタム等及びその誘導体がある。
【0023】また、重縮合体には、ポリエステル,ポリ
アミド,ポリアンヒドリド,ポリカーボネート,ポリ尿
素,ポリスルホンアミド,ポリイミド,ポリベンゾイミ
ダゾール等及びその誘導体がある。樹脂その他のものに
あっては、アクリル樹脂,メタクリル樹脂,フッ素樹
脂,エポキシ樹脂,尿素樹脂,アミノ樹脂,スチレン樹
脂,メラミン樹脂,ポリウレタン,シリコン樹脂,アル
キド樹脂等及びその誘導体が例示できる。
アミド,ポリアンヒドリド,ポリカーボネート,ポリ尿
素,ポリスルホンアミド,ポリイミド,ポリベンゾイミ
ダゾール等及びその誘導体がある。樹脂その他のものに
あっては、アクリル樹脂,メタクリル樹脂,フッ素樹
脂,エポキシ樹脂,尿素樹脂,アミノ樹脂,スチレン樹
脂,メラミン樹脂,ポリウレタン,シリコン樹脂,アル
キド樹脂等及びその誘導体が例示できる。
【0024】以上にあげた高分子担体は、必要に応じて
適当なコモノマー,架橋剤を用いて水不溶性担体を得る
ことができる。架橋剤にあっては、硫黄,有機過酸化
物,フェノール樹脂,ジイソシアナート,エポキシ化合
物,ジエン,グルタルアルデヒド等、被架橋物の官能基
に合わせて種々のものを選択できる(大成社,「架橋剤
ハンドブック」,p3〜77,1981)。
適当なコモノマー,架橋剤を用いて水不溶性担体を得る
ことができる。架橋剤にあっては、硫黄,有機過酸化
物,フェノール樹脂,ジイソシアナート,エポキシ化合
物,ジエン,グルタルアルデヒド等、被架橋物の官能基
に合わせて種々のものを選択できる(大成社,「架橋剤
ハンドブック」,p3〜77,1981)。
【0025】また、上記水不溶性担体の表面にリガンド
を固定する方法としては、共有結合,イオン結合,物理
吸着等あらゆる公知の方法を用いることができるが、溶
出性から考えると共有結合で固定して用いることが望ま
しい。そのためには通常固定化酵素,アフィニティクロ
マトグラフィーで用いられる方法を用いることができ
る。例えば、アガロース,セファロース等を臭化シアン
(CNBr)で活性化し、またはエピクロルヒドリンで
エポキシ活性化し、あるいはシリカガラスビーズをγ−
アミノプロピルトリエトキシシランと反応させてアルキ
ルアミノガラスを得て、これをグルタルアルデヒドで活
性化し、結合させる等の方法を用いることができる。ま
た、必要に応じて、水不溶性担体との間に任意の長さの
分子(スペーサー)を導入して使用することもできる。
例えば、アガロースのヒドロキシル基とヘキサメチレン
ジイソシアナートの片側のイソシアナート基を反応結合
させ、残ったイソシアナート基と抗体のアミノ基を反応
結合させるごとく実施することができる。
を固定する方法としては、共有結合,イオン結合,物理
吸着等あらゆる公知の方法を用いることができるが、溶
出性から考えると共有結合で固定して用いることが望ま
しい。そのためには通常固定化酵素,アフィニティクロ
マトグラフィーで用いられる方法を用いることができ
る。例えば、アガロース,セファロース等を臭化シアン
(CNBr)で活性化し、またはエピクロルヒドリンで
エポキシ活性化し、あるいはシリカガラスビーズをγ−
アミノプロピルトリエトキシシランと反応させてアルキ
ルアミノガラスを得て、これをグルタルアルデヒドで活
性化し、結合させる等の方法を用いることができる。ま
た、必要に応じて、水不溶性担体との間に任意の長さの
分子(スペーサー)を導入して使用することもできる。
例えば、アガロースのヒドロキシル基とヘキサメチレン
ジイソシアナートの片側のイソシアナート基を反応結合
させ、残ったイソシアナート基と抗体のアミノ基を反応
結合させるごとく実施することができる。
【0026】以上の要素よりなる本発明の誘導刺激材の
製造法は、その構成要素の結合順序を規定したものでは
ない。すなわち、本発明で使用する誘導刺激材は基本的
には、水不溶性担体表面に特許請求の範囲第1項から第
4項記載の物質の中の一つが存在すればよいのであり、
製造方法に左右されるものではない。
製造法は、その構成要素の結合順序を規定したものでは
ない。すなわち、本発明で使用する誘導刺激材は基本的
には、水不溶性担体表面に特許請求の範囲第1項から第
4項記載の物質の中の一つが存在すればよいのであり、
製造方法に左右されるものではない。
【0027】本発明における抗腫瘍免疫細胞とは、例え
ば、新リンパ球機能検索法,p187〜198,中外医
学社,1987年発行、臨床免疫,19,241〜25
6,1987におけるキラー細胞をいう。
ば、新リンパ球機能検索法,p187〜198,中外医
学社,1987年発行、臨床免疫,19,241〜25
6,1987におけるキラー細胞をいう。
【0028】本発明における白血球とは、血液細胞のう
ち赤血球及び血小板を除いた、いわゆる白血球を指す
が、この白血球より顆粒球あるいはB細胞を除去した細
胞分画も、本発明における白血球の概念に含まれる。本
発明において活性化を行う白血球は、公知の連続遠心分
離法にて末梢血より採取した白血球分画を用いてもよ
く、また、公知のフィコールパーク重層遠心分離法にて
分離した単核細胞分画でもよく、あるいは末梢血単核細
胞より公知のノイラミニダーゼ処理羊赤血球とのロゼッ
ト形成で分離濃縮したT細胞分画を使用しても、強力な
抗腫瘍免疫細胞の誘導が可能である。
ち赤血球及び血小板を除いた、いわゆる白血球を指す
が、この白血球より顆粒球あるいはB細胞を除去した細
胞分画も、本発明における白血球の概念に含まれる。本
発明において活性化を行う白血球は、公知の連続遠心分
離法にて末梢血より採取した白血球分画を用いてもよ
く、また、公知のフィコールパーク重層遠心分離法にて
分離した単核細胞分画でもよく、あるいは末梢血単核細
胞より公知のノイラミニダーゼ処理羊赤血球とのロゼッ
ト形成で分離濃縮したT細胞分画を使用しても、強力な
抗腫瘍免疫細胞の誘導が可能である。
【0029】本発明において誘導活性化する抗腫瘍免疫
細胞は、白血球の中で顆粒球、単球、マクロファージを
除くリンパ球分画に属し、とりわけT細胞の性質を有し
ている。特許請求の範囲第1項から第4項記載の抗腫瘍
免疫細胞誘導物質は、従来よりも強力な抗腫瘍免疫細胞
誘導物質であり、これを表面に結合させた水不溶性担体
は従来よりも強力な抗腫瘍免疫細胞誘導刺激材である。
以下に測定方法を明示する。
細胞は、白血球の中で顆粒球、単球、マクロファージを
除くリンパ球分画に属し、とりわけT細胞の性質を有し
ている。特許請求の範囲第1項から第4項記載の抗腫瘍
免疫細胞誘導物質は、従来よりも強力な抗腫瘍免疫細胞
誘導物質であり、これを表面に結合させた水不溶性担体
は従来よりも強力な抗腫瘍免疫細胞誘導刺激材である。
以下に測定方法を明示する。
【0030】分子量:SDSで変性及び2−メルカプト
エタノールで還元した抗腫瘍免疫細胞誘導物質を試料と
して、SDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動を行
う。ゲルとしては13%の均一濃度ゲルもしくは4〜2
0%の勾配濃度ゲルを用いる。分子量マーカーとしては
ホスホリラーゼb(94,000),アルブミン(6
7,000),オブアルブミン(43,000),カー
ボニック・アンヒドラーゼ(30,000),トリプシ
ンインヒビター(20,000),α−ラクトアルブミ
ン(14,000)からなるLMW kitE(ファル
マシア(株)製)を用いる。
エタノールで還元した抗腫瘍免疫細胞誘導物質を試料と
して、SDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動を行
う。ゲルとしては13%の均一濃度ゲルもしくは4〜2
0%の勾配濃度ゲルを用いる。分子量マーカーとしては
ホスホリラーゼb(94,000),アルブミン(6
7,000),オブアルブミン(43,000),カー
ボニック・アンヒドラーゼ(30,000),トリプシ
ンインヒビター(20,000),α−ラクトアルブミ
ン(14,000)からなるLMW kitE(ファル
マシア(株)製)を用いる。
【0031】等電点:Multiphor II電気泳
動システム(ファルマシア(株)製)及びAmphol
ine PAG Plate(ファルマシア(株)製)
pH3.5〜9.5を用い、取扱い説明書に従い、抗腫
瘍免疫細胞誘導物質の等電点を求める。等電点値はpI
カリブレーションキット2.5〜6.5(ファルマシア
(株)製)を用いて決定する。
動システム(ファルマシア(株)製)及びAmphol
ine PAG Plate(ファルマシア(株)製)
pH3.5〜9.5を用い、取扱い説明書に従い、抗腫
瘍免疫細胞誘導物質の等電点を求める。等電点値はpI
カリブレーションキット2.5〜6.5(ファルマシア
(株)製)を用いて決定する。
【0032】抗腫瘍免疫細胞誘導活性:ヒト白血球を次
のように調製する。すなわち、抗凝固剤を加えて採血し
たヒト末梢血を1,600rpmで15分間遠心し、上
清(血漿)を移し取る。沈澱(細胞)にRPMI164
0培地(ニッスイ製)を、採血量の約2.5倍量加えて
撹拌した後、フィコール・パーク液(ファルマシア
(株)製)3mlの上に10mlずつ重層して、1,6
00rpmで25分間遠心する。中間層(白血球層)を
取り出して、これをRPMI1640培地で洗浄した
後、自己血清10%添加したRPMI1640培地に2
×106 細胞/mlの濃度で浮遊させる。
のように調製する。すなわち、抗凝固剤を加えて採血し
たヒト末梢血を1,600rpmで15分間遠心し、上
清(血漿)を移し取る。沈澱(細胞)にRPMI164
0培地(ニッスイ製)を、採血量の約2.5倍量加えて
撹拌した後、フィコール・パーク液(ファルマシア
(株)製)3mlの上に10mlずつ重層して、1,6
00rpmで25分間遠心する。中間層(白血球層)を
取り出して、これをRPMI1640培地で洗浄した
後、自己血清10%添加したRPMI1640培地に2
×106 細胞/mlの濃度で浮遊させる。
【0033】抗腫瘍免疫細胞の誘導は次のように行う。 [抗腫瘍免疫細胞誘導物質で誘導する場合]白血球浮遊
液を2ml取り、1,200rpmで7分間遠心して上
清を除去する。沈澱(白血球)に、抗腫瘍免疫細胞誘導
物質を含む自己血清10%添加RPMI1640培地を
2ml加えて、細胞を浮遊させる。CO2 インキュベー
ター(37℃)中で15分間静置した後、1,200r
pmで7分間遠心して上清(抗腫瘍免疫細胞誘導物質
液)を除去する。沈澱を自己血清10%添加RPMI1
640培地で3回繰り返し洗浄した後、自己血清10%
添加RPMI1640培地1mlを加えて浮遊させ、培
養用48ウェルプレートに移す。CO2 インキュベータ
ー(37℃)中で20時間静置した後、誘導した抗腫瘍
免疫細胞を10%牛胎児血清添加RPMI1640培地
で回収して、107 細胞/mlの細胞濃度で浮遊させ
る。
液を2ml取り、1,200rpmで7分間遠心して上
清を除去する。沈澱(白血球)に、抗腫瘍免疫細胞誘導
物質を含む自己血清10%添加RPMI1640培地を
2ml加えて、細胞を浮遊させる。CO2 インキュベー
ター(37℃)中で15分間静置した後、1,200r
pmで7分間遠心して上清(抗腫瘍免疫細胞誘導物質
液)を除去する。沈澱を自己血清10%添加RPMI1
640培地で3回繰り返し洗浄した後、自己血清10%
添加RPMI1640培地1mlを加えて浮遊させ、培
養用48ウェルプレートに移す。CO2 インキュベータ
ー(37℃)中で20時間静置した後、誘導した抗腫瘍
免疫細胞を10%牛胎児血清添加RPMI1640培地
で回収して、107 細胞/mlの細胞濃度で浮遊させ
る。
【0034】[抗腫瘍免疫細胞誘導刺激材で誘導する場
合]白血球浮遊液1.5mlを誘導刺激材150μlに
加えて、800rpmで5分間遠心する。CO2 インキ
ュベーター(37℃)中で10分間静置した後、1ml
の自己血清10%添加RPMI1640培地を加えてピ
ペッティングを30回行い、誘導刺激材が沈んだ後で白
血球を含む上清を回収する。再度、誘導刺激材に2ml
の自己血清10%添加RPMI1640培地を加え、同
様にして白血球を含む上清を回収する。両者を合わせて
1,200rpmで7分間遠心した後、沈澱の白血球を
2×106 細胞/mlの濃度で自己血清10%添加RP
MI1640培地に浮遊させる。浮遊液1mlを、48
ウェル培養用プレートに移して、CO2 インキュベータ
ー(37℃)中で20時間静置し、誘導した抗腫瘍免疫
細胞を10%牛胎児血清添加RPMI1640培地で回
収して、107 細胞/mlの濃度で浮遊させる。
合]白血球浮遊液1.5mlを誘導刺激材150μlに
加えて、800rpmで5分間遠心する。CO2 インキ
ュベーター(37℃)中で10分間静置した後、1ml
の自己血清10%添加RPMI1640培地を加えてピ
ペッティングを30回行い、誘導刺激材が沈んだ後で白
血球を含む上清を回収する。再度、誘導刺激材に2ml
の自己血清10%添加RPMI1640培地を加え、同
様にして白血球を含む上清を回収する。両者を合わせて
1,200rpmで7分間遠心した後、沈澱の白血球を
2×106 細胞/mlの濃度で自己血清10%添加RP
MI1640培地に浮遊させる。浮遊液1mlを、48
ウェル培養用プレートに移して、CO2 インキュベータ
ー(37℃)中で20時間静置し、誘導した抗腫瘍免疫
細胞を10%牛胎児血清添加RPMI1640培地で回
収して、107 細胞/mlの濃度で浮遊させる。
【0035】これらの抗腫瘍免疫細胞が示す抗腫瘍免疫
細胞活性は、次のような測定法で評価する。すなわち、
標的細胞であるヒト癌細胞株を106 細胞/ml濃度で
浮遊させ、浮遊液5mlとアセトンに溶解したカルボキ
シフルオレセインジアセテイト(cFDA)1mgを茶
褐色ガラスビンに入れ、37℃水浴中で1時間振とう
し、標的細胞を蛍光標識する。10%牛胎児血清添加R
PMI1640培地を5ml加えて撹拌した後、800
rpmで5分間遠心する。上清を除いた後、10%牛胎
児血清添加RPMI1640培地に再度浮遊して、5×
105 細胞/ml濃度に調製し、10μlをマイクロテ
ストプレートに入れる。ここで抗腫瘍免疫細胞を10%
牛胎児血清添加RPMI1640培地で回収して、10
7 細胞/ml濃度に浮遊させ、これを10μl取りマイ
クロテストプレートに入れて、標的細胞と混合する。C
O2 インキュベーター(37℃)中で3時間静置する。
この間に、抗腫瘍免疫細胞により殺傷された標的細胞は
蛍光を細胞外に放出するため、その後インクを5μl加
えて、細胞外の蛍光を消去し、自動蛍光測定装置(ライ
ツMPV−MT2)で蛍光を測定する。抗腫瘍免疫細胞
活性は、次式により計算される。 抗腫瘍免疫細胞活性
={1−(抗腫瘍免疫細胞を添加した場合の蛍光−NP
40を添加した場合の蛍光)/(抗腫瘍免疫細胞を誘導
していない白血球を添加した場合の蛍光−NP40を添
加した場合の蛍光)}×100%(NP40:Noni
det P−40(界面活性剤))
細胞活性は、次のような測定法で評価する。すなわち、
標的細胞であるヒト癌細胞株を106 細胞/ml濃度で
浮遊させ、浮遊液5mlとアセトンに溶解したカルボキ
シフルオレセインジアセテイト(cFDA)1mgを茶
褐色ガラスビンに入れ、37℃水浴中で1時間振とう
し、標的細胞を蛍光標識する。10%牛胎児血清添加R
PMI1640培地を5ml加えて撹拌した後、800
rpmで5分間遠心する。上清を除いた後、10%牛胎
児血清添加RPMI1640培地に再度浮遊して、5×
105 細胞/ml濃度に調製し、10μlをマイクロテ
ストプレートに入れる。ここで抗腫瘍免疫細胞を10%
牛胎児血清添加RPMI1640培地で回収して、10
7 細胞/ml濃度に浮遊させ、これを10μl取りマイ
クロテストプレートに入れて、標的細胞と混合する。C
O2 インキュベーター(37℃)中で3時間静置する。
この間に、抗腫瘍免疫細胞により殺傷された標的細胞は
蛍光を細胞外に放出するため、その後インクを5μl加
えて、細胞外の蛍光を消去し、自動蛍光測定装置(ライ
ツMPV−MT2)で蛍光を測定する。抗腫瘍免疫細胞
活性は、次式により計算される。 抗腫瘍免疫細胞活性
={1−(抗腫瘍免疫細胞を添加した場合の蛍光−NP
40を添加した場合の蛍光)/(抗腫瘍免疫細胞を誘導
していない白血球を添加した場合の蛍光−NP40を添
加した場合の蛍光)}×100%(NP40:Noni
det P−40(界面活性剤))
【0036】
【実施例】次に、実施例により本発明をさらに詳細に述
べる。 実施例1 まず、抗腫瘍免疫細胞誘導物質を調製する方法の具体例
を述べる。 (1)製法 PWM((株)ホーネンコーポレーション製)を20m
g/ml濃度で、PBS(−)に溶解した。ハイロード
26/60スーパーデックス75pgカラム(2.6×
60cm、ファルマシア(株)製)をPBS(−)で平
衡化し、PWM溶解液20mlをアプライして、PBS
(−)でゲルクロマトグラフィーを行った。150〜1
80mlの位置に溶出した画分を回収した(図1)。
べる。 実施例1 まず、抗腫瘍免疫細胞誘導物質を調製する方法の具体例
を述べる。 (1)製法 PWM((株)ホーネンコーポレーション製)を20m
g/ml濃度で、PBS(−)に溶解した。ハイロード
26/60スーパーデックス75pgカラム(2.6×
60cm、ファルマシア(株)製)をPBS(−)で平
衡化し、PWM溶解液20mlをアプライして、PBS
(−)でゲルクロマトグラフィーを行った。150〜1
80mlの位置に溶出した画分を回収した(図1)。
【0037】回収画分に硫酸アンモニウムを、最終濃度
が1Mになるよう添加した。オクチルセファロース(フ
ァルマシア(株)製)100mlを詰めたカラムを1M
硫酸アンモニウム/PBS(−)で平衡化し、上記回収
画分をアプライした。500mlの1M硫酸アンモニウ
ム/PBS(−)で非吸着成分を洗い流し、200ml
のPBS(−)で吸着成分を回収した。回収した成分を
限外ろ過システムNM−3ミニモジュール(旭化成工業
(株)製)で濃縮した。
が1Mになるよう添加した。オクチルセファロース(フ
ァルマシア(株)製)100mlを詰めたカラムを1M
硫酸アンモニウム/PBS(−)で平衡化し、上記回収
画分をアプライした。500mlの1M硫酸アンモニウ
ム/PBS(−)で非吸着成分を洗い流し、200ml
のPBS(−)で吸着成分を回収した。回収した成分を
限外ろ過システムNM−3ミニモジュール(旭化成工業
(株)製)で濃縮した。
【0038】生理食塩水(大塚製薬(株)製)で平衡化
したハイロード26/60スーパーデックス75pgカ
ラム(2.6×60cm、ファルマシア(株)製)に濃
縮した液4mlをアプライし、ゲルクロマトグラフィー
を行った。180〜200mlの画分に溶出してきたも
のを抗腫瘍免疫細胞誘導物質とした(図2)。SDS−
ポリアクリルアミドゲル電気泳動を行い、クーマシーブ
リリアントブルーで染色した結果、単一のバンドのみが
検出された。
したハイロード26/60スーパーデックス75pgカ
ラム(2.6×60cm、ファルマシア(株)製)に濃
縮した液4mlをアプライし、ゲルクロマトグラフィー
を行った。180〜200mlの画分に溶出してきたも
のを抗腫瘍免疫細胞誘導物質とした(図2)。SDS−
ポリアクリルアミドゲル電気泳動を行い、クーマシーブ
リリアントブルーで染色した結果、単一のバンドのみが
検出された。
【0039】(2)分子量測定 抗腫瘍免疫細胞誘導物質の分子量は、35,000±
5,000であった。 (3)等電点測定 抗腫瘍免疫細胞誘導物質の等電点は4±1であった。 (4)アミノ酸分析 抗腫瘍免疫細胞誘導物質のアミノ酸分析を行い、表1の
結果を得た。文献に記載されているイソレクチンPa−
1〜Pa−5いずれとも異なる値であった。
5,000であった。 (3)等電点測定 抗腫瘍免疫細胞誘導物質の等電点は4±1であった。 (4)アミノ酸分析 抗腫瘍免疫細胞誘導物質のアミノ酸分析を行い、表1の
結果を得た。文献に記載されているイソレクチンPa−
1〜Pa−5いずれとも異なる値であった。
【0040】(5)N末端アミノ酸配列解析 抗腫瘍免疫細胞誘導物質のN末端アミノ酸配列をApp
lied Biosystems社製気相プロテインシ
ーケンサー470Aでエドマン分解を行い、PTHアナ
ライザー120Aを用いてPTH−アミノ酸の同定を行
った。その結果、Ala−Pro−Glu−X−Gly
−Arg−Glu−Ala−Ser−Gly−Lys−
Val−Y−Pro−Asp−Asp−Leu−(X,
Yは任意のアミノ酸)の配列であった。
lied Biosystems社製気相プロテインシ
ーケンサー470Aでエドマン分解を行い、PTHアナ
ライザー120Aを用いてPTH−アミノ酸の同定を行
った。その結果、Ala−Pro−Glu−X−Gly
−Arg−Glu−Ala−Ser−Gly−Lys−
Val−Y−Pro−Asp−Asp−Leu−(X,
Yは任意のアミノ酸)の配列であった。
【0041】さらに、抗腫瘍免疫細胞誘導物質をピリジ
ルエチル化(PE化)し、シーケンス分析を行った。そ
の結果、4サイクル目と13サイクル目にPE−Cys
が認められ、未同定であったアミノ酸はCysであっ
た。このことより、抗腫瘍免疫細胞誘導物質のN末端ア
ミノ酸配列は、Ala−Pro−Glu−Cys−Gl
y−Arg−Glu−Ala−Ser−Gly−Lys
−Val−Cys−Pro−Asp−Asp−Leu−
であった。
ルエチル化(PE化)し、シーケンス分析を行った。そ
の結果、4サイクル目と13サイクル目にPE−Cys
が認められ、未同定であったアミノ酸はCysであっ
た。このことより、抗腫瘍免疫細胞誘導物質のN末端ア
ミノ酸配列は、Ala−Pro−Glu−Cys−Gl
y−Arg−Glu−Ala−Ser−Gly−Lys
−Val−Cys−Pro−Asp−Asp−Leu−
であった。
【0042】(6)抗腫瘍免疫細胞誘導活性 抗腫瘍免疫細胞誘導物質で誘導した細胞は、ヒト胃癌細
胞株MKN−1を標的細胞として、最終濃度1ng/m
lの抗腫瘍免疫細胞誘導物質で誘導した場合62%、最
終濃度10ng/mlで誘導した場合83%の活性を示
した。比較例1と比較すると、抗腫瘍免疫細胞誘導物質
は、粗精製PWMの10分の1以下の量で同等の抗腫瘍
免疫細胞誘導活性を示した。
胞株MKN−1を標的細胞として、最終濃度1ng/m
lの抗腫瘍免疫細胞誘導物質で誘導した場合62%、最
終濃度10ng/mlで誘導した場合83%の活性を示
した。比較例1と比較すると、抗腫瘍免疫細胞誘導物質
は、粗精製PWMの10分の1以下の量で同等の抗腫瘍
免疫細胞誘導活性を示した。
【0043】比較例1 実施例1と同様の抗腫瘍免疫細胞活性測定において、従
来の粗精製PWMは、最終濃度100ng/mlで誘導
した場合71%の抗腫瘍免疫細胞誘導活性を示した。
来の粗精製PWMは、最終濃度100ng/mlで誘導
した場合71%の抗腫瘍免疫細胞誘導活性を示した。
【0044】実施例2 (1)誘導刺激材の作製 実施例1と同様にして、抗腫瘍免疫細胞誘導物質を調製
した。水不溶性担体として、メチルメタアクリレート−
ジビニルベンゼン共重合体の粒子AXT−31(東京有
機(株)製)を分球し、500〜710μmを調製し
た。100mlのAXT−31に、2−ヒドロキシエチ
ルメタアクリレートとジエチルアミノエチルメタアクリ
レートとのランダム共重合体の2%(w/v)メタノー
ル溶液100mlを反応させ、コーティングを施した。
100mlのコーティングしたAXT−31、120m
lのジメチルスルホキシド(DMSO)、80mlのエ
ピクロルヒドリン、10mlの50%NaOH溶液で5
時間、30℃で振とうしAXT−31にエポキシ基を導
入した。100mlのエポキシ活性化AXT−31と、
所定量の抗腫瘍免疫細胞誘導物質を含んだ100mlの
0.1Mリン酸バッファー(pH9.0)を20時間振
とうして抗腫瘍免疫細胞誘導物質をAXT−31に結合
させた。洗浄の後、残ったエポキシ基を1Mエタノール
アミン溶液中で振とうすることでブロックし、洗浄の後
100mlの抗腫瘍免疫細胞誘導刺激材を得た。
した。水不溶性担体として、メチルメタアクリレート−
ジビニルベンゼン共重合体の粒子AXT−31(東京有
機(株)製)を分球し、500〜710μmを調製し
た。100mlのAXT−31に、2−ヒドロキシエチ
ルメタアクリレートとジエチルアミノエチルメタアクリ
レートとのランダム共重合体の2%(w/v)メタノー
ル溶液100mlを反応させ、コーティングを施した。
100mlのコーティングしたAXT−31、120m
lのジメチルスルホキシド(DMSO)、80mlのエ
ピクロルヒドリン、10mlの50%NaOH溶液で5
時間、30℃で振とうしAXT−31にエポキシ基を導
入した。100mlのエポキシ活性化AXT−31と、
所定量の抗腫瘍免疫細胞誘導物質を含んだ100mlの
0.1Mリン酸バッファー(pH9.0)を20時間振
とうして抗腫瘍免疫細胞誘導物質をAXT−31に結合
させた。洗浄の後、残ったエポキシ基を1Mエタノール
アミン溶液中で振とうすることでブロックし、洗浄の後
100mlの抗腫瘍免疫細胞誘導刺激材を得た。
【0045】(2)抗腫瘍免疫細胞誘導活性 抗腫瘍免疫細胞誘導活性測定は、ヒト胃癌細胞株MKN
−1を標的細胞として行った。結合反応時に抗腫瘍免疫
細胞誘導物質を10mg及び80mg添加して作製した
誘導刺激材により誘導された抗腫瘍免疫細胞は、それぞ
れ51%及び89%の活性を示した。比較例2と比較す
ると、抗腫瘍免疫細胞誘導物質を結合させた誘導刺激材
は、約8倍濃度の粗精製PWMを結合させた誘導刺激材
と同等の抗腫瘍免疫細胞誘導活性を示した。
−1を標的細胞として行った。結合反応時に抗腫瘍免疫
細胞誘導物質を10mg及び80mg添加して作製した
誘導刺激材により誘導された抗腫瘍免疫細胞は、それぞ
れ51%及び89%の活性を示した。比較例2と比較す
ると、抗腫瘍免疫細胞誘導物質を結合させた誘導刺激材
は、約8倍濃度の粗精製PWMを結合させた誘導刺激材
と同等の抗腫瘍免疫細胞誘導活性を示した。
【0046】比較例2 実施例2と同様の抗腫瘍免疫細胞誘導活性測定におい
て、従来の粗精製PWMを結合反応時に10mg及び8
0mg添加で結合させた誘導刺激材は、それぞれ19%
及び48%の抗腫瘍免疫細胞誘導活性を示した。
て、従来の粗精製PWMを結合反応時に10mg及び8
0mg添加で結合させた誘導刺激材は、それぞれ19%
及び48%の抗腫瘍免疫細胞誘導活性を示した。
【0047】実施例3 実施例2と同様の抗腫瘍免疫細胞誘導活性測定におい
て、ヒト慢性骨髄性白血病細胞株K−562、及びヒト
バーキットリンパ腫細胞株Daudiを標的細胞とし
て、抗腫瘍免疫細胞誘導物質を80mg添加で結合させ
た誘導刺激材は、それぞれ78%及び69%の抗腫瘍免
疫細胞誘導活性を示した。
て、ヒト慢性骨髄性白血病細胞株K−562、及びヒト
バーキットリンパ腫細胞株Daudiを標的細胞とし
て、抗腫瘍免疫細胞誘導物質を80mg添加で結合させ
た誘導刺激材は、それぞれ78%及び69%の抗腫瘍免
疫細胞誘導活性を示した。
【0048】比較例3 実施例3と同様の抗腫瘍免疫細胞誘導活性測定におい
て、従来の粗精製PWMを80mg添加で結合させた誘
導刺激材は、それぞれ42%及び23%の抗腫瘍免疫細
胞誘導活性を示した。
て、従来の粗精製PWMを80mg添加で結合させた誘
導刺激材は、それぞれ42%及び23%の抗腫瘍免疫細
胞誘導活性を示した。
【0049】実施例4 4頭のBALB/cマウスに、マウスの体重1kg当た
り25mgの抗腫瘍免疫細胞誘導物質を投与したが、1
4日後も死亡は認められなかった。また、3頭のBAL
B/cマウスに、マウスの体重1kg当たり50mgの
抗腫瘍免疫細胞誘導物質を投与したところ、10日目に
1頭が死亡した。比較例5と比較すると、はるかに毒性
が低下していることがわかる。
り25mgの抗腫瘍免疫細胞誘導物質を投与したが、1
4日後も死亡は認められなかった。また、3頭のBAL
B/cマウスに、マウスの体重1kg当たり50mgの
抗腫瘍免疫細胞誘導物質を投与したところ、10日目に
1頭が死亡した。比較例5と比較すると、はるかに毒性
が低下していることがわかる。
【0050】比較例4 3頭のBALB/cマウスに、マウスの体重1kg当た
り25mgの粗精製PWMを投与したところ、8日目ま
でにすべての死亡が認められた。また、3頭のBALB
/cマウスに、マウスの体重1kg当たり50mgの粗
精製PWMを投与したところ、5日目までにすべての死
亡が認められた。
り25mgの粗精製PWMを投与したところ、8日目ま
でにすべての死亡が認められた。また、3頭のBALB
/cマウスに、マウスの体重1kg当たり50mgの粗
精製PWMを投与したところ、5日目までにすべての死
亡が認められた。
【0051】
【発明の効果】本発明の新規タンパク質及び抗腫瘍免疫
細胞誘導刺激材は、以上述べてきたように、ヒト末梢血
白血球を効率良くかつ安全に活性化し、従来よりも強力
な抗腫瘍免疫細胞を誘導するものであり、胃癌,肺癌,
乳癌,肝癌等の癌治療に用いようとするものである。
細胞誘導刺激材は、以上述べてきたように、ヒト末梢血
白血球を効率良くかつ安全に活性化し、従来よりも強力
な抗腫瘍免疫細胞を誘導するものであり、胃癌,肺癌,
乳癌,肝癌等の癌治療に用いようとするものである。
【図1】粗精製PWMをPBS(−)中でゲルクロマト
グラフィーを行い、PWMを分画したグラフである。
グラフィーを行い、PWMを分画したグラフである。
【図2】分画したPWMを生理食塩水中でゲルクロマト
グラフィーを行い、抗腫瘍免疫細胞誘導物質を分画した
グラフである。
グラフィーを行い、抗腫瘍免疫細胞誘導物質を分画した
グラフである。
Claims (5)
- 【請求項1】 ポークウィードマイトージェンより得ら
れる、分子量が35,000±5,000、かつ等電点
が4±1の純化されたタンパク質。 - 【請求項2】 特許請求の範囲第1項よりなる抗腫瘍免
疫細胞誘導物質。 - 【請求項3】 ポークウィードマイトージェンより得ら
れる、アミノ酸配列として Ala−Pro−Glu−
Cys−Gly−Arg−Glu−Ala−Ser−G
ly−Lys−Val−Cys−Pro−Asp−As
p−Leuよりなる配列を持つ特許請求の範囲第1項よ
りなる純化されたタンパク質。 - 【請求項4】 特許請求の範囲第3項よりなる抗腫瘍免
疫細胞誘導物質。 - 【請求項5】 水不溶性担体の表面に、特許請求の範囲
第1項から第4項記載の物質の中の一つを有することを
特徴とする抗腫瘍免疫細胞誘導刺激材。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP21418791 | 1991-08-01 | ||
| JP3-214187 | 1991-08-01 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH05239099A true JPH05239099A (ja) | 1993-09-17 |
Family
ID=16651683
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP4223540A Withdrawn JPH05239099A (ja) | 1991-08-01 | 1992-07-31 | 新規タンパク質及び抗腫瘍免疫細胞誘導刺激材 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH05239099A (ja) |
-
1992
- 1992-07-31 JP JP4223540A patent/JPH05239099A/ja not_active Withdrawn
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Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A300 | Withdrawal of application because of no request for examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A300 Effective date: 19991005 |