JPH0528107B2 - - Google Patents

Info

Publication number
JPH0528107B2
JPH0528107B2 JP21019386A JP21019386A JPH0528107B2 JP H0528107 B2 JPH0528107 B2 JP H0528107B2 JP 21019386 A JP21019386 A JP 21019386A JP 21019386 A JP21019386 A JP 21019386A JP H0528107 B2 JPH0528107 B2 JP H0528107B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
gel
alginic acid
bacterial cells
immobilized
acrylamide
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
JP21019386A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPS6368085A (en
Inventor
Nobuyuki Machida
Jun Kimura
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
NEC Corp
Original Assignee
Nippon Electric Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Nippon Electric Co Ltd filed Critical Nippon Electric Co Ltd
Priority to JP21019386A priority Critical patent/JPS6368085A/en
Publication of JPS6368085A publication Critical patent/JPS6368085A/en
Publication of JPH0528107B2 publication Critical patent/JPH0528107B2/ja
Granted legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

[産業上の利用分野] 本発明は、固定化菌体または酵素およびその製
造方法に関する。 [従来の技術] 高濃度の菌体または酵素を担体に固定化し、各
種の反応を行なう装置が医薬品工業や食品工業等
の分野で使用されており、特に近年では生物を利
用した廃水処理、エネルギー生産の分野において
も採用されはじめている。菌体または酵素の固定
化法としては、従来より担体結合法、架橋法、包
括法等が知られており、このうち包括法は、菌体
の漏出が少なく、かつ担体と菌体または酵素自体
との化学的結合がないことから、固定化による菌
体または酵素の活性低下が少ないこと、また様々
な物質との同時固定化が出来る等の利点があり、
広く使用されている。包括固定化に使用される担
体としては、アルギン酸、カラギーナン、寒天、
アルブミン等の天然高分子、アクリルアミド、光
架橋性樹脂、ポリビニルアルコール、ポリスチレ
ン等の合成高分子が知られている。 [発明が解決しようとする問題点] このうち、アルギン酸を用いる固定化法は、簡
便な操作で固定化でき、活性の低下が少ないこと
から一般に広く普及しているが、他の天然高分子
も含めて、強度が小さく、耐久性が悪いと共に、
微生物による分解がおこる等の問題点がある。 これに対して、微小アルギン酸ゲルをシリカゾ
ルに添加し、シリカをゲル化し、シリカゲル−ア
ルギン酸二重構造の固定化菌体または酵素を得る
方法が知られている(特開昭60−221089号公報)。
しかしこの方法は、製造法が複雑であり、かつシ
リカゲルの部分は微生物の増殖に適さないという
欠点があり、担体内部で微生物が増殖しゲルの活
性が増加するという固定化菌体としての利点が少
ない。また、微小アルギン酸ゲルを別途に作成
し、回収してシリカゾルに添加するので、この点
でも操作が複雑である。 一方、合成高分子は強度が大きく、耐久性が良
く、微生物に分解されにくいという利点があり、
特にアクリルアミドが広く利用されている。 しかしながらアクリルアミドによる固定化にお
いては、高分子モノマーや架橋剤、重合剤等の毒
性作用により、あるいは重合反応時の熱等によ
り、菌体や酵素の活性が低下することが多い。ア
クリルアミドで固定化する場合の活性低下を小さ
くする方法としては、固定化する菌体懸濁液に凝
集剤を添加し、微小フロツクとした後にアクリル
アミドで包括固定化する方法が知られている(特
開昭61−68196号公報)。 しかし、凝集剤によるフロツク化は微生物+酵
素の種類により差があり、多種の菌体や酵素を均
一なフロツクとすることは困難である。またフロ
ツクが大きすぎた場合には、ゲルの強度が小さく
なる。したがつて、フロツクの大きさは数百ミク
ロンであることが望ましいが、この程度の大きさ
のフロツクを凝集剤で作成する場合には、フロツ
ク化せず、浮遊したまま残存する菌体または酵素
も多く、それらの菌体または酵素はアクリルアミ
ド固定化時に失活する。 本発明は上記した従来の問題点を解決するため
になされたもので、物理的強度が大きく、耐久性
が良く、固定化時の活性低下が小さい固定化菌体
または酵素及びその製造方法を提供することを目
的とする。 [問題点を解決するための手段] すなわち本発明はアクリルアミドゲルマトリツ
クス中に、微小アルギン酸固定化菌体または酵素
を分散保持させてなることを特徴とする固定化菌
体または酵素であり、またその製造方法は菌体ま
たは酵素とアルギン酸水溶液を混合して混合ゾル
とする工程と、この工程ゾルをアクリルアミドモ
ノマーおよびアルギン酸ゲル化剤の混合液中に噴
霧して微小アルギン酸ゲルを形成させる工程と、
前記微小アルギン酸ゲルが分散した混合液をゲル
化させる工程とを含むことを特徴とする。 本発明において固定化する菌体は、任意の株を
純水培養したものでも良いし、活性汚泥のような
混合菌体でもよい。また酵素としては、精製酵素
の他に粗製物として、菌体破砕物、動植物細胞、
細胞器官等でも良い。また、その濃度は任意に調
整できる。 一方、アルギン酸水溶液は、アルギン酸のナト
リウム塩、カリウム塩またはアンモニウム塩を水
に溶解し、調整する。濃度が高い場合には、粘性
が大きく、取り扱いが不便であり、噴霧しにくく
なる。濃度が低い場合にはゲル化剤と接触し、ゲ
ル化した時に薄膜状となり、互いに絡み合い、微
小ゲルにならないことがある。したがつて、アル
ギン酸の濃度は、ゲル化させた時に微小塊状とな
り、かつ粘性が大きすぎない濃度が良く、0.3〜
1%が望ましい。 また、この微小アルギン酸ゲルをさらに包括す
る高分子マトリツクスとなるアクリルアミドは、
アルギン酸ゲル化剤および必要に応じて架橋剤、
重合開始剤等と混合し、モノマー混合液として貯
えられる。 アルギン酸のゲル化剤としては塩化カルシウム
が良く使用され、他に酢酸カルシウム、硫酸アル
ミニウム、塩化アルミニウム等が使用される。こ
れらのゲル化剤の濃度はモノマー混合液中で通常
1〜10%(w/v)程度になるように添加され
る。アクリルアミドモノマーの濃度は10〜35%が
好ましく、架橋剤としてはN,N′−メチレンビ
スアクリルアミド、N,N′−プロピレンビスア
クリルアミド等を使用することができ、モノマー
混合液中の濃度は0.5〜6%が望ましい。重合開
始剤としては、過硫酸アンモニウム、過硫酸カリ
ウム等が使用される。 次に前記した菌体または酵素含有アルギン酸水
溶液はモノマー混合液中に噴霧される。そして、
前記モノマー混合液中のゲル化剤と反応し、微小
アルギン酸固定化ゲルとなる。 噴霧装置としては、加圧噴霧ノズル、ガス噴霧
化ノズル等が知られている。これらのノズルで
は、通常1〜120Kg/cm3程度の圧力で、アルギン
酸水溶液を噴霧するので、受け皿のゲル化剤水溶
液は比較的大容量を必要とする。従つて、生成し
た微小アルギン酸ゲルを分離回収するためには、
遠心法により回収する等の手間がかかる。そこで
本発明の製造方法では、モノマー混合液にゲル化
剤が添加されており、モノマー混合液自体に菌体
又は酵素を含有するアルギン酸水溶液を噴霧する
ので、従来のように別途作成した微小アルギン酸
ゲルを回収し、添加使用するという方法に比べ簡
略化される。こうして作成した微小アルギン酸ゲ
ルは、粒子径が数十ミクロンから数百ミクロンに
なるが、この微小アルギン酸ゲルをさらにアクル
リアミドで包括固定し得られる二重構造のゲルの
強度を考慮すると前記微小アルギン酸ゲルの粒子
径は500ミクロン以下が望ましい。 次に、前記のようにいて得られた微小アルギン
酸ゲルを含有するモノマー混合液は、微小アルギ
ン酸ゲルを分散保持するマトリツクスとして重合
させる。アクリルアミドの重合法では、さらに重
合促進剤の添加が必要である。重合促進剤として
は、テトラメチルエチレンジアミン、β−ジメチ
ルアミドプロピオニトリル等が使用できる。 このようにして得られる、微小アルギン酸ゲル
を内包するアクリルアミドゲルは、目的に応じ
て、球状、膜状、フアイバー状等の形状を選択
し、使用する。この場合、微小アルギン酸ゲル
は、数十ミクロンから数百ミクロンの大きさであ
り、そのマトリツクスとなるアクリルアミドゲル
から脱離することはない。 [実施例] 次に実施例にもとづき、本発明を説明するが、
本発明はこれに限定されるものではない。 第1図は本発明の固定化菌体または酸素を得る
ための装置の一例を示す構成図である。 アルギン酸水溶液槽1に貯えられた所定濃度の
アルギン酸水溶液は濃縮菌体槽2に貯えられてい
る菌体または酵素と共に混合槽3で混合される。
一方、アクリルアミドモノマーはモノマー槽4に
貯えられており、添加剤槽5のアルギン酸ゲル化
剤およびその他の添加剤と共にモノマー混合槽6
で混合される。このモノマー混合液はスプレー室
7に送られ、スプレー室7では前記の菌体または
酵素含有アルギン酸水溶液がモノマー混合液に向
けて噴霧される。このようにして得られた微小ア
ルギン酸ゲルを含有するモノマー混合液は固定化
装置8に送られ、重合される。アクリルアミドの
重合法としては、チユーブ中を循環する有機溶剤
中に、モノマー混合液を滴下する方法がある。こ
の方法によると、任意の粒状の球状のゲルが得ら
れる。この場合は、前記有機溶剤中に重合促進剤
を添加しておけば良い。又、モノマー混合液に重
合促進剤を添加した後に鋳型に注入し、ゲル化す
る方法もある。 次にこの装置を用いた菌体の固定化方法の実施
例について述べる。 実施例 1 脱窒菌シユウドモナス・デニトリフイカンス
(Pseudomonas denitrificans)を硝酸カリウム
0.2g/を含む肉汁培地を使用し、30℃で静置
培養した。この培養菌体を集菌し、水に分散して
濃縮菌液(菌体湿重量0.2g/ml)を得た。この
濃縮菌液4mlと0.5%アルギン酸ナトリウム水溶
液8mlを混合する。アルギン酸ナトリウムの濃度
は約30%であつた。 一方、20%アクリルアミドモノマー水溶液12ml
と、2%N,N′−メチレンビスアクリルアミド
6ml、1M塩化カルシウム水溶液2mlを混合し、
モノマー混合液を作成しさらに重合開始剤として
過硫酸アンモニウム水溶液(0.4g/ml)を160μ
添加した。このモノマー混合液をスプレー室に
導入し、ここで自作のガス噴霧化ノズルを通し
て、前記の菌体を含有するアルギン酸水溶液を噴
霧した。この結果前記モノマー混合液中に粒径数
十ミクロンから数百ミクロンの微小アルギン酸ゲ
ルが生成した。この工程に引きつづき、微小アル
ギン酸ゲルを含有するモノマー混合液は、内径
3.14mmのタイゴンチユーブ(ノートン社、
TYGON TUBING)中を循環させている大豆
油中に、20μずつ、滴下した。大豆油中に、重
合促進剤としてテトラメチルエチレンジアミン
を、大豆油に対して1%となるように添加してお
く。チユーブ長は2mであり、大豆油の循環速度
は100mm/minとした。滴下された微小アルギン
酸ゲルを含有するモノマー混合液は、大豆油には
さまれた状態でチユーブ中を循環し、重合反応が
進行する。 以下の様にして得られた固定化菌体は直径約3
mmで、微小アルギン酸ゲルを内包する強度が大き
く、弾力性のある二重構造のゲルであつた。続い
て、得られた固体化菌体を洗浄後、硝酸カリウム
0.2g/を含む合成廃水400mlに接種し、30℃で
攪拌し、脱窒処理を行なつた。処理時間(hr)に
対する窒素濃度(mg/)の変化を測定したとこ
ろ、第2図Aのようになつた。比較のため、0.5
%アルギン酸ナトリウム8mlの代わりに水8ml混
合し、菌体を直接アクリルアミドに包括固定化し
たゲルを作成し、前記と同じ脱窒処理を行つた。
結果を第2図Bに示す。 実施例 2 実施例1と同様にして作成した、二重構造の固
定化菌体を内径30mm長さ150mmのカラムに充填し、
実施例1と同様の合成廃水を1/dayの割合で
流入し、30℃で脱窒処理を行つた。始めの数日
は、脱窒率は低かつたがその後約1ケ月間は、高
い脱窒率を示した。その結果を第1表に示す。
[Industrial Application Field] The present invention relates to immobilized bacterial cells or enzymes and methods for producing the same. [Prior art] Equipment that immobilizes highly concentrated bacterial cells or enzymes on carriers and performs various reactions has been used in fields such as the pharmaceutical and food industries, and in recent years has been particularly used in wastewater treatment using living organisms, energy It is also beginning to be adopted in the field of production. As methods for immobilizing bacterial cells or enzymes, carrier-binding methods, cross-linking methods, entrapment methods, etc. have been known. Among these, the entrapping method is a method that reduces the leakage of bacterial cells and allows the carrier and the bacterial cells or enzymes themselves to be bonded together. Since there is no chemical bonding with other substances, it has the advantage that there is little decrease in the activity of bacterial cells or enzymes due to immobilization, and that it can be immobilized simultaneously with various substances.
Widely used. Carriers used for entrapping immobilization include alginic acid, carrageenan, agar,
Natural polymers such as albumin, synthetic polymers such as acrylamide, photocrosslinkable resins, polyvinyl alcohol, and polystyrene are known. [Problems to be solved by the invention] Among these, the immobilization method using alginic acid is widely used because it can be immobilized by simple operations and there is little decrease in activity, but other natural polymers are also used. Including, the strength is low and the durability is poor,
There are problems such as decomposition by microorganisms. On the other hand, a method is known in which microalginate gel is added to silica sol to gel the silica to obtain immobilized bacterial cells or enzymes with a silica gel-alginate double structure (Japanese Patent Laid-Open No. 60-221089). .
However, this method has the disadvantage that the manufacturing method is complicated and the silica gel part is not suitable for the growth of microorganisms, and the advantage of immobilized bacterial cells is that microorganisms grow inside the carrier and the activity of the gel increases. few. In addition, since microscopic alginate gel is separately prepared, recovered, and added to the silica sol, the operation is complicated in this respect as well. On the other hand, synthetic polymers have the advantages of high strength, good durability, and resistance to decomposition by microorganisms.
In particular, acrylamide is widely used. However, in immobilization with acrylamide, the activity of bacterial cells and enzymes often decreases due to the toxic effects of polymer monomers, crosslinking agents, polymerization agents, etc., or due to heat during polymerization reactions. A known method for minimizing the decrease in activity when immobilizing with acrylamide is to add a flocculant to the suspension of bacterial cells to be immobilized, form microflocs, and then entrapment immobilize with acrylamide. Publication No. 61-68196). However, flocculation using a flocculant differs depending on the type of microorganisms and enzymes, and it is difficult to form a uniform floc of various types of microbial cells and enzymes. Also, if the flocs are too large, the strength of the gel will be reduced. Therefore, it is desirable that the size of the flocs be several hundred microns, but when creating flocs of this size using a flocculant, bacteria or enzymes that do not become flocs and remain suspended. In many cases, these bacterial cells or enzymes are deactivated upon immobilization with acrylamide. The present invention has been made to solve the above-mentioned conventional problems, and provides an immobilized bacterial cell or enzyme that has high physical strength, good durability, and a small decrease in activity during immobilization, and a method for producing the same. The purpose is to [Means for Solving the Problems] That is, the present invention is an immobilized microbial cell or enzyme characterized by dispersing and retaining minute alginate-immobilized microbial cells or an enzyme in an acrylamide gel matrix, and The manufacturing method includes a step of mixing bacterial cells or an enzyme with an alginic acid aqueous solution to form a mixed sol, and a step of spraying this sol into a mixed solution of an acrylamide monomer and an alginate gelling agent to form a fine alginate gel.
The method is characterized in that it includes a step of gelling a mixed liquid in which the minute alginate gel is dispersed. The bacterial cells to be immobilized in the present invention may be any strain cultured in pure water, or may be mixed bacterial cells such as activated sludge. In addition to purified enzymes, crude enzymes include crushed bacterial cells, animal and plant cells,
It may also be a cell organ or the like. Moreover, the concentration can be adjusted arbitrarily. On the other hand, an alginic acid aqueous solution is prepared by dissolving sodium salt, potassium salt, or ammonium salt of alginic acid in water. When the concentration is high, the viscosity is high, making it inconvenient to handle and difficult to spray. If the concentration is low, when it comes into contact with the gelling agent and gels, it becomes a thin film and becomes entangled with each other, so that it may not form a microgel. Therefore, the concentration of alginic acid should be such that it forms micro-clumps when gelatinized, and the viscosity is not too high;
1% is desirable. In addition, acrylamide, which becomes the polymer matrix that further encloses this microalginate gel,
alginate gelling agent and optionally crosslinking agent,
It is mixed with a polymerization initiator and stored as a monomer mixture. Calcium chloride is often used as a gelling agent for alginic acid, and calcium acetate, aluminum sulfate, aluminum chloride, etc. are also used. The concentration of these gelling agents is usually about 1 to 10% (w/v) in the monomer mixture. The concentration of the acrylamide monomer is preferably 10 to 35%, and N,N'-methylenebisacrylamide, N,N'-propylenebisacrylamide, etc. can be used as the crosslinking agent, and the concentration in the monomer mixture is 0.5 to 35%. 6% is desirable. As the polymerization initiator, ammonium persulfate, potassium persulfate, etc. are used. Next, the aqueous alginic acid solution containing the bacterial cells or enzymes described above is sprayed into the monomer mixture. and,
It reacts with the gelling agent in the monomer mixture to form a fine alginic acid immobilized gel. As spray devices, pressurized spray nozzles, gas atomization nozzles, and the like are known. Since these nozzles usually spray the alginic acid aqueous solution at a pressure of about 1 to 120 kg/cm 3 , a relatively large volume of the gelling agent aqueous solution in the saucer is required. Therefore, in order to separate and recover the generated fine alginate gel,
It takes time and effort to recover the material by centrifugation. Therefore, in the production method of the present invention, a gelling agent is added to the monomer mixture, and an alginic acid aqueous solution containing bacterial cells or enzymes is sprayed onto the monomer mixture itself. This method is simpler than the method of collecting and adding. The particle size of the micro alginate gel thus created ranges from several tens of microns to several hundreds of microns, but considering the strength of the double-structured gel obtained by entrapping and fixing this micro alginate gel with acrylamide, the micro alginate gel is The particle size is preferably 500 microns or less. Next, the monomer mixture containing the fine alginic acid gel obtained as described above is polymerized to form a matrix that holds the fine alginic acid gel dispersed therein. In the polymerization method of acrylamide, it is necessary to further add a polymerization accelerator. As the polymerization accelerator, tetramethylethylenediamine, β-dimethylamide propionitrile, etc. can be used. The acrylamide gel containing fine alginate gel obtained in this manner is used in a shape such as spherical, membrane, or fiber, depending on the purpose. In this case, the fine alginate gel has a size of several tens of microns to several hundred microns, and does not separate from the acrylamide gel that forms the matrix. [Examples] Next, the present invention will be explained based on Examples.
The present invention is not limited to this. FIG. 1 is a block diagram showing an example of an apparatus for obtaining immobilized bacterial cells or oxygen of the present invention. The alginic acid aqueous solution of a predetermined concentration stored in the alginic acid aqueous solution tank 1 is mixed with the bacterial cells or enzymes stored in the concentrated bacterial cell tank 2 in the mixing tank 3.
On the other hand, acrylamide monomer is stored in a monomer tank 4, and together with the alginate gelling agent and other additives in an additive tank 5, a monomer mixing tank 6
mixed in. This monomer mixture is sent to the spray chamber 7, where the bacterial cells or enzyme-containing aqueous alginic acid solution is sprayed toward the monomer mixture. The monomer mixture containing the fine alginate gel thus obtained is sent to the immobilization device 8 and polymerized. As a method for polymerizing acrylamide, there is a method in which a monomer mixture is dropped into an organic solvent circulating in a tube. According to this method, a spherical gel with arbitrary grains can be obtained. In this case, a polymerization accelerator may be added to the organic solvent. Alternatively, there is a method in which a polymerization accelerator is added to the monomer mixture and then poured into a mold to form a gel. Next, an example of a method for immobilizing bacterial cells using this device will be described. Example 1 The denitrifying bacterium Pseudomonas denitrificans was treated with potassium nitrate.
A broth medium containing 0.2 g/ml was used, and static culture was performed at 30°C. The cultured cells were collected and dispersed in water to obtain a concentrated bacterial solution (wet weight of cells: 0.2 g/ml). Mix 4 ml of this concentrated bacterial solution with 8 ml of 0.5% sodium alginate aqueous solution. The concentration of sodium alginate was approximately 30%. Meanwhile, 12ml of 20% acrylamide monomer aqueous solution
, 6 ml of 2% N,N'-methylenebisacrylamide, and 2 ml of 1M calcium chloride aqueous solution,
Create a monomer mixture and add 160μ of ammonium persulfate aqueous solution (0.4g/ml) as a polymerization initiator.
Added. This monomer mixture was introduced into a spray chamber, where the alginic acid aqueous solution containing the bacterial cells was sprayed through a self-made gas atomization nozzle. As a result, fine alginate gel with a particle size of several tens of microns to several hundred microns was produced in the monomer mixture. Following this step, the monomer mixture containing the fine alginate gel is
3.14mm Tygon tube (Norton,
A 20μ droplet was added to the soybean oil circulating in the TYGON TUBING. Tetramethylethylenediamine is added to soybean oil as a polymerization accelerator in an amount of 1% based on the soybean oil. The tube length was 2 m, and the soybean oil circulation speed was 100 mm/min. The dropped monomer mixture containing fine alginic acid gel circulates through the tube while being sandwiched between soybean oil, and the polymerization reaction proceeds. The immobilized bacterial cells obtained as follows have a diameter of approximately 3
mm, it was a strong and elastic double-structured gel that contained fine alginate gels. Subsequently, after washing the obtained solidified bacterial cells, potassium nitrate was added.
It was inoculated into 400 ml of synthetic wastewater containing 0.2 g/ml, and stirred at 30°C to perform denitrification treatment. When the change in nitrogen concentration (mg/) with respect to treatment time (hr) was measured, the results were as shown in FIG. 2A. For comparison, 0.5
% sodium alginate was mixed with 8 ml of water to prepare a gel in which bacterial cells were directly entrapping immobilized on acrylamide, and the same denitrification treatment as above was performed.
The results are shown in Figure 2B. Example 2 A double-structured immobilized bacterial cell prepared in the same manner as in Example 1 was packed into a column with an inner diameter of 30 mm and a length of 150 mm.
The same synthetic wastewater as in Example 1 was flowed in at a rate of 1/day, and denitrification treatment was performed at 30°C. For the first few days, the denitrification rate was low, but for about a month thereafter, it showed a high denitrification rate. The results are shown in Table 1.

【表】 又、約1ケ月の後も、固定化菌体の強度は大き
く、弾力性も変わらなかつた。比較のため、同量
の菌体を含有するアルギン酸球状ゲルを、同様の
カラムに充填し、同様の処理実験を行つたとこ
ろ、該ゲルは数日のうちに溶解し、消滅した。 [発明の効果] 以上詳述したように、本発明によれば固定化時
に活性低下が少なく、かつ強度が大きく、耐久性
のある固定化菌体又は酵素が得られる。またその
製造方法はモノマー混合液に直接、菌体又は酵素
を含有するアルギン酸水溶液を噴霧し、微小ゲル
を作成するので、工程が簡便である、などの利点
を有する。
[Table] Furthermore, even after about one month, the strength of the immobilized bacterial cells remained high and the elasticity did not change. For comparison, when a similar column was filled with alginate spherical gel containing the same amount of bacterial cells and a similar treatment experiment was performed, the gel dissolved and disappeared within a few days. [Effects of the Invention] As detailed above, according to the present invention, it is possible to obtain immobilized microbial cells or enzymes that exhibit little decrease in activity during immobilization, have high strength, and are durable. In addition, the manufacturing method has the advantage that the process is simple because a fine gel is created by directly spraying an aqueous alginic acid solution containing bacterial cells or enzymes onto the monomer mixture.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of the drawing]

第1図は本発明に係る方法を実施するための装
置の一例を示す構成図、第2図は本発明の固定化
菌体を用いて脱窒処理を行なつた場合の処理時間
と窒素濃度との関係を示す図である。 1……アルギン酸水溶液槽、2……濃縮菌体
槽、3……混合槽、4……モノマー槽、5……添
加剤槽、6……モノマー混合槽、7……スプレー
室、8……固定化装置。
Fig. 1 is a block diagram showing an example of an apparatus for carrying out the method according to the present invention, and Fig. 2 shows treatment time and nitrogen concentration when denitrification treatment is performed using the immobilized bacterial cells of the present invention. FIG. 1... Alginic acid aqueous solution tank, 2... Concentrated bacterial cell tank, 3... Mixing tank, 4... Monomer tank, 5... Additive tank, 6... Monomer mixing tank, 7... Spray room, 8... Immobilization device.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 アクリルアミドゲルマトリツクス中に、微小
アルギン酸固定化菌体または酵素を分散保持させ
てなることを特徴とする固定化菌体または酵素。 2 菌体または酵素とアルギン酸水溶液を混合し
て混合ゾルとする工程と、この混合ゾルをアクリ
ルアミドモノマーおよびアルギン酸ゲル化剤の混
合液中に噴霧して微小アルギン酸ゲルを形成させ
る工程と、前記微小アルギン酸ゲルが分散した混
合液をゲル化させる工程とを含むことを特徴とす
る固定化菌体または酵素の製造方法。
[Scope of Claims] 1. An immobilized microbial cell or enzyme, characterized in that microscopic alginate-immobilized microbial cells or an enzyme are dispersed and held in an acrylamide gel matrix. 2. A step of mixing bacterial cells or an enzyme with an alginic acid aqueous solution to form a mixed sol, a step of spraying this mixed sol into a mixed solution of an acrylamide monomer and an alginic acid gelling agent to form a fine alginic acid gel, and a step of forming a fine alginic acid gel. 1. A method for producing immobilized bacterial cells or enzymes, comprising the step of gelling a mixed liquid in which a gel is dispersed.
JP21019386A 1986-09-05 1986-09-05 Immobilized microbial cell of enzyme and production thereof Granted JPS6368085A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP21019386A JPS6368085A (en) 1986-09-05 1986-09-05 Immobilized microbial cell of enzyme and production thereof

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP21019386A JPS6368085A (en) 1986-09-05 1986-09-05 Immobilized microbial cell of enzyme and production thereof

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPS6368085A JPS6368085A (en) 1988-03-26
JPH0528107B2 true JPH0528107B2 (en) 1993-04-23

Family

ID=16585324

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP21019386A Granted JPS6368085A (en) 1986-09-05 1986-09-05 Immobilized microbial cell of enzyme and production thereof

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JPS6368085A (en)

Also Published As

Publication number Publication date
JPS6368085A (en) 1988-03-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JPS6321474B2 (en)
US4287305A (en) Microorganism immobilization
US4518693A (en) Immobilized biocatalysts
IE52716B1 (en) Immobilization of viable microorganisms
JP3361570B2 (en) Microorganism immobilization method using polymer hydrogel granules
CA1215336A (en) Immobilization of catalytically active microorganisms in agar gel fibers
JP2004075762A (en) Method for producing polyvinyl alcohol-based hydrogel
JPH0528107B2 (en)
Nilsson et al. [19] Entrapment of microbial and plant cells in beaded polymers
JP3071364B2 (en) Method for producing hydrogel, heavy metal ion adsorbent, dye adsorbent, microorganism carrier and enzyme immobilizing carrier
JPH05130867A (en) Biocatalyst-immobilized gel
JPH0137987B2 (en)
IE49394B1 (en) Microporous polymer bodies having agents occluded therein
JPS649073B2 (en)
JPH0417631B2 (en)
JPH0427837B2 (en)
JPH0242475B2 (en)
JPH05123694A (en) Treatment of organic waste water with nitrogen fixation bacterial
JPS6219083A (en) Immobilization of microorganism
JPH08323381A (en) Wastewater treatment agent and wastewater treatment method
JP3282271B2 (en) Method for producing ε-poly-L-lysine
JPS6324886A (en) Immobilization of microbial cell of enzyme
JPS58146290A (en) Preparation of polysaccharide
JPH01128787A (en) Immobilization carrier for microbial cells and method for producing the same
JPH0327197B2 (en)