JPH05336982A - ポリヒドロキシ有機酸エステルの分離・精製法 - Google Patents
ポリヒドロキシ有機酸エステルの分離・精製法Info
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- JPH05336982A JPH05336982A JP4353197A JP35319792A JPH05336982A JP H05336982 A JPH05336982 A JP H05336982A JP 4353197 A JP4353197 A JP 4353197A JP 35319792 A JP35319792 A JP 35319792A JP H05336982 A JPH05336982 A JP H05336982A
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Landscapes
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Abstract
(57)【要約】
【構成】 ポリヒドロキシ有機酸エステル蓄積菌体から
ポリヒドロキシ有機酸エステルを分離・精製する方法で
あって、菌体懸濁液へ溶菌酵素を添加して細胞壁を溶解
する工程ののち、細胞質中に存在する顆粒皮膜で覆われ
た粒径0.1 μm以上のポリヒドロキシ有機酸エステル顆
粒について、これを分離回収して集める工程と、しかる
のちに蛋白分解酵素処理によって顆粒皮膜を除去する工
程とからなることを特徴とするポリヒドロキシ有機酸エ
ステルの分離・精製法である。 【効果】 本発明の分離・精製法により、PHA蓄積菌
から、安全に効率よく、純度の高いPHAを分離・精製
することが可能である。
ポリヒドロキシ有機酸エステルを分離・精製する方法で
あって、菌体懸濁液へ溶菌酵素を添加して細胞壁を溶解
する工程ののち、細胞質中に存在する顆粒皮膜で覆われ
た粒径0.1 μm以上のポリヒドロキシ有機酸エステル顆
粒について、これを分離回収して集める工程と、しかる
のちに蛋白分解酵素処理によって顆粒皮膜を除去する工
程とからなることを特徴とするポリヒドロキシ有機酸エ
ステルの分離・精製法である。 【効果】 本発明の分離・精製法により、PHA蓄積菌
から、安全に効率よく、純度の高いPHAを分離・精製
することが可能である。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、菌体内に蓄積されたポ
リヒドロキシ有機酸エステル(以下、PHAという)を
分離・精製する方法に関する。
リヒドロキシ有機酸エステル(以下、PHAという)を
分離・精製する方法に関する。
【0002】
【従来の技術】PHAは、細菌のエネルギー貯蔵物質と
して菌体内に蓄積される高分子であることが知られてい
る。PHAは自然分解性を有するポリマーであることか
ら、環境保護の問題が注目される昨今、大いにその利
用、応用が期待されている。しかしながら、その分離・
精製が問題であった。
して菌体内に蓄積される高分子であることが知られてい
る。PHAは自然分解性を有するポリマーであることか
ら、環境保護の問題が注目される昨今、大いにその利
用、応用が期待されている。しかしながら、その分離・
精製が問題であった。
【0003】従来、菌体内PHAの分離・精製は、クロ
ロホルム、ジクロルエタンなどといった塩素系有機溶媒
を用いて行なわれていた(たとえば、特開昭61-35790号
公報参照)。しかし、抽出に必要とされる溶剤量がきわ
めて大量であるばかりでなく、抽出した溶液の粘度も非
常に大きく該溶液からのポリマーの分離・精製が困難で
ある。さらに、毒性および環境に対する影響に鑑みれ
ば、このような有機溶媒を多量に用いる方法は好ましく
ない。実際に、これらの有機溶媒の使用は漸次、法的に
規制される方向である。
ロホルム、ジクロルエタンなどといった塩素系有機溶媒
を用いて行なわれていた(たとえば、特開昭61-35790号
公報参照)。しかし、抽出に必要とされる溶剤量がきわ
めて大量であるばかりでなく、抽出した溶液の粘度も非
常に大きく該溶液からのポリマーの分離・精製が困難で
ある。さらに、毒性および環境に対する影響に鑑みれ
ば、このような有機溶媒を多量に用いる方法は好ましく
ない。実際に、これらの有機溶媒の使用は漸次、法的に
規制される方向である。
【0004】また、塩素系以外の有機溶媒であるジオキ
サンを用いた方法もあるが(特開昭63-198991 号公報参
照)、ポリマーの溶解性の点で、ジオキサン溶液の温度
を80度以上という高温にしなければならず、作業性の点
やPHAが分解・劣化するなど実用性に欠けるものであ
る。
サンを用いた方法もあるが(特開昭63-198991 号公報参
照)、ポリマーの溶解性の点で、ジオキサン溶液の温度
を80度以上という高温にしなければならず、作業性の点
やPHAが分解・劣化するなど実用性に欠けるものであ
る。
【0005】有機溶媒を用いない方法としては、特開昭
60-145097 号公報に記載の方法があげられる。これは、
PHA含有菌体を蛋白分解酵素および/または界面活性
剤で可溶化したのちにPHAを含む不溶性残留物を分離
する方法である。このような方法では、蛋白分解酵素お
よび/または界面活性剤により非選択的に細胞膜や蛋白
質が可溶化されPHA含有液の粘度が著しく高くなる。
そのため、溶液からのPHA顆粒の分離・回収操作が困
難になり、不純物除去のための濾過、遠心分離などの分
離・回収操作も不可能となる。また、分離・精製操作中
にPHAが細胞質および蛋白質酵素加水分解物と混在
し、安定な懸濁液となるため、遠心分離によってPHA
を集めるためには凝集剤を添加してフロックを形成させ
なくてはならない。これにより凝集剤添加という工程が
増えるだけでなく、フロック中にはPHA以外の成分が
含まれることになるため、製造コストの面でもPHAの
純度の面でも不都合である。
60-145097 号公報に記載の方法があげられる。これは、
PHA含有菌体を蛋白分解酵素および/または界面活性
剤で可溶化したのちにPHAを含む不溶性残留物を分離
する方法である。このような方法では、蛋白分解酵素お
よび/または界面活性剤により非選択的に細胞膜や蛋白
質が可溶化されPHA含有液の粘度が著しく高くなる。
そのため、溶液からのPHA顆粒の分離・回収操作が困
難になり、不純物除去のための濾過、遠心分離などの分
離・回収操作も不可能となる。また、分離・精製操作中
にPHAが細胞質および蛋白質酵素加水分解物と混在
し、安定な懸濁液となるため、遠心分離によってPHA
を集めるためには凝集剤を添加してフロックを形成させ
なくてはならない。これにより凝集剤添加という工程が
増えるだけでなく、フロック中にはPHA以外の成分が
含まれることになるため、製造コストの面でもPHAの
純度の面でも不都合である。
【0006】特開昭63-226291 号公報には、菌体をスフ
ェロプラストへ変換し、音波振動処理によってこれらを
破砕し、そして遠心分離したのちに形成される最上層
(PHA)を分離する方法が記載されている。この方法
では、音波振動処理によりPHA含有液の粘度はやはり
著しく上昇する。また、浮上したPHAを分離するた
め、PHAと同比重である不純物を除去することができ
ない。
ェロプラストへ変換し、音波振動処理によってこれらを
破砕し、そして遠心分離したのちに形成される最上層
(PHA)を分離する方法が記載されている。この方法
では、音波振動処理によりPHA含有液の粘度はやはり
著しく上昇する。また、浮上したPHAを分離するた
め、PHAと同比重である不純物を除去することができ
ない。
【0007】
【発明が解決しようとする課題】本発明はかかる実情に
鑑み、これまでのような有害な有機溶剤を用いず、かつ
PHA含有液の大幅な粘度アップを抑え、また凝集剤の
添加のような余分の工程も不要な純度の高いPHAの分
離・精製法を提供することを目的とする。
鑑み、これまでのような有害な有機溶剤を用いず、かつ
PHA含有液の大幅な粘度アップを抑え、また凝集剤の
添加のような余分の工程も不要な純度の高いPHAの分
離・精製法を提供することを目的とする。
【0008】
【課題を解決するための手段】本発明はPHA蓄積菌体
からPHAを分離・精製する方法であって、菌体懸濁液
へ溶菌酵素を添加して細胞壁を溶解する工程ののち、細
胞質中に存在する顆粒皮膜で覆われた粒径0.1 μm以上
のPHA顆粒について、これを分離回収して集める工程
と、しかるのちに蛋白分解酵素処理によって顆粒皮膜を
除去する工程とからなることを特徴とするPHAの分離
・精製法に関する。
からPHAを分離・精製する方法であって、菌体懸濁液
へ溶菌酵素を添加して細胞壁を溶解する工程ののち、細
胞質中に存在する顆粒皮膜で覆われた粒径0.1 μm以上
のPHA顆粒について、これを分離回収して集める工程
と、しかるのちに蛋白分解酵素処理によって顆粒皮膜を
除去する工程とからなることを特徴とするPHAの分離
・精製法に関する。
【0009】
【実施例】本発明者らは、前記目的を達成すべく鋭意検
討を重ねた結果、溶菌酵素を用いることによりPHA顆
粒膜を損なうことなく細胞壁のみを溶解することで、P
HAを顆粒として他の細胞成分より容易に分離しうるこ
と、さらにPHA顆粒から容易に膜成分を除去しうるこ
とを見出し、本発明を完成した。
討を重ねた結果、溶菌酵素を用いることによりPHA顆
粒膜を損なうことなく細胞壁のみを溶解することで、P
HAを顆粒として他の細胞成分より容易に分離しうるこ
と、さらにPHA顆粒から容易に膜成分を除去しうるこ
とを見出し、本発明を完成した。
【0010】つぎに本発明のPHA分離・精製法につい
て説明する。
て説明する。
【0011】本発明において用いられるPHA蓄積菌体
は、ロドバクター(Rhodobacter)属、アル
カリゲネス(Alcaligenes)属またはバチル
ス(Bacillus)属に属する微生物、その他PH
Aを菌体内に蓄積する微生物であればいずれの菌体でも
よい。ここで、PHAとは、以下の式(I) で示される、
菌体内に蓄積されるポリマーまたはコポリマーである。 式(I) :
は、ロドバクター(Rhodobacter)属、アル
カリゲネス(Alcaligenes)属またはバチル
ス(Bacillus)属に属する微生物、その他PH
Aを菌体内に蓄積する微生物であればいずれの菌体でも
よい。ここで、PHAとは、以下の式(I) で示される、
菌体内に蓄積されるポリマーまたはコポリマーである。 式(I) :
【0012】
【化1】 (式中、mおよびnは整数を表わす)そのようなPHA
としては、たとえば下記の式(II)で示されるポリ-3- ヒ
ドロキシ酪酸エステル(以下、PHBという)よりなる
ポリマーまたはPHBよりなるポリマーが主成分となる
ポリマーがあげられる。 式(II):
としては、たとえば下記の式(II)で示されるポリ-3- ヒ
ドロキシ酪酸エステル(以下、PHBという)よりなる
ポリマーまたはPHBよりなるポリマーが主成分となる
ポリマーがあげられる。 式(II):
【0013】
【化2】 (式中、nは前記と同じ)そのばあいは、他の成分とし
て、炭素数5以上の有機酸エステル成分も含まれてもよ
い。さらに、3-ヒドロキシ酪酸エステル、3-ヒドロキシ
吉草酸エステルよりなるポリマーがあげられる。
て、炭素数5以上の有機酸エステル成分も含まれてもよ
い。さらに、3-ヒドロキシ酪酸エステル、3-ヒドロキシ
吉草酸エステルよりなるポリマーがあげられる。
【0014】このようなPHAを菌体内に蓄積する微生
物では、PHAは顆粒として顆粒膜に包まれて菌体内に
存在する。PHA顆粒膜は、PHA合成酵素およびPH
A分解酵素などの蛋白質と微量のリン脂質からなるもの
で、菌体内でPHAを細胞質から隔離し、顆粒を安定な
形状に保つ働きをしている。
物では、PHAは顆粒として顆粒膜に包まれて菌体内に
存在する。PHA顆粒膜は、PHA合成酵素およびPH
A分解酵素などの蛋白質と微量のリン脂質からなるもの
で、菌体内でPHAを細胞質から隔離し、顆粒を安定な
形状に保つ働きをしている。
【0015】菌体中のPHA顆粒の粒径は0.1 μm以上
であればよい。粒径が0.1 μm未満のばあいには分離・
回収が格段に困難になりかつ0.1 μm以下の分率が相対
的に少なく、0.1 μm以下のPHA顆粒を除外したとし
ても実用上は問題ない。分離操作を行なう前に、検鏡に
より0.1 μm以上であることを確認する。微生物体内に
蓄積するPHA顆粒の大きさは、上述のように0.1 μm
以上が好ましく、0.1μm未満の顆粒は分離精製過程に
おいて排除される可能性がある。
であればよい。粒径が0.1 μm未満のばあいには分離・
回収が格段に困難になりかつ0.1 μm以下の分率が相対
的に少なく、0.1 μm以下のPHA顆粒を除外したとし
ても実用上は問題ない。分離操作を行なう前に、検鏡に
より0.1 μm以上であることを確認する。微生物体内に
蓄積するPHA顆粒の大きさは、上述のように0.1 μm
以上が好ましく、0.1μm未満の顆粒は分離精製過程に
おいて排除される可能性がある。
【0016】また、菌体中のPHA蓄積量も限定されな
いが、本発明の方法は菌体中のPHA蓄積量が高いばあ
いにとくに有効であり、好ましくは80重量%以上であ
る。
いが、本発明の方法は菌体中のPHA蓄積量が高いばあ
いにとくに有効であり、好ましくは80重量%以上であ
る。
【0017】本発明において用いられる溶菌酵素は、細
胞壁を消化するが、顆粒膜を消化しないものならば何で
もよい。そのような酵素としては、たとえばリゾチーム
があげられる。
胞壁を消化するが、顆粒膜を消化しないものならば何で
もよい。そのような酵素としては、たとえばリゾチーム
があげられる。
【0018】まず、前記菌体を懸濁した水性溶液に、溶
菌酵素を0.1 〜0.5 mg/ml添加して室温、約pH6〜8.
5 にて10〜60分程度消化を行なう。
菌酵素を0.1 〜0.5 mg/ml添加して室温、約pH6〜8.
5 にて10〜60分程度消化を行なう。
【0019】溶菌酵素処理によりえられたPHA顆粒を
含有する液から、PHA顆粒を分離回収する。PHA顆
粒の分離は、遠心分離、濾過、電気泳動などによって行
なうことができる。工業的規模で行なうばあいには、遠
心分離または濾過が好ましい。
含有する液から、PHA顆粒を分離回収する。PHA顆
粒の分離は、遠心分離、濾過、電気泳動などによって行
なうことができる。工業的規模で行なうばあいには、遠
心分離または濾過が好ましい。
【0020】遠心分離によってPHA顆粒を分離するば
あいには、遠心分離は約9,000 〜12,000G(G:重力加
速度)で2〜15分間程度行なうのが好ましいが、PHA
顆粒の形状および大きさなどにより適宜決定されるべき
である。
あいには、遠心分離は約9,000 〜12,000G(G:重力加
速度)で2〜15分間程度行なうのが好ましいが、PHA
顆粒の形状および大きさなどにより適宜決定されるべき
である。
【0021】濾過によってPHA顆粒を分離するばあい
には、通常使用される精密濾過膜や限外濾過膜を使用で
きる。たとえば、ポリエチレンやポリプロピレン、ポリ
テトラフルオロエチレン、ポリカーボネートなどのフィ
ルム、メンブレンに特定の孔を形成させたものがあげら
れる。該濾過膜の孔の大きさは、通常少なくとも0.05μ
m以上である。遠心分離と濾過とを組み合わせることに
よっても効率的、あるいは高精度で達成できる。
には、通常使用される精密濾過膜や限外濾過膜を使用で
きる。たとえば、ポリエチレンやポリプロピレン、ポリ
テトラフルオロエチレン、ポリカーボネートなどのフィ
ルム、メンブレンに特定の孔を形成させたものがあげら
れる。該濾過膜の孔の大きさは、通常少なくとも0.05μ
m以上である。遠心分離と濾過とを組み合わせることに
よっても効率的、あるいは高精度で達成できる。
【0022】そのようにして分離されたPHA顆粒を蛋
白分解酵素処理することにより、PHA顆粒膜を溶解除
去する。すなわち、PHA顆粒をpH6〜8の10〜100
μMトリス- HCl緩衝液またはリン酸緩衝液中に再懸
濁し、蛋白分解酵素を100 〜1000μg /ml添加して30〜
40℃にて30〜60分間反応させることにより行なう。
白分解酵素処理することにより、PHA顆粒膜を溶解除
去する。すなわち、PHA顆粒をpH6〜8の10〜100
μMトリス- HCl緩衝液またはリン酸緩衝液中に再懸
濁し、蛋白分解酵素を100 〜1000μg /ml添加して30〜
40℃にて30〜60分間反応させることにより行なう。
【0023】用いられる蛋白分解酵素はとくに限定され
ないが、たとえばプロナーゼ、ナガーゼ、ビオプラー
ゼ、パパイン、トリプシンなどがあげられる。
ないが、たとえばプロナーゼ、ナガーゼ、ビオプラー
ゼ、パパイン、トリプシンなどがあげられる。
【0024】蛋白分解酵素処理後、再び遠心などにより
PHAを分離する。必要に応じて反応後に水で洗浄を行
なう。
PHAを分離する。必要に応じて反応後に水で洗浄を行
なう。
【0025】PHA顆粒膜の溶解除去は、前記のように
顆粒を分散した溶液から行なうことも可能であるが、P
HA顆粒を直接溶融、成形したのちに行なうこともでき
る。成形条件としては、PHAの分解温度以下にて行な
うことが必須である。好ましくは、分解点以下にて圧力
をかけて焼結体を形成することが好ましい。成形後に処
理することにより、処理中に顆粒が壊れずにPHAが回
収しやすいなどの工業的メリットがある。また、蛋白分
解酵素処理が容易に行なわれるように、成型はフィル
ム、シート、集積体または糸状などのようにできるだけ
表面積が大きくなるような形に行なう。そうすることに
より、溶解処理面積増大にともなう処理時間の低減が図
られる。このように成形されたPHA顆粒をそのまま、
または細断して蛋白分解酵素を溶解した緩衝液に加え、
前記と同様にして反応せしめ、蛋白質を溶解除去する。
顆粒を分散した溶液から行なうことも可能であるが、P
HA顆粒を直接溶融、成形したのちに行なうこともでき
る。成形条件としては、PHAの分解温度以下にて行な
うことが必須である。好ましくは、分解点以下にて圧力
をかけて焼結体を形成することが好ましい。成形後に処
理することにより、処理中に顆粒が壊れずにPHAが回
収しやすいなどの工業的メリットがある。また、蛋白分
解酵素処理が容易に行なわれるように、成型はフィル
ム、シート、集積体または糸状などのようにできるだけ
表面積が大きくなるような形に行なう。そうすることに
より、溶解処理面積増大にともなう処理時間の低減が図
られる。このように成形されたPHA顆粒をそのまま、
または細断して蛋白分解酵素を溶解した緩衝液に加え、
前記と同様にして反応せしめ、蛋白質を溶解除去する。
【0026】または、菌体を溶菌酵素処理したのち、前
記のように蛋白分解酵素処理を先に行なってから、前記
の分離操作によりPHAを分離することも可能である。
蛋白分解酵素処理を適切に行なうことによりPHA顆粒
は膜が溶解されたのちも顆粒状を保ち、その後につづく
分離操作は容易に行なうことができる。
記のように蛋白分解酵素処理を先に行なってから、前記
の分離操作によりPHAを分離することも可能である。
蛋白分解酵素処理を適切に行なうことによりPHA顆粒
は膜が溶解されたのちも顆粒状を保ち、その後につづく
分離操作は容易に行なうことができる。
【0027】なお、本発明の分離・精製法においては必
要に応じて、溶菌処理の際に核酸分解処理を行なっても
よい。核酸分解処理は、たとえば小ウシのパンクレアス
由来デオキシリボヌクレアーゼI(400 〜600 U/mg)
などの核酸分解酵素を加えることにより行なわれる。
要に応じて、溶菌処理の際に核酸分解処理を行なっても
よい。核酸分解処理は、たとえば小ウシのパンクレアス
由来デオキシリボヌクレアーゼI(400 〜600 U/mg)
などの核酸分解酵素を加えることにより行なわれる。
【0028】また、本発明の分離・精製法においては必
要に応じて、溶菌処理後に超音波処理および10KHz程
度の可聴音波を使用した音波処理を行なうこともでき
る。このばあいの超音波処理および10KHz程度の可聴
音波を使用した音波処理条件としては、PHA顆粒自体
が分解しない程度の処理を行なう。また、必要に応じて
PHA分散液を冷却する。菌の種類により、処理条件は
当然変わってくるが、10KHz以上1000KHz程度の音
波あるいは超音波を使用する。これらの周波数は微生物
の種類によっても変えることは任意である。強度は、通
常0.05W/cm2 以上好ましくは、0.1 〜50W/cm2 、さ
らに好ましくは1〜30W/cm2 程度である。ただし、菌
体の超音波処理に通常用いられる超音波強度(1W/cm
2 程度)よりかなり強い強度(10〜30W/cm2 程度)の
超音波を用いて処理しても、菌体中のPHA顆粒は破壊
されない。一方、その他の菌体成分は速やかに微細化さ
れる(本発明の方法にしたがってリゾチームで処理され
たのちのロドバクター キャプスレイタスのばあい、20
KHz、20W/cm2 、5分の超音波処理により菌体は微
細化された)。したがって、超音波の強度が強いほど処
理が短時間で済み、効率的である。
要に応じて、溶菌処理後に超音波処理および10KHz程
度の可聴音波を使用した音波処理を行なうこともでき
る。このばあいの超音波処理および10KHz程度の可聴
音波を使用した音波処理条件としては、PHA顆粒自体
が分解しない程度の処理を行なう。また、必要に応じて
PHA分散液を冷却する。菌の種類により、処理条件は
当然変わってくるが、10KHz以上1000KHz程度の音
波あるいは超音波を使用する。これらの周波数は微生物
の種類によっても変えることは任意である。強度は、通
常0.05W/cm2 以上好ましくは、0.1 〜50W/cm2 、さ
らに好ましくは1〜30W/cm2 程度である。ただし、菌
体の超音波処理に通常用いられる超音波強度(1W/cm
2 程度)よりかなり強い強度(10〜30W/cm2 程度)の
超音波を用いて処理しても、菌体中のPHA顆粒は破壊
されない。一方、その他の菌体成分は速やかに微細化さ
れる(本発明の方法にしたがってリゾチームで処理され
たのちのロドバクター キャプスレイタスのばあい、20
KHz、20W/cm2 、5分の超音波処理により菌体は微
細化された)。したがって、超音波の強度が強いほど処
理が短時間で済み、効率的である。
【0029】以上のような方法により精製されたPHA
がえられる。
がえられる。
【0030】つぎに本発明のPHAの分離・精製法を実
施例に基づいて説明するが、本発明はもとよりかかる実
施例のみに限定されるものではない。 実施例1 ロドバクター キャプスレイタス(Rhodobact
er capsulatus ATCC 11166)(グル
コースを炭素源としたときに主としてPHBからなるP
HAを蓄積することが知られる)をグルコースを炭素源
として培養したPHA蓄積菌体(菌体1個あたり粒径0.
4 〜0.6 μmの顆粒が2〜3個入っているのが観察され
た)5g(湿菌,乾燥菌体1gに相当)をpH7.0 、50
mMリン酸緩衝液30mlに懸濁し、リゾチーム(塩化リゾ
チーム(精製)卵白由来、ナカライテスク社製)50mg、
1MCaCl2 0.5ml 、デオキシリボヌクレアーゼ
(シグマ製、タイプI)を0.5mg 加えて撹拌し、室温で
30分間反応させた。ついで、氷冷下超音波処理を20KH
z、10分間行なった。つぎに遠心分離を10,000Gで30分
間行なってPHA粒子画分を集めた。再度、PHA画分
をpH8.0 、50mMリン酸緩衝液へ懸濁し遠心分離して
PHA画分を集めて精製を繰返し、粗PHA(純度75
%)0.52gをえた。粗PHAを150 ℃で溶融し厚さ50μ
mのフィルムに成形した。このフィルムを約1×1mmに
砕断し、pH7.0 、50mMリン酸緩衝液に浸漬し、プロ
ナーゼ20mgを加え、80℃、6時間反応させた。反応後フ
ィルムを水洗し乾燥した(0.8 g)。 実施例2 実施例1でえたロドバクター キャプスレイタス(R.
capsulatusATCC 11166)の凍結乾燥菌体
100mg (PHA含有量80%)を50mMトリス塩酸緩衝液
(pH8.0 )100ml へ懸濁し、5分間ゆるやかに撹拌し
た。検鏡の結果、菌体内PHA顆粒の直径は0.4 〜0.8
μmで1または2個が1菌体内に存在するのがわかっ
た。ついで1M MgCl2 1ml、リゾチーム(塩化
リゾチーム(精製)卵白由来、ナカライテスク社製)50
mg、DNAアーゼ(シグマ製、タイプI)1mgおよび0.
1 M EDTAナトリウム2mlを加えて撹拌して溶かし
た。30分間撹拌後、容器を砕氷中へ移し、10KHzで2
分間処理した。遠心管へ移し、5000G20分の条件で遠心
分離し、上清をすて、50mMトリス塩酸緩衝液(pH8.
0 )10mlを加えて粗PHA懸濁液をえた。同条件で遠心
分離して上清をすてたのち、0.01%トリプシンを含む同
トリス塩酸緩衝液3mlを加えて、30℃、10分間撹拌して
PHA顆粒膜蛋白質を溶解した。これを5000Gで10分間
遠心分離して上清をすて、沈降したPHAへ同緩衝液10
mlを加えて撹拌後5000G、10分間の条件で遠心分離し
た。上清をすて沈降したPHAを凍結乾燥した。収量は
75mgであった。 実施例3 実施例1により製造したPHAの性状を確認するため
に、熱分析(DSC)、分子量分布測定(GPC)およ
び核磁気共鳴スペクトルの測定(NMR)を行なった。
施例に基づいて説明するが、本発明はもとよりかかる実
施例のみに限定されるものではない。 実施例1 ロドバクター キャプスレイタス(Rhodobact
er capsulatus ATCC 11166)(グル
コースを炭素源としたときに主としてPHBからなるP
HAを蓄積することが知られる)をグルコースを炭素源
として培養したPHA蓄積菌体(菌体1個あたり粒径0.
4 〜0.6 μmの顆粒が2〜3個入っているのが観察され
た)5g(湿菌,乾燥菌体1gに相当)をpH7.0 、50
mMリン酸緩衝液30mlに懸濁し、リゾチーム(塩化リゾ
チーム(精製)卵白由来、ナカライテスク社製)50mg、
1MCaCl2 0.5ml 、デオキシリボヌクレアーゼ
(シグマ製、タイプI)を0.5mg 加えて撹拌し、室温で
30分間反応させた。ついで、氷冷下超音波処理を20KH
z、10分間行なった。つぎに遠心分離を10,000Gで30分
間行なってPHA粒子画分を集めた。再度、PHA画分
をpH8.0 、50mMリン酸緩衝液へ懸濁し遠心分離して
PHA画分を集めて精製を繰返し、粗PHA(純度75
%)0.52gをえた。粗PHAを150 ℃で溶融し厚さ50μ
mのフィルムに成形した。このフィルムを約1×1mmに
砕断し、pH7.0 、50mMリン酸緩衝液に浸漬し、プロ
ナーゼ20mgを加え、80℃、6時間反応させた。反応後フ
ィルムを水洗し乾燥した(0.8 g)。 実施例2 実施例1でえたロドバクター キャプスレイタス(R.
capsulatusATCC 11166)の凍結乾燥菌体
100mg (PHA含有量80%)を50mMトリス塩酸緩衝液
(pH8.0 )100ml へ懸濁し、5分間ゆるやかに撹拌し
た。検鏡の結果、菌体内PHA顆粒の直径は0.4 〜0.8
μmで1または2個が1菌体内に存在するのがわかっ
た。ついで1M MgCl2 1ml、リゾチーム(塩化
リゾチーム(精製)卵白由来、ナカライテスク社製)50
mg、DNAアーゼ(シグマ製、タイプI)1mgおよび0.
1 M EDTAナトリウム2mlを加えて撹拌して溶かし
た。30分間撹拌後、容器を砕氷中へ移し、10KHzで2
分間処理した。遠心管へ移し、5000G20分の条件で遠心
分離し、上清をすて、50mMトリス塩酸緩衝液(pH8.
0 )10mlを加えて粗PHA懸濁液をえた。同条件で遠心
分離して上清をすてたのち、0.01%トリプシンを含む同
トリス塩酸緩衝液3mlを加えて、30℃、10分間撹拌して
PHA顆粒膜蛋白質を溶解した。これを5000Gで10分間
遠心分離して上清をすて、沈降したPHAへ同緩衝液10
mlを加えて撹拌後5000G、10分間の条件で遠心分離し
た。上清をすて沈降したPHAを凍結乾燥した。収量は
75mgであった。 実施例3 実施例1により製造したPHAの性状を確認するため
に、熱分析(DSC)、分子量分布測定(GPC)およ
び核磁気共鳴スペクトルの測定(NMR)を行なった。
【0031】以下にその条件と結果を示す。 (1)GPC (検 液)試料約30mgにm−クレゾールを10ml加え40℃
にて完全に溶解したのち、CHCl3 で50mlにメスアッ
プし、0.45μのメンプランフィルターで濾過したものを
検液とした。
にて完全に溶解したのち、CHCl3 で50mlにメスアッ
プし、0.45μのメンプランフィルターで濾過したものを
検液とした。
【0032】(測定条件) ポンプ:CCPD(東ソー) カラム:GMHXL(東ソー) 溶離液:m−クレゾール/CHCl3 (1:4) 流 量:1.0 ml/min 温 度:40°(恒温槽CO−8011東ソー) Det.:R1−8010(東ソー) 注入量:50μl (分子量較正曲線)標準ポリスチレンより作成し、分子
量は標準ポリスチレン分子量の換算値表わす。
量は標準ポリスチレン分子量の換算値表わす。
【0033】(データ)分子量分布曲線を図1に示す。
【0034】(結 果)データより実施例1のPHAの
Mwは180 万、Mnは80万であることがわかった。Mw
/Mnは2.25であった。 (2)DSC 測定結果を図2に示す。
Mwは180 万、Mnは80万であることがわかった。Mw
/Mnは2.25であった。 (2)DSC 測定結果を図2に示す。
【0035】この結果から、実施例1のPHAのTmは
165.2 ℃であることがわかった。 (3)NMR 磁場を300MHzとして、溶媒は重水素化クロロホルムを用
いてNMRを行なった。
165.2 ℃であることがわかった。 (3)NMR 磁場を300MHzとして、溶媒は重水素化クロロホルムを用
いてNMRを行なった。
【0036】実施例1でえられたPHAについての 1H
−NMRの測定結果を図3に、13C−NMRの測定結果
を図4に示した。
−NMRの測定結果を図3に、13C−NMRの測定結果
を図4に示した。
【0037】NMRの結果より、実施例1でえたPHA
はヒドロキシ酪酸(PHB)、ヒドロキシ吉草酸(PH
V)単位を含むことおよびその比が約95:5であること
がわかった。 実施例4 実施例1でえたPHAをクロロホルムに溶解しガラス板
上にキャスト、風乾しフィルム成型した。このフィルム
を当研究所庭(防府市鐘紡町4番1号)に埋めて強度、
伸度、形態的な経時変化を観察した。結果を表1に示す
が、約60日で完全に強度を失うまでに分解することがわ
かる。また、図5から図8に、それぞれ埋める前、埋め
た後8日、30日および60日間経過後のフィルムの状態の
電子顕微鏡写真を示す。
はヒドロキシ酪酸(PHB)、ヒドロキシ吉草酸(PH
V)単位を含むことおよびその比が約95:5であること
がわかった。 実施例4 実施例1でえたPHAをクロロホルムに溶解しガラス板
上にキャスト、風乾しフィルム成型した。このフィルム
を当研究所庭(防府市鐘紡町4番1号)に埋めて強度、
伸度、形態的な経時変化を観察した。結果を表1に示す
が、約60日で完全に強度を失うまでに分解することがわ
かる。また、図5から図8に、それぞれ埋める前、埋め
た後8日、30日および60日間経過後のフィルムの状態の
電子顕微鏡写真を示す。
【0038】
【表1】
【0039】
【発明の効果】本発明の分離・精製法により、PHA蓄
積菌から、安全に効率よく、純度の高いPHAを分離・
精製することが可能である。
積菌から、安全に効率よく、純度の高いPHAを分離・
精製することが可能である。
【図1】実施例1でえられたポリマーの分子量分布曲線
である。
である。
【図2】実施例1でえられたポリマーの熱分析の測定結
果を表わすグラフである。
果を表わすグラフである。
【図3】実施例1でえられたポリマーの 1H−NMRの
スペクトル分析の結果を表わすチャートである。
スペクトル分析の結果を表わすチャートである。
【図4】実施例1でえられたポリマーの13C−NMRス
ペクトル分析の結果を表わすチャートである。
ペクトル分析の結果を表わすチャートである。
【図5】実施例4の埋める前のフィルムの電子顕微鏡写
真(50倍)である。
真(50倍)である。
【図6】実施例4の埋めた後8日間経過後のフィルムの
電子顕微鏡写真(50倍)である。
電子顕微鏡写真(50倍)である。
【図7】実施例4の埋めた後30日間経過後のフィルムの
電子顕微鏡写真(30倍)である。
電子顕微鏡写真(30倍)である。
【図8】実施例4の埋めた後60日間経過後のフィルムの
電子顕微鏡写真(30倍)である。
電子顕微鏡写真(30倍)である。
Claims (1)
- 【請求項1】 ポリヒドロキシ有機酸エステル蓄積菌体
からポリヒドロキシ有機酸エステルを分離・精製する方
法であって、菌体懸濁液へ溶菌酵素を添加して細胞壁を
溶解する工程ののち、細胞質中に存在する顆粒皮膜で覆
われた粒径0.1 μm以上のポリヒドロキシ有機酸エステ
ル顆粒について、これを分離回収して集める工程と、し
かるのちに蛋白分解酵素処理によって顆粒皮膜を除去す
る工程とからなることを特徴とするポリヒドロキシ有機
酸エステルの分離・精製法。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PCT/JP1992/000751 WO1992022659A1 (fr) | 1991-06-11 | 1992-06-11 | Procede de production d'un ester d'acide organique polyhydroxy |
| US92/00751 | 1992-06-11 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH05336982A true JPH05336982A (ja) | 1993-12-21 |
Family
ID=14042384
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP4353197A Pending JPH05336982A (ja) | 1992-06-11 | 1992-12-11 | ポリヒドロキシ有機酸エステルの分離・精製法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH05336982A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US7393668B2 (en) | 2003-01-20 | 2008-07-01 | Kaneka Corporation | Method of collecting highly pure polyhydroxyalkanoate from microbial cells |
| JP2008193940A (ja) * | 2007-02-13 | 2008-08-28 | Honda Motor Co Ltd | ポリヒドロキシ酪酸精製方法 |
-
1992
- 1992-12-11 JP JP4353197A patent/JPH05336982A/ja active Pending
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US7393668B2 (en) | 2003-01-20 | 2008-07-01 | Kaneka Corporation | Method of collecting highly pure polyhydroxyalkanoate from microbial cells |
| JP2008193940A (ja) * | 2007-02-13 | 2008-08-28 | Honda Motor Co Ltd | ポリヒドロキシ酪酸精製方法 |
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